JPH02200692A - 新規高分子多糖s―2およびその製造法 - Google Patents

新規高分子多糖s―2およびその製造法

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JPH02200692A
JPH02200692A JP1017678A JP1767889A JPH02200692A JP H02200692 A JPH02200692 A JP H02200692A JP 1017678 A JP1017678 A JP 1017678A JP 1767889 A JP1767889 A JP 1767889A JP H02200692 A JPH02200692 A JP H02200692A
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JP
Japan
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polysaccharide
culture
mannose
galactose
polymeric polysaccharide
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Pending
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JP1017678A
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English (en)
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Michiko Aoki
青木 道子
Atsushi Fukushima
福嶋 淳
Motomu Tan
丹 求
Yoichi Mikami
三上 洋一
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Japan Tobacco Inc
Original Assignee
Japan Tobacco Inc
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明はスエヒロタケ属(8chizophyllum
)に属する微生物によって生産され、抗植物ウィルス作
用を有する新規な高分子多糖8−2に関する。
〔従来技術〕
畑、水田あるいは各種施設で栽培されるタバコ ピーマ
ン、トマト、キュウリ、スイカなどはタバコモザイクウ
ィルス(以下TMVという)、キュウリモザイクウィル
ス、キュウリ緑斑モザイクウィルス、ジャガイモYウィ
ルス等にり病し、著しい被害を受けることが多い。これ
らの病原ウィルスは他作物、雑草、樹木、種苗、土壌中
などに存在し、作業時の接触、昆虫の吸汗等によって伝
染する。作物におけるこれらウィルス病の防除対策とし
て、従来はウィルスの発生源の除去または低減、土壌消
11!あるいは殺虫剤によるウィルス媒介者の殺減等、
間接的防除技術が主として用いられてきた。
〔発明が解決しようとする問題点〕
本発明は、従来の市販の植物ウィルス病防除剤に見られ
ない浸透移行性の効果を示し、安全で有効な化学物質を
微生物を用いる発酵工業的手段によって安価に大量に提
供することを目的とする。
〔問題点を解決するための手段〕
本発明者らは、上記の目的を達成するために、多種の微
生物の代謝産物についてスクリーニングを行った結果、
スエヒロタケ(5chizophyllu m )属に
属する菌が培養物中に生産する高分子多糖8−2が顕著
な抗ウィルス活性を示すことを発見した。
本発明に使用するスエヒロタケ属に属する菌株トシては
、天然のスエヒロタケよシ分離した菌株、あるいは公知
の保存菌株、例えばシゾフィラム・コミュ−y (8c
hizophyllum commune) IFo 
4928、IF06504、IFO6505、IFO3
0496、IFO30749(IFOは財団法人・発酵
研究所の略)等があるが、高分子多糖類の生産量が高い
シゾフィラム・コミューン(Schizophyllo
m commune ) J TS 3001 (微工
研菌寄第9767号)が最も望ましい菌株である。なお
