JPH02200692A - 新規高分子多糖s―2およびその製造法 - Google Patents
新規高分子多糖s―2およびその製造法Info
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- JPH02200692A JPH02200692A JP1017678A JP1767889A JPH02200692A JP H02200692 A JPH02200692 A JP H02200692A JP 1017678 A JP1017678 A JP 1017678A JP 1767889 A JP1767889 A JP 1767889A JP H02200692 A JPH02200692 A JP H02200692A
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- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明はスエヒロタケ属(8chizophyllum
)に属する微生物によって生産され、抗植物ウィルス作
用を有する新規な高分子多糖8−2に関する。
)に属する微生物によって生産され、抗植物ウィルス作
用を有する新規な高分子多糖8−2に関する。
畑、水田あるいは各種施設で栽培されるタバコ ピーマ
ン、トマト、キュウリ、スイカなどはタバコモザイクウ
ィルス(以下TMVという)、キュウリモザイクウィル
ス、キュウリ緑斑モザイクウィルス、ジャガイモYウィ
ルス等にり病し、著しい被害を受けることが多い。これ
らの病原ウィルスは他作物、雑草、樹木、種苗、土壌中
などに存在し、作業時の接触、昆虫の吸汗等によって伝
染する。作物におけるこれらウィルス病の防除対策とし
て、従来はウィルスの発生源の除去または低減、土壌消
11!あるいは殺虫剤によるウィルス媒介者の殺減等、
間接的防除技術が主として用いられてきた。
ン、トマト、キュウリ、スイカなどはタバコモザイクウ
ィルス(以下TMVという)、キュウリモザイクウィル
ス、キュウリ緑斑モザイクウィルス、ジャガイモYウィ
ルス等にり病し、著しい被害を受けることが多い。これ
らの病原ウィルスは他作物、雑草、樹木、種苗、土壌中
などに存在し、作業時の接触、昆虫の吸汗等によって伝
染する。作物におけるこれらウィルス病の防除対策とし
て、従来はウィルスの発生源の除去または低減、土壌消
11!あるいは殺虫剤によるウィルス媒介者の殺減等、
間接的防除技術が主として用いられてきた。
本発明は、従来の市販の植物ウィルス病防除剤に見られ
ない浸透移行性の効果を示し、安全で有効な化学物質を
微生物を用いる発酵工業的手段によって安価に大量に提
供することを目的とする。
ない浸透移行性の効果を示し、安全で有効な化学物質を
微生物を用いる発酵工業的手段によって安価に大量に提
供することを目的とする。
本発明者らは、上記の目的を達成するために、多種の微
生物の代謝産物についてスクリーニングを行った結果、
スエヒロタケ(5chizophyllu m )属に
属する菌が培養物中に生産する高分子多糖8−2が顕著
な抗ウィルス活性を示すことを発見した。
生物の代謝産物についてスクリーニングを行った結果、
スエヒロタケ(5chizophyllu m )属に
属する菌が培養物中に生産する高分子多糖8−2が顕著
な抗ウィルス活性を示すことを発見した。
本発明に使用するスエヒロタケ属に属する菌株トシては
、天然のスエヒロタケよシ分離した菌株、あるいは公知
の保存菌株、例えばシゾフィラム・コミュ−y (8c
hizophyllum commune) IFo
4928、IF06504、IFO6505、IFO3
0496、IFO30749(IFOは財団法人・発酵
研究所の略)等があるが、高分子多糖類の生産量が高い
シゾフィラム・コミューン(Schizophyllo
m commune ) J TS 3001 (微工
研菌寄第9767号)が最も望ましい菌株である。なお
、JTS 3001菌株は、IFo 4928菌株を親
株として継代培養し、選抜により得られた高生産株であ
る。
、天然のスエヒロタケよシ分離した菌株、あるいは公知
の保存菌株、例えばシゾフィラム・コミュ−y (8c
