JP2012509900A - 二重特異性egfr/igfir結合分子 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、EFS−Webを介して提出されており、これによってその全体が参照によって組み込まれる配列表を含有する。2009年11月23日に作成された上述のASCIIコピーは、COTH52WO.txtという名であり、サイズが552,529バイトである。
本出願は、2008年11月24日に提出された米国仮特許出願第61/200,164号;2008年11月26日に提出された米国仮特許出願第61/200,282号;2009年4月17日に提出された米国仮特許出願第61/212,966号;2009年5月14日に提出された米国仮特許出願第61/178,279号;および2009年7月21日に提出された米国仮特許出願第61/227,330号の利益を主張し、これらの出願は、それらの全体が参照によってこれによって組み込まれる。
受容体チロシンキナーゼシグナリングの活性化は、癌の進展の中心となる[たとえばGrimberg A. Cancer Biol Ther. 2003 2(6):630-5およびMendelsohn J. J Clin Oncol. 2003 21(14):2787-99を参照されたい]。受容体チロシンキナーゼは、細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、および細胞内チロシンキナーゼドメインを含む保存されたドメイン構造を有する。細胞外ドメインは、ポリペプチド増殖因子または細胞膜結合分子などのリガンドに結合することができる。典型的には、リガンド結合または受容体チロシンキナーゼのリガンド結合誘導性二量体化により、受容体の細胞内触媒チロシンキナーゼドメインおよびそれに続くシグナル伝達が活性化される。
本明細書において使用されるように、以下の用語および語句は、下記に説明される意味を有するものとする。他に定義されない限り、本明細書において使用されるすべての技術用語および科学用語は、当業者に共通して理解されるものと同じ意味を有する。
上皮増殖因子受容体(EGFR)およびインスリン様増殖因子受容体(IFGR)は、いくつかのタイプのヒト癌の腫瘍形成において重要な役割を果たす。どちらかの受容体の阻害は、症状発現前のモデルにおいて、および臨床的に、腫瘍増殖を有効に低下させる。EGFR経路が遮断されると、インビトロ(in vitro)腫瘍モデルでの増殖を駆動するためにIGFR経路への転換が誘発される。そのため、両方の受容体の遮断は、経路転換を抑えることによって、どちらかの経路のみを遮断することに比べて優れた効能を同時に達成するかもしれない。例示的な実施形態において、E/I結合剤の活性は、E/I結合剤の単量体の構成成分と比較して相乗的である。
VSDVPRDLEVVAATPTSLLI(X)nYYRITYGETGGNSPVQEFTV(X)oATISGLKPGVDYTITVYAV(X)pISINYRT(配列番号32)によって一般に定めることができ、ここに、nは1〜20の整数であり、oは1〜20の整数であり、pは1〜40の整数である。BC、DE、およびFGループは、それぞれ、(X)n、(X)o、および(X)pによって表わされる。
一態様において、本開示は、EGFR結合10Fn3ドメインを含む抗体様タンパク質を提供する。ある実施形態において、EGFR結合10Fn3は、融合タンパク質または多量体の一部として提供され得る。たとえば、EGFR結合10Fn3は、少なくとも1つの第2の10Fn3結合ドメインに共有結合または非共有結合され得る。第2の10Fn3結合ドメインは、EGFRまたは異なる標的に結合してもよい。例示的な実施形態において、EGFR結合10Fn3は、IGF−IR結合10Fn3に共有結合または非共有結合され得る。
i.
(D/N)(Y/M)(Y/A/M)(Y/H/F)(K/Q/V)(E/P/R)(Y/T/K)X(E/Y/Q)(Y/G/H)および
ii.
D(Y/F/W)(Y/F/K)(N/D/P)(P/H/L)(A/T/V)(T/D/S)(H/Y/G)(E/P/V)(Y/H)(T/K/I)(Y/F)(H/N/Q)(T/Q/E)(T/S/I)
から選択されるアミノ酸配列を含むFGループを含み、ここに、Xは任意のアミノ酸である、EGFR結合10Fn3を提供する。
i. DY(A/Y)GKPYXEY(配列番号473);
ii. DY(A/Y)Y(K/R/Q/T)PYXEY(配列番号474);
iii. (D/N)Y(A/Y)(Y/F)(K/R/Q/T)EYXE(Y/H)(配列番号475);
iv. DYY(H/Y)X(R/K)X(E/T)YX(配列番号476);
v. DYY(H/Y)(K/H/Q)(R/K)T(E/T)Y(G/P)(配列番号477);
vi. (D/N)MMHV(E/D)YXEY(配列番号478);
vii. DYMHXXYXEY(配列番号479);および
viii. D(M/Y)YHX(K/R)X(V/I/L/M)YG(配列番号480);
から選択されるアミノ酸配列を含むFGループを含み、ここに、Xは任意のアミノ酸である、EGFR結合10Fn3を提供する。
i. D(Y/F)(Y/F)NPXTHEYXYXXX(配列番号481);
ii. D(Y/F)(Y/F)D(P/L)X(T/S)HXYXYXXX(配列番号482);および
iii. D(Y/F)(K/R)PHXDGPH(T/I)YXE(S/Y)(配列番号483);
から選択されるアミノ酸配列を含むFGループを含み、ここに、Xは任意のアミノ酸である、EGFR結合10Fn3を提供する。
i. D(Y/F)(Y/F)NPXTHEYXYXXX(配列番号481);
ii. D(Y/F)(Y/F)D(P/L)X(T/S)HXYXYXXX(配列番号482);および
iii. D(Y/F)(K/R)PHXDGPH(T/I)YXE(S/Y)(配列番号483);
から選択されるアミノ酸配列を含むFGループを含み、ここに、Xは任意のアミノ酸である、EGFR結合10Fn3を提供する。
i. VSDVPRDLEVVAATPTSLLISWQVPRPMYQRYYRITYGETGGNSPVQEFTVPGGVRTATISGLKPGVDYTITVYAVTDYMHSEYRQYPISINYRT(配列番号484)、および
ii. VSDVPRDLEVVAATPTSLLISWQVPRPMYQYYRITYGETGGNSPVQEFTVPGGVRTATISGLKPGVDYTITVYAVTDYMHSEYRQYPISINYRT(配列番号485)、および
iii. VSDVPRDLEVVAATPTSLLISWQVPRPMYQRYYRITYGETGGNSPVQEFTVPGGVRTATISGLKPGVDYTITVYAVTDYMHSEYRQYPISINYRTEIDKPCQ(配列番号486)。
本開示の一態様は、抗体様タンパク質多量体から構築されたE/I結合剤を提供する。いくつかの実施形態において、抗体様タンパク質多量体は、少なくとも1つのIGFIR結合10Fn3に共有結合または非共有結合した少なくとも1つのEGFR結合10Fn3を含む。ある実施形態において、本明細書において記載されるE/I結合剤は、単一のポリペプチド鎖として構築されてもよく、ここに、EサブユニットおよびIサブユニットは、どちらかの向き、たとえばN末端からC末端にE−Iの向きまたはI−Eの向きをしていてもよい。
抗体様タンパク質の多量体は、共有結合または非共有結合され得る。いくつかの実施形態において、EGFR結合10Fn3は、IGFIR結合10Fn3に直接またはポリペプチドリンカーを介して間接的に結合され得る。Fn3を結合するのに適したリンカーは、個別のドメインが互いと独立してフォールドし、標的分子への高親和性結合を可能にする三次元構造を形成することを可能にするものである。
一態様において、本開示は、薬物動態(PK)成分をさらに含むE結合剤およびE/I結合剤を提供する。いくつかの実施形態において、E/I結合剤は、抗体様タンパク質の多量体、特に、EGFR結合10Fn3およびIGFIR結合10Fn3の二量体である。改善された薬物動態は、認知された治療上の必要性に従って評価され得る。多くの場合、おそらくタンパク質が投薬の後、血清において利用可能なまま残る時間を増加させることによって、生物学的利用能を増加させることおよび/または服用の間の時間を増加させることは望ましい。いくつかの実例において、タンパク質の血清濃度の継続を長い間にわたって改善する(たとえば、投与直後のおよび次の投与直前のタンパク質の血清濃度中の差異を減少させる)ことは望ましい。E結合剤およびE/I結合剤は、哺乳動物(たとえばマウス、ラット、またはヒト)における該ポリペプチドのクリアランス速度を、未修飾ポリペプチドに比べて3分の1よりも大きく低下させる成分に結合され得る。改善された薬物動態についての他の手段は、血清半減期を含んでいてもよく、これは、アルファ相およびベータ相に分けられることが多い。いずれかまたは両方の相は、適切な成分の付加によって著しく改善され得る。
本開示は、E結合剤およびE/I結合剤、特に、EGFR結合10Fn3およびIGFIR結合10Fn3の二量体などの抗体様タンパク質多量体を提供する。EGFRまたはIGFIRへの結合は、平衡定数(たとえば解離、KD)の点からおよび反応速度定数(たとえば、on速度定数、konおよびoff速度定数、koff)の点から評価され得る。いくつかの実施形態において、抗体様タンパク質単量体または多量体は、500nM、100nM、50nM、5nMまたはそれ以下より小さいKDでEGFRに結合するであろう。いくつかの実施形態において、抗体様タンパク質多量体は、500nM、100nM、50nM、5nMまたはそれ以下より小さいKDでIGFIRに結合するであろう。koffが十分に低いか、またはkonが十分に高い場合には、より高いKD値が許容され得る。
生体適合性ポリマーへのコンジュゲーションは、抗体様タンパク質多量体を結合し、および/または該タンパク質の薬物動態を改善するために使用され得る。ポリマーの固有性、サイズ、および構造は、活性における許容できない減少を伴うことなく多量体の循環半減期を改善または多量体の抗原性を減少させるように選択される。
E結合剤およびE/I結合剤、特に、EGFR結合10Fn3およびIGFIR結合10Fn3の二量体などの抗体様タンパク質多量体のアミノ酸配列は、1つまたは複数のB細胞エピトープまたはT細胞エピトープを排除するために改変され得る。タンパク質またはタンパク質の多量体は、所与の種に対してそれを非免疫原性にするか、またはそれほど免疫原性ではなくするために脱免疫化され得る。脱免疫化は、タンパク質に対する構造の改変を通して達成することができる。当業者らに知られている任意の脱免疫化技術を使用することができ、たとえば、その開示の全体が本明細書において組み込まれるWO00/34317を参照されたい。
