JP2000279200A - C型肝炎ウイルス(hcv)の効率的検出のためのオリゴヌクレオチドプライマーおよびそれの使用 - Google Patents

C型肝炎ウイルス(hcv)の効率的検出のためのオリゴヌクレオチドプライマーおよびそれの使用

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Abstract

(57)【要約】 (修正有) 【課題】C型肝炎ウイルス(HCV)RNAの効率的逆
転写のための新規オリゴヌクレオチドプライマーを開示
する。また生物学的試料中のHCV核酸配列を検出する
ための方法およびキットを提供する。 【解決手段】本発明の方法は生物学的試料より誘導した
RNAを鋳型として逆転写反応を行うことにより、HC
V特異的逆転写物を生成させ、これをHCV特異的プロ
ーブで検出する。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明が属する技術分野】本発明は、生物学的試料中の
核酸配列、特に感染性微生物に由来する配列の改良検出
方法に関する。
【0002】
【従来の技術】C型肝炎ウイルス(HCV)は、世界中
の大部分の輸血後肝炎の症例とかなりの割合の散在性
(または地域社会獲得性)肝炎の症例の原因である、非
経口的に伝染するウイルスである。世界人口の1%超が
HCVに感染していると見積もられている。HCV感染
は急性肝炎、慢性肝炎、肝硬変および肝細胞癌に関係が
ある。
【0003】HCVは現在フラビウイルス科(Flavivir
idae)の中の独自のヘパチウイルス属(Hepacivirus )
として分類されている。そのゲノムは、約3,000 アミノ
酸のポリタンパク質前駆体をコードする単一の大きな転
写解読枠(ORF)を有する約9,500 ヌクレオチドの正
鎖RNA分子から成る。この大きなORFの上流には、
ゲノムの最も高度に保存された領域である約340 ヌクレ
オチドの5′非コード領域(NCR)がある。このOR
Fの5′領域は(5′→3′方向で)キャプシドタンパ
ク質、2つのエンベロープ糖タンパク質(E1とE2)
および未知の機能を有する小さなタンパク質(P7)を
コードする。このORFの3′領域は、プロテアーゼ、
プロテアーゼ/ヘリカーゼ二機能性タンパク質、RNA
ポリメラーゼおよび調節タンパク質を包含する非構造タ
ンパク質をコードする。
【0004】世界中からのHCVコード配列の分析によ
り、個々のウイルス分離株間で相当な配列変異が明らか
になった。更に、個々の患者からのHCV配列の分析に
より、関連するが同一でない配列を含むいわゆる「準種
"quasi-species"」としてウイルスが流布することが示
された。分離株間と個々の患者間に存在する変異は、ウ
イルスによりコードされるRNA依存性RNAポリメラ
ーゼが低い信頼度を有することの結果であると考えられ
る。HCVの遺伝的変異の程度は、感染の予防、診断お
よび制御にとって重要な意味を持つ。
【0005】HCV感染の血清学的診断は、典型的には
組換えHCVタンパク質またはペプチドを結合する抗体
を検出する市販のエンザイムイムノアッセイ(EIA)
により測定される。陽性EIA結果は組換え免疫ブロッ
トアッセイ(RIBA)により確かめることができる
が、EIAもRIBA法も現在の感染と過去の感染を区
別することはできない。循環しているウイルスは典型的
には低いウイルス価であるために、ウイルスタンパク質
についての直接アッセイの開発は成功していない。更
に、抗体に依存するアッセイは一般に、暴露後2〜3カ
月間はHCV感染を検出することができない。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】従って、HCVへの患
者の暴露後数日以内にHCVウイルス血症を検出するの
に十分な位感受性であるHCVについての改良アッセイ
が当該技術分野で必要とされている。
【0007】
【課題を解決するための手段】本発明は、一面では、生
物学的試料中のC型肝炎ウイルス(HCV)RNAの存
在の検出方法に向けられる。この方法は、 (A) 鋳型として前記試料から誘導したRNAを使って逆
転写反応を行うことにより、HCV特異的逆転写生成物
を生成させ; (B) HCVに特異的な1または複数のオリゴヌクレオチ
ドプライマー対を使用して前記逆転写生成物を増幅せし
めることにより、HCV特異的増幅生成物を生成させ、
前記プライマー対は(a) 正プライマー 5'-CAGAAAGCGTC
TAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配列番号1〕と逆プ
ライマー 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R2
6)〔配列番号4〕;または(b) 正プライマー 5'-GGGAG
AGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25) 〔配列番号2〕と
逆プライマー 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C29
4R25) 〔配列番号7〕;および(c) 正プライマー 5'-G
TGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)〔配列番号
3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282
R27)〔配列番号5〕および(ii) 5'-CACTCGCAAGCACCCTAT
CAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕から成る群より
選ばれた逆プライマーから成る群より選ばれ;そして (C) 前記増幅生成物を検出するという各段階を含んで成
り、前記増幅生成物の検出が前記試料中のHCV RN
Aの存在を示すことを特徴とする。
【0008】別の面では、本発明はC型肝炎ウイルス
(HCV)DNAの増幅方法に向けられる。この方法
は、(A) HCV DNAを含有するDNA試料におい
て、HCVに特異的な1または複数のオリゴヌクレオチ
ドプライマー対を使ってポリメラーゼ連鎖反応を行うこ
とにより、HCV特異的増幅生成物を生成させることを
含んで成り、ここで前記プライマー対は(a) (i) 5'-CA
GAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28)〔配列番号
1〕,(ii) 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F2
5)〔配列番号2〕および(iii)5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGA
GTACAC-3' (C143F26) 〔配列番号3〕から成る群より選
ばれた正プライマーと(b) (i) 5'-CGGTTCCGCAGACCACTA
TGGCTCTC-3' (C133R26) 〔配列番号4〕,(ii) 5'-GCAA
GCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282R27)〔配列番号
5〕,(iii)5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287
R27)〔配列番号6〕および(iv) 5'-CGGGGCACTCGCAAGCAC
CCTATCA-3' (C294R25)〔配列番号7〕から成る群より選
ばれた逆プライマーとを含んで成る。
【0009】第三の面では、本発明は生物学的試料中の
C型肝炎ウイルス(HCV)RNAの存在の検出方法に
向けられる。この方法は、 (A) 鋳型として前記試料から誘導したRNAを使って逆
転写反応を行うことにより、HCV特異的逆転写生成物
を生成させ; (B) 正プライマーと逆プライマーを使って前記逆転写生
成物を増幅させることにより、HCV特異的増幅生成物
を生成させ、前記正プライマーがオリゴヌクレオチド
5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3'(1F27) 〔配列番号
8〕から成り、そして前記逆プライマーがオリゴヌクレ
オチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)
〔配列番号9〕から成り;そして (C) 前記増幅生成物を検出するという各段階を含んで成
り、前記増幅生成物の検出が前記試料中のHCV RN
Aの存在を示すことを特徴とする。
【0010】第四の面では、本発明はC型肝炎ウイルス
(HCV)DNAの増幅方法に向けられる。この方法
は、(A) HCV DNAを含有するDNA試料におい
て、正プライマーと逆プライマーを使ってポリメラーゼ
連鎖反応を行うことにより、HCV特異的増幅生成物を
生成させることを含んで成り、前記正プライマーがオリ
ゴヌクレオチド 5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3'
(1F27) 〔配列番号8〕から成り、そして前記逆プライ
マーがオリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTG
CAGTC-3' (57R27)〔配列番号9〕から成る。
【0011】第五の面では、本発明は生物学的試料中の
C型肝炎ウイルス(HCV)RNAの存在の検出方法に
向けられる。この方法は、 (A) 鋳型として前記試料から誘導したRNAを使って逆
転写反応を行うことにより、HCV特異的逆転写生成物
を生成させ; (B) HCVに特異的な1または複数の5′NCRオリゴ
ヌクレオチドプライマー対と1または複数の3′NCR
オリゴヌクレオチドプライマー対とを使って、前記逆転
写生成物を増幅させることにより、HCV特異的増幅生
成物を生成させ、前記5′NCRオリゴヌクレオチドプ
ライマー対の各々が(a) (i) 5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGG
CGTTAGTA-3' (C69F28)〔配列番号1〕,(ii) 5'-GGGAGA
GCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25)〔配列番号2〕およ
び(iii)5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)
〔配列番号3〕から成る群より選ばれた正プライマーと
(b) (i) 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R2
6) 〔配列番号4〕,(ii) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTAC
CACA-3' (C282R27)〔配列番号5〕,(iii)5'-CACTCGCAA
GCACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕およ
び(iv) 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25)
〔配列番号7〕から成る群より選ばれた逆プライマーと
を含んで成り;そして前記3′NCRオリゴヌクレオチ
ドプライマー対の各々がオリゴヌクレオチド5'-GGTGGCT
CCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕から
成る正プライマーと、オリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGT
ATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)〔配列番号9〕から成
る逆プライマーとを含んで成り;そして (C) 前記増幅生成物を検出するという各段階を含んで成
り、前記増幅生成物の検出が前記試料中のHCV RN
Aの存在を示すことを特徴とする。
【0012】第六の面では、本発明はC型肝炎ウイルス
(HCV)DNAの増幅方法に向けられる。この方法は
(A) HCV DNAを含有するDNA試料において、H
CVに特異的な1または複数の5′NCRオリゴヌクレ
オチドプライマー対と1または複数の3′NCRオリゴ
ヌクレオチドプライマー対とを使ってポリメラーゼ連鎖
反応を行うことにより、HCV特異的増幅生成物を生成
