ES2339117T3 - Procedimientos de preparacion de una espuma que comprende un agente esclerosante. - Google Patents
Procedimientos de preparacion de una espuma que comprende un agente esclerosante. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2339117T3 ES2339117T3 ES04798564T ES04798564T ES2339117T3 ES 2339117 T3 ES2339117 T3 ES 2339117T3 ES 04798564 T ES04798564 T ES 04798564T ES 04798564 T ES04798564 T ES 04798564T ES 2339117 T3 ES2339117 T3 ES 2339117T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- foam
- oxygen
- gas
- syringe
- gas phase
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 239000006260 foam Substances 0.000 title claims abstract description 202
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 99
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 11
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 165
- 239000007789 gas Substances 0.000 claims abstract description 135
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims abstract description 79
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 65
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 65
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 claims abstract description 65
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 claims abstract description 65
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 35
- 239000012071 phase Substances 0.000 claims description 33
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 claims description 22
- 239000003229 sclerosing agent Substances 0.000 claims description 15
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 11
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 11
- GQPLMRYTRLFLPF-UHFFFAOYSA-N Nitrous Oxide Chemical compound [O-][N+]#N GQPLMRYTRLFLPF-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L Sodium Carbonate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C([O-])=O CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 8
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 8
- UBAZGMLMVVQSCD-UHFFFAOYSA-N carbon dioxide;molecular oxygen Chemical compound O=O.O=C=O UBAZGMLMVVQSCD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 7
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 claims description 5
- 239000001307 helium Substances 0.000 claims description 5
- 229910052734 helium Inorganic materials 0.000 claims description 5
- SWQJXJOGLNCZEY-UHFFFAOYSA-N helium atom Chemical compound [He] SWQJXJOGLNCZEY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 239000001272 nitrous oxide Substances 0.000 claims description 5
- 239000008246 gaseous mixture Substances 0.000 claims description 4
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims description 2
- OKTJSMMVPCPJKN-IGMARMGPSA-N Carbon-12 Chemical compound [12C] OKTJSMMVPCPJKN-IGMARMGPSA-N 0.000 claims 1
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 102
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 abstract description 51
- 239000000243 solution Substances 0.000 abstract description 36
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 abstract description 30
- 206010046996 Varicose vein Diseases 0.000 abstract description 19
- 208000027185 varicose disease Diseases 0.000 abstract description 15
- 239000008152 sclerosing solution Substances 0.000 abstract description 6
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 abstract description 2
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 87
- ONJQDTZCDSESIW-UHFFFAOYSA-N polidocanol Chemical compound CCCCCCCCCCCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCOCCO ONJQDTZCDSESIW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 47
- 229920001363 Polidocanol Polymers 0.000 description 46
- 229960002226 polidocanol Drugs 0.000 description 46
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 45
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 45
- 239000000047 product Substances 0.000 description 20
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 19
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 17
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 17
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 13
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 11
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 10
- 230000001965 increasing effect Effects 0.000 description 10
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 238000007632 sclerotherapy Methods 0.000 description 9
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N Dioxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 7
- 229910001873 dinitrogen Inorganic materials 0.000 description 7
- -1 for example Substances 0.000 description 7
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 7
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 6
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 6
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 6
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 6
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 6
- 239000008366 buffered solution Substances 0.000 description 5
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 5
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 5
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 5
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 5
- 229920000291 Poly(9,9-dioctylfluorene) Polymers 0.000 description 4
- 239000000443 aerosol Substances 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 4
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 4
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 210000001147 pulmonary artery Anatomy 0.000 description 4
- 210000003752 saphenous vein Anatomy 0.000 description 4
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 4
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 description 4
- 208000034189 Sclerosis Diseases 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 230000017531 blood circulation Effects 0.000 description 3
- 230000008859 change Effects 0.000 description 3
- 229910001882 dioxygen Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 3
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 238000005187 foaming Methods 0.000 description 3
- 230000009931 harmful effect Effects 0.000 description 3
- 210000003141 lower extremity Anatomy 0.000 description 3
- 230000002688 persistence Effects 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 206010001526 Air embolism Diseases 0.000 description 2
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N Argon Chemical compound [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010008479 Chest Pain Diseases 0.000 description 2
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 2
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 230000004087 circulation Effects 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 230000002708 enhancing effect Effects 0.000 description 2
- 210000002837 heart atrium Anatomy 0.000 description 2
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 2
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 2
- 229920001343 polytetrafluoroethylene Polymers 0.000 description 2
- 239000004810 polytetrafluoroethylene Substances 0.000 description 2
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 2
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 2
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 2
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 description 2
- 230000001052 transient effect Effects 0.000 description 2
- 125000000391 vinyl group Chemical group [H]C([*])=C([H])[H] 0.000 description 2
- 229920002554 vinyl polymer Polymers 0.000 description 2
- 239000002912 waste gas Substances 0.000 description 2
- AXLOMSCVWXOOBG-UHFFFAOYSA-N 3-(4,5-dihydro-1h-imidazol-2-ylsulfanyl)-1h-indole;hydrochloride Chemical group Cl.N1CCN=C1SC1=CNC2=CC=CC=C12 AXLOMSCVWXOOBG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- VYZAMTAEIAYCRO-UHFFFAOYSA-N Chromium Chemical compound [Cr] VYZAMTAEIAYCRO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010011951 Decompression Sickness Diseases 0.000 description 1
- 206010014513 Embolism arterial Diseases 0.000 description 1
- KGWDUNBJIMUFAP-KVVVOXFISA-N Ethanolamine Oleate Chemical compound NCCO.CCCCCCCC\C=C/CCCCCCCC(O)=O KGWDUNBJIMUFAP-KVVVOXFISA-N 0.000 description 1
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000001554 Hemoglobins Human genes 0.000 description 1
- 108010054147 Hemoglobins Proteins 0.000 description 1
- 238000012404 In vitro experiment Methods 0.000 description 1
- 206010061216 Infarction Diseases 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N Potassium Chemical compound [K] ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L Sulfate Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- QUWBSOKSBWAQER-UHFFFAOYSA-N [C].O=C=O Chemical compound [C].O=C=O QUWBSOKSBWAQER-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005856 abnormality Effects 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 239000002390 adhesive tape Substances 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000002547 anomalous effect Effects 0.000 description 1
- 239000008135 aqueous vehicle Substances 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 238000010009 beating Methods 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 1
- 229940030445 carbon dioxide 75 % Drugs 0.000 description 1
- 230000000747 cardiac effect Effects 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000007012 clinical effect Effects 0.000 description 1
- 239000013256 coordination polymer Substances 0.000 description 1
- 238000013461 design Methods 0.000 description 1
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-M dihydrogenphosphate Chemical compound OP(O)([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical group P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000035475 disorder Diseases 0.000 description 1
- 239000002270 dispersing agent Substances 0.000 description 1
- 230000009189 diving Effects 0.000 description 1
- 238000005553 drilling Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 210000003038 endothelium Anatomy 0.000 description 1
- 229940031124 ethanolamine oleate Drugs 0.000 description 1
- 150000002170 ethers Chemical class 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 210000000497 foam cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000004872 foam stabilizing agent Substances 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 230000007574 infarction Effects 0.000 description 1
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 229940076549 injectable foam Drugs 0.000 description 1
- 238000001990 intravenous administration Methods 0.000 description 1
- 210000005240 left ventricle Anatomy 0.000 description 1
- 229960003511 macrogol Drugs 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 238000013178 mathematical model Methods 0.000 description 1
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000007576 microinfarct Effects 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000001459 mortal effect Effects 0.000 description 1
- 230000002107 myocardial effect Effects 0.000 description 1
- 125000001421 myristyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])C([H])([H])[H] 0.000 description 1
- 229910052754 neon Inorganic materials 0.000 description 1
- GKAOGPIIYCISHV-UHFFFAOYSA-N neon atom Chemical compound [Ne] GKAOGPIIYCISHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012299 nitrogen atmosphere Substances 0.000 description 1
- 238000000399 optical microscopy Methods 0.000 description 1
- 125000005429 oxyalkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 1
- 230000002085 persistent effect Effects 0.000 description 1
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 1
- 239000006223 plastic coating Substances 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 229910052700 potassium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011591 potassium Substances 0.000 description 1
- 230000003389 potentiating effect Effects 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 230000001902 propagating effect Effects 0.000 description 1
- 230000002685 pulmonary effect Effects 0.000 description 1
- 210000003492 pulmonary vein Anatomy 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 230000002787 reinforcement Effects 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- 230000000630 rising effect Effects 0.000 description 1
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 1
- URLJMZWTXZTZRR-UHFFFAOYSA-N sodium myristyl sulfate Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCOS(O)(=O)=O URLJMZWTXZTZRR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000776 sodium tetradecyl sulfate Drugs 0.000 description 1
- 235000014214 soft drink Nutrition 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 1
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 208000011580 syndromic disease Diseases 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
- 201000009371 venous hemangioma Diseases 0.000 description 1
- 201000003130 ventricular septal defect Diseases 0.000 description 1
- 208000029257 vision disease Diseases 0.000 description 1
- 238000011179 visual inspection Methods 0.000 description 1
- 229910052724 xenon Inorganic materials 0.000 description 1
- FHNFHKCVQCLJFQ-UHFFFAOYSA-N xenon atom Chemical compound [Xe] FHNFHKCVQCLJFQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/12—Aerosols; Foams
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B65—CONVEYING; PACKING; STORING; HANDLING THIN OR FILAMENTARY MATERIAL
- B65B—MACHINES, APPARATUS OR DEVICES FOR, OR METHODS OF, PACKAGING ARTICLES OR MATERIALS; UNPACKING
- B65B3/00—Packaging plastic material, semiliquids, liquids or mixed solids and liquids, in individual containers or receptacles, e.g. bags, sacks, boxes, cartons, cans, or jars
- B65B3/003—Filling medical containers such as ampoules, vials, syringes or the like
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/00008—Vein tendon strippers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/00491—Surgical glue applicators
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/12—Surgical instruments, devices or methods for ligaturing or otherwise compressing tubular parts of the body, e.g. blood vessels or umbilical cord
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/12—Surgical instruments, devices or methods for ligaturing or otherwise compressing tubular parts of the body, e.g. blood vessels or umbilical cord
- A61B17/12022—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires
- A61B17/12099—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires characterised by the location of the occluder
- A61B17/12109—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires characterised by the location of the occluder in a blood vessel
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/12—Surgical instruments, devices or methods for ligaturing or otherwise compressing tubular parts of the body, e.g. blood vessels or umbilical cord
- A61B17/12022—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires
- A61B17/12131—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires characterised by the type of occluding device
- A61B17/12181—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires characterised by the type of occluding device formed by fluidized, gelatinous or cellular remodelable materials, e.g. embolic liquids, foams or extracellular matrices
- A61B17/12186—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires characterised by the type of occluding device formed by fluidized, gelatinous or cellular remodelable materials, e.g. embolic liquids, foams or extracellular matrices liquid materials adapted to be injected
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/075—Ethers or acetals
- A61K31/08—Ethers or acetals acyclic, e.g. paraformaldehyde
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/02—Inorganic compounds
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
- A61K47/08—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing oxygen, e.g. ethers, acetals, ketones, quinones, aldehydes, peroxides
- A61K47/10—Alcohols; Phenols; Salts thereof, e.g. glycerol; Polyethylene glycols [PEG]; Poloxamers; PEG/POE alkyl ethers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
- A61K47/20—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing sulfur, e.g. dimethyl sulfoxide [DMSO], docusate, sodium lauryl sulfate or aminosulfonic acids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/30—Macromolecular organic or inorganic compounds, e.g. inorganic polyphosphates
- A61K47/32—Macromolecular compounds obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. carbomers, poly(meth)acrylates, or polyvinyl pyrrolidone
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
- A61K9/0019—Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/12—Aerosols; Foams
- A61K9/122—Foams; Dry foams
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/12—Aerosols; Foams
- A61K9/124—Aerosols; Foams characterised by the propellant
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M5/00—Devices for bringing media into the body in a subcutaneous, intra-vascular or intramuscular way; Accessories therefor, e.g. filling or cleaning devices, arm-rests
- A61M5/14—Infusion devices, e.g. infusing by gravity; Blood infusion; Accessories therefor
- A61M5/142—Pressure infusion, e.g. using pumps
- A61M5/145—Pressure infusion, e.g. using pumps using pressurised reservoirs, e.g. pressurised by means of pistons
- A61M5/155—Pressure infusion, e.g. using pumps using pressurised reservoirs, e.g. pressurised by means of pistons pressurised by gas introduced into the reservoir
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M5/00—Devices for bringing media into the body in a subcutaneous, intra-vascular or intramuscular way; Accessories therefor, e.g. filling or cleaning devices, arm-rests
- A61M5/178—Syringes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P41/00—Drugs used in surgical methods, e.g. surgery adjuvants for preventing adhesion or for vitreum substitution
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
- A61P9/14—Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
- B01F23/00—Mixing according to the phases to be mixed, e.g. dispersing or emulsifying
- B01F23/20—Mixing gases with liquids
- B01F23/23—Mixing gases with liquids by introducing gases into liquid media, e.g. for producing aerated liquids
- B01F23/235—Mixing gases with liquids by introducing gases into liquid media, e.g. for producing aerated liquids for making foam
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
- B01F25/00—Flow mixers; Mixers for falling materials, e.g. solid particles
- B01F25/40—Static mixers
- B01F25/45—Mixers in which the materials to be mixed are pressed together through orifices or interstitial spaces, e.g. between beads
- B01F25/451—Mixers in which the materials to be mixed are pressed together through orifices or interstitial spaces, e.g. between beads characterised by means for moving the materials to be mixed or the mixture
- B01F25/4512—Mixers in which the materials to be mixed are pressed together through orifices or interstitial spaces, e.g. between beads characterised by means for moving the materials to be mixed or the mixture with reciprocating pistons
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
- B01F25/00—Flow mixers; Mixers for falling materials, e.g. solid particles
- B01F25/40—Static mixers
- B01F25/45—Mixers in which the materials to be mixed are pressed together through orifices or interstitial spaces, e.g. between beads
- B01F25/452—Mixers in which the materials to be mixed are pressed together through orifices or interstitial spaces, e.g. between beads characterised by elements provided with orifices or interstitial spaces
- B01F25/4523—Mixers in which the materials to be mixed are pressed together through orifices or interstitial spaces, e.g. between beads characterised by elements provided with orifices or interstitial spaces the components being pressed through sieves, screens or meshes which obstruct the whole diameter of the tube
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
- B01F33/00—Other mixers; Mixing plants; Combinations of mixers
- B01F33/50—Movable or transportable mixing devices or plants
- B01F33/501—Movable mixing devices, i.e. readily shifted or displaced from one place to another, e.g. portable during use
- B01F33/5011—Movable mixing devices, i.e. readily shifted or displaced from one place to another, e.g. portable during use portable during use, e.g. hand-held
- B01F33/50112—Movable mixing devices, i.e. readily shifted or displaced from one place to another, e.g. portable during use portable during use, e.g. hand-held of the syringe or cartridge type
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B65—CONVEYING; PACKING; STORING; HANDLING THIN OR FILAMENTARY MATERIAL
- B65B—MACHINES, APPARATUS OR DEVICES FOR, OR METHODS OF, PACKAGING ARTICLES OR MATERIALS; UNPACKING
- B65B31/00—Packaging articles or materials under special atmospheric or gaseous conditions; Adding propellants to aerosol containers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/12—Surgical instruments, devices or methods for ligaturing or otherwise compressing tubular parts of the body, e.g. blood vessels or umbilical cord
- A61B17/12022—Occluding by internal devices, e.g. balloons or releasable wires
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods
- A61B17/00491—Surgical glue applicators
- A61B2017/00495—Surgical glue applicators for two-component glue
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/08—Solutions
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M16/00—Devices for influencing the respiratory system of patients by gas treatment, e.g. ventilators; Tracheal tubes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M2202/00—Special media to be introduced, removed or treated
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M2210/00—Anatomical parts of the body
- A61M2210/08—Limbs
- A61M2210/086—Legs
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M2210/00—Anatomical parts of the body
- A61M2210/12—Blood circulatory system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M5/00—Devices for bringing media into the body in a subcutaneous, intra-vascular or intramuscular way; Accessories therefor, e.g. filling or cleaning devices, arm-rests
- A61M5/178—Syringes
- A61M5/19—Syringes having more than one chamber, e.g. including a manifold coupling two parallelly aligned syringes through separate channels to a common discharge assembly
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Surgery (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Reproductive Health (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Mechanical Engineering (AREA)
- Anesthesiology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Infusion, Injection, And Reservoir Apparatuses (AREA)
- Polyurethanes Or Polyureas (AREA)
- Manufacture Of Porous Articles, And Recovery And Treatment Of Waste Products (AREA)
- Emulsifying, Dispersing, Foam-Producing Or Wetting Agents (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
Un procedimiento de fabricación de una espuma que comprende proporcionar dos jeringuillas, en el que la jeringa uno se carga con una fase líquida y la jeringa dos se carga con una fase gaseosa, la jeringa uno se carga con la fase líquida y la fase gaseosa, o ambas jeringas se cargan con la fase líquida y la fase gaseosa; y transferir la fase líquida y la fase gaseosa repetidamente entre las jeringuillas mediante un conector para formar una espuma, en la que la fase líquida comprende al menos un agente esclerosante y la fase gaseosa está constituida por al menos un gas fisiológicamente aceptable junto con nitrógeno gaseoso en una cantidad que oscila entre 0,0001% y 0,8% en volumen, siendo los gases fisiológicamente aceptables oxígeno, dióxido de carbono, oxido nitroso y helio.
Description
Procedimientos de preparación de una espuma que
comprende un agente esclerosante.