ある実施形態において、E結合剤およびE/I結合剤、特に、EGFR結合10Fn3およびIGFIR結合10Fn3の二量体などの抗体様タンパク質多量体は、翻訳後修飾をさらに含んでいてもよい。例示的な翻訳後タンパク質修飾は、リン酸化、アセチル化、メチル化、ADP−リボシル化、ユビキチン化、グリコシル化、カルボニル化、SUMO化、ビオチン化、あるいはポリペプチド側鎖または疎水基の付加を含む。その結果として、修飾されたE結合剤およびE/I結合剤は、脂質、多糖類または単糖類、およびホスフェートなどの非アミノ酸エレメントを含有していてもよい。グリコシル化の好ましい形態は、シアリル化であり、これは、ポリペプチドに1つまたは複数のシアル酸成分をコンジュゲートする。シアル酸成分は、タンパク質の可能性のある免疫原性をも低下させながら、可溶性および血清半減期を改善する。たとえばRaju et al. Biochemistry. 2001 Jul 31; 40(30):8868-76を参照されたい。E結合剤またはE/I結合剤の機能性に対するそのような非アミノ酸エレメントの効果は、EGFRシグナリング機能およびIGFIRシグナリング機能におけるそのアンタゴナイズする役割について試験され得る。
本明細書において記載されるタンパク質のいずれかをコードする核酸配列もまた、本開示において含まれる。当業者らによって十分に理解されるように、3番目の塩基の縮重のために、ほとんどすべてのアミノ酸は、コードヌクレオチド配列における1つを超えるトリプレットコドンによって表わすことができる。さらに、軽微な塩基対変化は、コードされたアミノ酸配列における保存的置換をもたらしうるが、遺伝子産物の生物学的活性を実質的に改変するとは予想されない。そのため、本明細書において記載されるタンパク質をコードする核酸配列は、配列がわずかに修飾されるが、なおも各遺伝子産物をコードしうる。
宿主細胞は、タンパク質産生のために、本明細書において記載される発現ベクターまたはクローニングベクターを用いて形質転換され、プロモーターの誘発、形質転換体の選択、または所望の配列をコードする遺伝子の増幅のために、適宜、修飾された従来の栄養培地中で培養される。
本明細書において記載されるE結合剤は、検出可能に標識することができ、画像化または診断的応用のために、EGFRを発現する細胞と接触させるために使用することができる。本明細書において記載されるE/I結合剤は、検出可能に標識することができ、画像化または診断的応用のために、EGFRおよび/またはIGFIRを発現する細胞と接触させるために使用することができる。Hunter, et al., Nature 144:945 (1962);David, et al., Biochemistry 13:1014 (1974);Pain, et al., J. Immunol. Meth. 40:219 (1981);およびNygren, J. Histochem. and Cytochem. 30:407 (1982)によって記載されている方法を含む、検出可能な成分にタンパク質をコンジュゲートするための当技術分野において知られている任意の方法が用いられうる。
本明細書において記載されるE結合剤はまた、EGFR生物学的活性の阻害に応答する状態を治療するための方法においても有用である。本明細書において記載されるE/I結合剤は、EGFRおよび/またはIGFIRの生物学的活性の阻害に応答する状態を治療するための方法においても有用である。EGFRおよびIGFIRは、増殖、接着、および遊走ならびに分化を含む様々な細胞活性のシグナル伝達経路に、直接または間接的に関与する。
本出願の一態様は、E結合剤またはE/I結合剤および細胞毒剤などの追加の治療剤の組合せを提供する。いくつかの実施形態において、E結合剤またはE/I結合剤は、細胞毒剤に結合される。そのような実施形態は、適宜、インビトロまたはインビボにおける方法によって調製することができる。インビトロにおける方法は、システイン残基およびリジン残基へのコンジュゲーションなどの当技術分野において十分に知られているコンジュゲーション化学を含む。細胞毒剤をポリペプチドに結合するために、結合基または反応基が使用される。適した結合基は、当技術分野においてよく知られており、ジスルフィド基、チオエーテル基、酸不安定基、感光基、ペプチダーゼ不安定基(peptidase labile group)、およびエステラーゼ不安定基(esterase labile group)を含む。細胞毒剤はまた、血清アルブミンなどの仲介キャリア分子を通してE結合剤またはE/I結合剤に結合することもできる。
本出願は、EGFRおよび/またはIGFIRの生物学的活性の阻害に応答する状態を治療するための方法を提供する。投与のための技術および投薬量は、特定のポリペプチドのタイプおよび治療されている特定の状態に依存して変わるが、当業者によって容易に決定することができる。一般に、規制当局は、治療薬として使用されることとなるタンパク質試薬が、受け入れられる程度に低レベルの発熱物質を有するように処方されることを要求する。したがって、治療製剤は、一般に、適切な規制当局(たとえばFDA)によって決定されるように、それらが実質的に発熱物質がないまたは少なくとも、許容できるレベル以下の発熱物質を含有するという点で、他の処方と区別されるであろう。
本出願において参照される配列の多くは、下記の表において概説される。別段の定めがない限り、N末端伸長は、一重下線を用いて示され、C末端テールは、二重下線を用いて示され、リンカー配列は、太字で示される。
EGFR活性についてスクリーニングするためのIn Cell Westernアッセイ
In Cell Westernアッセイは、IGF1R10Fn3結合剤と結合してE/I結合剤を構築することができるものを同定するために、EGFR活性を阻害する能力について様々な単一の10Fn3クローンをスクリーニングするために開発された。In Cell Westernアッセイはまた、特定のE/I10Fn3結合剤の相対的な効力をスクリーニングし、決定するためにも使用された。2つのIn Cell Westernアッセイは、1)EGF刺激EGFRリン酸化の阻害または2)EGF刺激ERKリン酸化の阻害を測定するために開発された。細胞は、A431類表皮癌細胞またはFaDu頭頸部癌細胞について24,000細胞/ウェルで、ポリD−リジンで被覆された96ウェルマイクロタイタープレート(Becton Dickinson、Franklin Lakes、NJ)中に細胞を播種し、一晩接着させた。細胞を1回洗浄し、次いで、無血清培地中で24時間インキュベートした。次に、10Fn3ベースの結合剤の段階希釈液を細胞にアプライし、2〜3時間インキュベートした後、100ng/ml EGFで10分間刺激した。刺激後、3.7%ホルムアルデヒドを含有するPBS中で20分間細胞を固定し、次いで、15分間、0.1%triton−X−100を含有するPBS中で透過処理した。細胞は、Odysseyブロッカー(Li−Cor Biosciences、Lincoln、Nebraska)中で1時間ブロックし、チロシン1068上でリン酸化されたEGFR(Cell Signaling、Beverly、MA)およびβ−アクチン(Sigma、St.Louis、MO)またはpERK(チロシン202/トレオニン204上でリン酸化されたMAPキナーゼ)および全ERK(Santa Cruz Biotechnology、Santa Cruz、CA)を検出するために、抗体と共にインキュベートした。0.1%tween−20を含有するPBS中での3回の洗浄の後に、二次抗体を追加した(Invitrogen、Carlsbad、CA or Rockland、Gilbertsville,PA)。細胞は、0.1%tween−20を含有するPBS中で3回洗浄し、Li−Cor Odyssey赤外線画像システム(Li−Cor Biosciences、Lincoln、Nebraska)上で画像処理した。それぞれのクローンを3連または4連でアッセイし、値は、pEGFRアッセイについてはβ−アクチンおよびpERKアッセイについては全ERKに対して標準化した。IC50値は、バックグラウンドを差し引いた最大シグナルの阻害パーセントについての線形回帰分析から計算した。
10Fn3ベースの結合剤の発現
E/I結合剤は、グリシン−セリンリンカーを使用してEGFR結合10Fn3をIGFIR結合10Fn3に共有結合し、それによって、それぞれの10Fn3ドメインが異なる標的に結合する10Fn3二量体を生成することによって製造した。IGFIR結合10Fn3(I1)は、PCT公開WO 2008/066752において配列番号226として以前に記載されている。新規な2つのEGFR結合10Fn3(E2およびE1)は、PCT公開WO2008/066752において記載されるように、EGFR−Fc(R&D Systems、Minneapolis、MN)に対する結合剤について、RNA−タンパク質融合ライブラリーをスクリーニングすることによって同定した。以下の実施例は、様々なHisタグつきE/I10Fn3ベースの結合剤(非ペグ化):E2−GS10−I1(配列番号25)、E1−GS10−I1(配列番号31)、I1−GS10−E1(配列番号28)、およびI1−GS10−E2(配列番号22)を使用する結果を記載する。
E1−GS10−I1(配列番号55)、E2−GS10−I1(配列番号56)、E3−GS10−I1(配列番号53)、I1−GS10−E1(配列番号57)、I1−GS10−E2(配列番号58)、I1−GS10−E3(配列番号54)、E4−GS10−I1(配列番号120)、I1−GS10−E4(配列番号124)、E5−GS10−I1(配列番号128)、I1−GS10−E5(配列番号132)、E85−GS10−I1(配列番号149)、I1−GS10−E85(配列番号152)、E90−GS10−I1(配列番号164)、E96−GS10−I1(配列番号179)、E105−GS10−I1(配列番号192)、I1−GS10−E105(配列番号195)、E112−GS10−I1(配列番号205)、I1−GS10−E112(配列番号208)、I1−GSGCGS8−E5(配列番号211)、I1−GS10−E5−GSGC(配列番号212)、I1(S62C)−GS10−E5(配列番号213)、I1−GS10−E5(S62C)(配列番号214)、I1(S91C)−GS10−E5(配列番号215)、およびI1−GS10−E5(S91C)(配列番号216)を用いる結果を記載する。
E/I 10Fn3ベースの結合剤のペグ化