させ、前記5′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対
の各々が(a) (i) 5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-
3' (C69F28)〔配列番号1〕,(ii) 5'-GGGAGAGCCATAGTG
GTCTGCGGAA-3' (C131F25)〔配列番号2〕および(iii)5'
-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26) 〔配列番
号3〕から成る群より選ばれた正プライマーと(b) (i)
5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26) 〔配列
番号4〕,(ii) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3'
(C282R27)〔配列番号5〕,(iii)5'-CACTCGCAAGCACCCTA
TCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕および(iv) 5'
-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25)〔配列番号
7〕から成る群より選ばれた逆プライマーとを含んで成
り;そして前記3′NCRオリゴヌクレオチドプライマ
ー対の各々がオリゴヌクレオチド5'-GGTGGCTCCATCTTAGC
CCTAGTCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕から成る正プラ
イマーと、オリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTC
TCTGCAGTC-3' (57R27)〔配列番号9〕から成る逆プライ
マーとを含んで成ることを特徴とする。
【0013】逆転写反応を実施する本発明の方法の或る
態様では、逆転写反応はランダムオリゴヌクレオチドプ
ライマーを使って行うか、あるいは1または複数のHC
V特異的逆転写プライマー、即ち、HCV RNA中の
配列に相当する配列を有するオリゴヌクレオチドを使っ
て行ってもよい。増幅の検出方法としては、非限定的
に、(a) 電気泳動および(b) HCV特異的プローブが取
り付けられた固体支持体上への増幅生成物の捕捉に続く
比色アッセイによる結合生成物の定量が挙げられる。
【0014】更なる面では、本発明はHCV RNAか
ら誘導されたHCV DNAを増幅させるためのキット
に向けられる。このキットは1または複数の5′NCR
オリゴヌクレオチドプライマー対を含んで成り、前記
5′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対の各々が
(a) (i) 5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F2
8)〔配列番号1〕,(ii) 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGA
A-3' (C131F25)〔配列番号2〕および(iii)5'-GTGGTCTG
CGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26) 〔配列番号3〕から
成る群より選ばれた正プライマーと(b) (i) 5'-CGGTTC
CGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26) 〔配列番号4〕,
(ii) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282R27)
〔配列番号5〕,(iii)5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGGCAGT
A-3' (C287R27)〔配列番号6〕および(iv) 5'-CGGGGCAC
TCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25)〔配列番号7〕から成
る群より選ばれた逆プライマーとを含んで成る。
【0015】更に別の面では、本発明はHCV RNA
から誘導されたHCV cDNAを増幅させるためのキ
ットに向けられる。このキットは1または複数の3′N
CRオリゴヌクレオチドプライマー対を含んで成り、前
記3′NCRプライマー対の各々がオリゴヌクレオチド
5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27) 〔配列番
号8〕から成る正プライマーと、オリゴヌクレオチド
5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)〔配列番
号9〕から成る逆プライマーとを含んで成る。
【0016】別の面では、本発明はHCV DNAの存
在を検出するためのキットに向けられる。このキットは
1または複数の5′NCRオリゴヌクレオチドプライマ
ー対を含んで成り、前記5′NCRプライマー対の各々
が(a) (i) 5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69
F28)〔配列番号1〕,(ii) 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCG
GAA-3' (C131F25)〔配列番号2〕および(iii)5'-GTGGTC
TGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26) 〔配列番号3〕か
ら成る群より選ばれた正プライマーと(b) (i) 5'-CGGT
TCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26) 〔配列番号
4〕,(ii) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282
R27)〔配列番号5〕,(iii)5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGG
CAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕および(iv) 5'-CGGG
GCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25)〔配列番号7〕か
ら成る群より選ばれた逆プライマーとを含んで成る。
【0017】更に別の面では、本発明はHCV RNA
の存在を検出するためのキットに向けられる。このキッ
トは1または複数の3′NCRオリゴヌクレオチドプラ
イマー対を含んで成り、前記3′NCRプライマー対の
各々がオリゴヌクレオチド 5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAG
TCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕から成る正プライマー
と、オリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCA
GTC-3' (57R27)〔配列番号9〕から成る逆プライマーと
を含んで成る。
【0018】
【発明の実施態様】本発明者らは、C型肝炎ウイルス
(HCV)RNA中に存在する特定の配列に相補的な配
列を有するオリゴヌクレオチドを増幅プライマーとして
用いると、生物学的試料中のHCV RNAの検出がよ
り効率的であることを発見した。従って、本発明は、低
コピーレベルのHCV RNAを検出する、改善され
た、1回の逆転写/増幅アッセイを提供する。オリゴヌ
クレオチドプライマーは、配列保存、分子内または分子
間相互作用、およびアンプリコンと周囲配列の推定二次
構造に基づいて選択される。更に、プライマーとアッセ
イ方法は、HCVゲノムの多領域、多ウイルス種、およ
び内部陽性配列(IPC)RNA(またはDNA)の同
時増幅(または同時検出)を可能にするようにデザイン
される。HCVゲノムの多領域の同時増幅/検出はアッ
セイ感度を増加させ、そしてIPCの同時増幅はPCR
の阻害により生じる偽陽性結果の可能性を減少させる。
【0019】分子生物学、微生物学、組換えDNAおよ
びタンパク質生化学の多数の技術、例えばCurrent Prot
ocols in Molecular Biology, 第I,IIおよびIII 巻,
1997(F.M. Ausubel編);Sambrook他, 1989, Molecula
r Cloning: A Laboratory Manual, 第2版,Cold Sprin
g Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New
York ; DNA Cloning: A Practical Approach,第Iおよ
びII巻, 1985 (D.N. Glover 編) ; Oligonucleotide Sy
nthesis, 1984 (M.L. Gait編) ; Transcription and Tr
anslation, 1984 (Hames & Higgins編) ; A Practical
Guide to Molecular Cloning; 双書, Methods in Enzym
ology (Academic Press, Inc.) ; Protein Purificatio
n: Principles and Practice, 第2版(Springer-Verla
g, N.Y.)中に説明された技術を、本発明を実施する際
に使用する。
【0020】本明細書中で用いる「核酸」または「ポリ
ヌクレオチド」とは、ポリリボヌクレオチドもしくはポ
リデオキシリボヌクレオチドまたは混合ポリリボ/ポリ
デオキシリボヌクレオチドのいずれかの、任意の長さの
プリンおよびピリミジン含有ポリマーを言う。これには
一本鎖および二本鎖分子、例えばDNA−DNA,DN
A−RNAおよびRNA−RNAハイブリッド、並びに
アミノ酸主鎖に塩基を結合することにより形成された
「タンパク質核酸」(PNA)が含まれる。これには修
飾塩基を含有する核酸も含まれる。
【0021】本明細書中で用いる核酸配列の「相補体」
とは、元の配列と共にワトソン−クリック塩基対合に参
加するアンチセンス配列を言う。
【0022】本明細書中で用いる「プライマー」は、着
目の一本鎖核酸配列と共に二重鎖を形成しそして例えば
逆転写酵素またはDNAポリメラーゼを使って相補鎖の
重合を可能にする、長さ約10〜約50ヌクレオチド、好ま
しくは長さ約12〜約25ヌクレオチド、最も好ましくは約
12〜約18ヌクレオチドの単離されたオリゴヌクレオチド
である。
【0023】本明細書中で用いる「単離された」核酸と
は、それの元の環境(例えば、それが天然に存在する混
合物であるならそれの天然の環境、それが合成物である
なら反応混合物)から分離されている成分を言う。単離
された核酸は、典型的には、最初にそれが関連していた
成分の約50%未満、好ましくは約75%未満、そして最も
好ましくは約90%未満を含有する。
【0024】指摘した配列「から誘導された」核酸配列
とは、その指摘した配列の一領域に相当する配列を言
う。これには、その配列に相同であるかまたは相補的で
ある配列も含まれる。
【0025】内部陽性対照(=IPC)標的核酸とは、
典型的には制限エンドヌクレアーゼの作用により後で直
鎖状にされるプラスミドベクター中にクローニングされ
た合成核酸配列を指して言う。IPCは、典型的には一
般的なプローブ結合領域を取り囲む複数のプライマー結
合配列を有し、そして核酸増幅反応において偽陽性結果
に対する包括的な対照として働く。
【0026】好ましい内部陽性対照標的DNAの配列は
下記のものである:5'-CGCCAGCGTGGACCATCAAGTAGTAATGA
ACGCACGGACGAGGACATCATAGAGATTACACCTTTATCCACAGTTCTCG
GTCTAACGCAGCAGTCAGTGTATCAGCACCAGCATCCGTAGTGAGTCTTC
AGTGTCTGCTCCAGGATCGTG-3'〔配列番号10〕。
【0027】本明細書中に開示するいずれかの配列また
はそれの部分配列を含んで成る核酸は、常法により調製