hizophyllum commune) IFo
4928、IF06504、IFO6505、IFO3
0496、IFO30749(IFOは財団法人・発酵
研究所の略)等があるが、高分子多糖類の生産量が高い
シゾフィラム・コミューン(Schizophyllo
m commune ) J TS 3001 (微工
研菌寄第9767号)が最も望ましい菌株である。なお
、JTS 3001菌株は、IFo 4928菌株を親
株として継代培養し、選抜により得られた高生産株であ
る。
これら菌株の培養物の培養ろ液あるいは菌体の熱水抽出
物をそのまま、あるいはその有効成分である多糖S−2
を水に溶解し、タノ(コ、トマト、ピーマン等の茎葉に
散布あるいは地下部から吸収させることなどによって、
TMV等の感染発病を効果的に防除することができる。
物をそのまま、あるいはその有効成分である多糖S−2
を水に溶解し、タノ(コ、トマト、ピーマン等の茎葉に
散布あるいは地下部から吸収させることなどによって、
TMV等の感染発病を効果的に防除することができる。
%にスエヒロタケ属に属する菌株の生産する抗ウイルス
活性物質は従来知られている多糖と異なシ、処理植物体
においてシステミノクに発現することがら著効を示す。
活性物質は従来知られている多糖と異なシ、処理植物体
においてシステミノクに発現することがら著効を示す。
本発明において使用する菌株は一般の担子菌培養用培地
を用いて、静置または攪拌培養でき、その効果は有効成
分である高分子多糖S−2の量に依存する。
を用いて、静置または攪拌培養でき、その効果は有効成
分である高分子多糖S−2の量に依存する。
本発明者らはこれらのことを実験的にV&認し本発明を
行った。
行った。
以下に、順を追って詳細に説明する。
高分子多糖S−2は、高分子多糖S−2生産菌を培養し
た後、培養物の液体区分(培養r液)及び菌体区分から
分離採取することによって得ることができるが、特に、
培養r液から多く得られる。
た後、培養物の液体区分(培養r液)及び菌体区分から
分離採取することによって得ることができるが、特に、
培養r液から多く得られる。
本発明においては、培養培地としては菌体がよく育つも
のであればいかなる組成の培地でもよいが、一般の糸状
菌用培地に酵母エキスなどを加えたものが好ましい。
のであればいかなる組成の培地でもよいが、一般の糸状
菌用培地に酵母エキスなどを加えたものが好ましい。
培養条件としては、例えば20〜30′Oの静置培養で
十分でアリ、また高分子多糖S−2生産菌の生育が可能
で高分子多糖S−2を生産する条件でおればいかなる条
件でも良いが、振とう培養または通気攪拌培養が好まし
い。
十分でアリ、また高分子多糖S−2生産菌の生育が可能
で高分子多糖S−2を生産する条件でおればいかなる条
件でも良いが、振とう培養または通気攪拌培養が好まし
い。
高分子多糖S−2生産菌の培養物から遠心分離またはf
過によシ液体区分(培養f液)及び菌体区分(菌体)を
得、ついで、これらから抗ウィルス活性を有する高分子
多糖8−2を採取する。培養r液から高分子多糖S−2
を採取するには常法によればよく、例として透析、限外
f過、分別沈澱、塩析、溶媒分画、イオン交換クロマト
グラフィー 吸着クロマトグラフィーなどの操作を単独
あるいは適宜併用すればよい。
過によシ液体区分(培養f液)及び菌体区分(菌体)を
得、ついで、これらから抗ウィルス活性を有する高分子
多糖8−2を採取する。培養r液から高分子多糖S−2
を採取するには常法によればよく、例として透析、限外
f過、分別沈澱、塩析、溶媒分画、イオン交換クロマト
グラフィー 吸着クロマトグラフィーなどの操作を単独
あるいは適宜併用すればよい。
菌体から高分子多糖S−2を採取するには、例えば熱水
抽出を行い、固形分を除き、その後は液体区分からの採
取法に準ずればよい。
抽出を行い、固形分を除き、その後は液体区分からの採
取法に準ずればよい。
本発明において、−船釣には、グルコース、エビオス、
リン酸−カリウム、硫酸マグネシウム及び水道水からな
る培地で高分子多糖S−2生産菌を振とう培養し、培養
終了後、r過によ=5− 一 9培養r液を得る。
リン酸−カリウム、硫酸マグネシウム及び水道水からな
る培地で高分子多糖S−2生産菌を振とう培養し、培養