E/I 10Fn3ベースの結合剤などの多価フィブロネクチンベースのスキャフォールドタンパク質は、様々なサイズおよびタイプのPEGを用いてペグ化することができる。ペグ化を可能にするために、典型的には、該タンパク質は、アミノ酸(典型的にはセリン)のシステインへの単一点突然変異によって、C末端の近くで修飾される。単一のシステイン残基でのタンパク質のペグ化は、誘導体化PEG試薬をタンパク質溶液と組み合わせ、インキュベートすることによって、様々なマレイミド誘導体化PEG形態とのコンジュゲーションを通して達成される。ペグ化コンジュゲーション反応の進行および確認は、ペグ化タンパク質から非ペグ化タンパク質を分離するSDS−PAGEおよび/またはSE−HPLC法によって確認することができる。
10Fn3ベースの結合剤の生物物理的特徴づけ
標準のサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)を、HTPPおよび中規模プロセスから精製したタンパク質について実行した(HTPPについては0.1〜1μgのタンパク質、中規模については10〜50ug)。HTPP由来物質のSECは、Superdex 200 5/150カラム(GE Healthcare)を使用して、または中規模の物質についてはSuperdex 200 10/30カラム(GE Healthcare)上で、A214nmおよびA280nmでのUV検出ならびに蛍光検出(励起=280nmおよび放射=350nm)を用いるAgilent 1100または1200HPLCシステム上で実行した。該SECカラムの適切な流速にて、100mM硫酸ナトリウム、100mMリン酸ナトリウム、150mM塩化ナトリウム、pH6.8の緩衝液を用いた。ゲル濾過標準物質(Bio−Rad Laboratories、Hercules、CA)を分子量較正のために使用した。
結合親和性の測定
表面プラズモン共鳴(BIAcore)分析は、捕捉されたEGFR−FcおよびIGF1R−Fcを使用して、off速度および/または結合親和性を決定するために、溶液相の10Fn3ベースの結合剤について実行した。ヒトIGF1R(アミノ酸1〜932)の細胞外ドメインは、ヒトIgG1のヒンジおよび定常領域を含有する哺乳動物発現ベクターの中にクローニングした。プラスミドの一時的なトランスフェクションにより、融合タンパク質、IGF1R−Fcが産生され、続いて、これをプロテインAクロマトグラフィーによって精製した。組換えヒトEGFR−Fc(ヒトFcに融合されたヒトEGFRの細胞外ドメインのアミノ酸1〜645)は、R&D systems(Minneapolis、MN)から購入した。IGF1R−Fcは、固定プロテインA上に捕捉したが、EGFR−Fcは、固定抗ヒト抗体上に捕捉した。
H292細胞におけるIGFR活性の阻害
E/I 10Fn3ベースの結合剤がチロシン1131上でのIGF1Rのリン酸化を阻害する能力は、インビトロアッセイにおいてH292細胞を使用して決定した。手短かに言えば、65×103 H292細胞は、10mM Hepes pH7.4および10%ウシ胎児血清を含有するRPMI−1640培養培地中、96ウェルマイクロプレート(BiocoatポリD−リシンコート96ウェルプレート、カタログ#356640、Becton Dickinson、Franklin Lakes、NJ)中で培養した。細胞は、37℃、5%CO2で24時間、接着させた。翌日、細胞は、ウェル当たり200マイクロリットルの無血清RPMI−1640を用いて1回洗浄し、ウェル当たり100μLの無血清RPMI−1640中で一晩インキュベートした。HTPP物質の段階希釈液を追加し、細胞をさらに3時間インキュベートした。細胞は、37℃で10分間、100ng/mlのIGF−1(カタログ#500−P11、PeproTech、Rocky Hill、NJ)を用いて刺激した。培地をプレートから捨て、100μLの細胞溶解緩衝液(Cell Signalingカタログ#9803、Beverly、MA)をそれぞれのウェルに追加した。細胞は、15分間、室温でインキュベートし、溶解させ、溶解物は、ホスホIGFR ELISA(カタログ#7302、Cell Signaling、Beverly、MA)に移した。ELISAを実行するためにメーカーの手順に従った。
H292細胞におけるEGFR活性の阻害
E/I 10Fn3ベースの結合剤がチロシン1068上でのEGFRのリン酸化を阻害する能力は、インビトロアッセイにおいてH292細胞を使用して決定した。アッセイは、細胞を100ng/mlのEGF(カタログ#236−EG−200、R & D Systems、Minneapolis、MN)を用いて刺激したという点を除いて実施例6において記載されるように実行し、ホスホEGFR ELISAを実行した(カタログ#7240、Cell Signaling、Beverly、MA)。ELISAを実行するためにメーカーの手順に従った。
H292細胞におけるEGF+IGF1誘発pAKTの阻害
E/I 10Fn3ベースの結合剤がセリン473上でのAKTのリン酸化を阻害する能力は、インビトロアッセイにおいてH292細胞を使用して決定した。アッセイは、細胞を上記に記載されるようにEGFおよびIGF1の両方を用いて同時に刺激し、溶解物をホスホAKT ELISA(カタログ#7160、Cell Signaling、Beverly、MA)を用いて分析したという点を除いて、実施例6において記載されるように実行した。ELISAを実行するためにメーカーの手順に従った。
RH41細胞およびH292細胞における細胞増殖の阻害
E/I 10Fn3ベースの結合剤は、増殖をEGFRシグナリングに依存するH292非小細胞肺癌細胞系、または増殖をIGF1Rシグナリングに依存するRH41ユーイング肉腫細胞系において、抗増殖性活性について評価した。結合剤の抗増殖性活性は、CyQuantNF蛍光染色(カタログ#C35006、Invitrogen、Carlsbad、CA)を用いて細胞内DNAを染色することによって単層培養において評価した。手短かに言えば、2×103 H292または5×103 RH41細胞は、10mM Hepes pH7.4および10%ウシ胎児血清を含有するRPMI−1640培養培地中、96ウェルマイクロプレート(View Plates 96F カタログ#6005225、Perkin−Elmer、Waltham、MA)の中に播種し、37℃、5%CO2で24時間、接着させた。細胞は、対数増殖単層として維持され、アッセイの過程の間、コンフルエンスに達することなく、アッセイ期間中、対数増殖期にとどまった。播種から24時間後に、中規模物質の段階希釈液を追加し、細胞をさらに72時間インキュベートした。このインキュベーションの後に、細胞をCyQuantNF試薬を用いて処理し、37℃で1時間、細胞内DNAの中に色素を組み込ませた。全DNAは、CytoFluor 4000機器(Applied Biosystems、Framingham、MA)で485nmの励起および530nmの放射で蛍光を読み取ることによって定量した。細胞を薬剤に曝露した全時間は72時間であった。アッセイの性能および再現性を確認するために、標準化合物を各実験に含ませた。試験化合物による阻害のパーセントの線形回帰分析は、IC50値を決定するために使用した。
競合的EGFリガンド結合アッセイ
E/I結合剤E1−GS10−I1、I1−GS10−E1、E2−GS10−I1、およびI1−GS10−E2(HTPP物質)は、A431細胞においてEGFリガンド結合細胞ベースの競合アッセイにおいて試験し、EGFR 10Fn3ベースの結合剤E1およびE2(中規模物質)と比較した。A431細胞は、DMEM+10%FBS中で96ウェルプレート中、15000細胞/ウェルで播種し、48時間インキュベートした。細胞は、飢餓培地(DMEM+0.1%BSA)を用いて洗浄し、1時間飢餓培地中でインキュベートした。飢餓培地を除去し、飢餓培地中で希釈した10Fn3ベースの結合剤と交換し、細胞は、37℃で30分間、プレインキュベートし、タンパク質が細胞表面上のEGF受容体に結合することを可能にした。飢餓培地中で希釈した、10nM最終濃度のユウロピウム(Eu)標識EGF(Perkin Elmer、Boston、MA)をプレインキュベートした細胞に追加し、プレートは、暗中で4℃で3時間インキュベートした。プレートは、冷PBSを用いて2回洗浄し、50ul/ウェルのEnhancement溶液(Perkin Elmer、Boston、MA)をプレートに追加し、37℃で1時間インキュベートした。プレートは、Flexstation II(Molecular Devices)上で読み取った。データは、Softmax plusソフトウェアを用いてプロットし、IC50値、つまり、Eu−EGFリガンドの50%を細胞表面上のEGF受容体に結合させないようにするのに必要とされる10Fn3ベースの結合剤の濃度を計算した。
細胞ベースのアッセイにおける活性化およびシグナリング活性
様々なE/I 10Fn3ベースの結合剤の標的効果を、イムノブロッティングによってDiFi結腸癌細胞において評価した。細胞は、それぞれの25cm2フラスコ中に4×105細胞で接種し、5%CO2中で37℃で一晩インキュベートした。翌日、処理を開始し、細胞は、1.5〜120時間までの様々な時間、さらにインキュベートした。次いで、細胞は、HNTG(50mM Hepes、150mM NaCl、0.5% triton−X−100、8%グリセロール、2mM Na3VO4、1.5mM MgCl2、プロテアーゼ阻害剤AEBSFを含有する1mM EDTA、アプロチニン、ロイペプチン、ベスタチン、ペプスタチン−A、およびE64)中で溶解し、総タンパク質量をBCAタンパク質アッセイを用いて定量した(Pierce、Waltham、MA)。全EGFR、全IGF1R、およびEGFR、MAPキナーゼタンパク質ERK1/2アイソフォームのリン酸化状態のレベルを、20マイクログラムの総タンパク質量のSDS−PAGE分析、その後に続く、ニトロセルロースへのタンパク質の転写および特異的な抗体を用いるイムノブロッティングによって検出した。ブロットはまた、それぞれの試料の使用量が等しいことを示すためにβ−アクチンを用いてプローブした。
ヌードマウスにおいて成長させたH292腫瘍異種移植片に対するある種のE/I 10Fn3ベースの結合剤の評価
ペグ化E/I結合剤E2−GS10−I1およびE3−GS10−I1ならびにモノクローナル抗体パニツムマブを、H292腫瘍異種移植片モデルにおいて評価した。インビボモデルについては、パニツムマブは、市販の薬剤として得、E/I結合剤は上記に記載されるように精製した。すべてのE/I結合剤のインビトロ活性は、動物への投与前に、H292細胞におけるEGF刺激pEGFRアッセイおよびIGF1刺激pIGFRアッセイにおいて各末端の機能性を試験することによって、確認した。E/I結合剤は、実験の初めにリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中で希釈し、それぞれの研究の期間、2〜4℃で保存した。両方の化合物は、500μl/注射/マウスの全容量でi.p.投与し、投与前に室温に平衡化した。
