JPH02124090A - 植物起源物質の生産方法 - Google Patents
植物起源物質の生産方法Info
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- JPH02124090A JPH02124090A JP1238371A JP23837189A JPH02124090A JP H02124090 A JPH02124090 A JP H02124090A JP 1238371 A JP1238371 A JP 1238371A JP 23837189 A JP23837189 A JP 23837189A JP H02124090 A JPH02124090 A JP H02124090A
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- C12N5/04—Plant cells or tissues
-
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は試Jkii管培養による植物起源物質の製造方
法に関する。
法に関する。
従来の技術および発明が解決しようとする多数の植物起
源物質は医薬品産業(薬剤の主要成分)、化粧品産業(
香料)および食品産’J<フレーバ付与剤および添加物
)のような産業にある経済的価値を有する。これらの物
質は一般に収集又は栽培植物から抽出により製造される
。しかし、この方法には特に植物出発物質の新たな仕入
れ(定期性、安定性、品質など)に関し、多くの不利が
ある。
源物質は医薬品産業(薬剤の主要成分)、化粧品産業(
香料)および食品産’J<フレーバ付与剤および添加物
)のような産業にある経済的価値を有する。これらの物
質は一般に収集又は栽培植物から抽出により製造される
。しかし、この方法には特に植物出発物質の新たな仕入
れ(定期性、安定性、品質など)に関し、多くの不利が
ある。
これらの不利を回Mvる目的で各種代用方法が研究され
た。これらは外産種の未分化組織又は細胞の試験管内培
養方法を含む。この点に関し特願昭57−39778号
明a書を引用IJる。これ1ユセルロースを含有する撹
拌液体培地でカルス培養し、これから活性成分をパラフ
ィン油おJ、び/又は脂肪により抽出することに関する
。又ビソンらの論文(Journal of Hedi
cinal Plant Re5earch1983.
47.164)は浦が蓄積する脂肪相の小滴を栄養培地
に添加することによりカミツレの未分化#i胞のカルチ
ャーから精油を抽出することに関する。しかし、これら
は未分化細胞を使用するので、これらの技術は明確イ1
生成物の製造に限定される。
た。これらは外産種の未分化組織又は細胞の試験管内培
養方法を含む。この点に関し特願昭57−39778号
明a書を引用IJる。これ1ユセルロースを含有する撹
拌液体培地でカルス培養し、これから活性成分をパラフ
ィン油おJ、び/又は脂肪により抽出することに関する
。又ビソンらの論文(Journal of Hedi
cinal Plant Re5earch1983.
47.164)は浦が蓄積する脂肪相の小滴を栄養培地
に添加することによりカミツレの未分化#i胞のカルチ
ャーから精油を抽出することに関する。しかし、これら
は未分化細胞を使用するので、これらの技術は明確イ1
生成物の製造に限定される。
本発明の目的は未分化系の利点を試験管培養の利点と組
み合せることである。
み合せることである。
課題を解決するための手段
このために、本発明方法はニ
ー植物器官を培養培地に移植し、そして油層の下に浸漬
することによりM#不足又は低酸素下に保持する、 ことを特徴とする。
することによりM#不足又は低酸素下に保持する、 ことを特徴とする。
生産物質は植物器官から、培地および/又は油から抽出
することが好ましい。通例の抽出技術はこの目的に使用
できる。本方法の主要な利点は所望物質を生産する植v
A器官の試験管培養Jjよび長期間にわたるこれらの物
質の維持および生産にある。
することが好ましい。通例の抽出技術はこの目的に使用
できる。本方法の主要な利点は所望物質を生産する植v
A器官の試験管培養Jjよび長期間にわたるこれらの物
質の維持および生産にある。
低酸素状態を維持するために使用する油は挿゛介性物質
の可能な損失を回避7ることができ、問題の物質を抽出
できる。
の可能な損失を回避7ることができ、問題の物質を抽出
