JPH0213376A - 緑膿菌に対するモノクローナル抗体、ならびにその調製および使用 - Google Patents
緑膿菌に対するモノクローナル抗体、ならびにその調製および使用Info
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- JPH0213376A JPH0213376A JP1099924A JP9992489A JPH0213376A JP H0213376 A JPH0213376 A JP H0213376A JP 1099924 A JP1099924 A JP 1099924A JP 9992489 A JP9992489 A JP 9992489A JP H0213376 A JPH0213376 A JP H0213376A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、これまでに開示°された緑膿菌(Pseud
omonas aeruginosa)血清型の19種
類のすべてと交差反応するモノクローナル抗体(rnA
b)に関する。この抗体は、診断補助物として、活性物
質としてまたは活性物質担体としての使用が可能である
。
omonas aeruginosa)血清型の19種
類のすべてと交差反応するモノクローナル抗体(rnA
b)に関する。この抗体は、診断補助物として、活性物
質としてまたは活性物質担体としての使用が可能である
。
緑膿菌は、日和見性(opportunistic)病
原性のダラム陰性細菌である。これは、例えば、嚢胞性
線維症を有する患者の肺炎、または火傷患者または骨も
しくは尿路感染症患者の敗血症など、生命を脅かす疾患
を引き起こす。緑膿菌によって起きる疾患の抗生物質に
よる治療は難しく、しばしばその耐性パターンのために
不成功に終わる。これが、免疫予防および免疫治療によ
る感染のコントロールが注目されてきた理由である。緑
膿菌の19種類の血清型のすべてに対する防御は、精製
された外膜タンパク質(OMP)、F、H2および■の
混合物によって行われた(von 5pechtら:I
nfection Ll、408−412.1987)
。上記の研究において、リンパ球は、免疫されたマウス
から単離してNS−1ミエローマ細胞と既知の方法にて
融合させたものであった( Kearnyら: J、
Immunology工、4.1548−1550.1
979)。得られた約500個のハイブリドーマから1
個のmAb(以下mAb6A4と称する)が選択された
。これは、以下に列記するような有利な性質を有する。
原性のダラム陰性細菌である。これは、例えば、嚢胞性
線維症を有する患者の肺炎、または火傷患者または骨も
しくは尿路感染症患者の敗血症など、生命を脅かす疾患
を引き起こす。緑膿菌によって起きる疾患の抗生物質に
よる治療は難しく、しばしばその耐性パターンのために
不成功に終わる。これが、免疫予防および免疫治療によ
る感染のコントロールが注目されてきた理由である。緑
膿菌の19種類の血清型のすべてに対する防御は、精製
された外膜タンパク質(OMP)、F、H2および■の
混合物によって行われた(von 5pechtら:I
nfection Ll、408−412.1987)
。上記の研究において、リンパ球は、免疫されたマウス
から単離してNS−1ミエローマ細胞と既知の方法にて
融合させたものであった( Kearnyら: J、
Immunology工、4.1548−1550.1
979)。得られた約500個のハイブリドーマから1
個のmAb(以下mAb6A4と称する)が選択された
。これは、以下に列記するような有利な性質を有する。
−19種類の緑膿菌血清型のすべてと強くて均一な反応
をすること。
をすること。
−C1q固定試験で陽性を示すこと。
−マウスな緑膿菌感染に曝した場合に防御効果を示すこ
と。
と。
さらに、c D N Aが決定された(諸例、表1およ
び表2を参照されたい)。いまやヒトmAbを、マウス
抗体遺伝子の不変領域を、それと対応するヒト配列に置
き換えることによって得ることができる。この「ヒト化
された(humanjzed) =抗体配列を真核細胞
、例えばCHO細胞または酵母、において発現させるこ
とによって、診断目的、予防および治療のために用い得
る対応するヒ)mAbを得ることができる。
び表2を参照されたい)。いまやヒトmAbを、マウス
抗体遺伝子の不変領域を、それと対応するヒト配列に置
き換えることによって得ることができる。この「ヒト化
された(humanjzed) =抗体配列を真核細胞