IGF1R阻害剤に対して抵抗性のMCF7細胞の選択および特徴づけ
MCF7細胞(American Type Culture Collection、カタログ番号HTB−22、Manassas、VA)は、5%CO2の存在下において、37℃で、10mM hepesおよび10%FBSを含有するRPMI培地中で培養した。小分子IGF1R阻害剤BMS−754807を培養培地に追加し、細胞が、200mM BMS−754807の存在下において継続的な増殖を示すまで、濃度は、10か月の期間にわたって段階的な増分で増加させた。抵抗性細胞は、MCF7rと呼び、BMS−754807についてのIC50は、以前に記載されるように(Carboni et al., Cancer Res. 69: 161-170 (2009))実行した増殖アッセイにおいて測定された場合、親MCF7細胞についての120nMと比較して、1239nMであった。次いで、該薬剤を培養培地から除去し、残存性のBMS−754807をすべて除去するために、MCF7r細胞をさらに20日または60日間、完全培地中で継代した。イムノブロッティングによるMCF7r細胞の分析により、EGFRが、親MCF7細胞と比較して、抵抗性細胞中で有意に過剰表現されることが明らかにされた(図14)。さらに、MCF7細胞およびMCF7r細胞を血清欠乏にさせ、次いで、7分間、EGFを用いて刺激した場合、リン酸化EGFRは、親MCF7細胞において検出することができなかったが(おそらく低いレベルのEGFRにより)、MCF7r細胞において強く可視的であった。IGFリガンドを用いて刺激した、血清を欠乏させた細胞において、リン酸化IGFRは、親MCF7細胞において見られたが、MCF7r細胞中に存在するわずかに高いレベルの全IGFRにもかかわらず、pIGFRはほとんど観察されなかった。これは、抵抗性MCF7r細胞におけるIGFRがIGF1刺激に応じてIGFRを活性化する能力を失ったことを示す(図14)。EGF刺激に応じたMAPキナーゼ経路の活性化は、pERK活性化によって測定されるようにMCF7r細胞においてより強かった。
MCF7異種移植片およびMCF7r異種移植片における抗腫瘍研究
MCF7r細胞は、T75フラスコ中で増大させ、遠心分離によって単離した。生存細胞数は、Vi−CELL XR(Beckman Coulter、Fullerton、CA)を用いてトリパンブルー排除法によって測定し、5×106生存細胞/mlまでPBS中に再懸濁し、0.2mlの容量で無胸腺マウスの後方の側腹部中に皮下移植した。MCF7腫瘍増殖およびMCF7r腫瘍増殖のために、すべてのマウスに、17−β−エストラジオール(Innovative Research of America、Sarasota、FL、カタログ番号NE−121)の0.25mgの90日間放出ペレットを補足した。腫瘍は、それらを切除した場合に500〜1000mgの中央サイズに達するまで増殖させ、1mm3断片を新しい無胸腺マウスの後方の側腹部中に再移植した。腫瘍は、腫瘍量倍加時間および生着率をそれぞれの継代についてモニターした少なくとも4ラウンドの増殖を通して、マウスにおける連続的トロッカー継代(serial trocar passage)によって固形腫瘍増殖に適合させた。増殖特徴は、異種移植片が信頼できる再生可能なモデルとして役立つのに許容できる特性を示すかどうかを決定するために観察された。MCF7r腫瘍型は、許容できる生着率および倍加時間を示し、そのため、異種移植片モデルとしての使用のための基準を満たした。MCF7親腫瘍モデルは、同じ技術を使用して、以前に確立された。MCF7親異種移植片については、1mm3腫瘍断片を、後方の側腹部中に皮下移植し、腫瘍移植後13日目の処理の開始前に、50〜150mgのサイズまで確立させた。セツキシマブは市販の薬剤として得、Q3DX5スケジュールに基づいて1mg/マウスのその最適用量および低用量の0.1mg/マウスでi.p.投与した(13、16、19、22、25日目に用量を投与)。8匹のマウスの群から計算した平均腫瘍サイズを図15Aに示す。MCF7異種移植片モデルにおいて、セツキシマブの1mg/マウスまたは0.1mg/マウスの用量のいずれも、それぞれ−9%および3.2%の値を有するTGI%によって活性とならず、腫瘍サイズは、対照群とは統計的に異なっていなかった(表6)。
GEO異種移植片における抗腫瘍研究
GEO腫瘍は、無胸腺マウスの後方の側腹部中に1mm3腫瘍断片を皮下移植することによって確立し、腫瘍移植後18日目の処理の開始前に、50〜150mgのサイズまで達することを可能にした。セツキシマブは、Q3DX5スケジュールに基づいて0.25mg/マウスでip投与した(18、21、24、27、30日目に用量を投与した)。IGFRキナーゼ阻害剤BMS−754807は、QDX21スケジュールに基づいて25mg/kgで投与した。8匹のマウスの群から計算した平均腫瘍サイズを図16に示す。セツキシマブは、67%のTGI%値を有する0.25mg/マウスで活性となった。BMS−754807は、80%のTGI%により活性となり、2つの組合せは、94%のTGI%により、どちらかの作用物質のみよりも、相当に活性となった(表8)。すべての処理群は、26日目に対照群とは統計的に異なっていた(表8)。
H292異種移植片における抗腫瘍研究
H292細胞は、1mm3断片として無胸腺マウスの後方の側腹部中に皮下移植し、腫瘍移植後の12日目に処理を開始する前に50〜150mgのサイズまで確立させた。セツキシマブは、Q3DX5スケジュールに基づいて0.1mg/マウスでip投与した。MAB391は、IGF1Rに対する抗体(R&D Systems、Minneapolis、MN、カタログ番号MAB391)であり、BIWX3スケジュールに基づいて40mg/kgの用量で投与した。8匹のマウスの群から計算した平均腫瘍サイズを図17に示す。セツキシマブは、95.1%のTGI%値により0.1mg/マウスで活性となり、MAB391は、10.5%のTGI%値により40mg/kgで不活性となった(表9)。セツキシマブおよびMAB391の組合せを投薬したマウスは、109.2%のTGI%値を示し、組合せの群において腫瘍退縮を示した(表9)。投薬を停止した後、腫瘍は、セツキシマブおよびMAB391の組合せにより処理された群におけるよりも、セツキシマブ処理群においてより急速に再増殖した(図17)。
コロニー形成アッセイ
H292細胞のコロニー形成を阻害するための能力に対する試験化合物の効果を決定するために、400の細胞を、完全培地中、24ウェルプレート(Becton−Dickinson、Franklin Lakes、NJ、カタログ番号351143)の中に接種し、一晩、接着させた。翌日、培地を除去し、2%FBSを含有する培地と交換した。試験化合物は、2%FBSを含有する培地の中に希釈し、段階希釈において細胞に加えた。細胞は、14日間、37℃でインキュベートした。14日後に、培地を廃棄し、ウェルを2ml PBSを用いて1回すすいだ。細胞は、20分間、0.5mlクーマシー染色溶液(Bio−Rad、Hercules、CA、カタログ番号161−0436)を用いて染色した。染色液は吸引し、ウェルは、1×脱染溶液クーマシーR−250(Bio−Rad、カタログ番号161−0438)を用いて素速く洗浄した。ウェル当たり1mlの水を用いる最終のすすぎを実行し、プレートを逆さにし、乾した。(少なくとも)50以上の細胞から成るコロニーは、低拡大倍率(10×〜20×)下で目によってカウントした。すべての試料は、3連で試験し、IC50値は、対照の阻害パーセントの線形回帰から計算した。ペグ化E/I結合剤についての代表的な結果を図18に示し、様々なE/I 10Fn3ベースの結合剤、単一特異的IGF1R 10Fn3ベースの結合剤、およびEGFR抗体についてのIC50値を表10に示す。
エピトープマッピングアッセイ
エピトープマッピングアッセイは、EGFR細胞外ドメイン上の結合部位が様々な文献の報告によっておおよそ知られている市販の抗体を利用して開発された。このアッセイにおいて使用する抗体は、表11に挙げ、図19Aは、抗体がEGFR上のおよその結合ドメインにどのように局在化するのかを示す。アッセイは、以前に記載したIn Cell Westernアッセイの変形であり、EGFRを発現するA431細胞または他の細胞と共にプレインキュベートしたEGFR 10Fn3ベースの結合剤の、表11に挙げたパネル由来の検出抗体の結合を遮断する能力を評価する。アッセイは、以下のように実行した:対数期増殖のA431細胞をトリプシン処理によって採取し、100μl/ウェルの全容量において、24,000細胞/ウェルで96ウェルプレート中に接種した。翌日、培地を捨て、冷DMEMベースの培地中で希釈したEGFR 10Fn3ベースの結合剤をプレートに追加し、EGFRのインターナリゼーション(internalization)を予防するために4℃で1時間、結合させた。結合後、細胞は、0.2ml PBS+0.1% Tween−20を用いて洗浄し、室温でPBS+3.7%ホルムアルデヒド中で20分間、固定した。細胞は、室温で1時間、0.2mlのOdysseyブロッキング緩衝液中でブロックした。次に、一次抗体を、ウェル当たり50μlのOdysseyブロッカー中で希釈し、室温で1〜2時間インキュベートした。一次抗体は、プレートを逆にすることによって捨て、それぞれのウェルは、200μlのPBS+0.1% tween−20を用いて3×洗浄した。二次抗体は、In Cell Westernアッセイにおいて使用した同じ二次抗体とし、検出している抗体の種類に適切であった。これらの二次抗体は、Odysseyブロッカー+0.2% Ttween−20中で希釈し(1:800)、標準化のために細胞を対比染色するために希釈した(1:3000)TOPRO3(Invitrogen、Carlsbad、CA、カタログ#T3605)と共にウェル当たり50μlの容量で加えた。細胞は、室温で1時間ベンチ上でインキュベートした。二次抗体を捨て、それぞれのウェルは、室温で5分間、200μlのPBS+0.1% Tween−20を用いて4×洗浄した。プレートは、160μmの解像度、中程度の品質、3mmの焦点オフセット、5の強度でLicor機器で画像処理した。このアッセイもまた、市販の薬剤抗体セツキシマブ、パニツムマブ、およびニモツズマブを用いて、それらがA431細胞上のEGFRに結合することにEGFR 10Fn3ベースの結合剤が干渉するかどうかを決定するために実行した。代表的な結果を図19Bに示す。
I単量体の特性
可溶性フィブロネクチンベースのスキャフォールドタンパク質のBIAcore分析