することができる。例えば、Matteucci 他, 1981, J. A
m. Chem. Soc. 103:3185のホスホロアミダイト固体支持
体法、Yoo 他, 1989, J. Biol. Chem. 764:17078の方
法、または他の周知の方法を使って、DNAを合成する
ことができる。当該技術分野で既知である多数の手段に
より核酸を修飾することもできる。そのような修飾の非
限定例としては、メチル化、「キャップ付加」、類似体
による1もしくは複数の天然ヌクレオチドの置換、ヌク
レオチド間修飾、例えば無電荷結合(例えばメチルホス
ホネート、ホスホトリエステル、ホスホロアミデート、
カルバメートなど)もしくは荷電結合(例えばホスホロ
チオエート、ホスホロジチオエートなど)が挙げられ
る。核酸は1または複数の追加の共有結合した成分、例
えば、タンパク質(例えばヌクレアーゼ、毒素、抗体、
シグナルペプチド、ポリ−L−リジンなど)、挿入剤
(例えばアクリジン、ソラレンなど)、キレート化剤
(例えば金属、放射性金属、鉄、酸化金属など)および
アルキル化剤を含んでもよい。「核酸」なる用語にはP
NAも含まれる。核酸は、メチルもしくはエチルホスホ
トリエステルまたはアルキルホスホロアミデート結合の
形成により誘導体にすることができる。更に、本発明の
核酸配列は、直接または間接的に検出可能なシグナルを
提供することができる標識により修飾されてもよい。典
型的な標識としては、放射性同位体、蛍光分子、ビオチ
ンなどが挙げられる。
【0028】本明細書中で用いる「増幅」とは、非限定
的に、核酸がコピーされる相互作用工程を言う。適当な
増幅方法としては、ポリメラーゼ連鎖反応、リガーゼ連
鎖反応、鎖置換増幅、転写媒介増幅および核酸一塩基増
幅が挙げられる。
【0029】本発明は、生物学的試料中のHCVの検出
方法を提供する。この方法は、 (i) 試料中に含まれるかまたは試料から誘導されたRN
Aを鋳型として使って逆転写反応を行い; (ii)HCV RNAの5′または3′非コード領域内の
配列に相当する配列を有する増幅プライマー対を使って
逆転写生成物を増幅させることにより、HCV特異的増
幅生成物を生成させ;そして (iii) 前記HCV特異的増幅生成物を検出することによ
り実施される。HCV特異的増幅生成物の検出が、試料
中のHCV RNAの存在を示す。
【0030】本発明によれば、任意の常法により患者か
ら生物学的試料が得られる。適当な生物学的試料として
は、非限定的に、血液、血清、血漿、尿、母乳および脳
脊髄液が挙げられる。好ましくは、血漿がHCV RN
Aの入手源として使われる。
【0031】生物学的試料は、試料中に含まれるRN
A、特にHCV RNAへの逆転写試薬の接近を与える
ようなやり方で処理する。生物学的試料「から誘導され
た」RNAは、最初は試料中に存在していたもので且つ
試料を処理することによってそのRNAへの接近が増大
された任意のRNAである。好ましくは、当該技術分野
で周知の方法、例えばチオシアン酸グアニジウムを使用
する方法、またはGentraSystems, Inc. (Minneapolis M
N) からのPureScriptのような市販の試薬と方法を使用
する方法を用いて、試料からRNAを抽出する。RNア
ーゼからのRNA、別のタンパク質および/または逆転
写反応を妨害する可能性のある他の成分からの分離をも
たらすいずれの抽出方法を使ってもよい。
【0032】次いで、試料を(a) ランダムプライマー、
例えばPharmacia Biotech, Piscataway, New Jersey か
ら得られるランダムヘキサマー、および/または(b) H
CVRNAゲノム配列の5′もしくは3′NCR領域由
来のプライマーを使った逆転写反応にかける。逆転写
は、例えばCurrent Protocols in Molecular Biology,
第I, IIおよびIII 巻, 1997 (F.M. Ausubel編) ; 米国
特許第5,322,770 号明細書 ; Young他, J. Clin. Micro
biol. 31(4):882 (1993) ; Myers他, Biochemistry 30
(3):7661 (1991)中に記載されたような、常用手段を使
って実施される。逆転写プライマーとしての使用に適し
た他のプライマーおよび本発明において使用することが
できる逆転写方法としては、同時係属米国特許出願第 0
9/ 号, 代理人書類番号2094/0E287に記載されたものが挙
げられる。
【0033】逆転写反応の後、生成物を増幅させる。任
意の増幅方法を使ってもよく、増幅方法の非限定例とし
ては、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、リガーゼ連鎖
反応、鎖置換反応、核酸一塩基増幅および転写媒介増幅
が挙げられる。好ましくはPCRが使われる。典型的に
は、PCRに必要な全ての成分を含む反応混合物が直接
逆転写反応混合物に添加される。次いで、使用するプラ
イマー対により特定される条件を使って増幅反応を実施
する。
【0034】本発明者らは、特定のHCV特異的増幅プ
ライマー対が患者試料中のHCVRNAを検出する際に
特に有利であることを発見した。HCVゲノムの5′N
CRから誘導された有用なプライマーの非限定例とし
て、下の第1表に列挙されたプライマーが挙げられる。
【0035】
【表1】
【0036】センスオリゴヌクレオチドとアンチセンス
オリゴヌクレオチドの任意組合せをそれぞれ正プライマ
ーと逆プライマーとして使用することができる。増幅に
使われる好ましい5′NCRプライマー対としては(a)
5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配列
番号1〕と5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R2
6)〔配列番号4〕;および(b) 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCT
GCGGAA-3' (C131F25) 〔配列番号2〕と5'-CGGGGCACTCG
CAAGCACCCTATCA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕が挙げら
れる。
【0037】好ましい態様では、増幅プライマー対が
5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' 〔配列番号1〕
と 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' 〔配列番号4〕
から成る。別の好ましい態様では、増幅プライマー対が
5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3'〔配列番号2〕と
5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3'〔配列番号7〕から
成る。
【0038】HCVゲノムの3′NCRから誘導された
有用なプライマーの非限定例としては、 5'-GGTGGCTCCA
TCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕から成る
正プライマーと 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3'
(57R27)〔配列番号9〕から成る逆プライマーが挙げら
れる。
【0039】本発明は多重増幅、即ち同一反応混合物中
での複数の異なるプライマー対セットを使った異なる配
列の同時増幅も包含する。多重増幅反応において同時に
使うことができる好ましいプライマー対のセットは(a)
5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' 〔配列番号2〕と5'
-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' 〔配列番号7〕(5′
対)および(b) 5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3'
〔配列番号8〕と5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3'
〔配列番号9〕(3′対)である。
【0040】増幅後、増幅生成物は、当該技術分野で周
知の任意方法、例えば非限定的に、アガロースまたはア
クリルアミドゲル中でのゲル電気泳動法;非同位体比色
検出法、例えばSureCell系(例えば下記の実施例1を参
照のこと);ECi検出法;蛍光検出法;および化学発
光法を使って検出することができる。そのような検出法
に有用な試薬は、例えばMolecular Probes, Eugene, Or
egonおよび Ortho Clinical Diagnostics, Inc., Roche
ster, NYから入手可能である。
【0041】HCV特異的増幅生成物の検出は、試料中
にHCV RNAが存在することを示す。ゲル電気泳動
を用いた場合、HCV特異的増幅生成物は、反応に用い
た増幅プライマーに相当する配列を有するHCV RN
A中の位置により推定されるようなそれらのサイズによ
り確認される。比色検出用に有用なHCV特異的5′N
CR捕捉プローブとしては、非限定的に、5'-GGGTCCTGG
AGGCTGCACGACACTCAT-3' 〔配列番号11〕、5'-CCTTTCGCG
ACCCAACACTACTCGGCT-3' 〔配列番号12〕および5'-TTTCG
CGACCCAACACTACTCGGCT-3' 〔配列番号13〕が挙げられ
る。HCV特異的3′NCR捕捉プローブとしては、非
限定的に、5'-GCGGCTCACGGACCTTTCACAGCTA-3' 〔配列番
号14〕および5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' 〔配列
番号15〕が挙げられる。
【0042】1または複数の正および負5′NCRオリ
ゴヌクレオチドプライマー対を含有する、HCV RN
Aから誘導されたHCV DNAを増幅するためのキッ
トを調製することができ、ここで前記正プライマーは5'
-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配列番
号1〕,5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25)
〔配列番号2〕または5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-
3' (C143F26)〔配列番号3〕であることができ;そして
前記逆プライマーは5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3'
(C133R26)〔配列番号4〕,5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGT
ACCACA-3' (C282R27) 〔配列番号5〕,5'-CACTCGCAAGC
ACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27) 〔配列番号6〕または
5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25) 〔配列番
号7〕であることができる。
【0043】1または複数の正および負3′NCRオリ
ゴヌクレオチドプライマー対を含有する、HCV RN
Aから誘導されたHCV DNAを増幅するためのキッ
トも調製することができ、ここで前記正プライマーは5'
-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27)〔配列番号
8〕であることができ;そして逆プライマーは5'-AGGCC
AGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27) 〔配列番号9〕で
あることができる。
【0044】HCV RNAから誘導されたHCV D
NAの増幅について上述した5′NCRおよび3′NC
Rプライマーを含んで成る、HCV DNAの存在を検
出するためのキットも本発明の範囲内に含まれる。
【0045】それらのキットは逆転写、増幅および生成
物検出のための試薬および説明書を更に含んでもよい。
