JPH02215381A - 新規セルラーゼ及びその製造法 - Google Patents
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Detergent Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は新規なセルラーゼとその製造法及びセルラーゼ
生産性微生物に関する。
生産性微生物に関する。
[従来の技術]
セルラーゼの開発は従来、バイオマス資源、特にセルロ
ース資源の有効利用を目的として進められてきたが、バ
イオマス用セルラーゼの工業的規模での利用は必ずしも
多くはない。
ース資源の有効利用を目的として進められてきたが、バ
イオマス用セルラーゼの工業的規模での利用は必ずしも
多くはない。
一方、セルラーゼの新規な産業的用途のひとつとして、
洗剤用酵素としてセルラーゼが洗浄力の向上に有効であ
るといわれ注目を集めている。洗剤用セルラーゼは、通
常の洗濯条件では洗浄液のpHが高アルカリ性であるた
め、高アルカリ条件下で機能するアルカリセルラーゼで
なければならず、更にはまた。洗剤成分の一つである陰
イオン性界面活性剤に対しても安定に機能しなければな
らない。
洗剤用酵素としてセルラーゼが洗浄力の向上に有効であ
るといわれ注目を集めている。洗剤用セルラーゼは、通
常の洗濯条件では洗浄液のpHが高アルカリ性であるた
め、高アルカリ条件下で機能するアルカリセルラーゼで
なければならず、更にはまた。洗剤成分の一つである陰
イオン性界面活性剤に対しても安定に機能しなければな
らない。
微生物の生産するアルカリセルラーゼは、好アルカリ性
バチルス属細菌の培養によるセルラーゼAを採取する方
法(特公昭5O−28515)、セルロモナス属に属す
る好アルカリ性細菌を培養してアルカリセルラーゼ30
1−Aを生産する方法(特開昭58−224686)、
好アルカリ性バチルス属細菌に5M−635を培養して
アルカリセルラーゼKを生産する方法(特開昭63−1
09776)等が報告されている。
バチルス属細菌の培養によるセルラーゼAを採取する方
法(特公昭5O−28515)、セルロモナス属に属す
る好アルカリ性細菌を培養してアルカリセルラーゼ30
1−Aを生産する方法(特開昭58−224686)、
好アルカリ性バチルス属細菌に5M−635を培養して
アルカリセルラーゼKを生産する方法(特開昭63−1
09776)等が報告されている。
しかし、これら従来公知のセルラーゼは洗剤成分の一つ
である陰イオン性界面活性剤に対する安定性が必ずしも
十分ではない為、陰イオン性界面活性剤に対してより安
定な酵素の開発が望まれている。
である陰イオン性界面活性剤に対する安定性が必ずしも
十分ではない為、陰イオン性界面活性剤に対してより安
定な酵素の開発が望まれている。
[発明が解決しようとする課題]
本発明は、至適pHが高アルカリ側にあり、また陰イオ
ン性界面活性剤に対しても安定な洗剤用酵素として適し
たセルラーゼを提供しようとするものである。
ン性界面活性剤に対しても安定な洗剤用酵素として適し
たセルラーゼを提供しようとするものである。
[課題を解決するための手段〕
本発明者等は上記のような性質を有するセルラーゼを得
るべく、多数の微生物を分離・培養して検索した結果、
東京部下の土壌中より分離したバチルス属に属するバク
テリアバチルスSD401株が洗剤用酵素として優れた
性質を有する新規セルラーゼを生産することを見出し、
本発明を完成するに至った。
るべく、多数の微生物を分離・培養して検索した結果、
東京部下の土壌中より分離したバチルス属に属するバク
テリアバチルスSD401株が洗剤用酵素として優れた
性質を有する新規セルラーゼを生産することを見出し、
本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は1)カルボキシメチルセルロース(CM
C)を基質とした場合の至適pHが9.5〜10.0.
至適温度が約55℃であり、2)安定pH領域が30℃
、30分処理したときpH6〜11であり、3) 30
00 pp■の直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリ
ウム存在下(pH9,0)で30℃、2時間処理しても
90%以上の残存活性を有する等、界面活性剤に対して
も極めて安定であり、4)分子量はSDS−ポリアクリ
ルアミド電気泳動法により測定した場合、52.000
±2000であり、そして5)等電点はポリアクリルア
ミド電気泳動法によって測定した場合、4.0以下であ
る新規なセルラーゼ;バチルス属の上記セルラーゼ生産
能を有する微生物を培地に培養し、培養物から目的のセ
ルラーゼを採取することを特徴とする上記セルラーゼの
製造法;及び上記セルラーゼ生産能を有するバチルス属
の新規な菌株を提供せんとするものである。
C)を基質とした場合の至適pHが9.5〜10.0.
