ES2927567T3 - Anticuerpos anti-PD1 y su uso como productos terapéuticos y de diagnóstico - Google Patents

Abstract

Se proporcionan anticuerpos que se unen específicamente a la Muerte Programada-1 (PD1, Pdcd-1 o CD279) e inhiben la señalización y las actividades celulares mediadas por PD1 en las células inmunitarias, los anticuerpos se unen a un conjunto de residuos de aminoácidos necesarios para su unión a ligandos, y usos de estos anticuerpos para tratar o diagnosticar cáncer, enfermedades infecciosas u otros trastornos patológicos modulados por funciones mediadas por PD1. (Traducción automática con Google Translate, sin valor legal)

Description

DESCRIPCIÓN

Anticuerpos anti-PD1 y su uso como productos terapéuticos y de diagnóstico

Introducción

La muerte programada 1 (PD-1, también denominada CD279) es una proteína receptora de 55 KD relacionada con la familia de receptores coestimulantes/inhibidores de CD28/CTLA4 (Blank et al., 2005 Cancer Immunol Immunother 54:307-314). Los genes y ADNc que codifican PD-1 se clonaron y caracterizaron en ratón y ser humano (Ishida et al., 1992 EMBO J 11:3887-3395; Shinohara et al., 1994 Genomics 23:704-706). La PD-1 de longitud completa contiene 288 restos de aminoácidos (número de referencia del NCBI: NP_005009). Su dominio extracelular consiste en los restos de aminoácidos 1-167 y la cola C terminal citoplasmática comprende los restos 191-288, que tiene dos motivos reguladores inmunitarios hipotéticos, un motivo inhibidor basado en tirosina inmunorreceptora (ITIM; Vivier et al., 1997 Immunol Today 18:286-291) y un motivo de cambio de tirosina inmunorreceptora (ITSM; Chemnitz et al., 2004 J Immunol 173:945-954).

Hasta ahora, se han identificado dos ligandos relacionados con la secuencia, PD-L1 (B7-H1) y PD-L2 (B7-DC), que interaccionan específicamente con PD-1, induciendo transducción de señal intracelular que inhibe la activación de linfocitos T mediada por CD3 y CD28 (Riley, 2009 Immunol Rev 229: 114-125), que, a su vez, atenúa actividades de linfocitos T, por ejemplo, la reducción de la proliferación celular, la secreción de IL-2 e IFN-^y, así como la secreción de otros factores de crecimiento y citocinas.

La expresión de PD-1 se ha encontrado frecuentemente en linfocitos inmunitarios tales como linfocitos T, linfocitos B, monocitos y linfocitos citolíticos naturales (NK). Se ha expresado con poca frecuencia en otros tejidos humanos, tales como músculo, epitelio, tejidos neuronales, etc. Asimismo, el alto nivel de expresión de PD-1 se asocia a frecuencia con la activación de células inmunitarias. Por ejemplo, cuando la línea de linfocitos T humanos, Jurkat, se activó mediante fitohemaglutinina (PHA) o éster forbólico (12-O-tetradecanoilforbol-13-acetato o TPA), la expresión de PD-1 se reguló positivamente de manera visible en Transferencia de Western (Vibharka et al., 1997 Exp Cell Res 232:25-28). Se observó el mismo fenómeno en linfocitos T y B murinos estimulados y en linfocitos T CD4+ humanos primarios tras la estimulación mediante anticuerpo anti CD3 (Agata et al., 1996 Int Immunol 8:765-772; Bennett et al., 2003 J Immunol 170:711-118). El aumento de la expresión de PD-1 después de la estimulación de linfocitos T efectores redirige los linfocitos T efectores activados hacia el agotamiento y reducción de las actividades inmunitarias. Por lo tanto, la señal inhibidora mediada por PD-1 desempeña un papel importante en la tolerancia inmunitaria (Bour-Jordan et al., 2011 Immunol Rev 241:180-205).

Se ha informado de aumento de la expresión de PD-1 en linfocitos de infiltración en tumores (TIL) y expresión de ligando de PD-1 en células tumorales en variedades de cánceres implicadas en diferentes tipos de tejidos y órganos tales como pulmón (Konishi et al., 2004 Clin Cancer Res 10:5094-5100), hígado (Shi et al., 2008 Int J Cancer 128:887-896; Gao et al., 2009 Clin Cancer Res 15:971- 979), estómago (Wu et al., 2006 Acta Histochem 108:19-24), riñón (Thompson et al., 2004 Proc Natl Acad Sci 101:17174-17179; Thompson et al., 2007 Clin Cancer Res 13:1757-1761), mama (Ghebeh et al., 2006 Neoplasia 8:190-198), ovario (Hamanishi et al. 2007 Proc Natl Acad Sci 104:3360-3365), páncreas (Nomi et al., 2007 Cancer Res 13:2151-2157), melanocitos (Hino et al., 2010 Cancer 116:1757-1766) y esófago (Ohigashi et al., 2005 Clin Cancer Res 11:2947-2953). Con más frecuencia, el aumento de la expresión de PD-1 y PD-L1 en esos cánceres está asociado a mal pronóstico del resultado de supervivencia del paciente. El uso de ratones transgénicos con inactivación del gen de PD-1 que inhibía el crecimiento de células cancerosas de xenoinjerto dilucidó adicionalmente la importancia de la señalización de PD-1 en la modulación del sistema inmunitario para erradicación o tolerancia del cáncer (Zhang et al., 2009 Blood 114:1545-1552).

No solamente la regulación positiva de la señalización de PD-1 conduce a tolerancia inmunitaria al crecimiento canceroso, sino también a la infección y expansión vírica en seres humanos. Los virus de infección de hígado prevalentes, VHB y VHC, inducen la sobreexpresión de ligandos de PD-1 en hepatocitos y activan la señalización de PD-1 en linfocitos T efectores, lo que da como resultado agotamiento de linfocitos T y tolerancia a la infección vírica (Boni et al., 2007 J Virol 81:4215-4225; Golden-Mason et al., 2008 J Immunol 180:3637-3641). De manera análoga, la infección por VIH evita con frecuencia el sistema inmunitario humano por mecanismos similares. La modulación terapéutica de la señalización de PD-1 por moléculas antagonistas puede invertir la tolerancia de las células inmunitarias y reactivarlas para erradicar el cáncer y la infección vírica crónica (Blank et al., 2005 Cancer Immunol Immunother 54:307-314; Okazaki et al., 2007 Int Immunol 19:813-824). Los documentos WO2006/121168 y WO2008/156712 desvelan anticuerpos anti PD-1 humana de alta afinidad, relacionados con Nivolumab y Pembrolizumab, respectivamente. La invención se define por las reivindicaciones y cualquier otro aspecto o realización expuestos en el presente documento que no quede dentro del alcance de las reivindicaciones son solamente informativos.

Sumario de la invención

La invención proporciona métodos y composiciones para inhibición inmunitaria de PD-1. La invención proporciona un anticuerpo como se define en las reivindicaciones. La invención también proporciona un anticuerpo para su uso en terapia, como se define en las reivindicaciones. Las referencias en la presente descripción a métodos de tratamiento mediante terapia que comprenden la administración del anticuerpo de la invención deben interpretarse como referencias al anticuerpo de la invención para su uso en los métodos.

En un aspecto, la invención proporciona un anticuerpo que comprende un dominio de unión a antígeno que se une a PD-1 humana, y comprende una región variable de cadena pesada (Vh) que comprende el SEQ ID NO: 24, y una región variable de cadena ligera (Vk) que comprende el SEQ ID NO: 26, en donde el anticuerpo es monoespecífico. El anticuerpo de la invención comprende una región variable de cadena pesada (Vh) y una región variable de cadena ligera (Vk) que comprende:

317-4B6 CDR-H1, CDR-H2 y CDR-H3 (SEQ ID NOS: 31-33);

CDR-L1, CDR-L2 y CDR-L3 (SEQ ID NOS: 34-36).

Según la invención, el dominio comprende una región variable de cadena pesada (Vh) y una región variable de cadena ligera (Vk) que comprende 317-4B6 (las SEQ ID NO: 24 y 26).

En realizaciones particulares, el dominio se une específicamente con restos de PD1: (a) K45 e I93 (numeración de AA basada en PNAS 2008, 105:10483; equivalente a K58 e I106 en el SEQ ID NO 2).

En realizaciones particulares, el dominio induce la liberación de IL-2 en células HuT78/PD-1 cocultivadas con células HEK293/OS8/PD-L1 o con células HEK293/OS8/PD-L2 y/o inhibe la secreción de IL-2 en células HuT78/P3Z cocultivadas con células HEK293/PD-L1 o con células HEK293/PD-L2.

La invención también proporciona anticuerpos que comprenden un dominio de unión a PD-1 objeto como se define en las reivindicaciones y un dominio efector o constante de cadena pesada de anticuerpo IgG4 que comprende cualquiera de las SEQ iD NO: 83-88, en particular las SEQ ID NO 87 u 88.

La invención proporciona un anticuerpo que comprende un dominio de unión a antígeno de anticuerpo que se une a PD-1 humana y comprende una región variable de cadena pesada (Vh) que comprende el SEQ iD NO: 24, y una región variable de cadena ligera (Vk) que comprende el SEQ ID NO: 26, para su eso en terapia, que abarca métodos para usar los dominios objeto administrando el dominio a una persona que se ha determinado que tiene cáncer o una infección vírica o que necesite de otro modo antagonismo de PD-1. En una realización, el uso es para tratar un cáncer o una infección vírica en un ser humano.

Breve descripción de los dibujos

Figura 1. Presentación esquemática de PD-1/Fc (parte superior) y PD-1/His (parte inferior). ECD: dominio extracelular. L: conector. H: marcador de His. Fc: fragmento y4Fc de IgG4 humano. N: extremo N. C: extremo C. Figura 2. Curvas de reacción dependiente de dosis de mAb murinos que se unen con PD-1 humana en ELISA. Los mAb murinos se indicaron en la esquina superior izquierda de cada figura. Los mAb 317 y 517 comparten un alto grado de homología con la región variable de cadenas pesadas y ligeras. La fuerza de señal de unión se indicó por lecturas de DO⁴⁵⁰ directas. El antígeno, PD-1/His, se aplicó a concentraciones crecientes de hasta 70 nanogramos por pocillo en un volumen de 50 microlitros. El método se ha descrito en el Ejemplo 1.

Figura 3. Curva de reacción dependiente de dosis de mAb murinos que se unen con PD-1 humana expresada en células vivas mediante análisis de FACS. Se indicaron en cada panel los códigos de los anticuerpos murinos y CE⁵⁰. IFM significa intensidad de fluorescencia media. Se suspendieron células HuT78/PD-1 en una placa de 96 pocillos a 5 X 10⁴ células por pocillo para FACS. La unión de mAb de PD-1 con la diana de superficie celular y detección de FACS se realizaron como se ha descrito en el ejemplo 1.

Figura 4. Presentación esquemática de los sistemas de cocultivo celular usados para ensayar las actividades funcionales de mAb anti PD-1. Los linfocitos T (CD4⁺ o CD8⁺ ) representan células HuT78/PD-1 o linfocitos T primarios en PBMC. TCR: receptor de linfocitos T. N: núcleo. C: citoplasma.

Figura 5. Curva de reacción dependiente de dosis de secreción de IL-2 inducida por mAb murino en células HuT78/PD-1 cocultivadas con células HEK293/OS8/PD-L1. Valor de referencia: liberación de IL-2 promedio inducida por mlgG a todas las concentraciones probadas. Línea superior: mayor liberación de IL-2 basada en el cálculo de regresión mediante software Prizm.

Figura 6. (A) Histogramas que muestran la secreción de IFN-^y inducida por mAb anti PD-1 en PBMC (donante 19) cocultivadas con la línea celular HEK293/OS8/PD-L1. (B) Histogramas que muestran la secreción de IFN-y inducida por mAb anti PD-1 en PBMC (donante 20) cocultivadas con la línea celular HEK293/OS8/PD-L1.

Figura 7. (A) y (B) Actividades de ADCC de mAb anti PD-1 mediante cocultivo de células efectoras (NK92MI/PD-1) y células diana (HuT78/PD-1). Las medias se calcularon a partir de dos puntos de datos de los experimentos representativos. Los mAb se añadieron a la concentración de 10 pg/ml. Experimento realizado como se describe en el ejemplo 9.

Figura 8. Mapeo de los epítopos de unión de mAb anti PD-1 mediante ELISA (panel superior) y transferencia de Western (panel inferior). Se usaron medios acondicionados que contenían PD-1 TS o Mt para evaluar la actividad de unión mediante ELISA y transferencia de Western. ** indica los restos de AA para los que la actividad de unión de mAb se redujo a 25-50 % de PD-1 TS. *** indica los restos de AA para los que la actividad de unión de mAb se redujo por debajo de 25 % de PD-1 TS.

Figura 9. Liberación de IFN-y inducida mediante mAb anti PD-1 humanizados en PBMC humanas primarias de diferentes donantes sanos, que se cocultivaron con células HEK293/OS8/PD-L1.

Figura 10. Citotoxicidad de células NK92MI/PD-1 potenciada por mAb anti PD-1 humanizados, hu317 (A) y hu326 (B). Las células de cáncer de pulmón diana, SK-MES-1/PD-L1, se cocultivaron con las células efectoras a la relación (T con respecto a E) de 1 a 2 y se ensayaron como se describe en el ejemplo 12.

