ES2209890T3 - Tocotrienoles y geranilgeraniol de subproductos de bixa orellana. - Google Patents

Tocotrienoles y geranilgeraniol de subproductos de bixa orellana.

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ES2209890T3 ES00932733T ES00932733T ES2209890T3 ES 2209890 T3 ES2209890 T3 ES 2209890T3 ES 00932733 T ES00932733 T ES 00932733T ES 00932733 T ES00932733 T ES 00932733T ES 2209890 T3 ES2209890 T3 ES 2209890T3
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Abstract

Un método de formar una composición de tocotrienol, que comprende la etapa de volatilizar un disolvente de una disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana el cual es la fase oleosa de colorante anato para formar de ese modo dicha composición de tocotrienol.

Description

Tocotrienoles y geranilgeraniol de subproductos de bixa orellana.
Generalmente los tocotrienoles se clasifican como cromanoles farnesilados (FC) y terpenoides mezclados. Se cree que el tocoferol y el tocotrienol tienen efectos beneficiosos porque actúan como antioxidantes. En particular, se ha documentado que los tocotrienoles poseen efectos hipocolesterolémicos así como una capacidad para reducir niveles en plasma de apolipoproteína aterogénica B y lipoproteína. Además, se cree que los tocotrienoles son útiles en el tratamiento de enfermedades cardiovasculares y cáncer. Véase, por ejemplo, Theriault, A., et al., "Tocotrienol: A Review of its Therapeutic Potencial" Clinical Biochemistry, 32:309-319 (Julio 1999); y "Tocotrienols: Biological and Health Effects" en Antioxidant Status, Diet, Nutrition and Health, Pappas, ed. (CRC Press), pp. 479-496 (1999). En particular, se han reconocido \delta-tocotrienol y \gamma-tocotrienol como supresores eficaces de actividad del colesterol, Qureshi, et al., "Response of Hypercholesterolemic Subjects to Administration of Tocotrienols", Lipids, 30(12) (1995), e inductores de apóptosis en células de cáncer de mama, Yu, et al., "Induction of Apoptosis in Human Breast Cancer Cells by Tocopherols and Tocotrienols", Nutrition and Cancer, 33(1):26-32 (1999).
Los tocoles, que incluye tocoferoles y tocotrienoles, proceden de varias fuentes, incluyendo varios aceites vegetales, tales como aceites de salvado de arroz, soja, sésamo y palma. Se han descubierto tocotrienoles en las semillas de Bixa orellana Linn, conocido de otro modo como árbol achiote. Véase, Jondiko, I.S., et al., "Terpenoids and an Apocarotenoid from Seeds of Bixa Orellana", Phytochemistry, 28(11):3159-3162 (1989). Sin embargo, cada fuente de tocotrienoles y tocoferoles generalmente contiene más de un solo homólogo de tocol. Por ejemplo, el aceite de palma y el aceite de salvado de arroz generalmente incluyen tanto tocotrienoles como tocoferoles. Además, se ha documentado que \alpha-tocoferol atenúa ciertos efectos de los tocotrienoles, tales como la actividad supresora del colesterol de \gamma-tocotrienol. Véase, por ejemplo, Qureshi, et al., supra. Además, debido a su similitud estructural, tocotrienoles y tocoferoles pueden ser difíciles de separar.