至適温度が約55℃であり、2)安定pH領域が30℃
、30分処理したときpH6〜11であり、3) 30
00 pp■の直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリ
ウム存在下(pH9,0)で30℃、2時間処理しても
90%以上の残存活性を有する等、界面活性剤に対して
も極めて安定であり、4)分子量はSDS−ポリアクリ
ルアミド電気泳動法により測定した場合、52.000
±2000であり、そして5)等電点はポリアクリルア
ミド電気泳動法によって測定した場合、4.0以下であ
る新規なセルラーゼ;バチルス属の上記セルラーゼ生産
能を有する微生物を培地に培養し、培養物から目的のセ
ルラーゼを採取することを特徴とする上記セルラーゼの
製造法;及び上記セルラーゼ生産能を有するバチルス属
の新規な菌株を提供せんとするものである。
以下に本発明の新規セルラーゼとその製造法及びこれに
用いる新規な菌株について更に詳しく説明する。
用いる新規な菌株について更に詳しく説明する。
生産1
本発明の新規セルラーゼの製造のために使用する微生物
は、前記の性質を有するセルラーゼを生産することが出
来るバチルス属に属するバクテリアであり次のような性
質を有する。
は、前記の性質を有するセルラーゼを生産することが出
来るバチルス属に属するバクテリアであり次のような性
質を有する。
(a)形態
■細胞の形及び大きさ
■細胞の多形成
■運動性
■胞子
■ダラム染色性
■抗酸性
(b)次の各培地での
生育状態
■肉汁寒天平板培地
桿菌であり、その大き
さは0.3〜0.5X 2.8〜
5.2μmである。
多形成を示さない。
周鞭毛を有する。
胞子を形成する。
その形は楕円形であり、
大きさは1.0〜1.5×
1.8〜2.2μmである。
陽性
陰性
集落は円形であり、表
面は偏平状で中心部が
わずかに隆起している。
又、集落の色調は黄白
■肉汁寒天斜面培地
■肉汁液体培地
■肉汁ゼラチン穿刺培養
■リドマスミルク
(c)生理学的性質
の硝酸塩の還元
■脱窒反応
■MRテスト
■vPテスト
■インドールの生成
O硫化水素の生成
■デンプンの加水分解
■クエン酸の利m
■無機窒素源の利用
[相]色素の生成
■ウレアーゼ
■オキシダーゼ
色の半透明である。
拡布状に生育する。
混濁
液化
凝固もペプトン化もし
ない
陰性
陰性
陰性
陰性
陰性
陰性
陽性
陰性
硝a塩及びアンモニラ
ム塩を利用する。
陰性
陰性
はっきりしない
0カタラーゼ
[株]生育の範囲(p H)
(温度)
■酸素に対する態度
@O−Fテスト
陽性
8.0で生育するが、7.1
で生育しない。
10.8で生育するが。
12.3で生育しない。
15℃、40℃で生育する
が、50℃で生育しない。
好気的
発酵(Fer+mentation)
0w類の酸化とガスの生成
酸化 ガス
L−アラビノース
D−キシロース
D−グルコース
D−マンノース
D−フラクトース
D−ガラクトース
麦芽糖
ショ糖
乳糖
(lO)トレハロース 十 −(11
) D−ソルビット (12)叶マンニット − (13)イノジット − (14)グリセリン −−(15)デンプ
ン 十 −以上の菌学的性質につい
てバーシーズ・マニュアル・オブ・システマテインク・
バクテリオロジイー(Bergey’s Manual
of SystematicBacteriolo(
y) 、及びザ・ジーナス・バチルス(The Gen
us Bacillus)を参照した結果、重両は有胞
子桿菌であるバチルス・アルカロフイラス(Bacil
lus alcalophilus)に類縁の菌である
と認められた。しかし、前記バーシーズ・マニュアル・
オブ・システマテインク・バクテリオロジイーに記載の
バチルス・アルカロフイラスの標準株NCIB 104
38と重両は、肉汁寒天培地及びリドマスミルクでの生
育状態、ガラクトースからの酸の生成などその菌学的性
質に於て異なる性質を有し、明かに新規な菌株であるこ
とが認められ、そこでバチルスSD401と命名され、
微工研菌寄第10527号として寄託された。
) D−ソルビット (12)叶マンニット − (13)イノジット − (14)グリセリン −−(15)デンプ
ン 十 −以上の菌学的性質につい
てバーシーズ・マニュアル・オブ・システマテインク・
