JP4813461B2 - Ｐｐａｒデルタモジュレーターとしての１，３，４−オキサジアゾール−２−オン、および、それらの使用 - Google Patents

Description

本発明は、核ホルモン受容体が介在する病気を治療するためにＰＰＡＲデルタ受容体を調節することにおいて有用な、選択的ＰＰＡＲデルタリガンド受容体結合剤として作用する新規の化合物、および、医薬製剤に関する。本発明のＰＰＡＲデルタリガンド受容体結合剤は、ＰＰＡＲデルタ受容体のアゴニストまたはアンタゴニストとして有用である。

ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体（ＰＰＡＲ）は、核内受容体スーパーファミリーのサブファミリーで構成される。４種の密接に関連したアイソフォームが同定され、クローニングされており、これらは一般的に、ＰＰＡＲアルファ、ＰＰＡＲガンマ−１、ＰＰＡＲガンマ−２、および、ＰＰＡＲデルタとして知られている。各受容体サブタイプは、特徴的なＤＮＡ結合ドメイン（ＤＢＤ）、および、リガンド結合ドメイン（ＬＢＤ）を有し、これらはいずれもリガンドで活性化された遺伝子表現に必要である。ＰＰＡＲは、レチノイドＸ受容体とのヘテロ二量体として結合する。Ｊ.ＢｅｒｇｅｒおよびＤ.Ｅ.Ｍｉｌｌｅｒ，Ａｎｎ.Ｒｅｖ.Ｍｅｄ.,２００２年，５３，４０９〜４３５を参照。

ＰＰＡＲデルタ（また、ＰＰＡＲベータとして知られている）は、広範囲の哺乳動物組織で表現されるが、この受容体によって調節されるそれらの生物学的機能または完全な遺伝子アレイに関する情報は、ほとんど明確になっていない。しかしながら、近年、アゴニストは、脂質代謝異常のような状態および所定の外皮の状態を治療するのに有用であり得る一方で、アンタゴニストは、骨粗鬆症または結腸直腸癌を治療するのに有用であり得ることが見出された（Ｄ.Ｓｔｅｒｎｂａｃｈ，ｉｎ Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｐｏｒｔｓ ｉｎ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，第３８巻，Ａ.Ｍ.Ｄｏｈｅｒｔｙ編，エルゼビア・アカデミックプレス（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ），２００３年，７１〜８０頁）。

ＰＰＡＲデルタは、ＣＮＳで著しく表現されるようであり；しかしながら、その機能の多くが、なおわからないままである。しかしながら、ＰＰＡＲデルタは、げっ歯類の乏突起膠細胞（ＣＮＳの主要な脂質を生産する細胞）で表現されたという発見は、極めて興味深い（Ｊ.Ｇｒａｎｎｅｍａｎ等，Ｊ.Ｎｅｕｒｏｓｃｉ.Ｒｅｓ.,１９９８年，５１，５６３〜５７３）。その上、ＰＰＡＲデルタ選択的アゴニストが、マウス培養物において乏突起膠細胞のミエリン遺伝子表現とミエリン鞘の直径を著しく増加させることが見出されたこともわかっている（Ｉ.Ｓａｌｕｊａ等，Ｇｌｉａ，２００１年，３３，１９４〜２０４）。従って、ＰＰＡＲデルタ活性化因子は、脱髄疾患、および、髄鞘形成不全疾患の治療に有用である可能性がある。

脱髄性の状態は、ミエリン（多くの神経線維を覆う脂質とタンパク質からなる複数の密な層）の損失の兆候が見られる。これらの層は、中枢神経系（ＣＮＳ）中の乏突起膠細胞、および、末梢神経系（ＰＮＳ）中のシュヴァン細胞によって提供される。脱髄性の状態を有する患者において、髄鞘脱落は回復不能の場合が多い；これは通常、軸索の変性を伴うか、または、それに続いて軸索の変性が起こり、これは、細胞変性に起因することが多い。

髄鞘脱落は、ニューロンの損傷、または、ミエリンそのものへの損傷（これらは、異常な免疫反応、局所損傷、虚血、代謝性疾患、毒物またはウイルス感染のいずれかによっても生じる）の結果として起こる可能性がある（ＰｒｉｎｅａｓおよびＭｃＤｏｎａｌｄ，
Ｄｅｍｙｅｌｉｎａｔｉｎｇ Ｄｉｓｅａｓｅｓ.Ｉｎ Ｇｒｅｅｎｆｉｅｌｄ'ｓ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ，６.ｓｕｐ.ｔｈ ｅｄ.（Ｅｄｗａｒｄ Ａｒｎｏｌｄ：ニューヨーク，１９９７年）８１３〜８１１、ＢｅｅｒｓおよびＢｅｒｋｏｗ編，Ｔｈｅ
Ｍｅｒｃｋ Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｄｉａｇｎｏｓｉｓ ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｙ，１７.ｓｕｐ.ｔｈ ｅｄ.（ホワイトハウスステーション，ニュージャージー州：メルク・リサーチ・ラボラトリーズ（Ｍｅｒｃｋ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ），１９９９年）１２９９，１４３７，１４７３〜７６，１４８３）。

中枢の髄鞘脱落（ＣＮＳの髄鞘脱落）が数種の状態で起こるが、原因が不明であることが多く、これは、原発性脱髄疾患として知られている。これらのなかでも、多発性硬化症（ＭＳ）が最も普及している。その他の原発性脱髄疾患としては、副腎白質ジストロトフィー（ＡＬＤ）、副腎脊髄神経障害、ＡＩＤＳ−空胞性脊髄症、ＨＴＬＶ関連脊髄症、レーバー遺伝性視神経萎縮、進行性多巣性白質脳病（ＰＭＬ）、亜急性硬化性全脳炎、ギラン・バレー症候群、および、熱帯性痙性不全対麻痺が挙げられる。加えて、髄鞘脱落がＣＮＳで起こる急性の症状があり、例えば、急性散在性脳脊髄炎（ＡＤＥＭ）、および、急性ウイルス脳炎である。その上、急性横断性脊髄炎、原因不明の急性脊髄離断が１またはそれ以上の隣接する胸分節における灰白質と白質の両方に影響を与える症候群もまた、髄鞘脱落を起こす場合がある。さらに、ミエリンを形成するグリア細胞が損傷を受ける障害（脊髄損傷、神経障害および神経損傷など）もである。

また、選択的ＰＰＡＲデルタモジュレーターは、その他の病態の治療または予防に有用な可能性もあり、例えば、Ｊｏｅｌ Ｂｅｒｇｅｒ等，Ａｎｎｕ.Ｒｅｖ.Ｍｅｄ.２００２，５３，４０９〜４３５；Ｔｉｍｏｔｈｙ Ｗｉｌｓｏｎ等.Ｊ.Ｍｅｄ.Ｃｈｅｍ.,２０００，Ｖｏｌ.４３，Ｎｏ.４，５２７〜５５０；Ｓｔｅｖｅｎ Ｋｌｉｅｗｅｒ等，Ｒｅｃｅｎｔ Ｐｒｏｇ Ｈｏｒｍ Ｒｅｓ.２００１；５６：２３９〜６３；Ｊｅａｎ−Ｃｈａｒｌｅｓ Ｆｒｕｃｈａｒｔ，Ｂａｒｔ ＳｔａｅｌｓおよびＰａｔｒｉｃｋ Ｄｕｒｉｅｚ：ＰＰＡＲＳ，Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ Ｄｉｓｅａｓｅ ａｎｄ Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒｏｓｉｓ，Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｖｏｌ.４４，Ｎｏ.５，３４５〜５２；２００１；Ｓａｎｄｅｒ Ｋｅｒｓｔｅｎ，Ｂｅａｔｒｉｃｅ Ｄｅｓｖｅｒｇｎｅ＆Ｗａｌｔｅｒ Ｗａｈｌｉ：Ｒｏｌｅｓ ｏｆ ＰＰＡＲｓ ｉｎ ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ ｄｉｓｅａｓｅ，Ｎａｔｕｒｅ，ｖｏｌ ４０５，２０００年５月２５日；４２１〜４；Ｉｎｅｓ Ｐｉｎｅｄａ Ｔｏｒｒａ，Ｇｉｕｌｉａ Ｃｈｉｎｅｔｔｉ，Ｃａｒｏｌｉｎｅ Ｄｕｖａｌ，Ｊｅａｎ−Ｃｈａｒｌｅｓ ＦｒｕｃｈａｒｔおよびＢａｒｔ Ｓｔａｅｌｓ：Ｐｅｒｏｘｉｓｏｍｅ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｏｒ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ：ｆｒｏｍ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｔｏ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｐｒａｃｔｉｃｅ，Ｃｕｒｒ Ｏｐｉｎ Ｌｉｐｉｄｏｌ １２：２００１，２４５〜２５４）を参照。

ＰＰＡＲデルタモジュレーターとして作用する化合物は、インスリン抵抗性を伴う脂肪酸代謝障害やグルコース利用障害の治療および／または予防に特に適切である可能性がある。

糖尿病、特にII型糖尿病は、それに関連する続発症の予防を含む。この点について、特定の形態は、高血糖症、インスリン抵抗性の改善、耐糖能の改善、膵臓β細胞の保護、大血管疾患および微小血管疾患の予防である。

異常脂質血症とそれらの続発症、例えばアテローム性動脈硬化症、冠動脈心疾患、脳血管疾患など、特に以下の因子の１またはそれ以上を特徴とするもの（ただし、これらに制限されないが）：高い血漿トリグリセリド濃度、食後の高い血漿トリグリセリド濃度、低いＨＤＬコレステロール濃度、低いＡｐｏＡリポタンパク質濃度、高いＬＤＬコレステロール濃度、小さくて高密度のＬＤＬコレステロール粒子、高いＡｐｏＢリポタンパク質濃度である。

代謝症候群に関連する可能性がある様々なその他の状態は、例えば：肥満症（過剰体重）、例えば中心性肥満、血栓症、凝固亢進の、および、プロトロンビンの状態（動脈および静脈の）、高血圧、心不全、例えば（ただし、これらに制限されないが）、心筋梗塞の後の、高血圧性心疾患、または、心筋症である。

例えば炎症反応または細胞の分化が、関与する可能性があるその他の障害または状態は、以下の通りである：アテローム性動脈硬化症、例えば（ただし、これらに制限されないが）、冠状動脈硬化症（狭心症または心筋梗塞など）、卒中、血管再狭窄、または、再閉塞、慢性炎症性腸疾患、例えばクローン病、および、潰瘍性大腸炎、膵臓炎、その他の炎症性の状態、網膜疾患、脂肪細胞腫瘍、脂肪腫性の癌腫、例えば脂肪肉腫、充実性腫瘍および新生物、例えば（ただし、これらに制限されないが）、消化管、肝臓、胆管および膵臓の癌腫、内分泌腺腫瘍、肺、腎臓および尿路、生殖管、前立腺癌腫の癌腫など、急性および慢性骨髄増殖性疾患、および、リンパ腫での血管新生、神経変性障害、アルツハイマー病、パーキンソン病、紅斑落屑性の皮膚疾患、例えば乾癬、尋常性座瘡。

ＰＰＡＲデルタで調節されるその他の皮膚疾患および皮膚病変は、以下の通りである：湿疹、および、神経皮膚炎、皮膚炎、例えば脂漏性皮膚炎、または、光線過敏性皮膚炎、角膜炎、および、角化症、例えば脂漏性角化症、老人性角化症、日光性角化症、光で誘導された角化症、または、毛包性角化症のケロイド、および、ケロイドの予防、疣贅、例えばコンジローマ（ｃｏｎｄｙｌｏｍａｔａ）または尖圭コンジロームなど、ヒト乳頭腫ウイルス（ＨＰＶ）感染、例えば性病の乳頭腫（ｐａｐｉｌｌｏｍａｔａ）、ウイルス性疣贅、例えば伝染性軟属腫、白斑症による丘疹状の皮膚疾患、例えば扁平苔癬、皮膚癌、例えば基底細胞癌腫、黒色腫、または、皮膚Ｔ細胞リンパ腫、局所的な良性の表皮性腫瘍、例えば角皮症、表皮母斑、および、凍瘡。

ＰＰＡＲデルタで調節される可能性がある様々なその他の状態としては、シンドロームＸ、多嚢胞卵巣症候群（ＰＣＯＳ）、喘息の変形性関節症、紅斑性狼瘡（ＬＥ）、または、炎症性のリウマチ障害、例えばリウマチ様関節炎、血管炎、衰弱（悪液質）、痛風の虚血／再潅流症候群、および、急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）が挙げられる。

本発明は、式Ｉ：

で示される化合物、または、それらの立体異性体、互変異性体もしくは溶媒和物、または、それらの製薬上許容できる塩に関するものであり、
式中、
アリールは、フェニルまたはピリジニルであり、ここにおいて、前記フェニルまたはピリジニルは、場合により、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択される１またはそれ以上の置換基で置換されており；
Ｚは、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−、−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、または、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−であり、ここにおいて、Ｙは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、Ｒ₃は、Ｈ、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、および、ベンジルからなる群より選択され、ｎは、独立して、１〜５の整数であり；
Ｘは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、ここにおいて、Ｒ₃は、上記で定義された通りであり；
Ｒ₁は、Ｈ、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；ヒドロキシＣ_1-6アルキル、ニトロ、シアノ、および、Ｃ_1-6アルキルアミノであり；そして、
Ｒ₂は、置換された、または、非置換のフェニル、ピリジニルまたはチエニルであり、ここにおいて、該置換基は、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル、Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択され；
ただし、Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_n−、または、−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−であり、アリールがフェニルである場合、Ｒ₂は、フェニル以外である。