Geranilgeraniol incluye alcoholes diterpénicos acíclicos (ADA) y terpenoides geranilgeraniados (GGT), y se encuentra de forma natural en el aceite de linaza y la madera de Cederla toona y en el tomate natural. También se ha descubierto que existe geranilgeraniol en las semillas de Bixa orellana. Véase, Craveiro, et al., "The Presence of Geranylgeraniol in Bixa orellana Linn," Química Nova, 12(3):297-298 (1989). Usos potenciales para geranilgeraniol incluyen síntesis de co-enzima Q_{10}, vitamina K y tocotrienoles. Se cree que inhibe la esterificación de retinol a ésteres inactivos de retinilo y, por tanto, puede usarse para mejorar la descamación de la piel y la diferenciación epidérmica. Véase el documento U.S. 5.756.109, expedido a Burger et al. el 26 de mayo, 1998. Se ha empleado geranilgeraniol en conjunción con inhibidores HMG-CoA reductasa en el tratamiento de colesterol elevado en sangre. Véase el documento WO 99/66929 de Scolnick, publicado el 29 de diciembre, 1999. También se sospecha que geranilgeraniol es útil para tratamiento de cáncer de próstata humano. Véase el documento U.S. 5.602.184, expedido a Myers, et al., el 11 de febrero, 1997. Geranilgeraniol debe ser separado de compuestos terpenoides que tienen estructuras similares cuando derivan de fuentes naturales, como ocurre con el aislamiento de tocotrienoles específicos. Puede ser difícil la separación de geranilgeraniol de esos compuestos relacionados.
Por lo tanto, existe una necesidad de encontrar un método para la recuperación de \delta- y \gamma-tocotrienoles, y de geranilgeraniol, que minimice o reduzca los problemas descritos anteriormente.
Compendio de la invención
Una fuente de material conocido como disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana, que se obtiene como un material aceitoso después de eliminar la mayor parte de colorante anato, se retira o bien del extracto acuoso o del extracto en disolvente de semillas de achiote. Además, este subproducto contiene un componente tocotrienólico y un componente geranilgeraniólico y se puede usar como fuente para la recuperación de un componente tocotrienólico y un componente geranilgeraniólico.
La presente invención genéricamente se refiere a un método de formar una composición de tocotrienoles.
El método incluye volatilizar el disolvente de una disolución subproducto de componentes de semillas de Bixa orellana para formar de ese modo una composición de tocotrienoles.
En una realización, el método además incluye la etapa de destilar un componente geranilgeraniólico de la composición de tocotrienoles. Se separa de ese modo al menos una parte del componente geraniogeraniólico de la composición de tocotrienoles para formar un destilado de geranilgeraniol.
En otra realización, el método de formar una composición de tocotrienoles incluye extraer al menos una parte de un componente anato de semillas de Bixa orellana, por lo que se forma una fracción acuosa. La fracción acuosa incluye el componente anato, un componente tocotrienólico y un componente geranilgeraniólico. El componente anato precipita de la fracción acuosa para formar un precipitado de colorante anato y una disolución subproducto de componentes de la semilla de Bixa orellana. Después se volatiliza el agua de la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana para formar la composición de tocotrienoles.
Aún en otra realización, el método incluye destilar los componentes tocotrienólicos de la composición de tocotrienoles para formar un destilado de tocotrienol.
La presente invención tiene muchas ventajas. Por ejemplo, la cantidad de \delta-tocotrienol presente en la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana y empleada en el método es muy alta (500-700 veces más alta) en relación con la encontrada en otras fuentes comunes, tales como aceite de palma o aceite de salvado de arroz. Además, y también en contraste con aceites de palma y salvado de arroz, esencialmente no hay \alpha-tocoferol presente en la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana empleada por el método de la presente invención. Por lo tanto, la composición de tocotrienoles formada y, opcionalmente, el destilado de tocotrienoles formado, generalmente no requiere separación de \delta-tocotrienol de \alpha-tocoferol el cual, como se ha tratado anteriormente, puede tener un efecto mitigante de las propiedades terapéuticas de \delta-tocotrienol. Además, la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana es una fuente conveniente de geranilgeraniol. Por lo tanto, por el método de la invención también se pueden obtener concentraciones relativamente altas de geranilgeraniol.
Breve descripción de los dibujos
La figura es una representación esquemática del aparato que se puede emplear para realizar el método de la invención.
Descripción detallada de la invención
Las características y otros detalles de la invención, bien como etapas de la invención o como combinaciones de partes de la invención, serán descritos ahora más particularmente y señaladas en las reivindicaciones. Se entenderá que las realizaciones particulares de la invención se muestran a modo de ilustración y no como limitaciones de la invención. Las principales características de la invención se pueden emplear en varias realizaciones sin apartarse del ámbito de la invención.