バクテリオロジイー(Bergey’s Manual
of SystematicBacteriolo(
y) 、及びザ・ジーナス・バチルス(The Gen
us Bacillus)を参照した結果、重両は有胞
子桿菌であるバチルス・アルカロフイラス(Bacil
lus alcalophilus)に類縁の菌である
と認められた。しかし、前記バーシーズ・マニュアル・
オブ・システマテインク・バクテリオロジイーに記載の
バチルス・アルカロフイラスの標準株NCIB 104
38と重両は、肉汁寒天培地及びリドマスミルクでの生
育状態、ガラクトースからの酸の生成などその菌学的性
質に於て異なる性質を有し、明かに新規な菌株であるこ
とが認められ、そこでバチルスSD401と命名され、
微工研菌寄第10527号として寄託された。
尚1本発明に用いる微生物は上記バチルスSD401株
に限らず、本発明の後記する特性を有するセルラーゼの
生産性を有する限り如何なる菌株であっても良い、また
バチルスSD401についても、その自然または人偽的
突然変異株や遺伝子工学的手法による改良株も包含され
る。
に限らず、本発明の後記する特性を有するセルラーゼの
生産性を有する限り如何なる菌株であっても良い、また
バチルスSD401についても、その自然または人偽的
突然変異株や遺伝子工学的手法による改良株も包含され
る。
鹿1方羞
本発明のセルラーゼを製造するに当たって、上述の如き
微生物の培養方法については、特別な要件はなく慣用の
方法により適宜実施できる。
微生物の培養方法については、特別な要件はなく慣用の
方法により適宜実施できる。
培地の栄養源としては通常培養に用いられているものが
広く利用できる。炭素源としては同化できる炭素化合物
またはこれを含有するものであればよく1例えばグルコ
ース、マルトース、デンプン、CMCなどが用いられる
。窒素源としても同化可能な窒素化合物、またはこれを
含有するものであればよく、例えばアンモニウム塩、ペ
プトン、大豆粉、脱脂大豆粉などが用いられる。また、
無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩などの塩類
が使用される。その他、菌の生育及び酵素生産に必要な
各種の有機物や無機物またはこれを含有するもの、例え
ばビタミン類、酵母エキスを培地に添加することが出来
る。
広く利用できる。炭素源としては同化できる炭素化合物
またはこれを含有するものであればよく1例えばグルコ
ース、マルトース、デンプン、CMCなどが用いられる
。窒素源としても同化可能な窒素化合物、またはこれを
含有するものであればよく、例えばアンモニウム塩、ペ
プトン、大豆粉、脱脂大豆粉などが用いられる。また、
無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩などの塩類
が使用される。その他、菌の生育及び酵素生産に必要な
各種の有機物や無機物またはこれを含有するもの、例え
ばビタミン類、酵母エキスを培地に添加することが出来
る。
培養は液体、または固体培養いずれでも良いが液体培養
の方が好ましい、液体培養における培養条件は培地組成
により多少異なるが、生産の目的物であるセルラーゼの
生産に最も有利な条件を選択する。培養温度は25〜3
5℃の範囲であり、培養時間は12時間から3日程度で
あり、セルラーゼ生産が最高に達したときに培養を終了
すれば良い。
の方が好ましい、液体培養における培養条件は培地組成
により多少異なるが、生産の目的物であるセルラーゼの
生産に最も有利な条件を選択する。培養温度は25〜3
5℃の範囲であり、培養時間は12時間から3日程度で
あり、セルラーゼ生産が最高に達したときに培養を終了
すれば良い。
培地のpHは8以上が良く、9〜10がセルラーゼ生産
に好適である。このような培養により、目的とするセル
ラーゼが培養液中に得られる。
に好適である。このような培養により、目的とするセル
ラーゼが培養液中に得られる。
亀豊1裏羞
このようにして得られた培養液からのセルラーゼの採取
は、酵素を採取するための常法に従って。
は、酵素を採取するための常法に従って。
分離、精製することができる。すなわち、濾過法。
遠心分離法などの公知の適当な方法により菌体や培地固