、例えばCHO細胞または酵母、において発現させるこ
とによって、診断目的、予防および治療のために用い得
る対応するヒ)mAbを得ることができる。
したがって、本発明は以下の内容に関する。
a ) m A b 6 A 4またはその部分をコ
ードする精製単離したDNA配列、これらの転写産生物
および「ヒト化」配列の対応する組合せ、b) これら
の配列の全部または部分を含むDNA構造物およびベク
ター、 C) そのようなりNAによって形質転換された原核細
胞または真核細胞、 d) 形質転換によるこれらの細胞によって発現された
ポリペプチド、またはそれらの部分。
ードする精製単離したDNA配列、これらの転写産生物
および「ヒト化」配列の対応する組合せ、b) これら
の配列の全部または部分を含むDNA構造物およびベク
ター、 C) そのようなりNAによって形質転換された原核細
胞または真核細胞、 d) 形質転換によるこれらの細胞によって発現された
ポリペプチド、またはそれらの部分。
e) それらのアミノ酸配列、
f) (e)からのペプチドまたはアミノ酸配列物
を単一でまたは絹合せとして含む、診断補助物、予防剤
または治療剤、 g) 遺伝子操作による、(d)に記述のポリペプチド
またはその部分の調製法、およびb) (a)に記
述の配列によってコードされる抗体が結合するエピトー
プ。
を単一でまたは絹合せとして含む、診断補助物、予防剤
または治療剤、 g) 遺伝子操作による、(d)に記述のポリペプチド
またはその部分の調製法、およびb) (a)に記
述の配列によってコードされる抗体が結合するエピトー
プ。
本発明のさらなる態様は以下の諸例、諸表および特許請
求の範囲に詳述される通りである。
求の範囲に詳述される通りである。
例1:mAb6A4の調製
la) 免疫使用のための、緑膿菌血清型12の外膜
タンパク質OMP F、H2および■の調製。
タンパク質OMP F、H2および■の調製。
OMP F、H2および■を、T、 Mizuno
BよびM、 Kageyama (J、 Bioche
m、 9.179−258.1978)の記載のように
して緑膿菌血清型12から精製した。すなわち、細胞を
、後間対数期に集めてから超音波処理によって破砕して
、次いて、細胞膜を100.000Xgにて約1時間遠
心分離して集めた。細胞膜を段階的に2%SDS、10
%グリセロールおよび2%SDSおよび最後に0.1
MNaCIで抽出した。残留する不溶性の両分は、主と
してOMP F、OMP H2であり、いくらかの
OMPIを含む。
BよびM、 Kageyama (J、 Bioche
m、 9.179−258.1978)の記載のように
して緑膿菌血清型12から精製した。すなわち、細胞を
、後間対数期に集めてから超音波処理によって破砕して
、次いて、細胞膜を100.000Xgにて約1時間遠
心分離して集めた。細胞膜を段階的に2%SDS、10
%グリセロールおよび2%SDSおよび最後に0.1
MNaCIで抽出した。残留する不溶性の両分は、主と
してOMP F、OMP H2であり、いくらかの
OMPIを含む。
1 b) OMP F、H2およびIによるBa1
b/Cマウスの免疫 免疫のために、第1日日に、20μgのA I (OH
)3とともに507z gの精製したOMP(80μm
)を含む懸濁液を各マウスの腹腔内に注射した。同じ投
与量で、14日日目よび21日日目注射を繰り返した。
b/Cマウスの免疫 免疫のために、第1日日に、20μgのA I (OH
)3とともに507z gの精製したOMP(80μm
)を含む懸濁液を各マウスの腹腔内に注射した。同じ投
与量で、14日日目よび21日日目注射を繰り返した。
さらに4週間の経過後に、別の追加注射(booste
r) (同一投与11)を行って、さらに3日の後に
脾臓を摘出した。
r) (同一投与11)を行って、さらに3日の後に
脾臓を摘出した。
lc) 細胞融合
細胞の融合は、実質的にG、 KoehlerおよびC
1M1lstein (Eur、 J、 1mmuno
1. (i、511−519.1976)の方法に従っ
て行った。(1b)からの摘出脾臓から調製した約lX
106個の脾臓細胞を、5X107個のH5−1ミエロ
ーマ細胞(Kearnyら二助出、ATCCNo、T
I B−18としてAmerican Type Cu
1ture Co11ectionから市販されている
もの)と2mlの50%ポリエチレングリコールl 5
Q Q (Serva社、ハイデルベルグ)中で融合
させた。融合処理の後、細胞をI X 106個/ml