できる。
本発明の1利点はこの物質を一定かつ+Ir現できる方
法で製造できることである。本発明の別の利点は、植物
によるその場所における通常の生産期間より、植物器官
による物質の生産段階をはるかに長期間持続できること
である。本発明の別の利点はその特異的質的特徴を植物
器官が保有でさることで、これは二次物質を製造できる
未分化II胞カルチャーの場合にはめったにないことで
ある。
法で製造できることである。本発明の別の利点は、植物
によるその場所における通常の生産期間より、植物器官
による物質の生産段階をはるかに長期間持続できること
である。本発明の別の利点はその特異的質的特徴を植物
器官が保有でさることで、これは二次物質を製造できる
未分化II胞カルチャーの場合にはめったにないことで
ある。
この方法で植物器官はH食せずに数ケ月生存するのみで
なく、植物から伝統的抽出方法により製造されるものと
本質的に同−又は同様の精油のような物質をこれらの組
織、培養培地J3よび低酸水油に蓄積を続()る。
なく、植物から伝統的抽出方法により製造されるものと
本質的に同−又は同様の精油のような物質をこれらの組
織、培養培地J3よび低酸水油に蓄積を続()る。
本発明方法は植物器官の生命の維持に関し、組織の生育
および/又は増殖に閏ブるものではない。
および/又は増殖に閏ブるものではない。
しかし程度は低いが場合によっては起こりうる。
植物器官の生存を評価する適当な基準はニー外観基準と
して a)移植組織に色素形成の発現 b)白化又は褐色化外観 一形態学的基準として a)可視的に b) 生化学的試験(染色試験など)による、これによ
り器官の生存能力を評価できる、を含む。
して a)移植組織に色素形成の発現 b)白化又は褐色化外観 一形態学的基準として a)可視的に b) 生化学的試験(染色試験など)による、これによ
り器官の生存能力を評価できる、を含む。
培養植物器官は任意のタイプのものでよく、−部又は全
体として栽培してもよい。例えば、これらは根の断片、
菓又は茎、又は花芽又は開花であってもよい。
体として栽培してもよい。例えば、これらは根の断片、
菓又は茎、又は花芽又は開花であってもよい。
植物又は器官は任意の起源のものでよい、すなわら、
栽培又は収集植物の収穫により得るか、その場合、本方
法は伝統的植物生産の利用を所望TlJ質の生合成J3
よび生産段階の拡大により改良できる、 一ヌは、培養細胞から形成するか、その場合、本方法は
伝統的培養から完全な独立を供する、である。
法は伝統的植物生産の利用を所望TlJ質の生合成J3
よび生産段階の拡大により改良できる、 一ヌは、培養細胞から形成するか、その場合、本方法は
伝統的培養から完全な独立を供する、である。
植物又は植物器官は培地に移植前に浄化してやっかいな
微生物を除去できる。植物又は器官はジャベル水、塩化
水銀、次亜jnn耐酸ルシウム又は次亜塩素酸ナトリウ
ム又は任意の他の浄化剤のような浄化溶液に数分1gJ
浸泊することにより、又は任意の他の化学的又は物理的
手段(×−線、γ線など)により浄化できる。
微生物を除去できる。植物又は器官はジャベル水、塩化
水銀、次亜jnn耐酸ルシウム又は次亜塩素酸ナトリウ
ム又は任意の他の浄化剤のような浄化溶液に数分1gJ
浸泊することにより、又は任意の他の化学的又は物理的
手段(×−線、γ線など)により浄化できる。
使用培地は生産段階で生存に必要な栄り物を植物器官に
供すべきである。この栄養培地は半固体形(水性ゲロー
ス)又は任意には撹拌液体形であって植物器官の培養を
簡略化できる。後者の場合、培養は単に栄養培地に浄化
器官を浸漬し、次いで油フィルムで被覆して表面の変化
を回避することになる。
供すべきである。この栄養培地は半固体形(水性ゲロー
ス)又は任意には撹拌液体形であって植物器官の培養を
簡略化できる。後者の場合、培養は単に栄養培地に浄化
器官を浸漬し、次いで油フィルムで被覆して表面の変化
を回避することになる。
培地は21i官にその生存に必要な要素を常に供給し、
そこから何らかの拡散化合物(拮抗性a5よび/又は所
望の)を取り出すために更新できる。、培地の更新は連
続的又は半連続的でよい。
そこから何らかの拡散化合物(拮抗性a5よび/又は所
望の)を取り出すために更新できる。、培地の更新は連
続的又は半連続的でよい。
同様に培地は生長調節剤の添加又は所望代11産物の生
産を促進できる要素の添加(前駆体の添加)により修正
できる。
