JPH01256379A - トリプトファナーゼ生産菌の培養方法 - Google Patents

トリプトファナーゼ生産菌の培養方法

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JPH01256379A
JPH01256379A JP8613688A JP8613688A JPH01256379A JP H01256379 A JPH01256379 A JP H01256379A JP 8613688 A JP8613688 A JP 8613688A JP 8613688 A JP8613688 A JP 8613688A JP H01256379 A JPH01256379 A JP H01256379A
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JP
Japan
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tryptophanase
indole
water
tryptophan
culture
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Pending
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JP8613688A
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English (en)
Inventor
Susumu Nishiguchi
進 西口
Shigeru Izumida
泉田 茂
Yukihiro Sogabe
曽我部 行博
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Toyobo Co Ltd
Original Assignee
Toyobo Co Ltd
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Publication date
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明は、トリプトファナーゼ生産菌の培養方法に関す
る。
(従来の技術) トリプトファナーゼは、アミノ酸製剤、輸液などの医薬
品や工業原料として有用なトリプトファンを製造するた
めに用いられている。このトリプトファナーゼは、ジ−
トリプトファンからピルビン酸、インドールおよびアン
モニアを生成する反応(α、β脱離反応)を触媒する酵
素として知られ。
上記トリプトファンの製造は、この逆反応を利用して行
われる。トリプトファナーゼはインドールおよびL−セ
リンから、L−トリプトファンを合成する反応(β置換
反応)もまた触媒し、L−トリプトファンの合成が行わ
れ得る。
上記トリプトファナーゼは大腸菌、枯草菌などの多くの
微生物により生産されることが知られている。トリプト
ファナーゼは誘導酵素であるため。
微生物にトリプトファナーゼを生産させるには。
L−)リブトファンを培養培地に存在させる必要がある
。しかし、L−トリプトファンを培地中に存在させると
、生産されたトリプトファナーゼにより該L−)リブト
ファンが加水分解されてインドールを生じる。このイン
ドールはトリプトファナーゼ生産を抑制するばかりでな
く微生物菌体の増殖をも抑制する。このように、インド
ールが培養液中に存在すると、微生物はトリプトファナ
ーゼをある程度の量以上に誘導・生産することができな
い。
そのため、インドールを培養液中から除去する方法の開
発が試みられている。
微生物菌体の増殖を抑制するインドールを培養液中から
除去する方法としては、培地または培養液に界面活性剤
を添加する方法(特公昭第51−6235号公報)が知
られている。しかし、この方法を用いると、培地または
培養液中に存在する界面活性剤が滅菌または培養時に発
泡するので、この発泡を抑えるために多量の消泡剤を添
加することが必要である。さらに、トリプトファナーゼ
を回収した後の培養液中に含有される界面活性剤を処理
するための設備が必要であり、該培養液を廃液として処
理し、排水するのにかなりの費用がかかる。
そのため、界面活性剤の添加に代わるインドールの除去
方法の開発が望まれている。
(発明が解決しようとする課題) 本発明は上記従来の課題を解決するものであり。
その目的とするところは、トリプトファナーゼ生産菌を
有利に培養する方法を提供することにある。
本発明の他の目的は、トリプトファナーゼ生産菌の培養
液からL−トリプトファンの加水分解によって生じるイ
ンドールを効果的に除去することにより、該トリプトフ
ァナーゼ生産菌を有利に培養する方法を提供することに
ある。
(課題を解決するための手段) 本発明のトリプトファナーゼ生産菌の培養方法は、ジ−
トリプトファンを含む培地液中でトリプトファナーゼ生
産菌を培養する方法において、培養液中にインドール吸