標的に結合するI単量体の反応速度は、BIAcore 2000または3000バイオセンサー(Pharmacia Biosensor)を使用して測定した。捕獲アッセイは、IGF−IR−Fc融合体を利用して開発した。類似する試薬は、Forbesらによって記載されている(Forbes et al. 2002, European J. Biochemistry, 269, 961-968)。ヒトIGF−IR(アミノ酸1〜932)の細胞外ドメインは、ヒトIgG1のヒンジおよび定常領域を含有する哺乳動物発現ベクターの中にクローニングした。プラスミドの一時的なトランスフェクションにより融合タンパク質、IGF−IR−Fcを生産し、これを、続いて、プロテインAクロマトグラフィーによって精製し、アミンカップリングによってBiasensor CM5チップ上に固定したプロテインA上に捕捉した。動態分析は、プロテインA上でのIGF−IR−Fcの捕獲、その後に続く、溶液中のフィブロネクチンベースのスキャフォールドタンパク質の注入およびグリシンpH2.0によるプロテインA表面の再生を含んだ。センサーグラムは、それぞれの濃度で得、速度定数ka(kon)およびkd(koff)を決定するために、プログラムBiaevaluation、BIA Evaluation 2.0(BIAcore)を使用して評価した。解離定数(KD)は、速度定数koff/konの比から計算した。典型的に、精製フィブロネクチンベースのスキャフォールドタンパク質の濃度系列(2uM〜0uM)は、プロテインAに捕捉されたヒトIGF−IR−Fc融合タンパク質への結合について評価した。
ヒト乳腺癌MCF−7(ATCC、Manassas、VA)は、10%ウシ胎児血清(Hyclone、Logan、UT)を含有するRPMI 1640(Invitrogen、Carlsbad、CA)中、ウェル当たり50,000細胞の濃度で24ウェルプレートに播種した。翌日、細胞は、0.1%BSA(Sigma、St.Louis、MO)を含有するRPMI 1640から成る結合緩衝液中で洗浄し、次いで、IGF−IR拮抗剤を含有する200μL結合緩衝液において氷上で30分間、プレインキュベートした。プレインキュベーション期間の後に、約60000カウント毎分に等しい40pM[125I]IGF−I(Perkin Elmer、Wellesley、MA)をそれぞれのウェルに追加し、緩やかに撹拌しながら氷上でさらに3時間インキュベートした。次いで、ウェルは、0.1% BSAを含有する氷冷PBSを用いて洗浄した。細胞は、0.1% SDS+0.5N NaOHから成る500μL緩衝液を用いて溶解した。溶解物の放射能は、Wallac 1470 Gamma Counter(Perkin Elmer、Wellesley、MA)を使用して測定し、データは、SigmaPlot(Systat Software、Point Richmond、CA)を使用して分析した。
Fcに融合されたフィブロネクチンベースのスキャフォールドタンパク質は、Rh41ヒト横紋筋肉腫細胞におけるIGF−1Rリン酸化を阻害する能力について評価された。ウェスタンブロットは、I単量体がRh41ヒト横紋筋肉腫細胞においてIGF−1Rリン酸化を阻害する能力を評価するために用いた。細胞は、IGF−I、IGF−II、インスリンリガンド(50ng/ml)を用いて刺激し、または無刺激(NS)とし、次いで、様々な濃度のI単量体を用いて処理した。膜は、リン酸特異的抗体を用いてプローブした。
増殖は、試薬に対する72時間の曝露の後のDNAの中への[3H]−チミジンの取り込みによって評価した。Rh41細胞は、96ウェルマイクロタイタープレート中、3500細胞/ウェルの密度で播種し、24時間後、それらを一連のI単量体濃度に対して曝露した。37℃でのインキュベーションの72時間後、細胞は、3時間、4μCi/ml[3H]チミジン(Amersham Pharmacia Biotech、UK)を用いてパルスし、トリプシン処理し、UniFilter−96、GF/Bプレート(PerkinElmer、Boston、MA)上に採取し、シンチレーションは、TopCount NXT(Packard、CT)上で測定した。結果は、未処理対照細胞の細胞増殖に対して50%細胞増殖を阻害するために必要とされる薬剤濃度であるIC50として表現する。データは、示される標準偏差と共に、3連のウェルの平均を表わす。
単一特異的および二重特異性EGFRおよびIGF−IRの10Fn3ベースの結合剤のさらなる特徴
EGFRまたはIGF−IRを結合した10Fn3ベースの結合剤を、タンパク質がそのコード核酸配列に共有結合されるmRNAディスプレイの生化学的な選択技術を使用して同定した。受容体が1〜10nMの濃度で提示される場合にIGF−IRまたはEGFRを結合する10Fn3ベースのタンパク質−mRNA融合体の集団を、大腸菌の中にクローニングし、10Fn3ベースのタンパク質として発現させた。EGFRまたはIGF−IRシグナリングを遮断し、適した生物物理的特性を有した標的結合剤のサブセットを同定した(表13)。これらの最初のクローンは、標的結合親和性、およびますます低い標的濃度でのさらなるmRNAの選択を有する細胞の効力、およびより低い解離速度定数の選択について最適化した。選択手順の間に得られたIC50値は、9〜304nMの範囲であり、二重特異性10Fn3ベースの結合剤の構築のために広範囲の効力の値から分子を選ぶ機会があることを示す。EGFR 10Fn3ベースの結合剤は、EGFRおよびERK、EGFR活性化の下流シグナリング分子のリン酸化の遮断についてIn Cell Westernスクリーニングアッセイによって試験した(方法は実施例1に類似)。類似している研究を最適化IGF−IR結合剤で実行した。最適化EGFR結合クローン(E3、E1、およびE2)は、インビトロにおいてp42/p44のY1068上でのEGFRリン酸化およびY204上でのERKの下流のリン酸化を阻害し、IC50値は9〜40nMの範囲であり、効力は、親EGFRクローンよりも100倍以上高かった(表13、方法は実施例1に類似)。
**IGF-IR結合についての競合。標準偏差は3〜6回の実験からのものとする。
E/I 10Fn3ベースの結合剤の種交差反応性
ペグ化E/I 10Fn3ベースの結合剤は、表面プラズモン共鳴(BIAcore)分析を使用してマウス、ラット、およびサル由来のEGFRに対するそれらの結合親和性について分析した(実施例5と同一の方法)。マウスEGFRはR&D systems(Minneapolis、MN)から購入し、ラットEGFRは社内で産生し、サルEGFRはKEMP(Frederick、MD)から購入した。
さらなるE/I 10Fn3ベースの結合剤の特徴づけ
図43は、さらなるE/I 10Fn3ベースの結合剤の様々な特徴を要約する。
選択されたアミノ酸変化を有するE/I 10Fn3ベースの結合剤、ペグ化I1−GS10−E5の生化学的および生物物理的特性
ペグ化I1−GS10−E5は、6HISタグ(配列番号487)なしで、かつさらにリンカー領域に対する様々な改変を用いて構築した。さらに、全体的な変化をすべてのコンストラクトに対して成し、第1の単量体のC末端テールは、アスパラギン酸からグルタミン酸(DからE)への単一の点変化を有した。いくつかのクローンは、代替ペグ化部位をもたらすために、選択したセリン残基をシステインに(SからCに)変異させて作製した。該分子の生化学的および生物物理的特性に対するこれらの変化の効果を比較し、表17中に概説する。pEGFRの阻害を測定するための方法は、実施例7において記載されており、pIGFRについては実施例6に、pERKについては実施例1において、Tmについては実施例4において、EGFRおよびIGFRのKDについては実施例5において記載されている。結合反応速度の詳細な分析もまた、これらのクローンに対して実行し、表18および19中に提示する(実施例5において記載されるものに類似している方法を使用)。
EGFRおよびIGFRの共有下流シグナリング経路の阻害
下流シグナリング経路の阻害は、実施例8において先に記載されるものに同一のpAKT ELISAを用いて分析した。この研究の結果は、ペグ化I1−GS10−E5が、H292細胞におけるIGF1刺激AKT活性化の遮断にて、ペグ化I1単独よりも強力であることを実証する。ペグ化E5、EGFR単一特異的結合剤のみでは、IGF1刺激によるAKTの活性化を効率的に予防しなかった(図21)。
10Fn3ベースの結合剤およびコンパレーター(comparator)抗体による細胞増殖の阻害
H292およびRH41の細胞増殖実験は、実施例9において記載されるように行った。EGFR単一特異的10Fn3ベースの結合剤、ペグ化E5は、0.016μMのIC50値でH292細胞の増殖を阻害した。IGFR単一特異的10Fn3ベースの結合剤、ペグ化I1は、>8.4μMのIC50値を有したが、E/I 10Fn3ベースの結合剤ペグ化I1−GS10−E5は、0.006μMのIC50値でわずかにより強力であった(図22)。H292細胞系は、肺癌起源のものであり、IGFRおよびEGFRの阻害に対して感受性であった[(Akashi Y, et al. (2008) Enhancement of the antitumor activity of ionising radiation by nimotuzumab, a humanised monoclonal antibody to the epidermal growth factor receptor, in non-small cell lung cancer cell lines of differing epidermal growth factor receptor status. Br. J. Cancer 98:749-755およびBuck E, et al. (2008) Feedback mechanisms promote cooperativity for small molecule inhibitors of epidermal and insulin-like growth factor receptors. Cancer Res. 68:8322-8332.)]。対照的に、ペグ化I1−GS10−E5結合剤およびペグ化I1結合剤のみでは、RH41細胞の増殖を阻害した(IC50値は、それぞれ、0.0002および0.0004μMであった、図23)。これは、RH41が、IGFRシグナリングによって主に駆動されることが知られている小児横紋筋肉腫細胞系であり[(Huang F, et al. (2009). The mechanisms of differential sensitivity to an insulin-like growth factor-1 receptor inhibitor (BMS-536924) and rationale for combining with EGFR/HER2 inhibitors. Cancer Res. 69:161-170)]、したがって、EGFR遮断に対して感受性でないからであると予想された。