Bixa orellana Linn, conocido de otro modo como árbol achiote, es un miembro de la familia Bixaceae y es originario de América tropical. Se cultiva comercialmente en otras partes del mundo, generalmente hasta latitud 20º Norte y Sur o más preferentemente hasta latitud 15º Norte y Sur. Las semillas de Bixa orellana Linn son la fuente de un colorante naranja-rojizo, conocido como anato, que contiene bixina y orellina, ambos son pigmentos carotenoides. El colorante se usa normalmente en alimentos, tintes y ceras. Típicamente el anato se extrae de semillas descascarilladas en una disolución acuosa caústica. El colorante precipita en la disolución acuosa caústica por adición de un ácido adecuado, tal como ácido sulfúrico. El colorante precipitado se separa por filtración. La torta del filtro de colorante anato precipitado se seca y se muele para formar un producto comercial. Generalmente se separa una fase oleosa de la fase acuosa caústica por centrifugación o por sedimentación. Alternativamente, el colorante anato se puede extraer de semillas en un disolvente orgánico, tal como hexano, acetona, o un alcohol. La mezcla que contiene color y subproducto oleoso se deja enfriar suficientemente para precipitar el colorante anato. El precipitado se separa como lodos del disolvente orgánico. La fase oleosa de las extracciones caústicas u orgánicas que sigue a la separación del precipitado de anato generalmente se desecha como subproductos.
Se ha descubierto que las disoluciones subproducto de los componentes de la semilla de Bixa orellana contienen tocotrienoles, incluyendo \delta- y \gamma-tocotrienoles, y geranilgeraniol. Además, se ha descubierto que estos materiales están presentes en esas disoluciones en cantidades muy altas. Por ejemplo, a menudo pueden estar presentes tocotrienoles en una cantidad en un intervalo entre aproximadamente 10 por ciento y aproximadamente 20 por ciento en peso. A menudo geranilgeraniol puede estar presente en una cantidad en un intervalo entre aproximadamente 25 por ciento y aproximadamente 80 por ciento en peso. En particular, se ha descubierto que, sorprendentemente, están presentes tocotrienoles y geranilgeraniol en la fase oleosa subproducto del colorante anato de semillas de achiote y, especialmente, de semillas de achiote totalmente descascarilladas. Además, se ha descubierto que grandes cantidades de estos materiales oleosos no saponificables (por ejemplo, tocotrienoles y geranilgeraniol) se pueden extraer de una semilla sólo con agua caústica. También se ha descubierto que se pueden obtener fracciones ricas en tocotrienol y fracciones ricas en geranilgeraniol en una unidad de operación.
El método de la invención generalmente se dirige a un método de formar una composición de tocotrienoles volatilizando un disolvente, tal como agua, o un disolvente orgánico, de una disolución subproducto de componentes de la semilla de Bixa orellana. Se define en la presente memoria una "disolución subproducto de componentes de la semilla de Bixa orellana" como una disolución que se obtiene a partir de componentes de semilla de Bixa orellana que tiene una concentración de colorante anato significativamente menor que las propias semillas de Bixa orellana. Otros términos comunes para disolución subproducto usados para productos comerciales incluyen: color anato soluble en aceite o aceite de anato. Generalmente, la concentración de colorante anato, que está definida como bixinas y otros carotenoides, químicamente modificados, alterados o esterificados, en disolución subproducto de semilla de Bixa orellana es menor de aproximadamente dos por ciento, en peso, tal como entre aproximadamente 0,05 por ciento en peso y aproximadamente 2,0 por ciento en peso.
En la figura 1 se muestra una representación esquemática del aparato 10 adecuado para realizar el método de la presente invención. Desde la fuente 12 de disolución subproducto, se dirige la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana a través del conducto 14 al evaporador 16.