本発明はまた、このような調節が必要な被検体において、ＰＰＡＲデルタの活性を選択的に調節する化合物を投与することによってＰＰＡＲデルタを調節するための、式Ｉの医薬組成物、および、前記化合物および組成物を用いる方法にも関する。

本発明のその他の形態において、ＰＰＡＲデルタリガンド結合活性で調節することができる疾患を有する哺乳動物に、治療上有効な量の式Ｉ：

で示される化合物、または、それらの立体異性体、互変異性体もしくは溶媒和物、または、それらの製薬上許容できる塩を投与することを含む、哺乳動物において、ＰＰＡＲデルタリガンド結合活性で調節することができる疾患を治療する方法が開示され、
式中、
アリールは、フェニルまたはピリジニルであり、ここにおいて、前記フェニルまたはピリジニルは、場合により、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択される１またはそれ以上の置換基で置換されており；
Ｚは、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−、−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、または、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂
）_n−ＣＯ−であり、ここにおいて、Ｙは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、Ｒ₃は、Ｈ、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、および、ベンジルからなる群より選択され、ｎは、独立して、１〜５の整数であり；
Ｘは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、ここにおいて、Ｒ₃は、上記で定義された通りであり；
Ｒ₁は、Ｈ、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；ヒドロキシＣ_1-6アルキル、ニトロ、シアノ、および、Ｃ_1-6アルキルアミノであり；そして、
Ｒ₂は、置換された、または、非置換のフェニル、ピリジニルまたはチエニルであり、ここにおいて、該置換基は、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル、Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択される。

発明の詳細な説明
本明細書で用いられる用語は、以下の意味を有する:
本明細書で用いられる表現「Ｃ_1-6アルキル」は、メチルおよびエチル基、および、直鎖または分岐鎖プロピル、ブチル、ペンチルおよびヘキシル基を含む。具体的なアルキル基は、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、および、ｔｅｒｔ−ブチルである。派生の表現、例えば「Ｃ_1-6アルコキシ」、「Ｃ_1-6アルコキシＣ_1-6アルキル」、「ヒドロキシＣ_1-6アルキル」、「Ｃ_1-6アルキルカルボニル」、「Ｃ_1-6アルコキシカルボニルＣ_1-6アルキル」、「Ｃ_1-6アルコキシカルボニル」、「アミノＣ_1-6アルキル」、「Ｃ_1-6アルキルカルバモイルＣ_1-6アルキル」、「Ｃ_1-6ジアルキルカルバモイルＣ_1-6アルキル」、「モノ−、または、ジ−Ｃ_1-6アルキルアミノＣ_1-6アルキル」、「アミノＣ_1-6アルキルカルボニル」、「ジフェニルＣ_1-6アルキル」、「アリールＣ_1-6アルキル」、「アリールカルボニルＣ_1-6アルキル」、および、「アリールオキシＣ_1-6アルキル」は、それに従って解釈されるものとする。

本明細書で用いられる表現「Ｃ_2-6アルケニル」は、エテニル、および、直鎖または分岐鎖プロペニル、ブテニル、ペンテニルおよびヘキセニル基を含む。同様に、表現「Ｃ_2-6アルキニル」は、エチニル、および、プロピニル、および、直鎖または分岐鎖ブチニル、ペンチニルおよびヘキシニル基を含む。

本明細書で用いられるように、用語「Ｃ_1-4アシルオキシ」は、酸素原子に結合したアシルラジカルを意味し、いくつかの例としては、これらに限定されないが、アセチルオキシ、プロピオニルオキシ、ブタノイルオキシ、イソ−ブタノイルオキシ、ｓｅｃ−ブタノイルオキシ、ｔ−ブタノイルオキシなどが挙げられる。

本明細書で用いられる「アリール」は、炭素環の芳香環系を示し、例えばフェニル、ビフェニル、ナフチル、アントラセニル、フェナントレニル、フルオレニル、インデニル、ペンタレニル、アズレニル、ビフェニレニルなどである。アリールはまた、上記で列挙された炭素環の芳香族系の部分的に水素化された誘導体も含むものとする。このような部分的に水素化された誘導体の非限定的な例は、１,２,３,４−テトラヒドロナフチル、１,４−ジヒドロナフチルなどである。

本明細書で用いられる「アリールオキシ」は、基−Ｏ−アリール（ここにおいて、アリールは、上記で定義された通りである）を示す。

本明細書で用いられる「ヘテロアリール」（そのままで、または、あらゆる組み合わせで、例えば「ヘテロアリールオキシ」または「ヘテロアリールアルキル」）は、１またはそれ以上の環が、Ｎ、ＯまたはＳからなる群より選択される１個またはそれ以上のヘテロ原子を含む５〜１０員環の芳香環系であり、例えば、これらに限定されないが、ピロール、ピラゾール、フラン、チオフェン、キノリン、イソキノリン、キナゾリニル、ピリジン、ピリミジン、オキサゾール、チアゾール、チアジアゾール、テトラゾール、トリアゾール、イミダゾール、または、ベンゾイミダゾールが挙げられる。

本明細書で用いられる「複素環式またはヘテロシクリル」（そのままで、または、あらゆる組み合わせで、例えば「ヘテロシクリルアルキル」）は、１またはそれ以上の環が、Ｎ、ＯまたはＳからなる群より選択される１個またはそれ以上のヘテロ原子を含む、飽和の、または、部分的に不飽和の４〜１０員環であり；例えば、ただしこれらに限定されないが、ピロリジン、ピペリジン、ピペラジン、モルホリン、テトラヒドロピラン、または、イミダゾリジンが挙げられる。

本明細書で用いられる表現「Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル」は、前記アルキル基中の全ての水素原子がフッ素原子で置換されていることを意味する。説明に役立つ例としては、トリフルオロメチル、および、ペンタフルオロエチル、および、直鎖または分岐鎖ヘプタフルオロプロピル、ノナフルオロブチル、ウンデカフルオロペンチルおよびトリデカフルオロヘキシル基が挙げられる。派生の表現、「Ｃ_1-6ペルフルオロアルコキシ」、は、それに従って解釈されるものとする。

本明細書で用いられる表現「Ｃ_3-8シクロアルキル」は、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル、および、シクロオクチルを意味する。

本明細書で用いられる表現「Ｃ_3-8シクロアルキルＣ_1-6アルキル」は、本明細書で定義されたようなＣ_3-8シクロアルキルが、さらに本明細書で定義されたようなＣ_1-6アルキルに結合していることを意味する。代表例としては、シクロプロピルメチル、１−シクロブチルエチル、２−シクロペンチルプロピル、シクロヘキシルメチル、２−シクロヘプチルエチル、および、２−シクロオクチルブチルなどが挙げられる。
本明細書で用いられる「ハロゲン」または「ハロ」は、クロロ、フルオロ、ブロモ、および、ヨードを意味する。

本明細書で用いられるように、本明細書における「Ｃ_1-6アルキルスルホニル」は、基−Ｓ（＝Ｏ）₂Ｃ_1-6アルキル（ここにおいて、Ｃ_1-6アルキルは、上記で定義された通りである）を示す。代表例としては、これらに限定されないが、メチルスルホニル、エチルスルホニル、ｎ−プロピルスルホニル、イソプロピルスルホニル、ブチルスルホニル、イソ−ブチルスルホニル、ｓｅｃ−ブチルスルホニル、ｔｅｒｔ−ブチルスルホニル、ｎ−ペンチルスルホニル、イソペンチルスルホニル、ネオペンチルスルホニル、ｔｅｒｔ−ペンチルスルホニル、ｎ−ヘキシルスルホニル、イソヘキシルスルホニルなどが挙げられる。

本明細書で用いられる「アリールスルホニル」は、基−Ｓ（＝Ｏ）₂アリール（ここにおいて、アリールは、上記で定義された通りである）を示す。
本明細書で用いられる「ヘテロアリールスルホニル」は、基−Ｓ（＝Ｏ）₂ヘテロアリール（ここにおいて、ヘテロアリールは、上記で定義された通りである）を示す。

表現「立体異性体」は、空間において原子の方位のみが異なるそれぞれの分子の全ての異性体に用いられる一般用語である。典型的には、立体異性体は、通常、少なくとも１つの不斉中心により形成される鏡像異性体（エナチオマー）を含む。本発明に係る化合物が２またはそれ以上の不斉中心を有する場合、それらはさらに、ジアステレオ異性体としても存在する可能性があり、さらに、所定の個々の分子が、幾何異性体（シス／トランス）として存在する可能性もある。当然ながら、全てのこのような異性体、および、それらのあらゆる比率の混合物は、本発明の範囲に包含される。

「置換された」は、独立して、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル、ヒドロキシ、−ＣＯ₂Ｈ、エステル、アミド、Ｃ₁−Ｃ₆アルコキシ、Ｃ₁−Ｃ₆ペルフルオロアルコキシ、−ＮＨ₂、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ、Ｆ、−ＮＨ−低級アルキル、および、−Ｎ（低級アルキル）₂からなる群より選択される１〜２個の置換基で置換されていることを意味する。

本発明の化合物および塩は、エノールおよびイミン型、ならびに、ケトおよびエナミン型、ならびに、幾何異性体などの数種の互変異性型、さらにはそれらの混合物で存在する可能性がある。このような互変異性型は全て、本発明の範囲に含まれる。互変異性体は、溶液中で互変異型の群の混合物として存在する。固体の状態では、通常、１種の互変異性体が優勢である。１種の互変異性体が説明されているとしても、本発明は、本発明の化合物の全ての互変異性体を含む。

本明細書で用いられるように用語「モジュレーター」は、生物活性またはプロセスの機能的な特性（例えば、酵素活性、または、受容体への結合）を、強化する（例えば、「アゴニスト」活性）、または、阻害する（例えば、「アンタゴニスト」活性）のいずれかの能力を有する化学物質を意味する；このような強化または阻害は、特定の事象（例えばシグナル伝達経路の活性化または抑制）の出現を条件とする場合があり、および／または、特に細胞型を明らかにする場合もあり、さらに、測定可能な生物学的な変化が生じる場合もある。
本明細書で用いられるように、「患者」は、例えばラット、マウス、イヌ、ネコ、モルモットおよび霊長類のような温血動物を意味し、例えばヒトである。

本明細書で用いられるように、表現「製薬上許容できるキャリアー」は、非毒性の溶媒、分散剤、賦形剤、アジュバント、または、その他の材料を意味し、これらは、医薬組成物、すなわち患者に投与できる投薬形態が形成できるようにするために本発明の化合物と混合される。このようなキャリアーの一例は、製薬上許容できる油状物質であり、典型的には、非経口投与に用いられる。

本明細書で用いられる用語「製薬上許容できる塩」は、本発明の化合物の塩が医薬製剤で用いることができることを意味する。しかしながら、その他の塩も、本発明に係る化合物、または、それらの製薬上許容できる塩の製剤において有用な場合がある。本発明の化合物の適切な製薬上許容できる塩としては、酸付加塩が挙げられ、これは例えば、本発明に係る化合物の溶液と、製薬上許容できる酸の溶液とを混合することによって形成してもよく、このような製薬上許容できる酸は、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、メタンスルホン酸、２−ヒドロキシエタンスルホン酸、ｐ−トルエンスルホン酸、フマル酸、マレイン酸、ヒドロキシマレイン酸、リンゴ酸、アスコルビン酸、コハク酸、グルタル酸、酢酸、サリチル酸、ケイ皮酸、２−フェノキシ安息香酸、ヒドロキシ安息香酸、フェニル酢酸、安息香酸、シュウ酸、クエン酸、酒石酸、グリコール酸、乳酸、ピルビン酸、マロン酸、炭酸、または、リン酸である。また、上記酸の金属塩（例えばオルトリン酸一水素ナトリウム、および、硫酸水素カリウム）を形成してもよい。また、このようにして形成された塩は、一酸または二酸の塩のいずれかで存在する可能性があり、さらに、水化物として存在してもよいし、または、実質的に無水でもよい。その上、本発明の化合物に酸性成分が含まれる場合、適切なそれらの製薬上許容できる塩は、アルカリ金属塩、例えばナトリウムまたはカリウム塩；アルカリ土類金属塩、例えばカルシウム、または、マグネシウム塩；および、適切な有機配位子で形成された塩（例えば第四アンモニウム塩）も挙げられる。
本明細書で用いられる用語「治療上有効な量」は、本化合物の、上記の障害または状態の治療に有効な量を意味する。