ペグ化および非ペグ化10Fn3ベースの結合剤によるインビトロ受容体活性化および下流シグナリングの阻害
EGFR/IGFRシグナリングの動態およびペグ化I1−GS10−E5によるその阻害を理解するために、DiFi、H292、またはBxPC3細胞は、血清を欠乏させ、1μMまたは0.1μMのペグ化E5、ペグ化I1、もしくはペグ化I1−GS10−E5またはビヒクル対照に2時間曝露し、次いで、10分間、EGF、IGF−I、またはEGF+IGF−Iを用いて刺激した。
E/I 10Fn3ベースの結合剤を用いる競合結合研究
Biacore競合実験については、EGFR−Fc(Naアセテート pH5.0中3μg/mL)は、300RUの表面密度まで、標準EDC/NHSアミドカップリング化学反応を使用して、Biacore CM5チップ表面上に固定した。EGFR抗体は、市販の薬剤として得、EGFR−Fcへの結合についての単一特異的EGFR結合剤E2および抗体の間の競合は、450nM E2(30μL/分、200秒の接触時間)、直後に450nM E2のみ、または450nM E2および450nMセツキシマブ、パニツムマブ、もしくはニモツズマブの混合物(30μL/分、200秒間の接触時間)を結合することによって評価した。表面は、30μL/分の流速で50mM NaOHの2回の10秒間のパルスを使用して、サイクルの間に再生するのに成功した。E2の最初の注入は、チップの表面上のEGFRへの結合を示す。等量のセツキシマブ、パニツムマブ、またはニモツズマブと混合したE2の第2の注入は、E2による、EGFRへの抗体の結合についての競合を示さない(図26A)。
血漿バイオマーカーの測定
可溶性バイオマーカーTGFαおよびmIGF1のレベルは、異種移植片研究の終了時にマウス血漿において、または処理後の様々な時間に腫瘍を有していないマウスにおいて測定された。血液は、抗凝固薬としてEDTAを含有するチューブの中に末端心穿刺(terminal cardiac puncture)によって得た。血漿は、4℃で10分間、1300xgで血液を遠心分離し、個別のチューブに清澄化した上清を移すことによって調製した。メーカー(R&D Systems、Minneapolis、MN)によって推奨されるようにELISAアッセイを用いて、TGFαレベルは、0.1mlの血漿中で測定し、mIGF1レベルは、0.02mlの血漿中で測定した。TGFαの血漿レベルは、ペグ化I1−GS10−E5またはペグ化単一特異的EGFR結合剤E5を用いて処理したマウスにおいて増加したが、セツキシマブでは増加しなかった(図27A〜C)。このTGFαは、ヒト腫瘍から分泌されることができ、または内因的なマウスTGFαを表わすこともある。ヒトおよびマウスのTGFαの間の高い相同性(93%のアミノ酸同一性)により、ELISAは、マウスTGFαと交差反応しうる。さらに、移植腫瘍によって分泌されたヒトTGFαは、マウスEGFRに結合することができる。ペグ化I1−GS10−E5およびペグ化E5がヒトおよびマウスのEGFRの両方を結合することができるので、すべての宿主および腫瘍EGFR結合部位は、これらの10Fn3ベースの結合剤によって遮断されるが、セツキシマブは、マウスEGFRを結合しない。これらの10Fn3ベースの結合剤が内因的なマウスTGFαの増加を引き起こすかどうか、およびELISAがマウスTGFαと交差反応するかどうかを決定するために、腫瘍を有していないヌードマウスに、100mg/kgでペグ化I1−GS10−E5を投薬し、血漿試料を服用の4、24、48、72時間後に採取した。マウスTGFαの増加は、実際、72時間以上持続することが観察された(図28A)。非腫瘍マウス由来の血漿試料もまた、マウス特異的ELISAを用いて、mIGF1について試験し、該リガンドの増加も観察された(図28B)。
様々なE/I 10Fn3ベースの結合剤についてのインビボヒト腫瘍異種移植片研究の結果
いくつかのE/I 10Fn3ベースの結合剤は、相対的活性の差異を確かめることができるように、先に使用したよりも低用量で一対一のH292 NSCLC研究において評価した(実施例12において記載される方法)。0.625mg/マウスの単一の用量でのE/I 10Fn3ベースの結合剤 ペグ化E2−GS10−I1、ペグ化E4−GS10−I1、ペグ化I1−GS10−E5、ペグ化I1−GS10−E85、ペグ化I1−GS10−E4、ペグ化I1−GS10−E105ならびに2つの用量(1mg/マウスおよび0.1mg/マウス)でのパニツムマブの効能を比較した。
マウスにおける様々なE/I 10Fn3ベースの結合剤の薬物動態プロファイル
ペグ化E/I 10Fn3ベースの結合剤、E2−GS10−I1の薬物動態プロファイルは、腹腔内注射を介してマウスにおいて評価した。用量群当たり3匹のヌードマウスに、10および100mg/kg、ipでPBS中で処方したE2−GS10−I1を投薬し、血漿試料は、投薬前、投薬の0.5、2、4、8、12、24、48、72、96、144、および168時間後に、クエン酸リン酸デキストロース溶液中に収集した。血漿試料は、血漿試料中のペグ化E/I 10Fn3ベースの結合剤を検出し、定量するために開発された定量的電気化学発光(ECL)アッセイを使用して、ペグ化E2−GS10−I1 Fn3ベースの結合剤レベルについて評価した。このアッセイにおいて、血漿試料中のペグ化E/I 10Fn3ベースの結合剤の捕獲を可能にするために、EGFR結合領域への特異性を有するマウスモノクローナル抗体をMeso Scale Discoveryプレートに4℃で一晩吸着させた。血漿試料はプレートに追加し、1時間22℃でインキュベートした。捕捉されたペグ化E/I 10Fn3ベースの結合剤は、SULFO−TAGと結合したヤギ抗ウサギ抗体と混合したE/I 10Fn3ベースの結合剤のスキャフォールド領域に対して特異的なウサギポリクローナル抗体によって検出した。非結合SULFO−TAG試薬を除去するために洗浄した後に、読み取り緩衝液(read buffer)を追加し、ECL検出を使用した。血漿試料中のペグ化E2−GS10−I1のレベルは、ペグ化E2−GS10−I1 Fn3ベースの結合剤の標準曲線の4パラメーターフィットに対する比較に基づいて計算した。
薬力学
試料は、研究の終了時に表22中に記載されるH292およびDiFi異種移植片モデルから採取し、EGFRおよびIGFRタンパク質の全レベルならびにリン酸化EGFRおよびIGFRの分析のために実施例12における「腫瘍における薬力学的エンドポイントの測定」で概説されるように処理した。ペグ化I1−GS10−E5およびパニツムマブの標的効果は、実施例11において記載されるようにイムノブロットすることによって評価した。図33Aにおいて、全EGFR、pEGFR、および全IGFRのレベルは、DiFi異種移植片モデルの終了時に未処理腫瘍よりもペグ化I1−GS10−E5処理腫瘍においてより低かった。図33Bにおいて、pEGFRのレベルは、パニツムマブおよびペグ化I1−GS10−E5を用いて処理した腫瘍においてより低かった。全EGFRのレベルは、パニツムマブ処理腫瘍においてではなくペグ化I1−GS10−E5処理腫瘍においてのみ、より低かった。全IGFRのレベルは、両方のペグ化I1−GS10−E5処理腫瘍および一方のパニツムマブ処理腫瘍においてより低かったが、他方は低くなかった。これらのモデルにおけるpIGFRの量は低すぎたので、処理後に検出することができなかった。イムノブロットは、タンパク質の負荷量が等しいことを明らかにするために、GAPDHを用いてプローブした。
EGFR 10Fn3ベースの結合剤最適化およびコンセンサス配列分析
10Fn3ベースの結合剤679F09(PCT WO2009/102421において記載される)(図34)は、EGFR外部ドメイン−Fc融合タンパク質(R&D Systems)に対する結合剤として同定した。結合活性は、EGFR−Fcを用いてコートしたビーズおよびそれらの核酸コード配列に結合した10Fn3ベースの結合剤を使用して選択した[たとえばXu et al., Directed Evolution of High-Affinity Antibody Mimics Using MRNA Display, Chem. Biol. 9: 933-942 (2002)を参照されたい]。BC、DE、およびFGループにおいてアミノ酸配列に対する改変を有する親EGFR結合剤679F09のより強力な変異体もまた、同定した。
EGFRに対する強い親和性を特徴づけた配列パターンを示すために、すべての特有のEGFR結合配列(1044)をいくつかの方法を使用して分析した。最初に、該配列は、ループ中のそれぞれの位置のアミノ酸の頻度によって分析した(図35〜38)。それぞれのループについての特有の配列のみを分析した。
配列モチーフ#1
(a)BCループ:位置7〜8における「YQ」(つまり、配列番号1の位置29および30に対応する)
(b)DEループ:位置3における脂肪族残基(「V/I/L/M/A」)(つまり、配列番号1の位置54に対応する)
(c)FGループ:位置1における「D/N」(つまり、配列番号1の位置77に対応する)
配列モチーフ#2
(a)BCループ:XXXXXXYQ(モチーフ#1と同じ)、Xは任意のアミノ酸とする
(b)DEループ:(G/Y/H)(D/M/G)(V/L/I)X、Xは任意のアミノ酸とする
(c)FGループ、10アミノ酸長:
(D/N)(Y/M)(Y/A/M)(Y/H/F)(K/Q/V)(E/P/R)(Y/T/K)X(E/Y/Q)(Y/G/H)、ここで、Xは任意のアミノ酸とする
(d)FGループ、15アミノ酸長:
D(Y/F/W)(Y/F/K)(N/D/P)(P/H/L)(A/T/V)(T/D/S)(H/Y/G)(E/P/V)(Y/H)(T/K/I)(Y/F)(H/N/Q)(T/Q/E)(T/S/I)
配列モチーフ#3
(a)FGループ、10アミノ酸長
(1)DY(A/Y)GKPYXEY(配列番号473)、Xは任意のアミノ酸とする
(2)DY(A/Y)Y(K/R/Q/T)PYXEY(配列番号474)、Xは任意のアミノ酸とする
(3)(D/N)Y(A/Y)(Y/F)(K/R/Q/T)EYXE(Y/H)(配列番号475)、Xは任意のアミノ酸とする
(4)DYY(H/Y)X(R/K)X(E/T)YX(配列番号476)、Xは任意のアミノ酸とする
(5)DYY(H/Y)(K/H/Q)(R/K)T(E/T)Y(G/P)(配列番号477)
(6)(D/N)MMHV(E/D)YXEY(配列番号478)、Xは任意のアミノ酸とする
(7)DYMHXXYXEY(配列番号479)(679F09のFGループと同様)、Xは任意のアミノ酸とする
(8)D(M/Y)YHX(K/R)X(V/I/L/M)YG(配列番号480)、Xは任意のアミノ酸とする
(b)FGループ、15アミノ酸長
(1)D(Y/F)(Y/F)NPXTHEYXYXXX(配列番号481)、Xは任意のアミノ酸とする