、JTS 3001菌株は、IFo 4928菌株を親
株として継代培養し、選抜により得られた高生産株であ
る。
これら菌株の培養物の培養ろ液あるいは菌体の熱水抽出
物をそのまま、あるいはその有効成分である多糖S−2
を水に溶解し、タノ(コ、トマト、ピーマン等の茎葉に
散布あるいは地下部から吸収させることなどによって、
TMV等の感染発病を効果的に防除することができる。
%にスエヒロタケ属に属する菌株の生産する抗ウイルス
活性物質は従来知られている多糖と異なシ、処理植物体
においてシステミノクに発現することがら著効を示す。
本発明において使用する菌株は一般の担子菌培養用培地
を用いて、静置または攪拌培養でき、その効果は有効成
分である高分子多糖S−2の量に依存する。
本発明者らはこれらのことを実験的にV&認し本発明を
行った。
以下に、順を追って詳細に説明する。
高分子多糖S−2は、高分子多糖S−2生産菌を培養し
た後、培養物の液体区分(培養r液)及び菌体区分から
分離採取することによって得ることができるが、特に、
培養r液から多く得られる。
本発明においては、培養培地としては菌体がよく育つも
のであればいかなる組成の培地でもよいが、一般の糸状
菌用培地に酵母エキスなどを加えたものが好ましい。
培養条件としては、例えば20〜30′Oの静置培養で
十分でアリ、また高分子多糖S−2生産菌の生育が可能
で高分子多糖S−2を生産する条件でおればいかなる条
件でも良いが、振とう培養または通気攪拌培養が好まし
い。
高分子多糖S−2生産菌の培養物から遠心分離またはf
過によシ液体区分(培養f液)及び菌体区分(菌体)を
得、ついで、これらから抗ウィルス活性を有する高分子
多糖8−2を採取する。培養r液から高分子多糖S−2
を採取するには常法によればよく、例として透析、限外
f過、分別沈澱、塩析、溶媒分画、イオン交換クロマト
グラフィー 吸着クロマトグラフィーなどの操作を単独
あるいは適宜併用すればよい。
菌体から高分子多糖S−2を採取するには、例えば熱水
抽出を行い、固形分を除き、その後は液体区分からの採
取法に準ずればよい。
本発明において、−船釣には、グルコース、エビオス、
リン酸−カリウム、硫酸マグネシウム及び水道水からな
る培地で高分子多糖S−2生産菌を振とう培養し、培養
終了後、r過によ=5− 一 9培養r液を得る。
ついで、培養f液と菌体熱水抽出液を合わせて、これへ
2倍容量のエタノールを加え、生じる沈澱を採取する。
この沈澱物を総て溶がし、再びエタノールを加えて沈澱
させる。この沈澱物を再び溶かし、多糖溶液を得る。
多糖溶液を各種クロマトグラフィーによシ分析し、糖と
して高分子多糖S−2のみを含む分取液を合わせてから
、透析、減圧濃縮、凍結乾燥によって高分子多糖S−2
を得る。
高分子多糖S−2は、次の理化学的性質を示す。
(1)  元素分析 〔高分子多糖S−2〕 0 : 40.0% H:6.7% N:nil 灰分: 3% (2)  分子量 ゲルf過クロマトグラフィーを行った結果は第1図に示
すとおルである。
ゲルr適法による範囲=5000〜30000ゲルf過
法による平均分子量:17000(3)  紫外吸収ス
ペクトル HITAOHI 557  Double Wavel
engthDouble Beam Spectrop
hotometerを用いて高分子多糖8−2 1mg
/ミり!Jットル溶液の紫外吸収スペクトルを測定した
結果は、第2図に示す通シである。
(4)赤外吸収スペクトル 日本分光A−3型赤外分光光度計を用いて常法(例えば
、泉美治、小川雅弥、加藤俊二、塩用二朗、芝哲夫監修
二機器分析のてびき(1)、1ページ、化学同人、19
86年)によル高分子多糖S−2の赤外吸収スペクトル
を測定した結果は、第3図に示す通9である。
(5)  溶媒に対する溶解性 水、ジメチルスルホキシドに可溶。メタノール、エタノ
ール、アセトン、エーテルに不溶。
(6)呈色反応 フェノール・硫酸反応  陽性 ニンヒドリン反応    陰性 2NTFAを加えて121″Oでlhr加水分解した高
分子多糖S−2溶液をアビセルプレートにチャージさせ
、0゜2%ニンヒドリン試薬(ino、5%エタノール
溶液)をスプレー後、110@0にて乾燥したところ、
発色しなかった。
(力 塩基性、酸性、中性の別 高分子多糖S−2の0.1%水溶液のpHは中性である