終了後、r過によ=5− 一 9培養r液を得る。
ついで、培養f液と菌体熱水抽出液を合わせて、これへ
2倍容量のエタノールを加え、生じる沈澱を採取する。
2倍容量のエタノールを加え、生じる沈澱を採取する。
この沈澱物を総て溶がし、再びエタノールを加えて沈澱
させる。この沈澱物を再び溶かし、多糖溶液を得る。
させる。この沈澱物を再び溶かし、多糖溶液を得る。
多糖溶液を各種クロマトグラフィーによシ分析し、糖と
して高分子多糖S−2のみを含む分取液を合わせてから
、透析、減圧濃縮、凍結乾燥によって高分子多糖S−2
を得る。
して高分子多糖S−2のみを含む分取液を合わせてから
、透析、減圧濃縮、凍結乾燥によって高分子多糖S−2
を得る。
高分子多糖S−2は、次の理化学的性質を示す。
(1) 元素分析
〔高分子多糖S−2〕
0 : 40.0%
H:6.7%
N:nil
灰分: 3%
(2) 分子量
ゲルf過クロマトグラフィーを行った結果は第1図に示
すとおルである。
すとおルである。
ゲルr適法による範囲=5000〜30000ゲルf過
法による平均分子量:17000(3) 紫外吸収ス
ペクトル HITAOHI 557 Double Wavel
engthDouble Beam Spectrop
hotometerを用いて高分子多糖8−2 1mg
/ミり!Jットル溶液の紫外吸収スペクトルを測定した
結果は、第2図に示す通シである。
法による平均分子量:17000(3) 紫外吸収ス
ペクトル HITAOHI 557 Double Wavel
engthDouble Beam Spectrop
hotometerを用いて高分子多糖8−2 1mg
/ミり!Jットル溶液の紫外吸収スペクトルを測定した
結果は、第2図に示す通シである。
(4)赤外吸収スペクトル
日本分光A−3型赤外分光光度計を用いて常法(例えば
、泉美治、小川雅弥、加藤俊二、塩用二朗、芝哲夫監修
二機器分析のてびき(1)、1ページ、化学同人、19
86年)によル高分子多糖S−2の赤外吸収スペクトル
を測定した結果は、第3図に示す通9である。
、泉美治、小川雅弥、加藤俊二、塩用二朗、芝哲夫監修
二機器分析のてびき(1)、1ページ、化学同人、19
86年)によル高分子多糖S−2の赤外吸収スペクトル
を測定した結果は、第3図に示す通9である。
(5) 溶媒に対する溶解性
水、ジメチルスルホキシドに可溶。メタノール、エタノ
ール、アセトン、エーテルに不溶。
ール、アセトン、エーテルに不溶。
(6)呈色反応
フェノール・硫酸反応 陽性
ニンヒドリン反応 陰性
2NTFAを加えて121″Oでlhr加水分解した高
分子多糖S−2溶液をアビセルプレートにチャージさせ
、0゜2%ニンヒドリン試薬(ino、5%エタノール
溶液)をスプレー後、110@0にて乾燥したところ、
発色しなかった。
分子多糖S−2溶液をアビセルプレートにチャージさせ
、0゜2%ニンヒドリン試薬(ino、5%エタノール
溶液)をスプレー後、110@0にて乾燥したところ、
発色しなかった。
(力 塩基性、酸性、中性の別
高分子多糖S−2の0.1%水溶液のpHは中性である
。
。
(8)物質の色
高分子多糖S−2は白色である。
(9)構成糖とその組成
高分子多糖S−2を2 N −) IJフルオロ酢酸中
、121°Cで1時間、加水分解後、アビセルプレート
を用いた薄層クロマトグラフィーによりガラクトースと
マンノースが検出された。
、121°Cで1時間、加水分解後、アビセルプレート
を用いた薄層クロマトグラフィーによりガラクトースと
マンノースが検出された。
また、本多糖を加水分解後、常法(例えば、原田篤也、
小泉岳夫編:総合多糖科学上、68ページ、講談社、昭
和48年)により還元してアルジトールアセテートに導
き、ガスクロマトグラフィーにより分析した。これらの
結果から、その主な構成糖はガラクトースとマンノース
(2:1)であり、他に少量のグルコースとフコースが
含まれた。
小泉岳夫編:総合多糖科学上、68ページ、講談社、昭
和48年)により還元してアルジトールアセテートに導
き、ガスクロマトグラフィーにより分析した。これらの
結果から、その主な構成糖はガラクトースとマンノース
(2:1)であり、他に少量のグルコースとフコースが
含まれた。
(10)タンパク質の存在