本発明はまた、本発明に係る化合物の１種またはそれ以上を、製薬上許容できるキャリアーと共に含む医薬組成物を提供する。好ましくは、これらの組成物は、１回投与形態であり、例えば、錠剤、丸剤、カプセル、粉末、顆粒、滅菌された非経口用の溶液または懸濁液、メーターで量られたエアロゾル、または、液状スプレー、ドロップ、アンプル、自動インジェクター装置、または、坐剤であり；これらは、経口、非経口の、鼻腔内、舌下または直腸内投与のため、または、吸入法または通気法による投与のためのものである。あるいは、本組成物は、週１回、または、月１回の投与に適した形態で存在していてもよく；例えば、本活性化合物の不溶性塩（例えばデカン酸塩）が、筋肉内注射のためのデポ製剤を提供するのに適している場合がある。上記活性成分を含む侵食性のポリマーが考慮される。錠剤のような固形組成物を製造するために、主要な活性成分は、製薬用キャリアー、例えば従来の錠剤を形成する成分、例えばコーンスターチ、ラクトース、スクロース、ソルビトール、タルク、ステアリン酸、ステアリン酸マグネシウム、リン酸二カルシウム、または、ゴム類、および、その他の製薬用の希釈剤、例えば水と混合され、本発明の化合物またはそれらの製薬上許容できる塩の均一な混合物を含む固形の予備処方組成物を形成することができる。これらの予備処方組成物が均一であると述べられる場合、上記活性成分が本組成物中に均一に分散されており、従って、本組成物を、さらに細かく等しく有効な１回投与量形態（例えば錠剤、丸剤およびカプセル）に容易に分割できることを意味する。

次に、この固形の予備処方組成物を、上述のタイプの本発明の活性成分を０.１〜約５００ｍｇ含む１回投与量にさらに細かく分割する。風味をつけた１回投与量は、上記活性成分を１〜１００ｍｇ、例えば１、２、５、１０、２５、５０または１００ｍｇ含む。新規の組成物の錠剤または丸剤は、コーティングしてもよいし、または別の方法で、持続性の作用の利点を提供する投薬形態が提供されるように配合してもよい。例えば、錠剤または丸剤は、内部の用量の成分と外部の用量の成分とで構成されていてもよく、この場合、後者が、前者を覆う外被の形態である。２種の成分は、腸溶性の層で分離することができ、この層は、胃での崩壊に耐えるように作用し、内部の成分を十二指腸に無傷で到達させる、または、それらの放出を遅らせることができる。このような腸溶性の層またはコーティングには、多種多様な材料を用いることができ、このような材料としては、多数のポリマー酸、および、ポリマー酸と、セラック、セチルアルコールおよび酢酸セルロースのような材料との混合物が挙げられる。

経口投与のための、または、注射による本発明の新規の組成物を包含することができる液体の形態としては、水溶液、適切には風味を付けたシロップ、水性または油性懸濁液、および、食用油（例えば綿実油、ゴマ油、ヤシ油または落花生油）、同様に、エリキシル、および、類似の製薬用の基材を用いた風味を付けた乳濁液が挙げられる。水性懸濁液のための適切な分散剤または懸濁化剤としては、合成ゴムおよび天然ゴム、例えばトラガカント、アラビアゴム、アルギン酸塩、デキストラン、カルボキシメチルセルロースナトリウム、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、または、ゼラチンが挙げられる。

本明細書で説明されているような様々な病態の治療において、適切な用量のレベルは、１日あたり約０.０１〜２５０ｍｇ／ｋｇ、好ましくは１日あたり約０.０５〜１００ｍｇ／ｋｇ、具体的には１日あたり約０.０５〜２０ｍｇ／ｋｇである。本化合物は、１日あ
たり１〜４回の処方計画に従って投与してもよい。

実施例とそれに続く製造で用いられるように、そこで用いられる用語は、以下で示す意味を有するものとする：「ｋｇ」は、キログラムを意味し、「ｇ」は、グラムを意味し、
「ｍｇ」は、ミリグラムを意味し、「ｇ」は、マイクログラムを意味し、「ｐｇ」は、ピコグラムを意味し、「ｍｏｌ」は、モルを意味し、「ｍｍｏｌ」は、ミリモルを意味し、「ｎｍｏｌｅ」は、ナノモルを意味し、「Ｌ」は、リットルを意味し、「ｍＬ」または「ｍｌ」は、ミリリットルを意味し、「μＬ」は、マイクロリットルを意味し、「℃」は、セルシウス度を意味し、「Ｒ_f」は、保持因子を意味し、「ｍｐ」または「ｍ.ｐ.」は、融点を意味し、「ｄｅｃ」は、分解を意味し、「ｂｐ」または「ｂ.ｐ.」は、沸点を意味し、「ｍｍＨｇ」は、水銀ミリメートルの圧力を意味し、「ｃｍ」は、センチメートルを意味し、「ｎｍ」は、ナノメートルを意味し、「［α］²⁰ _D」は、１デシメートルのセルで得られた２０℃でのナトリウムＤ線の比旋光度を意味し、「ｃ」は、濃度ｇ／ｍＬを意味し、「ＴＨＦ」は、テトラヒドロフランを意味し、「ＤＭＦ」は、ジメチルホルムアミドを意味し、「ＮＭＰ」は、１−メチル−２−ピロリジノンを意味し、「ブライン」は、塩化ナトリウムの飽和水溶液を意味し、「Ｍ」は、モル濃度を意味し、「ｍＭ」は、ミリモル濃度を意味し、「Ｍ」は、マイクロモル濃度を意味し、「ｎＭ」は、ナノモル濃度を意味し、「ＴＬＣ」は、薄層クロマトグラフィーを意味し、「ＨＰＬＣ」は、高速液体クロマトグラフィーを意味し、「ＨＲＭＳ」は、高分解能マススペクトルを意味し、「ＣＩＭＳ」は、化学イオン化マススペクトロメトリーを意味し、「ＥＳＩ」は、エレクトロスプレーイオン化マススペクトロメトリーを意味し、「ｔ_R」は、保持時間を意味し、「ｌｂ」は、ポンドを意味し、「ｇａｌ」は、ガロンを意味し、「Ｌ.Ｏ.Ｄ.」は、乾燥減量を意味し、「μＣｉ」は、マイクロキュリーを意味し、「ｉ.ｐ.」は、腹腔内を意味し、「ｉ.ｖ.」は、静脈内を意味する。

本発明の一形態において、式Ｉ:

で示される一般構造を有する新規の化合物、または、それらの立体異性体、互変異性体もしくは溶媒和物、または、それらの製薬上許容できる塩が開示され、
式中、
アリールは、フェニルまたはピリジニルであり、ここにおいて、前記フェニルまたはピリジニルは、場合により、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択される１またはそれ以上の置換基で置換されており；
Ｚは、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−、−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、または、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−であり、ここにおいて、Ｙは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、Ｒ₃は、Ｈ、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、および、ベンジルからなる群より選択され、ｎは、独立して、１〜５の整数であり；
Ｘは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、ここにおいて、Ｒ₃は、上記で定義された通りであり；
Ｒ₁は、Ｈ、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；ヒドロキシＣ_1-6アルキル、ニトロ、シアノ、および、Ｃ_1-6アルキルアミノであり；そして、
Ｒ₂は、置換された、または、非置換のフェニル、ピリジニルまたはチエニルであり、ここにおいて、該置換基は、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル、Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択され；
ただし、Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_n−、または、−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−であり、アリールがフェニルである場合、Ｒ₂は、フェニル以外である。

この実施形態のさらなる形態において、アリールがフェニルであり、ＸがＯまたはＳである化合物が開示される。
この実施形態のその他の形態において、ＸがＯである化合物が開示される。

この実施形態の典型的な化合物は、５−（４−｛２−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−エトキシ｝−フェニル）−３Ｈ−［１,３,４］オキサジアゾール−２−オンである。

本発明のその他の実施形態において、有効量の式Ｉで示される化合物、および、製薬上許容できるキャリアーを含む医薬組成物が開示される。
本発明のその他の実施形態において、哺乳動物において、ＰＰＡＲデルタリガンド結合活性で調節することができる疾患を治療する方法が開示され、 本方法は、前記疾患を有する前記哺乳動物に、治療上有効な量の式Ｉで示される化合物、または、それらの立体異性体、互変異性体もしくは溶媒和物、または、それらの製薬上許容できる塩を投与することを含む。

式中、
アリールは、フェニルまたはピリジニルであり、ここにおいて、前記フェニルまたはピリジニルは、場合により、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル、Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択される１またはそれ以上の置換基で置換されており；
Ｚは、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−、−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、−Ｏ（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−、または、−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−であり、ここにおいて、Ｙは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、Ｒ₃は、Ｈ、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、Ｃ_1-6アルキルＣ_3-8シクロアルキル、および、ベンジルからなる群より選択され、ｎは、独立して、１〜５の整数であり；
Ｘは、ＮＲ₃、ＯまたはＳであり、ここにおいて、Ｒ₃は、上記で定義された通りであり；
Ｒ₁は、Ｈ、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル；ヒドロキシＣ_1-6アルキル、ニトロ、シアノ、および、Ｃ_1-6アルキルアミノであり；そして、
Ｒ₂は、置換された、または、非置換のフェニル、ピリジニルまたはチエニルであり、ここにおいて、該置換基は、ハロゲン、Ｃ_1-6アルキル、Ｃ_2-6アルケニル、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6ペルフルオロアルキル、Ｃ_1-6アルキルチオ、ヒドロキシ、ヒドロキシＣ_1-6アルキル、Ｃ_1-4アシルオキシ、ニトロ、シアノ、Ｃ_1-6アルキルスルホニル、アミノ、Ｃ_1-6アルキルアミノ、および、Ｃ_1-6アルコキシカルボニルからなる群より選択される。

本発明のこの方法のこの実施形態のさらなる形態において、アリールがフェニルである化合物が開示される。
本発明のこの方法のこの実施形態のその他の形態において、アリールがフェニルであり、Ｒ₂がフェニルである化合物が開示される。

本発明のこの方法のこの実施形態のさらなる形態において、アリールがフェニルであり、Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_n−であり、Ｒ₂がフェニルである化合物が開示される。
本発明のこの方法のこの実施形態のさらにその他の形態において、アリールがフェニルであり、Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_n−であり、ＸがＯまたはＳであり、Ｒ₂がフェニルである化合物が開示される。

本発明のこの方法のこの実施形態のその他の形態において、アリールがフェニルであり、Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_n−であり、ＸがＯまたはＳであり、Ｒ₁がＣ_1-アルキルであり、Ｒ₂がフェニルである化合物が開示される。
本発明のこの方法のこの実施形態のさらなる形態において、ＸがＯである化合物が開示される。
本発明のこの方法のさらにその他の形態において、ＸがＳである化合物が開示される。

この実施形態のさらなる形態において、前記病気は、多発性硬化症、シャルコー−マリー−ツース病、ペリツェウス−メルツバッハー病、脳脊髄炎、視神経脊髄炎、副腎白質ジストロトフィー、ギラン・バレー症候群、および、ミエリンを形成するグリア細胞が損傷を受ける障害（脊髄損傷、神経障害および神経損傷など）からなる群より選択される脱髄疾患である方法が開示される。

この実施形態のその他の形態において、脱髄疾患は、多発性硬化症である方法が開示される。
本発明のさらにその他の形態において、前記病気は、肥満症、高トリグリセリド血症、高脂血症、低アルファリポタンパク血症、高コレステロール血症、異脂肪血症、シンドロームＸ、II型糖尿病、ならびに、ニューロパシー、腎症、網膜疾患、および、白内障、インスリン過剰血症、耐糖能異常、インスリン抵抗性、アテローム性動脈硬化症、高血圧、冠動脈心疾患、末梢血管疾患、または、うっ血性心不全からなる群より選択されるそれらの合併症からなる群より選択される方法が開示される。

本明細書で開示された化合物は、以下のスキームの手法に従って合成することができ、ここにおいて、アリール、Ｘ、ＺおよびＲ置換基は、特に他の規定がない限り、上記で式（Ｉ）に関して特定された通りである。必要に応じて、以下の合成スキームにおいて、本発明に記載の化合物に存在する反応性の官能基は、適切な保護基で保護されていてもよい。このような保護基は、合成の後の段階で除去してもよい。反応性の官能基を保護する手法、それに続いて除去する手法は、Ｔ.Ｗ.ＧｒｅｅｎｅおよびＰ.Ｇ.Ｍ.Ｗｕｔｓ，Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，ワイリー・アンド・サンズ（Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ），１９９１で見出すことが可能である。

スキームＡは、適切なイミダゾール、オキサゾールまたはチアゾール、式Ｉで示される化合物に関する中間体（ここにおいて、Ｘは、Ｏ、ＳまたはＮＲ₃である）の合成を示す。このような複素環は、化学文献において既知の方法を用いて製造することができる（総論として、Ｋａｔｒｉｔｚｋｙ，Ａ.Ｒ.；Ｒｅｅｓ，Ｃ.Ｗ.編.Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｈｅｔｅｒｏｃｙｃｌｉｃ Ｃｈｅｍｓｔｒｙ ，第５巻；Ｐｅｒｇａｍｏｎ Ｐｒｅｓｓ（１９８４）；Ｋａｔｒｉｔｚｋｙ，Ａ.Ｒ.；Ｒｅｅｓ，Ｃ.Ｗ.；Ｓｃｒｉｖｅｎ，Ｅ.Ｆ.Ｖ.編.Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｈｅｔｅｒｏｃｙｃｌｉｃ Ｃｈｅｍｓｔｒｙ II；第３＆４巻，Ｐｅｒｇａｍｏｎ Ｐｒｅｓｓ（１９９６）を参照）。具体的には、前記オキサゾール、イミダゾールおよびチアゾールは、約４０℃〜１５０℃の範囲の温度で、適切なαハロ−ケトン１を、アミド、アミジンまたはチオアミド（一般式２）とそれぞれ融合させて中間体複素環３を得ることによって製造することができる。