(8)物質の色 高分子多糖S−2は白色である。
(9)構成糖とその組成 高分子多糖S−2を2 N −) IJフルオロ酢酸中
、121°Cで1時間、加水分解後、アビセルプレート
を用いた薄層クロマトグラフィーによりガラクトースと
マンノースが検出された。
また、本多糖を加水分解後、常法(例えば、原田篤也、
小泉岳夫編:総合多糖科学上、68ページ、講談社、昭
和48年)により還元してアルジトールアセテートに導
き、ガスクロマトグラフィーにより分析した。これらの
結果から、その主な構成糖はガラクトースとマンノース
(2:1)であり、他に少量のグルコースとフコースが
含まれた。
(10)タンパク質の存在 高分子多糖S−2の20■を1ミリリツトルの水にとか
し、その0.1ミリリツトル中のタンパク質をローリイ
法により定量した。発色は見られなかった。
(11)ピルビン酸の存在 高分子多糖S−2の加水分解物をペーリンガー・マンハ
イム社製乳酸測定キットにより測定したが、ピルビン酸
は存在しなかった。
以下に実施例によυ本発明を更に具体的に説明する。
実施例1 〔菌の培養〕 シゾフィラム舎コミューン(Scbizophyllu
mcommune)JTS 3001菌株(微工研菌寄
第9767号)を、試験管内のバレイショ・ブドウ糖・
寒天培地(斜面、] OミIJ リットル)に接種し、
28°Cで7日間培養し、保存菌株とした。
この保存菌株を、下記の培地、1ooミリリツトルを入
れた5 00 ミ!J IJノトル容三角フラスコに接
種し、28°0.200 rpmで7日間、回転振とう
培養し種母とした。種母培養物1.00ミリリツトルを
ミキサーによりホモジナイズし、そ の 60 ミ リ
 リ ノ ト ル を 、  1.  OOOミ リ 
リ フ トルの培地をいれた3リツトル容三角フラスコ
に接種し、28°C1200rpmで7日間回転振とう
培養し、菌糸培養物を得た。
他の菌株、シゾフィラム・コミューン(Schizop
hyllum commune ) I FO4928
、IF’06504、 IFO6505、IFO304
96、IF’03074.9等も、同様に培養し、菌糸
培養物を得た。
培地ニゲルコース    50g ペプトン      2g 酵母エキス     2g 麦芽エキス    10g KH,gP04本       5g Mg5Ot・7H#0  2.5g 十      ユ 水道水    10100O 実施例2 〔高分子多糖S−2の精製〕 実施例1において得られたシゾフィラム・コミ ュ −
 ン (Schizophyllum   commu
ne)   J  T  53001菌株の菌糸培養物
を、東洋1紙No5cを用いてr過し、菌体と培養r液
を得た。
培養f液11リットルを40°C減圧によって5分の1
まで濃縮した。それに2倍量のエタノールを加え、更に
1%(w/v)溶液となるようにNa1lを加えた。2
日間10°0で静置し多糖を沈澱させ、沈澱を集めエタ
ノールで3回洗浄した後、減圧乾固した。これに蒸留水
を加え懸濁し、更にEDTA溶液を加えて沈澱を溶がし
た。再び2倍量のエタノールを加えて多糖を沈澱させた
。沈澱を回収して減圧乾固し、Na01−]IGEL−
GS 5]、0とG532oカラムを装着しり日本分析
工業(製)PREPAR,A、TIVB  LIQUI
D  OHROMATOGR,APHMODELLO2
0(溶出液: 0.1 M酢酸アンモニウム(pH69
)  流 速  =  3 5  ミ  リ  リ  
フ  ト  /l/  7  m in   検 出 
 :  R■)で分画すると図4に示すように二つのビ
ークに分かれた。この二つめのピークに相当する高分子
多糖のみを集め、透析、減圧濃縮、更に凍結乾燥によっ
て8−2を得た。
実施例3 〔元素分析〕 実施例2において、シゾフィラム・コミュー7 (Sc
hizophyllum commune ) J T
 S 3001菌株培養物から得られた高分子多糖S−
21=3mgを柳本製作所(jIIN−ff−ダーM 
T −3型(燃焼条件:試料分解炉930°C酸化炉8
500C還元炉550°Oヘリュウム流量]−80ミリ
 リ ソ ト ル/ m i n    酸素流1t 
20 ミ リ リ ッ ト ル/m1n)を用いての有
機元素分析結果は、0:40%、 i>、 H: 6.