Figura 11. Curvas de crecimiento tumoral individual en tres grupos de tratamiento, vehículo (PBS), IgG humano (hulgG) y mAb anti PD-1 (hu317-1/IgG4mt2). Cada curva representa una ruta de crecimiento tumoral, con los ratones portadores de tumores codificados por números indicados a la derecha de cada panel. Se sembraron células Hep3B/OS8/PD-L1 (establecidas a partir de la línea de carcinoma hepatocelular Hep3B) el día 1, se implantaron PBMC el día 15 y se inyectaron tres dosis de hu317-1/IgG4mt2 el día 18, 28 y 38, respectivamente. Los métodos se describen en el ejemplo 12.

Descripción de realizaciones particulares de la invención

PD-1 inicia la señalización inhibidora en células inmunitarias cuando interacciona con sus ligandos, PD-L1 o PD-L2. En los casos de crecimiento de cáncer e infección vírica, la activación de la señalización de PD-1 promueve la tolerancia inmunitaria, lo que conduce a que los cánceres o las células infectadas por virus escapen de la vigilancia inmunitaria y a metástasis de cáncer o aumento de la carga vírica. La inhibición de la señalización celular mediada por PD-1 mediante agentes terapéuticos puede activar células inmunitarias incluyendo linfocitos T, linfocitos B y linfocitos NK, y por lo tanto potenciar las funciones celulares inmunitarias de inhibición del crecimiento de células cancerosas o infección vírica, y restaurar la vigilancia inmunitaria y la función de memoria inmunitaria para tratar dichas enfermedades humanas.

La invención proporciona anticuerpos cuyas funciones son antagónicas a la señalización celular inducida por ligando y mediada por PD-1 en células inmunitarias. Se humanizaron anticuerpos anti PD-1 murinos hasta un alto grado de similitud con anticuerpos humanos en las regiones marco conservadas. Los anticuerpos completos realizados en el formato de variante de IgG4 humana modificada tienen un conjunto único de características en los aspectos de funciones efectoras y propiedades fisicoquímicas. Los anticuerpos anti PD-1 desvelados son adecuados para usos terapéuticos en el tratamiento del cáncer, controlando las infecciones víricas y otras enfermedades humanas que están implicadas de manera mecánica en la tolerancia inmunitaria agravada.

Definiciones

A menos que el contexto indique otra cosa, el término "anticuerpo" se usa en su sentido más amplio y abarca específicamente anticuerpos (incluyendo anticuerpos monoclonales de longitud completa) y fragmentos de anticuerpos siempre que reconozcan PD-1. Una molécula de anticuerpo es habitualmente monoespecífica, pero también puede describirse como idioespecífica, heteroespecífica o poliespecífica. Las moléculas de anticuerpos se unen por medio de sitios de unión específicos con determinantes antigénicos específicos o epítopos en antígenos. Los "fragmentos de anticuerpos" comprenden una parte de un anticuerpo de longitud completa, en general la región de unión a antígeno o variable de la misma. Los ejemplos de fragmentos de anticuerpo incluyen fragmentos Fab, Fab', F(ab').sub.2 y Fv; diacuerpos; anticuerpos lineales; moléculas de anticuerpos monocatenarios; y anticuerpos multiespecíficos formados a partir de fragmentos de anticuerpo.

Pueden obtenerse anticuerpos monoclonales (mAb) mediante métodos conocidos por los expertos en la materia. Véase, por ejemplo, Kohler et al (1975); Patente de los Estados Unidos n.° 4.376.110; Ausubel et al (1987-1999); Harlow et a/ (1988); y Colligan et al (1993). Los mAb de la invención pueden ser de cualquier clase de inmunoglobulina incluyendo IgG, IgM, IgE, IgA y cualquier subclase de las mismas. Un hibridoma que produce un mAb puede cultivarse in vitro o in vivo. Se pueden obtener altos títulos de mAb en producción in vivo cuando se inyecten células de los hibridomas individuales por vía intraperitoneal en ratones, tales como ratones Balb/c sensibilizados con pristina para producir líquido ascítico que contiene altas concentraciones de los mAb deseados. Se pueden purificar mAb de isotipo IgM o IgG a partir de dicho líquido ascítico o de sobrenadantes de cultivo, usando métodos de cromatografía en columna bien conocidos por los expertos en la materia.

Un "polinucleótido aislado" se refiere a un segmento o fragmento polinucleotídico que se ha separado de secuencias que lo flanquean en un estado natural, p. ej., un fragmento de ^a Dⁿ que se ha retirado de las secuencias que están normalmente adyacentes al fragmento, p. ej., las secuencias adyacentes al fragmento en un genoma en el que aparece de manera natural. La expresión incluye, por lo tanto, por ejemplo, un ADN recombinante que se incorpora en un vector, en un plásmido de replicación autónoma o virus, o en el ^a Dⁿ genómico de un procariota o eucariota, o que existe como molécula separada (p. ej., como ADNc o un fragmento genómico o de ADNc producido mediante PCR o digestión con enzimas de restricción) independiente de otras secuencias. También incluye un ADN recombinante, que es parte de un gen híbrido que codifica una secuencia polipeptídica adicional.

Una "construcción" significa cualquier molécula polinucleotídica recombinante tal como plásmido, cósmido, virus, molécula polinucleotídica de replicación autónoma, fago o molécula polinucleotídica de ADN o ARN mono o bicatenaria lineal o circular, procedente de cualquier fuente, con capacidad de integración genómica o replicación autónoma, que comprende una molécula polinucleotídica donde se han unido una o más moléculas polinucleotídicas de una manera funcionalmente operativa, es decir unidas operativamente. Una construcción recombinante comprenderá normalmente los polinucleótidos de la invención unidos operativamente con secuencias reguladoras de inicio de la transcripción que dirigirán la transcripción del polinucleótido en la célula hospedadora prevista. Pueden emplearse promotores tanto heterólogos como no heterólogos (es decir, endógenos) para dirigir la expresión de los ácidos nucleicos de la invención.

Un "vector" se refiere a cualquier construcción polinucleotídica recombinante que pueda usarse para el fin de transformación, es decir la introducción de ADN heterólogo en una célula hospedadora. Un tipo de vector es un "plásmido", que se refiere a un bucle de ADN bicatenario circular en el que pueden ligarse segmentos de ADN adicionales. Otro tipo de vector es un vector vírico, en donde pueden ligarse segmentos de ADN adicionales en el genoma vírico. Determinados vectores tienen capacidad de replicación autónoma en una célula hospedadora en la que se introducen (p. ej., vectores bacterianos que tienen un origen bacteriano de replicación y vectores de mamífero episómicos). Otros vectores (p. ej., vectores de mamífero no episómicos) se integran en el genoma de una célula hospedadora tras la introducción en la célula hospedadora y de este modo se replican junto con el genoma del hospedador. Por otra parte, determinados vectores son capaces de dirigir la expresión de genes con los que están unidos operativamente. Dichos vectores se denominan en el presente documento "vectores de expresión". Un "vector de expresión" como se usa en el presente documento se refiere a una molécula de ácido nucleico con capacidad de replicación y expresión de un gen de interés cuando se transforma, transfecta o transduce en una célula hospedadora. Los vectores de expresión comprenden uno o más marcadores seleccionables fenotípicos y un origen de replicación para garantizar el mantenimiento del vector y para, si se desea, proporcionar amplificación dentro del hospedador. El vector de expresión comprende además un promotor para conducir la expresión del polipéptido dentro de las células. Pueden ser vectores de expresión adecuados plásmidos procedentes, por ejemplo, de pBR322 o diversos plásmidos pUC, que están disponibles en el mercado. Otros vectores de expresión pueden proceder de vectores de expresión de bacteriófagos, fagémidos o cósmidos.

Realizaciones adicionales

Se identificaron anticuerpos monoclonales de ratón a partir de la exploración de clones de hibridoma murinos.

Las siguientes secuencias polinucleotídicas y proteicas se refieren a estos anticuerpos:

a) La secuencia de ADNc, SEQ ID NO 3, que codifica la región variable de cadena pesada de mAb 317 murino; b) La secuencia proteica de la región variable de cadena pesada de mAb 317 murino o mu317_Vh (SEQ ID NO 4);

c) La secuencia de ADNc, SEQ ID NO 5, que codifica la región variable de cadena ligera de mAb 317 murino; d) La secuencia proteica de la región variable de cadena ligera de mAb 317 murino o mu317_Vk (SEQ ID NO 6); e) La secuencia de ADNc, SEQ ID NO 7, que codifica la región variable de cadena pesada de mAb 326 murino; f) La secuencia proteica de la región variable de cadena pesada de mAb 326 murino o mu326_Vh (SEQ ID NO 8);

g) La secuencia de ADNc, SEQ ID NO 9, que codifica la región variable de cadena ligera de mAb 326 murino; h) La secuencia proteica de la región variable de cadena ligera de mAb 326 murino o mu326_Vk (SEQ ID NO 10).

Las secuencias de regiones determinantes de complementariedad (CDR) de estos anticuerpos, que median en la unión con los antígenos diana, PD-1, incluyendo las secuencias de CDR de mu317 y m326, son las siguientes: a) La CDR1 de la cadena pesada de mu317 (mu317 H-CDR1) contiene la secuencia de aminoácidos de GFSLTSYGVH (SEQ ID NO 11);

b) La mu317 H-CDR2 contiene la secuencia de aminoácidos de VIWAGGSTNYNSALMS (SEQ ID NO 12); c) La mu317 H-CDR3 contiene la secuencia de aminoácidos de ARAYGNYWYIDV (SEQ ID NO 13);

d) La CDR1 de la cadena ligera de mu317 (mu317 L-CDR1) contiene la secuencia de aminoácidos de KASQSVSNDVA (SEQ ID NO 14);

e) La mu317 L-^c D^r2 contiene la secuencia de aminoácidos de YAFHRFT (SEQ ID NO 15);

f) La mu317 L-CDR3 contiene la secuencia de aminoácidos de HQAYSSPYT (SEQ NO 16);

g) La mu326 H-CDR1 contiene la secuencia de aminoácidos de GYTFTNYGMN (SEQ ID No 17);

h) La mu326 H-CDR2 contiene la secuencia de aminoácidos de WINNNNGEPTYAEEFKG (SEQ ID NO 18); i) La mu326 H-CDR3 contiene la secuencia de aminoácidos de ARDVMDY (SEQ ID NO 19);

j) La mu326 L-CDR1 contiene la secuencia de aminoácidos de RASESVDNYGYSFMH (SEQ ID NO 20);

k) La mu326 L-CDR2 contiene la secuencia de aminoácidos de RASNLES (SEQ ID NO 21);

l) La mu326 L-CDR3 contiene la secuencia de aminoácidos de QQSKEYPT (SEQ ID NO 22)

En una realización, la invención proporciona composiciones que comprenden un anticuerpo que comprende las secuencias del SEQ ID NO: 24 y el ^s E^q ID NO: 26, que es un anticuerpo monoclonal de humanización que procede del mAb murino mu317:

a) El mAb de humanización hu317-4B6 comprende la secuencia proteica de la región variable de cadena pesada (Vh) como el SEQ ID NO 24, que está codificada por

b) el ADNc de hu317-4B6_Vh (SEQ ID NO 23);

c) El mAb de humanización hu317-4B6 también comprende la secuencia proteica de la región variable de cadena ligera (Vk) como el SEQ ID NO 26, que está codificada por

d) el ADNc de hu317-4B6 (SEQ ID NO 25).

Otros anticuerpos monoclonales de humanización que proceden de los mAb murinos mu326 y mu317 comprenden las siguientes secuencias:

e) El mAb de humanización hu326-4A3 comprende la secuencia proteica de Vh como el SEQ ID NO 28, que está codificada por

f) el ADNc de hu326-4A3-Vh (SEQ ID NO 27);

g) El mAb de humanización hu326-4A3 también comprende la secuencia proteica de Vk como el SEQ ID NO 30, que está codificada por

h) el ADNc de hu326-4A3_Vk (SEQ ID NO 29);

i) Las secuencias proteicas de hu317-4B2_Vh (SEQ ID NO 43) y hu317-4B2_Vk (SEQ ID NO 44);

j) Las secuencias proteicas de hu317-4B5_Vh (SEQ ID NO 45) y hu317-4B5_Vk (SEQ ID NO 46);

k) La secuencia proteica de hu317-1_Vh (SEQ ID NO 48) y el ADNc que codifica hu317-1_Vh (SEQ ID NO 47); l) La secuencia proteica de hu317-1_Vk (S^e Q ID NO 50) y el ADNc que codifica hu317-1_Vk (S^eQ ID NO 49); m) Las secuencias proteicas de hu326-3Bl_Vh (SEQ ID NO 51) y hu326-3Bl_Vk (SEQ ID NO 52);

n) Las secuencias proteicas de hu326-3Gl_Vh (SEQ ID NO 53) y hu326-3Gl_Vk (SEQ ID NO 54);

o) La secuencia proteica de hu326-1_Vh (SEQ ID NO 56) y el ADNc que codifica hu326-1_Vh (SEQ ID NO 55); p) La secuencia proteica de hu326-1_Vk (SEQ ID NO 58) y el ADNc que codifica hu326-1_Vk (SEQ ID NO 57); q) Las secuencias proteicas de otros mAb de humanización procedentes de mu317 (SEQ ID NO 63-74);

r) Las secuencias proteicas de otros mAb de humanización procedentes de mu326 (SEQ ID NO 75-82).