産を促進できる要素の添加(前駆体の添加)により修正
できる。
培地はガムボルグj6地、ヘラ−培地、又はムラシゲお
よびスクーグ培地(その組成は第1表に示す)のような
組織の試験管培養に通常使用するタイプの培地であるこ
とが好ましい。本発明による好ましい培地はガムボルグ
培地である。
よびスクーグ培地(その組成は第1表に示す)のような
組織の試験管培養に通常使用するタイプの培地であるこ
とが好ましい。本発明による好ましい培地はガムボルグ
培地である。
植物器官の液留に使用する7111は2つの機能を遂行
できる。すなわち: 最初に低A!fX状態を確保する保存剤として作用覆る
、そして 所望の親油性物質に対し捕集/抽出剤として作用できる
。
できる。すなわち: 最初に低A!fX状態を確保する保存剤として作用覆る
、そして 所望の親油性物質に対し捕集/抽出剤として作用できる
。
油の選択はある基準による。す4丁わらニー低酸素状態
を形成するその能力、すなわち外部酸素を全く又はほと
んど植物器官およびその培地に移行させない、 所望物質に及ぼすその溶解力、 植物器官について毒性のないこと。
を形成するその能力、すなわち外部酸素を全く又はほと
んど植物器官およびその培地に移行させない、 所望物質に及ぼすその溶解力、 植物器官について毒性のないこと。
所望物質を抽出して飽和するようになるので油は定期的
に更新することが好ましく、そのため固体培地は使用で
きるが、固体培地より液体低酸素培地が取扱いが容易で
ある。油は連続的又は半連続的に更新できる。適当な油
は鉱物、右橢体又は植物起源の油、合成油おJ:び保存
剤として作用できる任意の他の油を含む。本発明による
好ましい油はパラフィン油である。油は使用前に脱ガス
し、滅菌する。脱ガス(ま油を真空五に置くことにより
行なうことができ、そこに存在するガスを放出させ、任
意には窒素により置換する。
に更新することが好ましく、そのため固体培地は使用で
きるが、固体培地より液体低酸素培地が取扱いが容易で
ある。油は連続的又は半連続的に更新できる。適当な油
は鉱物、右橢体又は植物起源の油、合成油おJ:び保存
剤として作用できる任意の他の油を含む。本発明による
好ましい油はパラフィン油である。油は使用前に脱ガス
し、滅菌する。脱ガス(ま油を真空五に置くことにより
行なうことができ、そこに存在するガスを放出させ、任
意には窒素により置換する。
植物器官の生存に有害に働くクロロフィルの分解を避け
るために、0〜400ルックスのオーダの低照明を本発
明方法の適用に使用できる。培養温度は18〜35℃の
2I囲でよく、好ましくは25°Cのオーダのものであ
る。
るために、0〜400ルックスのオーダの低照明を本発
明方法の適用に使用できる。培養温度は18〜35℃の
2I囲でよく、好ましくは25°Cのオーダのものであ
る。
植物起源物質の製造に対する本発明方法は断続的に、半
連続的に又は連続的に行なうことができる。
連続的に又は連続的に行なうことができる。
本発明は次間でさらに詳細に説明Jる。例IA、BおJ
:びCはF[に物質、(5よびその評価に使用する基準
に関する。例に先立って泡入に使用jF: i培地の組
成を示ず。
:びCはF[に物質、(5よびその評価に使用する基準
に関する。例に先立って泡入に使用jF: i培地の組
成を示ず。
Oコ 、
例A
ウィキョウの茎の断片を次亜塩素酸カルシウム溶液に数
分浸)白し、無菌蒸留水で完全にすJいで浄化した。次
にこれらの断片は寒天の添加により固化したガムボルグ
培地に移植する。次にこれらは滅菌パラフィン油の添加
により低酸素)に置き、25℃で低照明(200ルツク
ス)に放置する。
分浸)白し、無菌蒸留水で完全にすJいで浄化した。次
にこれらの断片は寒天の添加により固化したガムボルグ
培地に移植する。次にこれらは滅菌パラフィン油の添加
により低酸素)に置き、25℃で低照明(200ルツク
ス)に放置する。
低酸素下に置いたウィキョウ茎と、油を添加しない同じ
栄養培地に置いた同じ茎とを比較して色糸形成の発達を
18週にわたって観察する。
栄養培地に置いた同じ茎とを比較して色糸形成の発達を
18週にわたって観察する。
6週後、低酸素下のすべての茎は白化?!2候を全く示
すことなく尚緑色であるが、一方対照茎はすべて初期白
化現象を示す。30%の対照茎は8週後に酸化又は総体
的白化に侵されるが、低酸素下の茎は同じl#l聞後1
0%だけが、12N後に20%だけが初期白化現象を示
ず。16週に、対照茎は低酸素下の茎の40%(残りは