Los materiales para usar en la construcción del aparato 10, a menos que se especifique otra cosa, incluyen materiales adecuados para usar con el proceso de la presente invención. Ejemplos de materiales adecuados de construcción incluyen vidrio y acero inoxidable. Métodos para dirigir disoluciones subproducto y componentes fluidos a través del aparato 10 incluyen, por ejemplo, bombeo, tal como con una bomba de desplazamiento positivo o bomba centrífuga, no mostradas, y aplicación de presión a la fuente fluida dirigiendo un gas no reactivo adecuado a la fuente fluida, tal como gas nitrógeno.
Se volatiliza el disolvente, tal como agua o un disolvente orgánico, tal como hexano, acetona o un alcohol, de la disolución subproducto en el evaporador 16 a una temperatura y presión suficientes para reducir el contenido de disolvente a un intervalo entre aproximadamente 0,05 por ciento en peso y aproximadamente 0,5 por ciento en peso. Generalmente, el disolvente se volatiliza a una temperatura y presión suficientes para elevar la concentración de tocotrienoles a un intervalo entre aproximadamente 5 por ciento en peso y aproximadamente 20 por ciento en peso. En una realización, se volatiliza agua en el evaporador 16 a una temperatura en un intervalo entre aproximadamente 20ºC y aproximadamente 140ºC a una presión absoluta en un intervalo entre aproximadamente 1,33 x 10^{3} Pa (aprox 10 torr) y aproximadamente 1,01 x 10^{5} Pa (aprox 760 torr) (todas las presiones se representan como absolutas, más que como sobrepresiones). Se elimina disolvente volatilizado del evaporador 16 a través del conducto 18 y puede ser recolectado para reutilizarse, tal como en una extracción posterior, o desechado. La volatilización del disolvente de la disolución subproducto forma una composición de tocotrienoles en el evaporador 16.
La composición de tocotrienoles se dirige del evaporador 16 a través del conducto 20 al recipiente 22. Opcionalmente, un aceite vegetal adecuado, tal como aceite de salvado de arroz, se dirige al recipiente 22 desde la fuente 24 de aceite vegetal y se mezcla con la composición de tocotrienoles. La composición de tocotrienoles y el aceite vegetal se agitan en el recipiente 22. La adición de aceite vegetal a la composición de tocotrienoles reduce la viscosidad de la composición de tocotrienoles y proporciona un medio más adecuado para separar el colorante anato residual de la disolución subproducto. En una realización, la cantidad de aceite vegetal añadida a la composición de tocotrienoles es suficiente para causar que el componente aceite vegetal de la composición de tocotrienoles esté en un intervalo entre aproximadamente 45 por ciento en peso y aproximadamente 30 por ciento en peso.
La composición de tocotrienoles se dirige desde el recipiente 22 a través del conducto 26 al evaporador 28. Preferentemente, el evaporador 28 es un evaporador de película delgada, tal como un evaporador de película descendente, de película agitada o de tiro forzado. El evaporador puede ser de tipo modo continuo o modo discontinuo. Se volatiliza geranilgeraniol del evaporador 28 y se elimina como vapor en cabeza a través del conducto 30. El vapor se condensa en el condensador 32 para recuperarse en el recipiente 34. Opcionalmente, una parte del destilado condensado se recircula al evaporador 28 como un reflujo a través del conducto 36. En una realización, se destila geranilgeraniol a una temperatura en un intervalo entre aproximadamente 110 y aproximadamente 210ºC a una presión absoluta por debajo de aproximadamente 1,33 x 10^{3} Pa (aprox 10 torr). Preferentemente, se destila geranilgeraniol en el evaporador 28 a una temperatura por debajo de aproximadamente 185ºC y a una presión absoluta por debajo de aproximadamente 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr). Generalmente, se realiza destilación de geranilgeraniol durante un periodo de tiempo suficiente para reducir la concentración de geranilgeraniol en la composición de tocotrienoles en el evaporador 28 a menos de aproximadamente 25 por ciento en peso.