El anticuerpo de la invención comprende las secuencias CDR enumeradas a continuación:

a) secuencia de H-CDR1 de GFSLTSYGVH (SEQ ID NO 31), compartida entre los mAb de humanización hu317 y mu317 en las cadenas pesadas;

b) secuencia de H-CDR3 de ARAYGNYWYIDV (SEQ ID NO 33), compartida entre los mAb de humanización hu317 y mu317 en las cadenas pesadas;

c) secuencia de L-CDR1 de KSSESVSNDVA (SEQ ID NO 34), compartida entre los mAb de humanización hu317-4B2, hu317-4B5 y hu317-4B6 en las cadenas ligeras;

d) secuencia de L-CDR2 de YAFHRFT (SEQ ID NO 35), compartida entre los mAb de humanización hu317 y mu317 en las cadenas ligeras;

e) secuencia de L-CDR3 de HQAYSSPYT (SEQ ID NO 36), compartida entre los mAb de humanización hu317 y mu317 en las cadenas ligeras;

f) secuencia de H-CDR2 de VIYADGSTNYNPSLKS (SEQ ID NO 32) en hu317-4B6_Vh.

Las secuencias de CDR de los otros mAbs humanizados son las siguientes:

g) secuencia de H-CDR2 de VIYAGGSTNYNPSLKS (SEQ ID NO 60) en hu317-4B2_Vh y hu317-4B5_Vh; h) secuencia de H-CDR2 de VIWAGGSTNYNPSLKS (SEQ ID NO 59) en hu317-1_Vh;

i) secuencia de L-CDR1 de KASQSVSNDVA (SEQ ID NO 14) en hu317-1_Vk;

j) secuencia de H-CDR1 de GYTFTNYGMN (SEQ ID NO 37), compartida entre los mAb de humanización hu326 y mu326 en las cadenas pesadas;

k) secuencia de H-CDR3 de ARDVMDY (SEQ ID NO 39), compartida entre los mAb de humanización hu326 y mu326 en las cadenas pesadas;

l) secuencia de L-CDR1 de RASESVDNYGYSFMH (SEQ ID NO 40), compartida entre los mAb de humanización hu326 y mu326 en las cadenas ligeras;

m) secuencia de L-CDR2 de RASNLES (SEQ ID NO 41), compartida entre los mAb de humanización hu326 y mu326 en las cadenas ligeras;

n) secuencia de L-CDR3 de QQSKEYPT (SEQ ID NO 42), compartida entre los mAb de humanización hu326 y mu326 en las cadenas ligeras;

o) secuencia de H-CDR2 de WINNNNAEPTYAQDFRG (SEQ ID NO 38) en hu326_4A3_Vh;

p) secuencia de H-CDR2 de WINNNNGEPTYAQGFRG (SEQ ID NO 62) en el Vh de hu326_1 y otros mAb hu317.

Se mutaron individualmente seis restos de aminoácidos (AA) críticos en PD-1 necesarios para la unión a ligando y se usaron proteínas de PD-1 mutantes y de tipo silvestre para evaluar los epítopos de unión. El resto cuya mutación alteró significativamente la unión del anticuerpo se reconoce como un epítopo de unión clave o significativo. Son epítopos de unión significativos de mAb hu317-4B5 y hu317-4B6 K45 e I93 (numeración de AA basada en 2008 PNAS, 105:10483; equivalente a K58 e I106 en el SEQ ID NO 2); y son epítopos de unión significativos de mAb hu326-3B1 y hu317-4A3 I93, L95 y P97 (numeración de AA basada en 2008 PNAS, 105:10483; equivalente a I106, L108 y P110 en el SEQ ID NO 2).

En un aspecto adicional, la invención proporciona composiciones que comprenden anticuerpos como se define en las reivindicaciones que comprenden las secuencias de región constante de variantes de IgG4 humanas recombinantes, que pueden unirse con las regiones variables de los anticuerpos objeto, incluyendo los mAb anti PD-1 humanizados, que mostraron funciones efectoras y propiedades fisicoquímicas preferidas. Las secuencias son las siguientes:

La secuencia de región constante de IgG4mt10 (SEQ ID NO 88);

a) Una secuencia de referencia de IgG4mt1 (SEQ ID NO 83);

b) Una secuencia de referencia de IgG4mt2 (SEQ ID NO 84);

c) Una secuencia de referencia de IgG4mt6 (SEQ ID NO 85);

d) Una secuencia de referencia de IgG4mt8 (SEQ ID NO 86);

e) Una secuencia de referencia de IgG4mt9 (SEQ ID NO 87).

Las funciones de anticuerpos anti PD-1 pueden ensayarse usando un plásmido que expresa la proteína de fusión recombinante, OS8, para generar líneas celulares estables, HEK293/OS8/PD-L1 o HEK293/OS8/PD-L2, que coexpresa OS8 (una molécula activadora de linfocitos T) y un ligando de PD-1. Las líneas celulares se usaron para interaccionar con linfocitos T y PBMC mediante cocultivo para evaluar la funcionalidad de mAb anti PD-1 (véase ejemplo 3 y ejemplo 4). Como alternativa, se usó otro plásmido que expresaba la proteína de fusión recombinante, P3Z, para generar la línea celular estable, HuT78/P3Z, en la que P3Z actúa como sensor molecular y mediador de la transducción de señal. Cuando P3Z interacciona con el ligando de PD-1, transmitirá señal intracelular para activar la liberación de IL-2 en las células HuT78. Los sistemas pueden usarse para evaluar el efecto inhibidor de mAb anti PD-1 (véase ejemplo 3).

En otra realización, la invención proporciona los anticuerpos anti PD-1 humanizados como se define en las reivindicaciones, incluyendo hu317-4B6, que tienen funciones para suprimir la transducción de señal mediada por PD-1 y activar células inmunitarias, que desencadenan una cascada de respuestas inmunitarias incluyendo secreción de citocinas y citotoxicidad hacia células diana tales como células cancerosas, y dicho uso funcional de los anticuerpos.

En un aspecto, la invención proporciona anticuerpos anti PD-1 humanizados como se define en las reivindicaciones que activan varios tipos de células inmunitarias que expresan PD-1, incluyendo linfocitos T humanos, linfocitos NK y PBMC cuyas funciones son amplificar las señales de respuesta inmunitaria, movilizar el sistema inmunitario y actuar como células efectoras inmunitarias para eliminación de células cancerosas e infecciones víricas, y dicho uso funcional de los anticuerpos.

En otro aspecto, los mAb anti PD-1 humanizados se usan como agentes terapéuticos para tratar enfermedades humanas que están implicadas en la supresión de células inmunitarias mediante señalización intracelular mediada por PD-1, lo que conduce a progresión de la enfermedad, en particular cánceres e infecciones víricas.

Las composiciones de la invención son útiles para el tratamiento del cáncer, enfermedades neurodegenerativas e infecciosas, en particular víricas, y otras afecciones en las que la expresión inadecuada o perjudicial de la PD-1 humana y/o es un componente de la etiología o patología de la afección. Por lo tanto, la invención proporciona un anticuerpo como se define en las reivindicaciones para su uso en terapia, que abarca métodos para tratar el cáncer o inhibir la progresión tumoral en un sujeto que lo necesite con una proteína anti PD-1 objeto.

La divulgación incluye todas las combinaciones de las realizaciones particulares enumeradas.

Ejemplos

Ejemplo 1. Generación de anticuerpo monoclonal anti PD-1

Se generaron anticuerpos monoclonales (mAb) anti PD-1 basándose en la tecnología de fusión de hibridoma convencional (Kohler y Milstein 1976 Eur J Immunol 6:511-519; de St Groth y Sheidegger 1980, J Immunol Methods 35:1-21; Mechetner 2007 Methods Mol Biol 378:1-13) con modificaciones menores. Se seleccionaron mAb con actividades de unión alta en ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA) y clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) para caracterización adicional.

Proteína recombinante PD-1 para ensayos de inmunización y unión

Se obtuvo plásmido de expresión que contenía ADNc de PD-1 humana de longitud completa de Origene (cat n.° SC117011, n.° de referencia del nCb I: NM_005018.1, Beijing, China). El dominio extracelular que consistía en los aminoácidos (AA) 1-168 de PD-1 (SEQ NO.1, SEQ NO.2) se amplificó mediante PCR y se subclonó en un vector de expresión basado en pcDNA3.1 (Invitrogen, Carlsbad, CA, EE. UU.) con el extremo C fusionado con un marcador de His6 o con el dominio yFc de cadena pesada de IgG4 humana, que dio como resultado dos plásmidos de expresión de proteína de fusión recombinante, PD-1-EC/His y PD-1-EC/Fc (abreviados como PD-1/His y PD-1/Fc). La presentación esquemática de proteínas inmunógenas/antígenas se ha mostrado en la figura 1. Para la producción de proteína de fusión recombinante, se transfectaron de forma transitoria plásmidos PD-1/His y PD-1/Fc en células 293-F en 1-3 litros de medio (Invitrogen) y se cultivaron durante 5-7 días en un incubador de CO2 equipado con agitador rotatorio. El sobrenadante que contenía la proteína recombinante se recogió y se clarificó mediante centrifugación a 15000 g durante 30 minutos. PD-1/His se purificó mediante cromatografía de afinidad de metales inmovilizada usando Ni-Sepharose Fast Flow (Cat. n.° 17531801, GE Lifesciences, Shanghái, China), seguido de cromatografía de exclusión por tamaño usando una columna HiLoad 16/60 Superdex 200 (Cat. n.° 17106901, GE Lifesciences, Shanghái, China). Se purificó PD-1/Fc usando una columna de proteína G Sepharose Fast Flow (cat. n.° 17061805, GE Lifesciences). Se dializaron proteínas tanto PD-1/His como PD-1/Fc frente a solución salina tamponada con fosfato (PBS) y se almacenaron en un congelador a -80 °C en alícuotas pequeñas.

El ADNc que codifica PD-L1 humano se sintetizó de manera química mediante Genescript (Nanjing, China) basándose en la secuencia publicada (n.° de referencia del NCBI NM_014143). El plásmido de expresión de PD-L2 se obtuvo de Origene (Cat. n.° SC108873, n.° de referencia del NCBI NM_025239.2, Beijing, China). Ambos ADNc se clonaron en pcDNA3.1/Higromicina (Cat. n.° V870-20, Invitrogen) y pcDNA3.1/V5-His (Cat. n.° V810-20, Invitrogen), respectivamente.

Línea celular de expresión estable

Se establecieron líneas celulares estables que expresaban PD-1, PD-L1 o PD-L2 humanos mediante transfección de plásmidos pcDNA3.1 que contenían PD-1, PD-L1 y PD-L2 a HUT78 (ATCC, Manassas, VA, EE. UU.) y HEK293 (ATCC), respectivamente, y se siguieron de selección con medio que contenía 200 microgramos de higromicina (Cat. n.° 10687-010, Invitrogen) o 1 mg de G418 (Sigma) por mililitro. Se aislaron clones individuales mediante un método convencional, dilución limitada o selección de colonias individuales de la superficie del pocillo de cultivo. Todos los clones se exploraron mediante transferencia de Western y análisis de FACS usando anticuerpos anti PD-1, PD-L1 y PD-L2 (Cat. n.° 12-9969, 17-5983, 12-5888, eBioscience, San Diego, EE. UU.), respectivamente, y los clones de expresión máxima se seleccionaron para ensayo de unión de FACS para explorar anticuerpos monoclonales de hibridoma o se usaron en ensayos funcionales.

Inmunización, fusión de hibridoma y clonación.

Se inmunizaron ratones Balb/c de ocho a doce semanas de edad (de BEIJING HFK BIOCSIENCE CO., LTD, Beijing, China) por vía subcutánea con 100 pl de adyuvante (Cat. n.° KX0210041, KangBiQuan, Beijing, China) que contenía 5 microgramos de PD-1/Fc. La inmunización se realizó mediante dos inyecciones del inmunógeno anterior con tres semanas de diferencia. Dos semanas después de la segunda inmunización, se evaluaron los sueros de ratones con respecto a la unión de PD-1 mediante FAC^s (siguientes secciones). Los ratones con títulos de anticuerpo anti PD-1 altos en sueros se seleccionaron y se reforzaron por vía intraperitoneal con 50 microgramos de PD-1/Fc en ausencia de cualquier adyuvante. Tres días después del refuerzo, los esplenocitos se aislaron y fusionaron con la línea celular de mieloma murino, células SP2/0 (ATCC), usando técnicas convencionales (Gefter, M.L. et al., 1977 Somat Cell Genet, 3:231-236).

Evaluación de la actividad de unión a PD-1 de los anticuerpos mediante ELISA y FACS

Los sobrenadantes de clones de hibridoma se exploraron inicialmente mediante ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA) como se describe en "Flanagan, M.L. et al. 2007 Methods in Molecular Biology 378:33-52" con algunas modificaciones. En resumen, se aplicaron 50-200 nanogramos de proteína PD-1/His o PD-1/Fc en 50 microlitros de solución salina tamponada con fosfato (PBS) en una placa de 96 pocillos (Shenzhen JinCanHua Industry Co., Ltd, Shenzhen, China) por pocillo. Se usaron el anticuerpo anti IgG de ratón ligado a HRP (Cat. n.° 7076S, Cell Signaling Technology, EE. UU. y Shanghái, China) y reactivo quimioluminiscente (Cat. n.° PA107-01, TIANGEN, China) para detectar y revelar la señal de ELISA, que se leyó mediante un lector de placas (PHREAstar FS, BMG LABTECH, Alemania) a una longitud de onda de 450 nm. Los clones productores de anticuerpos positivos para ELISA se verificaron adicionalmente mediante clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) usando un método convencional. Las líneas celulares de expresión estable de PD-1, HuT78/PD-1 (105 células/pocillo), descritas anteriormente, se tiñeron con sobrenadantes de hibridomas anti PD-1 en placas de 96 pocillos de fondo en V (Cat. n.°. 3897, Corning, EE. UU. y Shanghái, China). Para bloquear los receptores de Fc humanos, las células se preincubaron con IgG humano (20 pg/ml) (Cat. n.° H11296, LifeHolder, EE. UU. y Shanghái, China). Se detectaron anticuerpos de PD-1 con anticuerpo de cabra anti IgG de ratón marcado con Dylight™ 649 (Cat. n.° 405312, Biolegend, San Diego, EE. UU.) y la fluorescencia celular se supervisó usando un citómetro de flujo (Guava easyCyte 8HT, Merck-Millipore, EE. UU. y Shanghái, China).