尚緑色を留めている)が完全に酸化する。18週に、1
00%の対照茎は完全に酸化するが、低酸素下の茎は5
0%だけが完全に酸化し、残りの50%は初1!l]の
白化現象を丞すに過ぎない。最後に6週((、対照茎は
完全な緑色のものはないが、低酸素下の茎は16週後で
も50%は尚完全に緑色である。
すことなく尚緑色であるが、一方対照茎はすべて初期白
化現象を示す。30%の対照茎は8週後に酸化又は総体
的白化に侵されるが、低酸素下の茎は同じl#l聞後1
0%だけが、12N後に20%だけが初期白化現象を示
ず。16週に、対照茎は低酸素下の茎の40%(残りは
尚緑色を留めている)が完全に酸化する。18週に、1
00%の対照茎は完全に酸化するが、低酸素下の茎は5
0%だけが完全に酸化し、残りの50%は初1!l]の
白化現象を丞すに過ぎない。最後に6週((、対照茎は
完全な緑色のものはないが、低酸素下の茎は16週後で
も50%は尚完全に緑色である。
例B
ナツスイセンの花芽を発育の胃なる段階で集める、すな
わち: 段階■:花冠1〜1.51長さ一緑色花弁段階■:花冠
2 cm長さ一花弁の白色化の開始段階■:花冠3 c
m長さ一白色花弁 これらは浄化し、グルコース処理したガムボルグ培地に
移植する。次いでオはパラフィン油を添加して低酸素下
に置く。対照芽に油は添加しない。
わち: 段階■:花冠1〜1.51長さ一緑色花弁段階■:花冠
2 cm長さ一花弁の白色化の開始段階■:花冠3 c
m長さ一白色花弁 これらは浄化し、グルコース処理したガムボルグ培地に
移植する。次いでオはパラフィン油を添加して低酸素下
に置く。対照芽に油は添加しない。
仝休を25℃で低照明(200ルツクス)下に置く。
時間の関数として3つの花芽の酸化の進行を0〜7の点
数で任意に記録する、すなわち0−wI化部分を認めず i=t!:いぎい10%の花弁で花弁の端に酸化の開始 2=10%より多い花弁で花弁の端で酸化の開始3=せ
いぜい10%の花弁で花弁の表出1梢の半分の酸化 4−10%より多い花弁で花弁の表面積の半分の酸化 5−50%より多い花弁で花弁の表面積の半分のhり
(ヒ 6=花の大部分の酸化(80%) 7−花の完全な酸化 パラフィン油に対する抗酸化剤の添加は酸化を有意に減
少しないことは注目すべきである。
数で任意に記録する、すなわち0−wI化部分を認めず i=t!:いぎい10%の花弁で花弁の端に酸化の開始 2=10%より多い花弁で花弁の端で酸化の開始3=せ
いぜい10%の花弁で花弁の表出1梢の半分の酸化 4−10%より多い花弁で花弁の表面積の半分の酸化 5−50%より多い花弁で花弁の表面積の半分のhり
(ヒ 6=花の大部分の酸化(80%) 7−花の完全な酸化 パラフィン油に対する抗酸化剤の添加は酸化を有意に減
少しないことは注目すべきである。
脱ガス油の使用は非−説ガス油に比し有意な差を生じな
い。対照的に、低酸素■に置いた芽と対照芽間には明白
な差がある。
い。対照的に、低酸素■に置いた芽と対照芽間には明白
な差がある。
法例は時間の関数とじでM化度の進行を示す;対照芽は
24日後に完全に酸化するが低lll!2′A下の芽は
4週以上生き残ることがわかる。
24日後に完全に酸化するが低lll!2′A下の芽は
4週以上生き残ることがわかる。
僅かに酸化する。
λ]照芽は7日後に酸化するが、浦の下の芽は完全に酸
化ぼずに28臼まで保持Qきる。
化ぼずに28臼まで保持Qきる。
鯉ぶ
各種植物器官を浄化し、グルコース処理したガムボルグ
培地に移植し、次いでパラフィン+l!I )、’を下
の低耐本下に置き、25℃で低照明(200ルツクス)
に置いた。植物は芳香植物(1)、香料植1!y+ (
II )およびア[17を生産しないが、薬理的又は化
粧用1lllI値を右する非−ト1j発性物買を生産−
」゛る植物(III)である。
培地に移植し、次いでパラフィン+l!I )、’を下
の低耐本下に置き、25℃で低照明(200ルツクス)
に置いた。植物は芳香植物(1)、香料植1!y+ (
II )およびア[17を生産しないが、薬理的又は化
粧用1lllI値を右する非−ト1j発性物買を生産−
」゛る植物(III)である。
これらの試験の結果(よ吹入に示ツ:
種 器官
低酸素下の可
能な生存期間
10〜12週
3〜4週
8・〜10週
8〜10週
10〜12週
カルスの外観
14〜16週
Oc+mum bas
Verbena tr
Pelar(10nilJm
PogostelllOn
rerula tea