Esta solicitud reivindica la prioridad de las
Solicitudes Provisionales de los Estados unidos N^{Q} 60/542.867
y 60/542.866 presentadas el 10 de febrero de 2004. Asimismo, la
solicitud reivindica la prioridad de las Solicitudes de Patente del
Reino Unido Nº 0422307.9, presentada el 7 de octubre de 2004 y
0326768.9, presentada el 17 de noviembre de 2003. Todas estas
solicitudes se incorporan a la presente memoria descriptiva por
referencia.
La presente invención se refiere a la generación
de espuma que comprende un material esclerosante, en particular,
una solución esclerosante, que es adecuada para uso en el
tratamiento de diversas enfermedades que tienen que ver con los
vasos sanguíneos, en particular, varices y otros trastornos que
tienen que ver con la malformación venosa.
La esclerosis de varices se basa en la inyección
en las venas de sustancias líquidas esclerosantes que, entre otros,
causa una reacción inflamatoria localizada favoreciendo la
eliminación de estas venas anómalas. Hasta hace poco, la
escleroterapia era una técnica que se elegía en casos de varices de
calibre medio y pequeño, tratándose con cirugía las de diámetros
iguales o superiores a 7 mm.
Actualmente, se ha desarrollado una microespuma
inyectable adecuada para uso terapéutico, en particular en venas
más grandes, y se describe en los documentos
EP-A-0656203 y US 5676962 (Cabrera
& Cabrera), incorporados a la presente memoria descriptiva como
referencia. Los mismos describen una microespuma de baja densidad
producida con una sustancia esclerosante que, cuando se inyecta en
una vena, desplaza la sangre y garantiza que el esclerosante
contacta el endotelio del vaso en una concentración conocida y
durante un tiempo controlable, consiguiendo una esclerosis de todo
el segmento ocupado.
Antes de la fecha de prioridad de estas patentes
se conocía, desde hacía muchos años, que la inyección de líquido
esclerosante en varices, especialmente en varices más pequeñas,
podía ser eficaz. Asimismo, se conocía, desde hacía muchos años, la
inyección de una pequeña cantidad de aire en una vena antes de
inyectar líquido esclerosante, siendo el objetivo desplazar la
sangre de la vena para evitar que el esclerosante se diluyera
demasiado deprisa. Un perfeccionamiento de esta técnica fue hacer
una espuma o líquido inconsistente e inyectarla en lugar de aire
puro, antes de la inyección del líquido esclerosante. Estas
técnicas, conocidas como "bloque de aire" y desarrolladas por
Orbach, generalmente sólo eran eficaces para tratar venas más
pequeñas.
Además, existían descripciones de espumas más
finas para el tratamiento de varices más pequeñas (más adelante se
cita bibliografía de Fluckiger) o un procedimiento combinado que usa
tanto cirugía como espuma para el tratamiento de toda la vena
safena mayor: Mayer; Brucke: "The Aetiology and Treatment of
Varicosities of the Lower Extremities", Chirurgische
Praxis, 521-528, 1957.
Todas estas descripciones anteriores de
tratamiento con espuma describen la preparación de la espuma con
aire como el componente gaseoso. Ninguno de los documentos menciona
que el aire en la espuma inyectada cause problemas graves. Un
antecedente menciona una embolia gaseosa aparentemente transitoria.
P. Fluckiger: "Non-surgical retrograde
sclerosis of varicose veins with Varsyl foam",
Schweizerische Medizinische Wochenschrift Nº 48, págs.
1368-1370 (1956). En este artículo, el autor
indica que redujo el volumen de espuma administrado de 15 ml a 10
ml como consecuencia de que un paciente sufrió dolor torácico al
levantarse justo después del tratamiento con 15 ml de espuma. En
una conferencia posterior, el mismo autor indicó que de hecho había
usado posteriormente 15 ml de espuma sin observar efectos
secundarios: conferencia de 1962 titulada "A contribution
to techniques for outpatient treatment of varicose veins" dada a
la Sociedad Dermatológica de Hamburgo. La bibliografía de Mayer y
Brucke citada anteriormente parece describir el uso de hasta 50 ml
de espuma de aire y no menciona ningún problema.
No obstante, se conoce que la rápida inyección
intravenosa de una gran cantidad de aire, en contraposición a la
espuma de aire, puede llevar a una embolia gaseosa que puede ser
mortal. A pesar de esto, los que practican las técnicas con espuma
y bloque de aire, que se han descrito anteriormente, no indican que
los volúmenes de aire implicados en sus técnicas fueran suficientes
como para causar problemas graves.
La técnica con bloque de aire perdió gran
aceptación en la década de los 80 y las otras técnicas con espuma
que se han mencionado anteriormente eran prácticamente
insólitas.
Los Cabrera propusieron el uso de una
microespuma, es decir, una microespuma con burbujas
microscópicamente pequeñas, por ejemplo, cuando la mayoría de las
burbujas no se pueden ver a simple vista, para inyección en
varices. El uso de una microespuma, en contraposición a la espuma
con burbujas más grandes, da lugar a muchas ventajas en cuanto a
capacidad de control y capacidad para desplazar sangre incluso en
las varices más grandes, permitiendo el tratamiento de
prácticamente todas las varices sin recurrir a la cirugía. Según se
usa en la presente memoria descriptiva, el término espuma abarca
espumas con burbujas de todos los tamaños, que incluye
microespumas.
En la bibliografía sobre la patente de los
Cabrera que se ha mencionado anteriormente, se encontrará la primera
enseñanza de que posibles problemas relacionados con la inyección
intravenosa de un producto de microespuma hecho con aire son lo
suficientemente graves como para merecer un cambio. Estos documentos
indican que las técnicas anteriores a base de aire son
"peligrosas debido a los efectos secundarios del nitrógeno
atmosférico que sólo es ligeramente soluble en sangre", si bien
no se menciona exactamente qué peligros son, ni qué volúmenes o
ritmos de inyección de aire o gas de nitrógeno dan lugar a dichos
peligros.
Además de ser los primeros en proponer una
microespuma, en contraposición a una espuma con burbujas más
grandes, y en proponer el tratamiento de incluso las venas más
grandes sin cirugía, los Cabrera también propusieron que la
microespuma se hiciera con oxígeno o una mezcla de dióxido de
carbono y oxígeno. En el contexto de estos antecedentes, se puede
ver que la contribución de los Cabrera es muy innovadora en muchos
sentidos, valorando frente a las ideas imperantes en ese momento,
(i) el potencial de una microespuma esclerosante, (ii) la necesidad
de gases solubles, (iii) el uso de oxígeno que no degrada la
microespuma, sino que lo absorbe la sangre, (iv) la seguridad del
oxígeno, pero también (v) la posibilidad de incorporar un porcentaje
de dióxido de carbono altamente soluble.
Desde la publicación de la técnica con
microespuma de los Cabrera a mediados de los 90, muchos facultativos
han adoptado la espuma, tanto en Europa como en EEUU. En la
reciente conferencia mundial de flebólogos en San Diego en agosto
de 2003, aproximadamente, un tercio de los, más o menos, doscientos
cincuenta documentos que se presentaron se referían a tratamiento
con espuma.
No obstante, casi sin excepción, los
facultativos que actualmente usan espuma esclerosante lo hacen con
aire. La opinión varía respecto a cuánta espuma se debería inyectar
- algunos recomiendan sólo 5 ml, mientras que otros están
dispuestos a inyectar más.
La microespuma de los Cabrera se prepara de
manera improvisada en la clínica justo antes de su uso. La
preparación supone batir la solución esclerosante con un pequeño
cepillo que un motor hace girar a alta velocidad, debajo de una
tapa que está conectada a una fuente de oxígeno o de oxígeno y
dióxido de carbono. Muchos facultativos seguidores de los Cabrera
usan una técnica alternativa para la preparación improvisada de
espuma que supone pasar la solución esclerosante y aire de manera
repetida entre dos jeringuillas conectadas. Se describen estas
técnicas en el documento US2002077589. Otra alternativa es una
jeringuilla con un segundo émbolo con agujeros en su superficie y
que se puede mover de manera independiente en el depósito de
jeringuilla para espumar un líquido y una mezcla gaseosa en la
jeringuilla. Se describe esta técnica en "The Aetiology and
Treatment of Varicosities of the Lower Extremity", Mayer H y
col., Chirurgische Praxis (1957) pp 521-528 Ambos de
estos últimos tipos de procedimiento son poco prácticos y dejan un
margen de variación de la composición de espuma en función de la
persona que la prepara: contenido de gas, tamaño de burbuja,
densidad y estabilidad, todo se debe tener en cuenta. Estas
técnicas exigen un alto grado de atención y conocimiento que puede
resultar difícil de reproducir bajo presión, es decir, cuando el
tiempo disponible para preparar la espuma es reducido.
Actualmente, se está desarrollando y está en
ensayo clínico en Europa y en los EEUU un producto que básicamente
intenta reproducir la microespuma de los Cabrera de un modo más
práctico y fácilmente reproducible. Este producto es un sistema de
bombonas presurizadas, en el que la espuma se produce pasando gas y
solución esclerosante a presión a través de una serie de mallas
finas. En los ensayos de dicho producto el objetivo es tratar toda
una vena safena mayor y sus venas afluentes varicosas en un único
tratamiento, que puede suponer la inyección de 25 ml o incluso 50
ml de espuma.
El documento WO00/72821-A1 (BTG
International Limited), incorporado a la presente memoria
descriptiva como referencia, describe los conceptos fundamentales
subyacentes a dicho producto en bombona. La espuma se produce
pasando gas y líquido esclerosante a través de una o más mallas que
tienen pequeñas aberturas medidas en micrómetros. Al igual que las
patentes de los Cabrera, este documento reconoce los posibles
problemas relacionados con el aire/nitrógeno e intenta reducir los
niveles de nitrógeno en la espuma. Una forma preferente de gas que
se describe en el documento WO00/72821-A1 comprende
oxígeno al 50% v/v o más, siendo el resto dióxido de carbono o
dióxido de carbono, nitrógeno y gases residuales en la proporción
que se encuentran en el aire atmosférico.
En una solicitud de patente posterior, documento
WO02/41872-A1 (BTG International Limited),
incorporada a la presente memoria descriptiva como referencia, el
líquido esclerosante y un gas rico en oxígeno dispersable en
sangre, fisiológicamente aceptable, se almacenan en recipientes
independientes hasta justo antes del uso, momento en el que el gas
dispersable en sangre se introduce en el recipiente que contiene el
líquido esclerosante. Posteriormente, se libera la mezcla gaseosa
dispersable en sangre y líquido esclerosante, interactuando los
componentes de la mezcla, previa liberación de la mezcla, para
formar una espuma esclerosante. En el sistema que se describe en
esta solicitud de patente, se introduce deliberadamente una
proporción de nitrógeno (25%) en la bombona de polidocanol. Tras
cargar la bombona de líquido esclerosante (polidocanol) con oxígeno
de la bombona de oxígeno a mayor presión, el porcentaje de
nitrógeno se reduce hasta, aproximadamente, el 7 o el 8%. Se
consideraba que este nivel de nitrógeno se podría tolerar.
El dispositivo que se describe en el documento
WO 02/41872-A1 produce una espuma inyectable muy
uniforme, independientemente de los gases que se usen. Se prefiere
el uso de CO2 al 100% como el gas de llenado de la bombona de
polidocanol, dado que el CO2 es muy soluble en el flujo sanguíneo,
sin embargo los actuales inventores han observado que aumentando el
porcentaje de CO2 en la mezcla gaseosa definitiva se puede provocar
una reducción no deseada de la estabilidad de la espuma, lo que
tiene como consecuencia un tiempo de semiseparación más reducido.
En particular, la semivida de la espuma puede no alcanzar la cifra
de 2,5 minutos que se indica como preferente en el documento
WO00/72821-A1.
Los actuales inventores siguen investigando
aspectos clínicos de la inyección de espuma esclerosante, así como
perfeccionando el producto de espuma en bombonas y sometiéndolo a
ensayos clínicos en Europa y en los EEUU. Siempre se ha intentado
desarrollar un producto de espuma seguro que a la vez esté lo más
definido posible, pero cuya especificación tenga tolerancias
alcanzables. Son muchos los parámetros de una espuma que se pueden
variar. Los mismos incluyen, entre otros: el producto químico, su
pureza y la concentración de la solución, el tamaño de las
burbujas, o, con más exactitud, la distribución de tamaños, la
densidad (es decir, la proporción de líquido a gas), la duración de
la espuma (medida en términos de "semivida", o el tiempo que
tarda la mitad de la espuma en volver a líquido) y la mezcla
gaseosa.
Como cuestión práctica, resulta difícil excluir
totalmente de una espuma el nitrógeno, que constituye,
aproximadamente, el 80% del aire. Esto es cierto si la espuma se
hace usando un sistema de bombonas, en cuyo caso el nitrógeno
tiende a entrar en la bombona durante la elaboración, o usando las
técnicas con jeringuilla o la técnica con cepillo giratorio de los
Cabrera, o incluso cualquiera de una serie de otras técnicas menos
comunes que se han desarrollado desde la descripción de microespuma
de los Cabrera.
En una técnica con dos jeringuillas, el
procedimiento probable para introducir el componente gaseoso, si se
hiciera una espuma con un gas distinto al aire, sería conectar una
jeringuilla a una fuente presurizada de gas, posteriormente
desconectarla y volverla a conectar a otra jeringuilla que
contuviera esclerosante. En este tipo de técnica, se bombean las
dos jeringuillas para crear espuma y, posteriormente, se separa la
jeringuilla llena de espuma. La posibilidad de acceso de un
porcentaje reducido de aire/nitrógeno durante dicho proceso es
obvia. Del mismo modo, incluso con la técnica de los Cabrera, puede
resultar difícil excluir el 100% del aire/nitrógeno del entorno en
el que se prepara la espuma.
Uno de los objetivos del producto de espuma que
han desarrollado los inventores es tratar toda una vena safena
mayor con grandes venas afluentes varicosas en un paciente humano
con una inyección. Se necesitan hasta 25 ml, 30 ml o posiblemente
incluso 50 ml de espuma. Actualmente, los usuarios de espuma de aire
más conservadores inyectan una máximo de 5 ml en el sistema venoso,
aparentemente sin observar efectos nocivos. Por lo tanto, los
inventores pensaron que una cantidad equivalente de nitrógeno en una
dosis relativamente grande de espuma necesaria para tratar toda la
vena safena también podía ser segura. Por consiguiente, usaron esto
como un punto de partida: 5 ml de aire con nitrógeno al 80%
contendrá 4 ml de nitrógeno, una proporción correspondiente de
nitrógeno en, por ejemplo, 50 ml de espuma baja en nitrógeno sería,
aproximadamente, del 8%.
Hasta hace poco, los inventores consideraban que
una espuma con nitrógeno, aproximadamente, al 8% sería aceptable,
desde el punto de vista de la seguridad, y que este porcentaje
representaba una tolerancia fácilmente alcanzable de niveles de
nitrógeno en la especificación de la espuma. Aceptar este nivel de
nitrógeno también tiene la ventaja de que se podría introducir,
deliberadamente en la bombona de polidocanol, una pequeña cantidad
de nitrógeno para reducir los efectos negativos del dióxido de
carbono altamente soluble en la estabilidad de la espuma (como se
ha analizado anteriormente). El documento
WO02/41872-A1, al que se ha hecho referencia
anteriormente, describe dicha espuma y un sistema para hacerla.
Como se ha analizado anteriormente, aparte de
las publicaciones de patente que se han mencionado anteriormente,
la técnica publicada sobre tratamiento de varices con espuma casi no
menciona si existe peligro por inyectar hasta 15 ml de espuma de
aire. El único efecto señalado por Fluckiger fue dolor torácico
temporal. Las publicaciones de patente que se han mencionado
anteriormente, que mencionan los peligros del nitrógeno, no dicen
nada respecto a la cantidad de nitrógeno que seria peligrosa, ni
respecto a qué efectos perjudiciales podrían provocar. Una gran
mayoría de facultativos usan actualmente espuma a base de aire, si
bien algunos limitan la cantidad inyectada a 5 ml. Los inventores
han participado en un ensayo clínico europeo, de fase III, en varios
centros con 650 pacientes del producto en bombonas que se ha
descrito anteriormente que contiene nitrógeno entre el 7 y el 8%,
no se observaron efectos negativos graves asociados al componente
gaseoso de la espuma.
Actualmente, la investigación adicional en
relación con los ensayos clínicos del sistema de bombonas, que se
ha descrito anteriormente, ha puesto de manifiesto la presencia de
grandes cantidades de burbujas en el corazón, algunas de las cuales
perduran durante un período de tiempo considerable. La supervisión
del corazón con ultrasonido durante el tratamiento de pacientes de
este ensayo ha dejado ver muchas burbujas en el lado derecho del
corazón y en vasos sanguíneos asociados. Dado que la espuma se
inyecta en la circulación venosa, es decir, la conectada al lado
derecho del corazón, se esperaba que se observaran algunas burbujas
en el lado derecho del corazón. No obstante, la cantidad y
persistencia de las burbujas fue sorprendente.
Además, se observaron burbujas en el lado
izquierdo del corazón de un paciente que posteriormente mostró tener
una comunicación interventricular leve o persistencia del agujero
oval ("PFO"), es decir, un agujero en el corazón. Los
pacientes indicaron sufrir un trastorno visual transitorio. Esto es
importante porque, una vez en el lado izquierdo de la circulación,
las burbujas pueden avanzar hasta el cerebro, donde pueden provocar
microinfartos.
Actualmente se considera que someter a revisión
médica a todos los pacientes, incluso para el PFO más leve, no es
realmente viable para una intervención quirúrgica programada, tal
como tratamiento de varices, y puede incluso no ser posible. Las
técnicas necesarias serían realmente sofisticadas y posiblemente
bastante invasivas. Además, esto aumentaría el tiempo necesario
para la intervención quirúrgica e impediría el tratamiento de
pacientes con dichos PFO, de los que se considera que hay cantidades
considerables.