El medio acondicionado de células de hibridoma que mostró señal positiva en ensayo tanto ELISA como FACS se sometió a ensayos funcionales para identificar anticuerpos con buena actividad funcional en ensayos basados en células inmunitarias humanas (en el presente documento). Los anticuerpos con actividad funcional positiva se subclonaron y caracterizaron adicionalmente.

Subclonación y adaptación a medio sin suero o bajo en suero

Los clones de hibridoma positivos de exploración primaria mediante ELISA, FACS y ensayos funcionales se subclonaron mediante el método convencional de dilución limitada. Cada uno de los clones positivos se sembró en una placa de 96 pocillos, se cultivó en medio RPMI1640 (Cat. n.° SH30809.01B, Hyclone, Shanghái, China) con suero bovino fetal al 10% (FBS, Cat. n.° SH30084.03, Hyclone, Beijing, China) en un incubador de CO². Se seleccionaron tres subclones de cada placa de dilución limitada y se caracterizaron mediante FACS y ensayos funcionales. Los subclones seleccionados mediante ensayos funcionales se definieron como anticuerpo monoclonal. Los mejores subclones se adaptaron para crecimiento en el medio CDM4MAb (Cat. n.° SH30801.02, Hyclone) con FBS 1-3%.

Expresión y purificación de anticuerpos monoclonales

Se cultivaron células de hibridoma productoras de anticuerpos monoclonales murinos o células 293-F transfectadas con plásmidos de anticuerpos recombinantes (Cat. n.° R79007, Invitrogen) en medio CDM4MAb (Cat. n.° SH30801.02, Hyclone) o medio de expresión Freestyle293. (Cat. n.° 12338018, Invitrogen), respectivamente, en una incubadora de CO² a 37 °C durante 5 a 7 días. El medio acondicionado se recogió mediante centrifugación a 10.000 g durante 30 minutos para retirar todas las células y los residuos celulares y se filtró a través de una membrana de 0,22 pm antes de su purificación. Se aplicaron anticuerpos murinos o recombinantes y se unieron a una columna de proteína A (Cat. n.° 17127901, GE Life Sciences) siguiendo las instrucciones del fabricante, se lavaron con PBS, se eluyeron en el tampón que contenía citrato 20 mM, NaCl 150 mM, pH 3,5. Los materiales eluidos se neutralizaron con Tris 1 M pH 8,0 y habitualmente contenían anticuerpos de más del 90 % de pureza. Los anticuerpos purificados por afinidad con proteína A se dializaron frente a PBS o se purificaron adicionalmente usando una columna HiLoad 16/60 Superdex200 (Cat. n.° 17531801, GE Life Sciences) para retirar los agregados. Las concentraciones de proteína se determinaron midiendo la absorbancia a 280 nm o mediante ensayo de Bradford (Cat. n.° 1856210, Thermo Scientific, Rockford, IL, EE. UU.) usando IgG bovino de concentración definida (Cat. n.° 23212, Thermo Scientific) como los patrones. Los anticuerpos purificados se almacenaron en alícuotas en un congelador a -80 °C.

Ejemplo 2. Comparación de actividades de unión entre anticuerpos anti PD-1

Mediante la exploración de miles de clones de hibridomas se identificaron algunos anticuerpos monoclonales superiores (mAb), que se unen con PD-1 humana con alta especificidad y fuerza. Como se muestra en el ensayo de ELISA (figura 2), tres de los anticuerpos superiores indujeron dicha fuerza y especificidad de unión. Los resultados del análisis FACS demostraron que los anticuerpos monoclonales seleccionados se unen con las proteínas PD-1 nativas expresadas en la superficie celular. mAb317 (mu317), mu326 y mu150 murinos mostraron actividad de unión dependiente de la concentración y su CE⁵⁰ (concentración eficaz al 50 % de actividad) de unión fue significativamente menor que la del mu55 de control (figura 3).

Evaluación de la afinidad de unión de mAb mediante resonancia de plasmón superficial (RPS)

Los mAb con altas actividades de unión en ELISA y FACS, así como con potentes actividades funcionales en los ensayos basados en células (en el presente documento) se examinaron para determinar su constante cinética de unión en reacciones de unión en tiempo real. Los mAb anti PD-1 murinos se purificaron a partir de sobrenadantes de hibridoma usando columna de flujo de proteína A (Cat. n.° 17531801, GE Life Sciences) seguido de cromatografía de exclusión por tamaño usando una columna HiLoad 16/60 Superdex200 (Cat. n.° 17106901, GE Life Sciences). Los anticuerpos anti PD-1 purificados se concentraron hasta 0,5-1 mg/ml en PBS y se almacenaron en alícuotas en un congelador a -80 °C.

Para determinar las afinidades de unión de mAb de PD-1, se realizaron mediciones de RPS en tampón HBS-N (HEPES 10 mM pH 7,4, NaCl 0,15 M, EDTA 3 mM, tensioactivo P20 0,005% v/v, GE Healthcare) usando el instrumento BIAcore™ T-200 (GE Life Sciences). Se generó un chip biosensor CM5 anti Fc de ratón (GE Healthcare) usando un protocolo de acoplamiento de amina primaria convencional. Se capturaron mAb de PD-1 a 0,3 pg/ml en superficie anti Fc de ratón durante 1 minuto a 10 pl/min. Se inyectó PD-1/Fc en una dilución en serie de 3,3 nM a 120 nM sobre la superficie unida a anticuerpo durante 3 minutos a 30 pl/min seguido de una fase de disociación de 10 minutos. Se calcularon las velocidades de asociación (K^a o k^on) y las velocidades de disociación (K^d o k^off) usando el modelo de unión de Langmuir uno a uno (Software BIA Evaluation, GE Life Sciences). Se calculó la constante de disociación en equilibrio (K^d ) como la relación k^off/k^on.

Como se muestra en la tabla 1, tanto mu326 como mu517, un miembro de la familia de secuencia afín relacionado con mu317, tienen una K^d subnanomolar igual a 0,324 nM y 0,289 nM, respectivamente, que es significativamente mejor que la de mu134. La velocidad K^on fue similar entre los tres mAb enumerados en la tabla 1, pero la velocidad de K^off fue significativamente diferente, se observó una velocidad de disociación mucho más rápida en mu134.

Tabla 1. Constante de unión de determinados anticuer os su eriores

mu 134 1,1 x 10⁵ 3,69 x 10^-4 3,35 x 10^-9

Determinación de afinidad de Fab anti PD-1 mediante RPS

Se convirtieron mAb anti PD-1 en la versión Fab mediante PCR para fusionar las regiones variables de cadenas pesadas y ligeras con el extremo N de IgG2-CH1 humano y región constante de cadena kappa, respectivamente, y se subclonaron en el vector pcDNA3.1 (Invitrogen). Ambos vectores de expresión se coexpresaron en células 293-F usando un protocolo de transfección transitoria similar a la expresión transitoria de anticuerpos completos. En resumen, la cadena kappa de Fab se amplificó mediante PCR y se subclonó en un vector de expresión basado en pcDNA3.1 (Invitrogen, Carlsbad, CA, EE. UU.). En un plásmido separado, la región variable de cadena pesada (VH) junto con la secuencia codificante de CH1 de IgG2 humana se fusionó con un marcador de c-Myc-His8 C terminal mediante PCR solapante y después se subclonó en el vector de expresión. Las mutaciones C232S y C233S (numeración de restos de Kabat, Kabat et al. Sequence of proteins of immunologic interest, 5a ed Bethesda, MD, NIH 1991) se introdujeron en la cadena pesada de IgG2 para evitar el intercambio de enlaces disulfuro y estabilizar IgG2 humano en la conformación de IgG2-A (Lightle et al. 2010 Protein Sci 19 (4):753-762). Ambas construcciones contenían un péptido señal cadena arriba de las secuencias maduras de Fab. Se consiguió expresión secretada de Fab mediante cotransfección de los 2 plásmidos anteriores en células 293-F y se recogieron sobrenadantes de cultivo celular 6-7 días después de la transfección. Se purificaron Fab marcados con His8 de sobrenadantes de cultivo celular usando una columna de Ni-sepharose Fast Flow (Cat. n.° 17531801, GE Life Sciences) seguido de cromatografía de exclusión por tamaño usando una columna HiLoad 16/60 Superdex200 (Cat. n.° 17106901, GE Life Sciences). Los Fab purificados se concentraron hasta 0,5-5 mg/ml en PBS y se almacenaron en alícuotas en un congelador a -80 °C.

Para determinaciones de afinidad de Fab anti PD-1, se usaron ensayos de RPS con el instrumento BIAcore™ T-200 (GE Life Sciences). Brevemente, se acopló PD-1/His humano o PD-1/His de mono cinomolgo con chips biosensores CM5 activados (Cat. n.° BR100530, GE Life Sciences) para conseguir aproximadamente 100-200 unidades de respuesta (UR), seguido de bloqueo de grupos que no habían reaccionado con etanolamina 1 M. Se inyectaron muestras de Fab de concentración creciente de 0,12 nM a 90 nM en el tampón de ejecución de RPS (HEPES 10 mM, NaCl 150 mM, Tween200,05 %, pH 7,4) a 30 pl/minuto y se calcularon las respuestas de unión en PD-1/His humano o PD-1/His de mono restando de las UR de una celda de flujo en blanco. Se calcularon las velocidades de asociación (kon) y velocidades de disociación (koff) usando el modelo de unión de Langmuir uno a uno (Software BIA Evaluation, GE Life Sciences). La constante de disociación en equilibrio (Kd) se calculó como la relación koff/kon.

Las afinidades de unión determinadas mediante RPS de Fab anti PD-1 se enumeraron en la Tabla 18. Cada Fab anti PD-1 se unió con alta afinidad (Kd = 0,15-1 nM) con PD-1 humana. Todos los Fab, excepto 326-3G1, se unieron con afinidades ligeramente menores pero parecidas (en un intervalo de 5 veces en Kd) a PD-1 de mono cinomolgo.

Ejemplo 3. Actividad funcional de anticuerpos anti PD-1 en linfocitos T humanos.

Generación de líneas celulares estables

Se obtuvieron la línea celular de empaquetamiento retrovírico PT67, líneas de linfocitos T humanos HuT78 y HEK293 de la Colección Americana de Cultivo Tipo (ATCC, Rockville, MD). Se generó una sublínea de HuT78 HuT78/PD-1 que expresa PD-1 mediante transducción retrovírica usando vector pFB-neo (Strategene/Agilent Tech, Santa Clara, CA) que contenía el gen PD-1, según el protocolo descrito anteriormente (Zhang et al. 2005 Blood 106:1544-1551). El agente que interacciona con linfocitos T, un Ab quimérico anclado a membrana (OS8), se construyó fusionando el fragmento variable de cadena sencilla (scFv) de un mAb anti CD3 humano OKT3 (Kipriyanov et al. 1997, PEDS 10:445-453) con el dominio C terminal (113-220) de CD8a de ratón (número de referencia del NCBI: NP_001074579.1) que incluye dominios bisagra, transmembrana y citoplasmático. Haciendo esto, se ancla scFv anti-CD3 a la superficie celular como un activador de linfocitos T. Se subclonaron ADNc de PD-L1, PD-L2 y OS8 humanos en el vector pcDNA3.1. Se generaron líneas celulares estables HEK293/OS8/PD-L1, Hep3B/OS8/PD-L1 y HEK293/OS8/PD-L2 que coexpresan ADNc tanto de OS8 como de PD-L1 o PD-L2 mediante cotransfección de células HEK293 y Hep3B (ATCC) con los plásmidos emparejados, seguido de selección de higromicina o G418 durante 10-14 días. Después se clonaron las líneas celulares mediante dilución limitante como se ha descrito anteriormente (Fuller SA, et al. Curr Protoc Mol Biol. Capítulo 11: Unidad11.8., 2001). Se construyó un receptor de PD-1 quimérico, denominado P3Z, fusionando los dominios extracelular y transmembrana) de PD-1 humana con el dominio citoplasmático de la cadena CD3Z humana (n.° de referencia del NCBI NP_932170.1). Se clonó la secuencia de ADNc codificante de P3Z en pFB-neo y se suministró a células HuT78 mediante transducción retrovírica para generar células HuT78/P3Z.