着能を有する水不溶性高分子化合物を存在させて、L−
)リプトファンが加水分解されて生じるインドールを該
水不溶性高分子化合物に吸着させることを特徴とする。
本発明に使用されるトリプトファナーゼ生産菌は特に限
定されず、トリプトファナーゼを生産する微生物であれ
ばいずれも使用することができる。
このようなトリプトファナーゼ生産菌としては。
例えば、プロテウス(Proteus )属、エシェリ
ヒア(Escherichia )属、エルビニア(E
rwinia )属、アエロバクタ−(Aerobac
ter)属、アルカリ’y’ネス(Alca11■旦懸
−)属、アクロモバクタ−(Achromobacte
r)属、シュードモナス(Pseudomonas )
属などの微生物が用いられる。これらの微生物としては
例えば、プロテウス レトゲリ(m神馬り匹旦組1) 
IFO13501、プロテウス ミラビリス(Prot
eus  m1rabilis ) ATCC1529
0,エシェリヒア コリ (Hscherichia 
 co旦> IFO12734。
エシェリヒア コリATCC13676、エルビニア 
ヘルビコラ(Erwinia  herbicola 
)  ATCC21433+エルビニア ヘルビコラI
F012686 、アエロバクタ−アエロバクタ(Ae
robacter  邦μmす漫−)八TCC7256
、およびシュードモナス パールシリダ(Pseudo
monas  ■シミ1r−1コ厚1−j−リシ孕−)
八TCC490が挙げられる。
本発明に用いられるインドール吸着能を有する水不溶性
高分子化合物としては2例えば、ポリエチレン、ポリプ
ロピレン、ポリウレタン、ポリアクリル酸エステルなど
の重合体、またはスチレン−ジビニルベンゼン、フェノ
ール−ホルマリンなどの共重合体が用いられる。これら
水不溶性高分子化合物の培地または培養液への添加量は
、用いる水不溶性高分子化合物およびトリプトファナー
ゼ生産菌の種類によって異なるが2通常、培地または培
養液に対して1−10(h/ν)%である。これらの水
不溶性高分子化合物は1通常、あらかじめ培地に添加す
ることによって培養の初期から存在させるが、数回に分
けて培養液中に添加してもよい。
水不溶性高分子化合物の形状は特に制限されず。
どのような形状のものでも使用できる。好ましくは直径
1〜10mmのビーズ状の粒子が用いられる。
本発明方法によりトリプトファナーゼ生産菌を培養する
には、まず、上記のようなトリプトファナーゼ生産菌を
培地に植菌する。培地は、L−トリプトファンおよび上
記インドール吸着能を有する水溶性高分子化合物を含有
すること以外は特に格別である必要はなく2通常の炭素
源、窒素源、無機塩類、有機栄養物質を含有する培地が
用いられる。上記L−トリプトファンの濃度はトリプト
ファナーゼを誘導するのに十分な量であればよく1通常
、0.1〜1.5(w/v)%、好ましくは0.3〜1
 、0 (w/v)%である。
上記炭素源としては、可溶性デンプン、アミロペクチン
、アミロース、デキストリン、グリセロールナトカ用い
られる。コーン、コーンステイープリカー、馬鈴薯、甘
苦などを用いることもできる。窒素源としては、ペプト
ン、酵母エキス、肉エキス、カザミノ酸、大豆粉、コー
ンディスティラーズソリュブルなどが用いられる。無機
塩類としては、  K2HPO41KH2PO4,Ca
CIz、  NaJPO4+(Nl14) ZHPO4
,hsO4・711□0などが用いられる。培養pHは
6.0〜10.0.好ましくは7.0〜9.0.培養温
度は20〜40°C2好ましくは30°C前後であり2
例えば、約24時間好気的に攪拌または振盪しながら培
養を行う。培養により、トリプトファナーゼが上記微生
物菌体内および/または培養液中に蓄積される。培地中
の水不溶性高分子化合物は培養終了後1例えば、沈降分
離などにより容易に分離・除去される。水不溶性高分子
化合物が除去された培養液からは、常法により、トリプ
トファナーゼおよび/またはトリプトファナーゼ生産菌
が回収される。上記除去された水不溶性高分子化合物は
洗浄して再生することにより再利用が可能である。
この洗浄には9例えば、メタノール、エタノールなどの
低級アルコールやアセトンなどが用いられる。
このようにインドール吸着能を有する水不溶性高分子化
合物の存在下に培養を行なうことにより。
増殖が抑制されることなくトリプトファナーゼ生産菌が
培養される。上記水不溶性高分子化合物が存在しない場
合に比べると、トリプトファナーゼが約2〜19倍もの
高生産効率で得られる。
(実施例) 以下に本発明を実施例につき説明する。
災詣■土 水不溶性高分子化合物として、アンバーライトXへロー
フ(ポリアクリル酸エステル樹脂;ロームアンドハース
社)を用いた場合の、トリプトファナーゼ生産菌の増殖
およびトリプトファナーゼの生産性に対する効果を調べ
た。
下記の組成の培地(A)、および該組成からアンバーラ
イ) XAD−7を除いた組成の培地(B)を調製した
上記の培地(A)または(B)の60m1を坂ロフラス