En vista de estos hallazgos inesperados, los
inventores han realizando una importante investigación básica
adicional.
Los inventores han realizado experimentos usando
modelos animales y se ha encargado a expertos, reconocidos
internacionalmente en su campo, que realicen un modelo matemático
detallado del comportamiento de las burbujas de oxígeno, dióxido de
carbono y nitrógeno en sangre. Asimismo, los inventores han
realizado trabajos in vitro para medir la absorción de gases
en sangre arterial humana pura. Por consiguiente, resulta evidente
que, a diferencia de lo que previamente pensaban los inventores y
en marcado contraste con las ideas de prácticamente todos los
facultativos que actualmente preparan espuma improvisada para uso en
el tratamiento de varices, incluso el volumen más reducido de
nitrógeno puede ser importante para provocar burbujas
persistentes.
Además, se han publicado estudios recientes que
confirman aún más que las espumas de aire, previamente propuestas
en la técnica, causan ciertas complicaciones en determinados grupos
de pacientes. Por ejemplo, el Dr. Philip Kritzinger, ha presentado
estudios clínicos en los que las espumas para escleroterapia de
venas que se hicieron usando aire, como la fase gaseosa, pueden
provocar ataques e infartos de miocardio en algunos ancianos o
pacientes con alto riesgo de problemas coronarios.
Los inventores han decidido que a fin de
producir un producto adecuado para administración a pacientes, sin
la necesidad de metodología de cribado de PFO prolongada, puede ser
necesario reducir la cantidad de nitrógeno a límites superiores que
previamente no estaban reconocidos.
Se han ideado perfeccionamientos adicionales del
sistema de bombonas que se describen en los documentos
WO00/72821-A1 y WO02/41872-A1,
específicamente elevando el porcentaje de dióxido de carbono en la
espuma y reduciendo el nitrógeno presente en la espuma
prácticamente a cero. Para compensar los efectos nocivos del dióxido
de carbono altamente soluble, se ha reducido el tamaño de las
aberturas de la malla de 20 micrómetros a 5 micrómetros. Se han
hecho bombonas de prueba con este diseño en cantidades bastante
grandes. Inicialmente, se prepararon sistemas de doble bombona,
como se ha descrito anteriormente, llenando las bombonas con el gas
deseado antes de cerrarlas herméticamente y presurizarlas. Este
producto generó una espuma con nitrógeno entre el 1% y el 2%. No
obstante, una investigación adicional ha llevado a los inventores a
considerar que incluso este nivel puede ser demasiado elevado.
Reconociendo que siempre habrá impurezas,
independientemente de la técnica que se adopte para hacer la espuma,
los inventores consideran que una espuma esclerosante con un
porcentaje en volumen de gas de nitrógeno en el intervalo de entre
0,01% y 0,8% es clínicamente segura y consecuentemente reproducible.
Se pueden producir, de forma rutinaria, bombonas con gas de
nitrógeno sólo al 0,0001%. Ejemplos, que se presentan más adelante,
ilustran la elaboración/preparación, así como los efectos clínicos
de una espuma de este tipo.
Asimismo, los inventores reconocen que técnicas
tales como las que se han descrito anteriormente que usan
jeringuillas, junto con una variedad de técnicas diferentes de
preparación improvisada de espuma esclerosante que se han
desarrollado desde la descripción de los Cabrera, pueden tener
cabida en el campo de la escleropatía con espuma. Estas técnicas
pueden proporcionar una opción menos cara que un producto en
bombona. Los inventores consideran que se pueden preparar espumas
con un porcentaje muy bajo de nitrógeno, como se ha expuesto
anteriormente, usando estos tipos de técnicas así como usando un
sistema de bombonas.
Según la presente invención, un procedimiento de
preparación de una espuma comprende proporcionar dos jeringuillas,
en la que la jeringa uno está cargada con una fase líquida y la
jeringa dos está cargada con una fase gaseosa, la jeringa uno está
cargada con la fase líquida o la fase gaseosa, o ambas jeringas
están cargadas con la fase líquida y la fase gaseosa; y
transfiriendo la fase líquida y la fase gaseosa repetidamente entre
leas jeringuillas para formar una espuma, en la que la fase líquida
comprende al menos un agente esclerosante y la fase gaseosa está
constituida de al menos un gas fisiológicamente aceptable, junto con
el nitrógeno gas en una cantidad que oscila entre un 0,0001% a 0,8%
en volumen, siendo oxígeno, dióxido de carbono, óxido nitroso o
helio, los gases fisiológicamente aceptables.
Alternativamente, según la invención, un
procedimiento de fabricación de una espuma comprende: proporcionar
una jeringuilla que comprende un cilindro, un primer émbolo y un
segundo émbolo, teniendo el segundo émbolo una cabeza de émbolo
abierta, que se adapta a ser movible en el interior del cilindro
independientemente del primer émbolo, cargándose la jeringa con una
fase líquida y una fase gaseosa; y oscilando el segundo émbolo para
formar una espuma; en el que la fase líquida comprende al menos un
agente esclerosante y la fase gaseosa está constituida por al menos
un gas fisiológicamente aceptable, junto con el nitrógeno gas en una
cantidad que oscila entre 0,0001% a 0,8% en volumen, siendo
oxígeno, dióxido de carbono, óxido nitroso o helio los gases
fisiológicamente aceptables.
"Gas fisiológicamente aceptable" significa
gases que la sangre absorbe con relativa facilidad o que pueden
pasar rápidamente a través de membranas de intercambio de gas
pulmonar. Específicamente, se contemplan oxígeno, dióxido de
carbono, óxido nitroso y helio. Se pueden usar otros gases, que
pueden o no estar dentro de la terminología de la definición de
gases fisiológicamente aceptables, al menos en pequeñas cantidades,
por ejemplo, xenón, argón, neón u otros. Según se usa en la
presente memoria descriptiva, una fase gaseosa que es
"sustancialmente" un gas específico, tal como
"sustancialmente O2", hace referencia a una fase gaseosa que es
O2 con las impurezas que normalmente se encuentran en el gas O2 de
calidad médica disponible en el mercado.
A efectos de esta solicitud otros diversos
términos tienen las definiciones siguientes: Un líquido esclerosante
es un líquido que es capaz de esclerosar vasos sanguíneos cuando se
inyecta en la luz del vaso e incluye, entre otros, soluciones de
polidocanol, sulfato de tetradecilo, oleato de etanolamina, morruato
sódico, soluciones glucosalinas o glucosadas hipertónicas, glicerol
cromado, soluciones yodadas. Escleropatía o escleroterapia se
refiere al tratamiento de vasos sanguíneos para eliminarlos. Un
aerosol es una dispersión de líquido en gas. Una proporción mayor
de un gas es por encima del 50% volumen/volumen. Una proporción
menor de un gas es por debajo del 50% volumen/volumen. Una cantidad
menor de un líquido en otro líquido es por debajo del 50% del
volumen total. Presión atmosférica y bar son calibre 1000 mbar.
Semivida de una espuma es el tiempo que tarda la mitad del líquido
de la espuma en volver a la fase líquida sin espumar.
Como sugiere Cabrera y se ha analizado
anteriormente, se podría usar oxígeno o mezclas de oxígeno y dióxido
de carbono del componente gaseoso. El dióxido de carbono es muy
soluble en agua (y, por consiguiente, en sangre) y el oxígeno no es
muy soluble en agua, pero la hemoglobina en sangre lo absorbe
relativamente rápido. Los actuales inventores también han realizado
estudios que han demostrado que el CO2 y el O2 se absorben en sangre
mucho más rápido que el N2 o el aire. No obstante, espumas hechas
únicamente con dióxido de carbono o con otros gases altamente
solubles en agua, tienden a ser muy inestables y no duran lo
suficiente como para que se puedan usar. Dado que las espumas de
CO2 tienen una semivida muy corta, antiguamente no se usaban espumas
con una concentración elevada de CO2 para preparar espumas para
escleroterapia.
Por ejemplo, una mezcla gaseosa
predominantemente insoluble, tal como aire, producirá una espuma
estable y consistente con un tiempo de semiseparación de 150 a 200
segundos usando el procedimiento de Cabrera. No obstante,
atmósferas gaseosas altamente solubles, tales como CO2 al 100%,
producen espumas con tiempos de semiseparación mucho más cortos. Se
cree que la rápida disolución y transporte de CO2 en las paredes
celulares laminadas de la espuma es responsable de la estabilidad
reducida de algunas espumas de CO2. Esto permite que las burbujas
de alta presión más pequeñas de la espuma transfieran rápidamente
todo su contenido de gas a burbujas de baja presión más grandes
adyacentes, que posteriormente suben a través de la espuma para
reventar o acumularse en una superficie. Este proceso se denomina
maduración de Ostwald y con espumas enteramente de CO2 la pared
celular líquida deja de ser una barrera importante para la
propagación entre burbujas adyacentes con diferentes presiones de
Laplace. La viscosidad del componente líquido también influye en el
drenaje y separación de la espuma en componentes líquidos y
gaseosos.
Las espumas de oxígeno no tienen este problema,
sin embargo se ha informado sobre los peligros de la inyección de
gas de oxígeno y, de hecho, se ha dicho que es casi tan peligroso
como el aire cuando se inyecta en el sistema venoso. Véase, por
ejemplo, Moore y Braselton "Injections of Air and carbon
Dioxide into a Pulmonary Vein", Annals of Surgery, Vol.
112, 1940, págs. 212-218. Si bien otros estudios
indican que concentraciones elevadas de O2 en las espumas usadas
para escleroterapia pueden aumentar el riesgo de efectos secundarios
en algunos grupos de pacientes de alto riesgo.
Asimismo, estudios recientes indican que espumas
para escleroterapia hechas con concentraciones elevadas de N2 u O2
pueden llevar a posibles efectos secundarios en determinados grupos
de pacientes. Más específicamente, un estudio indica que
concentraciones elevadas de nitrógeno pueden llevar a un mayor
riesgo de embolia arterial en determinadas poblaciones de
pacientes.
No obstante, los actuales inventores han
descubierto que se puede hacer una espuma eficaz para uso en
escleroterapia usando concentraciones elevadas de CO2 como la fase
gaseosa y la adición de un agente de aumento de la viscosidad a la
fase líquida. No obstante, la adición de un agente de potenciación
de la viscosidad, a la vez que aumenta la semivida de una espuma de
CO2, también aumenta la densidad de la espuma. Una densidad
demasiado elevada puede dificultar la capacidad de las espumas para
desplazar sangre y, por lo tanto, ser una espuma eficaz para
escleroterapia. Se descubrió que un equilibrio de densidad y
semivida permite la producción de una espuma eficaz. En una forma
de realización, este equilibrio de densidad y semivida se consigue
aumentando el agente de potenciación de la viscosidad hasta al
menos el 20% p/p y usando diversos procedimientos, según lo descrito
en la presente memoria descriptiva, para producir la espuma.
Los agentes de potenciación de la viscosidad
incluyen cualquier agente que aumenta la viscosidad de la fase
líquida, tal como PVP y glicerol. En una forma de realización, al
menos un agente de aumento de la viscosidad al 20% p/p está
presente en la fase líquida, tal como por ejemplo, al 25%, 30%, 35%,
40%.
La viscosidad de la fase líquida antes de la
producción de la espuma también puede ser un factor en la semivida
de la espuma. Por ejemplo, aumentando la viscosidad de la fase
líquida aumentará la semivida de la espuma. No obstante, una
viscosidad mayor puede elevar la densidad de la espuma resultante en
algunos sistemas.
A efectos de esta solicitud los términos tienen
las siguientes definiciones: Un líquido esclerosante es un líquido
que es capaz de esclerosar vasos sanguíneos cuando se inyecta en la
luz del vaso. Escleropatía o escleroterapia se refiere al
tratamiento de vasos sanguíneos para eliminarlos. Un aerosol es una
dispersión de líquido en gas. Una proporción mayor de un gas es por
encima del 50% volumen/volumen. Una proporción menor de un gas es
por debajo del 5 0% volumen/volumen. Una cantidad menor de un
líquido en otro líquido es por debajo del 50% del volumen total.
Presión atmosférica y bar son calibre 1000 mbar. Semivida de una
espuma es el tiempo que tarda la mitad del líquido de la espuma en
volver a la fase líquida sin espumar.
En una forma de realización, la espuma es tal
que el 50% o más en número de sus burbujas de gas de diámetro de 25
\mum o superior no tienen un diámetro superior a 200 \mum.
La semivida se mide convenientemente llenando de
espuma un vaso de un volumen y peso conocidos y permitiendo que el
líquido de la misma drene en un vaso graduado, permitiendo la
cantidad drenada en un tiempo determinado calcular la semivida, es
decir, de conversión de la espuma nuevamente a las fases líquida y
gaseosa que la componen. Esto se realiza preferentemente a
temperatura y presión normales, pero en la práctica las condiciones
ambientales de la clínica o laboratorio serán suficientes.
Según se usa en la presente memoria descriptiva,
la viscosidad se determina mediante Brookfield DVII+Pro fabricado
por Brookfield Engineering Labs a temperatura ambiente.
En una forma de realización, la relación
gas/líquido de la mezcla se controla de tal manera que la densidad
de la espuma es de 0,09 g/mL a 0,16 g/mL, más preferentemente de
0,11 g/mL a 0,14 g/mL.
En otra forma de realización, la espuma tiene
una semivida de al menos 10 0 segundos, tal como por ejemplo, 2
minutos, 2,5 minutos y 3 minutos. La semivida puede ser de hasta 1 ó
2 horas o superior, pero preferentemente es inferior a 60 minutos,
más preferentemente inferior a 15 minutos y lo más preferente
inferior a 10 minutos.
En una forma de realización, la mezcla de gas y
líquido esclerosante es en forma de aerosol, de una dispersión de
burbujas en líquido o de una macroespuma. Macroespuma significa una
espuma que tiene burbujas de gas que se miden en dimensión en
milímetros mayor, por ejemplo, aproximadamente 1 mm y superior, tal
como se puede producir agitando ligeramente las dos fases mediante
sacudidas. En otra forma de realización, el gas y el líquido se
proporcionan en forma de un aerosol, en el que se proporciona una
fuente de gas presurizado y un medio para mezclar los dos hasta el
momento de uso. Puede ser que se produzca primero una macroespuma en
la que el líquido y el gas se unen justo en el momento de uso.
La proporción de gas a líquido que se usa en la
mezcla puede ser importante a fin de controlar la estructura de la
espuma producida, de tal manera que se mejora su estabilidad para el
procedimiento y las circunstancias en que se está realizando. Para
algunas espumas, se puede mezclar 1 gramo de líquido esclerosante
con entre, aproximadamente, 6,25 y 14,3 volúmenes
(STP-temperatura y presión normales), más
preferentemente 7 y 12 volúmenes (STP), de gas.
En una forma de realización, el gas dispersable
en sangre fisiológicamente aceptable comprende una proporción mayor
de dióxido de carbono y/u oxígeno. En algunas formas de realización,
la espuma puede comprender una proporción menor de nitrógeno. Si
bien puede haber presente una proporción de nitrógeno, como en el
aire, la presente invención prevé el uso de dióxido de carbono y/u
oxígeno sin presencia de nitrógeno.
En una forma, el gas que se usa es una mezcla de
dióxido de carbono y otros gases fisiológicos, en particular, que
contienen dióxido de carbono al 3% v/v o superior, tal como dióxido
de carbono entre el 10 y el 90%, tal como dióxido de carbono entre
el 30 y el 50%. Los otros componentes de este gas pueden ser
oxígeno.
Otra forma de gas comprende oxígeno al 5 0% v/v
o superior, siendo el resto dióxido de carbono o dióxido de
carbono, nitrógeno y gases residuales en la proporción que se
encuentran en el aire atmosférico. Un gas es oxígeno entre el 60 y
el 90% v/v y dióxido de carbono entre el 4 0 y el 10% v/v, otro es
oxígeno entre el 70 y el 80% v/v y dióxido de carbono entre el 30 y
el 20%. Una forma de realización es oxígeno al 99% o superior.
Preferentemente el agente esclerosante es una
solución de polidocanol o sulfato de tetradecilo sódico en un
vehículo acuoso, por ejemplo, agua, especialmente en una solución
salina. Más preferentemente la solución es polidocanol entre el 0,5
y el 5% v/v, preferentemente en agua estéril o en una solución
salina fisiológicamente aceptable, por ejemplo, en una solución
salina entre el 0,5 y el 1,5% v/v. La concentración de esclerosante
en la solución se aumentará ventajosamente para determinadas
anomalías, tal como síndrome de Klippel y Trénaunay.
El polidocanol es una mezcla de éteres de
monolaurilo de macrogol de fórmula C12C25(OCH2CH2)nOH
con un valor medio de n de 9. Se entenderá que también se podrían
usar mezclas con otras cadenas de alquilo, unidades de repetición
de oxialquilo y/o valores medios de n de, por ejemplo, 7 a 11, pero
que 9 se puede obtener más convenientemente, por ejemplo, de
Kreussler, Alemania, por ejemplo, como Aethoxylsklerol^{TM} una
solución tamponada de polidocanol diluido.
La concentración de esclerosante en el líquido
acuoso es una solución entre el 1 y el 3% v/v, tal como polidocanol,
en agua o solución salina, tal como, aproximadamente, al 1% v/v.
Asimismo, el agua o solución salina, al menos en algunos casos,
contiene alcohol fisiológicamente aceptable entre el 2 y el 4% v/v,
por ejemplo, etanol. La solución salina puede ser tamponada. Cierta
solución salina tamponada es solución salina tamponada de fosfato.
El pH del tampón se puede ajustar para que sea fisiológico, por
ejemplo, de pH 6,0 a pH 8,0, más preferentemente, aproximadamente,
pH 7,0.