形物を分離して、上澄液または濾液を得ることができる
。これらの分離液を濃縮し、噴霧乾燥する方法や凍結乾
燥する方法、または濃縮することなく可溶性塩類を添加
し沈澱させる塩析法、親水性有機溶剤を添加して沈澱さ
せる沈澱法によりセルラーゼを得ることができる。さら
に酵素を精製するには、例えばイオン交換樹脂等を用い
た吸着脱離法、ゲル濾過法等の精製手段を単独または複
数組み合わせて、セルラーゼを精製することができる。
形物を分離して、上澄液または濾液を得ることができる
。これらの分離液を濃縮し、噴霧乾燥する方法や凍結乾
燥する方法、または濃縮することなく可溶性塩類を添加
し沈澱させる塩析法、親水性有機溶剤を添加して沈澱さ
せる沈澱法によりセルラーゼを得ることができる。さら
に酵素を精製するには、例えばイオン交換樹脂等を用い
た吸着脱離法、ゲル濾過法等の精製手段を単独または複
数組み合わせて、セルラーゼを精製することができる。
醒糞0n厘
本発明のセルラーゼについて、その詳細な性質を記載す
る。
る。
の −゛
■カルボキシメチルセルラーゼ(CMCアーゼ)活性
カルボキシメチルセルロース(CMC)をM/20炭酸
ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(p
H9,0)で溶解したものを基質として用い測定する。
ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(p
H9,0)で溶解したものを基質として用い測定する。
具体的には、1%CMC(pH9,0)1.0 d1M
/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウム
緩衝液(pH9,0) 0.9 mlからなる基質溶液
に酵素液0.1mlを加え、30℃、15分間反応した
0反応後、4−ヒドロキシベンゾイックヒドラジド(4
−Hydroxybenzoic hydrazide
)法(pHBAH法)にて還元糖の定量を行った。すな
わち、反応液2.0 mlにpHBAH試薬1.0 m
lを加え、10分間、100℃で加熱発色させ、冷却後
、波長410 n■で比色定量した。酵素力価は、上記
の条件下で1分間に1μmolのグルコースに相当する
還元糖を生成する酵素量を1単位とした。
/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウム
緩衝液(pH9,0) 0.9 mlからなる基質溶液
に酵素液0.1mlを加え、30℃、15分間反応した
0反応後、4−ヒドロキシベンゾイックヒドラジド(4
−Hydroxybenzoic hydrazide
)法(pHBAH法)にて還元糖の定量を行った。すな
わち、反応液2.0 mlにpHBAH試薬1.0 m
lを加え、10分間、100℃で加熱発色させ、冷却後
、波長410 n■で比色定量した。酵素力価は、上記
の条件下で1分間に1μmolのグルコースに相当する
還元糖を生成する酵素量を1単位とした。
■アビセラーゼ活性
アビセル(メルク社)をl’l/20炭酸ナトリウム−
M/20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(pH9,0)に
懸濁したものを基質に用い測定した。具体的には、10
ル/mlアビセル(pH9,0) t、9mlに酵素液
0.1mlを加え、30℃、300分間反応せた0反応
後。
M/20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(pH9,0)に
懸濁したものを基質に用い測定した。具体的には、10
ル/mlアビセル(pH9,0) t、9mlに酵素液
0.1mlを加え、30℃、300分間反応せた0反応
後。
反応液2.0 mlにpHBAH試薬1.0朧lを加え
。
。
10分間、100℃で加熱発色させ、冷却後、波長41
0 nmで比色定量した。酵素力価は、上記の条件下で
1分間に1μmolのグルコースに相当する還元糖を生
成する酵素量を1単位とした。
0 nmで比色定量した。酵素力価は、上記の条件下で
1分間に1μmolのグルコースに相当する還元糖を生
成する酵素量を1単位とした。
■β−グルコシダーゼ及びP−ニトロフェニルセロビオ
