ES2262347T3 - Receptor tirosina quinasa humano. - Google Patents
Receptor tirosina quinasa humano.Info
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Abstract
Polinucleótido purificado que comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un polipéptido que tiene al menos 80% de homología con un miembro elegido del grupo que consiste en: (la SEQ ID NO:3, las posiciones 1 a 122 de SEQ ID NO:3; las posiciones 26 a 422 de SEQ ID NO:3 y las posiciones 123 a 422 de SEQ ID NO:3).
Description
Receptor tirosina quinasa humano.
Se reivindica aquí la prioridad bajo el Título
35 USC § 119(e) de la Solicitud provisional, "Receptor
tirosina quinasa humano", Serie nº 60/088.958, presentada el 11
de junio de 1998 en la Oficina de Patentes y Marcas de los Estados
Unidos de América, que se incorpora aquí como referencia.
La presente invención se refiere a secuencias de
ácidos nucleicos y aminoácidos que pertenecen a un nuevo receptor
tirosina quinasa, y al uso de estas secuencias para identificar
compuestos que modulan una actividad biológica y/o farmacológica de
la biomolécula nativa. La invención también se refiere a moléculas
antisentido biológicamente eficaces, así como también a versiones
mutantes negativas dominantes del receptor tirosina quinasa, las
cuales son adecuadas para uso terapéutico. La invención también se
refiere al diagnóstico, estudio, prevención, y tratamiento de
trastornos patofisiológicos relacionados con o mediados por el
receptor tirosina quinasa.
La angiogénesis patológica se produce en muchas
afecciones, y se piensa que está inducida por isquemia local. Las
enfermedades en las que se piensa que la angiogénesis desempeña un
papel crítico en la patología subyacente incluyen: enfermedades
oculares tales como retinopatía diabética, retinopatía o premadurez
y degeneración macular relacionada con la edad; enfermedades
vasculares tales como cardiopatía isquémica y aterosclerosis;
trastornos inflamatorios crónicos tales como soriasis y artritis
reumatoide; y crecimiento de tumores sólidos. Una revisión reciente
se centra principalmente en el papel de los RTK en la angiogénesis
tumoral. Shawver, L.K., et al., Receptor Tyrosine as Targets for
Inhibition of Angiogenesis, Drugs Discovery Today (Elsevier
Science Ltd.), 2(2):50 (1997). La revisión apunta
principalmente al papel de los factores de crecimiento y a sus
receptores tirosina quinasa RTK en la regulación de la fisiología de
los microvasos puesto que están relacionados con el proceso
angiogénico. Para el crecimiento y metástasis de tumores sólidos es
necesario el crecimiento de nuevos vasos sanguíneos. La importancia
de la angiogénesis en tumores humanos ha sido subrayada por
estudios recientes que relacionan el fenotipo angiogénico con la
supervivencia del paciente. Estos estudios encontraron que el
número de microvasos en un tumor primario tiene una importancia de
pronóstico en el carcinoma de mama, en carcinomas de vejiga,
carcinomas de colon, y tumores de la cavidad oral. Los agentes
antiangiogénicos tienen potencialmente amplias aplicaciones en los
hospitales. Véase también Herz, Jeffrey M., et al., Molecular
Approaches to Receptors as Targets for Drugs Discovery, J. of
Receptor & Signal Transduction Research, 17(5):671
(1997).
Marra et al.: EMBL ACC Nº AA098024, 27 de
octubre de 1996, pretende describir una secuencia de EST de ratón
para la cual la función asignada del polipéptido correspondiente es
un receptor tirosina quinasa.
Auffray et al. EMBL ACC Nº Z42722, 6 de
noviembre de 1994, describe un EST humano sin función asignada, que
muestra identidad con partes de la secuencia de la presente
invención.
Los RTK (también conocidos como receptores del
factor de crecimiento) desempeñan un papel importante en muchos
procesos celulares. Todas estas moléculas tienen un dominio de unión
al ligando extracelular. Con la unión al ligando, los receptores se
dimerizan, la tirosina quinasa se activa y los receptores se
autofosforilan. Ulrich, A., et al., Cell, 61:203 (1990). La
cascada accionada por la activación de RTK modula sucesos celulares,
determinando la proliferación, diferenciación y morfogénesis de
manera positiva o negativa. Las perturbaciones en la expresión de
los factores de crecimiento, sus RTK cognatos, o constituyentes de
las rutas de señalización en dirección 3' están asociadas
habitualmente con mucho tipos cáncer. Se ha demostrado que las
mutaciones génicas que dan lugar a productos proteínicos alterados
alteran los mecanismos reguladores que influyen en la proliferación
celular, dando como resultado la iniciación y la progresión de
tumores. Shawver, L.K., et al., Receptor Tyrosine Kinases as
Targets for Inhibition of Angiogenesis, DDT (Elsevier Science
Ltd.), 2(2):50 (1997).
Una estrategia para interferir con la
señalización del receptor es inhibir la unión al ligando. Esto se
puede lograr con antagonistas específicos de la unión al receptor,
tales como fragmentos de ligando, o con antagonistas no
específicos, tales como suramina, con agentes neutralizantes del
ligando o del receptor, o con un exceso de receptor soluble o de
proteína que se une al ligando, que se secuestrará al ligando. Una
segunda estrategia para interferir con la señalización del receptor
es bloquear la transducción de la señal mediante la sobreexpresión
de un receptor negativo dominante. Debido a que los receptores
quinasas se dimerizan típicamente para inducir la transducción de
señales a través de la transfosforilación, la prevención de la
dimerización del receptor, debido a la sobreexpresión de receptores
deficientes en quinasa, atenuará la activación de la señalización.
Los receptores se pueden hacer deficientes en quinasas mediante la
introducción de una mutación de punto en los aminoácidos, crítica
para la función quinasa, o mediante la supresión de la quinasa o de
todo el dominio citoplásmico. Otra estrategia para entender la
función del receptor implica agotar la proteína del receptor. Esto
se puede lograr mediante la introducción de agentes exógenos, tales
como oligonucleótidos antisentido, ARN antisentido, o ribozimas,
todos los cuales conducen a la degradación del ARNm del receptor, y
al agotamiento gradual de la proteína en la célula. Id.
\newpage
Los profundos efectos celulares mediados por
tirosina quinasas y por fosfotirosina fosfatasas los han hecho
dianas atractivas para el desarrollo de nuevas moléculas
terapéuticas. Por ejemplo, se sabe que la sobreexpresión de las
tirosina quinasas, tales como HER2, puede desempeñar un papel
decisivo en el desarrollo de cáncer, y que los anticuerpos capaces
de bloquear la actividad de esta encima pueden anular el crecimiento
tumoral. Slamon, D. J., et al., Science, 235:177 (1987);
Drebin, et al., Oncogene 2:387 (1988). Más recientemente, se
han hecho intentos para identificar pequeñas moléculas que actúen
como inhibidores de tirosina quinasa. Por ejemplo, los compuestos
arílicos monocíclicos, bicíclicos o heterocíclicos (documento PCT WO
92/20642), los derivados de vinilen-azaindol
(documento PCT WO 94/14808) y las
1-ciclopropil-4-piridil-quinolonas
(Patente U.S. nº 5.330.992), se han descrito generalmente como
inhibidores de tirosina quinasas. Los compuestos de estirilo
(Patente U.S. nº 5.217.999), los compuestos de piridilo sustituidos
con estirilo (Patente U.S. nº 5.302.606), ciertos derivados de
quinazolina (Solicitud EP nº 0566266 A1), los selenoindoles y los
seleniuros (Documento PCT WO 94/03427), los compuestos
polihidroxílicos tricíclicos (documento PCT WO 92/21660) y los
compuestos de ácidos bencilfosfónicos (documento PCT WO 91/15495) se
han descrito como compuestos para uso como inhibidores de tirosina
quinasas para uso en el tratamiento de
cáncer.
cáncer.
La disponibilidad de una nueva especie de
receptor tirosina quinasa humano que este claramente implicado
mediante una conexión funcional a una enfermedad sería ideal para
tal cribado farmacéutico, así como para el diagnóstico, estudio,
prevención y tratamiento de enfermedades patofisiológicas
relacionadas con la molécula biológica.
La presente invención se refiere a un
polinucleótido purificado que comprende una secuencia de ácidos
nucleicos que codifica un péptido que tiene al menos una homología
del 80% con un miembro seleccionado del grupo que consiste en: (SEQ
ID NO:3, SEQ ID NO:3 posiciones 1-122, SEQ ID NO:3
posiciones 26-422, y SEQ ID NO:3 posiciones
123-422).
La presente invención también se refiere a un
polinucleótido purificado que comprende una secuencia de ácidos
nucleicos que codifica un polipéptido que comprende la secuencia
según se representa en SEQ ID NO:3, en la que la posición 147
(lisina) de SEQ ID NO:3 está sustituida o eliminada.
Los polinucleótidos aislados y purificados de la
presente invención incluyen secuencias que comprenden SEQ ID NO:1 y
SEQ ID NO:2.
La actual invención se refiere a un polipéptido
purificado que comprende la secuencia de aminoácidos como se
representa en SEQ ID NO:3 o una variante de SEQ ID NO:3 que tiene al
menos una homología de 80% con un miembro seleccionado del grupo que
consiste en: (SEQ ID NO:3, SEQ ID NO:3 posiciones
1-25, SEQ ID NO:3 posiciones 1-122,
SEQ ID NO:3 posiciones 26-422, y SEQ ID NO:3
posiciones 123-422).
Una realización preferida de la invención es una
molécula polinucleotídica antisentido aislada y purificada,
biológicamente eficaz, que comprende un oligómero en el intervalo de
12 a 25 nucleótidos de longitud, que es complementario a una región
dentro de las posiciones 67-148 y
1333-1414 de SEQ ID NO:1.
La invención se refiere además a un vector de
expresión, así como a células hospedantes que alojan al vector de
expresión, para la expresión de un polipéptido, en el que dicho
vector comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido como se representa en SEQ ID NO:3, o un derivado
farmacológica y/o biológicamente activo, o biológicamente efectivo,
como se describe anteriormente.
La actual invención se refiere además a métodos
para identificar compuestos que modulan una actividad biológica y/o
farmacológica de una tirosina quinasa, que comprenden:
- (a)
- combinar un compuesto candidato modulador de la actividad con un polipéptido que tiene la secuencia como se representa SEQ ID NO:3, o una variante como se describe anteriormente, y
- (b)
- medir el efecto del compuesto candidato modulador sobre la actividad biológica y/o farmacológica del polipéptido.
Adicionalmente, la invención se refiere a
métodos de tratamiento de un paciente que necesite tal tratamiento
para una afección que esta mediada por una tirosina quinasa, que
comprende administrar: (a) una cantidad eficaz de un polinucleótido
que codifica un polipéptido mutante negativo dominante,
biológicamente eficaz, que comprende la secuencia como se
representa en SEQ ID NO:3, o una variante contemplada del mismo; y/o
(b) una cantidad eficaz de una molécula antisentido biológicamente
eficaz derivada del complemento de SEQ ID NO:1.
Excepto que se defina de otro modo, todos los
términos técnicos y científicos usados aquí tienen el mismo
significado que el entendido habitualmente por el experto en la
técnica a la que pertenece esta invención. Todas las publicaciones
y patentes citadas aquí se incorporan como referencia.
La actividad biológica, como se usa aquí con
referencia a la tirosina quinasa de la presente invención, se
refiere a la actividad de quinasa de la biomolécula, y/o al
comportamiento de una cualquiera o más de las funciones,
incluyendo, pero sin limitarse a, la capacidad para
autofosforilarse, para fosforilar un sustrato, para unirse a ATP, y
para mediar la activación de Cdc2 quinasa. La actividad
farmacológica, como se usa aquí con referencia a la tirosina
quinasa de la presente invención, se refiere a la activación
transcripcional directa o indirecta de uno o más genes, así como
también a la capacidad para mediar uno cualquiera o más de los
estados fisiológicos, incluyendo, pero sin limitarse a, mitosis,
diferenciación celular, proliferación, transformación oncogénica,
neoplasia, regulación de macrófagos, regulación de células
endoteliales, regulación de fibroblastos, estructura
citoesquelética, metástasis, agregación celular, movilidad celular,
citoquinesis, cáncer, angiogénesis, envejecimiento celular,
inflamación aguda y crónica, enfermedades autoinmunitaria, artritis,
procesos neurodegenerativos, respuesta alérgica, respuesta a
estrés, secreción, apoptosis, caquesia, trastornos neurológicos,
insuficiencia venosa periférica, aterosclerosis, cardiopatía, asma y
ateroma.
Mutante negativo dominante, como se usa aquí, se
refiere a una secuencia de una región que codifica un polipéptido o
un ácido nucleico que se ha cambiado con relación a al menos una
posición en la secuencia, con relación a la versión nativa de tipo
salvaje correspondiente, en una posición que cambia una posición de
un resto de aminoácido en un sitio activo requerido para la
actividad biológica y/o farmacológica del péptido nativo. Los
mutantes negativos dominantes de SEQ ID NO:3 contemplados aquí
incluyen, pero no se limitan a, especies polipeptídicas que
manifiestan cualquier cambio con relación a un cambio cualquiera en
el resto Lys(K)^{147}.
Biológicamente eficaz, como se usa aquí con
relación a moléculas de ácidos nucleicos antisentido, así como
también a regiones mutantes negativas codificantes de ácidos
nucleicos y a péptidos mutantes negativos dominantes, se refiere a
la capacidad de estas moléculas para modular la actividad biológica
y/o farmacológica de la tirosina quinasa de la presente invención,
incluyendo la modulación directa o indirecta de la activación
transcripcional de uno o más genes, y/o la transcripción/traducción
de regiones codificantes de ácidos nucleicos de la tirosina quinasa
de la presente invención. Las moléculas antisentido
biológicamente eficaces, así como también los ácidos
nucleicos que codifican versiones mutantes negativas dominantes
biológicamente eficaces de SEQ ID NO:3, son realizaciones
preferidas de la presente invención.
"Como se representa", como se usa aquí, se
refiere a la secuencia así como también a los derivados inherentes
como se describen anteriormente, por ejemplo un derivado funcional
que demuestra o realiza sustancialmente la misma actividad
biológica y/o farmacológica sustancialmente de la misma manera. Por
lo tanto, "como se representa" pretende englobar versiones
truncadas biológica y/o farmacológicamente activas claramente
derivadas de las secuencias descritas y caracterizadas aquí, (por
ejemplo, dominios evidenciados), así como secuencias quiméricas que
contienen una o más de ellas.
Variante, como se usa aquí, se refiere a
secuencias sustancialmente como se muestran, que tienen cambios,
por ejemplo, una secuencia polipeptídica que comprende una secuencia
que difiere de la secuencia referida en al menos una sustitución,
adición o supresión de un aminoácido, preferiblemente una
sustitución de un aminoácido conservativa, que demuestra o realiza
sustancialmente la misma actividad biológica y/o farmacológica
sustancialmente de la misma manera, así como versiones truncadas de
estas variantes. Sin embargo, como se usa aquí, "variante"
pretende englobar todos los mutantes negativos dominantes
biológicamente eficaces contemplados, varios de los cuales se
exponen aquí.
El término modulación se usa aquí para referirse
a la capacidad de potenciar o inhibir una función de una molécula
biológica, incluyendo, pero sin limitarse a, una actividad biológica
y/o farmacológica de una molécula de tirosina quinasa, o la
capacidad para potenciar o inhibir una propiedad funcional de una
región que codifica un ácido nucleico. "Modular la
fisiología", como se usa aquí, se refiere a la regulación
biofisiológica de células y/o del tejido, y al tratamiento de
trastornos patofisiológicos relacionados con ello.
"Administración directa", como se usa aquí,
se refiere a la administración directa de moléculas de ácidos
nucleicos, péptidos, o compuestos, así como también
derivados/variantes contemplados de la presente invención. La
administración directa incluye, pero no se limita a, técnicas de
terapia génica ex vivo así como in vivo.