El destilado de geranilgeraniol recuperado en el recipiente 34 se puede destilar más. Ejemplos de evaporadores adecuados son los mismos que los descritos anteriormente para destilación de geranilgeraniol. En una realización, se dirige destilado de geranilgeraniol a través del conducto 38 al evaporador 40. En una realización, se volatiliza destilado de geranilgeraniol en el evaporador 40 a una temperatura en un intervalo entre aproximadamente 90ºC y aproximadamente 220ºC y a una presión en un intervalo entre aproximadamente 1,33 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y aproximadamente 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr). El vapor se condensa en el condensador 42 y se recoge en el receptor 44. Una parte del destilado condensado se puede recircular como reflujo al evaporador 40 a través del conducto 46. Preferentemente, se destila geranilgeraniol para obtener una concentración en el receptor 44 en un intervalo entre aproximadamente 40 por ciento en peso y aproximadamente 80 por ciento en peso.
La composición tocotrienol se dirige del evaporador 28 a través del conducto 48 al evaporador 50 para destilar el tocotrienol. Los evaporadores adecuados para destilación de tocotrienol incluyen, por ejemplo, evaporadores de película agitada de alto vacío y de tiro forzado. Se puede realizar destilación en modo discontinuo o modo continuo. En una realización, se destila tocotrienol a una temperatura menor que aproximadamente 250ºC. Preferentemente se destila tocotrienol en el evaporador 50 a una presión en un intervalo entre aproximadamente 1,33 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y aproximadamente 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr). Se dirige tocotrienol volatilizado a través del conducto superior 52 y se condensa en el condensador 54 para recogerse en el receptor 56. Se puede reenviar destilado de tocotrienol condensado al evaporador 50 a través del reflujo del conducto 58. Generalmente, la destilación de tocotrienol se realiza de manera que la concentración de destilado tocotrienol en el receptor 56 está en un intervalo entre aproximadamente 20 por ciento en peso y aproximadamente 50 por ciento en peso.
Opcionalmente, se puede dirigir destilado de tocotrienol del receptor 56 a través del conducto 60 al evaporador 62 para destilarse más. Ejemplos de evaporadores adecuados son los mismos que los descritos anteriormente para destilación de tocotrienoles. En una realización, el evaporador 62 funciona a una temperatura en un intervalo entre aproximadamente 100ºC y aproximadamente 250ºC y a una presión en un intervalo entre aproximadamente 1,33 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y aproximadamente 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr). Se condensa destilado de tocotrienol en el condensador 64 y se recoge en el receptor 66. Opcionalmente, se puede dirigir destilado tocotrienol condensado a través de reflujo de la línea 68 de vuelta al evaporador 62. Generalmente, la concentración de destilado de tocotrienol en el receptor 66 está en un intervalo entre aproximadamente 20 por ciento en peso y aproximadamente 90 por ciento en peso.
Se recogen los residuos del evaporador 50 a través del conducto 70 en el receptor 72 y generalmente incluyen colorante anato residual. Los residuos se pueden procesar por métodos adecuados para recuperar el colorante.
Se entiende que, en una realización alternativa, los componentes geranilgeraniol y tocotrienol se pueden destilar juntos, desde un único recipiente.
En una realización opcional, se puede formar disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana antes de, o conjuntamente con, la formación de la composición de tocotrienoles. Por ejemplo, se puede formar subproducto oleoso durante la extracción de semillas de achiote, o bien con agua caústica o con un disolvente adecuado. En el proceso del agua caústica, se contraen semillas de achiote con suficiente agua caústica para eliminar la mayoría del color anato de las semillas. La mayor parte del color anato se separa del extracto acuoso como un sólido. Se separa subproducto oleoso del extracto acuoso al ser menos denso que la fase acuosa ya sea por centrifugación o decantación. Opcionalmente, se puede volatilizar agua del extracto acuoso después de que la mayor parte del color anato se elimine para producir un subproducto oleoso.
En el método de extracción por disolvente, entran en contacto semillas de achiote con suficiente disolvente para eliminar la mayoría del color anato de las semillas. La mayor parte del color anato se separa del disolvente como un sólido. Se obtiene subproducto oleoso después de la eliminación de la mayoría del disolvente de la parte del extracto que es altamente soluble después de la separación de la mayor parte del color achiote. Ambos subproductos, agua caústica extraída y disolvente extraído contienen componentes tocotrienol y geranilgeraniol que son útiles para producir una composición de tocotrienol y una composición de geranilgeraniol.