(2)D(Y/F)(Y/F)D(P/L)X(T/S)HXYXYXXX(配列番号482)、Xは任意のアミノ酸とする
(3)D(Y/F)(K/R)PHXDGPH(T/I)YXE(S/Y)(配列番号483)、Xは任意のアミノ酸とする
他の全体的な配列分析は、細胞ベースのアッセイにおいて最も強力な活性を示した10Fn3ベースの結合剤のサブセットに対して実行した(配列分析Iとは対照的に、これらは、Profusionを通してEGFRに対する高親和性結合について選択したすべての結合剤に対して実行した)。結合剤の多くが、単一ポイントでの細胞ベースのアッセイによって実行したのみであったので、100nMの一定濃度で75%を超えるEGFRリン酸化の阻害を示した結合剤がこの分析中に含まれた。所与の濃度での阻害パーセントは、阻害%=100×濃度/(濃度+IC50)により、IC50に関係がある。
配列モチーフ#4
FGループ、10アミノ酸長、「強力な」結合剤
(D/N)(M/Y)(M/A/W)(H/F/Y)(V/K)EY(A/Q/R/S/T)E(Y/H/D)
配列モチーフ#5
FGループ、15アミノ酸長、「強力な」結合剤
D(Y/F/W)(Y/F/K)(N/P/D)(P/H/L)X(T/D/S)(H/G/Y)(E/P/Y)(Y/H)XYXXX、
Xは任意のアミノ酸とする
Claims (41)
- b)500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)に共有結合または非共有結合した、a)500nM未満のKDでIGF−IRを結合する10Fn3を含む抗体様タンパク質二量体であって、ここに、
該IGF−IR結合10Fn3は、配列番号3のアミノ酸21〜30において記載されるアミノ酸配列を有するBCループ、配列番号3のアミノ酸51〜56において記載されるアミノ酸配列を有するDEループ、および配列番号3のアミノ酸76〜83において記載されるアミノ酸配列を有するFGループを含み、
該EGFR結合10Fn3は、配列番号112のアミノ酸21〜30において記載されるアミノ酸配列を有するBCループ、配列番号112のアミノ酸51〜56において記載されるアミノ酸配列を有するDEループ、および配列番号112のアミノ酸76〜92において記載されるアミノ酸配列を有するFGループを含む、抗体様タンパク質二量体。 - 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)に共有結合または非共有結合した、500nM未満のKDでIGF−IRを結合する10Fn3を含む抗体様タンパク質二量体であって、ここに、
該IGFIR結合10Fn3は、アミノ酸配列XaSARLKVAXb(配列番号46)を有するBCループ、アミノ酸配列XcKNVYXd(配列番号48)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XeRFRDYQXf(配列番号50)を有するFGループを含み、
該EGFR結合10Fn3は、アミノ酸配列XgWAPVDRYQXh(配列番号137)を有するBCループ、アミノ酸配列XiRDVYXj(配列番号138)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XkDYKPHADGPHTYHESXl(配列番号139)を有するFGループを含み、
Xは任意のアミノ酸であり、a、b、c、d、e、f、g、h、i、j、k、およびlは、0〜5から独立して選択される整数である、抗体様タンパク質二量体。 - IGF−IR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWSARLKVAR(配列番号45)を有するBCループ、アミノ酸配列PKNVYT(配列番号47)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TRFRDYQP(配列番号49)を有するFGループを含み、EGFR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWWAPVDRYQ(配列番号115)を有するBCループ、アミノ酸配列PRDVYT(配列番号116)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TDYKPHADGPHTYHESP(配列番号117)を有するFGループを含む、請求項2に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3が、配列番号3に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有し、EGFR結合10Fn3スキャフォールドが、配列番号112に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有する、請求項1から3のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3が、ポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3に共有結合している、請求項1から4のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 配列番号126〜132のいずれか1つに対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項5に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)を含む抗体様タンパク質であって、該EGFR結合10Fn3が、配列番号112のアミノ酸21〜30において記載されるアミノ酸配列を有するBCループ、配列番号112のアミノ酸51〜56において記載されるアミノ酸配列を有するDEループ、および配列番号112のアミノ酸76〜92において記載されるアミノ酸配列を有するFGループを含む、抗体様タンパク質。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)を含む抗体様タンパク質であって、該EGFR結合10Fn3が、アミノ酸配列XgWAPVDRYQXh(配列番号137)を有するBCループ、アミノ酸配列XiRDVYXj(配列番号138)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XkDYKPHADGPHTYHESXl(配列番号139)を有するFGループを含み、Xが任意のアミノ酸であり、a、b、c、d、e、f、g、h、i、j、k、およびlが0〜5から独立して選択される整数である、抗体様タンパク質。
- EGFR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWWAPVDRYQ(配列番号115)を有するBCループ、アミノ酸配列PRDVYT(配列番号116)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TDYKPHADGPHTYHESP(配列番号117)を有するFGループを含む、請求項8に記載の抗体様タンパク質。
- 第2の第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)をさらに含む、請求項7から9のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質。
- 第2の10Fn3がIGF−IRに結合する、請求項10に記載の抗体様タンパク質。
- 第2の10Fn3がポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3に共有結合している、請求項10または11に記載の抗体様タンパク質。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメインに共有結合または非共有結合した、500nM未満のKDでIGF−IRを結合する10Fn3を含む抗体様タンパク質二量体であって、ここに、
該IGFIR結合10Fn3は、アミノ酸配列XaSARLKVAXb(配列番号46)を有するBCループ、アミノ酸配列XcKNVYXd(配列番号48)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XeRFRDYQXf(配列番号50)を有するFGループを含み、
該EGFR結合10Fn3は、アミノ酸配列XgDSGRGSYQXh(配列番号40)を有するBCループ、アミノ酸配列XiGPVHXj(配列番号42)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XkDHKPHADGPHTYHEXl(配列番号44)を有するFGループを含み、
Xは任意のアミノ酸であり、a、b、c、d、e、f、g、h、i、j、k、およびlは、0〜5から独立して選択される整数である、抗体様タンパク質二量体。 - IGF−IR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWSARLKVAR(配列番号45)を有するBCループ、アミノ酸配列PKNVYT(配列番号47)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TRFRDYQP(配列番号49)を有するFGループを含み、EGFR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWDSGRGSYQ(配列番号39)を有するBCループ、アミノ酸配列PGPVHT(配列番号41)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TDHKPHADGPHTYHESP(配列番号43)を有するFGループを含む、請求項13に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3が、配列番号3に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有し、EGFR結合10Fn3スキャフォールドが、配列番号5に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有する、請求項13または14に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3がポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3に共有結合している、請求項13から15のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 配列番号20、21、23、または24に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項16に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)に共有結合または非共有結合した、500nM未満のKDでIGF−IRを結合する10Fn3を含む抗体様タンパク質二量体であって、ここに、
