JP4338080B2 - アイチュリンaおよびその同族体の製造法 - Google Patents
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Description
アイチュリンAおよびその同族体の製造方法としては、特開昭59-212416号公報(特許文献1)、特開平7-143897号公報(特許文献2)等がある。
畑田らは、バチルス・ズブチリスNo.NA−apb−1株を栄養培地で好気的に培養し、アイチュリンA系物質を製造する方法を開示している(特公昭63-20519号公報(特許文献3)参照。この中で窒素源としてペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、コーンスターチリカー、グルテンミール、無機窒素源が教示されており、ペプトン、肉エキス、酵母エキスを含む培地で同株を培養して得られた培養ろ液30LからアイチュリンA270mgが得られる。Sandrinらは、プロリンを窒素源とした合成培地で480mg/LのアイチュリンAおよびその同族体が得られることを開示している(「バイオテクノロジー・アンド・アプライド・バイオケミストリー(Biotechnology and Applied Biochemistry)」,1990年,第12巻,p.370-375(非特許文献2))。
したがって、本発明の課題は、アイチュリンAおよびその同族体を生産するバチルス属微生物を培養し、培養液中にアイチュリンAおよびその同族体を高濃度に蓄積させるアイチュリンAおよびその同族体の製造方法を提供することにある。
また、本発明の他の課題は、アイチュリンAおよびその同族体、含有培養物、その固形物およびそれらの使用方法を提供することにある。
[2]アイチュリンAおよびその同族体生産能を有するバチルス(Bacillus)属微生物が、1.5g/L以上のアイチュリンAおよびその同族体を含有する培地中で生育可能なバチルス(Bacillus)属微生物である前記1に記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[3]アイチュリンAおよびその同族体生産能を有するバチルス(Bacillus)属微生物が、アイチュリンAおよびその同族体生産能を有しサーファクチン生産能を実質的に有さないバチルス(Bacillus)属微生物である前記1または2に記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[4]液体培地が、リン酸塩の添加量をK2HPO4換算で0〜3質量%にした液体培地である前記1に記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[5]バチルス属微生物がバチルス・ズブチリス(Bacillus subtilis)である前記1乃至3のいずれかに記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[6]バチルス属微生物がバチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)である前記1乃至3のいずれかに記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[7]バチルス属微生物がバチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)の変異株である前記1乃至3のいずれかに記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[8]大豆粉またはその抽出物を2質量%以上含む液体培地が、マルトース、水飴、可溶性デンプン、デキストリン、グルコース、ショ糖、およびフルクトースからなる群より選ばれる一種以上を含むものである前記1に記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
[9]前記1乃至8のいずれかに記載の方法で培養液中にアイチュリンAおよびその同族体を蓄積させたアイチュリンAおよびその同族体含有培養物。
[10]前記9に記載のアイチュリンAおよびその同族体含有培養物を乾燥したアイチュリンAおよびその同族体含有固形物。
[11]前記9または10に記載のアイチュリンAおよびその同族体含有培養物または固形物を含有することを特徴とする植物病害防除剤。
[12]前記9または10に記載のアイチュリンAおよびその同族体含有培養物または固形物を精製せずに使用することを特徴とする植物病害防除方法。
本発明のアイチュリンAおよびその同族体の製造法は、最も簡便には、例えばバチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)を、L培地等の栄養培地で、25〜42℃、好ましくは28〜38℃の温度で5〜24時間程度培養し、得られた培養液を大豆粉あるいはその抽出物を窒素源として含む培地に0.1〜10質量%、好ましくは0.5〜7質量%、より好ましくは1〜5質量%植菌する。これを25〜42℃、好ましくは28〜35℃の温度で30〜150時間程度培養することにより達せられる。上記温度範囲を外れた場合にはアイチュリンAおよびその同族体の生産が著しく低下するため、好ましくない。
これらのアイチュリンAおよびその同族体含有培養物およびアイチュリンAおよびその同族体含有固形物もまた本発明に含まれる。
また、アイチュリンAおよびその同族体含有培養物からアイチュリンAおよびその同族体を回収し精製することができる。精製は、例えば培養物を硫酸、塩酸、硝酸等の添加により酸性にし、沈殿したアイチュリンAおよびその同族体をメタノール、エタノール、クロロホルム等の有機溶媒による抽出、活性炭処理、結晶化等の公知の方法で行うことができる。
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)を、L培地(ペプトン10g、酵母エキス5g、塩化ナトリウム5g、水で1Lとする)5mLに植菌し、35℃、300rpmで16時間培養した。ついで、同培地5mLに、得られた培養液を1v/v%植菌し、35℃、300rpmでOD660が0.2となるまで培養した。その後、菌体を遠心分離により回収し、上清を捨て、PBS緩衝液(0.8w/v%NaCl、0.02w/v%KCl、0.144w/v%Na2HPO4、0.024w/v%KH2PO4、HClでpH7.4に調整)5mLで3回洗浄し、同緩衝液0.5mLに再度懸濁した。
大豆粉 8
K2HPO4 0.5
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
マルトース 6.7
イオン交換水 残部
サンプル量:10μL、
カラム:ShodexシリカC18P4E、4.6mm×250mm(昭和電工株式会社製)、
カラム温度:40℃、
溶離液:アセトニトリル:10mM酢酸アンモニウム水溶液=35:75(v/v)、
流速:1.5mL/min、
検出器:UV検出器、
波長:205nm。
定量はアイチュリンAおよびその同族体の標準サンプル(シグマ−アルドリッチ社製)を用いて検量線を作成して測定した。