"Purificada", como se usa aquí, se refiere
a moléculas, ya sean secuencias de ácidos nucleicos o de
aminoácidos, que se retiran de su entorno natural y se aíslan o se
separan de al menos algún otro componente con el cual están
asociadas de forma natural.
"Vector de expresión", como se usa aquí, se
refiere a construcciones vectoriales de ácidos nucleicos para
dirigir la transcripción de regiones de ácidos nucleicos en células
hospedantes. Los vectores de expresión incluyen, pero no se limitan
a, plásmidos, vectores retrovíricos, vectores víricos y
sintéticos.
"Células hospedantes transformadas", como
se usan aquí, se refiere a células que contienen uno o más ácidos
nucleicos de la presente invención.
Ahora se ha caracterizado una amplia variedad de
receptores polipeptídicos del factor de crecimiento que poseen
actividad intrínseca de tirosina quinasa. Los receptores tirosina
quinasas (RTK) activados sufren la dimerización e inician la
señalización a través de la fosforilación, específica de la
tirosina, de diversos intermedios, activando una cascada de rutas
intracelulares que regulan el metabolismo de fosfolípidos y
araquidonatos, la movilización del calcio, la fosforilación de
proteínas (que implica a otras proteína quinasas), y la regulación
de la transcripción. La actividad de tirosina quinasa, dependiente
del factor de crecimiento, del dominio citoplásmico de RTK es el
mecanismo principal para la generación de señales intracelulares que
inician múltiples respuestas celulares. Las respuestas celulares
mediadas por RTK incluyen alteraciones en la expresión génica,
proliferación celular, arquitectura citoesquelética, metabolismo
celular, diferenciación y supervivencia celular. Los receptores
tirosina quinasas constan de un dominio de unión a ligando
extracelular amino-terminal, un dominio
transmembránico, y un dominio de tirosina quinasa intracelular
carboxi-terminal. Herz, Jeffrey M., et al.,
Molecular Approaches to Receptors as Targets for Drugs
Discovery, J. of Receptor & Signal Transduction Research,
17(5):671 (1997).
Aunque existe una tremenda diversidad entre los
numerosos miembros de la familia de RTK, los mecanismos de
señalización usados por estos receptores comparten muchas
características comunes. Estudios genéticos bioquímicos y
moleculares han demostrados que la unión del ligando al dominio
extracelular de la RTK activa rápidamente la actividad catalítica
intrinseca de la tirosina quinasa del dominio intracelular. La
actividad enzimática del dominio de la RTK quinasa es esencial para
la transducción de señales. El aumento de actividad también conduce
a la fosforilación de un numero de sustratos intracelulares, y a la
activación de numerosas moléculas de señalización en dirección 3'.
Los ejemplos de proteínas que se activan frecuentemente incluyen:
fosfolipasa-C-\gamma
(PLC-\gamma), fosfatidilinositol
3-quinasa (PI-3quinasa), la proteína
activadora de GTPasa, pp60^{c-arc} proteína
tirosina quinasa, p21-ras y otras. Id.
El papel de los receptores tirosina quinasas
(RTK) en la formación de una nueva vasculatura sanguínea asociada
con la enfermedad humana ha proporcionado una fuerte base teórica
para identificar formas de inhibición de la función de estas
enzimas. La inmensa mayoría de los esfuerzos se ha centrado sobre la
inhibición de los receptores de FGF y VEGF. Se ha implicado a otras
RTK en la engiogénesis. Estas dianas serían susceptibles a muchos
de los enfoques que se han adoptado usando las dianas de receptores
de FGF y VEGF. Las modalidades terapéuticas que se han estudiado
para la anulación de la señalización dependiente de FGF y VEGF
incluyen el uso de nucleótidos (terapia génica y antisentido),
proteínas (anticuerpos, señuelos receptores y ligandos) compuestos
de bajo peso molecular, así como la expresión de formas negativas
dominantes. El uso de compuestos de bajo peso molecular para tratar
la angiogénesis representa un área de actividades de investigación
siempre en expansión. Shawer, L. K., et al., Receptor
Tyrosine Kinases as Targets for Inhibition of Angiogenesis, DDT
(Elsevier Science Ltd.), 2(2):50 (1997).
La artritis reumatoide, aunque caracterizada por
inflamación e inmunoproliferación, es otra enfermedad en la que la
angiogénesis se ha visto implicada en el proceso mórbido, debido a
que los RTK representan proteínas con función enzimática, se
prestan a una intervención farmacológica con compuestos de pequeñas
moléculas. Id.
Se expone aquí una secuencia de ADNc de 2607
pares de bases, SEQ ID NO:1, que pertenece a la SEQ ID NO:3 de
receptor tirosina quinasa humano. La región estructural de 1269
pares de bases, ATG a TGA, SEQ ID NO:2 que codifica SEQ ID NO:3
(422 aminoácidos), está contenida en SEQ ID NO:1.
La secuencia física (SEQ ID NO:3) contiene todas
las secuencias de signatura de tirosina quinasa, las secuencias de
yuxtamembrana, las secuencias transmembránicas y las secuencias
extracelulares que muestran similitud estructural con los
receptores tirosina quinasas conocidos, por ejemplo,
FGF-R, EGF-R,
PDGF-R, IGF-R,
VEGF-R, FLK, FLT, TIE, así como otros conocidos en
la técnica. Véase, por ejemplo, Dionne, C.A., et al., EMBO.,
9:2685 (1990); Berchuk, A., et al., Am. J. Obstet. Gynecol.,
161:1247 (1989); Kraus, M.H., et al., Ann. NY Acad. Sci.,
551:320 (1988); Bishop, J.M., et al., Science, 235:305
(1987). La SEQ ID NO:3 demuestra atributos del polipéptido que
incluye un dominio transmembránico de 24 restos que separa una
porción extracelular del dominio citoplásmico. El dominio
citoplásmico incluye una secuencia yuxtamembránica seguido
inmediatamente del dominio de tirosina quinasa, que contiene once
subdominios. Las secuencias de signatura mostradas en la nueva
molécula de transducción de señal de receptor de tirosina quinasa
humano (SEQ ID NO:3) son cada una de los Subdominios
I-XI.
El papel de los receptores tirosina quinasas en
la proliferación celular, entre otros, ha conducido a la
creencia de que los RTK tienen papeles importantes en la mediación
de la enfermedad, y en consecuencia tienen un potencial
significativo como agentes terapéuticos específicos. En
consecuencia, en la industria farmacéutica son muy deseados los
agentes moduladores de la actividad de quinasa y/o la actividad de
receptor de RTK específica, como compuestos candidatos ha
desarrollar. Las moléculas de receptor tirosina quinasa que son
particularmente características del tejido enfermo, por ejemplo
adenocarcinoma (por ejemplo, SEQ ID NO:3), sirven como
importantísimos candidatos para el diagnóstico de patologías, así
como dianas para la modulación de la fisiología tisular.
Se ha cartografiado la SEQ ID NO:1 al cromosoma
12p12.3 usando un panel híbrido de radiación Standford G3 por medio
de clones celulares obtenidos de Research Genetics, Huntsville, AL.
Stewart et al., Genome Res., 7, 422(1997). Se ha
demostrado que se producen anormalidades citogenéticas y pérdida de
heterozigosidad 12p12 en un gran número de tipos de tumores además
del de los adenocarcinomas, por ejemplo tumores de células
reproductoras, SCC oral, Ca ovárico, leucemia linfocítica aguda y
tumores de células reproductoras testiculares. Se ha mostrado que
la región del cromosoma 12p12-p13 se amplifica
(4-11 copias) en un gran número de tumores.
La SEQ ID NO:1 demuestra un total de 14
secuencias de repetición GT entre las posiciones 2125 y 2152. La
secuenciación del ADN a partir del ADN genómico correspondiente
procedente de 27 caucásicos no emparentados mostró 11, 12, 13, 14 y
15 copias de la repetición GT en el gen de tirosina quinasa
correspondiente a SEQ ID NO:1 de 27 caucásicos, con las siguientes
frecuencias respectivas: 6/54; 2/54; 17/54; 16/54; y 13/54. No se
observó ningún homocigoto para ningún alelo. Esta repetición CA/GT
de número variable se puede usar como un marcador genético para el
gen del receptor de tirosina quinasa y para el cromosoma 12p12.3
tanto para estudios de asociación de enfermedades como para
estudios de pérdida de heterozigosidad. Se pretende que cada uno de
estos alelo este dentro del alcance de las reivindicaciones aquí
anejas (por ejemplo, cebadores de PCR que se pueden construir
fácilmente a partir de ellos por una persona de pericia normal para
métodos de diagnóstico y/o composiciones). Véase, Ejemplo
II.
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Las transferencias Northern de Clontech (Palo
Alto, CA) mostraron que uno o más genes que pertenecen a la nueva
tirosina quinasa (SEQ ID NO:1) se transcribió selectivamente en
tejido de prosencéfalo humano. Se observaron en el putamen y en
lóbulo frontal niveles elevados de expresión de ARNm que pertenecen
al receptor tirosina quinasa, en contraste con los niveles bajos a
indetectables del transcrito en el cerebelo y en el tejido del bulbo
raquídeo.
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Se realizó un análisis inmunocitoquímico, en
colaboración con LifeSpan Biosciences (Seattle, WA), mediante el
empleo de muestras clínicas primarias y el anticuerpo descritos
aquí. En tejidos normales, el anticuerpo anti-SEQ
ID NO:3 muestra tinción positiva: en neuronas y neurogliocitos
ocasionales, y menos frecuentemente en sus procesos celulares, en
el epitelio de la mama, los entericitos y células de Schwann en el
colon, células APUD, hepatocitos y células de Kupffer, neumocitos
tipo 2 ocasionales, y en macrófagos, leucocitos polimorfonucleares,
y un subconjunto de linfocitos, células plasmáticas y células
endoteliales. La tinción es negativa en tipos celulares normales
incluyendo fibroblastos, adipositos, células caliciformes, el
músculo liso de la capa muscular de la mucosa y la musculares
propria (capa gruesa del tejido muscular), vías biliares, neumócitos
de tipo I, epitelio respiratorio que forra los bronquiolos, y el
epitelio glandular prostático.
| Tejido | Diagnóstico | Edad/Sexo |
| Cerebro | Normal | 56/V |
| Cerebro | Normal | 45/H |
| Mama | Normal | 37/H |
| Mama | Normal | 69/H |
| Colon | Normal | 87/V |
| Colorrectal | Normal | NA |
| Hígado | Normal | 46/V |
| Hígado | Normal | 75/V |
| Pulmón | Normal | ADULTO |
| Pulmón | Normal | ADULTO |
| Próstata | Normal | 75/V |
| Próstata | Normal | 46/V |
| Cerebro | Alzheimer | 90/H |
| Cerebro | Alzheimer | 81/V |
| Cerebro | Alzheimer | 76/H |
| Cerebro | Alzheimer | 80/H |
| Cerebro | Alzheimer | 60/H |
| Cerebro | Glioblastoma | 52/V |
| Cerebro | Glioblastoma | 44/V |
| Cerebro | Adenocarcinoma metastásico | 70/V |
| Cerebro | Adenocarcinoma metastásico | 49/V |
| Mama | Adenocarcinoma mucoso | |
| Mama | Carcinoma canalicular infiltrante | |
| Mama | Carcinoma canalicular infiltrante | |
| Mama | Carcinoma canalicular infiltrante | |
| Mama | Carcinoma canalicular infiltrante |
(Continuación)
| Tejido | Diagnóstico | Edad/Sexo |
| Colon | Adenocarcinoma bien diferenciado | 89/V |
| Colon | Adenocarcinoma bien diferenciado | 62/V |
| Colon | Adenocarcinoma bien diferenciado | 77/V |
| Colon | Adenocarcinoma bien diferenciado | 87/V |
| Recto | Adenocarcinoma bien diferenciado | ADULTO |
| Recto | Adenocarcinoma bien diferenciado | ADULTO |
| Recto | Adenocarcinoma bien diferenciado | ADULTO |
| Recto | Adenocarcinoma bien diferenciado | ADULTO |
| Recto | Adenocarcinoma bien diferenciado | ADULTO |
| Próstata | Adenocarcinoma | |
| Próstata | Adenocarcinoma poco diferenciado | |
| Próstata | Adenocarcinoma | |
| Próstata | Adenocarcinoma | |
| Próstata | Adenocarcinoma | |
| Pulmón | Adenocarcinoma de célula grande poco diferenciado | 53/H |
| Pulmón | Adenocarcinoma | 65/V |
| Hígado | Carcinoma hepatocelular | 66/V |
| Hígado | Carcinoma hepatocelular | 82/V |
- A.
- Tejidos cancerosos: dentro de los tejidos neoplásicos, se demuestra tinción positiva en dos adenocarcinomas metastáticos, tinción positiva en los cinco adenocarcinomas de mama, tinción positiva en los cinco adenocarcinomas de colon, tinción positiva en los cinco adenocarcinomas del rectosigmoide, y tinción positiva en cuatro de cinco adenocarcinomas prostáticos, y tres de cinco adenocarcinomas de pulmón.
- B.
- Tejidos de Alzheimer: la tinción más notable con el anticuerpo antirreceptor tirosina quinasa se observó en los casos de Alzheimer, tanto aquellos con signo de lesión isquémica adicional (es decir, signo de infarto reciente o antiguo debido a tromboembolia) como aquellos sin signo de lesión. El grado de tinción en las neuronas en el tejido cerebral y neurogliocitos de áreas relativamente normales fue débil, y similar a la tinción ocasional débil de células y procesos celulares observada en los cerebros normales. En contraste con la tinción débil en las regiones normales, hubo un nivel significativamente aumentado de señal en neuronas y sus procesos celulares asociados en áreas de lesión. Además, este incremento en la señal no fue notable en los procesos celulares del neurópilo (en lugar de en el citoplasma perinuclear de la neurona o astrocito), produciendo anillos similares a auréolas en una distribución perisomática alrededor de las neuronas, arborizando señales alrededor de astrocitos, y depósitos extensos, difuminados dentro de los axones y procesos celulares del neurópilo. El incremento en la señal se observó en cerebro sin infartos con enfermedades de Alzheimer importante (particularmente en regiones con una concentración elevada de placas neuríticas o en marañas neurofibrilares), y también en cerebros que contienen regiones de infarto además de los cambios clásicos de la enfermedad de Alzheimer.
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Basándose en hallazgos inmunohistoquímicos
(más arriba), se obtuvieron tejidos de tumor de próstata del
National Disease Research Interchange, Phila., PA. El análisis de
transferencia Western de los lisados titulares confirmó la
presencia de 2 proteínas (60 y 55 kDa) que reaccionaron con el
anticuerpo anti-SEQ ID NO:3. Para confirmar
adicionalmente si estas proteínas están fosforiladas en la tirosina,
la muestra de tumor de próstata se soldó con anticuerpo
anti-fosfotirosina. El anti-pY Ab se
unió a la proteína de 55 kDa (la más prominente de todas las
proteínas que reaccionan con pY) en los lisados de próstata, que se
encontró que era la SEQ ID NO:3 al extraer y volver a sondar la
transferencia con anticuerpo anti-SEQ ID NO:3.
En vista de la demostración de que el receptor
tirosina quinasa está sobreexpresado en estirpes celulares
tumorales así como en tejido tumorales clínicos primarios, se
examinó la actividad farmacológica de la tirosina quinasa para
inducir la proliferación celular. Particularmente, se decidió
investigar si moléculas antisentido, complementarias a regiones del
ARNm del receptor tirosina quinasa, tendrían un efecto sobre la
proliferación celular. Se sintetizaron dos oligonucleótidos
antisentido ejemplares, y sus correspondientes oligonucleótidos
sentido (como controles), que pertenecen a las posiciones
75-92 (oligo 1) y 1348-1365 (oligo
2) de SEQ ID NO:1 (más abajo se exponen realizaciones
adicionales preferidas de moléculas antisentido). Los resultados de
tres experimentos independientes mostraron una media de inhibición
del 50% de la proliferación de células A549 con la administración
de oligo 1 antisentido. La administración de oligo 2 antisentido
demostró un efecto inhibidor del 20%. Ca da uno de los
oligonucleótidos sentido (controles) correspondientes no demostraron
ningún efecto sobre la proliferación. Véase el Ejemplo III.