該IGFIR結合10Fn3は、アミノ酸配列XaSARLKVAXb(配列番号46)を有するBCループ、アミノ酸配列XcKNVYXd(配列番号48)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XeRFRDYQXf(配列番号50)を有するFGループを含み、
該EGFR結合10Fn3は、アミノ酸配列XmVAGAEDYQXn(配列番号34)を有するBCループ、アミノ酸配列XoHDLVXp(配列番号36)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XqDMMHVEYTEHXr(配列番号38)を有するFGループを含み、
Xは任意のアミノ酸であり、a、b、c、d、e、f、m、n、o、p、q、およびrは、0〜5から独立して選択される整数である、抗体様タンパク質二量体。 - IGF−IR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWVAGAEDYQ(配列番号33)を有するBCループ、アミノ酸配列PHDLVT(配列番号35)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TDMMHVEYTEHP(配列番号37)を有するFGループを含むEGFR結合10Fn3に共有結合または非共有結合した、アミノ酸配列SWSARLKVAR(配列番号45)を有するBCループ、アミノ酸配列PKNVYT(配列番号47)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TRFRDYQP(配列番号49)を有するFGループを含む、請求項18に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3が、配列番号3に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有し、EGFR結合10Fn3が、配列番号7に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有する、請求項18または19に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3スキャフォールドが、ポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3スキャフォールドに共有結合している、請求項18から20のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 配列番号26、27、29、または30に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項21に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)に共有結合または非共有結合した、500nM未満のKDでIGF−IRを結合する10Fn3を含む抗体様タンパク質二量体であって、ここに、
該IGFIR結合10Fn3は、アミノ酸配列XaSARLKVAXb(配列番号46)を有するBCループ、アミノ酸配列XcKNVYXd(配列番号48)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XeRFRDYQXf(配列番号50)を有するFGループを含み、
該EGFR結合10Fn3は、アミノ酸配列XsLPGKLRYQXt(配列番号60)を有するBCループ、アミノ酸配列XuHDLRXw(配列番号62)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XyNMMHVEYSEYXz(配列番号64)を有するFGループを含み、
Xは任意のアミノ酸であり、a、b、c、d、e、f、s、t、u、w、y、およびzは、0〜5から独立して選択される整数である、抗体様タンパク質二量体。 - IGF−IR結合10Fn3が、アミノ酸配列LPGKLRYQ(配列番号59の残基3〜13)を有するBCループ、アミノ酸配列PHDLR(配列番号61の残基1〜5)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TNMMHVEYSEY(配列番号63の残基1〜11)を有するFGループを含むEGFR結合10Fn3に共有結合または非共有結合した、アミノ酸配列SWSARLKVAR(配列番号45)を有するBCループ、アミノ酸配列PKNVYT(配列番号47)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TRFRDYQP(配列番号49)を有するFGループを含む、請求項23に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3が、配列番号3に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有し、EGFR結合10Fn3が、配列番号82に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有する、請求項23または24に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3スキャフォールドが、ポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3スキャフォールドに共有結合している、請求項23から25のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 配列番号53、54、87、88、98、99、104、または105のいずれか1つに対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項26に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)に共有結合または非共有結合した、500nM未満のKDでIGF−IRを結合する10Fn3を含む抗体様タンパク質二量体であって、ここに
該IGFIR結合10Fn3は、アミノ酸配列XaSARLKVAXb(配列番号46)を有するBCループ、アミノ酸配列XcKNVYXd(配列番号48)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XeRFRDYQXf(配列番号50)を有するFGループを含み、
該EGFR結合10Fn3は、アミノ酸配列XgHERDGSRQXh(配列番号134)を有するBCループ、アミノ酸配列XiGGVRXj(配列番号135)を有するDEループ、およびアミノ酸配列XkDYFNPTTHEYIYQTTXl(配列番号136)を有するFGループを含み、
Xは任意のアミノ酸であり、a、b、c、d、e、f、g、h、i、j、k、およびlは、0〜5から独立して選択される整数である、抗体様タンパク質二量体。 - IGF−IR結合10Fn3が、アミノ酸配列SWHERDGSRQ(配列番号109)を有するBCループ、アミノ酸配列PGGVRT(配列番号110)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TDYFNPTTHEYIYQTTP(配列番号111)を有するFGループを含むEGFR結合10Fn3に共有結合または共有結合した、アミノ酸配列SWSARLKVAR(配列番号45)を有するBCループ、アミノ酸配列PKNVYT(配列番号47)を有するDEループ、およびアミノ酸配列TRFRDYQP(配列番号49)を有するFGループを含む、請求項28に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3が、配列番号3に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有し、EGFR結合10Fn3が、配列番号107に対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を有する、請求項28または29に記載の抗体様タンパク質二量体。
- IGF−IR結合10Fn3スキャフォールドが、ポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3スキャフォールドに共有結合している、請求項28から30のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 配列番号118〜125のいずれか1つに対して少なくとも90%同一のアミノ酸配列を含む、請求項31に記載の抗体様タンパク質二量体。
- 請求項1から32のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質二量体または抗体様タンパク質を含み、本質的に発熱物質を含まない、薬学的に許容できる組成物。
- 請求項33に記載の組成物の治療有効量を対象に投与することを含む、対象における過剰増殖障害を治療するための方法。
- 500nM未満のKDでEGFRを結合する第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)を含む抗体様タンパク質であって、該EGFR結合10Fn3は、アミノ酸配列XXXXXXYQを含むBCループ、アミノ酸配列XX(V/I/L/M/A)Xを含むDEループ、およびアミノ酸配列(D/N)Xnを含むFGループを含み、Xは任意のアミノ酸であり、nは9〜14のアミノ酸である、抗体様タンパク質。
- nは14である、請求項35に記載の抗体様タンパク質。
- 第2の第10フィブロネクチンIII型ドメイン(10Fn3)をさらに含む、請求項35または36に記載の抗体様タンパク質。
- 第2の10Fn3がIGF−IRに結合する、請求項37に記載の抗体様タンパク質。
- 第2の10Fn3がポリペプチドリンカーまたはポリエチレングリコール成分を介してEGFR結合10Fn3に共有結合している、請求項37または38に記載の抗体様タンパク質。
- 請求項35から39のいずれか一項に記載の抗体様タンパク質を含み、本質的に発熱物質を含まない、薬学的に許容できる組成物。
- 請求項40に記載の組成物の治療有効量を対象に投与することを含む、対象における過剰増殖障害を治療するための方法。
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