7%、N:nil、灰分:3%を示した。
実施例4 〔分子量の測定〕 日本分析工業■製JA−IGEI、−GS510と08
320カラムを装着した日本分析工業(製)  PRE
PARATIVE  LIQUII)OHROMATO
GRA P HM OD E L  L O−20を用
いて、1%プルラン(昭和電工膜、Pu1lulan 
5hodex  S T AN D A、 R1)  
P −82) / 0]、 M酢酸アンモニウム(pH
,6,9)を分子量標準物質とし、シゾフィラム・コミ
ューンJ TS 3001菌株培養物から得た高分子多
糖8−2の分子量を測定した。1%高分子多糖S −2
/ O,]、 M酢酸アンモニウムを流速35ミリリッ
トル/min、ゲルf過クロマトグラフィーにより測定
し、システム・インスッルメンツ■製Ohromato
corder  12GPCカートリツジを用いて求め
た重量平均分子量は】7000であり、その結果を、第
1図に示す。
他の菌株の培養物から得た高分子多糖8−2も、分子量
の分布範囲は5000〜30000であった。
実施例5 実施例Iにおいて得られたシゾフィラム・コミー−ンJ
TS3001菌株の菌糸培養物をf過し培養r液と菌体
な得た。この培養F液の抗ウィルス活性をTMVについ
て検定した。
同時に、実施例2において得られた各種高分子多糖類と
高分子多糖S−2を検定した。検定にはウィルスを接種
することによって局部病斑を生ずるタバコ品種(キザン
チ・エヌシー)を用いた。検定用のタバコ植物は直径1
2cmの鉢で育成し、1試料につき2鉢、3葉ずつ計6
葉を用いた。展開した葉の表または裏側の主脈を境とす
る生葉に被験液を絵筆で塗布し、片側の生葉には対置と
して水を塗布した。試料処理1目抜1葉の表側全面にカ
ーボランダムを振りかけ 、  純 化 TMV(0,
05μg /  ミ  リ  リ  ッ  ト  ル 
 )  を塗抹接種した。ウィルス接種3〜4日後、接
種葉に現れた斑点の数を数え、次式によって防除率を算
出し、表1の結果を得た。
防除率(%) = []、 −(処処理案の病斑数/対
照生葉の病斑数) ) X 1. OO各種画分の植物
ウィルス防除効果を示した表1にみられるように、葉表
処理した場合には全ての試料が100%近い防除率を示
した。
表1 各種画分の植物ウィルス防除効果式 料    
 濃度  試料塗布面 接種面(%)防除率培養f液 高分子多糖S−2 蒸留水(対照) 9mg/m1  葉表生葉 葉裏生葉 0、4 mg 7m1  薬麦生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉表全葉  1.00 葉表全葉  87 葉表全葉  100 葉表全葉  95 葉表全葉   7 一方、高分子多糖S−2の植物ウィルス防除効果を示し
た表2にみられるように、葉裏処理でも効果が防除率に
現れるのみならず、主脈を境にして処理し女かった生葉
側にもその効果が及ぶことが認められた。即ち、葉に全
く試料を塗布せずにウィルスを接種した場合に比べて、
試料を塗布した対照生葉の病班の絶対数が減少する効果
が認められた。この結果は、本発明における活性物質が
システミノクに効くことを示している。
表2 高分子多糖S−2の植物ウィルス防除効果400
μg/m1 100μg/m1 10μg/ml 蒸留水(対照) 葉裏生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉裏生葉 葉表全葉 葉表全葉 葉表全葉 葉表全葉 〔発明の効果〕 実施例によって示されたように、高分子多糖S−2は、
高い植物ウィルス防除効果を示し、その効果はシステミ
ソクであることが明らかとなった。
また、いわゆる高分子多糖S−2はシゾフィラム・コミ
ー−ンを培養することにより発酵工業的に容易に生産で
きることが示された。本発明によシ従来罠ない、新しい
抗植物ウィルス剤の供給が可能となった。
【図面の簡単な説明】
第1図は高分子多糖S−2のゲルf過クロマトグラムで
ある。点線は高分子多糖S−2を示し、実線は分子量標
準物質プルランを示す。 第2図は高分子多糖S−2の紫外吸収スペクトルを示す
。 第3図は高分子多糖S−2の赤外吸収スペクトルを示す
。 第4図は日本分析工業■製JAIGEL−GS510と
G5320カラムを装着した日本分析工業(#) PR
EPARATIVE  LIQUID OHROMAT
OGRAPHMODELLO−20(溶出液: 0. 
I M酢酸アンモニウム(pH6,9) 流速 :  
3.5  ミ  リ  リ  フ  ト A7 7  
m in     検 出  :RI)   にて8−
2を分画した時の二つのピークである。 溶出液量 (m 1 ) 第 図 +000 (cl’)

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1 次の理化学的性質を有する高分子多糖S−2 (1)元素分析 〔高分子多糖S−2〕 C:40.0% H:6.7% N:nil 灰分:3% (2)分子量 ゲル濾過法による範囲:5000〜30000(3)塩
    基性、酸性、中性の別 高分子多糖S−2の0.1%水溶液のpH は中性である。 (4)構成糖とその組成 ガラクトース、マンノース、グルコース、 フコースより構成される。ガラクトース: マンノース=2:1、アミノ糖の存在は認 められない。 2 シゾフィラム属(Schizophyllum)に
    属する高分子多糖S−2生産菌を培養し、培養物より高
    分子多糖S−2を採取することを特徴とする高分子多糖
    S−2の製造法。
JP1017678A 1989-01-30 1989-01-30 新規高分子多糖s―2およびその製造法 Pending JPH02200692A (ja)

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