の正常脾臓細胞とともにヒボキサンチン、アミノプテリ
ンおよびチミジン(HAT)を含むD旧beccoの1
1ざ飾ミニマル培地(MEM)にプレートした。抗体産
生を、以下に記述する酵素結合免疫吸着分析(EL■S
A)で試験して、目的のクローンを希釈法によって得た
。
1M1lstein (Eur、 J、 1mmuno
1. (i、511−519.1976)の方法に従っ
て行った。(1b)からの摘出脾臓から調製した約lX
106個の脾臓細胞を、5X107個のH5−1ミエロ
ーマ細胞(Kearnyら二助出、ATCCNo、T
I B−18としてAmerican Type Cu
1ture Co11ectionから市販されている
もの)と2mlの50%ポリエチレングリコールl 5
Q Q (Serva社、ハイデルベルグ)中で融合
させた。融合処理の後、細胞をI X 106個/ml
の正常脾臓細胞とともにヒボキサンチン、アミノプテリ
ンおよびチミジン(HAT)を含むD旧beccoの1
1ざ飾ミニマル培地(MEM)にプレートした。抗体産
生を、以下に記述する酵素結合免疫吸着分析(EL■S
A)で試験して、目的のクローンを希釈法によって得た
。
ld) 抗体分泌クローンを検出するためのLISA
直接ELISAを用いて、抗原に結合しているか、また
どの程度に結合しているかを種々のmAbについて調べ
た。
どの程度に結合しているかを種々のmAbについて調べ
た。
Dynatech社(P l och i ngen
)のポリ塩化ビニール製の96ウエルのマイクロタイタ
ープレートを血清型120緑膿菌の超音波処理物(so
nicate)(PBSにて1:200に希釈したもの
=4.5Mg/ml、以下を参照されたい)100μl
にてコーティングして、4℃で一晩インキユベートした
。次いで、プレートを3回洗浄してからPBSで希釈し
たウシ血清アルブミンで37℃で1時間飽和させた。さ
らに洗浄した後に、ウェルをフィルムで覆って、プレー
トを一20℃で使用時まで保存した。
)のポリ塩化ビニール製の96ウエルのマイクロタイタ
ープレートを血清型120緑膿菌の超音波処理物(so
nicate)(PBSにて1:200に希釈したもの
=4.5Mg/ml、以下を参照されたい)100μl
にてコーティングして、4℃で一晩インキユベートした
。次いで、プレートを3回洗浄してからPBSで希釈し
たウシ血清アルブミンで37℃で1時間飽和させた。さ
らに洗浄した後に、ウェルをフィルムで覆って、プレー
トを一20℃で使用時まで保存した。
50μ+の腹水(ascites) [:対(dup
l 1cates)として]を試験する各クローンのた
めにピペットで注入した(連続的対数希釈、l:2、l
:4.1:8、l:16、・・・) 陽性の対照としては、膜タンパク質(希釈、1:100
.1:1000.1:10,000)で盛んに免疫され
て4回の追加注射を受けたマウスからのポリクローナル
マウス血清を用いた。非免疫マウスからの血清を陰性の
対照血清として用いた。
l 1cates)として]を試験する各クローンのた
めにピペットで注入した(連続的対数希釈、l:2、l
:4.1:8、l:16、・・・) 陽性の対照としては、膜タンパク質(希釈、1:100
.1:1000.1:10,000)で盛んに免疫され
て4回の追加注射を受けたマウスからのポリクローナル
マウス血清を用いた。非免疫マウスからの血清を陰性の
対照血清として用いた。
PBS (燐酸緩衝生理食塩水)を希釈培地として用い
た。プレートを37°Cて1時間インキスペードしてか
ら3回洗浄した後に、50 /Z lのペルオキシダー
ゼ結合抗マウスF(ab)2を希釈率1:500にて加
えた。
た。プレートを37°Cて1時間インキスペードしてか
ら3回洗浄した後に、50 /Z lのペルオキシダー
ゼ結合抗マウスF(ab)2を希釈率1:500にて加
えた。
ざらに37℃で1時間インキスペードしてから3回洗浄
した後、50μmの基質、0−フェニレンジ7iン(0
,2%OPD、0.015%H2o2)を加えた。すべ
てのELISA試薬は、NEN NewEngland
Nuclear社(Dreieich)のNEI50
1キットのものを用いた。
した後、50μmの基質、0−フェニレンジ7iン(0
,2%OPD、0.015%H2o2)を加えた。すべ
てのELISA試薬は、NEN NewEngland
Nuclear社(Dreieich)のNEI50
1キットのものを用いた。
ざらに30分間インキュベートした後、5゜711の4
.5M H2SO4で反応を停止させて、Dynate