Aunque los métodos anteriores se describen para la producción de una disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana adecuada, se pueden emplear otros métodos. Por ejemplo, el método descrito en Hyman et al., "Reorienting Export Production to Benefit Rural Producers: Annatto Processing in Peru", Journal of Rural Studies, 6(1):85-101 (1990) es un ejemplo de un método adecuado.
Ahora se describirá la invención más detallada y específicamente con los siguientes ejemplos. Todas las partes y porcentajes son en peso a menos que se indique otra cosa.
Ejemplo 1
Se eliminó el agua del subproducto aceite de achiote, obtenido a partir de un proceso de extracción caústica comercial, en un evaporador rotatorio a 93ºC durante 1,5 horas a aproximadamente 6,67 x 10^{3} Pa (aprox 50 torr). Esto eliminó de 4 a 5 por ciento en volumen del material mayormente como agua. Se añadió aceite de salvado de arroz de manera que el volumen total de aceite de salvado de arroz fue 10 por ciento. Después esto pasó a través de un destilador centrífugo de alto vacío que funciona a 90ºC a 2,66 x 10^{2} Pa (aprox de 2 a 5 torr). Menos de 2 por ciento del material destilado (componentes aromáticos y una pequeña cantidad de agua), todo lo cual fue desechado. La destilación continuó y las condiciones y cantidades de los residuos destilados y tocotrienol y análisis se resumen a continuación. El caudal típico al destilador era 1-21 por hora. Destilados y residuos se indican como porcentaje en volumen de material que va al destilador centrífugo.
Condiciones GC para análisis de GG
Columna: Carbowax CB52 capilar 50 m
Detector: ionización de llama
50-220ºC a 10ºC/minuto. Mantenido a 220ºC durante 9 minutos (total 26 minutos).
Condiciones HPLC para análisis T3
Columna: paquete Supercosil LC Diol: longitud 25 cm, 3 mm I.D., 5 \mum.
Fase móvil: 97,5 hexano: 2,5(2,5 acetato de etilo: 1,0 ácido acético: 0,1 dimetoxipropano) 1,0 ml/min (Isocrático)
Detector: fluorescente excitación 295 nm; emisión 340 nm.
Abreviaturas utilizadas: tocotrienoles (T3), geranilgeraniol (GG), absorbancia de color natural de una disolución 1 por ciento en tetrahidrofurano a 428 nm (Abs), no analizado (NA).
El material usado para el Paso 1 fue un aceite rojo con 15,7 por ciento de T3 y una Abs de 37,0.
\newpage
Paso 1
Destilación de GG a 120ºC y 4,00 Pa (aprox 0,03 torr)
Destilado 45% T3 2,2% GG 52% Abs 0,65
Residuo 55% T3 25,8% Abs 55,8
Residuo de Paso 1 a Paso 2.
Paso 2
Destilación de GG a 120ºC y 4,00 Pa (aprox 0,03 torr)
Destilado 22% T3 4,2% Abs NA
Residuo 78% T3 27,2% Abs NA
Residuo de Paso 2 a Paso 3.
Paso 3
Destilación de T3 a 198ºC y 1,33 Pa (aprox 0,01 torr).
Destilado 42% T3 41,2% Abs 3,7
Residuo 58% T3 NA Abs 79,5
La destilación del destilado de Paso 3 a una temperatura de 130ºC a 185ºC y aproximadamente 1,33 Pa (aprox 0,01 torr) produjo fracciones de más de 90 por ciento en peso de T3.
Ejemplo 2
El subproducto aceite de achiote tenía una concentración de 17,9 por ciento de tocotrienoles tras eliminar compuestos de bajo punto de ebullición (10 por ciento agua y materiales aromáticos) en un evaporador de película agitada a 120ºC y aproximadamente 2,66 x 10^{3} Pa (aprox 20 torr). Esto se sometió a destilación centrífuga a alto vacío como se describe a continuación.