スキームＢに、式Ｉで示される化合物（Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_n−である）の一般的な合成を示す。それに従って、工程Ｂ１において、適切に置換されたカルボン酸エステル４（スキームＡで説明されているように合成することができる）は、当業界周知の方法でアルコール５に還元される。例えば、この還元は、不活性溶媒中で、水素化アルミニウム（例えば水素化リチウムアルミニウムまたは水素化ジイソブチルアルミニウム）によって実行されてもよい。工程Ｂ２において、化合物５中のアルコール官能基は、脱離基に変換されて、化合物６を生成することもでき、ここにおいて、Ｌｇは、脱離基（例えばハロゲン、または、スルホン酸エステル、例えばメシラートまたはトシラート）である。このような脱離基への変換は、トリフェニルホスフィンの存在下でアルコールと、例えばＮ−ブロモスクシンイミドのような試薬とを反応させて脱離基が臭化物の化合物を得て達成することができ、または、塩化チオニルと反応させて脱離基が塩化物である化合物を得て達成することもできる。スルホン酸エステルが望ましい場合、適切な塩基の存在下で化合物５と適切な塩化スルホニルとを反応させれば、望ましいスルホン酸エステルが生成すると予想される。例えば、不活性溶媒中で、有機塩基（例えばトリエチルアミンまたはピリジン）の存在下で、化合物５と塩化メタンスルホニルとを反応させれば、脱離基がＯＳＯ₂ＣＨ₃の化合物６が得られると予想される。

工程Ｂ３において、適切に置換されたヒドロキシアリールエステル７は、複素環６と反応し、脱離基を除去して、カップリングされたエステル８が生成する。この除去反応は、当業界周知の条件下で行なわれる。典型的には、この反応は、塩基（例えば水素化ナトリウムなど）の存在下で、又は他の有機塩基（例えばアルカリカーボネート、または、アルカリ水酸化物）中で、不活性溶媒中で行われる。この反応温度は、重要ではないが、０℃〜不活性溶媒の還流温度である。

次に、工程Ｂ４において、化合物８は、ヒドラジンそのままで、または、適切な有機溶媒中のヒドラジンのいずれかで、高温で処理され、酸ヒドラジド９が生成する。典型的には、この反応は、５０℃〜有機溶媒の還流温度の温度で行われる。

工程Ｂ５において、酸ヒドラジド９の目的の１,３,４−オキサジアゾール−２−オン１０への環化は、有機塩基（例えばピリジン）の存在下で、化合物９をクロロホルメートで処理し、続いて、密封した試験管中で、適切な有機溶媒（例えばアセトニトリル）中で、強いヒンダードアミン塩基（例えば１,８−ジアザビシクロ［５.４.０］ウンデカ−７−エン（ＤＢＵ））とで高められた温度で処理することによって達成される。典型的には、この反応は、１００℃〜２００℃で行うことができる。また、１,３,４−オキサジアゾール−２−オンは、化合物９とホスゲンとを反応させて合成してもよい。Ｓｔｅｍｐｅｌ，Ａ.等.，Ｊ.Ｏｒｇ.Ｃｈｅｍ.１９５５，２０，４１２を参照。

工程Ｂ６において、カップリングされたエステル８のそれ以外の合成を説明する。それに従って、不活性溶媒（例えばＴＨＦまたはジクロロメタン）中で、トリアリールまたはトリアルキルホスフィン、例えばトリフェニルホスフィン、または、トリ−ｎ−ブチルホスフィン、および、アゾジカルボン酸ジエチルの存在下で、アルコール５とヒドロキシアリールエステル８とを反応させ、カップリングされたエステル８を得ることができる。典型的には、この反応は、室温〜不活性溶媒の還流温度の温度で行われる。

スキームＣは、式Ｉで示される化合物（Ｚが−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−である）の合成を説明する。このスキームは、アリールに結合したアルキレン鎖におけるｎが１または２を示す化合物を合成するのに最も有用である。工程Ｃ１において、化合物５（Ｙ＝Ｏ）は、スキームＢ、工程Ｂ２で説明されているようにして化合物６に変換される（ここにおいて、Ｌｇは、クロロまたはブロモである）。次に、Ｔｒｅａｕ，Ｍ.等.Ｈｅｔｅｒｏｃｙｃｌｅｓ，２００１，５５（９），１７２７〜１７３５に記載の条件と類似した条件下で、化合物６と、チオ尿素、化合物１１とを反応させ、チオール５ａが生成する。

化合物６が、第一アミン１２と反応する場合、アミノアルキル複素環５ｂが生成する。このアミンによる脱離基の除去は、当業者には周知である。典型的には、この除去反応は、極性有機溶媒中で、酸スカベンジャーとして作用する有機塩基の存在下で行われる。この除去反応は、重要ではないが、周囲温度〜溶媒の還流温度で行われる。

工程Ｃ３において、化合物５、５ａおよび５ｂは、化合物１３と反応して、カップリングされたアリールエステル１４（Ｙは、Ｏ、Ｓ、または、ＮＲ₃である）を得ることができる。それに従って、化合物５（Ｙ＝Ｏ）および５ａ（Ｙ＝Ｓ）と、１３とが反応して脱離基が除去される場合、この反応は、典型的には、強塩基（例えば水素化ナトリウム）の存在下で、極性非プロトン性溶媒（例えばＤＭＦ、または、ＤＭＳＯ）中で、約０℃〜約１５０℃の温度で行われると予想される。化合物５ｂ（Ｙ＝ＮＲ₃）と、１４とが反応する場合、工程Ｃ２で第一アミンに関して述べられた条件と同一な条件が用いられる。

化合物１４からの望ましい１,３,４−オキサジアゾール−２−オン１６の合成は、スキームＢ、工程Ｂ４およびＢ５で正確に説明されているように、２つの工程（Ｃ４およびＣ５）で達成される。

スキームＤにおいて、式Ｉで示される化合物（Ｚが−（ＣＨ₂）_n−Ｙ−（ＣＨ₂）_n−である）への代わりのアプローチを示す。このスキームは、アリールに結合したアルキレン鎖中のｎが３〜５を示す化合物を合成するのに最も有用である。

工程Ｄ１において、末端のアルデヒド化合物１７（スキームＡで説明されている方法で合成することができる）は、２工程反応の連続反応で末端のアセチレン１９に変換される。それに従って、１７と、ブロモメチレントリフェニルホスホラン（第一の工程）と、カリウムｔ−ＢｕＯＫとの反応によって、中間体ブロモオレフィン（示さず）が生成し、その後これを、２当量のｔ−ＢｕＯＫ（第二の工程）で処理して、アセチレン１９を形成する。この変換のための反応の連鎖は、Ｐｉａｎｅｔｔｉ，Ｐ.，Ｔｅｔ.Ｌｅｔｔｅｒｓ，１９８６，４８，５８５３〜５８５６で説明されている。また、Ｃｏｒｅｙ，Ｅ.Ｊ.，等.Ｊ.Ａｍ.Ｃｈｅｍ.Ｓｏｃ.,１９６９，９１，４３１８〜４３２０も参照。あるいは、工程Ｄ２で示されるように、タイプ１９の中間体は、求核剤（例えば１８）（ここにおいて、末端のアセチレンが導入される）を用いた中間体（例えば６）（スキームＣを参照）からの脱離基の除去によって製造することができる。

工程Ｄ３において、アセチレン系中間体１９とヨウ化アリール２０との薗頭（Ｓｏｎｏｇａｓｈｉｒａ）カップリングは、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム（０）、ヨウ化第一銅、および、適切な有機塩基の存在下で、不活性溶媒中で行われ、カップリングされた末端のアセチレン２１を得ることができる。次に、アセチレン２１の還元は、工程Ｄ４で、化合物２１の接触水素化によって達成することができ、飽和エステル１４が生成する。典型的には、この還元は、３０〜３００ｐ.ｓ.ｉ.の圧力で、水素とともに不活性有機溶媒中の触媒（例えばパラジウムを担持した活性炭、または、クロロトリス（トリフェニルホスフィン）ロジウム（Ｉ））を使用することによって達成することができる。この還元は、室温〜１７５℃の温度で行うことができる。

化合物１４からの望ましい１,３,４−オキサジアゾール−２−オン１６の合成は、正確にスキームＢ、工程Ｂ４およびＢ５で説明されているように、２工程（Ｄ５およびＤ６）で達成される。

スキームＥは、式Ｉで示される化合物（Ｚが−（ＣＨ₂）_nＮＲ₃（ＣＨ₂）_n−である）の具体的な合成を説明する。このアプローチにおいて、リンカーＺは、アルデヒドのアミンでの還元的アミノ化によって構築されている。例えば、工程Ｅ１において、極性溶媒（
通常、アルコールまたはアルコールＴＨＦ混合物）中での、５ｂのアルデヒド（ここにおいて、Ｙ＝ＮＲ₃）（例えば４−ホルミル−安息香酸メチルエステル（ｎ＝１）化合物２２）での処理、続いて、還元剤（例えばナトリウムトリアセトキシ−水素化ホウ素）での処理によって、必要な中間体１４ａ（ｎ＝１）が提供される。

同様に、工程Ｅ２でのアルデヒド（例えば１７ａ）を、アミン、例えば４−アミノアルキル安息香酸メチルエステル（ｎ＝１）、化合物２３で処理することにより、１４ａが提供される（ここにおいて、−（ＣＨ₂）_nＮＲ₃については、ｎが１であり、Ｒ₃がＨである）。工程Ｅ３およびＥ４における化合物１４ａは、スキームＢ、工程Ｂ４およびＢ５で説明されているように、１,３,４,−オキサジアゾール−２−オン１６ａに変換される。

より一般的には、適切なアミン（Ｒ’ＯＯＣ−アリール−（ＣＨ₂）_nＮＨＲ₃）は、それに対応するニトリルまたはニトロ化合物から接触水素化によって製造され、または、アセチレン系アミン、および、ヨウ化アリールまたは臭化アリールから薗頭カップリング、続いてスキームＤで説明されているように接触水素化によって製造される。

スキームＦは、式Ｉで示される化合物（Ｚが−ＳＯ₂（ＣＨ₂）_n−である）の合成を説明する。工程Ｆ１において、アリール塩化スルホニル２４の亜硫酸ナトリウム水溶液での処理により、スルフィン酸２５が提供される。工程Ｆ２の場合と同様に、極性溶媒（例えばＤＭＦ、アセトニトリル、または、エタノール）中で、塩基（例えばＤＢＵ、ピリジン、ナトリウムメトキシド、または、水酸化ナトリウム）の存在下で、２５と中間体（例えば６）とを反応させることによって、中間体２６が提供される。中間体２６は、スキームＢ、工程Ｂ４およびＢ５で説明されているように、工程Ｆ３およびＦ４、それに対応する
１,３,４−オキサジアゾール−２−オン２８に変換される。

スキームＧは、式Ｉで示される化合物（Ｚが−Ｏ（ＣＨ₂）_nＣＯ−である）の合成を説明する。このスキームでは、ｎが１の場合を説明する。開始の２−アシル複素環２９は、それに対応するカルボン酸（スキームＡで説明されている方法で製造された）から、適切なグリニャール試薬の添加によって中間体Ｎ−メトキシＮ−メチルカルボキサミドに合成することができる（Ｋｈｌｅｓｔｋｉｎ，Ｖ.Ｋ.等.；Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｒｇａｎｉｃ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００３，７（１０），９６７〜９９３、および、Ｓｉｎｇｈ，Ｊ.等.,Ｊｏｕｒｎａｌ ｆuｒ Ｐｒａｋｔｉｓｃｈｅ Ｃｈｅｍｉｅ，２０００，３４２，３４０〜３４７）。中間体Ｎ−メトキシ−Ｎ−メチルカルボキサミドの製剤は、最も都合のよい形態としては、ペプチドカップリング試薬（例えばＥＤＣ、ＤＣＣ、ＤＭＰＵ）、および、第三アミン塩基（例えばジイソプロピルエチルアミン、または、トリエチルアミン）の存在下での、上記酸とＮ−メトキシ−Ｎ−メチルヒドロキシルアミン塩酸塩との反応によって行われる。

従って、工程Ｇ１で示されるように、進行中に、２９は臭素化され、ブロモケトン３０が生成する。この臭素化は、周知の方法、例えば、酢酸中の２９と臭化ピリジニウム（過臭化物）との反応、または、不活性有機溶媒（例えばジクロロメタン）中の２９とＢｒ₂との反応によって達成することができる。工程Ｇ２において、得られたブロモケトン３０は、スキームＢ（工程Ｂ３）に記載の条件下でアリールヒドロキシエステル７と反応し、カップリングされたエステル３１を得ることができる。３１のケトン官能性は、工程Ｇ３で示されるように、当業界周知の方法によってケタール３２として保護される。次に、化合物３２は、工程Ｇ４〜Ｇ５で、スキームＢ（Ｂ４およびＢ５）で説明されているような標準的な手順によって、１,３,４−オキサジアゾール−２−オンケタール３４に変換される。最終的に、工程Ｇ６において、３４におけるケタール官能性は、例えばＴＨＦ−メタノール−水中の鉱酸で、または、当業界既知のその他の方法で切断され、目的の構造３５を得ることができる。