Para verificar una actividad biológica
particular del receptor tirosina quinasa, se generaron constructores
quiméricos que constan del dominio extracelular de CD8 (CD8 es una
proteína de superficie celular específica de CTL bien conocida) y
del dominio citoplásmico de SEQ ID NO:3 (posiciones
26-422). Estos constructos se expresaron con éxito
en células COS-7, en fibroblastos NIH/3T3 y en
estirpes celulares de HEK293, según se determina mediante
transferencia Western usando el anticuerpo anti-SEQ
ID NO:3. Se ha dado a conocer que los restos Cys extracelulares de
CD8 pueden formar enlaces de disulfuro intermoleculares; en
consecuencia, se teorizó que las moléculas quiméricas se
dimerizarían, después de la expresión, uniendo los dos dominios de
quinasa juntos, y estimulando la
trans-fosforilación. Se realizó un ensayo de quinasa
in vitro sobre el material inmunoprecipitado obtenido de
células HEK293 transfectadas. Los resultados mostraron que se
observaron niveles bajos de fosforilación de la tirosina en las
proteínas quimérica. Para comprender adicionalmente la función
celular del receptor tirosina quinasa, se realizó un experimento
preliminar en células U937 transfectadas con las quimeras, seguido
de la activación con Ab anti-CD8 durante 15 minutos
(las células U937 se escogieron puesto que son células no
adherentes, y por tanto requieren cantidades bajas de Ab
anti-CD8). Los resultados se analizaron mediante
análisis de transferencia Western usando Ab
anti-fosfotirosina (pY). Aunque hubo diferencias
sutiles en los patrones de pY entre las líneas activadas e
inactivadas de Ab se encontró que una proteína destacada de 34 kDa
fosforilada en la tirosina, mostró una movilidad retardada en la
muestra activada de Ab anti-CD8. Esta proteína de
34 kDa se identificó como Cdc2 al volver a sondar la transferencia
con Ab monoclonal anti-Cdc2. Estos datos sugieren
claramente que el nuevo receptor tirosina quinasa (SEQ ID NO:3) está
relacionado con la progresión del ciclo celular.
La actividad biológica, como se usa aquí con
referencia a la tirosina quinasa de la presente invención, se
refiere entre otras a la mediación de la activación de Cdc2 quinasa
que, a su vez, media la mitosis. Véase, por ejemplo, Nishio K.,
et al., Antitumor effects of butyrolactone I, a selective
cdc2 kinase inhibitor, on human lung cancer cell lines,
Anticancer Research, 16(6B): 3387(1996); Vicent I.,
et al., Aberrant expression of mitotic cdc2/cyclin BI
kinase in degenerating neurons of Alzheimer's disease brain,
Journal of Neuroscience, 17 (10):3588 (1997).
Se da ha conocer que la apóptosis neural, según
se manifiesta en la enfermedad de Alzheimer, es debida en parte a
un intento descoordinado de las células que no se dividen de
reentrar y avanzar a través del ciclo celular. Davis PK, et
al., Journal of Neurochemistry, 68:2338 (1997). Esto se cree que
es importante debido al hecho de que el receptor tirosina quinasa
descrito aquí se sobreexpresa en tejido que pertenece tanto a la
enfermedad de Alzheimer como en tumores primarios proliferativos;
así como la demostración de que la activación de SEQ ID NO:3 está
ligada a la progresión del ciclo celular. Como corolario, se decidió
determinar si la nueva tirosina quinasa se sobreexpresa en células
neuronales en células neuronales apoptóticas. Otros han demostrado
que el nivel de Cdc2 quinasa aumenta en cinco veces en células PC12
apoptóticas tras la supresión del NGF. Id. Las células PC12
se trataron con NGF durante 10 días. Las células se lavaron entonces
en medio, y se incubaron en ausencia de NGF durante una hora. Las
células se cosecharon, y los lisados se sometieron a electroforesis
de SDS-PAGE, seguido de la transferencia Western con
un anticuerpo anti-SEQ ID NO:3. Los resultados
demostraron que la proteína de SEQ ID NO:3 aumentó drásticamente una
hora después de la retirada del NGF. Estos datos sugieren que la
expresión de SEQ ID NO:3 puede estar implicada en apoptosis
neuronal.
Es muy probable que el receptor tirosina quinasa
descrito aquí (SEQ ID NO:3) sea un regulador importante del
crecimiento celular en tumores particulares. Similar a la familia
EGFR de RTK (EGF-R, FGF-R,
PDGF-R, Flk-1/KDR,
Flt-1, Tie-1 y
Tek/Tie-2), la nueva tirosina quinasa humana de
transducción de señales se sobreexpresa en una variedad de
carcinomas (por ejemplo, adenocarcinoma colorrectal y carcinoma de
pulmón), y parece que está íntimamente relacionada y puede
contribuir directamente al desarrollo de tumores cancerigenos. De
este modo, se contempla la identificación de agentes de modulación
para el tratamiento de una variedad de adenocarcinomas.
Se contempla modular la actividad farmacológica
y/o biológica del receptor tirosina quinasa, descrito aquí, en
relación con el tratamiento de una amplia variedad de patologías
incluyendo, pero sin limitarse a, enfermedad manifestada por
engiogénesis anormal, enfermedad vascular periférica, artritis,
enfermedades oculares tales como retinopatía diabética, retinopatía
o degeneración macular de la premadurez y relacionada con la edad,
cardiopatía isquémica y aterosclerosis, trastornos inflamatorios
crónicos tales como soriasis y artritis reumatoide, y crecimiento
de tumores sólidos y metástasis.
La SEQ ID NO:3 o las secuencias de ácidos
nucleicos que codifica, por ejemplo SEQ ID NO:1 y/o SEQ ID NO:2,
tiene un potencial significativo por la capacidad de atenuar
respuestas patofisiológicas. La capacidad para detectar
sistemáticamente antagonistas y/o agonistas que modulan la actividad
biológica y/o farmacológica de la molécula de tirosina quinasa
humana nativa, como se describe aquí es significativamente valiosa
para la identificación y desarrollo de agentes terapéuticos.
Además, las aplicaciones de diagnóstico son fácilmente manifiestas
para la detección de estados patofisiológicos manifestados por
niveles anormales de moléculas tales como SEQ ID NO:2 y/o SEQ ID
NO:3, por medio de la amplificación de secuencias mediante PCR y la
posterior detección y/o ensayos a base de anticuerpos, por ejemplo
ensayos a base de ELISA, que son bien conocidos por los expertos en
la técnica y que se realizan fácilmente dada la información descrita
aquí.
La presente invención se refiere a secuencias de
ácidos nucleicos y secuencias de aminoácidos de la tirosina quinasa,
y variantes como se describen anteriormente, y al uso de estas
secuencias para identificar compuestos que modulan la actividad
biológica y/o farmacéutica de una molécula de transducción de
señales.
Las secuencias polinucleotídicas que codifican
la tirosina quinasa como se representa en SEQ ID NO:3, y las
variantes como se describen anteriormente, contempladas aquí, son
una realización particularmente preferida de la presente invención.
Las moléculas y ácidos nucleicos antisentido, biológicamente
eficaces, que codifican versiones mutantes negativas dominantes
biológicamente efectivas de SEQ ID NO:3, o derivados como se
describen anteriormente, así como versiones mutantes negativas de
SEQ ID NO:3, y derivados como se describen aquí anteriormente,
ejemplos de cada uno de los cuales se describen más abajo,
son realizaciones preferidas de la presente invención, y están
destinada a caer dentro del alcance de las reivindicaciones aquí
anejas.
La presente invención también proporciona un
método de tratamiento de un paciente que necesita de tal
tratamiento, a saber de un paciente que sufre una patología
mediada por la tirosina quinasa de SEQ ID NO:3 o por otra molécula
de transducción de señales o por un activador transcripcional en
dirección 3', que comprende administrar una cantidad eficaz de una
molécula de ácido nucleico antisentido biológicamente eficaz
derivada de SEQ ID NO:1 o SEQ ID NO:2, o administrar una cantidad
eficaz de un ácido nucleico que codifica una versión mutante
negativa dominante biológicamente eficaz de la tirosina
quinasa.
La presente invención se refiere a secuencias de
ácidos nucleicos (por ejemplo, SEQ ID NO:1 y SEQ ID NO:2) y a
secuencias de aminoácidos (por ejemplo, SEQ ID NO:3; posiciones
1-122 de SEQ ID NO:3, posiciones
26-422 de SEQ ID NO:3 y posiciones
123-422 de SEQ ID NO:3) de la nueva quinasa humana
de transducción de señales, así como derivados inherentes como se
describen anteriormente, por ejemplo un derivado funcional que
demuestra o realiza sustancialmente la misma actividad biológica
y/o farmacológica sustancialmente de la misma forma. La invención
también pretende englobar versiones truncadas biológica y/o
farmacológicamente activas, derivadas claramente de las secuencias
descritas y caracterizadas aquí (por ejemplo, dominios evidenciados
descritos más arriba), así como secuencias quiméricas que
contienen una o más de ellas.
La presente invención se refiere a variantes de
secuencias de ácidos (por ejemplo, SEQ ID NO:1 y SEQ ID NO:2) y a
secuencias de aminoácidos (por ejemplo, SEQ ID NO:3) como se
describen anteriormente, que tienen cambios, por ejemplo una
secuencia polipeptídica que comprende una secuencia que difiere de
la secuencia citada en al menos una sustitución de aminoácido,
preferiblemente una sustitución conservativa de aminoácido, que
demuestra o realiza sustancialmente la misma actividad biológica
y/o farmacológica sustancialmente de la misma forma, así como a
moléculas que comprenden versiones truncadas de estas variantes. Sin
embargo, variante, como se usa aquí, está destinada, dentro de la
limitación de lo que se describió anteriormente, a englobar todos
los mutantes negativos dominantes biológicamente eficaces
contemplados, varias de cuyas especies se exponen aquí.
Una variante, como se representa en SEQ ID NO:3,
es aquella que tiene al menos un 80% de homología (identidad) de
secuencia de aminoácidos con SEQ ID NO:3; una variante preferida es
aquella que tiene una homología de secuencia de aminoácidos de al
menos 90%; y una variante más preferida es aquella que tiene una
homología de secuencia de aminoácidos de al menos 95%, con la
secuencia de aminoácidos de la molécula de quinasa según se
representa en SEQ ID NO:3. Las variantes como se describen
anteriormente y dentro del alcance de esta invención también
incluyen mutantes negativos dominantes biológicamente eficaces de
estas realizaciones contempladas.
Una variante, como se describe anteriormente, de
la molécula de quinasa humana SEQ ID NO:3 de la presente invención
puede tener una secuencia de aminoácidos que es diferente en una o
más sustituciones de aminoácidos. También se contemplan
realizaciones que comprenden supresiones y/o adiciones de
aminoácidos. Tal variante puede tener cambios conservativos
(similitud de aminoácidos), en los que un aminoácido sustituido
tiene propiedades estructurales o químicas similares, por ejemplo
la sustitución de leucina con isoleucina. Una variante como se
describe anteriormente puede tener cambios no conservativos, por
ejemplo la sustitución de una glicina con un triptófano. Las
realizaciones dentro del alcance pretendido de la invención también
incluyen SEQ ID NO:3 que tiene una o más supresiones o inserciones,
o ambas, de aminoácidos, en tanto que la variante sea como se
describe anteriormente. A la vista de esta descripción, se pueden
inferir razonablemente las directrices a la hora de determinar
cuáles y cómo muchos restos de aminoácidos se pueden sustituir,
insertar o suprimir sin anular la actividad biológica o
farmacológica propuesta, y se
pueden encontrar usando programas de ordenador bien conocidos en la técnica, por ejemplo el programa DNAStar.
pueden encontrar usando programas de ordenador bien conocidos en la técnica, por ejemplo el programa DNAStar.
Las sustituciones de aminoácidos de SEQ ID NO:3
se pueden realizar, por ejemplo, en base a la similitud de la
polaridad, de la carga, de la solubilidad, de la hidrofobia, de la
hidrofilia y/o de la naturaleza anfipática de los restos, en tanto
que se retenga la actividad biológica y/o farmacológica de la
molécula nativa. Sin embargo, las sustituciones de aminoácidos son
importantes para construir los mutantes negativos dominantes
biológicamente eficaces contemplados, varias de cuyas especies
se exponen aquí.
Los aminoácidos cargados negativamente, por
ejemplo, incluyen ácido aspártico y ácido glutámico; los aminoácidos
cargados positivamente incluyen lisina y arginina; y los
aminoácidos con grupos de cabeza polares no cargados, que tienen
valores de hidrofilia similares incluyen leucina, isoleucina,
valina, glicina, alanina, asparagina, glutamina, serina, treonina,
fenilalanina y tirosina. Sin embargo, en la construcción de mutantes
negativos dominantes biológicamente eficaces, al menos se cambia
una posición de un resto de aminoácido en un sitio activo requerido
para la actividad biológica y/o farmacológica en el péptido nativo,
para producir un agente o entidad que tiene una actividad reducida
o que está desprovisto de actividad de tipo salvaje negativa
detectable.
Las sustituciones adecuadas de aminoácidos
incluyen el uso de un resto químicamente derivatizado, en lugar de
un resto no derivatizado. Los isómeros D, así como otros derivados
conocidos, también se pueden sustituir por los aminoácidos de
origen natural. Véase, por ejemplo, la Patente U.S. nº 5.652.369,
Amino Acid Derivatives, presentada el 29 de julio de 1997. A
continuación, en la Tabla 1 se exponen ejemplos de
sustituciones:
| Resto original | Ejemplos de sustituciones comparativas |
| Ala (A) | Gly; Ser; Val; Leu; Ile; Pro |
| Arg (R) | Lys; His; Gln; Asn |
| Asn (N) | Gln; His; Lys; Arg |
| Asp (D) | Glu |
| Cys (C) | Ser |
| Gln (Q) | Asn |
| Glu (E) | Asp |
| Gly (G) | Ala; Pro |
| His (H) | Asn; Gln; Arg; Lys |
| Ile (I) | Leu; Val; Met; Ala; Phe |
| Leu (L) | Ile; Val; Met; Ala; Phe |
| Lys (K) | Arg; Gln; His; Asn |
| Met (M) | Leu; Tyr; Ile; Phe |
| Phe (F) | Met; Leu; Tyr; Val; Ile; Ala |
| Pro (P) | Ala; Gly |
| Ser (S) | Thr |
| Thr (T) | Ser |
| Trp (W) | Tyr; Phe |
| Tyr (Y) | Trp; Phe; Thr; Ser |
| Val (V) | Ile; Leu; Met; Phe; Ala |
"Homología" es una medida de la
identidad de las secuencias nucleotídicas o de las secuencias
de aminoácidos. A fin de caracterizar la homología, las secuencias
objeto se alinean de forma que se obtenga la homología
(emparejamiento) de mayor orden. "Identidad" per se
tiene un significado reconocido en la técnica y se puede calcular
usando técnicas publicadas. Los métodos de programas de ordenador
para determinar la identidad entre dos secuencias, por ejemplo,
incluyen el programa DNAStar. (DNAStar. Inc., Madison, WI); el
paquete de programa GCG (Devereux, J., et al., Nucleic Acids
Research (1984) 12(1):387); BLASTP, BLASTN. FAST A (Atschul,
S.F. et al., J. Molec. Biol. (1990) 215:403). La homología
(identidad), como se define aquí, se determina convencionalmente
usando el programa de ordenador bien conocido BESTFIT (Wisconsin
Sequence Analysis Package, version 8 para Unix, Genetics Computer
Group, University Research Park, 575 Science Drive, Madison, Wis.