El esclerosante también puede contener
componentes adicionales, tal como estabilizadores, por ejemplo,
estabilizadores de espuma, por ejemplo, tal como glicerol. Otros
componentes pueden incluir alcoholes, tales como etanol.
En una forma de realización, los intervalos
correspondientes al volumen de nitrógeno gaseoso son entre 0,0001%
y 0,75%, tal como 0,7%, tal como 0,6% y tal como 0,5%. Si bien desde
un punto de vista teórico puede ser aconsejable eliminar el máximo
de nitrógeno posible, se debe entender que, dado que se vive en una
atmósfera de nitrógeno al 80%, existen dificultades para hacer una
espuma consistente con un grado muy elevado de pureza en cuanto a
gas de nitrógeno. Por consiguiente, el límite inferior
correspondiente al intervalo de impureza de nitrógeno preferente
(desde el puno de vista de que sea fácil de elaborar y/o menos caro)
es 0,0005%, más preferentemente 0,001%, aún más preferentemente,
0,005%, 0,01%, 0,05%, 0,1%, 0,2%, 0,3% o 0,4%. Como resultará
evidente gracias a los ejemplos que aparecen más adelante, cada
aumento incremental del límite inferior del intervalo puede tener
como consecuencia que se elimine una etapa de purificación del
procedimiento de elaboración, con los consiguientes ahorros en el
coste.
En una forma de realización, el gas comprende
dióxido de carbono entre el 1% y el 50%, preferentemente, entre el
10% y el 40%, más preferentemente, entre el 20% y el 3 0%.
Sorprendentemente, se ha observado que usando un tamaño de abertura
de la malla más pequeño, las espumas que tienen la especificación
que se expone en el documento WO00/72821-A1 se
pueden hacer con mezclas gaseosas que tienen proporciones más
elevadas de dióxido de carbono y, en consecuencia, proporciones más
reducidas de gases insolubles, tales como nitrógeno. El dióxido de
carbono puede ser un componente aconsejable de la mezcla gaseosa
debido a su extrema solubilidad, superior a la del oxígeno.
Un factor adicional para el entendimiento del
perfeccionamiento de los inventores del comportamiento en sangre de
las burbujas que comprenden gases solubles es el fenómeno de que el
nitrógeno se propague fuera de la sangre y de los tejidos
adyacentes y en las burbujas debido a una diferencia en la presión
parcial del nitrógeno en las burbujas en comparación con la de la
sangre y tejidos circundantes. Generalmente, este fenómeno sólo se
producirá cuando la presión parcial de nitrógeno en la burbuja sea
inferior a la de la sangre y tejidos circundantes.
Parece que el dióxido de carbono, y en menor
medida el oxígeno, se propagará fuera de la burbuja y se disolverá
en la sangre circundante relativamente muy rápido, de manera que la
burbuja alcanzará bastante rápidamente un punto en el que la
presión parcial de nitrógeno en la burbuja será superior a la de la
sangre y tejidos circundantes y, por último, la burbuja será
sustancialmente nitrógeno puro. Tan pronto como se invierta el
gradiente de la presión parcial del nitrógeno, el nitrógeno saldrá
de la burbuja y se disolverá en la sangre, si bien esto ocurrirá
relativamente despacio debido a la baja solubilidad del nitrógeno.
Asimismo, aumentando la saturación de la sangre circundante con
nitrógeno influirá en este fenómeno, si se produce en gran medida.
Este fenómeno afecta potencialmente al gradiente de presión parcial
de nitrógeno en la sangre y también puede significar que se alcanza
un límite de disolución de nitrógeno si la sangre circundante se
satura totalmente con nitrógeno.
Actualmente, no se entiende hasta qué punto la
saturación localizada de sangre con nitrógeno es un factor en la
disolución de las burbujas en una espuma dispersante. Sin embargo,
dado que el flujo sanguíneo está en constante movimiento, se supone
que este efecto sólo será transitorio y que no afectará demasiado a
la idea global de disolución de nitrógeno.
Parece que la fase inicial de disolución rápida
de dióxido de carbono y/u oxígeno es criticar cuanto más corto sea
este período, menor será el volumen de nitrógeno capaz de propagarse
en la burbuja.
Existen varias posibilidades para eliminar
burbujas residuales o para reducirlas de tamaño y/o número (aparte
de reducir la cantidad inicial de nitrógeno en la fase gaseosa de la
espuma). Una es hacer las burbujas tan pequeñas como sea práctico.
Cuanto más pequeña sea la burbuja, más rápido se disolverá el
dióxido de carbono y/u oxígeno fuera de la burbuja y, por lo tanto,
menor será el tiempo de que dispone el nitrógeno de la sangre para
propagarse en la burbuja antes de que se invierta el gradiente de
presión parcial del nitrógeno para favorecer la propagación del
nitrógeno fuera de la burbuja.
Otra es la de que el paciente respire oxígeno o
aire enriquecido con oxígeno, lo que tiene el efecto de aumentar la
presión parcial del oxígeno en la sangre a costa de la presión
parcial del nitrógeno. Esta técnica se conoce en los campos del
submarinismo y de la exploración del espacio, donde se ha usado para
reducir el riesgo de "enfermedad de descompresión", es decir,
la tendencia en la despresurización del nitrógeno a disolverse en
tejidos corporales (en contraposición a la sangre de los vasos
sanguíneos que es lo que interesa en este caso). Según creen los
inventores, nunca antes se ha propuesto usar esta técnica en
relación con inyectar gases en el sistema vascular.
La semivida se mide convenientemente llenando el
vaso con un volumen y peso conocidos de espuma y permitiendo que el
líquido del mismo drene en un vaso graduado, permitiendo la cantidad
drenada en un tiempo determinado el cálculo de la semivida, es
decir, de la conversión de la microespuma a sus fases líquida y
gaseosa de los componentes. Preferentemente, esto se realiza a
presión y temperatura normales, pero en la práctica las condiciones
ambientales de la clínica o laboratorio serán suficientes.
Más convenientemente, el embudo se equilibra
previamente en un baño de agua para garantizar una temperatura de
25ºC antes del secado y la aplicación de espuma. La colocación de
una jeringuilla llena de espuma al revés, sin su émbolo, encima del
embudo que lleva al receptáculo graduado permite una medición
adecuada de este parámetro.
En una forma de realización, la espuma, al pasar
a través de dicha aguja, no vuelve a líquido sin espumar en una
cantidad superior al 5% basada en contenido líquido, aún más
preferentemente, una cantidad superior al 2%. Esto se calcula
midiendo el cambio de volumen de la espuma frente al líquido.
En una forma de realización, la espuma se puede
pasar por una aguja a la vez que se retiene al menos el 50% en
número de sus burbujas de gas de al menos un diámetro de 25 m en no
más de un diámetro de 200 m. Esto se mide convenientemente en
condiciones ambientales, más preferentemente a STP.
En una forma de realización, el gas incluye
nitrógeno en menos del 40% v/v. Preferentemente, la densidad de la
espuma es de entre 0,09 y 0,16 g/mL, más preferentemente, entre 0,11
g/mL y 0,14 g/mL.
En una forma de realización, la densidad de la
espuma, que es una medición de la relación gas/líquido, es entre
0,13 y 0,14 g/cm y la semivida es al menos 2,5 minutos. Más
preferentemente, en ese tiempo, la espuma no cambia de sus
parámetros de tamaño de burbuja que se han expuesto
anteriormente.
En una forma de realización, el gas está
constituido por al menos oxígeno o dióxido de carbono al 50%, más
preferentemente, oxígeno o dióxido de carbono al 75% o superior y,
más preferentemente, oxígeno o dióxido de carbono al menos al 99%,
por ejemplo, oxígeno o dióxido de carbono sustancialmente al 100%.
Preferentemente, el oxígeno o dióxido de carbono es de calidad
médica.
Como se ha analizado anteriormente, la adición
de glicerol al esclerosante mencionado anteriormente confiere una
semivida más prolongada a la espuma resultante. No obstante, el
glicerol puede aumentar la densidad y asimismo produce un tendencia
de las mallas a la obstrucción cuando se usa un dispositivo de malla
como se ha descrito anteriormente, por lo tanto se debería usar con
cuidado cuando el dispositivo a partir del que se ha producido se
puede usar varias veces o cuando se usa el concepto de válvula en
bolsa.
Existen una serie de problemas relacionados con
la práctica actual de preparación improvisada de espuma, siendo
sólo uno de éstos el uso de aire como el gas. Otros problemas son la
consistencia del producto, que por naturaleza es muy variable
debido a que depende del médico que seleccione la relación de gas a
líquido y, que posteriormente, bombee la mezcla de gas y aire una
cantidad determinada de veces y/o a una velocidad determinada para
obtener el producto correcto. Las espumas son muy variables y los
distintos tamaños de burbujas y densidades tendrán perfiles
diferentes de seguridad y eficacia.
Desde hace poco, se dispone de una máquina que
está diseñada para recibir dos jeringuillas y aplicar una cantidad
determinada de bombeos a un ritmo determinado para conseguir un
producto más o menos consistente. La máquina se denomina
"Turbofoam®", pero, en este momento, los inventores no saben
quién comercializa la máquina. Dos jeringuillas están cargadas en
la misma (una de las cuales está cargada de solución esclerosante).
Cuando se activa, automáticamente la máquina introduce una cantidad
predeterminada de gas atmosférico en las jeringuillas y cicla las
jeringuillas hasta que se hace una espuma con las propiedades
deseadas.
Evidentemente, la disposición que se ha descrito
anteriormente trata al menos los problemas de reproducibilidad de
la espuma respecto a la relación gas/líquido (siempre que el usuario
cargue inicialmente la cantidad exacta de líquido), así como la
cantidad y velocidad de ciclos. No obstante, obviamente también es
bastante incómodo en muchos sentidos y se puede poner en peligro la
esterilidad, por ejemplo, debido a la acumulación de bacterias en
los conductos de gas de la máquina.
La solución que proponen los inventores es
proporcionar un envase estéril que contenga una o dos jeringuillas,
opcionalmente junto con conectores, etc. La jeringuilla y/o
jeringuillas se cargan previamente con los volúmenes exactos de gas
y líquido esclerosante. La mayoría de las jeringuillas están hechas
de materiales plásticos, tal como polipropileno, que permite que,
con el tiempo, el gas penetre a través del mismo. Por lo tanto,
preferentemente, el envase es sustancialmente impermeable al gas y,
preferentemente, la atmósfera del envase tiene sustancialmente la
misma composición que la del gas previamente cargado en la
jeringuilla. Este tipo de envase es muy conocido por sí mismo y
ejemplos incluyen revestimiento de plástico metalizado, por ejemplo,
un laminado de aluminio y polietileno.
Según un aspecto de la invención, se proporciona
un envase sustancialmente estéril que comprende:
una jeringuilla cargada con un esclerosante
líquido y una mezcla gaseosa que comprende gas fisiológicamente
aceptable, tal como, por ejemplo, nitrógeno gaseoso entre el 0,0001%
y el 0,8% siendo el resto otro gas, tal como gas fisiológicamente
aceptable y
una atmósfera gaseosa dentro del envase que
tiene sustancialmente la misma composición que la dicha mezcla
gaseosa de la jeringuilla.
En una forma de realización, la mezcla gaseosa
consiste en nitrógeno gaseoso del 0,001% al 0,8%, preferentemente,
del 0,1% al 0,8%, más preferentemente, del 0,01% al 0,7%, aún más
preferentemente, del 0,01% al 0,6%.
Para evitar la contaminación, el contenido del
envase puede estar ligeramente por encima de la presión atmosférica.
Esto se puede conseguir fabricando el envase a una temperatura
ambiente inferior a la temperatura ambiente normal. Una vez que el
envase entre en entornos ambientales normales, el aumento de
temperatura de la atmósfera del interior del envase garantizará una
ligera sobrepresión.
La fabricación del producto envasado se
realizaría en condiciones asépticas, usando las técnicas normales
de ese campo.
Este producto preenvasado puede incluir una
jeringuilla del tipo que comprende un depósito, un primer émbolo y
un segundo émbolo, teniendo el segundo émbolo una cabeza de émbolo
con aberturas que está adaptada para poderse mover dentro del
depósito de manera independiente al primer émbolo.
Alternativamente, la jeringuilla puede ser una
convencional, que contiene una cantidad adecuada de gas como se ha
descrito anteriormente. En el mismo envase o en un envase diferente
se podría proporcionar una jeringuilla adicional que contenga el
esclerosante, junto con los conectores, las válvulas de tres vías,
etc., necesarios para llevar a cabo cualquiera de las técnicas
conocidas de preparación improvisada de espuma.
En uso, se abre el envase y se siguen las
técnicas habituales para generar espuma, sin la necesidad de medir
el líquido o el gas. En el caso de una técnica con dos jeringuillas,
las jeringuillas se pueden suministrar ya conectadas, para que sea
más cómodo y para eliminar una posible fuente de contaminación.
Opcionalmente, el envase puede incluir un
conector de jeringuilla que incorpora una malla fina con aberturas
de dimensiones máximas de 1 a 200 micrómetros, preferentemente, de 2
a 50, más preferentemente, de 3 a 20 micrómetros. Alternativamente,
sí se usa un dispositivo con una única jeringuilla, una malla con
poros de estas proporciones puede proporcionar las aberturas del
émbolo.
Opcionalmente, el envase podría constituir un
cartucho de una máquina generadora de espuma similar a la
"Turbofoam®" que se ha descrito anteriormente.
"Turbofoam®" que se ha descrito anteriormente.
Alternativamente, el procedimiento prevé pasar
la mezcla de gas y líquido a través del mismo conjunto de conductos,
por ejemplo, como uno o más de dichos cuerpos porosos, una serie de
veces, por ejemplo, de 2 a 2.000, más preferentemente de 4 a 200
veces, o tantas veces como sea conveniente para producir una espuma
con la distribución de tamaño de burbuja necesaria según se ha
expuesto anteriormente. Se entenderá que cuantas más veces pase la
espuma a través de las mallas, más uniforme será. Cuando son
posibles varias pasadas a través de la malla, puede ser aconsejable
un tamaño mayor de malla, por ejemplo, de 20 a 300 m, tal como de 40
a 200 m, tal como de 60 a 150 m.
La presión del gas que se use, cuando se pase a
través de los conductos, dependerá de la naturaleza del mecanismo
que se use para producir la espuma. Cuando el gas está contenido en
una cámara presurizada y sólo pasa una vez a través de la malla,
tal como en una bombona de aerosol, en contacto con el líquido, la
presiones adecuadas normalmente están comprendidas entre 0,01 y 9
bares (1 y 900 kPa) por encima de la presión atmosférica. Para el
uso de mallas, por ejemplo, de 1 a 8 mallas dispuestas en serie, con
aberturas con un diámetro de 10 a 20 \mum, serán adecuados entre
otros, de 0,1 a 5 bares (10 a 500 kPa) por encima de la presión
atmosférica. Para el uso de 3 a 5 mallas con abertura de 2 0 \mum
se observa que de 1,5 a 1,7 bares (150 a 170 kPa) por encima de la
presión atmosférica es suficiente para producir una buena espuma.
Para una membrana con tamaño de poro de 0,1 \mum, se prefiere una
presión de 5 bares (500 kPa) o más por encima de la presión
atmosférica.
En una forma preferente de la invención, los
conductos tienen forma de una membrana, por ejemplo, de polímero,
tal como politetrafluoretileno, en la que la membrana está formada
de fibras conectadas aleatoriamente y tiene un tamaño de poro
considerado eficaz que puede ser muchas veces inferior a su tamaño
de poro aparente. Una forma de esto especialmente adecuada es una
película de PTFE orientada biaxialmente comercializada por
Tetratec^{TM}, USA, bajo la marca comercial Tetratex^{TM},
siendo los índices normales una porosidad de 0,1 a 10 \mum.
Tamaños de poro preferentes para el presente procedimiento y
dispositivo son de 3 a 7 \mum. Este material se puede laminar con
un material de refuerzo poroso para darle resistencia y tiene la
ventaja de que una pasada puede ser suficiente para producir una
espuma que cumple con los requisitos de uso que se han expuesto
anteriormente respecto a la estabilidad. No obstante, resultará
evidente para los expertos en la materia que el uso de más de una
membrana en serie de este tipo dará una espuma aún más uniforme para
un determinado conjunto de condiciones.
Otras características y ventajas de la invención
resultarán evidentes gracias a la siguiente descripción de diversas
formas de realización específicas.
\vskip1.000000\baselineskip
10 pacientes recibieron tratamiento por varices
mediante la inyección de espuma hecha con solución de polidocanol
al 1% y una mezcla gaseosa constituida básicamente por nitrógeno
entre el 7 y el 8% y el resto dióxido de carbono (aproximadamente,
el 22%) y oxígeno (aproximadamente el 70%).
\newpage
El procedimiento suponía la inyección de hasta
30 ml de espuma (25,5 ml de gas) en la sección estrecha de la vena
safena mayor. Se realizaron exploraciones con ultrasonido de las 4
cavidades cardíacas a todos los pacientes para verificar las
burbujas que llegaban al corazón. Se observaron burbujas en las
aurículas y ventrículos derechos de los 10 pacientes examinados. En
general, las burbujas aparecieron varios minutos después de la
inyección de la espuma y siguieron hasta que se detuvo el registro
con ultrasonido, aproximadamente, 40 minutos después de la
inyección.
En un paciente, se observaron microburbujas en
la aurícula y el ventrículo izquierdo. Posteriormente, se confirmó
que dicho paciente tenía una persistencia del agujero oval.
\vskip1.000000\baselineskip
El objetivo de este experimento era investigar
la naturaleza de las burbujas residuales que pasan al corazón tras
la inyección en la vena safena de espuma de polidocanol hecha con
diferentes mezclas gaseosas.