当業者には当然であると思われるが、上記のスキームＧの手法を用いて、化合物３５についてｎが２〜５である類似体を、より大きいブロモアルカノイル置換基（Ｂｒ（ＣＨ₂）_nＣＯ−、ここにおいて、ｎは２〜５である）を有するブロモケトン、化合物３０で開始させて合成することができる。

スキームＨは、式Ｉで示される化合物（Ｚが−（ＣＨ₂）_nＣＯ−である）の製剤方法を説明する。工程Ｈ１において、適切なメトキシカルボニルで置換された複素環３６を、溶媒（例えばＴＨＦ、または、ＤＭＥ）中で、−７８℃〜室温の範囲の温度で、ｔ−ブチルアセタートのリチウムエノラート（２当量）で処理し、ケトアセタート中間体３７を提供することができる。工程Ｈ２において、不活性溶媒中で、−１０℃〜室温の温度での、３７の塩基（例えば水素化ナトリウム）での処理、続いて得られたアニオンの求電子性物質（例えば１３）でのアルキル化によって、さらに進んだ中間体ケトジエステル３８が得られる。脱炭酸反応は工程Ｈ３に示され、まず、不活性溶媒（例えばジクロロメタン）中で３８をＴＦＡで処理し、続いて７０℃〜１５０℃の温度で加熱分解して、中間体ケトエステル３９を提供することによって達成することができる。３９におけるケトンの官能性は、当業界周知の方法によって、工程Ｈ４で示されるように、ケタール４０として保護される。次に、化合物４０は、スキームＢ（Ｂ４およびＢ５）で説明されているような標準的な手順によって、工程Ｈ５〜Ｈ６で１,３,４−オキサジアゾール−２−オンケタール４２に変換される。最終的に、工程Ｈ７において、４２におけるケタールの官能性は、スキームＧ、工程Ｇ６で上述したように切断され、望ましい１,３,４−オキサジアゾール−２−オン、化合物４３を得ることができる。

生物学的な実施例：本発明の化合物の生物学的な特性を確認するために、以下の試験プロトコールを用いた。以下の実施例は、本発明をさらに説明するために示される。しかしながら、これらは、どのような形でも本発明を限定すると解釈されるべきではない。

細胞ベースのＰＰＡＲデルタ−ＧＡＬ４分析におけるＥＣ ₅₀ 値の決定
原理
アゴニストの様式でヒトＰＰＡＲデルタに結合し、それらを活性化する物質の効力は、安定してトランスフェクションされたＨＥＫ細胞系（ＨＥＫ＝ヒト胎児腎臓）（本明細書においてＰＰＡＲデルタレポーター細胞系と称する）を用いて解析された。ＰＰＡＲデルタレポーター細胞系は、２つの遺伝学的要素、ルシフェラーゼレポーター要素（ｐデルタＭ−ＧＡＬ４−Ｌｕｃ−Ｚｅｏ）、および、ＰＰＡＲデルタリガンドに依存してルシフェラーゼレポーター要素の表現を仲介するＰＰＡＲデルタ融合タンパク質（ＧＲ−ＧＡＬ４−ヒトＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤ）を含む。安定して、かつ構成的に表現された融合タンパク質ＧＲ−ＧＡＬ４−ヒトＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤは、ＰＰＡＲデルタレポーター細胞系の細胞核中で、ＧＡＬ４タンパク質部分を介して、細胞系のゲノムに安定して統合されているルシフェラーゼレポーター要素のＧＡＬ４のＤＮＡ結合モチーフの５’上流に結合する。本分析で脂肪酸を枯渇させたウシ胎仔血清（ｃｓ−ＦＣＳ）が用いられた場合、ＰＰＡＲデルタリガンドの非存在下では、ルシフェラーゼレポーター遺伝子はほんのわずかしか表現しない。ＰＰＡＲデルタリガンドは、ＰＰＡＲデルタ融合タンパク質に結合し、活性化し、および、それによって、ルシフェラーゼレポーター遺伝子の表現を刺激する。形成されるルシフェラーゼは、適切な基質を介した化学発光によって検出することができる。

ＰＰＡＲデルタレポーター細胞系の構築：
安定なＰＰＡＲデルタレポーター細胞系の生産は、ルシフェラーゼレポーター要素で安定してトランスフェクションされた安定なＨＥＫ−細胞クローンに基づく。この工程はすでに、「ＰＰＡＲアルファレポーター細胞系の構築」の章で述べられている。第二の工程において、ＰＰＡＲデルタ融合タンパク質（ＧＲ−ＧＡＬ４−ヒトＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤ）を、この細胞のクローンに安定して導入した。この目的のために、糖質コルチコイド受容体のＮ末端の７６個のアミノ酸をコードするｃＤＮＡ（登録番号Ｐ０４１５０）を、酵母転写因子ＧＡＬ４（登録番号Ｐ０４３８６）のアミノ酸１〜１４７をコードするｃＤＮＡ断片に連結させた。ヒトＰＰＡＲデルタ受容体（アミノ酸Ｓ１３９−Ｙ４４１；登録番号Ｌ０７５９２）のリガンド−結合ドメインのｃＤＮＡを、このＧＲ−ＧＡＬ４コンストラクトの３’末端でクローニングした。この方法で製造された融合コンストラクト（ＧＲ−ＧＡＬ４−ヒトＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤ）を、サイトメガロウイルスプロモーターにより構成的に表現させるために、プラスミドｐｃＤＮＡ３（インビトロジェン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ））に再度クローニングした。このプラスミドを制限エンドヌクレアーゼで直線状にした、および、ルシフェラーゼレポーター要素を含む上述した細胞クローンに安定してトランスフェクションさせた。このようにして得られた、ルシフェラーゼレポーター要素を含み、ＰＰＡＲデルタ融合タンパク質（ＧＲ−ＧＡＬ４−ヒトＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤ）を構成的に表現するＰＰＡＲデルタレポーター細胞系を、ゼオシン（０.５ｍｇ／ｍｌ）とＧ４１８（０.５ｍｇ／ｍｌ）を用いた選択によって単離した。

分析法、および、評価：
ＰＰＡＲデルタアゴニストの活性は、以下で説明される３日間の分析で決定された：
１日目
ＰＰＡＲデルタレポーター細胞系を培養し、以下の添加物：１０％ｃｓ−ＦＣＳ（ウシ胎仔血清；＃ＳＨ−３００６８.０３、ハイクローン（ＨｙＣｌｏｎｅ））、０.５ｍｇ／ｍｌゼオシン（＃Ｒ２５０−０１、インビトロジェン）、０.５ｍｇ／ｍｌのＧ４１８（＃１０１３１−０２７、インビトロジェン）、１％ペニシリン−ストレプトマイシン溶液（＃１５１４０−１２２、インビトロジェン）、および、２ｍＭのＬ−グルタミン（＃２５０３０−０２４、インビトロジェン）と混合したＤＭＥＭ（＃４１９６５−０３９、インビトロジェン）中８０％の密集度にした。培養は、細胞培養インキュベーター中の標準的な細胞培養瓶（＃３５３１１２、ベクトン・ディッキンソン（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ））で、３７℃で、５％ＣＯ₂の存在下で行われた。８０％密集度の細胞をＰＢＳ１５ｍｌ（＃１４１９０−０９４、インビトロジェン）で１回洗浄し、トリプシン溶液３ｍｌ（＃２５３００−０５４、インビトロジェン）で、３７℃で２分間処理し、上述のＤＭＥＭ５ｍｌ中に取り上げ、細胞計数器で計数した。５００,０００細胞／ｍｌに希釈した後、３５,０００個の細胞を、透明プラスチックベースの９６ウェルのマイクロタイタープレート（＃３６１０、コーニング・コースター（Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃｏｓｔａｒ））の各ウェルに１８０μＬでシーディングした。このプレートを、細胞培養インキュベーター中で、３７℃、５％ＣＯ₂で、２４時間インキュベートした。

２日目
試験されるＰＰＡＲデルタアゴニストを、濃度１０ｍＭのＤＭＳＯに溶解させた。このストック溶液を、５％ｃｓ−ＦＣＳ（＃ＳＨ−３００６８.０３、ハイクローン）、２ｍＭのＬ−グルタミン（＃２５０３０−０２４、インビトロジェン）、および、上述した抗生物質（ゼオシン、Ｇ４１８、ペニシリン、および、ストレプトマイシン）と混合したＤＭＥＭ（＃４１９６５−０３９、インビトロジェン）に希釈した。

試験物質を、１０μＭ〜１００ｐＭの範囲の１１種の異なる濃度で試験した。より有力な化合物を、１μＭ〜１０ｐＭ、または、１００ｎＭ〜１ｐＭの濃度範囲で試験した。

１日目にシーディングしたＰＰＡＲデルタレポーター細胞系の培地を吸引によって完全に除去し（またはそうでなくてもよい）、培地で希釈した試験物質を、細胞に即座に添加した。物質の希釈および添加はロボット（ベックマンＦＸ（Ｂｅｃｋｍａｎ ＦＸ））によって行われた。培地で希釈した試験物質の最終容量は、９６ウェルのマイクロタイタープレートのウェル１つあたり１００μｌとした。この分析におけるＤＭＳＯ濃度は、溶媒の細胞傷害効果を防ぐために０.１％ｖ／ｖ未満とした。

それぞれ個々のプレートにおいてこの分析が機能していることを実証するために、各プレートに、同様に１１種の異なる濃度に希釈された標準ＰＰＡＲデルタアゴニストを入れた。分析プレートを、インキュベーターで、３７℃、５％ＣＯ₂で、２４時間インキュベートした。

あるいは、試験物質の１０×最終濃度（２０μＬ）を、平板培養した細胞を含む１８０μＬに直接添加した。試験物質を、この分析プレートの構成で、８種の異なる濃度で、三連で試験した。

３日目
ＰＰＡＲデルタレポーター細胞を、インキュベーターから取り出された試験物質で処理し、培地を吸引して除いた。９６ウェルのマイクロタイタープレートの各ウェルにブライトＧｌｏ（Ｂｒｉｇｈｔ Ｇｌｏ）試薬（プロメガ（Ｐｒｏｍｅｇａ）製）５０μｌをピペッティングして細胞を溶解させた。室温で、暗所で１０分間インキュベートした後に、マイクロタイタープレートを、ルミノメーター（トリラックス（Ｔｒｉｌｕｘ）、ワラック（（Ｗａｌｌａｃ）製））で測定した。マイクロタイタープレートの各ウェルの測定時間は１秒とした。

評価：
ルミノメーターからの生データを、マイクロソフトエクセル（Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｅｘｃｅｌ）のファイルに移した。ＰＰＡＲアゴニストの用量−作用のプロット、および、ＥＣ₅₀値を、ＸＬ.Ｆｉｔプログラムを製造元（ＩＤＢＳ）が説明している通りにして用いて計算した。

１ｎＭ以上、１０μＭ未満の範囲のＰＰＡＲデルタＥＣ₅₀値を、本願の実施例のＰＰＡＲモジュレーターに関して測定した。式Ｉで示される本発明の化合物は、アゴニストまたはアンタゴニストとして作用することが可能である。以下、部分アゴニストまたはアンタゴニスト活性を決定するための分析を説明する。

ＰＰＡＲデルタ受容体における部分アゴニストまたはアンタゴニストの有効性の決定
この分析では、化合物が、ＰＰＡＲデルタ受容体において部分アゴニストまたはアンタゴニストとして作用するかどうかを決定した。
分析プレートの平板培養および回収は、上記の１日目および３日目で説明した通りである。

２日目
部分アゴニストまたはアンタゴニスト、および、既知の選択的アゴニストを、１０％ｃｓ−ＦＣＳ（＃ＳＨ−３００６８.０３、ハイクローン）、２ｍＭのＬ−グルタミン（＃２５０３０−０２４、インビトロジェン）、および、上述した抗生物質（ゼオシン、Ｇ４１８、ペニシリン、および、ストレプトマイシン）と混合したＤＭＥＭ（＃４１９６５−０３９、インビトロジェン）で、望ましい最終濃度の２０倍に希釈した。この細胞を含む分析プレートに、部分アゴニストまたはアンタゴニスト（１０マイクロリットル）を添加した。分析プレートを、インキュベーターで、３７℃、５％ＣＯ₂で、３０分間インキュベートした。次に、部分アゴニストまたはアンタゴニストをプレインキュベートした後、２０倍の既知の選択的アゴニスト（１０マイクロリットル）を添加した。分析プレートを、インキュベーターで、３７℃、５％ＣＯ₂で、２４時間インキュベートした。既知の選択的アゴニストＥＣ₅₀に対する作用を、それぞれの部分アゴニストまたはアンタゴニスト濃度について測定した。