シド分解活性 合成基質であるP−ニトロフェニルβ−D−グルコピラ
ノシド(pNPG)、 及びp−ニトロフェニルβ−D
−セロビオシド(pNPC)を基質に用い測定した。具
体的には、M/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸−
塩化カリウム緩衝液(pH9,0)1.5ml、50+
mMPNPOまたは、 5mMpNPCO,1mlから
なる基質溶液に酵素液0.1耐を加え、30℃、300
分間反応せ、遊離するP−ニトロフェノールを波長40
0n鳳で比色定量した。この条件下で1分間に1μmo
lのp−ニトロフェノールを遊離させる酵素量を1単位
とした。
シド分解活性 合成基質であるP−ニトロフェニルβ−D−グルコピラ
ノシド(pNPG)、 及びp−ニトロフェニルβ−D
−セロビオシド(pNPC)を基質に用い測定した。具
体的には、M/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸−
塩化カリウム緩衝液(pH9,0)1.5ml、50+
mMPNPOまたは、 5mMpNPCO,1mlから
なる基質溶液に酵素液0.1耐を加え、30℃、300
分間反応せ、遊離するP−ニトロフェノールを波長40
0n鳳で比色定量した。この条件下で1分間に1μmo
lのp−ニトロフェノールを遊離させる酵素量を1単位
とした。
1巣曵ユ宜
(1)作用
本酵素は、カルボキシメチルセルロース(CMC)や結
晶性の高いアビセルに作用して。
晶性の高いアビセルに作用して。
βグルコシド結合を加水分解する。また、合成基質であ
るp−ニトロフェニルセロビオシドに作用して、p−ニ
トロフェノールを遊離させる。
るp−ニトロフェニルセロビオシドに作用して、p−ニ
トロフェノールを遊離させる。
(2)基質特異性
本酵素は、CMC、アビセル、p−ニトロフェニルβ−
D−セロビオシド(pNPC)に作用し、p−ニトロフ
ェニルβ−D−グルコピラノシド(pNPG)には作用
しない、CMCアーゼ活性を100とすると、アビセラ
ーゼ活性は3、pNPC分解活性は0. 3の相対活性
を示す。
D−セロビオシド(pNPC)に作用し、p−ニトロフ
ェニルβ−D−グルコピラノシド(pNPG)には作用
しない、CMCアーゼ活性を100とすると、アビセラ
ーゼ活性は3、pNPC分解活性は0. 3の相対活性
を示す。
基質 相対活性
CMC100
アビセル 3
pNPG 0
pNPC0,3
(3)至適pH
ブリトン・ロビンソン(Britton−Robins
on)の広域&IWI液(pH6〜11)を用い、CM
Cを基質として測定した場合、9.5〜10.5である
。
on)の広域&IWI液(pH6〜11)を用い、CM
Cを基質として測定した場合、9.5〜10.5である
。
反応pHと相対活性との関係を第1図に示す。
(4)安定pH範囲
pHの異なる緩衝液の下で、30℃で30分間放置し、
CMC(pH9,0)を基質として測定した場合、安定
pHは6〜11である。熱処理pHと残存活性を第2図
に示す。
CMC(pH9,0)を基質として測定した場合、安定
pHは6〜11である。熱処理pHと残存活性を第2図
に示す。
(5)至適温度
CMCを基質として測定した場合、至適温度は約55℃
である。Ji応湯温度相対活性の関係を第3図に示す。
である。Ji応湯温度相対活性の関係を第3図に示す。
(6)熱安定性
阿/20炭酸ナトリウムーM/20ホウ酸−塩化カリウ
ム緩衝液(pH9,0)の下で、各温度(5〜65℃)
で30分間熱処理し、CMCを基質として測定した場合
、40℃付近まで全く失活せず、55℃で約50%、6
5℃で約30%の残存活性を有する。
ム緩衝液(pH9,0)の下で、各温度(5〜65℃)
で30分間熱処理し、CMCを基質として測定した場合
、40℃付近まで全く失活せず、55℃で約50%、6
5℃で約30%の残存活性を有する。
熱処理温度と残存活性の関係を第4図に示す。
(7)酵素阻害剤、金属イオン及びキレート剤の影響
Cu”(5mM)、バラマーキュリ安息香II(5m
M )によって阻害を受け、Ca” (5mM)によっ
て活性化される。 E D T A (5m M )
による影響は受けない。
M )によって阻害を受け、Ca” (5mM)によっ