高分子多糖S−2の20■を1ミリリツトルの水にとか
し、その0.1ミリリツトル中のタンパク質をローリイ
法により定量した。発色は見られなかった。
し、その0.1ミリリツトル中のタンパク質をローリイ
法により定量した。発色は見られなかった。
(11)ピルビン酸の存在
高分子多糖S−2の加水分解物をペーリンガー・マンハ
イム社製乳酸測定キットにより測定したが、ピルビン酸
は存在しなかった。
イム社製乳酸測定キットにより測定したが、ピルビン酸
は存在しなかった。
以下に実施例によυ本発明を更に具体的に説明する。
実施例1
〔菌の培養〕
シゾフィラム舎コミューン(Scbizophyllu
mcommune)JTS 3001菌株(微工研菌寄
第9767号)を、試験管内のバレイショ・ブドウ糖・
寒天培地(斜面、] OミIJ リットル)に接種し、
28°Cで7日間培養し、保存菌株とした。
mcommune)JTS 3001菌株(微工研菌寄
第9767号)を、試験管内のバレイショ・ブドウ糖・
寒天培地(斜面、] OミIJ リットル)に接種し、
28°Cで7日間培養し、保存菌株とした。
この保存菌株を、下記の培地、1ooミリリツトルを入
れた5 00 ミ!J IJノトル容三角フラスコに接
種し、28°0.200 rpmで7日間、回転振とう
培養し種母とした。種母培養物1.00ミリリツトルを
ミキサーによりホモジナイズし、そ の 60 ミ リ
リ ノ ト ル を 、 1. OOOミ リ
リ フ トルの培地をいれた3リツトル容三角フラスコ
に接種し、28°C1200rpmで7日間回転振とう
培養し、菌糸培養物を得た。
れた5 00 ミ!J IJノトル容三角フラスコに接
種し、28°0.200 rpmで7日間、回転振とう
培養し種母とした。種母培養物1.00ミリリツトルを
ミキサーによりホモジナイズし、そ の 60 ミ リ
リ ノ ト ル を 、 1. OOOミ リ
リ フ トルの培地をいれた3リツトル容三角フラスコ
に接種し、28°C1200rpmで7日間回転振とう
培養し、菌糸培養物を得た。
他の菌株、シゾフィラム・コミューン(Schizop
hyllum commune ) I FO4928
、IF’06504、 IFO6505、IFO304
96、IF’03074.9等も、同様に培養し、菌糸
培養物を得た。
hyllum commune ) I FO4928
、IF’06504、 IFO6505、IFO304
96、IF’03074.9等も、同様に培養し、菌糸
培養物を得た。
培地ニゲルコース 50g
ペプトン 2g
酵母エキス 2g
麦芽エキス 10g
KH,gP04本 5g
Mg5Ot・7H#0 2.5g
十 ユ
水道水 10100O
実施例2
〔高分子多糖S−2の精製〕
実施例1において得られたシゾフィラム・コミ ュ −
ン (Schizophyllum commu
ne) J T 53001菌株の菌糸培養物
を、東洋1紙No5cを用いてr過し、菌体と培養r液
を得た。
ン (Schizophyllum commu
ne) J T 53001菌株の菌糸培養物
を、東洋1紙No5cを用いてr過し、菌体と培養r液
を得た。
培養f液11リットルを40°C減圧によって5分の1
まで濃縮した。それに2倍量のエタノールを加え、更に
1%(w/v)溶液となるようにNa1lを加えた。2
日間10°0で静置し多糖を沈澱させ、沈澱を集めエタ
ノールで3回洗浄した後、減圧乾固した。これに蒸留水
を加え懸濁し、更にEDTA溶液を加えて沈澱を溶がし
た。再び2倍量のエタノールを加えて多糖を沈澱させた
。沈澱を回収して減圧乾固し、Na01−]IGEL−
GS 5]、0とG532oカラムを装着しり日本分析
工業(製)PREPAR,A、TIVB LIQUI
D OHROMATOGR,APHMODELLO2
0(溶出液: 0.1 M酢酸アンモニウム(pH69
) 流 速 = 3 5 ミ リ リ
フ ト /l/ 7 m in 検 出
: R■)で分画すると図4に示すように二つのビ
ークに分かれた。この二つめのピークに相当する高分子
多糖のみを集め、透析、減圧濃縮、更に凍結乾燥によっ
て8−2を得た。
まで濃縮した。それに2倍量のエタノールを加え、更に
1%(w/v)溶液となるようにNa1lを加えた。2