ＳＰＡ ＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤ結合分析
ストック溶液：
１Ｍトリス（ｐＨ＝８.０またはｐＨ＝７.６）（ジーン・メディシン・ストック・ルーム（Ｇｅｎｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ Ｓｔｏｃｋ Ｒｏｏｍ））
２Ｍ ＫＣｌ（Ｎ２１４０において粉末）
トゥイーン（Ｔｗｅｅｎ）２０
１００ｍＭ ＤＴＴ
１３.９μＭのＧＷ２３３１（熱いＥｔＯＨ中）
１０ｍＭのＧＷ２３３１（冷たいＤＭＳＯ中）
ＰＰＡＲ−アルファ（様々な濃度）
例えば：.８８４μｇ／μｌ

洗浄緩衝液：（４℃で保存。緩衝液は１週間有効）
１０ｍＭトリス（ｐＨ＝７.６または８） １０ｍｌ
５０ｍＭ ＫＣｌ ２５ｍｌ
０.０５％トゥイーン２０ ０.５ｍｌ
ミリポア（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）水 ９６４.５
チェックｐＨ＝７.６

結合緩衝液：（そのつど新しい結合緩衝液を準備した）
洗浄緩衝液 ５０ｍｌ
１０ｍＭのＤＴＴ ５.５ｍｌ

１プレートのための反応試薬の製造:
グルタチオンでコートしたＳＰＡビーズ
それぞれＳＰＡビーズのボトルには、ビーズ５００ｍｇが含まれていた；
ＳＰＡビーズ５００ｍｇを洗浄緩衝液５ｍｌ中で再生させた（２〜３週間有効と予想される）；
４℃で保存した。

結合緩衝液で希釈したＳＰＡビーズを作製した：
上記で再生したＳＰＡビーズ１ｍｌを、結合緩衝液６０ｍｌに添加した；
上記の希釈したビーズ２０μｌを９６−ウェルプレートの各ウェルに添加した。
上記で各プレートについて希釈したビーズ２ｍｌを使用した（無効な体積は含まれていない）。
３Ｈ ＧＷ−２３３１と、ＧＳＴ−ＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤを、３.０ｍｌ／プレートの量で（無効な体積含む）、１３.９μＭ、４０ｎＭ／ウェルとした（１つの９６−ウェルプレートあたり、無効な体積なし）
３Ｈ−ＧＷ２３３１の特異的な活性が、１ｍｃｉ／ｍｌ（アマシャム（Ａｍｅｒｓｈａｍ）製）の場合、３Ｈ ＧＷ−２３３１（１７μｌ）を、結合緩衝液（＝.０８μＭ）３.０ｍｌに希釈した。
タンパク質濃度が１ｍｇ／ｍＬである場合、タンパク質２１μｌを、結合緩衝液３.０ｍｌに添加した。

要約すると：１つの９６−ウェルプレート：結合緩衝液（３０００μＬ）＋３Ｈ−ＧＷ２３３１（１７μＬ）＋ＧＳＴ−ＰＰＡＲ−デルタ（２１μＬ）（１ｍｇ／ｍｌ）である。

コントロールプレート
９６−ウェルのマザープレート（２つのコントロールプレート用）
カラム＃１：
ウェルＥ〜Ｈに、冷ＧＷ２３３１（１０ｍＭ）５μｌを添加した。
ウェルＡ〜Ｈに、ＤＭＳＯ４５μＬを添加した。

カラム＃１２（３倍希釈）：
ウェルＡに、冷ＧＷ２３３１（１０ｍＭ）１０μＬを添加した。
次に、ウェルＡに、ＤＭＳＯ９０μｌを添加し、この溶液をよく混合した。
ウェルＢ〜Ｈに、ＤＭＳＯ２０μｌを添加する。
ウェルＡ〜Ｂから溶液１０μｌを分取し、よく混合し、
次に、Ｂ〜Ｃから溶液１０μｌを分取し、よく混合し、
次に、Ｃ〜Ｄから溶液１０μｌを分取し、よく混合し、
最終的に、Ｆ〜Ｈから１０μｌを分取した。

コントロールプレート（８つの反応プレート用）
コントロールプレートは、マザープレートの１：１０希釈であった。希釈緩衝液は、洗浄緩衝液とした。

サンプルプレート
新しいＣＰＣライブラリープレートに、ＤＭＳＯ９０μｌを添加した。
ＤＭＳＯ希釈液を１０μｌ分取し、それを、サンプルプレート中で洗浄緩衝液９０μｌに添加した。

反応プレート：
反応プレートの各ウェルに、ＧＳＴ−ＰＰＡＲ−デルタと共に、ＳＰＡビーズ２０μｌ、および、３Ｈ−ＧＷ２３３１（３０μｌ）を添加した。
サンプルプレートの各ウェルからの化合物５μｌを、反応プレートのカラム２〜１１に添加した。
コントロールプレートのカラム１とカラム１２からの化合物５μｌを、反応プレートのカラム１とカラム１２に添加した。

９６−ウェルＳＰＡプロトコール：
反応プレートを２０分間〜２時間平衡化させた。
プレートを密封し、その後、マイクロベータ（Ｍｉｃｒｏｂｅｔａ）カウンター（ワラック）で計数した。
ＩＣ₅₀を計算した。

ＳＰＡのＰＰＡＲデルタ−ＬＢＤ結合分析において、１ｎＭ以上、１０μＭ未満の範囲のＩＣ₅₀値を、本願における実施例のＰＰＡＲモジュレーターに関して測定した。式Ｉで示される本発明の化合物は、アゴニストまたはアンタゴニストとして作用することが可能である。

ラット／マウス希突起膠細胞培養
細胞の調製：
１．一次ラット希突起膠細胞の前駆細胞を、新生児（出生後２〜３日）ラット、または、マウスの新皮質から得て、さらに、小グリア細胞を除去した後に、元々ＭｃＣａｒｔｈｙおよびｄｅ Ｖｅｌｌｉｓ（１９８０年）で説明されている技術の改変法を用いて、星状細胞の単分子層から機械的に分離することによって高濃度化した。
２．新生児のラットの脳から髄膜を除去し、組織を機械的に解離させた。細胞をＴ７５フラスコで平板培養し、細胞にＤＭＥＭ／Ｆ１２＋１０％ＦＢＳを与えた。
３．星状細胞が敷き詰められた層で成長した乏突起膠細胞を、はじめの調製日から１４日後に、シェイキング・オフ（ｓｈａｋｉｎｇ−ｏｆｆ）法で回収した。懸濁液を遠心分離し、細胞ペレットを、以下の成長因子：血小板由来成長因子−ＡＡ（ＰＤＧＦ）、および、線維芽細胞増殖因子−２（ＦＧＦ）が追加された血清非含有培地（ＳＦＭ；ＤＭＥＭ、以下を含む：２５μｇ／ｍｌトランスフェリング（ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎｇ）、３０ｎＭトリヨードチロニン、２０ｎＭヒドロコルチゾン、２０ｎＭプロゲステロン、１０ｎＭビオチン、１×微量元素、３０ｎＭセレン、１μｇ／ｍｌプトレシン、０.１％ＢＳＡ、５Ｕ／ｍｌペンストレップ（ＰｅｎＳｔｒｅｐ）、１０μｇ／ｍｌインスリン）に再懸濁した。
４．細胞をＰＤＬでコーティングされた培養皿で平板培養し、３７℃で、６〜７％ＣＯ₂で、インキュベートした。
５．培地成分を４８時間ごとに置き換え、細胞を元の状態に維持した。

スクリーニング分析のために細胞数を増加させるための前駆細胞の継代：
１．培養物が密集してきたら、培養物をＰＢＳでリンスし、トリプシンを添加し、３７℃で〜２〜３分間インキュベートした。
２．この細胞懸濁液を中和し、９００ｇで５分間遠心分離した。
３．細胞ペレットをＳＦＭ＋ＰＤＧＦ／ＦＧＦに再懸濁した。
４．細胞に新しい成長因子を４８時間ごとに与え、前駆細胞に迅速に分割させるために高濃度を維持した。
５．実験分析の前に、細胞をたかだか４〜５回継代させた。
６．希突起膠細胞の前駆細胞が関与する実験は全て、これらの条件下で継続的に維持された細胞を用いて行われた。全ての細胞の９５％超が、Ａ２Ｂ５免疫陽性でり、さらに、２’３’−環状ヌクレオチド３’−ホスホジエステラーゼII ｍＲＮＡを表現した。
７．成熟した乏突起膠細胞を生成させるために、平板培養してから２４時間後に、前駆細胞をＳＦＭ（ＩＧＦ−Ｉ含有または非含有）に切り替え、実験分析の７日前に、これらの条件下で成長させた。
８．あるいは、高濃度化されたラットの中枢のグリア−４（Ｇｌｉａ−４,ＣＧ４）前駆細胞系を用いて、Ｂ−１０４神経芽細胞腫細胞系由来の３０％調整培地が追加された基礎培地（ＤＭＥＭ、以下を含む；２ｍＭグルタミン、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、ビオチン（４０ｎＭ）、インスリン（１μＭ）、および、Ｎ１）中で維持してもよい。分化を誘導するために、ＣＧ４細胞の培地を、１％ウシ胎仔血清（２日間後に除去した）、および、インスリン（５００ｎＭ）を含む基礎培地に切り替えた。Ａ２Ｂ５、および、ＭＢＰ免疫反応性を用いて、未成熟の培養物および成熟した培養物それぞれにおいて、９５％を超えて高濃度化されたことを確認した。

ラット／マウス培養物の化合物での処理：
１．細胞を１０,０００〜１５,０００細胞／ウェルで２４ウェルのＰＤＬでコーティングされたプレートに置き、細胞をマイトジェン（１０ｎｇ／ｍｌ）の存在下で一晩培養した。
２．マイトジェンの存在下で：
ａ．次の日、古い培地を除去し、新しい培地（マイトジェン含有）中で化合物を添加した。
ｂ．化合物の用量反応の評価は、６種の異なる濃度（１０μＭ、１μＭ、１００ｎＭ、１０ｎＭ、１ｎＭ、および、０.１ｎＭ）で行われた；
ｃ．各化合物濃度に対して３連のウェルで実験した。
３．マイトジェンの非存在下で：
ａ．次の日、古い培地を除去し、新しい培地（マイトジェン非含有）中で化合物を添加した。
ｂ．化合物の用量反応の評価は、６種の異なる濃度（１０μＭ、１μＭ、１００ｎＭ、１０ｎＭ、１ｎＭ、および、０.１ｎＭ）で行われた；
ｃ．各化合物濃度に対して３連のウェルで実験した。
４．実験分析で使用する７日前に、処理した細胞を培養した。

ヒト希突起膠細胞培養
細胞の調製：
１．ヒトニューロスフェア（Ｅ１９.５−Ｅ２２ヒト胎児皮質から回収された）を、前駆培地：ＰＤＧＦ、および、ＦＧＦが追加されたＤＭＥＭ／Ｆ１２（１００μｇ／ｍｌトランスフェリング、３０ｎＭトリヨードチロニン、２０ｎＭヒドロコルチゾン、２０ｎＭプロゲステロン、１０ｎＭビオチン、１×微量元素、３０ｎＭセレン、６０μＭプトレシン、０.１％ＢＳＡ、５Ｕ／ｍｌペンストレップ、２５μｇ／ｍｌインスリン）で２週間培養した。
２．２０Ｕ／ｍｌパパインを３７℃で３０〜５０分間用いてニューロスフェアを解離した。
３．細胞を、５０,０００〜１００,０００細胞／ウェルの密度で、ＰＤＬでコーティングされた培養皿で、ＰＤＧＦ／ＦＧＦを含む前駆培地中で平板培養し、３７℃、５〜６％ＣＯ₂でインキュベートした。
４．４８時間ごとに培地と成長因子を補充した。

ヒト培養物の化合物での処理：
１．平板培養の２４〜４８時間後に、古い培地を除去し、新しい培地（マイトジェン含有）に化合物を添加した。
２．化合物の用量反応の評価は、３〜６種の異なる濃度（１０μＭ、１μＭ、１００ｎＭ、１０ｎＭ、１ｎＭ、および、０.１ｎＭ）で行われた。
３．各化合物濃度に対して３連のウェルで実験した。
５．実験分析で使用する７日前に、処理した細胞を培養した。

ラット／マウス／ヒト希突起膠細胞に特異的な免疫染色：
化合物と接触させた後、希突起膠細胞に特異的な抗体を用いて、希突起膠細胞の分化を加速／促進する化合物の能力を評価した（例えば、Ｏ４、Ｏ１またはミエリン塩基性タンパク質の免疫反応性は、化合物で治療した培養物から未処理の培養物までの時間にわたった）。
１．細胞を、ポリ−Ｄ−リシンで処理した４−ウェルのチャンバースライドで、５×１０
³〜２０×１０³細胞／ウェルで平板培養し、上述のようにして成長させた。ＰＤＧＦおよびＦＧＦ非含有でのインビトロでの毎日の測定に従って、細胞の分化の程度が高まるにつれて希突起膠細胞群を連続的に染色した。
２．３７℃で３０分間の生染色を用いて、希突起膠細胞の段階に特異的な細胞表面マーカー（例えばＡ２Ｂ５、Ｏ４、および、Ｏ１など）の表現を検出した。
３．その後、細胞を、４％パラホルムアルデヒドで、室温で１０分間で固定した。
４．固定染色手法を用いて、希突起膠細胞の段階に特異的な細胞表面マーカー（例えばミエリン塩基性タンパク質、ＭＢＰなど）の表現を検出した。
５．ＰＢＳでリンスした。
６．１×ＰＢＳで希釈した０.１％トリトン／０.０１％ＮａＡｚを室温で１０分間、浸透させた。