53711). Cuando se usa BESTFIT o cualquier otro programa de
alineación de secuencias, para determinar si una secuencia
particular es, por ejemplo, 80% homóloga con una secuencia de
referencia, según la presente invención, los parámetros se ajustan
de forma que el porcentaje de identidad se calcule a lo largo de
toda la longitud de la secuencia nucleotídica o de la secuencia de
aminoácidos de referencia, y de forma que se permitan saltos en la
homología de hasta 20% del número total de nucleótidos en la
secuencia de referencia. Por lo tanto, el ochenta por ciento de
homología se determina, por ejemplo, usando el programa BESTFIT con
parámetros ajustados de manera que el porcentaje de identidad se
calcule a lo largo de toda la longitud de la secuencia de
referencia, por ejemplo, SEQ ID NO:3, y se permitan saltos de hasta
20% del número total de aminoácidos en la secuencia de referencia,
y en el que hasta el 20% de los restos de aminoácidos en la
secuencia de referencia pueden estar suprimidos o sustituidos con
otro aminoácido, o se puede insertar en la secuencia de referencia
un número de aminoácidos hasta el 20% de los restos de aminoácidos
totales en la secuencia de referencia. Igualmente se determinan los
porcentajes de homologías, por ejemplo, para identificar las
especies preferidas, dentro del alcance de las reivindicaciones
anejas aquí, que están en el intervalo de 80 por ciento hasta el 100
por cien de homología con la SEQ ID NO:3, así como derivados
funcionales biológica y/o farmacológicamente activos como se
describen anteriormente y mutantes negativos dominantes
biológicamente eficaces contemplados aquí.
El porcentaje de similitud (sustituciones
conservativas) entre dos polipéptidos también se puede evaluar
comparando las secuencias de aminoácidos de los dos polipéptidos
usando programas bien conocidos en la técnica, incluyendo el
programa BESTFIT, empleando ajustes por defecto para determinar la
similitud.
La presente invención se refiere, en parte, a la
inclusión del polinucleótido que codifica la molécula de tirosina
quinasa en un vector de expresión que se puede usar para transformar
células u organismos hospedantes. Tales hospedantes transgénicos
son útiles para la producción de la proteína quinasa así como sus
variaciones valiosas contempladas aquí.
La secuencia de ácidos nucleicos también
proporciona el diseño de moléculas antisentido, cuyas realizaciones
ejemplares se proporcionan aquí, que son útiles para regular a la
baja, disminuir o eliminar la expresión, por ejemplo, transcripción
y/o traducción de SEQ ID NO:2 en células.
La molécula del receptor tirosina quinasa de la
presente invención se usa en ensayos de cribado para identificar
antagonistas o inhibidores que se unen a la quinasa, emulan su
sustrato, o inactivan de otro modo la biomolécula o compiten
biológicamente, por ejemplo, interacción competitiva o inhibición de
unión competitiva, con la biomolécula de SEQ ID NO:3 nativa. La
tirosina quinasa también se puede usar en ensayos de cribado para
identificar agonistas que agonizan o imitan la actividad biológica
y/o farmacológica, inducen la producción de o prolongan la semivida
biológica de la molécula in vivo o in vitro.
La invención también se refiere a composiciones
farmacéuticas que comprenden moléculas como se representan en SEQ
ID NO:2 o SEQ ID NO:3 o variantes como se describen anteriormente,
de estas moléculas como se definen aquí para el tratamiento de
trastornos patológicos relacionados o mediados con la tirosina
quinasa de la presente
invención.
invención.
Se prefiere un polinucleótido purificado que
comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido que comprende la secuencia como se representa en SEQ ID
NO:3 o una variante SEQ ID NO:3, incluyendo, pero sin limitarse a,
SEQ ID NO:3 en la que la posición 147 (lisina) de SEQ ID NO:3 está
sustituida o eliminada, posiciones 1-25 de SEQ ID
NO:3 (dominio extracelular para la interacción con otras moléculas,
incluyendo ligandos o agonistas/antagonistas), posiciones
1-122 de SEQ ID NO:3 (dominio no quinasa que se
puede usar como una forma negativa dominante), posiciones
26-422 de SEQ ID NO:3 (dominio funcional
intracelular que también se puede usar para obtener quimeras con
otras proteínas extracelulares conocidas), y posiciones
123-422 de SEQ ID NO:3 (dominio de tirosina quinasa
que se puede usar para identificar sistemáticamente compuestos (así
como en protocolos de ensayos)).
La región codificante, SEQ ID NO:2, de la
tirosina quinasa (SEQ ID NO:3), se puede obtener a partir de ADNc
existente, por ejemplo, mediante amplificación con PCR usando
cebadores derivados de SEQ ID NO:1. Véase, por ejemplo, el Ejemplo
I. Por ejemplo, la SEQ ID NO:2 (así como sus variaciones) se puede
insertar en vectores de expresión, con o sin "marcas" de
proteínas de fusión, para la expresión de una proteína, por ejemplo
SEQ ID NO:3, que se puede purificar y cribar en busca de la
actividad biológica y/o farmacológica, incluyendo la actividad de
transducción de señales, y la activación del sustrato. Se puede usar
vectores de expresión procariotas, incluyendo similares, por
ejemplo a pGEX (fusión de GST), pET (marca +/- His_{6} o T7), así
como vectores de expresión eucariotas, incluyendo los similares a,
por ejemplo pcDNA3.1His, pIRES-E:GFP, pcDNA3, y
pEBVHis. Se proporcionan proteínas recombinantes, derivadas de SEQ
ID NO:3, para uso en ensayos de identificación sistemática para la
identificación de compuestos que puede modular la actividad
biológica y/o farmacéutica de tirosina quinasas.
En una realización se expone un ejemplo de
mutante negativo dominante de SEQ ID NO:3 (lisina en la posición 147
cambiada con arginina), que se predice que es catalíticamente
inactivo.
En otra realización de la invención, se pueden
usar diversas secuencias de ácido nucleicos complementarias a SEQ
ID NO:1 y/o SEQ ID NO:2 proporcionadas aquí, para modular la
expresión de una tirosina quinasa o la función biológica de una
molécula de transducción de señales en dirección 3' o de un
activador transcripcional, incluyendo, pero sin limitarse a, Cdc2
quinasa afectando a la transcripción y/o traducción de secuencias
correspondientes a la nueva tirosina quinasa (SEQ ID NO:1 y/o SEQ
ID NO:2) en células. La actividad farmacológica del gen endógeno se
puede modular afectando a la transcripción y/o traducción, por
ejemplo, del gen endógeno mediante uso o administración de
constructor antisentido para producir transcritos antisentido, o
mediante el suministro directo de oligómeros antisentido. Los
constructos y oligómeros antisentido se pueden usar cada uno como
realizaciones de la presente invención, y cada uno está relacionado
con realizaciones del método terapéutico puesto en práctica vía la
administración directa como se define aquí. La traducción se inhibe
de forma más eficaz bloqueando el ARNm en un sitio en o próximo al
codón de iniciación o de terminación. De este modo, se prefieren
oligonucleótidos complementarios a la región 5' o 3' Terminal del
transcrito de ARNm del receptor tirosina quinasa. Se proporcionan
ejemplos de especies.
Realizaciones preferidas de la invención son
moléculas antisentido que comprenden oligómeros en el intervalo de
12 a 25 nucleótidos, que son complementarios a las regiones de SEQ
ID NO:1 y/o a la región 5' de pSEQ ID NO:2 que están próximas a, o
incluyen, el codón de partida o de terminación de traducción, o una
porción del mismo. Realizaciones particularmente preferidas son
moléculas antisentido que comprenden oligómeros de 12 a 25
nucleótidos de longitud, que son complementarios a una región dentro
de las posiciones 67-148 ó 1333-1414
de SEQ ID NO:1. Son realizaciones ejemplares de la invención los
oligonucleótidos que comprenden secuencias complementarias a las
siguientes posiciones de SEQ ID NO:1:
- Posiciones 67-79; 70-82; 73-85.75-92; 76-88; 79-91; 80-92; 81-93; 82-94; 83-95; 84-96; 85-97; 86-98; 87-99; 88-100; 89-101; 90-102; 91-103; 92-104; 93-105; 94-106; 95-107; 96-108; 97-109; 98-110; 99-111; 100-112; 101-113; 102-114; 103-115; 104-116; 105-117; 106-118; 107-119; 108-120; 109-121; 110-122; 111-123; 112-124; 113-125; 114-126; 115-127, 116-128; 117-129; 118-130; 119-131; 120-132: 103-115; 104-116; 105-117; 106-118; 107-119; 108-120; 109-121; 110-122; 111-123; 112-124; 113-125; 114-126; 115-127; 116-128; 117-129; 118-130; 119-131; 120-132; 121-133; 122-134; 123-135; 124-136; 125-137; 126-138; 127-139; 128-140; y 136-148 de SEQ ID NO:1.
- Posiciones 1333-1345; 1336-1348; 1339-1351; 1342-1354; 1345-1357; 1346-1358; 1347-1359; 1348-1360; 1348-1365; 1349-1361; 1350-1362; 1351-1363; 1352-1364; 1353-1365; 1354-1366; 1355-1367; 1356-1368; 1357-1369; 1358-1370; 1359-1371; 1360-1372; 1361-1373; 1362-1374; 1363-1375; 1364-1376; 1365-1377; 1366-1378; 1367-1379; 1368-1380; 1369-1381; 1370-1382; 1371-1383; 1372-1384; 1373-1385; 1374-1386; 1375-1387; 1376-1388; 1377-1389; 1378-1390; 1379-1391; 1380-1392; 1381-1393; 1382-1394; 1383-1395; 1384-1396; 1385-1397; 1386-1398; 1387-1399; 1388-1400; 1389-1401; 1390-1402; 1391-1403; 1392-1404; 1393-1405; y 1394-1406 de SEQ ID NO:1.
Se contemplan para uso terapéutico los
oligonucleótidos que comprenden secuencias complementarias y que se
hibridan a cada una de las áreas recitadas del ARNm del receptor
tirosina quinasa humano. Además, se incorpora aquí como referencia
la Patente U.S. nº 5.639.595, Identification of Novel Drugs and
Reagents, presentada el 17 de junio de 1997, en la que se
describen a conciencia métodos para identificar secuencias
oligonucleotídicas que muestran actividad in vivo.
Las secuencias nucleotídicas que son
complementarias a la secuencia de ácidos nucleicos que codifica
tirosina quinasa se pueden sintetizar para terapia antisentido.
Esta moléculas antisentido pueden ser ADN, derivados estables de
ADN tales como fosforotioatos o metilfosfonatos, ARN, derivados
estables de ARN tales como
2'-O-alquilARN, u otros miméticos
oligonucleotídicos. Se incorporan como referencia la Patente U.S. nº
5.652.355, Hybrid Oligonucleotide Phosphorothioates,
presentada el 29 de julio de 1997, y la Patente U.S. nº 5.652.356,
Inverted Chimeric and Hybrid Oligonucleotides, presentada el
29 de julio de 1997, que describen la síntesis y el efecto de
moléculas antisentido fisiológicamente estables. Las moléculas
antisentido de tirosina quinasa se pueden introducir en las células
mediante microinyección, encapsulamiento liposómico, o mediante
expresión a partir de vectores que contienen la secuencia
antisentido. La terapia antisentido puede ser particularmente útil
para el tratamiento de enfermedades en las que es beneficioso
modular la actividad biológica y/o farmacológica eficaz de la
tirosina quinasa presentada aquí.
Las realizaciones de ácidos nucleicos de
tirosina quinasa o sus versiones mutantes negativas dominantes, así
como también las realizaciones antisentido descritas aquí, se puede
administrar a un sujeto, vía terapia génica, par modular, es decir
impulsar o atenuar, la actividad biológica y/o farmacológica
correspondiente o la expresión génica de una tirosina quinasa
endógena. Las secuencias de ácidos nucleicos de la presente
invención se pueden suministrar ex vivo o in vivo a
las células de órganos diana, de manera específica para tejidos. La
región codificante del polipéptido de tirosina quinasa humano se
puede ligar a varios vectores víricos que median la transferencia
del ADN del polipéptido quinasa mediante infección de células
hospedantes receptoras. Los vectores víricos adecuados incluyen
retrovirus, adenovirus, virus adenoasociados, virus del herpes,
virus de la vacuna, virus de la poliomielitis, y similares. Véase,
por ejemplo, la Patente U.S. nº 5.624.820, Episomal Expression
Vector for Human Gene Therapy, presentada el 29 de abril de
1997. Por ejemplo, GENOVO Corporation, Sharon Hill, PA, en la fecha
de esta solicitud, tiene una cartera de vectores de expresión
comercial y fácilmente disponibles que comprende una variedad de
vectores que se completa con métodos bien establecidos que
demuestran consistentemente la expresión específica de tejidos. La
GENOVO Corporation es un ejemplo de fuente de vectores y métodos
para la práctica de métodos de terapia génica de la presente
invención. Las regiones codificantes de ácidos nucleicos de la
presente invención se incorporan en vectores de expresión eficaces,
los cuales se administran o introducen directamente en células
somáticas para la terapia génica (también se puede administrar
directamente o introducir en células somáticas un fragmento de ADN
que comprende una región codificante, preferiblemente transcritos
de ARNm). Véase, por ejemplo, la Patente nº 5.589.466, presentada el
31 de diciembre de 1996. Tales ácidos nucleicos y vectores pueden
seguir siendo episómicos, o se pueden incorporar en el ADN
cromosómico del hospedante como un provirus o porción del mismo que
incluye la fusión génica y señales apropiadas de transcripción y
traducción eucariotas, es decir, un promotor de ARN polimerasa
situado eficazmente en 5' con respecto al sitio de partida
transcripcional, y un codón ATG de iniciación de la traducción de la
fusión génica, así como un codón o codones de terminación y señales
de poliadenilación del transcrito situados en 3' con respecto a la
región codificante. Como alternativa, el ADN del polipéptido de
tirosina quinasa humano se puede transferir a células, para terapia
génica, mediante técnicas no víricas que incluyen transferencia,
mediada por el receptor, de ADN seleccionado como diana, usando
conjugados de ligando y ADN o conjugados de adenovirus con ligando
y ADN, fusión de la membrana mediante lipofección, o microinyección
directa. Estos procedimientos y sus variaciones son adecuados para
la terapia génica ex vivo así como in vivo con el
polipéptido de tirosina quinasa humano, según métodos ya
consolidados en esta técnica.
Según la presente invención, las secuencias
polinucleotídicas que codifican la tirosina quinasa, fragmentos del
polipéptido, proteínas de fusión o equivalentes funcionales de los
mismos, se pueden usar en moléculas de ADN recombinante que dirigen
la expresión de la molécula respectiva en células hospedantes
apropiadas. Debido a la degeneración inherente del código genético,
se pueden usar otras secuencias de ADN, que codifican
sustancialmente la misma secuencia o una secuencia de aminoácidos
funcionalmente equivalente, para clonar y expresar la tirosina
quinasa, así como sus variaciones y sus mutantes negativos
dominantes. Como entenderán los expertos en la técnica, puede ser
ventajoso producir secuencias nucleotídicas que posean codones de
origen no natural.
El ADNc de tirosina quinasa clonado, obtenido a
través de los métodos descritos aquí, se puede expresar
recombinantemente mediante clonación molecular en un vector de
expresión que contiene un promotor adecuado y otros elementos
reguladores de la transcripción apropiados, y se puede transferir a
células hospedantes procariotas o eucariotas para producir el
receptor quinasa. En Sambrook, J., et al., Molecular Cloning
Second Edition, Cold Spring Harbor Press (1990), se describen
completamente técnicas para tales manipulaciones y son bien
conocidas en la técnica.
Los vectores de expresión se describen aquí como
secuencias de ácidos nucleicos para transcripción de realizaciones
de la presente invención. Tales vectores se pueden usar para
expresar secuencias de ácidos nucleicos en una variedad de
hospedante tales como bacterias, algas verdes azuladas, células
vegetales, células de insectos, células fúngicas, células humanas y
células animales. Los vectores diseñados específicamente permiten el
traslado de ADN entre hospedantes, tales como bacterias y
levaduras, o células de bacterias y animales, o células de bacterias
y fúngicas, o células de bacterias y de invertebrados.