て活性化される。 E D T A (5m M )
による影響は受けない。
(8)界面活性剤の影響
直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナトリウム3000
ppmの存在下(J)H9,O)で30℃、2時間処理
してもほとんど失活しない、処理時間と残存活性の関係
を第5図に示す。
ppmの存在下(J)H9,O)で30℃、2時間処理
してもほとんど失活しない、処理時間と残存活性の関係
を第5図に示す。
(9)分子量
SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法により得ら
れた分子量は、52000±2000である。
れた分子量は、52000±2000である。
(10)等電点
等電点ポリアクリルアミドゲル電気泳動法によって測定
した結果、4.0以下である。
した結果、4.0以下である。
本酵・素は、バチルス属に属する菌株バチルスSD40
1株によって生産され、高アルカリpH領域に最適pH
を有するものであり、特公昭50−28515号及び、
特開昭83−109778号に記載されているアルカリ
セルラーゼと比較した場合は、本酵素の分子量が520
00±2000であるのに対し、上記アルカリセルラー
ゼの分子量は15000.30000及び1soooo
であること並びに他の物理化学的性質が異なる点におい
て明かに別異の酵素である。
1株によって生産され、高アルカリpH領域に最適pH
を有するものであり、特公昭50−28515号及び、
特開昭83−109778号に記載されているアルカリ
セルラーゼと比較した場合は、本酵素の分子量が520
00±2000であるのに対し、上記アルカリセルラー
ゼの分子量は15000.30000及び1soooo
であること並びに他の物理化学的性質が異なる点におい
て明かに別異の酵素である。
[発明の効果]
本発明のセルラーゼは、至適pHが9.5〜10.5と
高く、pH11においても最適pHの約70%の相対活
性を有しいると共に+ pH6においても約60%の
相対活性を有し、広いpH領域で活性を保持している。
高く、pH11においても最適pHの約70%の相対活
性を有しいると共に+ pH6においても約60%の
相対活性を有し、広いpH領域で活性を保持している。
また低温側においても充分活性を有する。更に洗剤成分
である陰イオン性界面活性剤に対する安定性が高いため
、洗剤用酵素として使用でき、洗浄力の増強を図ること
が出来る。
である陰イオン性界面活性剤に対する安定性が高いため
、洗剤用酵素として使用でき、洗浄力の増強を図ること
が出来る。
次に本発明について代表的な実施例を挙げて更に具体的
に説明する。
に説明する。
実l(医」−
ペプトン1%、塩化ナトリウム0.5%、リン酸二カリ
ウム0.1%、硫酸マグネシウム0.05%。
ウム0.1%、硫酸マグネシウム0.05%。
酵母エキス0.5%、セロビオース0.5%、CMC0
,5%、炭酸ナトリウム0.5%からなる液体培地を試
験管に分注し、常法により滅菌した。これにSD−40
1株を接種し、35℃で25時間振盪培養した。培養液
を遠心分離し、その上澄のセルラーゼ活性を測定したと
ころ0.20/mlであった。
,5%、炭酸ナトリウム0.5%からなる液体培地を試
験管に分注し、常法により滅菌した。これにSD−40
1株を接種し、35℃で25時間振盪培養した。培養液
を遠心分離し、その上澄のセルラーゼ活性を測定したと
ころ0.20/mlであった。
爽厳透2
大豆粉2%、塩化ナトリウム0.5%、リン酸二カリウ
ム0.1%、硫酸マグネシウム0.02%、酵母エキス
0.5%、マルトース0.5%、CMG O,1%、炭
酸ナトリウム0.3%からなる液体培地を5L培養槽に
入れ、蒸気滅菌した。これにあらかじめ培養しておいた
SD−401株を接種し、35℃で35時間通気攪拌培
養を行った。この培養液を遠心分離し、上澄を得た。こ
の上澄のセルラーゼ活性は1.I U/mlであった。
ム0.1%、硫酸マグネシウム0.02%、酵母エキス
0.5%、マルトース0.5%、CMG O,1%、炭
酸ナトリウム0.3%からなる液体培地を5L培養槽に
入れ、蒸気滅菌した。これにあらかじめ培養しておいた
SD−401株を接種し、35℃で35時間通気攪拌培