Se inyectó, a una perra de caza de 26 kg
anestesiada, espuma que contenía polidocanol formulado con mezclas
gaseosas variables. Se supervisaron burbujas residuales en la
artería pulmonar usando un ecocardíograma transesofágico (TEE). Por
medio de un catéter de diámetro interior grande, se tomaron muestras
de la arteria pulmonar de las burbujas residuales visualizadas en
el TEE. En dichas muestras de sangre se analizó la presencia de
burbujas residuales usando microscopía óptica y ultrasonido.
Se usaron tres composiciones diferentes de
espuma como sigue:
polidocanol al 1% y aire
polidocanol al 1% y una mezcla gaseosa
constituida por nitrógeno entre el 7 y el 8% y el resto dióxido de
carbono y oxígeno
una solución de polidocanol al 1% y una mezcla
gaseosa que comprendía nitrógeno en menos del 1% y el resto dióxido
de carbono y oxígeno.
Se grabó en vídeo el resultado del TEE y se
analizó posteriormente. Para las tres composiciones, las burbujas
llegaron a la arteria pulmonar en cantidades suficientes como para
dar lugar a una imagen sustancialmente opaca. Se considera que la
densidad límite de burbuja necesaria para producir una imagen de
este tipo es bastante reducida y, por lo tanto, esta imagen, por sí
misma, no facilitó datos útiles. El tiempo que tardó la imagen en
volver a una imagen de fondo en estado estacionario se consideró que
era aproximadamente indicativo de la cantidad de tiempo que
hubieran tardado todas o la mayoría de las burbujas en disolverse en
el flujo sanguíneo. El TEE fue muy preciso (mostrando actividad
incluso cuando se inyectó solución salina como un control). Por
este motivo resultó difícil establecer criterios de valoración
exactos. No obstante, se han realizado los siguientes cálculos del
período de tiempo desde la opacificación de la imagen hasta decaer a
un nivel de fondo.
4 minutos
2 minutos
20 segundos.
Además del análisis con TEE, se observaron las
muestras de sangre sacadas de la arteria pulmonar correspondientes
a cada espuma durante el período en que la imagen del TEE era
sustancialmente opaca. Los resultados de estas observaciones fueron
como sigue.
Tan pronto como se tomó la muestra, se observó
un volumen considerable de burbujas en la jeringuilla. Cuando se
mantuvo la jeringuilla con su eje longitudinal en horizontal, se
observó una hilera continua de burbujas extendiéndose
sustancialmente por toda la longitud de la jeringuilla de 20 ml.
Inicialmente al tomar la muestra no se
observaron burbujas en la jeringuilla, pero tras unos segundos, con
la jeringuilla en la posición horizontal, apareció una línea de
burbujas que era más fina que la línea que se observó en la espuma
A.
Después de tomar la muestra y mantener la
jeringuilla en la posición horizontal, no se observaron burbujas
durante un período de un minuto o superior. Gradualmente, empezó a
aparecer una línea fina de burbujas a lo largo de la parte superior
de la jeringuilla.
No se pudieron medir las burbujas, sin embargo
parecían ser más pequeñas para la composición C que para la
composición B, siendo, a la vez, las burbujas de la composición B
más pequeñas que las de la composición A.
\vskip1.000000\baselineskip
Se realizaron experimentos in vitro para
determinar la absorción de espuma hecha con diferentes gases en
sangre arterial pura humana.
Se preparó un depósito de jeringuilla de 20 ml
con polipropileno punzando su pared lateral con una aguja
hipodérmica relativamente larga para hacer un agujero con un
diámetro de, aproximadamente, 1 mm. Posteriormente se tapó el
agujero sujetando una pieza de una lámina de vinilo transparente
flexible en el mismo con una cinta adhesiva transparente. Se
introdujo un pequeño elemento agitador magnético en el depósito de
la jeringuilla y, posteriormente, se volvió a colocar el émbolo. A
continuación, se sacaron 20 ml de sangre arterial humana, de la
manera habitual, de un paciente usando la jeringuilla, preparada de
manera especial, provista de una aguja hipodérmica.
Se extrajo la aguja hipodérmica y la jeringuilla
se colocó en una unidad agitadora magnética, de manera que el
elemento magnético de la jeringuilla agitó completamente la sangre.
Posteriormente, la boquilla Luer de la jeringuilla se conectó a una
pieza de 50 cm de tubo manométrico que se dispuso en horizontal y se
dejó abierta en un extremo. El tubo manométrico se fijó a una
escala.
Posteriormente, se llenó una jeringuilla de 0,5
ml, con una aguja fina previamente colocada, de espuma hecha a
partir de solución de polidocanol al 1% y aire. La densidad de la
espuma era de 0,13 g/ml (\pm 0, 03 g/ml), constituyendo el
componente líquido, aproximadamente, el 13% del volumen total de
espuma (\pm 3%).
Posteriormente, la aguja de la jeringuilla de
0,5 ml se introdujo a través de la lámina de vinilo de la pared
lateral de la jeringuilla de 20 ml. Se observó que había un pequeño
volumen de sangre en el tubo manométrico y se anotó en la escala la
posición del extremo distal de dicha columna de sangre. La alícuota
de 0,5 ml de espuma se inyectó rápidamente y simultáneamente se
puso en marcha un temporizador (10). Cuando la espuma desplazó la
sangre de la jeringuilla de 20 ml, la columna de sangre de la
jeringuilla de 20 ml se desplazó al tubo manométrico y se anotó en
la escala la distancia a lo largo del tubo que alcanzó el extremo
distal de la columna de sangre. La escala propiamente dicha
comprendía líneas marcadoras separadas, separadas por igual a
intervalos de aproximadamente 1 cm. Se determinó que una distancia
de 45 intervalos en esta escala correspondía a una capacidad
interna del tubo manométrico de, aproximadamente, 0,5 ml.
Cuando la sangre empezó a absorber el gas de la
espuma, la sangre del tubo manométrico empezó a retroceder hacia la
jeringuilla. Una vez que pareció que la columna dejó de moverse, se
detuvo el temporizador (tF). Nuevamente se anotó la posición del
extremo distal.
Posteriormente, se repitió el experimento
respecto a una espuma de la misma densidad, pero hecha con gas de
oxígeno (pureza de "calidad médica"-99,5% mínimo).
Se volvió a repetir el experimento, pero esta
vez, en lugar de espuma, se introdujo gas de oxígeno de un cilindro
de oxígeno de grado médico directamente en la jeringuilla de 0,5
ml.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\newpage
Los resultados de estas tres pruebas se
presentan a continuación en la Tabla 1.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Lamentablemente, el error experimental de este
ejemplo es demasiado grande para llegar a la conclusión de si hay o
no un volumen residual de gas en la espuma de gas de oxígeno o de
oxígeno, sí bien evidentemente se absorbe la gran mayoría, al menos
del gas. Habría un pequeño porcentaje de nitrógeno en el gas, del
cilindro de oxígeno, que sólo es puro al 99,5% y que posiblemente
se introdujo durante el experimento. También es una posibilidad la
difusión de nitrógeno en las burbujas desde la sangre, como se ha
analizado anteriormente, y se pudo haber introducido algo de
nitrógeno involuntariamente durante el procedimiento.
En este experimento, la prueba de la espuma de
aire sólo se observó durante unos minutos después de tF, No
obstante, los inventores han realizado experimentos adicionales,
cuyos resultados no se registran formalmente en la presente memoria
descriptiva, en los que se usaba espuma con un porcentaje de
nitrógeno. Como en los experimentos anteriores, se inyectó una
jeringuilla de 20 ml de sangre arterial pura humana con una alícuota
de 0,5 ml de una espuma que contenía un porcentaje de nitrógeno. El
contenido de la jeringuilla se agitó, como anteriormente, y se dejó
transcurrir un período de 24 horas. En la jeringuilla siguió
habiendo un volumen fácilmente visible de burbujas.
\vskip1.000000\baselineskip
Se preparó una unidad que comprendía una carcasa
con puertos en cada extremo formados como conexiones luer estándar.
Dentro de la carcasa había un paso interior entre los puertos, paso
en el que había instalados cuatro elementos de malla, de tal manera
que era necesario que el flujo entre los puertos fluyera a través de
las mallas. Las mallas tenían aberturas de 5 micrómetros.
Se introdujeron 8 ml de solución de polidocanol
en una jeringuilla de 20 ml estándar y la jeringuilla se colocó en
un puerto de la unidad de apilamiento de mallas que se ha descrito
anteriormente. Se cogió una segunda jeringuilla de 20 ml y se
introdujeron 12 ml de aire en la misma antes de colocarla en el otro
de los dos puertos de la unidad de apilamiento de mallas. Se midió
la capacidad interna de la unidad de apilamiento de mallas y se
determinó que, a estos efectos, era básicamente insignificante,
siendo de 0,5 ml o inferior.
Posteriormente, se trasladó manualmente el aire
y la solución de polidocanol hacia atrás y hacia delante entre las
jeringuilla lo más rápido posible durante un minuto. El número de
pasadas que se consiguieron fueron 15.
El producto resultante fue un líquido blanco de
aspecto homogéneo sin burbujas visibles. Se analizó el tamaño de
burbuja de una muestra de este líquido (véase el Ejemplo 9 que
aparece más adelante) y los resultados se presentaron en la tabla
que aparece a continuación (Tabla 2).
Se llevó a cabo un experimento similar al del
Ejemplo 6 anterior con una carcasa que contenía 4 unidades de malla
cada una comprendiendo una malla de 5 micrómetros. Esta vez, se
introdujeron 10 ml de solución de polidocanol al 1% en una
jeringuilla de 20 ml y se introdujeron 10 ml de aire en la otra. El
aire y la solución de polidocanol se trasladaron manualmente hacia
atrás y hacia delante lo más rápido posible durante 2 minutos. Se
consiguieron 27 pasadas.
El producto resultante fue un líquido blanco de
aspecto homogéneo sin burbujas visibles. Se analizó el tamaño de
burbuja de una muestra de este líquido (véase el Ejemplo 9 que
aparece más adelante) y los resultados se muestran en la Tabla 3
que aparece a continuación.
Se llevó a cabo un experimento similar al de los
Ejemplos 6 y 7 anteriores con una carcasa que contenía 4 unidades
de malla cada una comprendiendo una malla de 11 micrómetros. Se
introdujeron 8 ml de solución de polidocanol al 1% en una
jeringuilla de 20 ml y se introdujeron 12 ml de aire en la otra. El
aire y el polidocanol se trasladaron manualmente hacía atrás y
hacia delante lo más rápido posible durante 1 minuto. Se
consiguieron 25 pasadas.
El producto resultante fue un líquido blanco de
aspecto homogéneo sin burbujas visibles. Se analizó el tamaño de
burbuja de una muestra de este líquido (véase el ejemplo 9 que
aparece más adelante) y los resultados se muestran en la Tabla 4
que aparece a continuación.
La técnica de clasificación según el tamaño de
burbuja que se usó para medir la distribución de tamaño de burbuja
de las espumas, a partir de los Ejemplos 6 a 8 anteriores, comprende
un análisis por ordenador de la imagen de las burbujas a través de
un microscopio. Una pequeña muestra de la espuma se deposita en una
guía preparada de manera especial que tiene piezas de separación de
37 micrómetros de altura montadas en cada lateral. Posteriormente,
se coloca con cuidado una guía adicional en la parte superior de la
muestra y de las piezas de separación, extendiendo de ese modo la
muestra en una capa con un grosor de 37 micrómetros. A
continuación, se registra y procesa una imagen digital de parte de
la capa de burbujas de 37 micrómetros: en la imagen las burbujas
parecen anillos, representando el anillo el diámetro más exterior de
la burbuja. Cada burbuja se identifica y numera de manera
independiente y se calcula su diámetro. Para burbujas con un
diámetro superior a 37 micrómetros se da por supuesto que la burbuja
se ha aplastado en cierto grado haciendo que el diámetro del anillo
de la imagen sea superior al diámetro de la burbuja sin deformar. Se
aplica un algoritmo para calcular el diámetro original de la
burbuja sin deformar. Para burbujas de 37 micrómetros o inferiores,
se da por supuesto que la burbuja ha flotado hacia el lateral
inferior de la guía superior y está sin deformar, A partir de la
inspección visual de la imagen digital, no parece que sea un
supuesto razonable dado que imágenes de burbujas superpuestas no
aparecen o son poco comunes. No obstante, una vez que se haya
desarrollado esto, se pretende repetir los experimentos usando un
conjunto de guías con una separación de 10 micrómetros y un
software modificado adecuadamente, de manera que sustancialmente
todas las burbujas se aplastarán entre las guías.
\vskip1.000000\baselineskip
Se repiten los ejemplos 6, 7 y 8 anteriores
usando el siguiente procedimiento.
Se introduce solución de polidocanol en una
jeringuilla de 20 ml, como se ha descrito en los ejemplos 6, 7 y 8,
asegurándose de que se introduce solución en exceso y que
posteriormente se dosifica la solución con la boquilla apuntando
hacia arriba, hasta que se deja el volumen adecuado de solución de
polidocanol. De este modo se eliminan los vacíos de aire de la
jeringuilla, especialmente de la boquilla.
Posteriormente, la jeringuilla llena de
polidocanol se conecta a la unidad de malla, según se ha descrito
anteriormente, el ensamblaje orientado con la jeringuilla apuntando
hacia arriba, y la unidad de malla se llena de solución, eliminando
todas las burbujas de aire.
Se conecta un tubo de un cilindro de oxígeno de
calidad médica (pureza del 99,5%) al conector luer de una
jeringuilla de 20 ml con el émbolo extraído. Posteriormente, se
limpia el tubo de oxígeno, el depósito de jeringuilla y el conector
luer durante 10 segundos con oxígeno del cilindro. A continuación,
se extrae el tubo de oxígeno, manteniendo el suministro de oxígeno
encendido y se inserta el émbolo de jeringuilla en el depósito y se
baja el émbolo. Posteriormente, se vuelve a acoplar el tubo de
oxígeno al luer de la jeringuilla y se permite que la presión del
oxígeno empuje hacia atrás el émbolo de jeringuilla para llenar la
jeringuilla con oxígeno.
Posteriormente, la jeringuilla de oxígeno se
conecta inmediatamente a la unidad de malla y se lleva a cabo el
procedimiento de generación de espuma que se ha descrito en los
Ejemplos 6, 7 u 8.
\vskip1.000000\baselineskip
Una jeringuilla y una unidad de malla llenas de
solución de polidocanol, como se ha descrito en el Ejemplo 10
anterior, se colocan en una "caja con guantes" plegable (una
recipiente que se puede cerrar herméticamente con guantes
integrales incorporados en la pared del recipiente para que un
usuario pueda manipular el contenido del recipiente). Asimismo, se
coloca una jeringuilla adicional, vacía en la caja con guantes.
Posteriormente, la caja se conecta herméticamente a una fuente de
vacío y, de ese modo, se pliega de tal manera que se extrae
sustancialmente todo el aire. Posteriormente, se sustituye la fuente
de vacío por una fuente de oxígeno puro al 99,995% y la caja con
guantes se llena de oxígeno de esta fuente. Se mantiene el
suministro de oxígeno y se abre una pequeña ventilación en la pared
de la caja con guantes opuesta al punto de entrada de oxígeno.
Posteriormente se sigue el procedimiento que se ha descrito en el
Ejemplo 10 anterior para llenar la jeringuilla vacía de oxígeno,
usando el tubo de suministro de oxígeno puro al 99,995% dentro de la
caja con guantes. A continuación se realiza el procedimiento que se
ha descrito en los Ejemplos 6, 7 y 8 para generar espuma.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepara una jeringuilla de polidocanol y una
unidad de malla como en el Ejemplo 10 anterior. Se sumerge una
jeringuilla en un depósito de agua y se extrae el émbolo. Una vez
que el depósito de jeringuilla está totalmente lleno de agua sin
bolsas de aire, se sujeta un tapón sobre la boquilla luer. Se
mantiene el depósito de jeringuilla con la boquilla apuntando hacia
arriba y primero se purga un tubo de un cilindro de oxígeno puro al
99,9999% y, posteriormente, se introduce en el depósito de
jeringuilla. Cuando se ha sustituido todo el agua por oxígeno
(teniendo cuidado de que se desplace el agua de la boquilla) se
inserta el émbolo y se extrae la jeringuilla del depósito de agua.
A continuación, se sigue el procedimiento del Ejemplo 10 para
conectar la jeringuilla a la unidad de malla y hacer espuma.
Como ocurre con el Ejemplo 4 anterior, este
procedimiento se podría mejorar almacenando el depósito de agua
bajo una atmósfera continuamente renovada de oxígeno puro al
99,9999% durante 24 horas antes de llenar la jeringuilla.
\vskip1.000000\baselineskip
En una modificación de los Ejemplos 10 a 12, la
unidad de malla se puede sustituir por un conector sencillo o por
una válvula de tres vías y en los demás aspectos la técnica puede
seguir igual, con la posible excepción de que sean necesarias más
pasadas para hacer una espuma aceptable. La abertura de una válvula
de tres vías o conector estándar, a través de la que se pasa el gas
y el líquido, en su dimensión mayor, tendría, aproximadamente, de
0,5 mm a 3 mm. Pasando repetidamente el líquido y el gas a través de
dicha abertura se puede seguir obteniendo una espuma útil, si bien
con tamaños de burbuja considerablemente superiores a los que se
obtienen con los procedimientos de los Ejemplos 6 a 912. Esta
técnica se conoce comúnmente como la técnica "Tessari". Los
inventores han experimentado con la técnica Tessari y han observado
que el tamaño y la distribución de las burbujas varían mucho en
función de la proporción de gas a aire, así como de la velocidad y
la cantidad de pasadas del gas y el líquido a través de la
abertura. En la bibliografía se ha indicado que el tamaño medio de
burbuja de una espuma Tessari es de, aproximadamente, 300
micrómetros. Lo mejor que han podido conseguir los inventores
usando la técnica Tessari es una espuma con un tamaño medio de
burbuja de, aproximadamente, 70 micrómetros, si bien para hacer
esto se tuvo que aumentar la proporción de líquido a gas hasta,
aproximadamente, líquido al 40%, gas al 60%.