Se puede usar una variedad de vectores de
expresión mamíferos para expresar la molécula de tirosina quinasa
humana recombinante, así como variantes contempladas aquí. Los
vectores de expresión de mamíferos comercialmente disponibles, que
son adecuados para la expresión recombinante, incluyen pero no se
limitan a pcDNA3 (Invitrogen), pMC1 neo (Stratagene), pXT1
(Stratagene), pSG5 (Stratagene),
EBO-pSV2-neo (ATCC 37593),
pBPV-1(8-2) (ATCC 37110),
pdBPV-MMTneo(342-12) (ATCC
37224), pRSVgpt (ATCC 37199), pRSVneo (ATCC 37198),
pSV2-dhfr (ATCC 37146), pUCTag (ATCC 37460), y
IZD35 (ATCC 37565), pLXIN y pSIR (CLONTECH),
pIRES-EGFP (CLONTECH). INVITROGEN Corporation
proporciona una amplia variedad de vectores/sistemas de expresión de
mamíferos comercialmente disponibles, que se pueden usar
eficazmente con la presente invención, INVITROGEN, Carlsbad, CA.
Véanse, también, los productos, vectores y sistemas de PHARMINGEN,
San Diego, CA.
También se pueden usar con la presente invención
sistemas de expresión baculovíricos, para producir grandes
cantidades de quinasa biológicamente activa. Se prefieren vectores y
protocolos tales como el sistema de expresión baculovírico
BacPak^{TM} de CLONTECH, los cuales están comercialmente
disponibles. CLONTECH, Palo Alto, CA. Miller, L.K., et al.,
Curr. Op. Genet. Dev. 3:97 (1993); O'Reilly, D.R., et al.,
Baculovirus Expression Vectors: A Laboratory Manual, 127.
También se prefieren vectores tales como el sistema de expresión
baculovírico MaxBac^{TM}, células de insectos y protocolos de
INVITROGEN, que están comercialmente disponibles. INVITROGEN,
Carlsbad, CA.
Las células hospedantes, transformadas con una
secuencia nucleotídica que codifica la molécula de transducción de
señales de la presente invención, se pueden cultivar en condiciones
adecuadas para la expresión y recuperación de la proteína
recodificada, a partir del cultivo celular. Son realizaciones
particularmente preferidas de la presente invención las células
hospedantes transformadas con un polinucleótido purificado que
comprende una secuencia de ácido nucleico para codificar el
polipéptido que tiene la secuencia como se representa en SEQ ID
NO:3 o una variante contemplada de la misma. Se pueden usar células
de este tipo, o preparaciones obtenidas de ellas, para identificar
sistemáticamente moduladores de la actividad biológica y/o
farmacológica de las moléculas nativas de transducción de señales
de tirosina quinasa SEQ ID NO:1, SEQ ID NO:2, y SEQ ID NO:3.
Se prefieren especialmente las células
hospedantes recombinantes eucariotas. Los ejemplos incluyen, pero no
se limitan a, levadura, células de mamíferos que incluyen pero no
se limitan a estirpes celulares de origen humano, bovino, porcino,
de mono y de roedor, y células de insecto que incluyen pero no se
limitan a estirpes celulares derivadas del gusano de la seda y
Drosophila. Las estirpes celulares derivadas de especies mamíferas,
que pueden ser adecuadas y que están comercialmente disponibles,
incluyen pero no se limitan a células L
L-M(TK-) (ATCC CCL 1.3), células L
L-M (ATCC CCL 1.2), 293 (ATCC CRL 1573), Raji (ATCC
CCL 86), CV-1 (ATCC CCL 70), COS-1
(ATCC CRL 1650), COS-7 (ATCC CRL 1651),
CHO-K1 (ATCC CCL 61), 3T3 (ATCC CCL 92), NIH/3T3
(ATCC CRL 1658), HeLa (ATCC CCL 2), C127I (ATCC CRL 1616),
BS-C-1 (ATCC CCL 26) y
MRC-5 (ATCC CCL 171).
Los vectores de expresión se pueden introducir
en células hospedantes que expresan la nueva tirosina quinasa vía
cualquier número de técnicas, incluyendo pero sin limitarse a la
transformación, la transfección, la lipofección, la fusión de
protoplasto, y la electroporación. Los kits comercialmente
disponibles aplicables para uso con la presente invención para la
expresión heteróloga, que incluyen vectores bien caracterizados,
reactivos de transfección y condiciones, y los materiales de
cultivo celular están bien consolidados y son fácilmente
disponibles. CLONTECH, Palo Alto, CA; INVITROGEN, Carlsbad, CA;
PHARMINGEN, San Diego, CA; STRATAGEN E, LaJolla, CA. Las células
que contiene el vector de expresión se propagan mediante clonación y
se analizan individualmente para determinar el nivel de producción
de polipéptido de tirosina quinasa. La identificación de los clones
de la célula hospedante que expresan la nueva quinasa se puede
realizar a través de varios medios, incluyendo, pero sin limitarse
a, la reactividad inmunológica con anticuerpos descrita aquí, y/o la
presencia de actividad biológica específica asociada a la célula
hospedante, y/o la capacidad de reticular covalentemente el sustrato
específico al receptor tirosina quinasa con el reactivo de
reticulación bifuncional suberato de disuccinimidilo o reactivos de
reticulación similares.
La molécula de transducción de señales de la
presente invención también se puede expresar como una proteína
recombinante con uno o más dominios polipeptídicos adicionales
añadidos para facilitar la purificación de la proteína. Tales
dominios que facilitan la purificación incluyen, pero no se limitan
a, péptidos quelantes de metales, tales como módulos de
histidina-triptófano que permiten la purificación
sobre metales inmovilizados (Porath, J., Protein Exp. Purif. 3:263
(1992)), dominios de proteína A que permiten la purificación sobre
inmunoglobulina inmovilizada, y el dominio utilizado en el sistema
de purificación de extensión/afinidad FLAGS (Immunex Corp., Seattle
WA). Para facilitar la purificación, es útil incluir secuencias
ligadoras escindibles, tales como el Factor XA o enteroquinasa
(Invitrogen, San Diego, CA) entre el dominio de purificación y la
región codificante.
Se prefieren sistemas y protocolos, tales como
el kit de purificación de proteínas no desnaturalizante TALON^{TM}
de CLONTECH para purificar proteínas marcadas con 6xHis en
condiciones nativas, que están comercialmente disponibles. CLONTECH,
Palo Alto, CA.
Además, se puede escoger una cepa de célula
hospedante por su capacidad para modular la expresión de las
secuencias insertadas, o para procesar de manera deseada la
proteína expresada. Tales modificaciones del polipéptido incluyen,
pero no se limitan a, acetilación, carboxilación, glicosilación,
fosforilación, lapidación y acilación. El procesamiento después de
la traducción, que rompe una forma naciente de la proteína, también
puede ser importante para la correcta inserción, plegamiento y/o
función. Diferentes células hospedantes tales como CHO, HeLa, MDCK,
293, WI38, NIH-3T3, HEK293, etc., tienen una
maquinaria celular específica y mecanismos característicos para
tales actividades postraduccionales, y se pueden escoger para
asegurar la correcta modificación y procesamiento de la proteína
extraña introducida.
Para la producción a largo plazo, con alto
rendimiento, de proteínas recombinantes, se prefiere la expresión
estable. Por ejemplo, las estirpes celulares que expresan
establemente SEQ ID NO:2/SEQ ID NO:3, por ejemplo, se pueden
transformar usando vectores de expresión que contiene orígenes
víricos de replicación o elementos de expresión endógenos y un gen
marcador seleccionable. Tras la introducción del vector, se puede
dejar que las células crezcan durante 1-2 días en
un medio enriquecido antes de cambiarlas a un medio selectivo. El
fin del marcador seleccionable es conferir resistencia a la
selección, y su presencia permite hacer crecer y recuperar células
que expresan con éxito las secuencias introducidas. Mediante el uso
de técnicas de cultivo de tejidos apropiadas para el tipo celular,
se pueden hacer que proliferen racimos resistentes de células
establemente transformadas.
La molécula de transducción de señales, por
ejemplo SEQ ID NO:3, se puede producir en la levadura S.
cerevisiae tras la inserción del cistrón de ADNc óptimo en
vectores de expresión diseñados para dirigir la expresión
intracelular o extracelular de la proteína heteróloga. En el caso de
la expresión intracelular, los vectores tales como EmBLyex4 o
similar se ligan al cistrón de la subunidad beta. Véase, por
ejemplo, Rinas, U., et al., Biotechnology, 8:543 (1990);
Horowitz, B., et al., J. Biol. Chem., 265:4189 (1989). Para
la expresión extracelular, el cistrón de quinasa se liga en vectores
de expresión de levadura que emplean cualquiera de una serie de
señales de secreción bien caracterizadas. Los niveles de la nueva
quinasa expresada se determinan mediante los ensayos descritos
aquí.
En la técnica se conoce una variedad de
protocolos para detectar y medir la expresión de la nueva molécula,
así como derivados funcionales como se describen anteriormente,
usando anticuerpos policlonales o monoclonales específicos para la
proteína. Los ejemplos incluyen el ensayo inmunoabsorbente ligado a
enzima (ELISA), el radioinmunoensayo (RIA) y la clasificación
celular activada por fluorescencia (FACS). Se puede emplear un
inmunoensayo a base de anticuerpo monoclonal, de dos sitios, que
utiliza anticuerpos monoclonales que reaccionan con dos epítopos
que no interfieren. También se pueden emplear técnicas de unión
competitiva bien conocidas. Véase, por ejemplo, Hampton, R., et
al., (1990), Serological Methods - a Laboratory Manual,
APS Press, St Paul Minn.; Maddox, D.E., et al., J. Exp. Med.,
158:1211.
Se proporcionan métodos para identificar
compuestos individualmente o mediante el empleo de librerías de
compuestos para la identificación de compuestos que tienen la
capacidad de modular una actividad biológica y/o farmacéutica de un
receptor tirosina quinasa, por ejemplo, SEQ ID NO:3 descrita aquí.
La presente invención también se refiere a métodos para identificar
sistemáticamente compuestos que modulan la expresión (transcripción
y/o traducción) de ADN o ARN, que codifican el polipéptido de
tirosina quinasa SEQ ID NO:3. Los compuestos que modulan estas
actividades pueden ser ADN, ARN, péptidos, proteínas, o moléculas
orgánicas no proteinosas (por ejemplo, compuestos farmacéuticos de
pequeña molécula).
Los compuestos pueden modular una actividad
biológica y/o farmacológica última incrementando o atenuando la
expresión de ADN o ARN que codifica la biomolécula humana de
transducción de señales, o una función de la SEQ ID NO:3 nativa.
Los compuestos que modulan la expresión de ADN o ARN que codifican
el polipéptido de tirosina quinasa, o la función del polipéptido,
se pueden detectar mediante una variedad de ensayos. El ensayo puede
ser un ensayo de "sí/no" simple, para determinar si hay cambio
en la expresión o en la función. El ensayo se puede hacer
cuantitativo comparando la expresión o función de una muestra de
ensayo con los niveles de expresión o función en una muestra
estándar.
El receptor tirosina quinasa humano descrito
aquí, SEQ ID NO:3, sus fragmentos funcionales y oligopéptidos que
incluyen las posiciones 1-25 de SEQ ID NO:3, las
posiciones 1-122 de SEQ ID NO:3, las posiciones
26-422 de SEQ ID NO:3, y las posiciones
123-422 de SEQ ID NO:3, así como variantes
contempladas aquí, se pueden usar para identificar sistemáticamente
eventuales compuestos terapéuticos en cualquier variedad de técnicas
de identificación de fármacos. El fragmento o entidad que se emplea
en tal ensayo puede estar libre en disolución, fijo a un soporte,
transportado sobre una superficie celular, o localizado
intracelularmente. La supresión o modulación de la actividad, o la
formación de complejos de unión, entre la quinasa humana de
transducción de señales y el agente ensayado, se puede medir, por
ejemplo, a través de los medios proporcionados.
Es de esperar que el nuevo receptor tirosina
quinasa humano de transducción de señales tenga una elevada
actividad catalítica que permitirá la adaptación fácil a ensayos de
identificación automatizados de alta producción, incluyendo ensayos
de proximidad de centelleo, que son bien conocidos en la técnica.
Véase, por ejemplo, la Patente U.S. nº 5.763.198, Screening
Assays for Compounds, presentada el 9 de junio de 1998 (un
ejemplo de sistemas de ensayos rápidos, cuantitativos, específicos,
de alta producción, para identificar sistemáticamente compuestos de
ensayo tales como fármacos, ligandos (naturales o sintéticos),
antagonistas de ligando, péptidos, o pequeñas moléculas orgánicas
para determinar su capacidad para modular la actividad de
tirosina quinasa en la célula o en un sistema libre de células);
Patente U.S. nº 5.763.584, Receptor Activation with Hepatocyte
Growth Factor Agonists, presentada el 9 de junio de 1998 (un
ejemplo de método para activar receptores seleccionados de
receptores tirosina quinasas, y para obtener variantes de
ligandos que actúan como agonistas competitivos de los ligandos
nativos respectivos); y Patente U.S. nº 5.763.441, Coumpounds for
the Treatment of Disorders Related to Vasculogenesis and/or
Angiogenesis, presentada el 9 de junio de 1998, que se
incorporan aquí como referencias como ejemplos. Además, la
tecnología del ensayo de proximidad de centelleo (SPA) se expone
como una realización que permite el ensayo rápido y sensible de una
amplia variedad de interacciones moleculares en un sistema homogéneo
(AMERSHAM, Bucks, UK).
En consecuencia, la presente invención
proporciona un método para identificar sistemáticamente una
pluralidad de compuestos en busca de la actividad de unión
específica con el polipéptido SEQ ID NO:3 nativo o una variante
contemplados aquí, que comprende proporcionar una pluralidad de
compuestos; combinar una realización de la tirosina quinasa de la
presente invención con cada uno de una pluralidad de compuestos
durante un tiempo suficiente para permitir la unión en condiciones
adecuadas; y detectar la unión del polipéptido de quinasa, o su
fragmento, a cada una de la pluralidad de compuestos, identificando
de este modo los compuestos que se unen específicamente al
polipéptido de quinasa de transducción de señales.
Generalmente se prefieren métodos para
identificar compuestos que modulan una actividad biológica y/o
farmacológica de una molécula de transducción de señales, que
comprenden combinar un compuesto candidato, modulador de la
actividad de transducción de señales (biológica y/o farmacológica),
con un polipéptido que tiene la secuencia según se representa en
SEQ ID NO:3 o una variante de la misma contemplada aquí, y medir el
efecto del compuesto candidato modulador sobre la actividad
biológica y/o farmacológica del polipéptido. La actividad de quinasa
de la biomolécula se puede evaluar y/o se puede medir el
comportamiento de una cualquiera o más de las funciones, incluyendo
pero sin limitarse a la capacidad para autofosforilarse, para
fosforilar un sustrato, para unirse a ATP, y para mediar la
activación de Cdc2 quinasa. La actividad farmacológica de la
biomolécula se puede evaluar comparando, con células de control, por
ejemplo, la manifestación y la velocidad de mitosis, la
diferenciación celular, la proliferación, la transformación
oncogénica, la neoplasia, la agregación celular y la
citocinesis.
Los ensayos para determinar la actividad de
quinasa del nuevo receptor tirosina quinasa se realizan vía ensayos
de ser/thr quinasa bien conocidos, excepto que MBP se sustituye con
enolasa. Cooper, et al., J. Biol. Chem., 259:7835 (1984).
Los sitios de fosforilación en enolasa son utilizados por tirosina
proteína quinasas in vivo e in vitro. Véanse los
Ejemplos V y VI.