例えば、該キットは逆転写酵素、デオキシヌクレオチ
ド、DNA増幅反応に適した耐熱性ポリメラーゼ、並び
に核酸の標識および検出用の試薬を含んで成ることがで
きる。
【0046】本発明は、HCV感染の診断において;抗
HCV療法処置の効能の試験において;およびHCV感
染試料についての輸血用血液製剤のスクリーニングにお
いて利用することができる。
【0047】
【実施例】下記の実施例は非限定的に本発明を例証す
る。実施例1:生物学的試料中のHCVの検出:5’HCV
増幅プライマーと RocheAmplicor HCVアッセイの比
下記の実験は、本発明のHCVアッセイとRoche Amplic
or系を比較するために行った。
【0048】A.方法 1.試料調製:血漿試料から、 PureScript RNA単離
試薬(Gentra Systems, MinneapolisMN)を使ってRN
Aを調製した。体液についての製造業者のプロトコルへ
の変更として、20 gではなく40 gのグリコーゲンをウイ
ルスRNAの沈澱に役立つ担体として使用することを含
んだ。更に、大部分において、RNAのイソプロピルア
ルコール沈澱とエタノールによるRNAペレットの洗浄
の後に、製造業者により提供されるRNAハイブリダイ
ゼーション溶液ではなく、RT緩衝液混合物中にRNA
ペレットを再懸濁した。
【0049】2.逆転写:ジエチルピロカルボネート
(DEPC)で処理した水の中に50 mM Tris-HCl (pH 8.3),
75 mM KCl, 3 mM MgCl2, 10 mM DTT, 0.4 mM 各dNTP
(Pharmacia Biotech), 4 M のランダムヘキサマー (Pha
rmacia Biotech, Piscataway, NJ)または特異的逆転写
プライマーおよび20単位のRNasin(Promega, Madison,
Wisoconsin)を含有する溶液50 L中の100 Uの組換え
モロニーマウス白血病ウイルス(M−MLV)逆転写酵
素(RT)(Gibco BRL, Gaithersburg, Maryland )を
添加することにより、RNAからのcDNAの合成を触
媒した。42℃で30分間のインキュベーション後、RT反
応液を100 ℃に5分間維持してRT活性を破壊した。各
反応液を1分間冷却した後、16000 ×gで4秒間超遠心
した。
【0050】3.PCR増幅:PCRは、25 mM Tris-H
Cl, 3 mM MgCl2, 0.725 mM EDTA, 54 mM KCl, 3.72 mM
NaCl, 40 M DTT, 108 g/mlのゼラチン(IV型), 9.5
%グリセロール, 0.02%Tween 20, 0.02%NP40, 子ウシ
胸腺DNA(2 g), 1.2 mMの各dNTP, 0.4 M の各プライ
マー, 10コピーの線状化した内部陽性対照(IPC)プ
ラスミドDNAおよび16 UのTaq ポリメラーゼを含む
溶液 100 L中でPE9600サーモサイクラー(Perkin-Elm
er)中で行った。Taq に対するモノクローナル抗体 TP1
-12 とTP4-9 (それらの調製は米国特許第5,338,671 号
明細書に開示されている)をそれぞれ50:1と5:1の
モル比で反応液に添加して、Taq ポリメラーゼに対する
抗体のモル比55:1を提供した。96℃で3分間の最初の
変性の後、96℃で5秒と68℃で40秒から成る40サイクル
の増幅を行った。サイクルの終了後、103 ℃で5分間の
最終加熱段階を行ってTaq ポリメラーゼを失活させた。
使用したプライマーを下記の第2表に示す。
【0051】
【表2】
【0052】推定される生成物サイズを下記の第3表に
示す。
【表3】
【0053】4.PCR生成物の検出:増幅中に5′−
ビオチン標識プライマー(センス鎖)を使用してPCR
生成物をビオチン化した。フロースルー膜の表面上に付
着させたラテックス粒子に共有結合せしめたオリゴヌク
レオチドプローブへのハイブリダイセーションにより、
生成物を捕捉した(SureCell試験)。プローブは 5'-GG
GTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3'(C96-27-PRBと称する)
〔配列番号11〕;5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3'
(C252-27-PRB と称する)〔配列番号12〕および5'-TTT
CGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB と称する)
〔配列番号13〕であった。生じたプローブ/生成物複合
体を、色素前駆体から色素(青色)への酸化的変換を触
媒するストレプトアビジン(SA)−西洋ワサビペルオ
キシダーゼ(HRP)接合体と反応させた。色の強度を
色標準に比較することにより、青色の強度を目視により
採点した(0〜10)。目に見える色の得点>3は、全て
陽性結果であると見なした。
【0054】5.Roche Amplicorアッセイ:Roche Ampl
icorアッセイ(Roche Diagnostics, Kaiseraugst, Swit
hland )は、製造業者の教示に従って実施した。
【0055】B.結果 ブラジル人とエジプト人患者からの42の試料のパネルを
上述した通りにHCVについて試験した。それらの試料
の一部はChiron B-DNAアッセイを使っても試験した。ブ
ラジル人試料はアメリカ人試料に比較してより大きい比
率がHCV遺伝子型3を含むと予想され、そしてエジプ
ト人試料はアメリカでは稀にしか見られない遺伝子型で
あるHCV遺伝子型4から大部分成ると予想された。全
ての反応は二重反復試験において行った。プラスの表示
は二重反復試験の両方とも陽性であったことを示す。結
果を下の第4表に示す。
【0056】
【表4】
【0057】
【表5】
【0058】
【表6】
【0059】本発明の5′NCRプライマーを使って得
られた結果とRoche アッセイ系を使って得られた結果を
下記の第5表と第6表に要約する。
【0060】
【表7】
【0061】
【表8】
【0062】本発明のプライマーはいずれもRoche Ampl
icorアッセイに比べて優れた感度を示した。プライマー
対69F/133Rの使用は最大感度を提供した。Roche Amplic
orアッセイを使った時に陰性であった5つの試料が、本
発明のC131/C294 プライマー対を使った場合に陽性であ
り、またRoche Amplicorアッセイを使った時に陰性であ
った11の試料が本発明の69F/133Rプライマー対を使った
場合に陽性であった。更に、Chiron bDNA アッセイによ
り検出可能であるウイルス負荷量を有する試料の全てが
本発明のプライマーを使って検出されたのに対し、それ
らのうちの3つの試料がRoche Amplicorアッセイを使う
と検出されなかった。陰性対照は本発明のアッセイにお
いて1つも陽性として記録されなかった。
【0063】第二系列の実験において、以前にHCV抗
体について陽性であると決定されたブラジル人からの15
0 の血漿試料を、Roche Amplicorアッセイと本発明のプ
ライマーを使って試験した。下記の第7表と第8表は、
SureCellカラースコアに基づいた結果を示す。各反応ご
とに、生成物をゲル上で調べて結果を確かめた。陰性の
血漿試料と水(RNA不含有)の両方から成る陰性対照
(臨床試料の所々に置いた)を各プライマーセットに含
めた。全ての陰性対照結果が陰性であった。
【0064】
【表9】
【0065】
【表10】
【0066】本発明の5′NCRプライマー対は2つと
もRoche アッセイ系に比較して優れた感度を示した。最
大感度は69F/133Rプライマー対を使った場合に達成さ
れ、このプライマー対はC131/C294 プライマー対に比較
して更に3つの追加の試料中のHCV RNAの存在を
検出した。
【0067】実施例2:5′NCR HCVアッセイ感
度の分析 次の実験は、本発明の5′NCRプライマー対を使った
HCVアッセイの感度を調べるために行った。 1.3つの患者試料をHCV RNAの理論的コピー数
に基づいて希釈し、そしてRoche Amplicor系および本発
明のプライマー対を使ってHCV RNAについてアッ
セイした。結果を下記の第9表に示す。
【0068】
【表11】
【0069】3セットの希釈患者試料の全てにおいて、
本発明の5′NCRプライマー対を使ったアッセイがRo
che アッセイよりも大きい感度を示した。
【0070】2.HCV陽性であることが知られている
血漿をHCV陰性血漿で希釈し、そして上述した通りに
試験した。内部陽性対照(IPC)プラスミドを反応あ
たり10コピー数で反応混合物中に含めた。結果(5つの
実験の編集)を下記の第10表に示す。
【0071】
【表12】
【0072】C131F/C294R 5′NCRプライマー対は優
れた感度を示し、そしてポイゾン分布分析により推定す
るとPCR反応あたりウイルス粒子1個ほどの少数を検
出することができた。
【0073】3.低いHCVウイルス価(範囲=316 〜
8080コピー数/ml, これはPCR反応あたり16〜404 コ
ピー数に相当する)を有する患者からの18の患者試料。
試験した18個の試料のうちの17個が本発明のアッセイに
おいて陽性であった。
【0074】実施例3:生物学的試料中のHCVの検
出:3′NCR HCV増幅プライマーと Roche Ampli
cor HCVアッセイとの比較 HCV抗体について陽性であると以前に決定されたブラ
ジル人からの150 個の血漿試料を、Roche Amplicorアッ
セイと本発明の3′NCRプライマーを使って試験し
た。逆転写と増幅は上記実施例1に記載の通りに行っ
た。逆転写は配列 5'-GTATCAGCACTC-3' 〔配列番号16〕
を有するプライマーを使って行い、そして増幅はX1F27/
57R27 プライマー対を使って行った。各反応にはプラス
ミドDNAの内部陽性対照(IPC)を含めた。増幅生
成物の検出は捕捉プローブとして3X30PR25を使ってSure
Cell系を用いて行った。各反応ごとに、生成物をゲル上
で分析して結果を確かめた。陰性の血漿試料と水(RN
A不含有)の両方から成る陰性対照(臨床試料の所々に
置いた)を各プライマーセットに含めた。RT−PCR
において全てが陰性であった。本発明のプライマーを使
って得られた結果とRoche アッセイを使って得られた結
果との比較を下の第11表に要約する。
【0075】
【表13】
【0076】実施例4:生物学的試料中のHCVの検
出:本発明とRochester General Hospital(RGH)
5′NCR嵌め込みPCRアッセイとの比較 次の実験は、本発明の3′NCR HCVプライマーと
RGH嵌め込みPCR検出法とを比較するために行っ
た。上記実施例1に記載した方法を用いて、57R27 プラ
イマーを使って83個の血漿試料を逆転写し、そして3X1F
27/57R27プライマー対を使って逆転写生成物を増幅させ
た。各反応ごとに、生成物をゲル上で分析して結果を確
かめた。陰性血漿試料と水(RNA不含有)の両方から
成る陰性対照(臨床試料の所々に置いた)を実験に含め
たが、このアッセイにおいて陰性対照は全て陰性であっ
た。
【0077】本発明のプライマーを使って得られた結果
とRoche アッセイ系を使って得られた結果との比較を下
の第12表に要約する。
【0078】
【表14】
【0079】これらの結果は、本発明の検出系がRGH
嵌め込みPCR系に比較して感受性であり且つ特異的で
あることを証明する。本発明のアッセイは、26個の陰性
試料のうちの25個に関してRGHアッセイの結果と一致
した。嵌め込みPCRでは、新しい試薬を添加するため
に反応中にチューブを開けなければならないのに対し、
本発明の利点は、嵌め込みPCRを実施する時よりも、
後への持ち越し(carryover) の機会が少ない点である。
偽陽性結果を示す残りの1つの試料は、嵌め込みPCR
プロトコルにより引き起こされる持ち越しの実例である
のかもしれない。
【0080】実施例5:3′NCR HCVアッセイの
コピー感度 次の実験は、本発明の3′NCR HCVアッセイの検
出感度を調べるために行った。Roche Monitor とChiron
b-DNAアッセイを使ってHCVについて既に試験されて
いる血漿試料をBoston Biomedica, Inc.より入手した。