ch社製のELJSAエバリュエーターMR580を用
いて450nmで吸光度を測定した。陽性りa−ンは、
吸光度0.2またはそれ以上を示した。
.5M H2SO4で反応を停止させて、Dynate
ch社製のELJSAエバリュエーターMR580を用
いて450nmで吸光度を測定した。陽性りa−ンは、
吸光度0.2またはそれ以上を示した。
選択リストの7個のクローンから、mAbGA4を分泌
するクローンを次の工程のために選択した。なぜならば
、m A b 6 A 4は第1頁で記述したような利
点を有しており、さらに大量に分泌されるからである(
腹水液中のγグロブリン画分の約1%がmAb6A4で
ある)。
するクローンを次の工程のために選択した。なぜならば
、m A b 6 A 4は第1頁で記述したような利
点を有しており、さらに大量に分泌されるからである(
腹水液中のγグロブリン画分の約1%がmAb6A4で
ある)。
mAb6A4は、IgG2aクラスに属しており、OM
P 1と反応する。
P 1と反応する。
超音波処理物の調製:
血清型0−12の細菌をトリブチケース−ソイブロス(
trypticase−soya broth)中で培
養した。次いで、細菌を3回洗浄してから塩化ナトリウ
ム緩衝液中に懸濁させた。懸濁液を3回各5分間ずつ超
音波処理(sonicate) L/た(毎回2分間の
間隔をおく)。
trypticase−soya broth)中で培
養した。次いで、細菌を3回洗浄してから塩化ナトリウ
ム緩衝液中に懸濁させた。懸濁液を3回各5分間ずつ超
音波処理(sonicate) L/た(毎回2分間の
間隔をおく)。
さらに遠心分離(5000rpm/ 10分間で1回)
した後、玉清液を少量ずつに分けて一20℃で使用時ま
で保存した。被覆したプレート上でのタンパク質濃度は
、4.5Bg/ウェルてあった。
した後、玉清液を少量ずつに分けて一20℃で使用時ま
で保存した。被覆したプレート上でのタンパク質濃度は
、4.5Bg/ウェルてあった。
例2:可変領域をコードするm A l) 6 A 4
のcDNAの単離および配列決定。
のcDNAの単離および配列決定。
2a) cDNAの単離
6A4ハイブリドーマ細胞を遠心分離によって腹水液か
ら分離した(150’OXgで4℃で10分間)。ポリ
(A)+RNAを、H,Domdeyら(Cell凹、
611−621.1984)の方法によってこれから得
た。cDNAを、市販されてるcDNA合成キット(A
mersham社製)を用いて157[のポリ(A)+
RN Aから合成した。NEN New Engla
ndNuclear社から人手可能なりローニングキッ
トを用いて、平滑末端を有する二本鎖のcDNAに一本
鎖のオリゴ−dC末端を付与して、対応するオリブーd
G末端を有するプラスミドpBR322とアニール(a
nnea I )させた。コンピテントにした大腸菌(
E、 coli) K 12株JM109細胞(Yan
isch−Perron C,ら: gene ’;Q
、 103−119.1985)を形質転換(Hana
han、 D、: J、 Mo1. Biol、 1f
A、557−58眠1983)させた結果、約12,0
00個の形質転換体が得られた。これらを、32 p末
端ラベルしたオリゴヌクレオチド5’−CAGGCAT
CCTAGAGTCAC−3’([)とハイブリダイズ
させて、サブグループIIBの重鎮のcDNAを含むク
ローンを検出した。
ら分離した(150’OXgで4℃で10分間)。ポリ
(A)+RNAを、H,Domdeyら(Cell凹、
611−621.1984)の方法によってこれから得
た。cDNAを、市販されてるcDNA合成キット(A
mersham社製)を用いて157[のポリ(A)+
RN Aから合成した。NEN New Engla
ndNuclear社から人手可能なりローニングキッ
トを用いて、平滑末端を有する二本鎖のcDNAに一本
鎖のオリゴ−dC末端を付与して、対応するオリブーd
G末端を有するプラスミドpBR322とアニール(a
nnea I )させた。コンピテントにした大腸菌(
E、 coli) K 12株JM109細胞(Yan
isch−Perron C,ら: gene ’;Q
、 103−119.1985)を形質転換(Hana
han、 D、: J、 Mo1. Biol、 1f
A、557−58眠1983)させた結果、約12,0
00個の形質転換体が得られた。これらを、32 p末
端ラベルしたオリゴヌクレオチド5’−CAGGCAT
CCTAGAGTCAC−3’([)とハイブリダイズ