７．抗体希釈緩衝液（０.１％トリトン−Ｘ１００、および、１％ＩｇＧ非含有ウシ血清アルブミン；抗体を希釈するのにも用いた）中の５〜１０％ヤギ血清で、室温で１５分間ブロックした。
８．抗体希釈緩衝液で希釈した一次抗体を添加した。
９．穏やかに揺らしながら、４℃で一晩インキュベートした。
１０．次の日、ＰＢＳで１×５分間、続いて３×１５分間（それぞれ室温で）リンスした。
１１．適切な二次抗体と共に、室温で４５分間インキュベートした。
１２．細胞核を、４,６−ジアミジノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ）を用いて、室温で１５分間染色した。
１３．ＰＢＳで数回リンスし、蛍光顕微鏡を用いて評価した。
１４．以下の条件を、長時間かけて、さらに異なる化合物用量で比較した：ＰＤＧＦ／ＦＧＦ単独、ＳＦＭ単独、ＳＦＭ−ＩＧＦ１単独、ＰＤＧＦ／ＦＧＦと化合物、ＳＦＭと化合物。

ラット／マウス／ヒトのブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）免疫染色：
化合物が細胞増殖を促進しないことを確認するために行われた。
１．希突起膠細胞の前駆細胞を１０μＭのＢｒｄＵで２０時間標識し、次に、７０％エタノール、または、４％パラホルムアルデヒドのいずれかで固定した。
２．ＰＢＳでの洗浄を３回はさんで、ビオチン化したマウス抗ＢｒｄＵ、および、ストレプトアビジン−ペルオキシダーゼで連続的に細胞をインキュベートした。
３．ＤＡＢを用いてＢｒｄＵ免疫反応性の比色的な可視化を行ない、総細胞数をカウンターを用いて評価した（染色はヘマトキシリン）。
４．２回の独立した観察でＢｒｄＵ免疫陽性細胞を計数した。

ラット／マウス／ヒト培養物の画像解析：蛍光顕微鏡を用いて、化合物と接触させた後の希突起膠細胞の分化の程度を定量した。この分析により、選択的アゴニストが、乏突起膠細胞の分化を加速／促進することが示された。
１．手動での細胞の計数：各実験条件あたり４ヶ所のフィールドをランダムに選択し、各フィールドで５００〜６００個の細胞を計数した。ＤＡＰＩ陽性細胞（総細胞数）細胞に対するＭＢＰ（またはＯ４）免疫陽性細胞（ミエリン鞘を有する、または有さない成熟したプロセスで生産された細胞）のパーセンテージを、コントロールと薬物で処理した群とで比較した。
２．自動の細胞の計数：蛍光顕微鏡を用いて、化合物と接触させた後の希突起膠細胞の分化の程度を定量した。６ヶ所のフィールド／ウェルをランダムに選択して、総個体群（〜８〜１５×１０³細胞を計数した／ウェル）のうちの分化している乏突起膠細胞の数を評価した。免疫蛍光法の画像は、ツァイス・アキシオカムＨＲｃ（Ｚｅｉｓｓ ＡｘｉｏＣａｍ ＨＲｃ）を備えたツァイス・アキシオビジン（Ｚｅｉｓｓ ＡｘｉｏＶｉｓｉｏｎ
）デジタルイメージングシステムを用いて、上記顕微鏡に冷却したＣＣＤカメラを連結して得た。全ての顕微鏡のイメージングパラメーターは、細胞の免疫蛍光強度の解析のための画像が得られるように設定された。全ての細胞（ＤＡＰＩで核染色された）に対するＭＢＰ陽性（分化した）細胞のパーセンテージを、コントロールと薬物で処理した群とで比較した。このイメージング条件下では、細胞の自己蛍光は検出できなかった。
３．ヒト希突起膠細胞の分化の分析：Ｏ４免疫陽性細胞／ウェルを手動で総数した（二極、および、多極）。

ラット／マウス／ヒトの定量ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）：化合物で誘導されたＰＰＡＲデルタ経路の活性化、および、希突起膠細胞の成熟の程度を評価するために行なわれた（ｍＲＮＡレベルの変化）。
１．トリゾール（ＴｒｉＺｏｌ）試薬を用いてトータルＲＮＡを、培養した乏突起膠細胞から抽出した。
２．その後、ｍＲＮＡをＲＮアーゼ非含有ＤＮアーゼで処理し、再度精製し、次に、ＲＴ反応（クロンテック（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）のＰＣＲキットのためのアドバンテージＲＴ（Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＲＴ））を用いてｃＤＮＡテンプレートに変換した。
３．ＳｙｂｒグリーンＰＣＲマスターミックス（Ｓｙｂｒ Ｇｒｅｅｎ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ）を用いてＰＰＡＲデルタ経路の構成要素の転写表現を定量した。
４．１８ＳリボゾームＲＮＡプライマー／プローブミックス（１８６ｂｐの産物生成物）をＴａｑｍａｎ２ＸＰＣＲマスターミックスに懸濁し、これを、インターナルコントロールとして用いた。
５．定量ＰＣＲは、リアルタイムＴａｑｍａｎ^TM技術（Ｇｉｂｓｏｎ等、１９９６年）を用いて、モデル７７００配列検出システム（アプライド・バイオシステムズ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）、フォスターシティー、カリフォルニア州）を用いて行なった。
６．配列検出システムソフトウェア・バージョン１.９１を用いて結果を解析した。

ラットＥＬＩＳＡ分析：化合物で誘導されたＰＰＡＲデルタ経路の活性化、および、希突起膠細胞の成熟の程度を評価するために行われた（タンパク質レベルの変化）。
１．プレートをＰＢＳで洗浄し、次に、氷上で維持した。氷冷した溶解緩衝液（トリス５０ｍＭ、ｐＨ７.４、ＭｇＣｌ₂ ２ｍＭ、ＥＤＴＡ１ｍＭ、β−メルカプトエタノール５ｍＭ、ノニデット（Ｎｏｎｉｄｅｔ）Ｐ−４０ １％、プロテアーゼ阻害剤カクテル（ロシュ（Ｒｏｃｈｅ））：１錠／５０ｍｌ）２００μｌを各ウェルに添加した。
２．ピペットを上下させて用いることによって細胞を溶解させ、２０００ｒｐｍで、４℃で５分間プレートを回転させた。上清をすぐ使用できるようにした。
３．標準コントロールおよびサンプル５０μｌをウェルにピペットで入れた。
４．ＭＢＰ分析緩衝液５０μｌを各ウェルに添加した。
５．回転式マイクロプレート振盪機で、５００〜７００ｒｐｍで撹拌してウェルを室温で２時間インキュベートした。
６．ＭＢＰ抗体−ビオチン結合体１００μｌを各ウェルに添加した。
７．ウェルを、回転式マイクロプレート振盪機で５００〜７００ｒｐｍで撹拌して室温で１時間インキュベートした。

８．洗浄溶液でウェルを５回洗浄した。吸収材上でプレートを逆転させ水気を切って乾燥させた。
９．ストレプトアビジン−酵素結合体の濃縮物を、ＭＢＰ ＥＬＩＳＡ分析緩衝液で１：５０に希釈した。（分析で使用する直前に希釈しなければならない）。
１０．ストレプトアビジン−酵素結合体の溶液１００μｌを各ウェルに添加した。
１１．回転式マイクロプレート振盪機で、５００〜７００ｒｐｍで撹拌してウェルを室温で３０分間インキュベートした。
１２．洗浄溶液でウェルを５回洗浄した。吸収材上でプレートを逆転させ水気を切って乾燥させた。
１３．ＴＭＢクロモゲン溶液１００μｌを各ウェルに添加した。
１４．回転式マイクロプレート振盪機で、５００〜７００ｒｐｍで撹拌してウェルを室温で１０〜２０分間インキュベートした。直射日光に触れないようにした。
１５．停止溶液１００μｌを各ウェルに添加した。
４５０ｎＭに設定されたマイクロプレートリーダーを用いて、３０分間以内にウェル中の溶液の吸光度を読み取った。

インビボでのコンセプトモデルの証明
病巣の損傷：（化合物がミエリンの無傷な状態を保護するかどうか、または、再ミエリン化の速度を促進／強化するかどうかを評価するために用いられた）。
１．７週齢のラットに自由に餌と水を摂取させ、実験で使用する前に最低４日間順応させた。
２．外科手術の前に、各動物の重さを量った。次に、ケタミン（１００ｍｇ／ｍｌ）とキシラジン（２０ｍｇ／ｍｌ）とを１.８：１の比率で併用してラットを麻酔した。外科手術の前に、ラットの腹腔内に０.１５ｍｌ／１８０ｇ体重の麻酔剤の溶液を注射した。ＩＡＣＵＣガイドラインに従って、外科手術のために無菌状態で動物を準備した。全ての外科機器をオートクレーブした。毛を耳の間で挟み、この領域をベタダインでこすり、滅菌生理食塩水で洗い、最後に予め包装された滅菌アルコール綿棒で拭いた。
３．外科手術のために、ラットを、頭部を安定して固定されるように設計された小動物用の定位機器にその腹面を置いた。ＳＤラットの頭蓋の位置がフラットになるように示されているため、切歯のバーは、常に−３.９ｍｍに設定された。
４．耳の間の頭蓋を覆う皮膚（予め毛を剃った）に切開術を施した。
５．骨の小さい領域（直径０.７５ｍｍ）に、以下の座標：ラムダからＡＰ−１.８、ＭＬ−３.１に穴を開けた。

６．骨を除去し、ラットの右の尾側の小脳脚、ＤＶ−７.１ｍｍに、ハミルトン（Ｈａｍｉｌｔｏｎ）μｌ注射器および注射針によって２μｌのエチジウムブロマイド、リゾレシチンまたはＳＩＮ−１を２分かけて注射した。あるいは、脊髄、脳梁または皮質に注射した。
７．さらに２分間、注射針をそこに留置した。
８．注射針を引き抜いた後、切開部を縫合した。
９．各ラットの後肢に、ブプレノルフィン０.００３ｍｇを筋肉内注射した。
１０．ラットを意識が回復するまで暖かい棚に置いた。意識が回復したら、それらを飼育ケージに戻した。ラットが互いの縫合糸を引っ張り合うと予想されるため、１ケージあたりのラット数は、２匹以下とした。
１１．マウスを用いて、類似の手法も行なわれた。

ラットの実験的アレルギー性脳脊髄炎（ラットＥＡＥ）病気モデル：
実験的アレルギー性脳脊髄炎（ＥＡＥ）は、感染しやすい動物で、脊髄ホモジネート全体、または、成分（ミエリン塩基性タンパク質）のいずれかで感作させた後に発症する神経系のＴ細胞介在の自己免疫疾患である。ＥＡＥげっ歯類モデルは、ＭＳ患者で観察された脳および脊髄の炎症を研究するのに適したツールである。齧歯類において、脊髄全体または脊髄の成分（例えばミエリン塩基性タンパク質）を注射すると、Ｔリンパ球の活性化に基づく自己免疫反応が誘導される。典型的には、臨床疾患は、接触させた後の８〜１０日目ごろに顕著になり、これは、軽度の歩行困難や尾の緊張減退から、完全麻痺や死に至る広範囲の行動異常として観察される。典型的には、体重減少が起こる。生き延びた動物において、自発的な回復が起こるが、多くの運動機能の回復のばらつきを伴う。種、アレルゲンおよび用いられる方法論に応じて、ＥＡＥモデルで試験される動物は、単一の（急性ＥＡＥ）、または、数種の（慢性の再発性ＥＡＥ）の攻撃を受ける可能性がある。数種の治療パラダイムを用いてもよい：選択された薬物または治療の投与は、免疫化の前、非症状出現期中、または、臨床疾患中のいずれでもよい。

動物：
雌ルイス（Ｌｅｗｉｓ）ラット、１６０〜２２０ｇ（チャールス・リバー（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ））

抗原：
モルモット脊髄全体（ハーラン・バイオサイエンス（Ｈａｒｌａｎ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ））、
完全フロイントアジュバントＨ３７Ｒａ［１ｍｇ／ｍｌマイコバクテリウム結核Ｈ３７Ｒａ］（ディフコ（Ｄｉｆｃｏ））。

追加抗原：
マイコバクテリウム結核（ディフコ（Ｄｉｆｃｏ））、
ボルデテラ・ペルツッシス（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ Ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）［加熱死菌］（ディフコ（Ｄｉｆｃｏ））。