日間10°0で静置し多糖を沈澱させ、沈澱を集めエタ
ノールで3回洗浄した後、減圧乾固した。これに蒸留水
を加え懸濁し、更にEDTA溶液を加えて沈澱を溶がし
た。再び2倍量のエタノールを加えて多糖を沈澱させた
。沈澱を回収して減圧乾固し、Na01−]IGEL−
GS 5]、0とG532oカラムを装着しり日本分析
工業(製)PREPAR,A、TIVB LIQUI
D OHROMATOGR,APHMODELLO2
0(溶出液: 0.1 M酢酸アンモニウム(pH69
) 流 速 = 3 5 ミ リ リ
フ ト /l/ 7 m in 検 出
: R■)で分画すると図4に示すように二つのビ
ークに分かれた。この二つめのピークに相当する高分子
多糖のみを集め、透析、減圧濃縮、更に凍結乾燥によっ
て8−2を得た。
実施例3
〔元素分析〕
実施例2において、シゾフィラム・コミュー7 (Sc
hizophyllum commune ) J T
S 3001菌株培養物から得られた高分子多糖S−
21=3mgを柳本製作所(jIIN−ff−ダーM
T −3型(燃焼条件:試料分解炉930°C酸化炉8
500C還元炉550°Oヘリュウム流量]−80ミリ
リ ソ ト ル/ m i n 酸素流1t
20 ミ リ リ ッ ト ル/m1n)を用いての有
機元素分析結果は、0:40%、 i>、 H: 6.
7%、N:nil、灰分:3%を示した。
hizophyllum commune ) J T
S 3001菌株培養物から得られた高分子多糖S−
21=3mgを柳本製作所(jIIN−ff−ダーM
T −3型(燃焼条件:試料分解炉930°C酸化炉8
500C還元炉550°Oヘリュウム流量]−80ミリ
リ ソ ト ル/ m i n 酸素流1t
20 ミ リ リ ッ ト ル/m1n)を用いての有
機元素分析結果は、0:40%、 i>、 H: 6.
7%、N:nil、灰分:3%を示した。
実施例4
〔分子量の測定〕
日本分析工業■製JA−IGEI、−GS510と08
320カラムを装着した日本分析工業(製) PRE
PARATIVE LIQUII)OHROMATO
GRA P HM OD E L L O−20を用
いて、1%プルラン(昭和電工膜、Pu1lulan
5hodex S T AN D A、 R1)
P −82) / 0]、 M酢酸アンモニウム(pH
,6,9)を分子量標準物質とし、シゾフィラム・コミ
ューンJ TS 3001菌株培養物から得た高分子多
糖8−2の分子量を測定した。1%高分子多糖S −2
/ O,]、 M酢酸アンモニウムを流速35ミリリッ
トル/min、ゲルf過クロマトグラフィーにより測定
し、システム・インスッルメンツ■製Ohromato
corder 12GPCカートリツジを用いて求め
た重量平均分子量は】7000であり、その結果を、第
1図に示す。
320カラムを装着した日本分析工業(製) PRE
PARATIVE LIQUII)OHROMATO
GRA P HM OD E L L O−20を用
いて、1%プルラン(昭和電工膜、Pu1lulan
5hodex S T AN D A、 R1)
P −82) / 0]、 M酢酸アンモニウム(pH
,6,9)を分子量標準物質とし、シゾフィラム・コミ
ューンJ TS 3001菌株培養物から得た高分子多
糖8−2の分子量を測定した。1%高分子多糖S −2
/ O,]、 M酢酸アンモニウムを流速35ミリリッ
トル/min、ゲルf過クロマトグラフィーにより測定
し、システム・インスッルメンツ■製Ohromato
corder 12GPCカートリツジを用いて求め
た重量平均分子量は】7000であり、その結果を、第
1図に示す。
他の菌株の培養物から得た高分子多糖8−2も、分子量
の分布範囲は5000〜30000であった。
の分布範囲は5000〜30000であった。
実施例5
実施例Iにおいて得られたシゾフィラム・コミー−ンJ
TS3001菌株の菌糸培養物をf過し培養r液と菌体
な得た。この培養F液の抗ウィルス活性をTMVについ
て検定した。
TS3001菌株の菌糸培養物をf過し培養r液と菌体
な得た。この培養F液の抗ウィルス活性をTMVについ
て検定した。
同時に、実施例2において得られた各種高分子多糖類と
高分子多糖S−2を検定した。検定にはウィルスを接種