させて、サブグループIIBの重鎮のcDNAを含むク
ローンを検出した。
同様に、ハイブリダイゼーションにプラスミドC1(W
、 0. Weiscbertら: Nucleic
Ac1ds Res。
、 0. Weiscbertら: Nucleic
Ac1ds Res。
■、3G27−3645.1982)のHi n d
m−B amHIフラグメント(n)を用いた。これは
2850塩基対(bp)の大きさで、デオキシヌクレオ
チド32 p−トリホスフェートでニックトランスレー
トされた( n1ck−translated)もので
ある。(1)はマウスのIgG2a3対立形質の領域(
重鎮)に由来する。(II)は、に定常領域(軽鎖)を
コードする。ハイブリダイゼーションは、D、 Woo
ds(Focus6.1−2.1984)の記載の方法
によって行った。コロニーの約4.2%および1.6%
がそれぞれに−およびγ−特特異ジブローブ陽性反応を
示した。
m−B amHIフラグメント(n)を用いた。これは
2850塩基対(bp)の大きさで、デオキシヌクレオ
チド32 p−トリホスフェートでニックトランスレー
トされた( n1ck−translated)もので
ある。(1)はマウスのIgG2a3対立形質の領域(
重鎮)に由来する。(II)は、に定常領域(軽鎖)を
コードする。ハイブリダイゼーションは、D、 Woo
ds(Focus6.1−2.1984)の記載の方法
によって行った。コロニーの約4.2%および1.6%
がそれぞれに−およびγ−特特異ジブローブ陽性反応を
示した。
2b) c DNA配列決定
軽鎖または重鎮の完全なcDNAを含むと思われる、プ
ラスミドを含むコロニーを、上記で得たコロニーから探
索した。プラスミドpUL5 (軽鎖のcDNAを含む
)およびpBH7(重鎮のcDNAを含む)の挿入DN
Aを、E、Y、 ChenおよびP、 5eebur3
(DNA ll、165−170.1985)による
記述のように修飾した標準法(F、 Sangerら:
Proc、Nat1.Acad、Sci、USA IA
、5463−5467.1977)によって配列決定し
た。関連の可変領域のヌクレオチド配列は、表1(軽鎖
)および表2(重鎮)に示される通りである。定常領域
のヌクレオチド配列(表中に含まれていない)は、文献
にて公知の配列とそれぞれ一致している(γ鎮:5ch
reierら: Proc、 Natl、 Acad、
Sci、 LISA Zfl。
ラスミドを含むコロニーを、上記で得たコロニーから探
索した。プラスミドpUL5 (軽鎖のcDNAを含む
)およびpBH7(重鎮のcDNAを含む)の挿入DN
Aを、E、Y、 ChenおよびP、 5eebur3
(DNA ll、165−170.1985)による
記述のように修飾した標準法(F、 Sangerら:
Proc、Nat1.Acad、Sci、USA IA
、5463−5467.1977)によって配列決定し
た。関連の可変領域のヌクレオチド配列は、表1(軽鎖
)および表2(重鎮)に示される通りである。定常領域
のヌクレオチド配列(表中に含まれていない)は、文献
にて公知の配列とそれぞれ一致している(γ鎮:5ch
reierら: Proc、 Natl、 Acad、
Sci、 LISA Zfl。
4495−4499.1981、に鎖: P、H,Ha
mlynら:Nucleic Ac1ds Res、
9.4485−4494)。コード領域の全長は、軽鎖
で717bp、重鎮で1407hρであり、軽鎖の最初
の20個のアミノ酸はリーダーペプチドを表している。
mlynら:Nucleic Ac1ds Res、
9.4485−4494)。コード領域の全長は、軽鎖
で717bp、重鎮で1407hρであり、軽鎖の最初
の20個のアミノ酸はリーダーペプチドを表している。
したがって、成熟(mature)軽鎖は259個のア
ミノ酸の長さである。重鎮は19個のアミノ酸のリーダ
ーペプチドを有しており、したがって、成熟分子は45
0個のアミノ酸の長さである。
ミノ酸の長さである。重鎮は19個のアミノ酸のリーダ
ーペプチドを有しており、したがって、成熟分子は45
0個のアミノ酸の長さである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、抗体可変領域をコードする、表1および表2に示さ
れるDNA配列、またはそれらの部分。 2、可変領域に表1および表2に示されるアミノ酸配列
またはそれらの部分を含み、対立形質および突然変異体
が緑膿菌(Pseudomonasaeruginos