um
hylia
CapljajlJm
patchou
anum
ngk。
ba
菓
移VU植物又は器官のタイプに関係なく、低酸素下の生
存は少なくとも1ケ月可能であり、4ケ月間は維持でき
る。
存は少なくとも1ケ月可能であり、4ケ月間は維持でき
る。
例1
浄化し、次いでガムボルグ培地に移植したハツカの葉を
25℃でパラフィン油層下の低酸素下に置く。生存段階
中芳香性化合物の生産は5週にわたって追跡する。ハツ
カの葉は3グループに分tt、実験条件を変えるニ ゲループ△:強照明(2000ルツクス)グループB:
低照明(200ルツクス)グルー102強照明(200
0)ルックスお」、びテルペン前駆体の添加。
25℃でパラフィン油層下の低酸素下に置く。生存段階
中芳香性化合物の生産は5週にわたって追跡する。ハツ
カの葉は3グループに分tt、実験条件を変えるニ ゲループ△:強照明(2000ルツクス)グループB:
低照明(200ルツクス)グルー102強照明(200
0)ルックスお」、びテルペン前駆体の添加。
精油の特徴的化合物、すなわちカルボンの油中の存在を
特に追跡する。油は規[111正しく15日(なに3グ
ループで更新し、定量分析を薄層クロマトグラフィを通
して温度計にJ:り行ない、集めた油に含まれるカルボ
ン川を定量する。結果はガス相クロマトグラフィによる
分析により確証する。
特に追跡する。油は規[111正しく15日(なに3グ
ループで更新し、定量分析を薄層クロマトグラフィを通
して温度計にJ:り行ない、集めた油に含まれるカルボ
ン川を定量する。結果はガス相クロマトグラフィによる
分析により確証する。
吹入は5週にねたり3グループの集めた油のカルボン最
を示す。カルボン吊は新しい移植葉材籾1gについて1
μJで表ねり。
を示す。カルボン吊は新しい移植葉材籾1gについて1
μJで表ねり。
動力学的に最初にカルボン生産のピークを、次いで生産
の下降を、次に28日に新しい蓄積ビークによる回復を
観察する。
の下降を、次に28日に新しい蓄積ビークによる回復を
観察する。
法人1ユ35日後のカルボンの蓄積の増加を示J−(μ
び/グ新材料で)a 丁 :移植菓の初めのカルボン含が H:35日後曲に蓄積したカルボン ■:残留組織の最終カルボン含量 JV : 35日後のカルボンの11つ加(■→−■−
1)。
び/グ新材料で)a 丁 :移植菓の初めのカルボン含が H:35日後曲に蓄積したカルボン ■:残留組織の最終カルボン含量 JV : 35日後のカルボンの11つ加(■→−■−
1)。
これらの数字は単純な固体/液体抽出現象よりむしろあ
る時間にわたるカルボン合成の回復を明示する。生産し
旧、1初めの移植体の自消の3倍にも達する。
る時間にわたるカルボン合成の回復を明示する。生産し
旧、1初めの移植体の自消の3倍にも達する。
例2
例Δによるライ4−ヨウの茎をグルコース処理したガム
ボルグ培地にパラフィン曲の下で試験管線Hする。
ボルグ培地にパラフィン曲の下で試験管線Hする。
生存段階中、精油の特徴を有する化合物、pアリルアニ
ゾールの合成を2ケ月にわたって追跡づる。
ゾールの合成を2ケ月にわたって追跡づる。
ライ4:ヨウの茎を3グループに分()、これらは次の
ように実験条件を変えるニ ゲループAll木的ガムボルグW1地 蔗糖:20y−1 照明: 200ルツクス グループB:基本的ガムボルグ培地+生長調節剤蔗糖:
20!?” 照明:200ルツクス グループC:i/10v本的ガムボルグ培地蔗糖:10
g−1 照明: 200ルツクス パラフィン曲は現tllliE’シ< 1.3.5およ
び711’J更新し、次いでガス相り「1マドグラフイ
により定量的に、そして定性的に分析η°る。油中のp
−アリルアニゾールの存在および多数の他の芳占性化合
物の外観に注taする。
ように実験条件を変えるニ ゲループAll木的ガムボルグW1地 蔗糖:20y−1 照明: 200ルツクス グループB:基本的ガムボルグ培地+生長調節剤蔗糖:
20!?” 照明:200ルツクス グループC:i/10v本的ガムボルグ培地蔗糖:10
g−1 照明: 200ルツクス パラフィン曲は現tllliE’シ< 1.3.5およ
び711’J更新し、次いでガス相り「1マドグラフイ
により定量的に、そして定性的に分析η°る。油中のp
−アリルアニゾールの存在および多数の他の芳占性化合
物の外観に注taする。
吹入は時間の関数として油中に蓄積したp−アリルアニ
ゾール偵(μ’J/!j新しい移植葉材料で)■:移植