Determinación de las funciones del anticuerpo de PD-1 mediante liberación de IL-2 en células HuT78/PD-1 Para determinar si los anticuerpos anti PD-1 pueden bloquear la interacción de señalización de PD-1 inducida por PD-L1, se preincubaron células HuT78/PD-1 (1,5x104 células por pocillo en una placa de 96 pocillos) con sobrenadantes de hibridoma o anticuerpos de PD-1 durante 15 minutos antes del cocultivo con células HEK293/OS8/PD-L1 o HEK293/OS8/PD-L2 (4x104 por pocillo) en una placa de fondo plano alimentada con 200 pl de medio de cultivo RPMI1640 por pocillo a 37 °C. Después de 16-18 horas, se recogieron los sobrenadantes del cocultivo. Se ensayó IL-2 mediante ELISA usando equipos de ELISA de IL-2 Ready-Set-Go! (Cat. n.° 88-7025, eBiosciences, San Diego, CA). En este ensayo, el bloqueo de la señalización de PD-1 con anticuerpos anti PD-1 dio lugar a señalización de TCR y producción de IL-2 mejoradas (fig. 4).

Como se muestra en la fig. 5 y la tabla 2, los mAb murinos anti PD-1, mu317 y mu326, indujeron actividad funcional significativamente mayor que mu30, inhibiendo la señalización de PD-1 inducida por PD-L1 que conduce a aumento de la secreción de IL-2. Ambos tuvieron mayor secreción de IL-2 (línea superior, tabla 2), 675 y 634 pg/ml, respectivamente, y ambos tuvieron CE50 menor (concentración eficaz de mAb a 50 % del nivel de inducción de secreción de IL-2) que el anticuerpo mu30.

Tabla 2. Liberación de IL-2 inducida por mAb anti PD-1 en células HuT78/PD-1 cocultivadas con células

HEK293/OS8/PD-L1

La interacción de células HuT78/PD-1 con mAb anti PD-1 no solo bloqueó la activación de linfocitos T inducida por PD-L1, sino que también bloqueó la liberación de IL-2 inducida por PD-L2. La tabla 3 presenta los datos que muestran que mu317 y mu326 tenían mucha mayor potencia en la activación de los linfocitos T como se indica por los parámetros (CE⁵⁰) de secreción de IL-2 que los de mu476.

Tabla 3. Liberación de IL-2 inducida por mAb anti PD-1 en células HuT78/PD-1 cocultivadas con células

HEK293/OS8/PD-L2

Determinación de las funciones de anticuerpos de PD-1 mediante señalización inversa de la liberación de IL-2 en células HuT78/P3Z

En el receptor quimérico P3Z, el dominio de señalización de PD-1 se reemplazó con el dominio citoplasmático de CD3Z. Por lo tanto, P3Z media en la activación tras su integración con PD-L1, en lugar de la inhibición como receptor de PD-1 original. En este ensayo, se preincubaron células HuT78/P3Z (3x10⁴/pocillo) con sobrenadantes de hibridoma o anticuerpos de PD-1 durante 15 minutos antes del cocultivo con células HEK293/PD-L1 o HEK293/PD-L2 (5x10⁴/pocillo) en placas de fondo plano de 96 pocillos (un volumen total de 200 pl/pocillo) a 37 °C. Después de 16-18 horas, se recogieron sobrenadantes y se ensayó la producción de IL-2 mediante ELISA como se ha descrito anteriormente.

La actividad funcional de mAb murinos anti PD-1 se confirmó adicionalmente mediante lectura directa de la activación de linfocitos T en el ensayo de señalización inversa descrito anteriormente. De forma coherente con el resultado descrito anteriormente, mu317 y mu326 tenían la mejor actividad funcional entre los mAb que se exploraron. Como se muestra en la tabla 4 y la tabla 5, mu317 y mu326 fueron mucho más potentes que uno de los mAb de baja actividad, mu37, tanto con respecto a CI⁵⁰ como a inhibición máxima.

Tabla 4. Inhibición de la secreción de IL-2 mediante mAb anti PD-1 en células HuT78/P3Z cocultivadas con células

HEK293/PD-L1

Tabla 5. Inhibición de la secreción de IL-2 mediante mAb anti PD-1 en células HuT78/P3Z cocultivadas con células

Ejemplo 4. Activación de la secreción de IFN-y mediante mAb anti PD-1 en PBMC humanas primarias cocultivadas con células HEK293/OS8/PD-L1

Para verificar si los mAb superiores seleccionados contra PD-1 también ejercen efecto funcional en células inmunitarias humanas primarias, se ensayó la función de los anticuerpos usando células mononucleares de sangre periférica (PBMC) recién aisladas, que consistían principalmente en linfocitos T (50-70 %), linfocitos B y linfocitos NK (15-30%) y monocitos (2-10%). Se aislaron PBMC humanas de donantes sanos mediante centrifugación en gradiente de densidad usando medio de separación de linfocitos ficoll (Histopaque-1077; Sigma-Aldrich, MO) según las instrucciones del fabricante. Toda la recogida de sangre humana siguió el Procedimiento Interno de Beigene. Después se estimularon PBMC con mAb anti CD3 (40 ng/ml) OKT3 (Cat. n.° 16-0037, eBioscience, CA) durante 3 días antes del ensayo. El análisis de FACS (ejemplo 1) mostró que la expresión de PD-1 en las PBMC activadas (principalmente linfocitos T) aumentó en un grado variable dependiendo de los donantes individuales (tabla 6). Para determinar la respuesta de linfocitos T preactivados a células tumorales positivas para ligando de PD-1 tras interacción del complejo de TCR/CD3, se cocultivaron PBMC (1x104) con células HEK293/OS8/PD-L1 o HEK293/OS8/PD-L2 (3x104) en placas de fondo plano de 96 pocillos durante 15-18 horas. Se ensayaron sobrenadantes sin células para determinar el nivel de IFN-y, mediante ELISA, usando equipos de ELISA Ready-Set-Go! (Cat. n.° 88-7316, eBiosciences), que es el indicador más prominente de la activación de linfocitos T, así como de otra activación de células inmunitarias (Thakur A. et al. 2012 Vaccine, 30:4907-4920).

La fig. 6 demostró que la presencia de los mAb mu317 y mu326 en el cocultivo de PBMC preactivadas y células HEK293/OS8/PD-L1 dio lugar a aumento de la acumulación de IFN-^y de una manera dependiente de la dosis. Aunque el nivel basal de IFN-y con tratamiento de IgG murina de control varía entre diferentes donantes, el aumento de la secreción de IFN-y en PBMC tratadas mediante mu317 o mu326 es estadísticamente significativo en el intervalo de 0,1 a 10|jg/ml de tratamiento de anticuerpo. En comparación con el nivel correspondiente de PBMC tratadas con mlgG, la secreción de IFN-^y inducida por mu317 y mu326 entre los niveles de concentración de 0,1 a 10 jg/ml aumentó de 2,5 a 3,2 veces en PBMC del donante-19 y aumentó de 1,4 a 2,3 veces en PBMC del donante-20, respectivamente.

Ejemplo 5. Activación de linfocitos NK mediante mAb anti PD1

Líneas celulares estables para ensayo funcional en linfocitos NK

Se ha informado previamente de que los linfocitos NK humanos primarios expresan proteína PD-1 en respuesta al tratamiento con ⁱL-2 y la inhibición de la señalización mediada por PD-1 potenció la citotoxicidad de linfocitos NK (2010 Blood, 116:2286). Para ensayo cuantitativo del efecto funcional ejercido por mAb anti PD-1 en linfocitos NK, se modificaron por ingeniería genética la línea celular NK humana NK92MI (ATCC) y la línea celular de cáncer de pulmón SK-Mes-1 (ATCC) para expresar de manera estable PD-1 y PD-L1 humanos, respectivamente, mediante transducción retrovírica según los protocolos descritos anteriormente (Zhang et al. 2005, Blood 106: 1544-1551, Zhang et al. 2006, Cancer Res, 66:5927). Las dos líneas celulares estables se denominaron NK92MI/PD-1 y SK-Mes-1/PD-L1.

Los Ab anti PD-1 promueven la producción y secreción de IFN-y en células NK92MI/PD-1

Se ensayó la actividad funcional de los mAb anti PD-1 en linfocitos NK mediante la medición cuantitativa de la producción de IFN-^y y la secreción en células NK92MI/PD-1 que se cocultivaron con la línea celular de cáncer de pulmón SK-MES-1/PD-L1 a una relación de 1 a 2 en placa de fondo plano de 96 pocillos con un total de 6 x 10⁴ células por pocillo. Los mAb anti PD-1 se añadieron a las células NK92MI/PD-1 15 minutos antes de iniciarse el cocultivo, después las células se cocultivaron durante una noche en una incubadora de CO². Se ensayaron sobrenadantes sin células para determinar el nivel de IFN-y mediante ELISA como se ha descrito en el ejemplo 4. Todos los mAb anti PD-1 desencadenaron aumento significativo de la producción de IFN-^y desde el valor de referencia con baja concentración de tratamiento de anticuerpo hasta la línea superior con alta concentración de tratamiento de anticuerpo. Los dos anticuerpos superiores, mu317 y mu326, tenían menor CE⁵⁰ que el anticuerpo de comparación 5C, lo que indica que tienen efecto activador más potente para los linfocitos NK (tabla 7).

Tabla 7. IFN-y secretado en medio (pg/ml) mediante células NK92MI/PD-1 en presencia de mAb anti PD-1 y células

SK-MES-1/PD-L1

El anticuerpo anti PD-1 potencia la destrucción de células cancerosas mediada por células NK92MI/PD-1

Se determinó la citotoxicidad de células NK92MI/PD-1 contra células SK-MES-1/PD-L1 mediante ensayo de liberación de lactato deshidrogenasa (LDH) usando el equipo de ensayo de citotoxicidad no radioactivo CytoTox 96 (Promega, Madison, WI). En resumen, se preincubaron células NK92MI/PD-1 (10⁵ ) con mAb anti PD-1 a concentraciones finales dentro del intervalo de 0,004-10 pg/ml durante 15 minutos y se añadieron células SK-MES-1/PD-L1 (2x10⁴ ) al cultivo de células inmunitarias en una placa de fondo en V de 96 pocillos a una relación de células efectoras con respecto a tumorales (E:T) de 5:1, y después se cocultivaron durante 5 horas. La lisis de células tumorales completa se estableció como el máximo de destrucción de células, la lectura de ensayo de liberación de LDH de cada muestra se calculó como el porcentaje de destrucción celular máxima. Las destrucciones celulares (%) de todas las muestras se normalizaron entre las placas usando 10 % del valor de referencia como el patrón común.

En el ensayo de citotoxicidad específico expuesto anteriormente, los mAb anti PD-1 seleccionados provocaron una destrucción de células tumorales neta (= línea superior - valor de referencia) que varió de 19% a 20,2% a alta concentración de aporte de mAb. Mu317 y mu326 tuvieron menor CE⁵⁰ que mu336, lo que indica mejor potencia para desencadenar destrucción de células tumorales mediada por células NK92M1/PD-1 (tabla 8).

T l . i xi i l l NK 2MIPD-1 h i l l m r l in i r mA ni PD-1

Ejemplo 6. Clonación y análisis de secuencias de mAb de PD-1

Los clones de hibridoma murino que secretaban un mAb específico se cultivaron hasta una densidad de 3 a 10 X 106 células en una placa de cultivo tisular de 100 mm y las células se recogieron mediante centrifugación a 1500 rpm en un rotor de cubeta oscilante. El ARN celular total se aisló usando equipo de ARN Ultrapure (Cat. n.° CW0581, CWBIOTECH, Beijing, China) siguiendo el protocolo del fabricante. El ARN se resuspendió en agua con doble desionización, y la concentración se midió mediante NanoDrop (ThermoFisher, Shanghái, China).

Los cebadores de PCR usados para clonación de ADNc de mAb fueron sintetizados por Invitrogen (Beijing, China) en función de las secuencias previamente indicadas (Brocks et al. 2001 Mol Med 7:461-469). El ADNc de 1a cadena se sintetizó usando transcriptasa inversa (Cat. n.° AH301-02, Transgen Biotech, Beijing, China). Se realizó amplificación por PCR de ADNc de mAb específico usando un equipo de reactivos de PCR (Cat. n.° Ap221-12, TransGen Biotech, Beijing, China) y siguiendo el protocolo del fabricante. El producto de PCR fue secuenciado directamente por el proveedor de servicios (GeneWiz, Beijing, China) o se subclonó en un vector pCR (Invitrogen), y se secuenció posteriormente (GeneWiz).

Las secuencias de proteínas de mAb murinos se analizaron mediante alineamiento de homología de secuencias. Los mAb se agruparon en función de la homología de secuencia y los resultados de mapeo de epítopos (ejemplo 13). Las regiones determinantes de complementariedad (CDR) se identificaron basándose en Kabat (Wu, T.T. y Kabat, E.A., 1970 J. Exp. Med. 132: 211-250) y el sistema de IMGT (Lefranc M.-P. et al., 1999 Nucleic Acids Research, 27, 209-212) mediante anotación de secuencia y mediante análisis de secuencia basado en Internet (http:// www.imgt.org/IMGT vquest/share/textes/index.html y http://www.ncbi.nlm.nih.gov/igblast/). Como se muestra en la tabla 9, las CDR de mu317 y mu326 son muy diferentes con respecto a su longitud e identidad de secuencia.