La capacidad del receptor tirosina quinasa para
fosforilar un sustrato y/o unirse a un ligando cognato se puede
medir por métodos bien conocidos por los expertos en la técnica.
Véase, por ejemplo, la Patente U.S. nº 5.763.584, Receptor
Activation with Hepatocyte Growth Factor Agonists, presentada el
9 de junio de 1998 (un ejemplo de método para activar receptores
seleccionados de receptores tirosina quinasas, y para obtener
variantes de ligandos que actúan como agonistas competitivos de los
ligandos nativos respectivos); la Patente U.S. nº 5.763.198,
Screening Assays for Compounds, presentada el 9 de junio de
1998 (un ejemplo de sistemas de ensayos rápidos, cuantitativos,
específicos, de alta producción, para identificar sistemáticamente
compuestos de ensayo tales como fármacos, ligandos (naturales o
sintéticos), antagonistas de ligando, péptidos, o pequeñas
moléculas orgánicas para determinar su capacidad para modular la
actividad de tirosina quinasa en la célula o en un sistema libre de
células); y la Patente U.S. nº 5.763.441, Compounds for the
Treatment of Disorders Related to Vasculogenesis and/or
Angiogenesis, presentada el 9 de junio de 1998, que se
incorporan aquí como referencias como ejemplos.
La actividad biológica, como se usa aquí como
referencia a la tirosina quinasa de la presente invención, se
refiere entre otras a la mediación de la activación de Cdc2
quinasa que media la mitosis. Véase, por ejemplo, Nishio K., et
al., Antitumor effects of butyrolactone I, a selective cdc2
kinase inhibitor, on human lung cancer cell lines, Anticancer
Research, 16(6B):3387 (1996); Vicent I., et al.,
Aberrant expression of mitotic cdc2/cyclin BI kinase in
degenerating neurons of Alzheimer's disease brain, Journal of
Neuroscience, 17 (10):3588 (1997).
En consecuencia, se prefieren particularmente
métodos para identificar compuestos que modulan una actividad
biológica y/o farmacológica de una tirosina quinasa, que comprenden
combinar un compuesto candidato modulador con una células
hospedante que expresa un polipéptido que tiene la secuencia como se
representa en SEQ ID NO:3 o una variante de la misma contemplada
aquí, y medir el efecto del compuesto candidato modulador sobre la
actividad biológica y/o farmacológica del polipéptido. Los ensayos
celulares preferidos para moduladores de la molécula de tirosina
quinasa presente, de transducción de señales, caen en dos categorías
generales: 1) medida directa de una actividad biológica, y 2)
medida de sucesos en dirección 3' en la cascada de señalización, que
incluyen manifestaciones fisiológicas de las células/del tejido/del
organismo.
A fin de medir la actividad de la tirosina
quinasa, la fuente de la molécula a ensayar puede ser un lisado
celular completo, preparado mediante 1 a 3 ciclos de
congelación-descongelación en presencia de
inhibidores de proteasas estándares. Como alternativa, la quinasa
se puede purificar parcial o completamente mediante métodos de
purificación de proteínas estándares. La quinasa se puede purificar
mediante cromatografía de afinidad usando anticuerpos descritos
aquí, o mediante ligandos específicos para el marcador del epítopo,
modificado mediante ingeniería, en la quinasa recombinante descrita
además aquí. La preparación se puede evaluar entonces en busca de
la actividad. Por ejemplo, más abajo se exponen ejemplos de ensayos
usados para identificar sistemáticamente compuestos que modulan la
actividad de quinasa. Véase, por ejemplo, los Ejemplo V y VI.
En otra realización de método de la invención
para identificar agentes que modulan una actividad biológica de la
nueva biomolécula expuesta aquí, se puede ligar una secuencia de
ácidos nucleicos que codifica una molécula de transducción de
señales, por ejemplo como se representa en SEQ ID NO:3 a una
secuencia heteróloga para codificar una proteína de fusión para uso
en un sistema de dos híbridos de levadura. Para identificar
sistemáticamente compuestos para la modulación de la actividad
biológica de SEQ ID NO:3, es necesario codificar un péptido
quimérico para la expresión en células hospedantes heterólogas.
También se usan constructos quiméricos para expresar un "asa",
según métodos bien conocidos que usan un sistema de levadura de dos
híbridos, usando péptidos nativos accesorios que se espera que se
asocien con la molécula de tirosina quinasa descrita aquí. El
sistema de dos híbridos usa la capacidad de un par de proteínas que
interaccionan para aproximar estrechamente un dominio de activación
de la transcripción a un sitio de unión de ADN que regula la
expresión de un gen informador adyacente. Los compuestos que son
capaces de modular la actividad biológica de la nueva biomolécula
como se define aquí se identifican por su capacidad para efectuar
interacciones proteína:proteína (reconstitución de los activadores
transcripcionales quiméricos), y por tanto por los ensayos de
lectura de levadura de dos híbridos bien conocidos por los expertos
normales en esta área de la biología molecular. Fields, S., et
al., Trends Genet., 10:286 (1994); Allen, J.B., et al.,
TIBS, 20:511 (1995). Fields, S., Song, O., Nature, 340:245 (1989).
Se pueden usar con la presente invención sistemas comercialmente
disponibles tales como los sistemas y protocolos Matchmaker^{TM}
de CLONTECH. CLONTECH, Palo Alto, CA. Véase también Mendelsohn,
A.R., Brent, R., Curr. Op. Biotech., 5:482 (1994); Phizicky, E.M.,
Fields, S., Microbiological Rev., 59(1):94 (1995); Yang, M.,
et al., Nucleic Acids Res., 23(7):1152 (1995); Fields,
S., Sternglanz, R., TIG, 10(8):286 (1994); y las Patentes
U.S. 5.283.173, System to Detect Protein-Protein
Interactions, y 5.468.614, que se incorporan aquí como
referencia.
Para evaluar adicionalmente la capacidad de un
compuesto para modular la actividad farmacológica, por ejemplo de
SEQ ID NO:3, se inyectan células tumorales humanas en ratones con
SCID (importante inmunodeficiencia combinada) para formar masas
tumorales palpables. Véase el Ejemplo VII.
Se prefiere un método para modular una actividad
biológica y/o farmacológica de una quinasa de transducción de
señales en una célula, tejido u organismo, que comprende administrar
una cantidad eficaz de un polinucleótido contemplado aquí.
"Polinucleótido" incluye un polinucleótido que comprende una
secuencia de ácidos nucleicos que codifica un polipéptido que tiene
una homología de al menos 80% con SEQ ID NO:3, con las posiciones
1-122 de SEQ ID NO:3, con las posiciones
26-422 de SEQ ID NO:3, y con las posiciones
123-422 de SEQ ID NO:3; así como un polinucleótido
que comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido que comprende la secuencia como se representa en SEQ ID
NO:3, en la que la posición 147 (lisina) de SEQ ID NO:3 está
sustituida o suprimida; así como también moléculas antisentido que
son complementarias a una región dentro de las posiciones
67-148 o 1333-1414 de SEQ ID NO:1,
cuyos ejemplos de realizaciones terapéuticas se exponen más
arriba.
El receptor tirosina quinasa se puede usar para
generar anticuerpos de diagnósticos para detectar niveles anormales
de la biomolécula in vivo. Por lo tanto, según aún un aspecto
adicional de la presente invención, se proporcionan anticuerpos
frente al polipéptido del receptor tirosina quinasa que se pueden
usar como parte de diversos ensayos de diagnóstico para detectar
trastornos fisiológicos, incluyendo tejido canceroso. Un ejemplo
para la producción de anticuerpos policlonales eficaces frente a
péptidos derivados de SEQ ID NO:3, para el empleo en métodos
descritos aquí, es EADRPSPRELRLRLE (SEQ ID NO:4) que se identificó
en la región C-terminal de la nueva tirosina
quinasa humana (SEQ ID NO:3) utilizando un método algorítmico bien
consolidado desarrollado por Jameson y Wolf, The antigenic
Index: A Novel Algorithm for Predicting Antigenic Determinants,
CABIOS, 4:181 (1988). Este péptido se conjugo con hemocianina de
lapa californiana, y se uso para la generación de anticuerpos
mediante GENOSYS BIOTECHNOLOGIES, 1442 Lake Front Circle, Suite 185,
The Woodlands, Texas 77380. Los anticuerpos específicos se pueden
generar mediante animales vacunados, prefiriéndose los conejos, con
una concentración apropiada de tirosina quinasa humana con o sin un
adyuvante inmunitario.
Los anticuerpos monoespecíficos para el
polipéptido de la presente invención se purifican a partir de
antisueros de mamíferos que contienen anticuerpos que reaccionan
frente al polipéptido, o se preparan como anticuerpos monoclonales
que reaccionan con el polipéptido de transducción de señales usando
la técnica de Kohler y Milstein, Nature, 256:495 (1975). El
anticuerpo monoespecífico, como se usa aquí, se define como una
única especie de anticuerpo o como múltiples especies de
anticuerpos con características de unión homogénea para la nueva
molécula de transducción de señales. "Unión homogénea", como
se usa aquí, se refiere a la capacidad de la especie de anticuerpo
para unirse a un antígeno o epítopo específico, tal como los
asociados con SEQ ID NO:3. Los anticuerpos monoclonales se producen
in vivo mediante inyección de ratones Balb/c sensibilizados
con pristano, aproximadamente 0,5 ml por ratón, con alrededor de 2
x 10^{6} hasta alrededor de 6 x 10^{6} células de hibridoma
alrededor de cuatro días después de la sensibilización. Se recogió
el fluido ascítico a aproximadamente 8-12 días
después de las transferencias de las células, y los anticuerpos
monoclonales se purificaron mediante técnicas conocidas en la
técnica. La producción in vitro del mAb
anti-polipeptídico se llevó a cabo haciendo crecer
el hibridoma en DMEM que contiene alrededor de 2% de suero fetal de
ternera, para obtener cantidades suficientes del mAb específico. El
mAb se purificó mediante técnicas conocidas en la técnica.
Es fácilmente manifiesto para los expertos en la
técnica que los métodos para producir anticuerpos se pueden
utilizar para producir anticuerpos específicos para los fragmentos
del polipéptido de tirosina quinasa, o para el polipéptido naciente
de longitud completa, por ejemplo SEQ ID NO:3. Específicamente, es
fácilmente manifiesto para los expertos en la técnica que se pueden
generar anticuerpos que son específicos para la proteína
completamente funcional y fragmentos y variantes de la misma, como
se describen aquí.
Las columnas de afinidad con el anticuerpo del
polipéptido de tirosina quinasa se obtienen añadiendo los
anticuerpos a Affigel-10 (Biorad), un soporte en
gel que se activa con ésteres de
N-hidroxisuccinimida, de manera que los anticuerpos
forman enlaces covalentes con el soporte de perlas de azarosa. Los
anticuerpos se acoplan entonces al gel vía enlaces de amida con el
brazo espaciador. Los ésteres activados que quedan se desactivan
entonces con etanolamina-HCl 1M (pH 8). La columna
se lava con agua, seguido de hidrocloruro de glicina 0,23M (pH 2,6)
para eliminar cualquier anticuerpo no conjugado o proteína extraña.
La columna se equilibra entonces en disolución salina tamponada con
fosfato (pH 7,3) con detergente apropiado, y los sobrenadantes del
cultivo celular o los extractos celulares que contiene el
polipéptido de tirosina quinasa humana, obtenidos usando
detergentes solubilizantes de membranas apropiados, se hacen pasar
lentamente a través de la columna. La columna se lava entonces con
detergente y disolución tamponada con fosfato, hasta que la densidad
óptica cae hasta el valor de fondo, y después la proteína se eluye
con hidrocloruro de glicina 0,23M (pH 2,6)/detergente. El
polipéptido purificado se dializa entonces frente a disolución
salina tamponada con fosfato/detergente.
Las moléculas de tirosina quinasas recombinantes
se pueden separar de otras proteínas celulares mediante el uso de
una columna de inmunoafinidad obtenida con anticuerpos monoclonales
o policlonales específicos para el polipéptido naciente de
transducción de señales, de longitud completa, o fragmentos
polipeptídicos.
Los polipéptidos descritos aquí se pueden usar
para purificar mediante afinidad efectores biológicos a partir de
materiales biológicos nativos, por ejemplo tejido enfermo. Las
técnicas de cromatografía de afinidad son bien conocidas por los
expertos en la técnica. Un péptido de tirosina quinasa descrito
aquí, o un fragmento eficaz del mismo, se fija a una matriz sólida,
por ejemplo Sepharose activada con CNBr, según el protocolo del
proveedor (Pharmacia, Piscataway, NJ), y se hace pasar a través de
la columna una disolución celular homogeneizada/tamponada que
contiene una molécula potencial de interés. Después del lavado, la
columna retiene sólo el efector biológico, el cual se eluye
subsiguientemente, por ejemplo, usando ácido acético 0,5M o un
gradiente de NaCl.
Los títulos de anticuerpos de fluidos ascíticos
o de cultivo de hibridoma se determinan mediante diversos ensayos
serológicos o inmunológicos que incluyen, pero que no se limitan a,
precipitación, aglutinación pasiva, técnica de inmunoensayo
absorbente ligado a enzima (ELISA) y técnicas de radioinmunoensayos
(RIA). Se usan ensayos de diagnóstico similares para detectar la
presencia de un nuevo polipéptido de quinasa de transducción de
señales, en fluidos corporales o en extractos celular y de
tejidos.
Los ensayos de diagnóstico que usan los
anticuerpos específicos del polipéptido humano de transducción de
señales son útiles para el diagnóstico de patologías, trastornos o
enfermedades caracterizados por la expresión anormal del receptor
tirosina quinasa o la expresión de genes asociados con el
crecimiento celular anormal. Los ensayos de diagnóstico para la
quinasa de esta invención, de transducción de señales, incluyen
métodos que utilizan el anticuerpo y un marcador para detectar el
polipéptido de quinasa humano en fluidos corporales humanos,
células, tejidos o secciones o extractos de tales tejidos. Los
polipéptidos y los anticuerpos de la presente invención se pueden
usar con o sin modificación. Frecuentemente, los polipéptidos y los
anticuerpos se marcaran uniéndolos, ya sea covalentemente o no
covalentemente, con una molécula informadora, una miríada de las
cuales son bien conocidas por los expertos en la técnica.
En la técnica se conoce una variedad de
protocolos para medir el polipéptido de quinasa, usando anticuerpos
policlonales o monoclonales específicos de la proteína respectiva.
Los ejemplos incluyen el inmunoensayo absorbente ligado enzima
(ELISA), radioinmunoensayo (RIA) y la clasificación celular activada
por fluorescencia (FACS). Se prefiere un inmunoensayo a base de
anticuerpos monoclonales, de dos sitios, que utiliza anticuerpos
monoclonales que reaccionan con dos epítopos que no interfieren en
el polipéptido de quinasa humano de transducción de señales, pero
también se puede emplear un ensayo de unión competitiva. Estos
ensayos se describen, entre otros sitios, en Maddox, D.E. et
al., J. Exp. Med. 158:1211 (1983); Sites, D.P., et al.,
Basic and Clinical Immunology, Cap. 22, 4ª Ed., Lange
Medical Publications, Los Altos, CA (1982); las Patentes U.S. nº
3.654.090, nº 3.850.752; y nº 4.016.043.
A fin de proporcionar una base para el
diagnóstico de la enfermedad, se deben establecer valores normales
o estándares para los niveles normales de expresión de la tirosina
quinasa. Esto se logra combinando fluidos corporales o extractos
celulares extraídos de sujetos normales, ya sean un animal o un ser
humano, con anticuerpo para el polipéptido de quinasa humana, en
condiciones adecuadas para la formación de complejos las cuales son
bien conocidas en la técnica. La cantidad de formación de complejos
estándar se puede cuantificar comparándola con una serie de
diluciones de controles positivos, en los que una cantidad conocida
de anticuerpo se combina con concentraciones conocidas de
polipéptido de tirosina quinasa purificado. Después, los valores
estándares obtenidos de muestras normales se pueden comparar con
valores obtenidos de muestras procedentes de sujetos afectados
potencialmente por un trastorno o enfermedad relacionada con la
expresión de tirosina quinasa humana. La desviación entre los
valores estándar y del sujeto establece la presencia del estado
mórbido.