養を行った。この培養液を遠心分離し、上澄を得た。こ
の上澄のセルラーゼ活性は1.I U/mlであった。
この上澄液1.3Lを限外濾過膜で濃縮し、凍結乾燥し
てセルラーゼ比活性100 ulzの粗酵素を得た。
てセルラーゼ比活性100 ulzの粗酵素を得た。
実差勇l
実施例2で得られた粗酵素から本発明のセルラーゼを精
製した。
製した。
粗酵素4gを200 m lの10mM 炭酸ナトリ
ウム−10mMホウ酸−塩化カリウム緩衝液(pH9)
に溶かし、硫酸アンモニウム沈澱法にて20−70%画
分の沈澱を得た。この沈澱を上記緩衝液に溶かし、限外
濾過膜により脱塩後、10mMビス−トリス緩衝液(p
H7,0)で平衡化したCM(カルボキシメチル)陽イ
オン交換樹脂カラム(25mmφ、30cm)で精製し
、得られた活性画分を更に、同CM陽イオン交換樹脂カ
ラムで精製を行った。同操作で溶出した活性両分を限外
濾過膜で濃縮脱塩後、10mMビス−トリス緩衝液(p
H7,0)で平衡化したDEAE (ジエチルアミノエ
チル)陰イオン交換樹脂カラム(25mmφ、36cm
)に吸着させ、塩化ナトリウムの濃度勾配(0〜LM)
で溶出させた。粗酵素中にCMCアーゼは少なくとも3
成分存在した。DEAE陰イオン交換樹脂での分画と活
性の関係を図6に示した。この主成分であるCMCアー
ゼ(分画番号122〜141)を限外濾過膜で濃縮説塩
後、更に同DEAE陰イオン交換樹脂にて精製を行った
。同操作で溶出した活性両分を限外濾過膜にて脱塩を行
い、凍結乾燥後、10mMビス−トリス緩衝液(pH7
,0)に溶かし、10mMビス−トリス緩衝液(pH7
,0)で平衡化したフェニルセファロース CL4Bカ
ラムに吸着させ、硫酸アンモニウムの濃度勾配(1〜O
M)で溶出させた。同操作で溶出した活性画分を限外濾
過膜にて脱塩を行い、凍結乾燥した。この過程で2.2
mgの凍結乾燥標品を得た。
ウム−10mMホウ酸−塩化カリウム緩衝液(pH9)
に溶かし、硫酸アンモニウム沈澱法にて20−70%画
分の沈澱を得た。この沈澱を上記緩衝液に溶かし、限外
濾過膜により脱塩後、10mMビス−トリス緩衝液(p
H7,0)で平衡化したCM(カルボキシメチル)陽イ
オン交換樹脂カラム(25mmφ、30cm)で精製し
、得られた活性画分を更に、同CM陽イオン交換樹脂カ
ラムで精製を行った。同操作で溶出した活性両分を限外
濾過膜で濃縮脱塩後、10mMビス−トリス緩衝液(p
H7,0)で平衡化したDEAE (ジエチルアミノエ
チル)陰イオン交換樹脂カラム(25mmφ、36cm
)に吸着させ、塩化ナトリウムの濃度勾配(0〜LM)
で溶出させた。粗酵素中にCMCアーゼは少なくとも3
成分存在した。DEAE陰イオン交換樹脂での分画と活
性の関係を図6に示した。この主成分であるCMCアー
ゼ(分画番号122〜141)を限外濾過膜で濃縮説塩
後、更に同DEAE陰イオン交換樹脂にて精製を行った
。同操作で溶出した活性両分を限外濾過膜にて脱塩を行
い、凍結乾燥後、10mMビス−トリス緩衝液(pH7
,0)に溶かし、10mMビス−トリス緩衝液(pH7
,0)で平衡化したフェニルセファロース CL4Bカ
ラムに吸着させ、硫酸アンモニウムの濃度勾配(1〜O
M)で溶出させた。同操作で溶出した活性画分を限外濾
過膜にて脱塩を行い、凍結乾燥した。この過程で2.2
mgの凍結乾燥標品を得た。
この凍結乾燥標品は白色であり、ボリアクリルアミドゲ
ル電気泳動法により試験したところ単一であることが確
認された。
ル電気泳動法により試験したところ単一であることが確
認された。
この凍結乾燥標品を用いて、至適pH,pH安定性、至
適温度、熱安定性、界面活性剤に対する安定性を調べた
結果は第1図〜第5図に示した通りである。
適温度、熱安定性、界面活性剤に対する安定性を調べた
結果は第1図〜第5図に示した通りである。
裏ム舅A
本発明セルラーゼの洗浄試験を実施した。
(a)汚染布の作成
約200m1の活性炭を乳バチへ入れ、純水で練りなが
ら水溶液にする。パレット中で綿布に均一に塗布し、自
然乾燥させ、20回づつスポンジでこすり余分な活性炭
を除<、5cmX5cmに裁・断し、洗浄試験に供した
。
ら水溶液にする。パレット中で綿布に均一に塗布し、自
然乾燥させ、20回づつスポンジでこすり余分な活性炭