En este ejemplo, se puede adaptar la técnica
Tessari para hacer una espuma con la densidad y el tamaño de
burbuja que se desee, dentro de las limitaciones que se han descrito
anteriormente, pero usando gas con un porcentaje muy bajo de
impureza de nitrógeno.
\vskip1.000000\baselineskip
Las espumas se hicieron con polidocanol,
glicerol y CO2 usando varias técnicas. La técnica que se usó para
hacer la espuma desempeña un papel importante en la semivida y
densidad de la espuma resultante.
Se formaron 500 ml de una solución tamponada de
polidocanol al 1% y glicerol al 30% usando el procedimiento
siguiente.
Se fundió polidocanol (pd) al 100%, un sólido
ceroso, colocándolo en un baño de agua templada.
Se pesaron 100 ml de agua destilada en un vaso
de precipitados de 1000 ml.
Se añadieron 0,425 g de dihidrógeno fosfato
potásico como un estabilizador.
Se pesaron 5 g del pd licuado.
Se pesaron 21 g de etanol al 96%.
Se mezclaron el etanol y el pd, posteriormente
se añadieron al agua destilada.
Se añadieron 150 g de glicerol.
Se añadió agua hasta la marca de 425 ml.
Se ajustó el pH hasta entre 7,34 y 7,38 pH
añadiendo 0,1M de hidróxido sódico.
Se añadió agua destilada hasta llegar a 500 g en
la escala.
La solución se filtró a través de un filtro de
0,25 micrómetros.
Se siguió el mismo procedimiento, con una
cantidad mayor de glicerol, para hacer la solución de glicerol al
40%.
En una jeringuilla de vidrio de 50 ml se
introdujeron 10 ml de la solución de pd/glicerol. La boquilla de
otra jeringuilla de vidrio de 50 ml se conectó a un tubo de un
cilindro de dióxido de carbono (B.O.C. "calidad CP" que tiene
un nivel de pureza del 99,995%). La jeringuilla se llenó de dióxido
de carbono y, posteriormente, se extrajo del tubo, se bajó el
émbolo y se volvió a llenar la jeringuilla hasta la graduación de 50
ml del depósito de jeringuilla y, posteriormente, se separó del
tubo. Un conector, con un luer hembra a cada extremo y una
perforación con un diámetro de, aproximadamente, 1 mm, se conectó,
posteriormente, al tubo y se limpió. Posteriormente, se conectó
cada una de las dos jeringuillas al dispositivo conector.
A continuación, el dióxido de carbono y la
solución de pd/glicerol se bombearon manualmente hacia atrás y
hacia delante entre las dos jeringuillas lo más rápido posible
durante más de 30 ciclos. Durante este proceso se formo una espuma
en la jeringuillas. Tras el último ciclo, la espuma se traspasó
rápidamente a un aparato de medición de semivida y densidad y se
determinó la semivida y densidad de la espuma.
El procedimiento se realizó para una solución
tamponada de polidocanol al 1% y glicerol al 30% y para una
solución tamponada de polidocanol al 1% y glicerol al 40%.
En cada caso se observó que la espuma resultante
era un tanto líquida, si bien no como un líquido. La misma formaría
una "gota" muy plana, ligeramente redondeada, en una superficie
que se descompondría y se iría como líquido en cinco segundos.
Se siguió el procedimiento que se ha resumido
anteriormente correspondiente a la técnica con doble jeringuilla,
con las siguientes variaciones.
En lugar de usar un conector con una perforación
de 1 mm, se preparó un denominado dispositivo de "apilamiento de
mallas" con una trayectoria de flujo que incorporaba una serie de
cuatro elementos de malla. Cada elemento de malla medía,
aproximadamente, entre 2 y 3 mm de diámetro y tenía poros con un
diámetro de 5 micrómetros. A cada extremo del dispositivo había una
conexión luer.
Se volvieron a ciclar las jeringuillas lo más
rápido posible, pero fue considerablemente más lento de lo que fue
posible con el conector sencillo con una perforación de 1 mm. Tras
10 ciclos, se detuvo el bombeo de las jeringuillas dado que no se
pudieron observar más cambios en la espuma. Fueron necesarios dos
operadores para llevar a cabo estos ciclos, bajando cada operador
el émbolo de una jeringuilla respectiva.
El procedimiento se realizó para una solución
tamponada de polidocanol al 1% y glicerol al 30% y para una
solución tamponada de polidocanol al 1% y glicerol al 40%.
El aspecto de las espumas hechas con la técnica
con doble jeringuilla y apilamiento de mallas era bastante similar
al de las que se produjeron con la técnica de estilo doble
jeringuilla, no obstante, las "gotas" eran menos planas y
tardaron algo más de tiempo en descomponerse.
Se prepararon bombonas presurizadas con una
capacidad de, aproximadamente, 100 ml con, aproximadamente, 20 ml
de solución tamponada de polidocanol/glicerol. Posteriormente, se
presurizaron las bombonas con dióxido de carbono sustancialmente
puro a una presión de 3,5 bares (350 kPa) absolutos.
Cada una de las bombonas está provista de una
válvula, con un tubo invertido que se extiende desde la válvula
hasta la base de la bombona. En cada lateral de la válvula hay
aberturas que atraen el gas cuando el líquido pasa hasta el tubo
invertido a presión. Por encima de la válvula, cada bombona está
provista de una unidad de apilamiento de mallas, como se ha
descrito anteriormente.
Para dosificar espuma se abre la válvula de la
bombona. La primera parte de espuma se desecha y, posteriormente,
se dosifica espuma directamente dentro del aparato de medición de
semivida y densidad.
El procedimiento se realizó con bombonas que
contenían una solución tamponada de polidocanol al 1% y glicerol al
30% y con bombonas que contenían una solución tamponada de
polidocanol al 1% y glicerol al 40%.
La espuma que produjo la solución de glicerol al
30% era relativamente consistente y formó una gota compacta y
redondeada en una superficie. Se podía ver que la gota empezaba a
descomponerse en pocos segundos, pero siguió como una gota en lugar
de como un charco de líquido durante mucho más tiempo. No se
registraron observaciones correspondientes al glicerol al 40%.
\newpage
- 1)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 30%)
- \quad
- Densidad = 0,231; Semivida = 99 s
- 2)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 40%)
- \quad
- Imposible hacer una cantidad suficiente de espuma.
\vskip1.000000\baselineskip
- 1)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 30%)
- \quad
- Densidad = 0,174; Semivida = 155 s
- 2)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 40%)
- \quad
- Densidad = 0,186; Semivida = 166 s
- 1)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 30%)
- \quad
- Densidad = 0,094; Semivida = 121 s
- 2)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 30%)
- \quad
- Densidad = 0,124; Semivida = 166 s
- 3)
- (CO2 al 100%, polidocanol al 1%, glicerol al 30%)
- \quad
- Densidad = 0,124; Semivida = 108 s.
\vskip1.000000\baselineskip
Este listado de referencias citadas por el
solicitante es únicamente para la comodidad del lector. No forma
parte del documento de patente europea. Aunque se ha puesto gran
cuidado en compilar las referencias, no se pueden excluir errores u
omisiones, y la Oficina Europea de Patentes rechaza toda
responsabilidad a ese respecto.
\vskip1.000000\baselineskip
- \bullet US 60542867 P [0010]
- \bullet US 5676962 A, Cabrera & Cabrera [0004]
- \bullet US 60542866 P [0010]
- \bullet US 2002077589 A [0015]
- \bullet GB 0422307 A [0010]
- \bullet WO 0072821 A1 [0017] [0032] [0063]
- \bullet GB 0326768 A [0010]
- \bullet WO 0241872 A1 [0018] [0024] [0032]
\bullet EP 0656203 A [0010]
\vskip1.000000\baselineskip
\bulletMayer; Brucke. The
Aetiology and Treatment of Varicosities of the Lower Extremities.
Chirurgische Praxis, 1957, 521-528
[006]
\bullet P. Fluckinger. Nonsurgical
retrograde sclerosis of varicose veins with Varsyl toam.
Schweizerische Medizinische Wochenschrift, 1956,
1368-1370 [0007].
\bullet A contribution to techniques for
outpatient treatment of varicose veins. Hamburg Dermatological
Society, 1962
\newpage
\bulletMayer H y col. The Aetiology
and Treatment ot Varicosities of the Lower Extremities.
Chirurgische Praxis, 1957, 521-528
[0015]
\bulletMore; Braselton.
Injections ot Air and carbon Dioxide into a Pulmonary Vein.
Annals of Surgery, 1940, vol. 112,
212-218 [0041].
Claims (23)
1. Un procedimiento de fabricación de una espuma
que comprende
proporcionar dos jeringuillas, en el que la
jeringa uno se carga con una fase líquida y la jeringa dos se carga
con una fase gaseosa, la jeringa uno se carga con la fase líquida y
la fase gaseosa, o ambas jeringas se cargan con la fase líquida y
la fase gaseosa; y
transferir la fase líquida y la fase gaseosa
repetidamente entre las jeringuillas mediante un conector para
formar una espuma, en la que
la fase líquida comprende al menos un agente
esclerosante y
la fase gaseosa está constituida por al menos un
gas fisiológicamente aceptable junto con nitrógeno gaseoso en una
cantidad que oscila entre 0,0001% y 0,8% en volumen, siendo los
gases fisiológicamente aceptables oxígeno, dióxido de carbono,
oxido nitroso y helio.
2. El procedimiento de la reivindicación 1 en el
que los gases fisiológicamente aceptables son oxígeno y dióxido de
carbono.
3. El procedimiento de la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, en el que el paso de la fase líquida y el paso de
la fase gaseosa se produce al pasar a través de una malla que
comprende aberturas con una dimensión máxima que oscila entre 1 y
200 micrómetros.
4. El procedimiento de la reivindicación 3, en
el que la dimensión máxima oscila entre 2 y 50 micrómetros.
5. El procedimiento de la reivindicación 3, en
el que la dimensión máxima oscila entre 3 y 20 micrómetros.
6. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5 en el que la fase gaseosa tiene al menos un
70% en volumen de oxígeno.
7. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, en el que la fase gaseosa tiene al menos un
90% de oxígeno.
8. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 7, en el que la fase gaseosa tiene al menos un
99% de oxígeno.
9. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8, en el que la fase gaseosa tiene
sustancialmente un 100% de oxígeno.
10. Un procedimiento de fabricación de una
espuma que comprende:
(a) proporcionar una jeringuilla que comprende
un cilindro, un primer émbolo y un segundo émbolo, teniendo el
segundo émbolo una cabeza de émbolo abierta que se adapta a ser
movible en el interior del cilindro independientemente del primer
émbolo, cargándose la jeringa con una fase líquida y una fase
gaseosa; y
(b) hacer oscilar el segundo émbolo para formar
una espuma;
en el que
la fase líquida comprende al menos un agente
esclerosante y
la fase gaseosa está constituida por al menos un
gas fisiológicamente aceptable, junto con nitrógeno gaseoso en una
cantidad que oscila entre 0,0001% y 0,8% en volumen, siendo los
gases fisiológicamente aceptables oxígeno, dióxido de carbono,
óxido nitrosos y helio.
11. El procedimiento de la reivindicación 10 en
el que los gases fisiológicamente aceptables son oxígeno y dióxido
de carbono.
12. El procedimiento de la reivindicación 10 o
la reivindicación 11, en el que las aberturas en el segundo émbolo
tienen una dimensión máxima que oscila entre 1 y 200
micrómetros.
13. El procedimiento de la reivindicación 12, en
el que las aberturas en el segundo émbolo tienen una dimensión
máxima que oscila entre 2 y 50 micrómetros.
14. El procedimiento de la reivindicación 12, en
el que las aberturas en el segundo émbolo tienen una dimensión
máxima que oscila entre 3 y 20 micrómetros.
15. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 10 a 14 en el que la fase gaseosa tiene al menos
un 70% en volumen de oxígeno.
16. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 10 a 15, en el que la fase gaseosa tiene al menos
un 90% de oxígeno.
17. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 10 a 16, en el que la fase gaseosa tiene al menos
un 9 9% de oxígeno.
18. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones 10 a 17, en el que la fase gaseosa tiene
sustancialmente un 100% de oxígeno.
19. Un envase estéril que comprende:
(a) una jeringuilla cargada con al menos un
agente líquido esclerosante y una mezcla gaseosa constituida por
oxígeno, dióxido de carbono o una mezcla de ambos, junto con
nitrógeno gaseoso en una cantidad que oscila entre 0,0001 y 0,8% en
volumen, y;
(b) una atmósfera gaseosa en el interior del
envase que tiene sustancialmente la misma composición que la
mencionada mezcla gaseosa en la jeringuilla.
20. El envase estéril de la reivindicación 19 o
la reivindicación 20, en el que el nitrógeno gaseoso está presente
en una cantidad que oscila entre un 0,001% y un 0,8% en volumen.
21. El envase estéril de la reivindicación 21,
en el que el nitrógeno gaseoso está presente en una cantidad que
oscila entre un 0,01% y un 0,8% en volumen.
22. El envase estéril de la reivindicación 21,
en el que el nitrógeno gaseoso está presente en una cantidad que
oscila entre un 0,01% y un 0,7% en volumen.
23. El envase estéril de la reivindicación 21,
en el que el nitrógeno gaseoso está presente en una cantidad que
oscila entre un 0,01% y un 0,6% en volumen.