RNAを調製し、1mlあたり20〜1000コピーのHCV
RNAを含むように希釈し、そして上記実施例1に記載
した方法を使って逆転写と増幅反応にかけた。逆転写は
66RT(12マー)プライマー(第13表参照)または57R27
(27マー)プライマー(第14表参照)を使って行い、そ
してPCRは1F27正プライマーと57R27 逆プライマーを
それぞれ使って行った。内部陽性対照(IPC)プライ
マーもこのアッセイに含め、これは各試料について陽性
結果を与えた。下記に示す結果は、捕捉プローブとして
3X-30PRB25を使ったSureCellとゲルバンド上で陽性であ
った試料の%を示す。
【0081】
【表15】
【0082】
【表16】
【0083】3′NCR HCVアッセイは、アッセイ
時間の100 %で1000ウイルスコピー数/mlを検出し、そ
してアッセイ時間の88〜100 %で200 コピー数/mlを検
出した。100 コピー数/mlでは、試料のほぼ50%におい
てウイルスが検出された(12マーのRTプライマーを使
った時)。ポアソン分布は、反応あたり1コピーで(20
個のウイルス粒子/ml)、陽性結果の頻度が約60%であ
るだろうと推測する。このウイルスレベルでの20%検出
の結果は、HCVの3′非コード領域が全てのウイルス
粒子に存在するわけではないという可能性か、または短
鎖(12マー)の逆転写プライマーを使った場合にこのア
ッセイで本質的な感度低下があるという可能性のためか
もしれない。同じ試料において5′NCRプライマーを
使って逆転写/増幅アッセイを行うことにより、20コピ
ー数/mlにおいてより高い検出レベルが得られ、後者方
の解釈が裏付けられた。これらの結果は、より長鎖(27
マー)のプライマーを逆転写に用いることにより、3′
NCアッセイの感度を増加することができることを示す
(12マーおよび27マーを使った10コピー数/反応の検出
を、それぞれ第13表と第14表に比較する)。
【0084】実施例6:異なるHCV遺伝子型を有する
患者試料の分析 次の実験は、異なる遺伝子型を有するHCVの検出を評
価するために行った。 1.遺伝子型包括性:様々なHCV遺伝子型を表すチン
パンジーの血漿を米国国立衛生研究所(NIH)から入
手した。血漿を調製しそして上記実施例1に記載した通
りに処理した。5′NCRプライマーはC131F とC294R
(それぞれ正プライマーと逆プライマー)であり、3′
NCRプライマーは1F27と57R27 (それぞれ正プライマ
ーと逆プライマー)であった。臭化エチジウム染色した
4%アガロースゲル上でのPCR生成物の分析により結
果を得た。陽性結果は複製試料に基づいて得られた。下
記の第15表(5′NCRプライマーを使った場合)およ
び第16表(3′NCRプライマーを使った場合)に結果
を示す。
【0085】
【表17】
【0086】
【表18】
【0087】2.患者試料:既知遺伝子型を有する27の
未希釈患者試料を、上述した通りにC131F およびC294R
プライマーを使ってアッセイした。SureCell検出法を使
って結果を確認した(HCV生成物およびIPC生成物
の捕捉プローブとしてそれぞれ C252-PRB25とIPC-1Pを
使って)。パネルは、HCV遺伝子型1〜4と6に感染
した代表的な血漿試料を含んだ。患者試料は様々な地理
的領域(スコットランド、チュニジア、サウジアラビア
および香港)からものであった。各試料は二重反復試験
した(例えば6つの遺伝子型1試料を試験した)。
【0088】本発明のプライマー系は、このパネルに含
まれる全ての遺伝子型試料を増幅することができた。C1
31F25/C294R25 プライマーは、今までに可能な全てのH
CV遺伝子型(遺伝子型1〜6)を同定した。
【0089】3.低コピー数試料:異なる遺伝子型(1
〜6,アメリカ合衆国、スコットランド、チュニジア、
サウジアラビアおよび香港から得られた)のHCVを含
む試料を、Roche MonitorAssay を使って定量し、PC
R反応あたり50ウイルスコピー数(1000コピー数/ml)
に希釈し、そして上述した通りにC131F およびC294R プ
ライマーを使ってアッセイした。全ての試料が本発明の
プライマーを使って検出された。
【0090】実施例7:5′および3′増幅プライマー
対の両方を使った多重アッセイ 次の実験は、単一の反応混合物における5′NCRと
3′NCRの同時増幅の効果を分析するために行った。
【0091】A.Roche Monitor Assay との比較 反応あたり45〜17,000ウイルスコピー数当量を含む73個
の患者試料を試験した。試料は、インターフェロンで治
療していた、HCVに感染していることが知られている
患者からのものであった。結果として、数人の患者はほ
とんどまたは全く循環しているウイルスを持たなかっ
た。5′NCRプライマー対 131F/294Rと3′NCRプ
ライマー対 1F27/57R27 並びにIPCプライマーを使っ
て多重方式でこのパネルを試験した。陰性の臨床試料を
試験試料の所々に置いた。全ての陰性試料が陰性RT−
PCRを与えた。その結果を、定量的Roche Monitor As
say(Roche Diagnostics, Kaiseraugst, Switzerland)
を使って得られた結果と比較した。その結果を下記の第
17表に要約する。
【0092】
【表19】
【0093】本発明の5′および3′プライマー対を使
った場合、5′NCRおよび3′NCRアッセイにおい
て、Roche Monitor 結果によると未検出であった追加の
試料を検出することができた。このことは本発明のプラ
イマーを使用するアッセイは、低ウイルス負荷量を有す
る患者をアッセイする場合は Rocheアッセイよりも高い
感度を示す。Roche アッセイによって未検出であったこ
の陽性試料を、別の5′NCRプライマー 69F/133R を
使って確かめた。
【0094】B.Roche Amplicor Assayとの比較 組換え免疫ブロットアッセイ(RIBA)を使って中間
物として試験した16個の患者試料を、5′プライマー対
131F/294Rと3′プライマー対 1F27/57R27 を使って多
重方式で試験した。その結果を定量的Roche Amplicorア
ッセイを使ったものと比較した。結果を下記の第18表に
要約する。
【0095】
【表20】
【0096】本発明のアッセイとRoche アッセイとは10
0 %の一致が見られた。全てのPCR反応は、単一のR
NA抽出物から二重反復試験として行った。陰性試料
は、別の5′NCRプライマー対(69F/133R)を使った
増幅により確認した。再試験した全ての陰性試料が「真
の」陰性試料として確認された。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ケビン エム.ゴーマン アメリカ合衆国,ニューヨーク 14616, ロチェスター,コンラッド ドライブ 204

Claims (64)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 生物学的試料中のC型肝炎ウイルス(H
    CV)RNAの存在の検出方法であって、 (A) 鋳型として前記試料から誘導したRNAを使って逆
    転写反応を行うことにより、HCV特異的逆転写生成物
    を生成させ; (B) HCVに特異的な1または複数のオリゴヌクレオチ
    ドプライマー対を使用して前記逆転写生成物を増幅せし
    めることにより、HCV特異的増幅生成物を生成させ、 ここで前記プライマー対は(a) 正プライマー 5'-CAGAA
    AGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配列番号1〕
    と逆プライマー 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3'
    (C133R26)〔配列番号4〕;または(b) 正プライマー
    5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25) 〔配列番
    号2〕と逆プライマー 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA
    -3' (C294R25) 〔配列番号7〕;および(c) 正プライマ
    ー 5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)〔配
    列番号3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3'
    (C282R27)〔配列番号5〕および(ii) 5'-CACTCGCAAGCA
    CCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕から成る
    群より選ばれた逆プライマーから成る群より選ばれ;そ
    して (C) 前記増幅生成物を検出し、 ここで前記増幅生成物の検出が前記試料中のHCV R
    NAの存在を示すことを含んで成る方法。
  2. 【請求項2】 前記逆転写反応がランダムオリゴヌクレ
    オチドプライマーを使って行われる、請求項1に記載の
    方法。
  3. 【請求項3】 前記逆転写反応が、HCV RNA中の
    配列に相当する配列を有する1または複数のオリゴヌク
    レオチドプライマーを使って行われる、請求項1に記載
    の方法。
  4. 【請求項4】 前記増幅が、ポリメラーゼ連鎖反応、リ
    ガーゼ連鎖反応、鎖置換増幅、核酸一塩基置換および転
    写媒介増幅から成る群より選ばれた方法により行われ
    る、請求項1に記載の方法。
  5. 【請求項5】 前記検出が、ゲル電気泳動により前記増
    幅生成物を視覚化することを含んで成る、請求項1に記
    載の方法。
  6. 【請求項6】 前記検出が、1または複数のHCV特異
    的オリゴヌクレオチドプローブを含有する固体支持体上
    で前記増幅生成物を捕捉し、そして比色アッセイを使っ
    て前記捕捉された生成物を定量することを含んで成る、
    請求項1に記載の方法。
  7. 【請求項7】 前記正プライマーが(C131F25) または(C
    143F26) である場合には、前記プローブが(a) 5'-TTTCG
    CGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB) 〔配列番号1
    3〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C2
    52-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より選ばれたメ
    ンバーを含んで成り;そして前記正プライマーが(C69F2
    8)である場合には、前記プローブが(c) 5'-GGGTCCTGGAG
    GCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配列番号11〕を含
    んで成る、請求項6に記載の方法。
  8. 【請求項8】 前記試料が血液、血清、血漿、尿、唾液
    および脳脊髄液から成る群より選ばれる、請求項1に記
    載の方法。
  9. 【請求項9】 C型肝炎ウイルス(HCV)DNAの増
    幅方法であって、(A) HCV DNAを含むDNA試料
    において、HCVに特異的な1または複数のオリゴヌク
    レオチドプライマー対を使ってポリメラーゼ連鎖反応を
    行うことにより、HCV特異的増幅生成物を生成させる
    ことを含んで成り、 前記プライマー対が(a) 正プライマー 5'-CAGAAAGCGTC
    TAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配列番号1〕と逆プ
    ライマー 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R2
    6)〔配列番号4〕;または(b) 正プライマー 5'-GGGAG
    AGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25) 〔配列番号2〕と