茎の初めのρ−アリルアニゾール含量■:油中に蓄積し
た0−アリルアニゾール■:残留組織の最終p−アリル
アニゾール含含量ニア週侵のp−アリルアニゾールの増
加(II+1!l−I> 。
ゾール偵(μ’J/!j新しい移植葉材料で)■:移植
茎の初めのρ−アリルアニゾール含量■:油中に蓄積し
た0−アリルアニゾール■:残留組織の最終p−アリル
アニゾール含含量ニア週侵のp−アリルアニゾールの増
加(II+1!l−I> 。
総生産量は移植体の2倍にも達りる(グループC)。
Claims (10)
- (1)植物器官を培地に移植し、油層の下に浸漬して低
酸素下に保持することを特徴とする、試験管培養による
植物起源物質の生産方法。 - (2)生産した植物起源物質は植物器官、培地および/
又は油から抽出する、請求項1記載の方法。 - (3)培地および/又は油は連続的又は半連続的に更新
する、請求項1記載の方法。 - (4)油は鉱物又は有機物起源の油、植物起源の油又は
合成油であり、滅菌および/又は脱ガスする、請求項1
記載の方法。 - (5)油はパラフィン油である、請求項4記載の方法。
- (6)植物器官は根、葉、花又は花芽の全体又は部分で
ある、請求項1記載の方法。 - (7)植物器官は移植前に浄化する、請求項1記載の方
法。 - (8)前駆体および/又は生長調節剤を培地に添加する
、請求項1記載の方法。 - (9)器官は0〜400ルックスの低照明で低酸素下に
保持する、請求項1記載の方法。 - (10)器官は18〜35℃の範囲の温度で低酸素下に
保持する、請求項1記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| EP88115354.8 | 1988-09-19 | ||
| EP88115354A EP0359844B1 (fr) | 1988-09-19 | 1988-09-19 | Procédé de production de substances d'origine végétale |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02124090A true JPH02124090A (ja) | 1990-05-11 |
| JP2635181B2 JP2635181B2 (ja) | 1997-07-30 |
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ID=8199337
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
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| Country | Link |
|---|---|
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| EP (1) | EP0359844B1 (ja) |
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| AU (1) | AU620130B2 (ja) |
| CA (1) | CA1332922C (ja) |
| DE (1) | DE3882528T2 (ja) |
| DK (1) | DK457989A (ja) |
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|---|---|---|---|---|
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| DE3138493A1 (de) * | 1981-09-28 | 1983-04-07 | Rolf 6902 Sandhausen Beiderbeck | Ein verfahren zur gewinnung lipophiler stoffwechselprodukte aus suspensionskulturen lebender pflanzenzellen |
| JPS61254127A (ja) * | 1985-05-02 | 1986-11-11 | 三浦 喜温 | ニチニチソウ器官培養によるインド−ルアルカロイドの製造方法 |
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