することによって局部病斑を生ずるタバコ品種(キザン
チ・エヌシー)を用いた。検定用のタバコ植物は直径1
2cmの鉢で育成し、1試料につき2鉢、3葉ずつ計6
葉を用いた。展開した葉の表または裏側の主脈を境とす
る生葉に被験液を絵筆で塗布し、片側の生葉には対置と
して水を塗布した。試料処理1目抜1葉の表側全面にカ
ーボランダムを振りかけ 、 純 化 TMV(0,
05μg / ミ リ リ ッ ト ル
) を塗抹接種した。ウィルス接種3〜4日後、接
種葉に現れた斑点の数を数え、次式によって防除率を算
出し、表1の結果を得た。
高分子多糖S−2を検定した。検定にはウィルスを接種
することによって局部病斑を生ずるタバコ品種(キザン
チ・エヌシー)を用いた。検定用のタバコ植物は直径1
2cmの鉢で育成し、1試料につき2鉢、3葉ずつ計6
葉を用いた。展開した葉の表または裏側の主脈を境とす
る生葉に被験液を絵筆で塗布し、片側の生葉には対置と
して水を塗布した。試料処理1目抜1葉の表側全面にカ
ーボランダムを振りかけ 、 純 化 TMV(0,
05μg / ミ リ リ ッ ト ル
) を塗抹接種した。ウィルス接種3〜4日後、接
種葉に現れた斑点の数を数え、次式によって防除率を算
出し、表1の結果を得た。
防除率(%) = []、 −(処処理案の病斑数/対
照生葉の病斑数) ) X 1. OO各種画分の植物
ウィルス防除効果を示した表1にみられるように、葉表
処理した場合には全ての試料が100%近い防除率を示
した。
照生葉の病斑数) ) X 1. OO各種画分の植物
ウィルス防除効果を示した表1にみられるように、葉表
処理した場合には全ての試料が100%近い防除率を示
した。
表1 各種画分の植物ウィルス防除効果式 料
濃度 試料塗布面 接種面(%)防除率培養f液 高分子多糖S−2 蒸留水(対照) 9mg/m1 葉表生葉 葉裏生葉 0、4 mg 7m1 薬麦生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉表全葉 1.00 葉表全葉 87 葉表全葉 100 葉表全葉 95 葉表全葉 7 一方、高分子多糖S−2の植物ウィルス防除効果を示し
た表2にみられるように、葉裏処理でも効果が防除率に
現れるのみならず、主脈を境にして処理し女かった生葉
側にもその効果が及ぶことが認められた。即ち、葉に全
く試料を塗布せずにウィルスを接種した場合に比べて、
試料を塗布した対照生葉の病班の絶対数が減少する効果
が認められた。この結果は、本発明における活性物質が
システミノクに効くことを示している。
濃度 試料塗布面 接種面(%)防除率培養f液 高分子多糖S−2 蒸留水(対照) 9mg/m1 葉表生葉 葉裏生葉 0、4 mg 7m1 薬麦生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉表全葉 1.00 葉表全葉 87 葉表全葉 100 葉表全葉 95 葉表全葉 7 一方、高分子多糖S−2の植物ウィルス防除効果を示し
た表2にみられるように、葉裏処理でも効果が防除率に
現れるのみならず、主脈を境にして処理し女かった生葉
側にもその効果が及ぶことが認められた。即ち、葉に全
く試料を塗布せずにウィルスを接種した場合に比べて、
試料を塗布した対照生葉の病班の絶対数が減少する効果
が認められた。この結果は、本発明における活性物質が
システミノクに効くことを示している。
表2 高分子多糖S−2の植物ウィルス防除効果400
μg/m1 100μg/m1 10μg/ml 蒸留水(対照) 葉裏生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉表全葉 葉表全葉 葉表全葉 葉表全葉 〔発明の効果〕 実施例によって示されたように、高分子多糖S−2は、
高い植物ウィルス防除効果を示し、その効果はシステミ
ソクであることが明らかとなった。
μg/m1 100μg/m1 10μg/ml 蒸留水(対照) 葉裏生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉表全葉 葉表全葉 葉表全葉 葉表全葉 〔発明の効果〕 実施例によって示されたように、高分子多糖S−2は、
高い植物ウィルス防除効果を示し、その効果はシステミ