    逆プライマー 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C29
    4R25) 〔配列番号7〕;および(c) 正プライマー 5'-G
    TGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)〔配列番号
    3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282
    R27)〔配列番号5〕および(ii) 5'-CACTCGCAAGCACCCTAT
    CAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕から成る群より
    選ばれた逆プライマーから成る群より選ばれることを特
    徴とする方法。
  10. 【請求項10】 (B) 前記増幅生成物を検出することを
    更に含んで成り、 前記増幅生成物の検出が前記試料中にHCV DNAの
    存在を示す、請求項9に記載の方法。
  11. 【請求項11】 前記検出が、ゲル電気泳動により前記
    増幅生成物を視覚化することを含んで成る、請求項10
    に記載の方法。
  12. 【請求項12】 前記検出が、1または複数のHCV特
    異的オリゴヌクレオチドプローブを含有する固体支持体
    上で前記増幅生成物を捕捉し、そして比色アッセイを使
    って捕捉された生成物を定量することを含んで成る、請
    求項10に記載の方法。
  13. 【請求項13】 前記正プライマーが(C131F25) または
    (C143F26) である場合には、前記プローブが(a) 5'-TTT
    CGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB) 〔配列番号
    13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C
    252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より選ばれたメ
    ンバーを含んで成り;そして前記正プライマーが(C69F2
    8)である場合には、前記プローブが(c) 5'-GGGTCCTGGAG
    GCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配列番号11〕を含
    んで成る、請求項10に記載の方法。
  14. 【請求項14】 生物学的試料中のC型肝炎ウイルス
    (HCV)RNAの存在の検出方法であって、 (A) 鋳型として前記試料から誘導したRNAを使って逆
    転写反応を行うことにより、HCV特異的逆転写生成物
    を生成させ; (B) 正プライマーと逆プライマーを使って前記逆転写生
    成物を増幅させることにより、HCV特異的増幅生成物
    を生成させ、 ここで前記正プライマーはオリゴヌクレオチド 5'-GGTG
    GCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕か
    ら成り、そして前記逆プライマーはオリゴヌクレオチド
    5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)〔配列番
    号9〕から成り;そして (C) 前記増幅生成物を検出し、 ここで前記増幅生成物の検出が前記試料中のHCV R
    NAの存在を示すことを含んで成る方法。
  15. 【請求項15】 前記逆転写反応が、ランダムオリゴヌ
    クレオチドプライマーを使って行われる、請求項14に
    記載の方法。
  16. 【請求項16】 前記逆転写反応が、HCV RNA中
    の配列に相当する配列を有する1または複数のオリゴヌ
    クレオチドプライマーを使って行われる、請求項14に
    記載の方法。
  17. 【請求項17】 前記増幅が、ポリメラーゼ連鎖反応、
    リガーゼ連鎖反応、鎖置換増幅、核酸一塩基置換および
    転写媒介増幅から成る群より選ばれた方法により行われ
    る、請求項14に記載の方法。
  18. 【請求項18】 前記検出が、ゲル電気泳動により前記
    増幅生成物を視覚化することを含んで成る、請求項14
    に記載の方法。
  19. 【請求項19】 前記検出が、1または複数のHCV特
    異的オリゴヌクレオチドプローブを含有する固体支持体
    上で前記増幅生成物を捕捉し、そして比色アッセイを使
    って前記捕捉された生成物を定量することを含んで成
    る、請求項14に記載の方法。
  20. 【請求項20】 前記プローブが 5'-GCGGCTCACGGACCTT
    TCACAGCTA-3' (30PRB25)〔配列番号14〕および5'-ATGCG
    GCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32PRB25) 〔配列番号15〕か
    ら成る群より選ばれる、請求項19に記載の方法。
  21. 【請求項21】 前記試料が血液、血清、血漿、尿、唾
    液および脳脊髄液から成る群より選ばれる、請求項14
    に記載の方法。
  22. 【請求項22】 C型肝炎ウイルス(HCV)DNAの
    増幅方法であって、(A) HCV DNAを含むDNA試
    料において、正プライマーと逆プライマーを使ってポリ
    メラーゼ連鎖反応を行うことにより、HCV特異的増幅
    生成物を生成させることを含んで成り、 前記正プライマーがオリゴヌクレオチド 5'-GGTGGCTCCA
    TCTTAGCCCTAGTCACG-3'(1F27) 〔配列番号8〕から成
    り、そして前記逆プライマーがオリゴヌクレオチド 5'-
    AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)〔配列番号
    9〕から成る方法。
  23. 【請求項23】 (B) 前記増幅生成物を検出することを
    更に含んで成り、前記増幅生成物の検出が前記試料中に
    HCV DNAの存在を示す、請求項22に記載の方
    法。
  24. 【請求項24】 前記検出が、ゲル電気泳動により前記
    増幅生成物を視覚化することを含んで成る、請求項23
    に記載の方法。
  25. 【請求項25】 前記検出が、1または複数のHCV特
    異的オリゴヌクレオチドプローブを含有する固体支持体
    上で前記増幅生成物を捕捉し、そして比色アッセイを使
    って前記捕捉された生成物を定量することを含んで成
    る、請求項23に記載の方法。
  26. 【請求項26】 前記プローブが、5'-GCGGCTCACGGACCT
    TTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号14〕および 5'-AT
    GCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32PRB25)〔配列番号15〕
    から成る群より選ばれる、請求項25に記載の方法。
  27. 【請求項27】 生物学的試料中のC型肝炎ウイルス
    (HCV)RNAの存在の検出方法であって、 (A) 鋳型として前記試料から誘導したRNAを使って逆
    転写反応を行うことにより、HCV特異的逆転写生成物
    を生成させ; (B) HCVに特異的な1または複数の5′NCRオリゴ
    ヌクレオチドプライマー対と1または複数の3′NCR
    オリゴヌクレオチドプライマー対を使って、前記逆転写
    生成物を増幅させることにより、HCV特異的増幅生成
    物を生成させ、 ここで前記5′NCRプライマー対が(a) 正プライマー
    5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配
    列番号1〕と逆プライマー 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGG
    CTCTC-3' (C133R26)〔配列番号4〕;または(b) 正プラ
    イマー 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25)
    〔配列番号2〕と逆プライマー 5'-CGGGGCACTCGCAAGCA
    CCCTATCA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕;および(c) 正
    プライマー 5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143
    F26)〔配列番号3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTA
    CCACA-3' (C282R27)〔配列番号5〕および(ii) 5'-CACT
    CGCAAGCACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕
    から成る群より選ばれた逆プライマーから成る群より選
    ばれ、前記3′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対
    の各々がオリゴヌクレオチド5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTA
    GTCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕から成る正プライマ
    ーと、オリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTG
    CAGTC-3' (57R27)〔配列番号9〕から成る逆プライマー
    とを含んで成り;そして (C) 前記増幅生成物を検出することを含んで成り、 前記増幅生成物の検出が前記試料中のHCV RNAの
    存在を示すことを特徴とする方法。
  28. 【請求項28】 前記逆転写反応がランダムオリゴヌク
    レオチドプライマーを使って行われる、請求項27に記
    載の方法。
  29. 【請求項29】 前記逆転写反応が、HCV RNA中
    の配列に相当する配列を有する1または複数のオリゴヌ
    クレオチドプライマーを使って行われる、請求項27に
    記載の方法。
  30. 【請求項30】 前記増幅が、ポリメラーゼ連鎖反応、
    リガーゼ連鎖反応、鎖置換増幅、核酸一塩基置換および
    転写媒介増幅から成る群より選ばれた方法により行われ
    る、請求項27に記載の方法。
  31. 【請求項31】 前記検出が、ゲル電気泳動により前記
    増幅生成物を視覚化することを含んで成る、請求項27
    に記載の方法。
  32. 【請求項32】 前記検出が、1または複数のHCV特
    異的オリゴヌクレオチドプローブを含有する固体支持体
    上で前記増幅生成物を捕捉し、そして比色アッセイを使
    って捕捉された生成物を定量することを含んで成る、請
    求項27に記載の方法。
  33. 【請求項33】 前記5′NCR正プライマーが(C131F
    25) または(C143F26) である場合には、前記プローブが
    (a) 5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB)
    〔配列番号13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTC
    GGCT-3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より
    選ばれたメンバーを含んで成り;前記5′NCR正プラ
    イマーが(C69F28)である場合には、前記プローブが(c)
    5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配
    列番号11〕を含んで成り;そして前記プローブが(d) 5'
    -GCGGCTCACGGACCTTTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号