Tabla 9. CDR de mu317 mu326

Ejemplo 7. Humanización de los mAb murinos

Simulación de estructura tridimensional de anticuerpos

Se simularon las estructuras tridimensionales para dominios variables de mu317 y mu326 para identificar restos de marco conservado que podrían ser importantes para sostener estructuras de bucles de CDR. Se mantuvieron los restos de marco conservado potencialmente importantes como los restos murinos originales en el primer ciclo de humanización de anticuerpos. Se adoptó el método de modelado estructural previamente establecido para anticuerpos (Morea et al. Methods 200020: 267-279) para simular la estructura tridimensional de mAb anti-PD-1 en función de las estructuras canónicas conocidas de anticuerpos (Al-Lazikani et al. 1997 Journal of Molecular Biology 273:927-948). En resumen, la secuencia de cada dominio variable (Vk y Vh) de anticuerpo murino se sometió a blast en la base de datos de PDB (Banco de Datos de Proteínas, http:// blast.ncbi.nlm.nih.gov/) para identificar la secuencia de anticuerpos más homóloga con estructura de alta resolución conocida (resolución menor de 2,5 angstrom). Los moldes de estructura seleccionados para modelar mu317 y mu326 (enumerados en la tabla 10) tuvieron las mismas clases de estructuras de bucle canónico en L-CDR1, L-CDR2, L-CDR3, H-CDR1 y H-CDR2 que los anticuerpos diana para modelar. Si los moldes para el Vk y el Vh vinieron de inmunoglobulinas diferentes, se empaquetaron juntos mediante un ajuste de mínimos cuadrados de los átomos de cadena principal para formar una estructura híbrida de restos de interfaz Vk-Vh, que se usó como los moldes para modelado de homología estructural mediante el programa de modelo Swiss (Kiefer et al. 2009 Nucleic Acids Research 37, D387-D392). Determinada conformación de cadena lateral se ajustó mientras que las conformaciones de cadena principal se conservaron. En los sitios donde la estructura original y la estructura modelada tuvieron el mismo resto, se conservó la conformación de cadena lateral. En sitios donde los restos eran diferentes, las conformaciones de cadena lateral se modelaron basándose en la estructura del molde, bibliotecas de rotámeros y consideraciones de empaquetamiento. Después del modelado de homología, se usó el programa PLOP (Jacobson et al. 2002 Journal of Physical Chemistry 106: 11673-11680) para refinar los modelos de homología para minimizar la energía de todos los átomos y optimizar la interfaz de Vk y Vh. Esta etapa se realizó para mejorar la estereoquímica, especialmente en las regiones en las que se habían unido entre sí segmentos de estructuras que venían de anticuerpos diferentes.

Tabla 10. Moldes de estructura usados en simulaciones de estructuras de anticuer os

Las estructuras también se simularon para 317-1 y 326-1 con injertos de CDR para guiar ciclos adicionales de modificación de anticuerpos por ingeniería genética para potenciar los alcances de la humanización y/o potenciar las estabilidades de los anticuerpos. Los moldes de estructura seleccionados también se enumeran en la tabla 10. Las simulaciones de estructura se realizaron de una manera similar al procedimiento anterior, excepto que las posibles conformaciones de H-CDR3 se tomaron de moldes de PDB 1AY1 para 317-1 y 3CXD para 326-1, respectivamente, que contenían H-CDR3 de tamaño y región de tronco similar. Se realizó minimización de la energía para restos de H-CDR3 injertados usando PLOP.

Humanización

Para humanización de los mAb anti PD-1, se buscaron genes de IgG de línea germinal humanos homólogos de las secuencias de ADNc de regiones variables de mu317 y mu326 mediante aplicación de blast de la base de datos de genes de inmunoglobulina humana en los sitios web de IMGT (http://www.imgt.org/IMGT vquest/share/textes/index.html) y NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/igblast/). El IGVH e IGV^k humanos con alta homología con los mAb de PD-1 se seleccionaron como el molde para humanización.

Se llevó a cabo humanización en principio mediante injertos de CDR. En el primer ciclo de humanización, las mutaciones de restos de aminoácidos de murinos a humanos en secuencias marco conservadas de regiones variables se guio mediante las estructuras tridimensionales simuladas y solamente los restos de aminoácidos murinos cuyos cambios conservaban la estructura de anticuerpo y bucle de CDR general se mutaron a secuencia humana como se ha descrito anteriormente. Las versiones iniciales de mAb humanizados fueron hu317-1 (SEQ NO 47-50) y hu326-1 (SEQ NO 55-58), que comprenden una cadena pesada con cadena pesada variable humanizada (Vh) fusionada con región constante de IgG2 humana (número de referencia del NCBI P01859) y una cadena ligera con cadena ligera variable humanizada kappa (V^k) fusionada con la región C de Ig kappa humana (número de referencia del NCBI P01834). De manera homóloga, se generaron anticuerpos quiméricos de mu317 y mu326, que consistían en un VH murino fusionado con una región constante de IgG2 humana y un Vk murino fusionado con la región C de Ig kappa humana. Los anticuerpos quiméricos completos se denominaron ch317 y ch326, respectivamente. Todos los mAb recombinantes se expresaron y purificaron como se ha descrito en el ejemplo 1. Los FACS y ensayos funcionales demostraron que mAb hu317-1 conservó casi la misma actividad de unión y funcional que el mu317 y ch317. La diferencia de CE50 en el análisis de FACS entre mu317 frente a ch317 y hu317-1 puede interpretarse por el hecho de que se usaron dos anticuerpos de detección diferentes, un IgG de cabra anti ratón y un IgG de cabra anti humano, en FACS. En los dos ensayos funcionales, las tres versiones de 317 se trataron de manera más igual y los resultados también están más cerca entre sí (tabla 11).

Como resultado del ciclo inicial de humanización para mu326, mAb hu326-1 conservó características funcionales similares al ch326 y mu326 originales, aunque la actividad funcional en el ensayo de unión de FACS y en el ensayo de liberación de IL-2 basado en células HuT78/PD-1 puede ser ligeramente más débil que el ch326 (tabla 12).

Tabla 11. Com aración de mu317 ch317 hu317-1 mediante FACS ensa os funcionales

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Tabla 12. Com aración de mu317 ch317 hu317-1 mediante FACS ensa os funcionales

En función del 1^er ciclo de humanización, se mutaron adicionalmente los otros restos de aminoácidos (AA) murinos en el marco conservado (FR) de hu317-1_Vh y ^{_ V k} individualmente para evaluar la influencia en la función del anticuerpo. Como se muestra en la tabla 13, las siete mutaciones individuales en Vh y una mutación en ^{V k} de hu317-1 tienen todas actividades funcionales similares. Solamente se observaron cambios menores en algunas mutaciones de Vh, tales como hu317-2_K71V con función inhibidora ligeramente más débil entre las mutaciones. Sin embargo, cuando todos los restos de aminoácidos murinos se mutaron juntos al humano (hu317-3A), la función es claramente más débil que el resto de las mutaciones en FACS y ensayos de liberación de IL-2.

En la prueba inicial descrita anteriormente, hu326-1 alcanzó un nivel de humanización significativo en la FR excepto por algunos restos de AA murinos restantes. Aun así, tiene función más débil que el mu326. Por lo tanto, se realizaron más mutaciones individuales de vuelta a restos murinos o hacia delante a restos humanos para explorar la contribución de cada AA individual a la función de mAb326. La tabla 14 presenta todas las mutaciones de AA individuales realizadas en función del molde de hu326-1_Vh (SEQ NO 56, SEQ NO 57) y sus resultados de ensayos funcionales. La mayoría de las mutaciones mostraron mejor actividad funcional que las de hu326-1, coincidiendo con el mAb mu326 original. Un par de mutaciones (E46K y F95Y) mostraron ligeramente menos potencia en la CE⁵⁰ o CI ⁵⁰ , lo que indica el papel de esos restos en la estructura y función del anticuerpo.

Tabla 13. Comparación de la actividad funcional de Fab con mutaciones de humanización en el marco conservado de hu317-1

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Tabla 14. Com aración de la actividad funcional de mAb con mutaciones^ en el marco conservado de hu326-1

Para explorar la mejor composición de secuencia de Vh y ^{V k} posible para los mAb 317 y 326 que podrían usarse como productos terapéuticos en seres humanos, se realizaron diversas mutaciones combinadas (incluyendo algunas mutaciones en las secuencias de CDR) teniendo en consideración las características de anticuerpos, tales como el nivel de humanización en FR, actividades funcionales, propiedades fisicoquímicas, citotoxicidad mediada por células dependiente de anticuerpo (ADCC) y citotoxicidad dependiente del complemento (CDC). La mayoría de las mutaciones se consideraron inadecuadas para los criterios de calificación. Mediante el proceso de modificación por ingeniería genética, se seleccionaron seis de los mAb recombinantes, humanizados, con respecto a su utilidad terapéutica potencial: hu317-4B2 (SEQ ID NO 43-44), hu317-4B5 (SEQ ID NO 45-46), hu317-4B6 (SEQ ID NO 23­ 26), hu326-3B1 (SEQ ID NO 51-52), hu326-3G1 (SEQ ID NO 53-54) y hu326-4A3 (SEQ ID NO 27-30). Las CDR del mAb se compararon con las de los anticuerpos murinos originales, mostrados en la tabla 15 y la tabla 16.

Entre los seis mAb, hu317-4B2, hu317-4B5 y hu317-4B6 están estrechamente relacionados entre sí en sus secuencias y son muy similares en sus actividades funcionales y su fuerza. Por otro lado, hu326-3B1, hu326-3G1 y hu326-4A3 están bastante cerca entre sí en sus secuencias y funcionalidades (tabla 17-18). Dentro de cada uno de los dos grupos de mAb, también compartían muchas otras características además de secuencias y función, tales como propiedades fisicoquímicas y epítopos de unión (descritos en los ejemplos 10 y 11), aunque existen algunas diferencias menores.

Tabla 15. Com aración de^ CDR entre diferentes versiones de^ mAb 317

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Tabla 16. Com aración de CDR entre diferentes versiones de mAb 326

Tabla 17. Actividades de unión de mAb humanizados ensa ados mediante ELISA FACS

Tabla 18. Afinidad de unión de Fab ensa ada mediante RPS

Determinación de la afinidad de Fab anti PD-1 humanizados mediante RPS

Se convirtieron mAb anti PD-1 en la versión de Fab mediante PCR para fusionar las regiones variables de cadenas pesadas y ligeras con el extremo N de IgG2-CH1 humano y región constante de cadena kappa, respectivamente, y se subclonaron en el vector pcDNA3.1 (Invitrogen). Ambos vectores de expresión se coexpresaron en células 293-F usando un protocolo de transfección transitoria similar a la expresión transitoria de anticuerpos completos. En resumen, la cadena kappa de Fab se amplificó mediante PCR y se subclonó en un vector de expresión basado en pcDNA3.1 (Invitrogen, Carlsbad, CA, EE. UU.). En un plásmido separado, la región variable de cadena pesada (VH) junto con la secuencia codificante de CH1 de IgG2 humano se fusionó con un marcador de c-Myc-His8 C terminal mediante PCR solapante y después se subclonó en el vector de expresión. Las mutaciones C232S y C233S (numeración de restos de Kabat, Kabat et al. Sequence of proteins of immunologic interest, 5a ed Bethesda, MD, NIH 1991) se introdujeron en la cadena pesada de IgG2 para evitar el intercambio de enlaces disulfuro y estabilizar IgG2 humana en la conformación de IgG2-A (Lightle et al. 2010 Protein Sci 19 (4): 753-762). Ambas construcciones contenían un péptido señal cadena arriba de las secuencias maduras de Fab. Se logró expresión secretada de Fab mediante cotransfección de 2 plásmidos anteriores en células 293-F y se recogieron los sobrenadantes de cultivo celular 6-7 días después de la transfección. Se purificaron Fab marcados con His8 de sobrenadantes de cultivo celular usando una columna de Ni-sepharose Fast Flow (Cat. n.° 17531801, GE Life Sciences) seguido de cromatografía de exclusión por tamaño usando una columna HiLoad 16/60 Superdex200 (Cat. n.° 17106901, GE Life Sciences). Los Fab purificados se concentraron hasta 0,5-5 mg/ml en PBS y se almacenaron en alícuotas en un congelador a -80 °C.

Para determinaciones de afinidad de Fab anti PD-1, se usaron ensayos de RPS con el instrumento BIAcore™ T-200 (GE Life Sciences). En resumen, se acopló PD-1/His humano o PD-1/His de mono cinomolgo a chips biosensores CM5 activados (Cat. n.° BR100530, g E Life Sciences) para conseguir aproximadamente 100-200 unidades de respuesta (UR), seguido de bloqueo de los grupos que no había reaccionado con etanolamina 1 M. Se inyectaron muestras de Fab de concentración creciente de 0,12 nM a 90 nM en el tampón de ejecución de RPS (HEPES 10 mM, NaCl 150 mM, Tween20 al 0,05 %, pH 7,4) a 30 pl/minuto y se calcularon las respuestas de unión en PD-1/His humana o PD-1/His de mono restando las UR de una celda de flujo en blanco. Se calcularon las velocidades de asociación (k^on) y velocidades de disociación (k^off) usando el modelo de unión de Langmuir uno a uno (Software BIA Evaluation, GE Life Sciences). La constante de disociación en equilibrio (K^d) se calculó como la relación k^off/k^on.

Las afinidades de unión determinadas mediante RPS de Fab anti PD-1 se han enumerado en la tabla 18. Cada Fab anti PD-1 se unió con alta afinidad (K^d = 0,15-1 nM) con PD-1 humana. Todos los Fab, excepto 326-3G1, se unieron con afinidades ligeramente menores pero similares (en un intervalo de 5 veces en Kd) con PD-1 de mono cinomolgo.