Se pueden preparar kits que contienen un ácido
nucleico de tirosina quinasa correspondiente, o anticuerpos para un
polipéptido correspondiente, o proteína, por ejemplo SEQ ID NO:3.
Tales kits se usan para detectar un ácido nucleico heterólogo que
se hibrida al ácido nucleico o que se puede amplificar vía PCR, o
para detectar la presencia de fragmentos proteínicos o peptídicos
en una muestra. Tal caracterización es útil para una variedad de
fines, incluyendo, pero sin limitarse a, el diagnóstico de estados
patofisiológicos, análisis forenses, y estudios epidemiológicos.
Las moléculas de ADN, las moléculas de ARN, la
proteína recombinante y los anticuerpos de la presente invención,
se pueden usar para identificar y medir niveles del nuevo ADN, ARN o
proteína de la quinasa. Las proteínas recombinantes, las moléculas
de ADN, las moléculas de ARN y los anticuerpos permiten ellos mismos
la formulación de kits adecuados para la detección y el tipado de
la tirosina quinasa de transducción de señales. Tal kit comprende
un soporte con compartimientos, adecuado para contener, encerrado,
al menos un recipiente. El soporte comprendería además reactivos,
tales como la quinasa recombinante o anticuerpos
anti-quinasa, adecuados para detectar la nueva
molécula como se representa en SEQ ID NO:3. El soporte también puede
contener un medio para la detección, tal como un antígeno marcado o
sustratos enzimáticos o similares.
Las secuencias polinucleotídicas que codifican
la molécula de transducción se pueden usar para el diagnóstico de
patologías o enfermedades con las cuales está asociada la expresión
de la nueva quinasa humana activada por estrés. Por ejemplo, las
secuencias polinucleotídicas que codifican la molécula de
transducción de señales se pueden usar en ensayos de hibridación o
de PCR de fluidos o tejidos procedentes de biopsias, para detectar
la expresión de la quinasa. La forma de tales métodos cualitativos o
cuantitativos puede incluir el análisis Southern o Northern, la
transferencia de punto u otras tecnologías a base de membranas;
tecnologías de PCR, tecnologías de bastoncillo de inmersión, de
alfiler, de chip y ELISA. Todas estas técnicas son bien
conocidas en la técnica, y son la base de muchos kits de
diagnóstico comercialmente disponible. Tales ensayos también se
pueden usar para evaluar la eficacia de un régimen de tratamiento
terapéutico particular en estudios con animales, en ensayos
clínicos, o en la monitorización del tratamiento de un paciente
individual. Una vez se confirma la enfermedad, se administra un
agente terapéutico, y se genera un perfil de tratamiento. Tales
ensayos se pueden repetir con regularidad para evaluar si los
valores en el perfil progresan o vuelven al patrón normal o
estándar. Se pueden usar perfiles sucesivos de tratamiento para
mostrar la eficacia del tratamiento durante un periodo de varios
días o de varios meses.
Las secuencias polinucleotídicas que codifican
la nueva quinasa también se pueden emplear en análisis para
cartografiar localizaciones cromosómicas, por ejemplo para
identificar la asociación funcional con marcadores de la
enfermedad. Además, se contempla el uso de las secuencias descritas
aquí para identificar polimorfismos de secuencias humanos y la
asociación posible con la enfermedad, así como análisis para
seleccionar la secuencia óptima de entre las secuencias
polimórficas posibles para el diseño de compuestos para modular la
actividad biológica y/o farmacológica. Además, las secuencias se
contemplan como herramientas de identificación sistemáticas para
uso en la identificación de sujetos y pacientes humanos apropiados
para ensayos clínicos terapéuticos.
La secuencia de ácidos nucleicos, los
oligonucleótidos, los fragmentos, las porciones o moléculas
antisentido de los mismos, se pueden usar en ensayos de
diagnósticos de fluidos corporales o de tejidos procedentes de
biopsias, para detectar el nivel de expresión de la nueva molécula
de quinasa humana de transducción de señales. Por ejemplo, las
secuencias diseñadas a partir de la secuencia de ADNc SEQ ID NO:1, o
secuencias comprendidas en SEQ ID NO:2, se pueden usar para
detectar la presencia de los transcritos de ARNm en un paciente, o
para monitorizar la modulación de los transcritos durante el
tratamiento. Se dan aquí varios ejemplos de cebadores de PCR
derivados de SEQ ID NO:1.
Se prefieren composiciones para diagnóstico o
composiciones para análisis farmacogenómico, para la identificación
de una secuencia polipeptídica que comprende cebadores de PCR
derivados de SEQ ID NO:1 o secuencias alélicas descritas aquí
representativas de 11, 12, 13 o 15 repeticiones GT entre las
posiciones 2125 y 2152 de SEQ ID NO:1.
Un método para la amplificación de ácidos
nucleicos diana, o para el análisis posterior mediante ensayos de
hibridación, es conocido como la técnica de reacción en cadena de
polimerasa ("PCR") o PCR. La técnica de PCR se puede aplicar
para detectar secuencias de la invención en muestras sospechosas
usando cebadores oligonucleotídicos separados entre si y basados en
la secuencia genética, por ejemplo SEQ ID NO:1, expuesta aquí. Los
cebadores son complementarios a hebras opuestas de una molécula de
ADN bicatenario, y están típicamente separados alrededor de 50
hasta 450 nucleótidos o más (habitualmente no más de 2000
nucleótidos). Este método supone preparar los cebadores
oligonucleotídicos específicos, seguido de ciclos repetidos de
desnaturalización del ADN diana, de la unión al cebador, y de la
extensión con un ADN polimerasa para obtener fragmentos de ADN de la
longitud esperada, basándose en el espaciamiento del cebador. Un
ejemplo de realización de la presente invención es una composición
de diagnóstico para la identificación de una secuencia
polnucleotídica que comprende la secuencia como se representa en
SEQ ID NO:2, que comprende cebadores de PCR derivados de SEQ ID
NO:1. El grado de amplificación de una secuencia diana está
controlado por el número de ciclos que se realizan, y se calcula
teóricamente mediante la sencilla fórmula 2n, en la que n es el
número de ciclos. Véase, por ejemplo, Perkin Elmer, PCR
Bibliography, Roche Molecular Systems, Branchburg, New Jersey;
CLONTECH products, Palo Alto, CA; U.S. Patente nº 5.629.158,
Solid Phase Diagnosis of Medical Conditions, presentada el 13
de mayo de 1997.
Las composiciones terapéuticas farmacéuticamente
útiles, que comprenden una región codificante de ácidos nucleicos,
una región codificante de un mutante negativo dominante, una
molécula antisentido descrita aquí, un polipéptido como se
representa en SEQ ID NO:3, o una variación del mismo contemplada
aquí, se pueden formular según métodos bien conocidos, tales como
mediante la mezcla de un vehículo farmacéuticamente aceptable, en
Remington's Pharmaceutical Sciences (Maack Publishing Co,
Easton, PA). Se pueden encontrar ejemplos de tales vehículos y
métodos de formulación. Para formar una composición
farmacéuticamente aceptable adecuada para la administración eficaz,
tales composiciones contendrán una cantidad eficaz de la proteína,
ADN o ARN.
Las composiciones terapéuticas o de diagnóstico
de la invención se administran a un individuo o se usan en
cantidades suficientes para tratar o diagnosticar trastornos
relacionados con o mediados por el receptor tirosina quinasa
descrito aquí. La cantidad eficaz puede variar según una variedad de
factores tales como el estado del individuo, el peso, el sexo y la
edad. Otros factores incluyen el modo de administración.
La expresión "derivado funcional" incluye
una molécula que contiene restos químicos adicionales que
normalmente no son una parte de la molécula base. Tales restos
pueden mejorar la solubilidad, la semivida, la absorción, etc., de
la molécula base. Como alternativa, los restos pueden atenuar
efectos secundarios indeseables de la molécula base, o pueden
disminuir la toxicidad de la molécula base. Los ejemplos de tales
restos se describen en una variedad de textos, tales como
Remington's Pharmaceutical Sciences.
Las composiciones farmacéuticas adecuadas para
uso en la presente invención incluyen composiciones en las que los
ingredientes activos están contenidos en una cantidad eficaz para
lograr el fin que se pretende. La determinación de una dosis eficaz
está perfectamente dentro de la capacidad de aquellos expertos en la
técnica. La dosis terapéuticamente eficaz se puede estimar
inicialmente en ensayos de cultivo celular, por ejemplo de células
neoplásicas, o en modelos de animales, habitualmente ratones,
conejos, perros o cerdos. El modelo de animal también se usa para
lograr un intervalo de concentración deseable y una vía de
administración. Tal información se puede usar entonces para
determinar las dosis útiles y las vías de administración en seres
humanos. Una dosis terapéuticamente eficaz se refiere a aquella
cantidad de compuesto, proteína, péptido, ácido nucleico,
anticuerpos, antagonistas o inhibidores, que mejora los síntomas o
el estado. La dosis exacta se escoge por el médico individual a la
vista del paciente a tratar.
Las composiciones farmacéuticas se pueden
proporcionar al individuo mediante una variedad de vías tales como
la subcutánea, tópica, oral e intramuscular. La administración de
composiciones farmacéuticas se logra oral o parenteralmente. Los
métodos para el suministro parenteral incluyen la administración
tópica, intraarterial (directamente al tejido), intramuscular,
subcutánea, intramedular, intratecal, intraventricular, intravenosa,
intraperitoneal o intranasal. La presente invención también tiene
como objeto proporcionar formulaciones farmacéuticas tópicas,
orales, sistémicas y parenterales adecuadas, para uso en los nuevos
tratamientos médicos de la presente invención. Las composiciones
que contienen los compuestos identificados según esta invención como
el ingrediente activo para uso en la modulación de una molécula de
transducción de señales se pueden administrar en una amplia
variedad de formas de dosificación terapéuticas en vehículos
convencionales para administración. Por ejemplo, los compuestos se
pueden administrar en formas de dosificación oral tales como
comprimidos, cápsulas (incluyendo cada una formulaciones de
liberación en el tiempo y de liberación sostenida), pastillas,
polvos, gránulos, elixires, tinturas, disoluciones, suspensiones,
jarabes y emulsiones, o mediante inyección. Del mismo modo, también
se pueden administrar en forma intravenosa (tanto en bolo como en
infusión), intraperitoneal, subcutánea, tópica con o sin oclusión,
o intramuscular, usando todas ellas formas bien conocidas para los
expertos normales en las técnicas farmacéuticas. Como agente
modulador de tirosina quinasa de transducción de señales, se puede
emplear una cantidad eficaz pero no tóxica del compuesto
deseado.
La dosis diaria de los productos puede variar en
un amplio intervalo desde 0,01 hasta 1.000 mg por humano adulto/por
día. Para la administración oral, las composiciones se proporcionan
preferiblemente en forma de comprimidos rasurados o no rasurados,
que contienen 0,01, 0,05, 0,1, 0,5, 1,0, 2,5, 5,0, 10,0, 15,0, 25,0
y 50,0 miligramos del ingrediente activo para el ajuste sintomático
de la dosis para el paciente a tratar. Normalmente se suministra
una cantidad eficaz del fármaco a una dosis desde alrededor de
0,0001 mg/kg hasta alrededor de 100 mg/kg de peso corporal por día.
El intervalo es más particularmente desde alrededor de 0,001 mg/kg
hasta 10 mg/kg de peso corporal por día. Incluso más
particularmente, el intervalo varía desde alrededor de 0,05 hasta
alrededor de 1 mg/kg. Por supuesto, el nivel de dosificación variará
dependiendo de la potencia del compuesto particular. Ciertos
compuestos serán más potentes que otros. Además, la cantidad de
dosis variará dependiendo de la biodisponibilidad del compuesto.
Cuanto más biodisponile y potente sea el compuesto, menos cantidad
de compuesto será necesaria administrar a través de cualquier vía de
suministro, incluyendo pero sin limitarse al suministro oral. Las
dosis de los moduladores de quinasa humana de transducción de
señales se ajustan cuando se combinan para lograr los efectos
deseados. Por otro lado, las dosis de estos diversos agentes se
pueden optimizar independientemente y se pueden combinar para lograr
un resultado sinérgico en el que se reduzca la patología de una
manera mayor que si se usase cualquiera de los agentes solo. Los
expertos en la técnica emplearán formulaciones para nucleótidos
diferentes de aquellas para proteínas o sus inhibidores. De forma
similar, el suministro de polinucleótidos o polipéptidos será
específico para células y condiciones particulares.
Ejemplo
El ADNc (SEQ ID NO:1) que codifica la nueva
tirosina quinasa humana de transducción de señales (SEQ ID NO:3) se
puede producir usando los cebadores:
El producto de PCR se clona en los sitios de las
enzimas de restricción SalI y NotI, en el vector
pGEX-5X-3 (PHARMACIA BIOTECH,
Piscataway, NJ).
Se inocula una única colonia de DH5alfa (LIFE
TECHNOLOGIES, Gaithersburg, MD), que expresa GST fusionada a la
nueva tirosina quinasa con y sin la región transmembránica, en 10 ml
de LB/amp (100 \mug/ml) para el cultivo durante toda una noche
con una rotación de 275 rpm a 37ºC. Al siguiente día, el cultivo de
toda la noche (O/N) se diluye hasta 100 ml en LB/amp y se hace
crecer durante una hora. Se añade IPTG hasta 0,5 mM, y se hace
crecer durante 3 horas adicionales. El resto de las etapa se
realizaron a 4ºC. Las bacterias se cosechan haciendo girar a 5000
RPM durante 5 minutos, y se resuspendieron en 15 ml de tampón de
lisis que contiene 50 mM de Tris (pH 8,0, 150 mM de NaCl, 0,5% de
Tritón X-100, 1 mM de PMSF y cóctel inhibidor de
proteasa completo. Las células se lisaron al someterlas a
ultrasonido en hielo. Las células lisadas se centrifugaron, y se
recogió el sobrenadante que contiene proteínas de fusión. La
proteína de fusión a GST se purificó usando 150 \mul de perlas
empaquetadas de perlas Glutationa-Sefarosa 4B. Las
perlas se incubaron con lisado celular durante una hora, y se
lavaron 5x con 50 mM de Tris (pH 8,0, 150 mM de NaCl, 0,1% de Tritón
X-100, 1 mM de PMSF y cóctel inhibidor de proteasa
completo. Las perlas lavadas se mantuvieron a 4ºC como una
suspensión al 2% en el mismo tampón, con 0,02% de azida.
Para determinar la frecuencia alélica de la
tirosina quinasa en humanos, se usaron las posiciones
2062-2083 de la SEQ ID NO:1 (cebador directo) y las
posiciones 2239-2250 de SEQ ID NO:1 (cebador
inverso) en una amplificación mediante PCR de este fragmento de ADN
genómico a partir de 27 caucásicos no emparentados. El oligo inverso
se modificó para incluir la secuencia de M13F (Vieira, J. y
Messing, J., Methods in Enzymol., 153:3 (1987)) en su extremo 5'.
Los productos de la PCR se secuenciaron mediante secuenciación con
cebador de tinción (Martin, et al., Bio/Technology, 3:911
(1985) usando un cebador M13F.
Se contó el número de repeticiones de CA/GT
entre las posiciones 2125 y 2152 correspondientes a SEQ ID NO:1. La
SEQ ID NO:1 como se lista aquí demuestra un total de 14 secuencias
con repeticiones GT entre las posiciones 2125 y 2152. La
secuenciación del ADN de los fragmentos de la PCR mostró 11,12,13,14
y 15 copias de la repetición de GT en el ADN genómico del nuevo gen
de tirosina quinasa procedente de 27 caucásicos, con las siguientes
frecuencias:
| Alelo | Frecuencia |
| 11 | 6/54 |
| 12 | 2/54 |
| 13 | 17/54 |
| 14 | 16/54 |
| 15 | 13/54 |
No se observaron homocigotos para ningún alelo.