a)のOMP I と反応する限りはそれら対立形質およ
び突然変異体を含む、ことを特徴とする、モノクローナ
ル抗体。 3、定常領域またはそれらの部分がネズミ由来であって
好ましくはIgC2aに対応することを特徴とする、請
求項2に記載のモノクローナル抗体。 4、定常領域またはそれらの部分がヒト由来であること
を特徴とする、請求項2に記載のモノクローナル抗体。 5、請求項2または3に記載のモノクローナル抗体を分
泌するハイブリドーマ。 6、請求項4に記載のモノクローナル抗体を発現させる
発現系(systems)。 7、請求項2、3または4に記載のモノクローナル抗体
が結合するエピトープ。 8、緑膿菌の外膜タンパク質(OMP)で哺乳動物を免
疫し、そのような動物から脾臓細胞を採取してからミエ
ローマ細胞、好ましくはNS−1細胞、と融合させ、得
られたハイブリドーマを緑膿菌のOMPに対するモノク
ローナル抗体の分泌に関して選択することからなる、請
求項5に記載のハイブリドーマの調製法。 9、可変領域をコードするDNA配列、またはそれらの
部分、を定常領域をコードする抗体配列、またはそれら
の部分、に連結させ、発現系で発現させることからなる
、請求項2または3に記載のモノクローナル抗体の調製
法。 10、請求項1に記載の可変領域をコードするDNA配
列、またはそれらの部分、をヒト定常領域をコードする
抗体配列、またはそれらの部分、に連結させ、発現系で
発現させることからなる、請求項4に記載のモノクロー
ナル抗体の調製法。 11、医薬物としての、請求項2、3または4に記載の
モノクローナル抗体。 12、請求項2、3または4に記載のモノクローナル抗
体の、診断補助物における使用。13、請求項2、3ま
たは4に記載のモノクローナル抗体の、医薬物活性物質
の担体としての使用。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE3813023.8 | 1988-04-19 | ||
| DE3813023A DE3813023A1 (de) | 1988-04-19 | 1988-04-19 | Monoklonaler antikoerper gegen pseudomonas aeruginosa, seine herstellung und verwendung |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0213376A true JPH0213376A (ja) | 1990-01-17 |
Family
ID=6352325
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1099924A Pending JPH0213376A (ja) | 1988-04-19 | 1989-04-19 | 緑膿菌に対するモノクローナル抗体、ならびにその調製および使用 |
Country Status (10)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0338395B1 (ja) |
| JP (1) | JPH0213376A (ja) |
| KR (1) | KR890016165A (ja) |
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| AU (1) | AU622446B2 (ja) |
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| DK (1) | DK186289A (ja) |
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-
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-
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- 1989-04-18 KR KR1019890005050A patent/KR890016165A/ko not_active Ceased
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- 1989-04-19 JP JP1099924A patent/JPH0213376A/ja active Pending
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