抗原の製造：（動物約７２０匹用の）：
１．凍結させたモルモット脊髄を５グラム量った。
２．丸底の遠心管中で、脊髄５ｇを０.９％食塩水（１ｇ／ｍｌ）５ｍｌに添加した。
３．氷上で、ティッシュ−テック（Ｔｉｓｓｕｅ−ｔｅｃｈ）を用いて、組織が完全に破壊されるまで（約５分間）ホモジナイズした。
４．マイコバクテリウム結核（２０ｍｇ／ｍｌ完全フロイントアジュバントＨ３７Ｒａ）２００ｍｇが追加された完全フロイントアジュバントＨ３７Ｒａ（１０ｍｌ）を添加した。
５．１８ゲージのエマルジョンニードルを備えた１０ｍｌ注射器に吸引させることによって、遠心管からホモジネート／アジュバントを抽出した。
６．２つの３０ｍｌガラス製注射器の間で、材料が注射針を通過させることが継続しにくくなるまで乳化した。（約５分間｛油相と水相とは分離しないようにしなければならない｝）。
７．即座に使用するか、または、必要になるまで氷上で維持した（３０分間を超えない）（凍結させない）。

プロトコール
１．雌ルイスラット（チャールス・リバー）に自由に餌と水を摂取させ、実験で使用する前に最低３日間順応させた。
２．まず、体重１６０および２２０グラムのラットで、５％イソフルラン（アーラン（Ａｅｒｒａｎｅ）、フォートドッジ）、３０％Ｏ₂、７０％Ｎ₂Ｏで２〜５分間誘導した。
３．次に、ラットを、循環水で加熱する毛布（ゲイマー（Ｇａｙｍａｒ））上で（背面を上にして）、麻酔ガスの自発呼吸のためのノーズコーン中に置いた。イソフルランを２％に減少させた。
４．抗原または生理食塩水のいずれかの２回の皮下注射（各０.１ｍｌ）を、後肢の腹側表面に与えた。
５．ノーズコーンから動物を離し、重さを量り、番号を付けた。
６．ラットを麻酔から覚醒させ、それぞれのケージに入れた。
７．動物を、ＥＡＥ誘導の兆候に関して毎日観察した（以下の基準を参照）。

ステージ：０ 正常
ステージ：１ 異常なゲート、および、尾の緊張減退
ステージ：２ 後肢の片方または両方の軽度だが明確な衰弱
ステージ：３ 後肢の片方または両方の重度の衰弱、または、軽度の運動失調
ステージ：４ 重度の対不全麻痺、および、最小の後肢の動き
ステージ：５ 後肢の動きなし、および、対麻痺
ステージ：６ 自発的な動きがない瀕死状態、および、呼吸機能の障害。前肢の関与の程度の増加、および、尿および便失禁が起こる場合もある
ステージ：７ 死亡。

免疫化の１０日後に治療を開始した。このモデルにおける疾患の症状は、典型的には、接触の１０〜１１日後に現れるため、このタイムポイントが、ＭＳの急性発症の初期のフェーズを示すと考えることができる。これは、このようにして治療開始を遅らせることで、従来用いられてきた接触時または接触の前に薬物が投与されるプロトコールよりも厳密に、臨床症状を模擬していると判断されている（Ｔｅｉｔｅｌｂａｕｍ Ｄ.等，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ １９９９年；９６：３８４２〜３８４７、および、Ｂｒｏｄ Ｓ．Ａ.等，Ａｎｎ Ｎｅｕｒｏｌ ２０００年；４７：１２７〜１３１）。

以下の本明細書で用いられる化合物の実施例によって本発明をさらに説明するが、これらは説明のために提供されるのであって、本発明の範囲を限定するものではまったくない。

合成例
一般的な市販の試薬と溶媒を入手時のまま用いた。¹Ｈ ＮＭＲスペクトルを、バリアン（Ｖａｒｉａｎ）のマーキュリー・プラス（ＭｅｒｃｕｒｙＰｌｕｓ）−３００（３００ＭＨｚ）、または、バリアンのユニティ・イノーヴァ（Ｕｎｉｔｙ Ｉｎｏｖａ）（４００ＭＨｚ）スペクトロメーター（指定通りに）で記録した。プロトンの化学シフトは、内部標準テトラメチルシラン（０.０ｐｐｍ）に対する相対値（δｐｐｍ）で報告した。ＭＳ（ＬＣ−ＭＳ）データは、マイクロマス（Ｍｉｃｒｏｍａｓｓ）のＬＣＴ飛行時間型マススペクトロメーターを用いて、エレクトロスプレーイオン化、および、５分間のデータ捕捉時間（ｍ／ｚ１００〜１０００）で得た。ＬＣ（ＬＣ−ＭＳ）は、ハイパーシル（Ｈｙｐｅｒｓｉｌ）Ｃ１８カラム（４.６×５０ｍｍ、３.５μ）（（Ａ）Ｈ₂Ｏ中の０.１％ＴＦＡ、および、（Ｂ）ＡＣＮ中の０.１％ＴＦＡの移動相を使用、濃度勾配は、５％〜１００％Ｂを３分間かけて、続いて（Ｂ）１００％を２分間）を用いて行われた。あるいは、エレクトロスプレー源を備えたプラットフォームＬＣ−ＭＳを、ＨＰ１１００ＬＣシステムと共に、インラインＨＰ１１００ＤＡＤ検出、および、セデックス（ＳＥＤＥＸＥＬＳ）検出を用いた２.０ｍｌ／分、２００μＬ／分のＥＳＩ源へのスプリットで稼働させて用いてもよい。ルナ（Ｌｕｎａ）Ｃ１８（２）カラム（３０×４.６ｍｍ、３μ）が用いられた（濃度勾配は、４.５分間かけて５％〜９５％Ｂ、移動相は、（Ｂ）Ｈ₂Ｏ中の０.１％ギ酸、および、ＡＣＮ中の０.１％ギ酸）。ＨＰＬＣ精製は、バリアンのプロスター（ＰｒｏＳｔａｒ）システムで、逆相Ｃ１８カラムを用いて行った（直線状の濃度勾配は、０.１％トリフルオロ酢酸を含むＡＣＮ／Ｈ₂Ｏを用いた）。マイクロ波合成はパーソナル・ケミストリー・スミスクリエーター（Ｐｅｒｓｏｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｓｍｉｔｈｃｒｅａｔｏｒ）マイクロ波反応システムを用いて、２または５ｍＬの反応装置容器を用いて行われた。

実施例１

中間体：［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−酢酸エチルエステル
４−トリフルオロメチル−ベンゼン−チオアミド（１.８４５ｇ、９ｍｍｏｌ）のエタノール（１５ｍＬ、２００プルーフ）の溶液に、エチル−４−ブロモ−３−オキソ−ペンタノエート（２.０７ｇ、９ｍｍｏｌ）を添加した。この溶液を密封し、溶液をパーソナル・ケミストリー^TM高周波レンジで１７０℃に温め、この温度で２０分間撹拌した。得られた溶液を室温に冷却し、減圧下で濃縮し、残留物をフラッシュクロマトグラフィーで精製し（ヘプタン中の３０％酢酸エチル／１０％ジクロロメタンで溶出）、表題の化合物を白色の固体として得た（１.４ｇ）。
MS (ESI) m/z 330 (M+H); H1 NMR (CDCl₃) δ 1.87 (bs, 1H), 2.49 (s, 3H), 4.86 (s, 2H), 7.67 (d, J=8Hz, 2H), 8.02 (d, J=8Hz, 2H)。

実施例２

中間体：４−（２−ヒドロキシ−エチル）−５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）チアゾール
水素化リチウムアルミニウム溶液（５.３ｍＬ、１ＭＴＨＦ溶液）を冷却し（０℃）、［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−酢酸エチルエステル（実施例１、１.４ｇ、４.２５ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（１５ｍＬ）溶液を添加した。添加が完了したら、冷却槽を取り外し、２時間撹拌した。この溶液を５℃に冷却し、次に、水（０.２ｍＬ）、続いて ＮａＯＨ溶液（０.２ｍＬ、５Ｍ水溶液）、および、水（０.２ｍＬ）を滴下して添加した。得られた混合物を酢酸エチルで希釈し、次に、セライトのパッドでろ過した。固体をジクロロメタンで洗浄し、次に、合わせたろ液を減圧下で濃縮した。残留物をフラッシュクロマトグラフィーで精製し（ヘプタン中の３０％酢酸エチル４０％ジクロロメタンで溶出）、表題の化合物を黄色の固体として得た（０.８７９ｇ）実施例１の化合物を出発原料として用いて、表題の化合物を得た。
MS (ESI) m/z 288 (M+H); H1 NMR (CDCl₃) δ 2.44 (s, 3H), 2.91 (t, J=7Hz, 2H), 3.62 (t, J=6Hz,1H), 4.01 (dt, J=7, 6Hz, 2H), 7.66 (d, J=8Hz, 2H), 7.96 (d, J=8Hz, 2H)。

実施例３

中間体：４−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イルエトキシ］−安息香酸メチルエステル
４−（２−ヒドロキシ−エチル）−５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）チアゾール（実施例３、２８８ｍｇ、１.０ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（３ｍＬ）の溶液に、４−ヒドロキシ−安息香酸メチルエステル（１６７ｍｇ、１.１ｍｍｏｌ）、続いてトリフェニルホスフィン（２８８ｍｇ、１.１ｍｍｏｌ）を添加した。この溶液に、アゾジカルボン酸ジエチル（１７４μＬ、１.１ｍｍｏｌ）を滴下して添加した。添加が完了したら、得られた赤い溶液を２０分間撹拌した。減圧下で濃縮し、残留物をフラッシュクロマトグラフィーで精製し（ヘプタン中の１５％酢酸エチル／１５％ジクロロメタンで溶出）、表題の化合物を白色の固体として得た。（４１０ｍｇ）。
MS (ESI) m/z 422 (M+H); H1 NMR (DMSO) δ 2.51 (s, 3H), 3.19 (t, J=7Hz, 2H), 3.80
(s, 3H), 4.40 (t, J=7Hz, 2H), 7.05 (d, J=9Hz, 2H), 7.83 (d, J=8Hz, 2H), 7.88 (d, J=8Hz, 2H) 8.05 (d, J=8Hz, 2H)。

実施例４

中間体：４−｛２−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−エトキシ｝−安息香酸ヒドラジド
メタノール（３ｍＬ）中の４−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イルエトキシ］−安息香酸メチルエステル（実施例４、４１０ｍｇ、１ｍｍｏｌ）の懸濁液に、無水ヒドラジン（０.３２ｍｌ、１０ｍｍｏｌ）を添加した。得られた混合物を６０℃に温め、この温度で６６時間撹拌した。得られた溶液を室温に冷却し、３滴の水を添加した。沈殿物ろ過し、エーテルで洗浄し、表題の化合物を得た（２７９ｍｇ）。
MS (ESI) m/z 422 (M+H); H1 NMR (DMSO) δ 2.51 (s, 3H), 3.17 (t, J=7Hz, 2H), 4.36
(t, J=7Hz, 2H), 4.38 (bs, 2H), 6.98 (d, J=9Hz, 2H), 7.77 (d, J=9Hz, 2H), 7.83 (d, J=8Hz, 2H) 8.06 (d, J=8Hz, 2H) 9.58 (bs, 1H)。

実施例５

５−（４−｛２−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−エトキシ｝−フェニル）−３Ｈ−［１,３,４］オキサジアゾール−２−オン
ジクロロメタン（４ｍＬ）中の４−｛２−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−エトキシ｝−安息香酸ヒドラジド（実施例４、２７６ｍｇ、０.６５ｍｍｏｌ）の懸濁液に、ピリジン（１０４μＬ、１.３ｍｍｏｌ）、続いてクロロギ酸フェニル（０.８８μＬ、０.７１ｍｍｏｌ）を添加した。得られた混合物を、全ての出発原料が消費されるまで（ＴＬＣ分析により）室温で撹拌した。この混合物を酢酸エチルで希釈し、水、続いてブラインで洗浄し、ＭｇＳＯ₄上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残留物をアセトニトリル（５ｍＬ）に溶解させた。この混合物に、ＤＢＵ（１０６μＬ、０.７１ｍｍｏｌ）を添加した。得られた溶液を密封し；それをパーソナル・ケミストリー^TM高周波レンジで１７０℃に温め、この温度で１２０分間撹拌した。反応液を室温に冷却し、酢酸エチルで希釈し、１ＭのＨＣｌ溶液（または飽和ＮａＨ₂ＰＯ₄溶液）で洗浄し、ＭｇＳＯ₄上で乾燥させ、濃縮した。得られた残留物をジクロロメタンで数回粉砕し、表題の化合物を黄褐色の固体として得た（１３７ｍｇ）。（密封した試験管中で、１４０℃で、酢酸エチルから再結晶化した）。
MS (ESI) m/z 448 (M+H); H1 NMR (DMSO) δ 2.51 (s, 3H), 3.19 (t, J=7Hz, 2H), 4.40
(t, J=7Hz, 2H), 7.10 (d, J=8Hz, 2H), 7.70 (d, J=8Hz, 2H), 7.83 (d, J=8Hz, 2H) 8.05 (d, J=8Hz, 2H) 12.41 (bs, 1H)。

Claims (1)

1. ５−（４−｛２−［５−メチル−２−（４−トリフルオロメチル−フェニル）−チアゾール−４−イル］−エトキシ｝−フェニル）−３Ｈ−［１,３,４］オキサジアゾール−２−オンである化合物。