コに入れ、これにトリプトファナーゼ生産菌を1白金耳
植菌し、30°Cにて24時間振盪培養を行った。
トリプトファナーゼ生産菌としては、プロテウスレトゲ
リ IFO13501,エシェリヒア コリATCC1
3676、エシェリヒア コリ IPOL2734およ
びエルビニア ヘルビコラIPO12686を用いた。
培養終了後、各培養液中のトリプトファナーゼ生産量を
下記の方法により測定した。、その結果を表1に示す。
トリプトファナーゼ生産量の測定:培養液を沈降分離す
ることにより水不溶性高分子化合物から分離した。得ら
れた菌体を含む液を10 ml採取し。
遠心分離により集菌した。この菌体を0.1Mリン酸緩
衝液(5mM2−メルカプトエタノール、2mMEDT
A ・2Naおよび0 、12mMピリドキサール−5
゛−リン酸を含有; p87.0)に懸濁した。この懸
濁液を超音波菌体破砕装置(モデルT−A−4280;
海上電機社)で7分間処理し2次いで遠心分離すること
によって上清を得た。この上清のトリプトファナーゼ活
性をE、E、5nellの方法(FEBS Lett、
 66.230−232(1976))に従って測定し
、1分間に1μmoleの0−ニトロチオフェノールを
生成し得る酵素量を1unitとした。
(以下余白) 表1 表1から、水不溶性高分子化合物としてアンバーライ)
 XAD−7を培地に添加した培地(八)を用いた場合
には、無添加の培地(B)の場合に比べて。
トリプトファナーゼが約2〜18倍もの高効率で生産さ
れることがわかる。
実重量I〜 培地(八)のアンバーライト XAD−7の代わりにエ
スバ(ポリウレタン繊維;東洋紡績■)を5%含有する
培地(C)を用い、実施例1に準じてトリプトファナー
ゼ生産菌の増殖およびトリプトファナーゼの生産性に対
する効果を調べた。その結果を表2に示す。
表2 表2から、水不溶性高分子化合物としてエスパを培地に
添加した培地(C)を用いた場合には、無添加の培地(
B)の場合に比べてトリプトファナーゼが約3〜19倍
もの高効率で生産されることがわかる。
比較、拠 培地(A)のアンバーライトXAD−7の代わりに。
インドールを除去するための添加剤として、ノニオン系
界面活性剤であるノニオンMS−230(日本油脂社製
)を5%含有する培地(Il)を用い、実施例1に準じ
てトリプトファナーゼ生産菌の増殖およびトリプトファ
ナーゼの生産性に対する効果を調べた。その結果を表3
に示す。
表3から、ノニオンNS−230を培地に添加した培地
(D)を用いた場合も、無添加の培地(B)の場合に比
べてトリプトファナーゼが約2〜17倍生産されること
がわかった。
(発明の効果) 本発明方法によれば、インドール吸着能を有する水不溶
性高分子化合物を培養液中に存在させることによりイン
ドールが効果的に除去され、トリプトファナーゼ生産菌
が効果的に培養される。さらに、この水不溶性高分子化
合物は培養終了後に固体として培養液から容易に分離さ
れ、再生して再利用することが可能であるので、従来の
界面活性剤を用いる方法のように発泡、廃液の処理など
の問題がない。このような方法でトリプトファナーゼが
大量に生産され、L−トリプトファンを工業規模で効果
的に製造することが可能となる。L−トリプトファンは
、アミノ酸製剤、輸液などの医薬品として、あるいは飼
料への添加物として、各種目的に広く利用される。
以上

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 1、L−トリプトファンを含む培地液中でトリプトファ
    ナーゼ生産菌を培養する方法において、培養液中にイン
    ドール吸着能を有する水不溶性高分子化合物を存在させ
    て、L−トリプトファンが加水分解されて生じるインド
    ールを該水不溶性高分子化合物に吸着させることを特徴
    とするトリプトファナーゼ生産菌の培養方法。
JP8613688A 1988-04-06 1988-04-06 トリプトファナーゼ生産菌の培養方法 Pending JPH01256379A (ja)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5916781A (en) * 1997-01-09 1999-06-29 Daicel Chemical Industries, Ltd. Method for producing D-tryptophan

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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US5916781A (en) * 1997-01-09 1999-06-29 Daicel Chemical Industries, Ltd. Method for producing D-tryptophan

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