    14〕および(e) 5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32P
    RB25) 〔配列番号15〕から成る群より選ばれたメンバー
    を含んで成る、請求項32に記載の方法。
  34. 【請求項34】 前記試料が血液、血清、血漿、尿、唾
    液および脳脊髄液から成る群より選ばれる、請求項27
    に記載の方法。
  35. 【請求項35】 C型肝炎ウイルス(HCV)DNAの
    増幅方法であって、(A) HCVに特異的な1または複数
    の5′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対と1また
    は複数の3′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対を
    使って、HCV DNAを含むDNA試料に対してポリ
    メラーゼ連鎖反応を行うことにより、HCV特異的増幅
    生成物を生成させ、 前記5′NCRプライマー対が(a) 正プライマー 5'-C
    AGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28) 〔配列番号
    1〕と逆プライマー 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-
    3' (C133R26)〔配列番号4〕;または(b) 正プライマー
    5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25) 〔配列
    番号2〕と逆プライマー 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTAT
    CA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕;および(c) 正プライ
    マー 5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)
    〔配列番号3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCAC
    A-3' (C282R27)〔配列番号5〕および(ii) 5'-CACTCGCA
    AGCACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列番号6〕から
    成る群より選ばれた逆プライマーから成る群より選ば
    れ、 前記3′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対の各々
    がオリゴヌクレオチド5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG
    -3' (1F27) 〔配列番号8〕から成る正プライマーと、
    オリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-
    3' (57R27)〔配列番号9〕から成る逆プライマーとを含
    んで成る方法。
  36. 【請求項36】 (B) 前記増幅生成物を検出することを
    更に含んで成り、前記増幅生成物の検出が前記試料中の
    HCV DNAの存在を示す、請求項35に記載の方
    法。
  37. 【請求項37】 前記検出が、ゲル電気泳動により前記
    増幅生成物を視覚化することを含んで成る、請求項36
    に記載の方法。
  38. 【請求項38】 前記検出が、1または複数のHCV特
    異的オリゴヌクレオチドプローブを含有する固体支持体
    上で前記増幅生成物を捕捉し、そして比色アッセイを使
    って前記捕捉された生成物を定量することを含んで成
    る、請求項36に記載の方法。
  39. 【請求項39】 前記5′NCR正プライマーが(C131F
    25) または(C143F26) である場合には、前記プローブが
    (a) 5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB)
    〔配列番号13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTC
    GGCT-3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より
    選ばれたメンバーを含んで成り;前記5′NCR正プラ
    イマーが(C69F28)である場合には、前記プローブが(c)
    5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配
    列番号11〕を含んで成り;そして前記プローブが(d) 5'
    -GCGGCTCACGGACCTTTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号
    14〕および(e) 5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32P
    RB25) 〔配列番号15〕から成る群より選ばれたメンバー
    を含んで成る、請求項38に記載の方法。
  40. 【請求項40】 下記:5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTA
    GTA-3' (C69F28) 〔配列番号1〕,5'-GGGAGAGCCATAGTG
    GTCTGCGGAA-3' (C131F25) 〔配列番号2〕,5'-GTGGTCT
    GCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)〔配列番号3〕,5'
    -CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26)〔配列番号
    4〕,5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282R27)
    〔配列番号5〕,5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGGCAGTA-3'
    (C287R27) 〔配列番号6〕,5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCT
    ATCA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕,5'-GGTGGCTCCATCT
    TAGCCCTAGTCACG-3' (1F27)〔配列番号8〕,5'-AGGCCAG
    TATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27) 〔配列番号9〕,5'
    -GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配列
    番号11〕,5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-
    27-PRB) 〔配列番号12〕,5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGG
    CT-3' (C252-25-PRB) 〔配列番号13〕,5'-GCGGCTCACGG
    ACCTTTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号14〕および5'
    -ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32PRB25) 〔配列番号
    15〕から成る群より選ばれたオリゴヌクレオチド。
  41. 【請求項41】 下記:5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTA
    GTA-3' (C69F28) 〔配列番号1〕,5'-GGGAGAGCCATAGTG
    GTCTGCGGAA-3' (C131F25) 〔配列番号2〕,5'-GTGGTCT
    GCGGAACCGGTGAGTACAC-3' (C143F26)〔配列番号3〕,5'
    -CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26)〔配列番号
    4〕,5'-GCAAGCACCCTATCAGGCAGTACCACA-3' (C282R27)
    〔配列番号5〕,5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGGCAGTA-3'
    (C287R27) 〔配列番号6〕,5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCT
    ATCA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕,5'-GGTGGCTCCATCT
    TAGCCCTAGTCACG-3' (1F27)〔配列番号8〕および5'-AGG
    CCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27) 〔配列番号9〕
    から成る群より選ばれた、HCV特異的増幅プライマー
    オリゴヌクレオチド。
  42. 【請求項42】 下記:5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTC
    AT-3' (C96-22-PRB)〔配列番号11〕,5'-CCTTTCGCGACCC
    AACACTACTCGGCT-3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕,5'
    -TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB) 〔配列
    番号13〕,5'-GCGGCTCACGGACCTTTCACAGCTA-3' (30PRB2
    5) 〔配列番号14〕および5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAG
    C-3' (32PRB25) 〔配列番号15〕から成る群より選ばれ
    たオリゴヌクレオチドを含んで成るプローブ。
  43. 【請求項43】 HCV RNAから誘導されたHCV
    DNAを増幅するためのキットであって、1または複
    数の5'NCR オリゴヌクレオチドプライマー対を含んで成
    り、前記5'NCR プライマー対が (a) 正プライマー 5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-
    3' (C69F28) 〔配列番号1〕と逆プライマー 5'-CGGTT
    CCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26)〔配列番号4〕; (b) 正プライマー 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3'
    (C131F25) 〔配列番号2〕と逆プライマー 5'-CGGGGCA
    CTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕;お
    よび (c) 正プライマー 5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3'
    (C143F26)〔配列番号3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAG
    GCAGTACCACA-3' (C282R27)〔配列番号5〕および(ii)
    5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列
    番号6〕から成る群より選ばれた逆プライマーを含んで
    成るキット。
  44. 【請求項44】 1または複数の3′NCRオリゴヌク