Paso 1
Destilación de GG a 130ºC y 1,07 x 10 Pa (aprox 0,08 torr)
Destilado 51% T3 3,0%
Residuo 49% T3 28,5%
Se destiló residuo de Paso 1 tras la adición de 18 por ciento de aceite de salvado de arroz en Paso 2.
Paso 2
Destilación de T3 y del GG sobrante a 210ºC y 1,07 x 10 Pa (aprox 0,08 torr)
Destilado 52% T3 32,5%
Residuo 48% T3 7,9%
Ejemplo 3
Se procesó subproducto aceite de achiote obtenido de un fabricante diferente usando el proceso de extracción caústica de semillas de achiote de un modo similar al Ejemplo 1. Tras la eliminación del agua en un evaporador rotatorio y la adición de 10 por ciento de aceite de salvado de arroz, esto se sometió a destilación centrífuga de alto vacío como sigue:
Paso 1
Destilación de GG a 130ºC y 6,67 Pa (aprox 0,05 torr)
Destilado 43% T3 2,4% GG 56,7%
Residuo 57% T3 19,6%
Paso 2
Destilación de T3 y GG sobrante a 200ºC y 6,67 Pa (aprox 0,05 torr)
Destilado 51% T3 33,6%
Residuo 49% T3 5,4%
Residuo de Paso 2 a Paso 3.
La destilación del destilado de Paso 2 de 130 a 185ºC y aproximadamente 1,33 Pa (0,01 torr) produjo fracciones con más de 55 por ciento de T3. El material original usado para Paso 1 era 12,9 por ciento de T3.
Ejemplo 4
Se procesó subproducto aceite de achiote obtenido de la extracción con disolvente comercial de semillas de achiote de un modo similar al Ejemplo 1. Tras la eliminación de la mayoría del disolvente residual en un evaporador rotatorio (5 por ciento), este material se sometió a destilación centrífuga de alto vacío como sigue:
Paso 1
Destilación de GG a 125ºC y 6,67 Pa (aprox 0,05 torr)
Destilado 45% T3 2,5% GG 45%
Residuo 55% T3 NA
Se añadió 10 por ciento de aceite de salvado de arroz al residuo de Paso 1, y la destilación continuó.
Paso 2
Destilación de T3 y GG sobrante a 205ºC y 12,0 Pa (aprox 0,09 torr)
Destilado 68% T3 26,3%
Residuo 32% T3 6,3%
Residuo de Paso 2 a Paso 3.
Paso 3
Destilación de GG a 115ºC y 10,7 Pa (aprox 0,08 torr)
Destilado 33% T3 1,5%
Residuo 67% T3 34,5%
El material original usado para Paso 1 era 12,6 por ciento T3.

Claims (17)

1. Un método de formar una composición de tocotrienol, que comprende la etapa de volatilizar un disolvente de una disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana el cual es la fase oleosa de colorante anato para formar de ese modo dicha composición de tocotrienol.
2. El método de la reivindicación 1, en el que (a) el disolvente incluye uno cualquiera entre agua, hexano, acetona o un alcohol.
3. El método de la reivindicación 1, en el que la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana incluye un componente geranilgeraniol.
4. El método de la reivindicación 3, que además incluye
(a)
La etapa de destilar el componente geranilgeraniol para separar de ese modo al menos una parte de dicho componente geranilgeraniol de dicha composición de tocotrienol para formar un destilado de geranilgeraniol; o
(b)
La etapa de combinar dicha disolución subproducto antes de la destilación con un aceite vegetal, el cual opcionalmente incluye aceite de salvado de arroz, o
(c)
La etapa de destilar un componente tocotrienol de dicha composición de tocotrienol para formar un destilado de tocotrienol y una corriente de residuos.