Ejemplo 8. Generación y expresión de mAb anti PD-1 recombinantes con región constante de IgG4 humana modificada

Ya que PD-1 se expresa principalmente en linfocitos T activados, se espera que los anticuerpos de bloqueo de PD-1 ligados al tipo de origen natural de restos de IgG-^Fc induzcan funciones efectoras mediadas por □Fc, tales como ADCC y CDC, en un grado variable dependiendo de las subclases de IgG, lo que da como resultado la eliminación de linfocitos T activados (Natsume A., et al, 2009 Drug Des Devel Ther. 3: 7-16). Se ha mostrado en muchos informes anteriores que la subclase de anticuerpo humano IgG4 tiene ADCC moderada y casi ninguna función efectora CDC (Moore GL, et al. 2010 MAbs, 2: 181-189). Por otro lado, se ha descubierto que la IgG4 natural es menos estable en condiciones de tensión tales como en tampón ácido o en temperatura creciente (Angal, S. 1993 Mol Immunol, 30:105-108; Dall'Acqua, W. et al, 1998 Biochemistry, 37: 9266-9273; Aalberse et al. 2002 Immunol, 105: 9-19). Para evitar que los linfocitos T PD-1 ⁺ sean destruidos y mejorar las propiedades fisicoquímicas de los anticuerpos anti PD-1, los mAb humanizados se unieron a IgG4 modificado por ingeniería genética mediante combinaciones de mutaciones para tener actividades de unión a F^cyR o unión a C1q reducidas o nulas, atenuando o eliminando, por lo tanto, las funciones efectoras ADCC y CDC. Teniendo en cuenta las propiedades fisicoquímicas del anticuerpo como un fármaco biológico, una de las propiedades menos deseables, intrínsecas, de IgG4 es la separación dinámica de sus dos cadenas pesadas en solución para formar medio anticuerpo, lo que conduce a anticuerpos biespecíficos generados in vivo mediante un proceso denominado "intercambio de ramas de Fab" (Van der Neut Kolfschoten M, et al. 2007 Science, 317: 1554-157). La mutación de serina a prolina en la posición 228 (sistema de numeración de EU) pareció ser inhibidora para la separación de cadenas pesadas de IgG4 (Angal, S.

1993 Mol Immunol, 30: 105-108; Aalberse et al. 2002 Immunol, 105: 9-19). Se ha informado de que algunos de los restos de aminoácidos en la región bisagra y ^yF^c influyen en la interacción del anticuerpo con receptores F^cy (Chappel SM, et al. 1991 Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88: 9036-9040; Mukherjee, J et al., 1995 FASEB J, 9: 115-119; Armour, K.L. et al., 1999 Eur J Immunol, 29: 2613-2624; Clynes, R.A. et al., 2000 Nature Medicine, 6: 443-446; Arnold J.N., 2007 Annu Rev Immunol, 25: 21-50). Asimismo, algunas isoformas de IgG4 que aparecen con poca frecuencia en la población humana también pueden inducir diferentes propiedades fisicoquímicas (Brusco, A. et al.

1998 Eur J Immunogenet, 25: 349-55; Aalberse et al. 2002 Immunol, 105: 9-19). Sin embargo, la agrupación de todas las mutaciones e isoformas previamente descubiertas en un anticuerpo específico no garantiza que una molécula de anticuerpo ideal comparta todas las características de productos terapéuticos tal como se ha descrito anteriormente, lo que puede resultar del efecto contradictorio de las mutaciones combinadas y de la influencia de la región variable en la función efectora y las propiedades fisicoquímicas de un anticuerpo (Igawa T. et al., 2010 Prot Eng Design Select, 23: 385-392; Perchiacca J.M. y Tessier P.M., 2012 Ann Rev Biomol Eng 3: 263-286).

Para generar mAb anti PD-1 con menos ADCC, CDC e inestabilidad, se modificaron la región bisagra y ^yF^c de IgG4 humano mediante la introducción de varias combinaciones de mutaciones, que crearon de IgG4mt1 a IgG4mt12. Algunas de las variantes de IgG4 modificadas eran claramente menos deseables como se indica por los resultados del ensayo, varias variantes de IgG4 relevantes y secuencias modificadas se enumeraron en la tabla 19. La evaluación de estos anticuerpos se describe en el presente documento.

T l 1. M ifi i n n i v ri n I 4

continuación

Ejemplo 9. IgG4mt10 no tiene unión a FcyR, y tiene menor función efectora ADCC y CDC

ADCC se inicia cuando un anticuerpo se une con la proteína diana de superficie celular seguido de ligamiento con receptores Fcy (FcyR) expresados en células efectoras. Está bien documentado que IgG1 humano tiene unión significativamente mayor con F^cyR que IgG2 e IgG4, especialmente, unión con F^cyR-1 y F^cyR-IIIA, que se correlacionó con la fuerza de IgG1 para activar ADCC. De manera que recuerda a ADCC, CDC se activa cuando un anticuerpo se entrecruza con una diana de superficie celular y proteína C1q, que se sigue de una reacción en cascada de formación del complejo del complemento y lisis de células diana. Como sustituto de ADCC y CDC, los ensayos de unión de anticuerpos con FcyR y C1q pueden actuar como el indicador fundamental de ADCc y CDC. Se evaluó por lo tanto de manera sistemática la unión de mAb con todos los FcyR principales.

Unión a F^cyR

Se determinó la unión de diversos mutantes de IgG4 con FcyR mediante citometría de flujo. En resumen, se estableció una serie de transfectantes de HEK293 que expresaban FcyR humanos. Estos transfectantes expresaban FcyRI, FcyRIIA, FcyRIIB o FcyRIIIA. Se coexpresaron FcyR multisubunitarios (es decir, FcyRI y FcyRIIIA) con FcRy. También se incluyeron variantes polimórficas (es decir, FcyRIIA H131 y R131, FcyRIIIA F158 y V158). Se usó un anticuerpo secundario (F(ab)'2 de cabra anti IgG humano-Alexa Fluor 488, Jackson ImmunoResearch, West Grove, PA, EE. UU.) para detectar la unión de mAb anti PD-1 con variantes de IgG4 modificadas (tabla 19) con células HEK293 F^cyR+. Como se esperaba, los mAb anti PD-1 en formato IgG1 (hu317-1/IgG1 y hu317-4B6/IgG1) se unen fuertemente con todos los F^cyR, incluyendo F^cyRI, F^cyRIIA (alelos H131 y R131), F^cyRIIB y F^cyRIIIA (alelos V158 y F158) (tabla 20). Resulta interesante que cuando las dos versiones diferentes de mAb de humanización, hu317-1 y hu317-4B6 (con diferencias tanto en Vh como en V^k), se generaron en el mismo formato variante de IgG4, tal como en formato de IgG4mt1 o en formato de IgG4mt6, su fuerza de unión (IFM) varía en un intervalo de dos veces a casi 100 veces (por ejemplo, 455,2/115,7 = 3,9 veces; 13,6/1,0 = 13,6 veces; 434,6/4,9 = 88,7 veces; etc., véase tabla 20). Es coherente con los hallazgos anteriores por otros de que las regiones variables de los anticuerpos no tienen una influencia significativa en la unión con FcR, ejerciendo, por lo tanto, la influencia en la función efectora tal como ADCC (Igawa T. et al., 2010 Prot Eng Design Select, 23: 385-392; Perchiacca J.M. y Tessier P.M., 2012 Ann Rev Biomol Eng 3: 263-286).

Como se demuestra en la tabla 20, cuando se prepararon hu317-4B6 y hu326-4A3 en formato de IgG4mt10, tenían la menor actividad de unión con F^cyR entre los mAb de PD-1 y formatos variantes de IgG enumerados en la tabla, así como muchos otros mAb de humanización y formatos de IgG que se ensayaron en el estudio. La singularidad de hu317-4B6 y hu326-4A3 en el formato de IgG4mt10 a este respecto puede no extenderse a la misma familia de mAb de humanización con homología de secuencia algo distante, tal como hu317-1, como se ha descrito anteriormente.

Tabla 20. Fuerza de unión IFM* de mAb anti PD-1 con FmR determinada mediante FACS

ADCC

La ADCC clásica implica la activación de linfocitos NK mediante anticuerpos que interaccionan con F^cyRIIIA o CD16. Para verificar si los mAb anti PD-1 humanizados inducen ADCC, se usaron células NK92MI/CD16V, que se generaron a partir de células NK92MI (ATCC) mediante cotransducción de plásmidos de expresión que contenían genes CD16 (alelo V158) y FcRy, como células efectoras, y se usó la línea de linfocitos T que expresa PD-1, HuT78/PD-1, como células diana. Se cocultivaron células NK92MI/CD16V (4x104) con un número igual de células HuT78/PD-1 en placas de fondo en V de 96 pocillos durante 5 horas. Se determinó la citotoxicidad mediante ensayo de liberación de LDH descrito en la sección anterior. Los resultados confirmaron que hu317-4B2/IgG4mt6, hu317-4B6/IgG4mt6, hu317-4B6/IgG4mt10 y hu326-4A3/IgG4mt10 tenían todos nivel basal de ADCC en comparación con los controles positivos (fig. 7). La diferencia menor en ADCC entre esos 4 mAb puede ser atribuible al error experimental (véase barras de error en la fig. 7).

CDC

Los anticuerpos IgG4 humanos, en general, no inducen ninguna CDC mediante la ruta clásica. Se evaluó si los mAb anti PD-1 en formato IgG4mt10 desencadenarán CDC usando una línea de linfocitos T que expresan PD-1-, Hut78/PD-1 y suero humano nuevo de donantes sanos. Se determinó la lisis celular mediante CDC por equipos de ensayo de Celltiter glo (Promega, Beijing, China). En resumen, se incubaron células HuT78/PD-1 (2x104) en RPMI1640 sin suero (Invitrogen) con Ab anti PD-1 (10pg/ml) a 37 °C durante 15 minutos antes de añadir suero humano normal (NHS) a la concentración final de 15% o 50% en placas de fondo plano de 96 pocillos en un volumen total de 120 pl. Después de incubación durante una noche a 37 °C, las células se lisaron y ensayaron para determinar la concentración de ATP. Para probar si los mAb anti PD-1 humanizados en IgG4mt10 pueden destruir linfocitos T primarios PD-1 mediante CDC, se preactivaron PBMC aisladas de donantes sanos con Ab anti CD3 OKT3 (40 ng/ml) durante 3 días antes de cocultivo con Ab anti PD-1 más NHS. La cantidad de ATP es directamente proporcional al número de células presentes en cultivo. Se leyó la fluorescencia usando un fluorímetro de 96 pocillos (PHERA Star FS, BMG LABTECH). Los resultados se expresan en unidades de fluorescencia relativas (UFR) que son proporcionales al número de células viables. El porcentaje de actividad de CDC se calculó de la siguiente manera: % de actividad de CDC = [(UFR de prueba - UFR de fondo)/(UFR en lisis celular total - UFR de fondo)] x 100. En general, no se pudo detectar ninguna ADCC mediada por mAb anti PD-1 en formato IgG4mt10 que se unan con PBMC activadas. En condiciones experimentales hipersensibles, tales como usando la línea celular que expresa en gran medida PD-1, alta concentración de suero y anticuerpos, se detectó un nivel muy bajo de CDC en algunas ocasiones, y no hubo muchas diferencias entre diferentes versiones y mAb anti PD-1, lo que indica que los mAb anti PD-1 en formatos variantes de IgG4 conservaron la característica de actividad CDC baja o ausente como la forma común de IgG4.

Ejemplo 10. Los mAb anti PD-1 humanizados en formato IgG4mt10 tienen mayor estabilidad en condiciones de tensión

Estabilidad de anticuerpos anti PD-1 en condiciones de alta temperatura y ácidas.

Los anticuerpos anti PD-1 usados en estudios de estabilidad se purificaron todos a partir de columna de proteína A seguido de cromatografía de exclusión por tamaño (SEC) como se ha descrito en secciones anteriores. Después de la purificación, los contenidos del agregado de muestras de anticuerpos purificados se supervisaron en cromatografía de exclusión por tamaño analítica-cromatografía líquida de alto rendimiento (SEC-HPLC), que quedaron dentro del intervalo de 0 % -0,5 %.

Para análisis de SEC-HPLC, las muestras de anticuerpos se analizaron usando una columna de TSKgel G3000 SWXL (7,8x300 mm, Cat. n.°. 08541, Tosoh Bioscience, Shanghái, China) en condiciones de elución isocrática (tampón de elución de fosfato de sodio 0,2 M, pH 7,2) y detección posterior a UV-215 nm. En cada ciclo, se cargaron 10 microlitros de muestra de anticuerpo en la columna y se eluyeron a un caudal de 1 ml/minuto. El dímero de especies de agregados mayores de anticuerpos se separaron de las especies monoméricas y se determinaron los porcentajes de dímeros y agregados en función de las áreas máximas integradas de trazas UV.

Para estudio de estabilidad en almacenamiento con velocidad mejorada, los anticuerpos anti PD-1 (10-40 mg/ml en PBS) se mantuvieron en incubadoras a 40-50 °C durante 4-7 días para probar la estabilidad de los anticuerpos en condiciones de alta temperatura. Las muestras de anticuerpos se analizaron después para determinar la formación inducida por calor de dímero y agregados en SEC-HPLC. Para cada uno de los anticuerpos anti PD-1 analizados, menos del 2 % se convirtieron en especies de mayor peso molecular (dímeros y agregados), lo que indica que los anticuerpos anti PD-1 tuvieron buena estabilidad en condiciones de alta temperatura.