Cada uno de los alelos está destinado a encontrarse en el alcance de
las reivindicaciones anejas (SEQ ID NO:1).
Se añadieron oligonucleótidos a células A549 a
una concentración de 2 \mum usando las siguientes condiciones
experimentales. Las células A549 se sembraron a una concentración de
3000 células por pocillo, en una placa de cultivo de 96 pocillos.
Las células se incubaron toda la noche antes de la transfección. El
medio se aspiró, y las células se lavaron una vez con 150 \mul
Opti-MEM. Posteriormente, se usaron 70 \mul de
Opti-MEM que contiene 30 \mul de Lipofectina/ml
de Opti-MEM por 2 \muM de oligo. Las células se
incubaron con el oligómero seleccionado, durante
3-6 horas a 37ºC con 5% de CO_{2}. Después de esa
incubación, se añadió a cada pocillo 70 \mul de medio completo
que contiene 2X FBS. La proliferación celular se midió 20 horas
después de la transfección, usando un kit de ensayo de la
proliferación celular de una disolución, de Promega. En resumen, se
añadió a cada pocillo 28 \mul de Reactivo de Una Disolución, y las
placas se incubaron durante 2 horas a 37ºC en una atmósfera de 5%
de CO_{2} humidificada. Después de la incubación de 2 horas, la
absorbancia se midió a 490 nm.
Los experimentos demuestran la presencia de la
nueva tirosina quinasa de transducción de señales. Se lisó una
estirpe celular de carcinoma de pulmón humano (A549) en tampón de
lisis que contiene 50 mM de Tris (pH 8,0), 150 mM de NaCl, 0,5% de
Tritón X-100, 1 mM de PMSF y cóctel de inhibidor de
proteasa completo. Todas las etapas se llevaron a cabo a 4ºC. Los
lisados celulares de aproximadamente 2,5 X 10^{6} células de
carcinomas de pulmón se incubaron con 10 \mul de antisuero
policlonal de conejo, durante 2 horas con giro continuo. Como
control negativo, se usó suero preinmune procedente del mismo
conejo. Los complejos inmunitarios se capturaron mediante adición
de perlas de proteína A-Sefarosa (Pharmacia), y
meciendo durante una hora adicional. Las perlas se lavaron cinco
veces en tampón de lisis. La proteína unida se eluyó en tampón de
muestra y se sometió a SDS-PAGE en un gel al 8%.
Se añadió GST/quinasa SEQ ID NO:3 purificada
recombinante (u otra proteína recombinante derivada de SEQ ID NO:3)
a 20 \mug de enolasa en 10 \mul de un tampón de reacción de
quinasa (KRB) 3X que contiene (en mM): 60 de HEPES (pH 7,5), 30 de
acetato de magnesio, 0,15 de ATP, 3 de DTT, 0,03 de ortovanadato de
sodio. La reacción se comenzó mediante adición de 5 \muCi de
[\gamma-^{32}P]ATP (10 \mul). Las
muestras se incubaron durante 5 minutos a 30ºC. La reacción se
detuvo mediante adición de 4X de tampón de muestra de Laemmli. Las
proteínas se separaron en geles de SDS con 12% de Tris/glicina, se
tiñeron con azul de Coomassie, se secaron y se expusieron a una
película de autoradiografía.
La identificación sistemática de alta producción
para compuestos moduladores se realiza usando FlashPlates®
(NEN^{TM} Life Science Products) de 96 pocillos revestidos con
enolasa. Se añade a cada pocillo tampón de reacción de quinasa (3X
tampón de reacción de quinasa (KRB) que contiene: 60 mM de HEPES (pH
7,5), 30 mM de acetato de magnesio, 0,15 mM de ATP, 3 mM de DTT,
0,03 mM de ortovanadato de sodio) y 0,25 \muCi de
[\gamma^{33}P]-ATP a una concentración no mayor
que 1 \mug/ml, (determinada mediante valoración de las
preparaciones enzimáticas individuales para una concentración que
permita determinaciones cinéticas durante un transcurso de tiempo
de 1 hora de la tirosina quinasa), y se incubó una hora a 30ºC en
presencia o en ausencia de 10 \muM de compuesto de ensayo. El
volumen de reacción total es 100 \mul. Tras la incubación, la
mezcla de reacción se aspiró, y los pocillos se enjuagaron dos
veces con 300 \mul de PBS. La incorporación de fosfato
radiomarcado se determina mediante recuento por centelleo, con un
contador de centelleo para microplacas de 96 pocillos, de 12
detectores, Packard Instrument Co. Top Count, y un contador de
luminiscencia, modelo B991200. Los compuestos que inhiben la
actividad de quinasa en una cantidad \geq 50% a 10 \mum están
indicados mediante una reducción de > 50% en los recuentos de
centelleo. La especificidad y la selectividad se determinan mediante
valoración de los compuestos inhibidores para determinar la
IC_{50} (u otra cantidad estándar bien conocida en la técnica,
para comparación) y mediante la sustitución de otras quinasas en el
ensayo. Por ejemplo, la determinación de la actividad inhibidora
relativa de las quinasas, en comparación con SEQ ID NO:3
recombinante expresada y aislada de manera similar, evaluada en
condiciones similares, proporciona los datos de selectividad.
Cooper, et al., J.Biol. Chem., 259:7835 (1984). Los sitios
de fosforilación en la enolasa son utilizados por tirosina proteína
quinasas in vivo e in vitro.
Como alternativa, se puede usar un ensayo de
filtro. Este protocolo es el mismo, pero la reacción se detiene
mediante adición de EDTA (pH 7,0) a una concentración final de 80
mM. Entonces, las muestras se centrifugan y se colocan 50 \mul
del sobrenadante en forma de puntos sobre papel de filtro de
intercambio catiónico p81 (Whatman, Nº. 3698915). Los filtros se
lavaron entonces tres veces en 200 ml de 180 mM de H_{3}PO_{4}
(5-10 minutos cada vez), y una vez en 200 ml de
etanol al 96%. Después de secar los filtros en aire, la
radioactividad se determinó mediante el recuento de Cerenkov en un
contador de centelleo.
Para evaluar adicionalmente la capacidad de un
compuesto para inhibir el crecimiento de tumores humanos, por
ejemplo, se inyectaron células tumorales humanas en ratones SCID
(grave inmunodeficiencia combinada) para formar masas tumorales
palpables. Los efectos de diversas dosis (por ejemplo,
0,5-50 mg) de un compuesto que inhibe el
crecimiento tumoral se pueden determinar según lo siguiente: se
suspendieron aproximadamente 1 x 10^{7} células de la estirpe
celular CCL 221 (ATCC, Rockville, MD), una estire celular de
adenocarcinoma de colon humano, en 100 \mul de DMEM, y se
inyectaron subcutáneamente en ratones con SCID, de manera que se
formaron dos tumores por ratón. Los ratones con SCID recibieron
células CCL 221, y los tumores se hicieron crecer durante 7 días
sin tratamiento; en el séptimo día (Día 0) se registraron los
diámetros máximos de los tumores y los pesos de los animales, y se
determinó el tamaño medio del tumor para los ratones. En el Día 1
(ocho días después de la inyección de las células tumorales), se
comenzó el tratamiento de los ratones con el compuesto candidato o
con el vehículo solo. Se inyectó intraperitonealmente a un grupo de
los ratones (controles) con 0,2 ml de vehículo, y un segundo grupo
de ratones recibió compuesto mediante inyección intraperitoneal. Se
pueden estudiar diversas dosis (0,25-75 mg) del
compuesto en grupos separados de ratones. En el Día 7 y en el Día
14, se midió el peso del animal y el diámetro máximo del tumor. Se
comparó el tamaño máximo medio del tumor, para cada grupo, en el
Día 0, Día 7 y Día 14. en el Día 14, se siguió un animal con dosis
elevada para determinar si el agente produce una inhibición,
dependiente de la dosis, del crecimiento del tumor. Los efectos de
toxicidad se pueden examinar rastreando el peso de los ratones y
recogiendo los pulmones, hígados y bazos para tinción
histológica.
<110> ZENECA Limited
\vskip0.400000\baselineskip
<120> RECEPTOR TIROSINA QUINASA HUMANO
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 70332/US.sustantiva
\vskip0.400000\baselineskip
<150> Documento U.S. 60/088.958
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
11-06-1998
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 6
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<170> FastSEQ para Windows Versión 3.0
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2607
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1269
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
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<211> 422
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<212> PRT
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<213> Homo Sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
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<210> 4
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<211> 15
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo Sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Glu Ala Asp Arg Pro Ser Pro Arg Glu Leu Arg
Leu Arg Leu Glu}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador de PCR
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<400> 5
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgccgtcgact gtgggcctag cagggaa
\hfill27
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<210> 6
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<223> Cebador de PCR
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<400> 6
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\hskip-.1em\dddseqskipgccgcggccg ctcaaagcat gctatag
\hfill27
Claims (16)
1. Polinucleótido purificado que comprende una
secuencia de ácidos nucleicos que codifica un polipéptido que tiene
al menos 80% de homología con un miembro elegido del grupo que
consiste en: (la SEQ ID NO:3, las posiciones 1 a 122 de SEQ ID
NO:3; las posiciones 26 a 422 de SEQ ID NO:3 y las posiciones 123 a
422 de SEQ ID NO:3).
2. Polinucleótido según la reivindicación 1, que
comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido que comprende la secuencia tal como se representa en la
SEQ ID NO:3.
3. Polinucleótido según la reivindicación 1, que
comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido que comprende la secuencia tal como se representa en la
SEQ ID NO:3, en la que la posición 147 (lisina) de la SEQ ID NO:3
está sustituida o suprimida.
4. Polinucleótido según la reivindicación 3, que
comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido que comprende la secuencia tal como se representa en la
SEQ ID NO:3, en la que la posición 147 de la SEQ ID NO:3 es
Arginina.
5. Polinucleótido según la reivindicación 1, que
comprende una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un
polipéptido que comprende una secuencia que se elige del grupo que
consta de: (la SEQ ID NO:3, las posiciones 1 a 25 de SEQ ID NO:3,
las posiciones 1 a 122 de SEQ ID NO:3, las posiciones 26 a 422 de
SEQ ID NO:3, y las posiciones 123 a 422 de SEQ ID NO:3).
6. Polinucleótido según la reivindicación 2, en
el que la secuencia de polinucleótidos comprende la secuencia tal
como se representa en la SEQ ID NO:2.
7. Molécula antisentido que comprende un
oligómero, de longitud comprendida en el intervalo que varía de 12
a 25 nucleótidos, que: (a) es complementaria de una región que se
encuentra en el seno de las posiciones 67 hasta 148 de la SEQ ID
NO:1; o (b) comprende una secuencia, que es complementaria de una
secuencia elegida en el grupo que consta: (de las posiciones 67
hasta 79; 70 hasta 82; 73 hasta 85; 75 hasta 92; 76 hasta 88; 79
hasta 91; 80 hasta 92; 81 hasta 93; 82 hasta 94; 83 hasta 95; 84
hasta 96; 85 hasta 97; 86 hasta 98; 87 hasta 99; 88 hasta 100; 89
hasta 101; 90 hasta 102; 91 hasta 103; 92 hasta 104; 93 hasta 105;
94 hasta 106; 95 hasta 107; 96 hasta 108; 97 hasta 109; 98 hasta
110; 99 hasta 111; 100 hasta 112; 101 hasta 113; 102 hasta 114; 103
hasta 115; 104 hasta 116; 105 hasta 117; 106 hasta 118; 107 hasta
119; 108 hasta 120; 109 hasta 121; 110 hasta 122; 111 hasta 123;
112 hasta 124; 113 hasta 125; 114 hasta 126; 115 hasta 127; 116
hasta 128; 117 hasta 129; 118 hasta 130; 119 hasta 131; 120 hasta
132; 121 hasta 133; 122 hasta 134; 123 hasta 135; 124 hasta 136;
125 hasta 137; 126 hasta 138; 127 hasta 139; 128 hasta 140; y 136
hasta 148, de la SEQ ID NO:1).
8. Molécula antisentido que comprende un
oligómero, de longitud comprendida en el intervalo que varía de 12
hasta 25 nucleótidos, que: (a) es complementaria de una región que
se encuentra en el seno de las posiciones 1333 hasta 1414 de la SEQ
ID NO:1; o (b) que comprende una secuencia, que es complementaria de
una secuencia elegida en el grupo compuesto por: (de las posiciones
1333 hasta 1345; 1336 hasta 1348; 1339 hasta 1351; 1342 hasta 1354;
1345 hasta 1357; 1346 hasta 1358; 1347 hasta 1359; 1348 hasta 1360;
1348 hasta 1365; 1349 hasta 1361; 1350 hasta 1362; 1351 hasta 1363;
1352 hasta 1364; 1353 hasta 1365; 1354 hasta 1366; 1355 hasta 1367;
1356 hasta 1368; 1357 hasta 1369; 1358 hasta 1370; 1359 hasta 1371;
1360 hasta 1372; 1361 hasta 1373; 1362 hasta 1374; 1363 hasta 1375;
1364 hasta 1376; 1365 hasta 1377; 1366 hasta 1378; 1367 hasta 1379;
1368 hasta 1380; 1369 hasta 1381; 1370 hasta 1382; 1371 hasta 1383;
1372; 1384; 1373 hasta 1385; 1374 hasta 1386; 1375 hasta 1387; 1376
hasta 1388; 1377 hasta 1389; 1378 hasta 1390; 1379 hasta 1391; 1380
hasta 1392; 1381 hasta 1393; 1382 hasta 1394; 1383 hasta 1395; 1384
hasta 1396; 1385 hasta 1397; 1386 hasta 1398; 1387 hasta 1399; 1388
hasta 1400; 1389 hasta 1401; 1390 hasta 1402; 1391 hasta 1403; 1392
hasta 1404; 1393 hasta 1405; y 1394 hasta 1406, de la SEQ ID
NO:1).
9. Vector de expresión que comprende el
polinucleótido según la reivindicación 1.
10. Célula hospedante transformada con el vector
de expresión según la reivindicación 9.
11. Polipéptido purificado que comprende la
secuencia de aminoácidos tal como se representa en SEQ ID NO:3 o
una variante de SEQ ID NO:3, que tiene al menos 80% de homología con
un miembro elegido del grupo que consiste en: (la SEQ ID NO:3; las
posiciones 1 a 122 de SEQ ID NO:3; las posiciones 26 a 422 de SEQ ID
NO:3, y las posiciones 123 a 422 de SEQ ID NO:3).
12. Anticuerpo específico del polipéptido de SEQ
ID NO:3.
13. Procedimiento para producir un polipéptido
según la reivindicación 11, comprendiendo dicho procedimiento las
etapas que consisten en:
- a)
- cultivar una célula hospedante según la reivindicación 10, en condiciones apropiadas para la expresión de dicho polipéptido; y
- b)
- recuperar dicho polipéptido a partir del cultivo de células hospedantes.
14. Procedimiento de identificación de
compuestos que modulan una actividad biológica y/o farmacológica de
una tirosina quinasa, que comprende:
- a)
- combinar un compuesto candidato modulador con un polipéptido según la reivindicación 11; y medir un efecto del compuesto candidato modulador sobre la actividad biológica y/o farmacológica del polipéptido.
15. Procedimiento de identificación de
compuestos que modulan una actividad biológica y/o farmacológica de
una tirosina quinasa, que comprende: combinar un compuesto candidato
modulador con una célula hospedante que expresa un polipéptido
según la reivindicación 11; y medir un efecto del compuesto
candidato modulador sobre la actividad biológica y/o farmacológica
del polipéptido.
16. Composición de diagnóstico para la
identificación de un polipéptido que comprende la secuencia de
aminoácidos tal como se representa en SEQ ID NO:3, que comprende el
anticuerpo según la reivindicación 12.
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