5. El método de una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en el que se volatiliza agua de la disolución subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana por mantenimiento de dicha disolución a una temperatura en un intervalo entre 20ºC y 150ºC y a una presión absoluta en un intervalo entre 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr) y 1,01 x 10^{5} Pa (aprox 760 torr), y opcionalmente en el que dicha agua se volatiliza de la disolución subproducto durante un periodo de tiempo suficiente para reducir el contenido de agua de la composición de tocotrienol a menos de aproximadamente 0,5 por ciento en peso.
6. El método de la reivindicación 4, en el que el componente geranilgeraniol destilado por mantenimiento de la composición de tocotrienol a una temperatura en un intervalo entre 90ºC y 220ºC y a una presión absoluta en un intervalo entre 1,33 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr), y opcionalmente en el que la composición de geranilgeraniol se destila durante un periodo de tiempo suficiente para causar que el componente geranilgeraniol de la composición de tocotrienol sea menor que aproximadamente 25 por ciento en peso.
7. El método de la reivindicación 4,
(a) en el que el componente tocotrienol se destila por mantenimiento de la composición de tocotrienol a una temperatura en un intervalo entre 140ºC y 250ºC y a una presión absoluta en un intervalo entre 1,33 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr), y opcionalmente en el que el componente tocotrienol se destila durante un periodo de tiempo suficiente para causar que el contenido de tocotrienol de la corriente de residuos sea menor de aproximadamente 8 por ciento en peso; o
(b) que incluye además la etapa de destilar dicho destilado de geranilgeraniol, y opcionalmente en el que dicho destilado de geranilgeraniol se destila por mantenimiento de dicho destilado a una temperatura en un intervalo entre 80ºC y 220ºC y a una presión absoluta en un intervalo entre 1,3 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr).
8. El método de la reivindicación 7, en el que dicho destilado geranilgeraniol se destila bajo condiciones suficientes para causar que la concentración de geranilgeraniol de dicho destilado sea mayor de aproximadamente 40 por ciento en peso.
9. El método de la reivindicación 4, que incluye además la etapa de destilación de dicho destilado de tocotrienol, y opcionalmente en el que dicho destilado de tocotrienol se destila por mantenimiento de dicho destilado a una temperatura en un intervalo entre 100ºC y 250ºC y a una presión absoluta en un intervalo entre 1,33 x 10^{-1} Pa (aprox 0,001 torr) y 6,67 x 10^{2} Pa (aprox 5 torr).
10. El método de la reivindicación 9, en el que dicho destilado de tocotrienol se destila bajo condiciones suficientes para causar que la concentración del destilado tocotrienol sea mayor de aproximadamente 25 por ciento en peso.
11. El método de la reivindicación 1, que además incluye la etapa de formar la disolución de componentes de semilla de Bixa orellana.
12. El método de la reivindicación 4 o la reivindicación 6, en el que
\newpage
(a) el componente geranilgeraniol se destila por destilación discontinua de la composición de tocotrienol, y opcionalmente además incluye la etapa de destilar más el destilado de geranilgeraniol; o
(b) el componente geranilgeraniol se destila por destilación continua de la composición de tocotrienol, y opcionalmente en el que la destilación continua incluye un reflujo del geranilgeraniol destilado.
13. El método de la reivindicación 4 o la reivindicación 7, en el que
(a) el componente tocotrienol se destila por destilación por lotes de la composición de tocotrienol, y opcionalmente además incluye la etapa de destilación posterior del componente destilado de tocotrienol; o
(b) el componente tocotrienol se destila por destilación continua de la composición de tocotrienol, y opcionalmente en el que la destilación continua incluye un reflujo del componente destilado de tocotrienol.
14. Un método para procesar semillas de Bixa orellana caracterizado por
(a) destilar geranilgeraniol de una fracción acuosa de subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana; o
(b) destilar tocotrienol de una fracción acuosa de subproducto de componentes de semilla de Bixa orellana.
15. Un producto tocotrienol o un producto geranilgeraniol, producible por el método de una cualquiera de las reivindicaciones precedentes.
16. Un producto de acuerdo con la reivindicación 14 para usar en terapia.
17. Uso de una composición producible por el método de la reivindicación 1 para la fabricación de un medicamento.
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