La estabilidad del anticuerpo en condición ácida ha sido un reto clave en el proceso de fabricación corriente abajo (Liu et al. 2010 mAbs 2:480-499). La elución de anticuerpos a partir de proteína A e inactivación de virus requieren habitualmente incubación del anticuerpo en condiciones de pH bajo (2,5-4). Sin embargo, dichas condiciones ácidas podrían provocar potencialmente desnaturalización y agregación de los anticuerpos. Se ha sabido que el IgG4 humano es menos estable que IgG1 e IgG2 (2002 Immunology 105:9). Por lo tanto, se ensayaron los mAb humanizados preparados con diversas formas mutantes de IgG4. En resumen, se estudiaron las estabilidades de anticuerpos en condiciones de pH bajo en volumen 1:1 de cada muestra de anticuerpo (10 mg/ml en PBS) mezclada con tampones de pH bajo que contenían citrato de sodio 50 mM, NaCl 100 mM a pH 3,6, 3,3, 3,0 o 2,7, respectivamente. Después de 1 hora de incubación a temperatura ambiente, las muestras de anticuerpos en condiciones de pH bajo se neutralizaron mediante dilución 1:5 en tampón de elución de SEC-HPLC que contenía fosfato de sodio 0,2 M, pH 7,2. Se realizaron análisis de SEC-HPLC como se ha descrito anteriormente y se cuantificaron los porcentajes de dímeros y agregados inducidos por condiciones de pH bajo. El mAb anti PD-1 317-4B6 en formato IgG1 era más estable en condiciones ácidas relevantes para bioprocesamiento incluso cuando el valor de pH se hace tan bajo como 2,7. Entre los mAb anti PD-1 preparados en varias variantes de IgG4, hu317-4B6/IgG4mt10 y hu326-4A3/IgG4mt10 fueron los más estables en la condición de tampón ácido (tabla 21) ya que los agregados inducidos por ácido se redujeron significativamente hasta un nivel que era similar al del formato de IgG1 de mAb anti PD-1, 317-4B6 y 326-4A3, es decir el agregado soluble es menos del 2 % (tabla 21).

Tabla 21. Dímeros a re ados solubles formados en tam ones ácidos ensa ados mediante SEC-HPLC

Ejemplo 11. Mapeo de los epítopos de unión de mAb anti PD-1

Informes previos acerca de las estructuras cristalinas de complejos de PD-1/PD-L1 y PD-1/PD-L2 han aportado información para el entendimiento de los restos de aminoácidos (AA) críticos en PD-1 que son necesarios para la unión a ligando (Zhang et al. 2004 Immunity, 20:337-347; Lin DY et al. 2008 PNAS 105:3011-3016; Lazar-Molnar E. et al. 2008 PNAS, 105:10483-10488). De hecho, seis de dichos restos de AA se identificaron en el receptor mediante análisis de mutación puntual necesario para unión a PD-L1. Cinco de los seis restos de AA también eran necesarios para la unión a PD-L2 (Lin D.Y. et al. 2008 PNAS 105:3011-3016). Basándose en la información del análisis de mutación guiada por estructura se planteó la hipótesis de que el modo más eficaz para que los mAb funcionales bloqueen la señalización mediada por PD-1 es competir con ligandos de PD-1 uniéndose con los seis restos de AA críticos ocupando, por lo tanto, los epítopos de unión necesarios para la unión a ligando. Para explorar la hipótesis y entender el mecanismo de acción mediante anticuerpos de PD-1 funcionales, se realizaron seis mutantes de PD-1 reemplazando cada uno de los seis AA críticos por Ala, individualmente, es decir, K45A, I93A, L95A, P97A, I101A y E103A (numeración de restos de AA basada en Lin D.Y. et al. 2008 PNAS 105: 3011-3016). Los mutantes PD-1/Fc y PD-1/His (fig. 1) se usaron como moldes para mutagénesis guiada por PCR o mutagénesis de círculo rodante usando el sistema de mutagénesis rápida (Cat. n.° FM111, Transgen Biotech, Beijing, China). Todos los mutantes se subclonaron en los vectores de expresión basados en pcDNA de los inventores y se verificaron mediante secuenciación. Las proteínas PD-1 mutadas y de tipo silvestre se expresaron mediante transfección transitoria (descrita en el ejemplo 1) y se prepararon después de 4 a 6 días de cultivo. El medio acondicionado (MC) se analizó mediante transferencia de Western para verificar la expresión de la proteína PD-1 con respecto a calidad y cantidad. Los sobrenadantes (MC), después de eliminar los residuos celulares, se usaron directamente en análisis de ELISA o transferencia de Western para mapeo de epítopos.

Para estudiar los epítopos de unión de mAb anti PD-1 humanizados, se realizaron ensayos de ELISA usando el PD-1 de tipo silvestre (TS) y mutante (Mt) para evaluar las actividades de unión de hu317-4B5, hu317-4B6, hu326-3B1 y hu326-4A3. Para comprobar la singularidad de la identificación de unión del anticuerpo, se incluyeron dos anticuerpos de referencia (Ab de referencia 1 y Ab de referencia 2 de los documentos US8008449B2 y US8168757B2, respectivamente) en el estudio. Se aplicó un volumen igual de MC que contenía PD-1 TS o Mt en una placa de 96 pocillos para todos los mAb en el mismo ensayo de ELISA. Todos los resultados de ELISA se normalizaron usando las lecturas de ELISA medias de señales de unión de PD-1 TS como el patrón. Las señales de unión de ELISA con un PD-1 Mt específico se normalizaron adicionalmente frente a la mayor lectura de unión de anticuerpo (establecida como 100 %) con el PD-1 Mt específico. Por conveniencia para el análisis de datos, cuando una señal de unión de ELISA de un mAb para un mutante específico descendió por debajo del 50 % en relación con PD-1 TS, se define que el resto de aminoácido es un epítopo de unión significativo porque su mutación anuló significativamente la unión de anticuerpo. De manera análoga, si una señal de unión a ELISA de un mAb para un mutante específico descendió por debajo del 25 %, se define como muy significativa. Como se muestra en la fig. 8, dos de los restos de AA críticos en PD-1, K45 e I93, son epítopos significativos o muy significativos para unión de mAb hu317-4B5 y hu317-4B6 y tres restos de AA, I93, L95 y P97, son epítopos significativos o muy significativos para hu326-3B1 y hu326-4A3. Por otro lado, los dos anticuerpos de referencia tienen epítopos de unión definidos, P97 es significativo para la referencia Ab-1, mientras que L95 y P97 son significativos para el Ab de referencia 2.

Resulta interesante que cuando la proteína PD-1 está desnaturalizada en transferencia de Western, los mAb hu3174B5 y -4B6 aún eran capaces de unirse con PD-1 TS, aunque los epítopos de unión críticos (K45 e I93) no están cerca entre sí (no lineales). Se indica que la proteína PD-1 se renaturalizó en algún grado después de la desnaturalización en SDS-PAGE del proceso de Transferencia de Western, que permite que los mAb anti PD-1 la reconozcan y se unan con ella. Aprovechando esta observación, se realizó análisis de transferencia de Western para los seis anticuerpos usados en el estudio de ELISA anterior. Los resultados generales de transferencia de Western corroboraron muy bien los resultados de ELISA, es decir los epítopos significativos o muy significativos, cuyas mutaciones dieron lugar a señales de unión bajas en ELISA, también proporcionaron la banda de transferencia de Western más débil en comparación con la unión con otro PD-1 mutante (fig. 8). También se observaron algunas diferencias menores entre ELISA y transferencia de Western, p. ej., las señales de unión de ELISA en I93A y E103A por el Ab de referencia 2 fueron relativamente más fuertes que las de la transferencia de Western. Puede ser indicativo de que esos restos de AA también pueden contribuir a la unión debido a que sus mutaciones influyen en la unión, aunque solo en condiciones de tensión (es decir, desnaturalización o pérdida de la conformación nativa). Como se resume en la tabla 22, los mAb anti PD-1 en la presente invención tienen epítopos de unión identificables que difieren de otro anticuerpo anti PD-1.

Tabla^ 22. Sumario* de e íto os clave mediante mAb anti PD-1

Ejemplo 12. Los mAb anti PD-1 activan PBMC humanas primarias e inhiben el crecimiento tumoral en modelos de ratón de xenoinjerto

Los mAb anti PD-1 humanizados activan PBMC humanas

Durante todos los procesos de humanización, los mAb anti PD-1 humanizados en diversas etapas conservaron actividades funcionales similares según lo evaluado mediante ELISA, FACS y ensayos de liberación de citocinas basados en células inmunitarias. Para confirmar la función de las versiones finales de mAb humanizados, se ensayaron las funciones activadoras de hu317-4B5, hu317-4B6, hu326-3B1 y hu326-4A3 usando PBMC humanas primarias. Los resultados demostraron que los mAb durante toda la humanización mantuvieron las funciones de mAb murino original para activar PBMC primarias, aunque el grado de activación difiere entre los cuatro donantes debido a la variación del fondo genético del individuo (fig. 9).

Los mAb anti PD-1 humanizados potencian la citotoxicidad basada en linfocitos NK contra células cancerosas De manera que recuerda a los mAb murino originales, los mAb anti PD-1 humanizados, hu317-4B5, hu317-4B6, hu326-3B1 y hu326-3G1, potencian la citotoxicidad mediada por células NK92MI/PD-1 contra las células de cáncer de pulmón diana, SK-MES-1/PD-L1, de una manera dependiente de dosis (fig. 10, tabla 23). Pareció evidente que, en principio, los mAb anti PD-1 humanizados podrían actuar para romper la tolerancia de las células inmunitarias mediada por señalización de PD-1, potenciando la actividad de destrucción del cáncer mediante células inmunitarias, p. ej., linfocitos NK y linfocitos T citotóxicos.

El mAb anti PD-1 humanizado activa PBMC humanas e inhibe el crecimiento tumoral en un modelo de cáncer de xenoinjerto de ratón in vivo

Toda la prueba experimental anterior indicó que los mAb anti PD-1 podrían actuar en modelos de cáncer de ratón utilizando ratones inmunocomprometidos con xenoinjertos de células de cáncer humano, implantando posteriormente PBMC humanas y aplicando el tratamiento de mAb para inhibir el crecimiento de células cancerosas in vivo. El experimento se diseñó de la siguiente manera. Se inocularon ratones macho SCID de siete-ocho semanas de edad (Vital River Laboratories, China) por vía subcutánea en el flanco derecho con 3x106 células Hep3B/OS8-PD-L1 en Matrigel al 50 % (BD Biosciences, Nueva Jersey, EE. UU.). Quince días después de la inoculación tumoral, los ratones que portaban un tamaño tumoral de entre 100 y 250 mm3 se aleatorizaron y se dividieron en tres grupos de tratamiento. Se inyectaron por vía intratumoral cien microlitros de PBMC agrupadas (5x105) de 2 donantes sanos. Tres días después de la implantación de PBMC, se administraron anticuerpos anti PD-1 (Hu317-IgG4mt2) e IgG humano mediante s.c. a una dosis de 10 mg/kg, respectivamente. Se repitió el tratamiento con anticuerpos una vez cada 10 días durante un total de 3 veces. Se inyectó PBS en un grupo paralelo como control negativo. Los tumores se midieron dos veces a la semana usando un calibrador a partir del día 7. Los volúmenes tumorales se calcularon usando la siguiente fórmula: [D x (d2)]/2, en la que D representa el diámetro mayor del tumor, y d representa el diámetro menor. Todos los estudios de animales se realizaron siguiendo los Procedimientos de Cuidado y Uso de Animales de Beigene.

Claims (10)

REIVINDICACIONES

1. Un anticuerpo que comprende un dominio de unión a antígeno de anticuerpo que se une con PD-1 humana y comprende una región variable de cadena pesada (Vh) que comprende el SEQ ID NO: 24, y una región variable de cadena ligera (Vk) que comprende el SEQ ID NO: 26, en donde el anticuerpo es monoespecífico.

2. El anticuerpo de la reivindicación 1, que comprende un dominio constante de IgG4 que comprende uno cualquiera de los SEQ ID NO: 83-88.

3. El anticuerpo de la reivindicación 1, que comprende un dominio constante de IgG4 que comprende el SEQ ID NO: 87 o el SEQ ID NO: 88.

4. El anticuerpo de la reivindicación 1, que comprende un dominio constante de IgG4 que comprende el SEQ ID NO: 88.

5. Un anticuerpo que comprende un dominio de unión a antígeno de anticuerpo que se une a PD-1 humana y comprende una región variable de cadena pesada (Vh) que comprende el SEQ ID NO: 24, y una región variable de cadena ligera (Vk) que comprende el SEQ ID NO: 26, para su uso en terapia.

6. El anticuerpo para el uso de la reivindicación 5, para su uso en el tratamiento del cáncer o de una infección vírica en un ser humano.

7. El anticuerpo para el uso según la reivindicación 6 en el tratamiento del cáncer en un ser humano.

8. El anticuerpo para el uso según una cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7, que comprende un dominio constante de IgG4 que comprende uno cualquiera de los SEQ ID NO: 83-88.

9. El anticuerpo para el uso según una cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7, que comprende un dominio constante de IgG4 que comprende el SEQ ID ⁿO: 87 o el SEQ ID NO: 88.

10. El anticuerpo para el uso según una cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7, que comprende un dominio constante de IgG4 que comprende el SEQ ID NO: 88.