取得例1の培養上清中のサーファクチン濃度をHPLC法により以下の条件で定量した。
サンプル量:20μL、
カラム:Shodex
シリカC18P4E、4.6mm×250mm(昭和電工株式会社製)
カラム温度:40℃、
溶離液:アセトニトリル:19mM トリフルオロ酢酸水溶液=80:20(v/v)
流速:1.0mL/min、
検出器:UV検出器、
波長:205nm。
定量はサーファクチンの標準サンプル(シグマ−アルドリッチ社製)を用いて検量線を作成して測定した。
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)をL平板培地に画線し、35℃で一晩生育させた。下記組成Bの培地1mLを試験管に分注し、L平板培地から1白金耳をとり植菌し、35℃で72時間培養を行った。
K2HPO4 0.5
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
マルトース 6.7
窒素源* 2.0
イオン交換水 残部
*:大豆粉、硝酸カリウム、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、尿素グルタミン酸ナトリウムおよびペプトンから1種を選択。
大豆粉 1.5g/L
硝酸カリウム 0.03g/L
硝酸アンモニウム 0.03g/L
硫酸アンモニウム 0.03g/L
尿素 0.03g/L
グルタミン酸ナトリウム 0.1g/L
ペプトン 0.15g/L
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)をL平板培地に画線し、35℃で一晩生育させた。下記組成C、DおよびEの培地各1mLを試験管に分注し、L平板培地から1白金耳をとり植菌し、35℃で72時間培養を行った。
大豆粉 1
K2HPO4 0.5
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
マルトース 6.7
イオン交換水 残部
大豆粉 2
K2HPO4 0.5
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
マルトース 6.7
イオン交換水 残部
大豆粉 8
K2HPO4 0.5
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
マルトース 6.7
イオン交換水 残部
組成C: 0.3g/L
組成D: 1.5g/L
組成E: 3.8g/L
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)をL平板培地に画線し、35℃で一晩生育させた。下記組成Fに下記の炭素源を添加した培地各1mLを試験管に分注し、L平板培地から1白金耳をとり植菌し、35℃で72時間培養を行った。
大豆粉 8
K2HPO4 0.5
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
炭素源* 6.7
イオン交換水 残部
*:マルトース、可溶性デンプン、水飴、デキストリン、グルコース、ショ糖およびフルクトースから1種を選択。
マルトース 3.8g/L
可溶性デンプン 3.8g/L
水飴 3.8g/L
デキストリン 3.8g/L
グルコース 2.8g/L
ショ糖 2.2g/L
フルクトース 2.3g/L
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)をL平板培地に画線し、35℃で一晩生育させた。下記組成Gに下記(1)〜(6)の濃度のK2HPO4を添加した6種の培地各1mLを試験管に分注し、L平板培地から1白金耳をとり植菌し、35℃で72時間培養を行った。
大豆粉 8
MgSO4・7H2O 0.05
FeSO4・7H2O 0.0025
MnSO4・5H2O 0.0022
CaCl2 0.0184
マルトース 6.7
K2HPO4
(1) 0 質量%(添加せず。)
(2) 0.1質量%
(3) 0.5質量%
(4) 1.5質量%
(5) 3.0質量%
(6) 4.5質量%
イオン交換水 残部
(2) 0.1質量% 3.6g/L
(3) 0.5質量% 3.5g/L
(4) 1.5質量% 3.0g/L
(5) 3.0質量% 2.2g/L
(6) 4.5質量% 1.5g/L
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)、変異株1および変異株2をL平板培地に画線し、35℃で一晩生育させた。そこからL培地50mLを添加したバッフル付きフラスコに1白金耳植菌し、35℃、150rpmで8時間培養した。下記組成Hの培地を5L容の発酵槽に作成し、L培地の培養液を添加し、20%アンモニア水でpHを6.5〜7.5に調整しながら35℃で150時間培養を行った。
大豆粉 160g
MgSO4・7H2O 5g
FeSO4・7H2O 0.25g
MnSO4・5H2O 0.22g
CaCl2 1.84g
水飴 450g
イオン交換水 1383g
バチルス・ズブチリス(FERM BP−8427) 3.8g/L
変異株1 6.7g/L
変異株2 6.7g/L
この結果より、これらの菌株はいずれも1.5g/L以上のアイチュリン存在下で生育できることが明らかである。
Claims (7)
- アイチュリンAおよびその同族体生産能を有し、大豆の粉砕物あるいはその抽出物を窒素源として含む培地で培養したとき、サーファクチンの蓄積量が50ppm以下であるバチルス(Bacillus)属微生物を大豆粉またはその抽出物を2質量%以上含む液体培地で培養し、培養液中に1.5g/L以上の濃度でアイチュリンAおよびその同族体を蓄積させるアイチュリンAおよびその同族体の製造法であって、前記微生物がバチルス・ズブチリス(FERM BP−8427)またはその変異株である製造法。
- 液体培地が、リン酸塩の添加量をK2HPO4換算で0〜3質量%にした液体培地である請求項1に記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
- 大豆粉またはその抽出物を2質量%以上含む液体培地が、マルトース、水飴、可溶性デンプン、デキストリン、グルコース、ショ糖、およびフルクトースからなる群より選ばれる一種以上を含むものである請求項1に記載のアイチュリンAおよびその同族体の製造法。
- 請求項1乃至3のいずれかに記載の方法で培養液中にアイチュリンAおよびその同族体を蓄積させたアイチュリンAおよびその同族体含有培養物。
- 請求項4に記載のアイチュリンAおよびその同族体含有培養物を乾燥したアイチュリンAおよびその同族体含有固形物。
- 請求項4または5に記載のアイチュリンAおよびその同族体含有培養物または固形物を含有することを特徴とする植物病害防除剤。
- 請求項4または5に記載のアイチュリンAおよびその同族体含有培養物または固形物を精製せずに使用することを特徴とする植物病害防除方法。
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