Applications Claiming Priority (9)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| GB0326768A GB0326768D0 (en) | 2003-11-17 | 2003-11-17 | Generation of therapeutic microfoam |
| GB0326768 | 2003-11-17 | ||
| US54286704P | 2004-02-10 | 2004-02-10 | |
| US54286604P | 2004-02-10 | 2004-02-10 | |
| US542867P | 2004-02-10 | ||
| US542866P | 2004-02-10 | ||
| GB0422307A GB0422307D0 (en) | 2004-10-07 | 2004-10-07 | Generation and delivery of therapeutic microfoam |
| GB0422307 | 2004-10-07 | ||
| PCT/GB2004/004846 WO2005048984A1 (en) | 2003-11-17 | 2004-11-17 | Methods of preparing a foam comprising a sclerosing agent |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2339117T3 true ES2339117T3 (es) | 2010-05-17 |
| ES2339117T5 ES2339117T5 (es) | 2019-04-10 |
Family
ID=43013737
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES04798564T Expired - Lifetime ES2339117T5 (es) | 2003-11-17 | 2004-11-17 | Procedimientos de preparación de una espuma que comprende un agente esclerosante |
| ES04798566.8T Expired - Lifetime ES2330341T5 (es) | 2003-11-17 | 2004-11-17 | Espuma terapéutica que comprende una solución esclerosante y una baja cantidad de nitrógeno gaseoso |
Family Applications After (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES04798566.8T Expired - Lifetime ES2330341T5 (es) | 2003-11-17 | 2004-11-17 | Espuma terapéutica que comprende una solución esclerosante y una baja cantidad de nitrógeno gaseoso |
Country Status (27)
| Country | Link |
|---|---|
| US (8) | US20060280690A1 (es) |
| EP (4) | EP1684718A1 (es) |
| JP (4) | JP2007511590A (es) |
| KR (4) | KR20070005551A (es) |
| CN (1) | CN1960705B (es) |
| AT (1) | ATE453379T2 (es) |
| AU (4) | AU2004290963A1 (es) |
| BR (1) | BRPI0416611B8 (es) |
| CA (4) | CA2546232C (es) |
| CY (2) | CY1110513T1 (es) |
| CZ (1) | CZ2006315A3 (es) |
| DE (2) | DE602004024925D1 (es) |
| DK (2) | DK1701701T3 (es) |
| EA (1) | EA009362B1 (es) |
| EC (1) | ECSP066574A (es) |
| ES (2) | ES2339117T5 (es) |
| IL (1) | IL175672A (es) |
| IN (1) | IN2014DN07569A (es) |
| MA (1) | MA31041B1 (es) |
| MX (1) | MXPA06005526A (es) |
| NO (1) | NO20062866L (es) |
| NZ (1) | NZ547265A (es) |
| OA (1) | OA13287A (es) |
| PL (3) | PL1694292T5 (es) |
| PT (2) | PT1694292E (es) |
| SI (3) | SI1701701T1 (es) |
| WO (4) | WO2005048984A1 (es) |
Families Citing this family (102)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB9912356D0 (en) * | 1999-05-26 | 1999-07-28 | Btg Int Ltd | Generation of microfoam |
| GB0028692D0 (en) * | 2000-11-24 | 2001-01-10 | Btg Int Ltd | Generation of therapeutic microform |
| US8512680B2 (en) * | 2001-08-08 | 2013-08-20 | Btg International Ltd. | Injectables in foam, new pharmaceutical applications |
| US8048439B2 (en) * | 2003-11-17 | 2011-11-01 | Btg International Ltd. | Therapeutic foam |
| EP1684718A1 (en) * | 2003-11-17 | 2006-08-02 | Btg International Limited | Methods of preparing a foam comprising a sclerosing agent |
| ITMI20041056A1 (it) * | 2004-05-26 | 2004-08-26 | Garrido Antonio Luis Cabrera | Uso in campo medico diagnostico e flebo logico di una kiscela di gas sterili e fisiologicamente accettabili |
| GB0509824D0 (en) * | 2005-05-13 | 2005-06-22 | Btg Int Ltd | Therapeutic foam |
| AU2006245508B2 (en) * | 2005-05-13 | 2011-11-24 | Btg International Limited | Therapeutic foam |
| GB0509819D0 (en) * | 2005-05-13 | 2005-06-22 | Btg Int Ltd | Therapeutic foam |
| GB0509845D0 (en) | 2005-05-13 | 2005-06-22 | Btg Int Ltd | Preparation of therapeutic foam |
| EP1945533B1 (en) | 2005-10-21 | 2011-05-18 | Btg International Limited | Aerosol valve |
| US20080243068A1 (en) * | 2005-12-29 | 2008-10-02 | Kamal Ramzipoor | Methods and apparatus for treatment of venous insufficiency |
| EP1973475B1 (en) * | 2006-01-17 | 2010-07-14 | Baxter International Inc. | Device, system and method for mixing |
| US20090038701A1 (en) | 2006-01-17 | 2009-02-12 | Baxter International Inc. | Device, system and method for mixing |
| AU2013213741B2 (en) * | 2006-01-17 | 2016-01-28 | Baxter Healthcare Sa | Device, system and method for mixing |
| US9662435B2 (en) | 2006-01-31 | 2017-05-30 | Frank Levy | System and method for the effective, reliable and foolproof delivery of controlled amounts of a medical fluid |
| US8876749B2 (en) | 2006-11-27 | 2014-11-04 | Frank Levy | Apparatus and process for producing CO2 enriched medical foam |
| US20100101579A1 (en) * | 2006-11-27 | 2010-04-29 | Frank Levy | Portable Medical Gas Delivery System |
| US9486594B2 (en) | 2006-11-27 | 2016-11-08 | Frank Levy | Portable medical gas delivery system |
| WO2007114934A2 (en) | 2006-04-04 | 2007-10-11 | Vnus Medical Technologies, Inc. | Method and apparatus for generating vascular treatment foam |
| EP2015702A2 (en) * | 2006-05-11 | 2009-01-21 | Dentsply International Inc. | Aerosol delivery system for dispensing dental compositions |
| ES2289947B1 (es) * | 2006-07-25 | 2009-02-16 | Universidade De Santiago De Compostela | Microespuma esclerosante con co2, dispositivo de preparacion y sus aplicaciones. |
| US11185671B2 (en) | 2006-11-27 | 2021-11-30 | Frank Levy | Apparatus and process for producing CO2 enriched medical foam |
| US10322271B2 (en) | 2006-11-27 | 2019-06-18 | Frank Levy | Delivery system and method for the effective and reliable delivery of controlled amounts of a medical fluid |
| US9427522B2 (en) | 2006-11-27 | 2016-08-30 | Frank Levy | Delivery system for the effective and reliable delivery of controlled amounts of a medical fluid |
| US12377251B2 (en) | 2006-11-27 | 2025-08-05 | Frank Levy | Apparatus and method for producing an enriched medical suspension of carbon dioxide |
| US11833320B2 (en) | 2006-11-27 | 2023-12-05 | Frank Levy | Apparatus and process for producing CO2 enriched medical foam |
| US20190070397A1 (en) * | 2006-11-27 | 2019-03-07 | Frank Levy | Apparatus and method for producing co2 enriched medical foam |
| US11712510B2 (en) | 2006-11-27 | 2023-08-01 | Frank Levy | Delivery system and method for the effective, reliable and foolproof delivery of controlled amounts of a medical fluid |
| US10350399B2 (en) | 2006-11-27 | 2019-07-16 | Frank Levy | Apparatus and method for producing an enriched medical suspension of carbon dioxide |
| US10149935B2 (en) | 2006-11-27 | 2018-12-11 | Frank Levy | Delivery system and method for the effective and reliable delivery of controlled amounts of a medical fluid |
| US10155093B2 (en) | 2006-11-27 | 2018-12-18 | Frank Levy | Apparatus and method for producing CO2 enriched medical foam |
| US20080140002A1 (en) * | 2006-12-06 | 2008-06-12 | Kamal Ramzipoor | System for delivery of biologically active substances with actuating three dimensional surface |
| SI2125322T1 (sl) | 2006-12-21 | 2013-07-31 | Btg International Limited | Naprava in postopek za izdelavo terapevtske pene |
| AU2008207828B2 (en) | 2007-01-25 | 2013-09-19 | Hyperbranch Medical Technology, Inc. | Applicators for multiple component formulations and the like, and methods of use thereof |
| KR101562199B1 (ko) * | 2007-11-08 | 2015-10-21 | 넥스메드 홀딩스 인코포레이티드 | 서로 개별적으로 저장된 성분을 혼합하고 분배하기 위한 디바이스 및 시스템 |
| US8753670B2 (en) | 2008-03-26 | 2014-06-17 | Baxter International Inc. | Fibrin foam and process |
| US8512740B2 (en) | 2008-03-26 | 2013-08-20 | Baxter International Inc. | Fibrin foam and process for making |
| WO2010031197A1 (de) * | 2008-09-22 | 2010-03-25 | Medmix Systems Ag | Anschlussstück mit mischelement für austraganordnung |
| US8560968B1 (en) * | 2009-03-26 | 2013-10-15 | Vinod Nair | Method and apparatus for evaluating a heart patient |
| US8376989B2 (en) * | 2009-03-30 | 2013-02-19 | Covidien Lp | Compartmented syringe |
| WO2011031783A1 (en) * | 2009-09-08 | 2011-03-17 | Baxter International Inc. | Reconstitution and applicator system for wound sealant product |
| US20110082340A1 (en) * | 2009-10-07 | 2011-04-07 | Tyco Healthercare Group LP | Foam collar for surgical access devices |
| US8641661B2 (en) | 2010-01-05 | 2014-02-04 | Baxter International Inc. | Mixing system, kit and mixer adapter |
| EP2384703A1 (en) * | 2010-05-05 | 2011-11-09 | Bioadhesives Meditech Solutions, S.L. | Device for dispensing a two-component tissue adhesive or sealant |
| KR20130103489A (ko) * | 2010-08-06 | 2013-09-23 | 호스피라 오스트레일리아 피티와이 리미티드 | 바이알 제조 방법 및 시스템 |
| EP3854433A3 (en) | 2011-11-07 | 2021-10-27 | Battelle Memorial Institute | Processes for delivery of viscous drug therapies |
| US9937317B2 (en) * | 2012-01-30 | 2018-04-10 | Ipsumpro, S.L. | Modified medical syringe with a flow regulator for the administration of local anaesthetic |
| EP2836257B1 (en) * | 2012-04-09 | 2020-05-27 | Becton, Dickinson and Company | Injection mechanism utilizing a vial |
| EP2656869B1 (en) * | 2012-04-24 | 2020-10-14 | angioclinic AG | Composition for treating venous insufficiency and varicose veins |
| US10052107B2 (en) * | 2012-06-25 | 2018-08-21 | Arsenal Medical, Inc. | Systems and methods for the treatment of aneurysms |
| US8968449B2 (en) * | 2012-07-04 | 2015-03-03 | Vki Technologies Inc. | Spout, system, and method for producing a foam |
| WO2014031150A1 (en) * | 2012-08-24 | 2014-02-27 | St. Jude Medical Puerto Rico Llc | Sealant storage, preparation, and delivery systems and related methods |
| EP2722008B1 (de) * | 2012-10-16 | 2018-01-17 | Erbe Elektromedizin GmbH | Düse zur Zufuhr von biologischem Material, insbesondere Zellen, medizinische Vorrichtung mit einer derartigen Düse, Verwendung einer Düse, Verfahren zum Mischen von Fluiden und Gerät |
| CA2892088A1 (en) * | 2012-11-30 | 2014-06-05 | Unitract Syringe Pty Ltd | Combination plunger device for a dual chamber mixing syringe |
| JP6171013B2 (ja) * | 2013-07-08 | 2017-07-26 | テルモ株式会社 | 塗布具 |
| EP3079731B1 (en) | 2013-12-11 | 2018-08-08 | Ferrosan Medical Devices A/S | Dry composition comprising an extrusion enhancer |
| US10000009B2 (en) * | 2014-02-05 | 2018-06-19 | Nathan Christopher Maier | Sterile environment for additive manufacturing |
| WO2015125736A1 (ja) * | 2014-02-19 | 2015-08-27 | 株式会社モリタ製作所 | 医療用機器要素、医療用機器、医療用機器構成部品、医療用ハンドピース、医療用機器要素の製造方法、及び医療用切削装置 |
| US10952709B2 (en) | 2014-04-04 | 2021-03-23 | Hyperbranch Medical Technology, Inc. | Extended tip spray applicator for two-component surgical sealant, and methods of use thereof |
| CN106102601B (zh) * | 2014-04-18 | 2019-01-29 | 柯惠有限合伙公司 | 混合注射器 |
| WO2015160906A1 (en) | 2014-04-18 | 2015-10-22 | Covidien Lp | Mixing nozzle |
| WO2015185554A2 (en) | 2014-06-03 | 2015-12-10 | Enrique Roche Rebollo | Methods, devices, systems and kits for preparing compositions for care and repair of varicose veins |
| EP2962681A1 (en) * | 2014-07-03 | 2016-01-06 | Swiss VX Venentherapie und Forschung GmbH | Devices and methods for injectable vascular sclerofoams using a carrier made of human blood and uses thereof |
| EP2982444B1 (en) * | 2014-08-05 | 2019-11-13 | Goizper, S. Coop. | Pressure spray device |
| US9687455B2 (en) | 2014-08-14 | 2017-06-27 | John Daniel Dobak | Sodium tetradecyl sulfate formulations for treatment of adipose tissue |
| US9351945B1 (en) * | 2015-02-27 | 2016-05-31 | John Daniel Dobak, III | Reduction of adipose tissue |
| WO2017011668A1 (en) * | 2015-07-14 | 2017-01-19 | Boston Scientific Scimed, Inc. | Gel delivery catheters, systems, and methods |
| US11415019B2 (en) * | 2015-12-11 | 2022-08-16 | General Electric Company | Meta-stable detergent based foam cleaning system and method for gas turbine engines |
| EP3251654A1 (de) * | 2016-05-30 | 2017-12-06 | Chemische Fabrik Kreussler & Co. Gmbh | Nichtionische tenside zur reduktion von fettgewebe |
| GB201612948D0 (en) * | 2016-07-26 | 2016-09-07 | Provensis Ltd | syringe for administering foam |
| GB201612925D0 (en) * | 2016-07-26 | 2016-09-07 | Provensis Ltd | Method and device for generating injectable foam |
| IL248775A0 (en) * | 2016-11-06 | 2017-02-28 | Technion Res & Dev Foundation | Administering drugs to the lung using foam |
| GB201703299D0 (en) * | 2017-03-01 | 2017-04-12 | Triple Line Tech Ltd | Apparatus and method for generating a microfoam |
| CN110612096A (zh) * | 2017-03-27 | 2019-12-24 | 苏州医本生命科技有限公司 | 链式药物结构及其制备装置和储存装置 |
| RU2659632C1 (ru) * | 2017-04-04 | 2018-07-03 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Устройство для вспенивания и введения лекарственного препарата |
| EP3664770B1 (en) * | 2017-08-08 | 2024-12-04 | Tetrous, Inc. | Therapeutic gas infused cosmetic and methods of infusion |
| US10786433B2 (en) * | 2017-09-13 | 2020-09-29 | William J Moore | Buffering agent cartridge |
| JP2019074486A (ja) * | 2017-10-19 | 2019-05-16 | 大陽日酸株式会社 | 二酸化炭素ガス中の窒素ガス分析方法及び装置 |
| EP3758772B1 (en) | 2018-04-06 | 2024-10-09 | Frank Levy | Apparatus for producing an enriched medical suspension |
| US12447263B2 (en) | 2018-04-06 | 2025-10-21 | Frank Levy | Apparatus and method for producing an enriched medical contrast suspension |
| RU2693344C1 (ru) * | 2018-07-05 | 2019-07-02 | Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО МГМСУ имени А.И. Евдокимова Минздрава России) | Способ склеротерапии микропенной артерио-венозных мальформаций челюстно-лицевой области пациента под ультразвуковым контролем |
| ES2910423T3 (es) * | 2018-08-21 | 2022-05-12 | Vascular Barcelona Devices S L | Procedimientos, dispositivos, sistemas y kits para preparar composiciones para el cuidado y reparación de varices |
| US11517527B2 (en) * | 2018-11-05 | 2022-12-06 | Ethicon, Inc. | Systems, devices and methods for making and expressing foam used in medical procedures |
| WO2020231429A1 (en) * | 2019-05-10 | 2020-11-19 | Coll Mazzei Jose Vicente | New use of a milk frother apparatus and a method for the preparation of a therapeutic foam for the treatment of varicose veins and other medical conditions. |
| CN110123757B (zh) * | 2019-05-28 | 2020-09-01 | 山东大学齐鲁医院 | 一种应用于治疗脉管异常的乙醇泡沫硬化剂及制备方法 |
| EP3756705A1 (de) * | 2019-06-27 | 2020-12-30 | Adhesys Medical GmbH | Applikator für einen zwei-komponenten gewebekleber |
| EP4427693B1 (en) * | 2019-09-02 | 2026-04-15 | Mirai Medical Limited | An electroporation apparatus |
| EP3798138A1 (en) * | 2019-09-30 | 2021-03-31 | SCHOTT Schweiz AG | Device and process for stoppering from below |
| CN115066268B (zh) * | 2019-12-03 | 2024-10-29 | 波士顿科学国际有限公司 | 药剂输送装置 |
| US20230070984A1 (en) * | 2020-02-18 | 2023-03-09 | Aviation Works Limited | Oxygen/carbon dioxide compositions for medical uses |
| CN111437504B (zh) * | 2020-04-28 | 2022-02-18 | 山东大学齐鲁医院 | 一种用于产生稳定泡沫的三通阀 |
| WO2022152930A1 (en) * | 2021-01-18 | 2022-07-21 | Bonsens Ab | A swirl nozzle and methods of fabricating the same |
| EP4387761A1 (en) * | 2021-08-19 | 2024-06-26 | Nanortopedi Teknoloji Sanayi Ve Ticaret A.S. | Microfluidic injection device and method for use in cartilage repair |
| US12409271B2 (en) | 2022-04-25 | 2025-09-09 | Frank Levy | Apparatus and method for producing an enriched medical suspension |
| CN115708693B (zh) * | 2022-10-24 | 2024-02-27 | 无忧跳动医疗科技(深圳)有限公司 | 一种全自动发泡装置及方法 |
| US20240149020A1 (en) | 2022-11-04 | 2024-05-09 | Controlled Delivery Systems, Inc. | Catheters for the aspiration controlled delivery of closure agents |
| AU2023371657A1 (en) | 2022-11-04 | 2025-05-15 | Solvein Inc. | Catheters and related methods for aspiration and controlled delivery of closure agents |
| KR102744414B1 (ko) * | 2022-11-15 | 2024-12-19 | 원광대학교산학협력단 | 반응 약물이 충전된 시린지 |
| US20240165294A1 (en) * | 2022-11-23 | 2024-05-23 | Case Western Reserve University | Tunable, stable sclerosing foam for vascular interventions |
| DE102023112792A1 (de) * | 2023-05-15 | 2024-11-21 | Santa Isabel International Foundation | Mikroschaum-Generierungssystem mit Reaktionsbehälter, Kartusche und automatisierten System, Verfahren und Computerprogramm zum Erzeugen eines Mikroschaums |
| PL445663A1 (pl) * | 2023-07-24 | 2025-01-27 | Biotreat Vascular Spółka Z Ograniczoną Odpowiedzialnością | Urządzenie do podawania kleju i zastosowanie tego urządzenia w chirurgii naczyniowej, w szczególności do endowaskularnego podawania kleju |
Family Cites Families (85)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US2630183A (en) * | 1950-01-26 | 1953-03-03 | Foutz Clinton Root | Apparatus for forming and projecting a foam mixture |
| US2724383A (en) * | 1951-06-28 | 1955-11-22 | Compule Corp | Combined mixing container structure and hypodermic syringe for segregated ingredients of hypodermically injectable preparations |
| FR1547768A (fr) | 1967-10-09 | 1968-11-29 | Récipient remplissable à dispositif décompresseur | |