    レオチドプライマー対を更に含んで成り、前記3′NC
    Rオリゴヌクレオチドプライマー対の各々がオリゴヌク
    レオチド 5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27)
    〔配列番号8〕から成る正プライマーと、オリゴヌクレ
    オチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)
    〔配列番号9〕から成る逆プライマーとを含んで成る、
    請求項43に記載のキット。
  45. 【請求項45】 1または複数のプローブを更に含んで
    成る、請求項43に記載のキット。
  46. 【請求項46】 1または複数のプローブを更に含んで
    成る、請求項44に記載のキット。
  47. 【請求項47】 5′NCR正プライマーが(C131F25)
    または(C143F26) である場合には、前記プローブが(a)
    5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB) 〔配
    列番号13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT
    -3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より選ば
    れたメンバーを含んで成り;そして前記5′NCR正プ
    ライマーが(C69F28)である場合には、前記プローブが
    (c) 5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)
    〔配列番号11〕を含んで成る、請求項45に記載のキッ
    ト。
  48. 【請求項48】 前記5′NCR正プライマーが(C131F
    25) または(C143F26) である場合には、前記プローブが
    (a) 5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB)
    〔配列番号13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTC
    GGCT-3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より
    選ばれたメンバーを含んで成り;前記5′NCR正プラ
    イマーが(C69F28)である場合には、前記プローブが(c)
    5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配
    列番号11〕を含んで成り;そして前記プローブが(d) 5'
    -GCGGCTCACGGACCTTTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号
    14〕および(e) 5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32P
    RB25) 〔配列番号15〕から成る群より選ばれたメンバー
    を含んで成る、請求項46に記載のキット。
  49. 【請求項49】 前記5′NCRプライマー対が 5'-CA
    GAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28)〔配列番号
    1〕および 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R
    26) 〔配列番号4〕から成る、請求項43に記載のキッ
    ト。
  50. 【請求項50】 前記5′NCRプライマー対が 5'-GG
    GAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25)〔配列番号2〕
    および 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3'(C294R25)
    〔配列番号7〕から成る、請求項43に記載のキット。
  51. 【請求項51】 HCV RNAから誘導されたHCV
    cDNAを増幅させるためのキットであって、1また
    は複数の3′NCRオリゴヌクレオチドプライマー対を
    含んで成り、前記3′NCRオリゴヌクレオチドプライ
    マー対の各々が、オリゴヌクレオチド 5'-GGTGGCTCCATC
    TTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27) 〔配列番号8〕から成る正
    プライマーと、オリゴヌクレオチド 5'-AGGCCAGTATCAGC
    ACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)〔配列番号9〕から成る逆プ
    ライマーとを含んで成るキット。
  52. 【請求項52】 1または複数のプローブを更に含んで
    成る、請求項51に記載のキット。
  53. 【請求項53】 前記プローブが(a) 5'-GCGGCTCACGGAC
    CTTTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号14〕および(b)
    5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32PRB25) 〔配列番
    号15〕から成る群より選ばれる、請求項52に記載のキ
    ット。
  54. 【請求項54】 HCV DNAの存在を検出するため
    のキットであって、1または複数の5′NCRオリゴヌ
    クレオチドプライマー対を含んで成り、前記5′NCR
    プライマー対が (a) 正プライマー 5'-CAGAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-
    3' (C69F28) 〔配列番号1〕と逆プライマー 5'-CGGTT
    CCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R26)〔配列番号4〕; (b) 正プライマー 5'-GGGAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3'
    (C131F25) 〔配列番号2〕と逆プライマー 5'-CGGGGCA
    CTCGCAAGCACCCTATCA-3' (C294R25) 〔配列番号7〕;お
    よび (c) 正プライマー 5'-GTGGTCTGCGGAACCGGTGAGTACAC-3'
    (C143F26)〔配列番号3〕と(i) 5'-GCAAGCACCCTATCAG
    GCAGTACCACA-3' (C282R27)〔配列番号5〕および(ii)
    5'-CACTCGCAAGCACCCTATCAGGCAGTA-3' (C287R27)〔配列
    番号6〕から成る群より選ばれた逆プライマーから成る
    群より選ばれることを特徴とするキット。
  55. 【請求項55】 1または複数の3′NCRオリゴヌク
    レオチドプライマー対を更に含んで成り、前記3′NC
    Rオリゴヌクレオチドプライマー対の各々がオリゴヌク
    レオチド 5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27)
    〔配列番号8〕から成る正プライマーと、オリゴヌクレ
    オチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)
    〔配列番号9〕から成る逆プライマーとを含んで成る、
    請求項54に記載のキット。
  56. 【請求項56】 1または複数のプローブを更に含んで
    成る、請求項54に記載のキット。
  57. 【請求項57】 1または複数のプローブを更に含んで
    成る、請求項55に記載のキット。
  58. 【請求項58】 前記5′NCR正プライマーが(C131F
    25) または(C143F26) である場合には、前記プローブが
    (a) 5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB)
    〔配列番号13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTC
    GGCT-3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より
    選ばれたメンバーを含んで成り;そして前記5′NCR
    正プライマーが(C69F28)である場合には、前記プローブ
    が(c) 5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PR
    B)〔配列番号11〕を含んで成る、請求項56に記載のキ
    ット。
  59. 【請求項59】 前記5′NCR正プライマーが(C131F
    25) または(C143F26) である場合には、前記プローブが
    (a) 5'-TTTCGCGACCCAACACTACTCGGCT-3' (C252-25-PRB)
    〔配列番号13〕および(b) 5'-CCTTTCGCGACCCAACACTACTC
    GGCT-3' (C252-27-PRB) 〔配列番号12〕から成る群より
    選ばれたメンバーを含んで成り;前記5′NCR正プラ
    イマーが(C69F28)である場合には、前記プローブが(c)
    5'-GGGTCCTGGAGGCTGCACGACACTCAT-3' (C96-22-PRB)〔配
    列番号11〕を含んで成り;そして前記プローブが(d) 5'
    -GCGGCTCACGGACCTTTCACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号
    14〕および(e) 5'-ATGCGGCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32P
    RB25) 〔配列番号15〕から成る群より選ばれたメンバー
    を含んで成る、請求項57に記載のキット。
  60. 【請求項60】 前記5′NCRプライマー対が 5'-CA
    GAAAGCGTCTAGCCATGGCGTTAGTA-3' (C69F28)〔配列番号
    1〕および 5'-CGGTTCCGCAGACCACTATGGCTCTC-3' (C133R
    26) 〔配列番号4〕から成る、請求項54に記載のキッ
    ト。
  61. 【請求項61】 前記5′NCRプライマー対が 5'-GG
    GAGAGCCATAGTGGTCTGCGGAA-3' (C131F25)〔配列番号2〕
    および 5'-CGGGGCACTCGCAAGCACCCTATCA-3'(C294R25)
    〔配列番号7〕から成る、請求項54に記載のキット。
  62. 【請求項62】 HCV RNAの存在を検出するため
    のキットであって、1または複数の3′NCRオリゴヌ
    クレオチドプライマー対を含んで成り、前記3′NCR
    オリゴヌクレオチドプライマー対の各々が、オリゴヌク
    レオチド 5'-GGTGGCTCCATCTTAGCCCTAGTCACG-3' (1F27)
    〔配列番号8〕から成る正プライマーと、オリゴヌクレ
    オチド 5'-AGGCCAGTATCAGCACTCTCTGCAGTC-3' (57R27)
    〔配列番号9〕から成る逆プライマーとを含んで成るキ
    ット。
  63. 【請求項63】 1または複数のプローブを更に含んで
    成る、請求項62に記載のキット。
  64. 【請求項64】 前記プローブが5'-GCGGCTCACGGACCTTT
    CACAGCTA-3' (30PRB25) 〔配列番号14〕および5'-ATGCG
    GCTCACGGACCTTTCACAGC-3' (32PRB25) 〔配列番号15〕か
    ら成る群より選ばれる、請求項63に記載のキット。
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