ソクであることが明らかとなった。
また、いわゆる高分子多糖S−2はシゾフィラム・コミ
ー−ンを培養することにより発酵工業的に容易に生産で
きることが示された。本発明によシ従来罠ない、新しい
抗植物ウィルス剤の供給が可能となった。
ー−ンを培養することにより発酵工業的に容易に生産で
きることが示された。本発明によシ従来罠ない、新しい
抗植物ウィルス剤の供給が可能となった。
第1図は高分子多糖S−2のゲルf過クロマトグラムで
ある。点線は高分子多糖S−2を示し、実線は分子量標
準物質プルランを示す。 第2図は高分子多糖S−2の紫外吸収スペクトルを示す
。 第3図は高分子多糖S−2の赤外吸収スペクトルを示す
。 第4図は日本分析工業■製JAIGEL−GS510と
G5320カラムを装着した日本分析工業(#) PR
EPARATIVE LIQUID OHROMAT
OGRAPHMODELLO−20(溶出液: 0.
I M酢酸アンモニウム(pH6,9) 流速 :
3.5 ミ リ リ フ ト A7 7
m in 検 出 :RI) にて8−
2を分画した時の二つのピークである。 溶出液量 (m 1 ) 第 図 +000 (cl’)
ある。点線は高分子多糖S−2を示し、実線は分子量標
準物質プルランを示す。 第2図は高分子多糖S−2の紫外吸収スペクトルを示す
。 第3図は高分子多糖S−2の赤外吸収スペクトルを示す
。 第4図は日本分析工業■製JAIGEL−GS510と
G5320カラムを装着した日本分析工業(#) PR
EPARATIVE LIQUID OHROMAT
OGRAPHMODELLO−20(溶出液: 0.
I M酢酸アンモニウム(pH6,9) 流速 :
3.5 ミ リ リ フ ト A7 7
m in 検 出 :RI) にて8−
2を分画した時の二つのピークである。 溶出液量 (m 1 ) 第 図 +000 (cl’)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 次の理化学的性質を有する高分子多糖S−2 (1)元素分析 〔高分子多糖S−2〕 C:40.0% H:6.7% N:nil 灰分:3% (2)分子量 ゲル濾過法による範囲:5000〜30000(3)塩
基性、酸性、中性の別 高分子多糖S−2の0.1%水溶液のpH は中性である。 (4)構成糖とその組成 ガラクトース、マンノース、グルコース、 フコースより構成される。ガラクトース: マンノース=2:1、アミノ糖の存在は認 められない。 2 シゾフィラム属(Schizophyllum)に
属する高分子多糖S−2生産菌を培養し、培養物より高
分子多糖S−2を採取することを特徴とする高分子多糖
S−2の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1017678A JPH02200692A (ja) | 1989-01-30 | 1989-01-30 | 新規高分子多糖s―2およびその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1017678A JPH02200692A (ja) | 1989-01-30 | 1989-01-30 | 新規高分子多糖s―2およびその製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02200692A true JPH02200692A (ja) | 1990-08-08 |
Family
ID=11950511
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1017678A Pending JPH02200692A (ja) | 1989-01-30 | 1989-01-30 | 新規高分子多糖s―2およびその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02200692A (ja) |
-
1989
- 1989-01-30 JP JP1017678A patent/JPH02200692A/ja active Pending
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