| US3670786A (en) * | 1970-06-02 | 1972-06-20 | American Home Prod | Container filling apparatus |
| FR2105332A5 (es) * | 1970-09-01 | 1972-04-28 | Oreal | |
| US3767085A (en) * | 1971-08-02 | 1973-10-23 | J Cannon | Mixing syringe |
| US3763900A (en) * | 1971-09-10 | 1973-10-09 | Milchwirlschaftliche Forschung | Process for sterilizing and filling aerosol containers |
| US3955720A (en) * | 1972-11-15 | 1976-05-11 | Malone David C | Low pressure dispensing apparatus with air pump |
| US3970219A (en) * | 1975-03-03 | 1976-07-20 | Spitzer Joseph G | Aerosol containers for foaming and delivering aerosols and process |
| US4019657A (en) * | 1975-03-03 | 1977-04-26 | Spitzer Joseph G | Aerosol containers for foaming and delivering aerosols |
| US4019357A (en) * | 1975-11-10 | 1977-04-26 | Nippon Concrete Industries Co. Ltd. | Method of making reinforcements for concrete |
| US4040420A (en) * | 1976-04-22 | 1977-08-09 | General Dynamics | Packaging and dispensing kit |
| US4127131A (en) * | 1977-06-20 | 1978-11-28 | Johnson & Johnson | Hub assembly for use in the filtration of fluids and method of making the same |
| FR2445018A1 (fr) | 1978-12-22 | 1980-07-18 | Anvar | Tube multiplicateur d'electrons a champ magnetique axial |
| US4276885A (en) * | 1979-05-04 | 1981-07-07 | Rasor Associates, Inc | Ultrasonic image enhancement |
| US4292975A (en) * | 1979-08-20 | 1981-10-06 | Carolyn Champion | Brassiere |
| US4358107A (en) * | 1980-02-19 | 1982-11-09 | Nissen George P | Weight lifting machine |
| US4292972A (en) * | 1980-07-09 | 1981-10-06 | E. R. Squibb & Sons, Inc. | Lyophilized hydrocolloio foam |
| DE3050812C2 (de) | 1980-12-23 | 1985-03-21 | B. Braun Melsungen Ag, 3508 Melsungen | Katheterisierungsvorrichtung |
| DE3048744A1 (de) | 1980-12-23 | 1982-07-22 | Metzeler Kautschuk GmbH, 8000 München | Anordnung zum abdichten einer mehrscheibenverglasung |
| DE3048774C2 (de) | 1980-12-23 | 1984-03-08 | B. Braun Melsungen Ag, 3508 Melsungen | Katheterisierungsvorrichtung |
| DE3141641A1 (de) * | 1981-10-16 | 1983-04-28 | Schering Ag, 1000 Berlin Und 4619 Bergkamen | Ultraschall-kontrastmittel und dessen herstellung |
| US4718433A (en) * | 1983-01-27 | 1988-01-12 | Feinstein Steven B | Contrast agents for ultrasonic imaging |
| US4538920A (en) * | 1983-03-03 | 1985-09-03 | Minnesota Mining And Manufacturing Company | Static mixing device |
| US5141738A (en) * | 1983-04-15 | 1992-08-25 | Schering Aktiengesellschaft | Ultrasonic contrast medium comprising gas bubbles and solid lipophilic surfactant-containing microparticles and use thereof |
| DE3313947A1 (de) | 1983-04-15 | 1984-10-18 | Schering AG, 1000 Berlin und 4709 Bergkamen | Mikropartikel und gasblaeschen enthaltende ultraschall-kontrastmittel |
| DE3324754A1 (de) | 1983-07-06 | 1985-01-17 | Schering AG, 1000 Berlin und 4709 Bergkamen | Ultraschallkontrastmittel sowie dessen herstellung |
| DE3417182A1 (de) | 1984-05-09 | 1985-11-14 | Gerald Dr. 8000 München Hauer | Spritzen-set |
| US4719433A (en) * | 1984-09-14 | 1988-01-12 | Siemens Aktiengesellschaft | Attenuation bead for the suppression of interference radiation |
| GB8522813D0 (en) | 1985-09-16 | 1985-10-23 | Unilever Plc | Package |
| DE8704600U1 (de) | 1987-03-27 | 1987-10-15 | Cocon Kunststoffen B.V., Arkel | Vorrichtung zur gebrauchsfertigen Zubereitung der beiden Komponenten eines zweikomponentigen Montageschaums, insbesondere Polyurethanschaums |
| IE61591B1 (en) | 1987-12-29 | 1994-11-16 | Molecular Biosystems Inc | Concentrated stabilized microbubble-type ultrasonic imaging agent and method of production |
| US5425366A (en) * | 1988-02-05 | 1995-06-20 | Schering Aktiengesellschaft | Ultrasonic contrast agents for color Doppler imaging |
| KR0133132B1 (ko) | 1988-02-05 | 1998-04-17 | 쉐링 아게, 베를린 운트 베르크카멘 | 초음파 조영제, 이의 제법 및 이의 진단제로서의 용도 |
| CH676456A5 (es) * | 1988-04-05 | 1991-01-31 | Supermatic Kunststoff Ag | |
| US4957656A (en) | 1988-09-14 | 1990-09-18 | Molecular Biosystems, Inc. | Continuous sonication method for preparing protein encapsulated microbubbles |
| FR2641202B1 (fr) * | 1989-01-03 | 1991-03-15 | Poizot Francis | Dispositif de production de mousse |
| US5542935A (en) * | 1989-12-22 | 1996-08-06 | Imarx Pharmaceutical Corp. | Therapeutic delivery systems related applications |
| US5733572A (en) * | 1989-12-22 | 1998-03-31 | Imarx Pharmaceutical Corp. | Gas and gaseous precursor filled microspheres as topical and subcutaneous delivery vehicles |
| US5084011A (en) * | 1990-01-25 | 1992-01-28 | Grady Daniel J | Method for oxygen therapy using hyperbarically oxygenated liquid |
| US5556610A (en) * | 1992-01-24 | 1996-09-17 | Bracco Research S.A. | Gas mixtures useful as ultrasound contrast media, contrast agents containing the media and method |
| US5064103A (en) * | 1990-05-23 | 1991-11-12 | Rjs Industries, Inc. | Foam dispenser having a plurality of sieves |
| JP2910784B2 (ja) * | 1990-09-14 | 1999-06-23 | 大和製罐株式会社 | エアゾール缶詰の製造方法 |
| EP0504340B1 (en) | 1990-10-05 | 1995-06-21 | BRACCO International B.V. | Method for the preparation of stable suspensions of hollow gas-filled microspheres suitable for ultrasonic echography |
| US5425580A (en) * | 1990-12-28 | 1995-06-20 | Byk Gulden Lomberg Chemische Fabrik Gmbh | Dosage form for micro-bubble echo contrast agents |
| HU216376B (hu) | 1990-12-28 | 1999-06-28 | Byk Gulden Lomberg Chemische Fabrik Gmbh | Adagokészülék mikrobuborék visszhangkontrasztanyagok számára |
| DE4100470A1 (de) | 1991-01-09 | 1992-07-16 | Byk Gulden Lomberg Chem Fab | Echokontrastmittel |
| FR2672038B1 (fr) | 1991-01-25 | 1993-05-14 | Oreal | Dispositif distributeur de mousse a partir d'un recipient pressurise. |
| HU218018B (hu) | 1991-09-17 | 2000-05-28 | Sonus Pharmaceuticals Inc. | Gázos ultrahang-kontrasztanyag és eljárás ultrahang kontrasztanyaghoz megfelelő gázok kiválasztására |
| DE4301820C2 (de) * | 1993-01-23 | 1996-04-25 | Henkel Kgaa | Schäumende Emulsionen, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung |
| FR2702196B1 (fr) * | 1993-03-05 | 1995-05-12 | Oreal | Distributeur de mousse sous pression. |
| NL9300517A (nl) | 1993-03-23 | 1994-10-17 | Airspray Int Bv | Schuimvormingssamenstel, een daarvoor geschikte spuitkop en een spuitbus die een dergelijk samenstel omvat. |
| US5695740A (en) | 1993-05-12 | 1997-12-09 | The Board Of Regents Of The University Of Nebraska | Perfluorocarbon ultrasound contrast agent comprising microbubbles containing a filmogenic protein and a saccharide |
| ES2068151B1 (es) * | 1993-06-23 | 1995-11-16 | Cabrera Garrido Juan | Microespuma inyectable para esclerosis. |
| US5798091A (en) * | 1993-07-30 | 1998-08-25 | Alliance Pharmaceutical Corp. | Stabilized gas emulsion containing phospholipid for ultrasound contrast enhancement |
| EP0711179B2 (en) | 1993-07-30 | 2010-09-01 | IMCOR Pharmaceutical Co. | Stabilized microbubble compositions for ultrasound |
| US5454805A (en) * | 1994-03-14 | 1995-10-03 | Brony; Seth K. | Medicine vial link for needleless syringes |
| DE4432993C1 (de) | 1994-09-16 | 1996-06-20 | Byk Gulden Lomberg Chem Fab | Mischeinrichtung für mittels einer Spritze zu verabreichende Mittel |
| US5623085A (en) * | 1994-09-23 | 1997-04-22 | Rohm And Haas Company | Method for reducing microfoam in a spray-applied waterborne composition |
| WO1996011162A1 (en) * | 1994-10-11 | 1996-04-18 | Monson James A | Dispensing apparatus for foaming compositions and method |
| TW319763B (es) | 1995-02-01 | 1997-11-11 | Epix Medical Inc | |
| GB9503119D0 (en) | 1995-02-17 | 1995-04-05 | Durand Ltd | Medication and apparatus and method of applying medication |
| NL1001366C2 (nl) | 1995-10-06 | 1997-04-08 | Airspray Int Bv | Inrichting voor het afgeven van een luchtvloeistofmengsel, in het bijzonder schuim en daarvoor bestemde bedieningseenheid. |
| JP2751899B2 (ja) | 1995-12-15 | 1998-05-18 | ソニー株式会社 | 光学ピックアップ装置 |
| JPH1081895A (ja) | 1996-09-05 | 1998-03-31 | Lion Corp | 漂白洗剤製品 |
| GB9823029D0 (en) | 1998-10-22 | 1998-12-16 | Giltech Ltd | Packaging system |
| FR2775433A1 (fr) | 1998-02-27 | 1999-09-03 | Alain Monfreux | Dispositif pour la production de mousse dans un corps de seringue |
| FR2775436A1 (fr) | 1998-02-27 | 1999-09-03 | Alain Monfreux | Dispositif pour l'administration parenterale d'une composition sous forme d'une mousse |
| FR2784296B1 (fr) * | 1998-09-18 | 2001-01-05 | Imedex Biomateriaux | Dispositif pour la formulation et la delivrance d'un melange, notamment pour l'application chirurgicale de ce melange |
| DE29819174U1 (de) | 1998-10-28 | 1999-01-28 | Kurt Vogelsang GmbH, 74855 Haßmersheim | Schutzkappe für eine Zweikomponenten-Lack-Sprühdose |
| ES1043183Y (es) | 1999-05-03 | 2000-04-01 | Mingo Fco Javier Garcia | Dispositivo para producir esclerosante espumado. |
| GB9912356D0 (en) | 1999-05-26 | 1999-07-28 | Btg Int Ltd | Generation of microfoam |
| NL1012419C2 (nl) | 1999-06-23 | 2000-12-28 | Airspray Nv | Spuitbus voor het afgeven van een vloeistof. |
| GB0028692D0 (en) * | 2000-11-24 | 2001-01-10 | Btg Int Ltd | Generation of therapeutic microform |
| US6561237B1 (en) * | 2000-11-28 | 2003-05-13 | Brasscorp Ltd. | Apparatus and method for urging fluid into a pressurized system |
| GB2369996B (en) | 2000-12-18 | 2004-06-23 | S T D Pharmaceutical Products | Method and apparatus for producing an injectable foam |
| US6592251B2 (en) | 2001-01-26 | 2003-07-15 | Howmedica Osteonics Corp. | Cement mixing and dispensing device |
| DK1424067T3 (da) | 2001-08-08 | 2010-08-30 | Dominguez Maria Antonia Garcia-Olmedo | Injicerbart skum og hidtil ukendte farmaceutiske applikationer deraf |
| GB0212047D0 (en) * | 2002-05-24 | 2002-07-03 | Btg Int Ltd | Generation of therapeutic microfoam |
| DE20218493U1 (de) | 2002-11-28 | 2004-04-08 | Chemische Fabrik Kreussler & Co. Gmbh | Vorrichtung zur Erzeugung von medizinischem Schaum |
| GB0300586D0 (en) * | 2003-01-10 | 2003-02-12 | Btg Int Ltd | Therapeutic microfoam |
| JP4333186B2 (ja) * | 2003-04-07 | 2009-09-16 | ソニー株式会社 | 通信システム及び通信照明装置 |
| US8048439B2 (en) * | 2003-11-17 | 2011-11-01 | Btg International Ltd. | Therapeutic foam |
| EP1684718A1 (en) * | 2003-11-17 | 2006-08-02 | Btg International Limited | Methods of preparing a foam comprising a sclerosing agent |
| GB0509819D0 (en) * | 2005-05-13 | 2005-06-22 | Btg Int Ltd | Therapeutic foam |
-
2004
- 2004-11-17 EP EP04798543A patent/EP1684718A1/en not_active Withdrawn
- 2004-11-17 PL PL04798566T patent/PL1694292T5/pl unknown
- 2004-11-17 DE DE602004024925T patent/DE602004024925D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 CZ CZ20060315A patent/CZ2006315A3/cs unknown
- 2004-11-17 BR BRPI0416611A patent/BRPI0416611B8/pt not_active IP Right Cessation
- 2004-11-17 CA CA2546232A patent/CA2546232C/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 IN IN7569DEN2014 patent/IN2014DN07569A/en unknown
- 2004-11-17 JP JP2006540581A patent/JP2007511590A/ja active Pending
- 2004-11-17 KR KR1020067012047A patent/KR20070005551A/ko not_active Withdrawn
- 2004-11-17 JP JP2006540586A patent/JP4988353B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2004-11-17 CA CA002546108A patent/CA2546108A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 AU AU2004290963A patent/AU2004290963A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 CA CA002546076A patent/CA2546076A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 DE DE602004022190T patent/DE602004022190D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 KR KR1020067012051A patent/KR20060130074A/ko not_active Withdrawn
- 2004-11-17 JP JP2006540585A patent/JP2007511591A/ja active Pending
- 2004-11-17 MX MXPA06005526A patent/MXPA06005526A/es active IP Right Grant
- 2004-11-17 AU AU2004290965A patent/AU2004290965B2/en not_active Expired
- 2004-11-17 US US10/522,529 patent/US20060280690A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 JP JP2006540579A patent/JP2007511312A/ja active Pending
- 2004-11-17 EP EP04798564.3A patent/EP1701701B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 KR KR1020067012055A patent/KR101172081B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 2004-11-17 WO PCT/GB2004/004846 patent/WO2005048984A1/en not_active Ceased
- 2004-11-17 DK DK04798564.3T patent/DK1701701T3/da active
- 2004-11-17 KR KR1020067012049A patent/KR20060127001A/ko not_active Withdrawn
- 2004-11-17 AU AU2004290957A patent/AU2004290957A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 ES ES04798564T patent/ES2339117T5/es not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 ES ES04798566.8T patent/ES2330341T5/es not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 NZ NZ547265A patent/NZ547265A/en not_active IP Right Cessation
- 2004-11-17 SI SI200431374T patent/SI1701701T1/sl unknown
- 2004-11-17 SI SI200431254T patent/SI1694292T1/sl unknown
- 2004-11-17 EP EP04798566.8A patent/EP1694292B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 CN CN2004800339138A patent/CN1960705B/zh not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 US US10/522,525 patent/US20060062736A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 WO PCT/GB2004/004824 patent/WO2005048983A1/en not_active Ceased
- 2004-11-17 US US10/522,527 patent/US7731986B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 PT PT04798566T patent/PT1694292E/pt unknown
- 2004-11-17 AT AT04798564T patent/ATE453379T2/de active
- 2004-11-17 DK DK04798566.8T patent/DK1694292T4/en active
- 2004-11-17 WO PCT/GB2004/004831 patent/WO2005048976A2/en not_active Ceased
- 2004-11-17 US US10/522,528 patent/US7763269B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 EA EA200600985A patent/EA009362B1/ru not_active IP Right Cessation
- 2004-11-17 EP EP04798550.2A patent/EP1791519B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-11-17 CA CA002546227A patent/CA2546227A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 AU AU2004290959A patent/AU2004290959A1/en not_active Abandoned
- 2004-11-17 WO PCT/GB2004/004848 patent/WO2005048977A2/en not_active Ceased
- 2004-11-17 OA OA1200600161A patent/OA13287A/en unknown
- 2004-11-17 PT PT04798564T patent/PT1701701E/pt unknown
- 2004-11-17 PL PL380484A patent/PL223344B1/pl unknown
- 2004-11-17 PL PL04798564T patent/PL1701701T5/pl unknown
- 2004-11-17 SI SI200431254A patent/SI1694292T2/sl unknown
-
2006
- 2006-05-16 IL IL175672A patent/IL175672A/en active IP Right Grant
- 2006-05-16 EC EC2006006574A patent/ECSP066574A/es unknown
- 2006-05-30 MA MA29064A patent/MA31041B1/fr unknown
- 2006-06-19 NO NO20062866A patent/NO20062866L/no not_active Application Discontinuation
-
2009
- 2009-10-22 CY CY20091101097T patent/CY1110513T1/el unknown
-
2010
- 2010-03-29 CY CY20101100292T patent/CY1110621T1/el unknown
- 2010-04-23 US US12/765,980 patent/US8323677B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2012
- 2012-11-02 US US13/667,296 patent/US8734833B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2014
- 2014-04-09 US US14/248,715 patent/US20140221501A1/en not_active Abandoned
-
2015
- 2015-05-08 US US14/708,096 patent/US10472100B2/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2339117T5 (es) | Procedimientos de preparación de una espuma que comprende un agente esclerosante | |
| ES2480301T3 (es) | Microespuma terapéutica | |
| ES2406945T3 (es) | Dispositivo de transferencia de líquido con recipiente de dispensación médico | |
| FI81008B (fi) | Flytande blandning foer mottagning och stabilisering av gasbubblor foer anvaendning som kontrastmedel vid ultraljuddiagnostik. | |
| ES2281465T3 (es) | Generacion de microespuma terapeutica. | |
| FI81264B (fi) | Mikropartiklar och gasblaosor innehaollande ultraljudkontrastmedel. | |
| WO1994000180A1 (en) | Methods and devices for relaxing smooth muscle contractions | |
| US20070003489A1 (en) | Therapeutic foam | |
| US20080274060A1 (en) | Therapeutic Foam | |
| ES2307184T3 (es) | Uso en el campo medico, de diagnostico y flebologico de una mezcla de gases esteriles y fisiologicamente aceptables. | |
| KR102808586B1 (ko) | 중탄산 이온을 함유하는 심근 보호액의 수용체, 및 그 제조방법 | |
| US20200237998A1 (en) | System and method to provide a contrast agent | |
| Casey et al. | Microbubble production in an in vitro cardiopulmonary bypass circuit ventilated with xenon | |
| JPH02152924A (ja) | 注射剤組成物 | |
| HK40069437B (en) | Reservoir assembly for providing cardioplegic solution containing bicarbonate ion, and method for manufacturing the same | |
| HK1088529A1 (zh) | 无菌组合制剂 |