を除<、5cmX5cmに裁・断し、洗浄試験に供した
。
(b)洗浄試験
洗浄はターボトメ−ター(Terg−0−To+aet
er)にて行った。洗浄条件は回転数12Orpmにて
30’C。
er)にて行った。洗浄条件は回転数12Orpmにて
30’C。
10分間、洗剤(J I S無リン)濃度1330 p
pmとした。実施例2で得られた粗酵素をLoIIgル
の濃度で添加すると無添加に比べ 白炭で5%、洗濯効
率で8%の向上がみられた。
pmとした。実施例2で得られた粗酵素をLoIIgル
の濃度で添加すると無添加に比べ 白炭で5%、洗濯効
率で8%の向上がみられた。
第1図は反応pHと相対活性との関係を示すグラフであ
る。 第2図は熱処理pHと残存活性を示すグラフである。 313図は反応温度と相対活性の関係を示すグラフであ
る。 第3図 第4図 第4図は熱処理温度と残存活性の関係を示すグラフであ
る。 第5図は直鎖アルカリベンゼンスルホン酸ナトリウム3
000pp+aの存在下での安定性を示すグラフである
。 第6図は一回目のDEAE陰イオン交換樹脂での分画と
活性を示すグラフである。 第1図 第2図
る。 第2図は熱処理pHと残存活性を示すグラフである。 313図は反応温度と相対活性の関係を示すグラフであ
る。 第3図 第4図 第4図は熱処理温度と残存活性の関係を示すグラフであ
る。 第5図は直鎖アルカリベンゼンスルホン酸ナトリウム3
000pp+aの存在下での安定性を示すグラフである
。 第6図は一回目のDEAE陰イオン交換樹脂での分画と
活性を示すグラフである。 第1図 第2図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記の性質を有する新規セルラーゼ (1)至適pH、至適温度 カルボキシメチルセルロース(CMC)を基質とした場
合の至適pHが9.5〜10.5、至適温度が約55℃
である。 (2)安定pH 30℃で30分処理したときpH6〜11まで安定であ
る。 (3)界面活性剤の影響 3000ppmの直鎖アルキルベンゼンスルホン酸ナト
リウム存在下(pH9.0)で30℃、2時間処理して
も90%以上の残存活性を有する。 (4)分子量 SDS−ポリアクリルアミド電気泳動により測定した分
子量が52000±2000である。 (5)等電点 等電点電気泳動によって測定した等電点が 4.0以下である。 2、バチルス属に属し請求項1に記載のセルラーゼ生産
能を有する微生物を培地に培養し、培養物から目的とす
るセルラーゼを採取することを特徴とする請求項1に記
載のセルラーゼの製造方法。 3、請求項1記載のセルラーゼ生産能を有する微生物。 4、菌株がバチルスSD401株(微工研菌寄第105
27号)である請求項3記載の微生物。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3376289A JP2731212B2 (ja) | 1989-02-15 | 1989-02-15 | 新規セルラーゼ及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3376289A JP2731212B2 (ja) | 1989-02-15 | 1989-02-15 | 新規セルラーゼ及びその製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02215381A true JPH02215381A (ja) | 1990-08-28 |
| JP2731212B2 JP2731212B2 (ja) | 1998-03-25 |
Family
ID=12395443
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3376289A Expired - Fee Related JP2731212B2 (ja) | 1989-02-15 | 1989-02-15 | 新規セルラーゼ及びその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2731212B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5231022A (en) * | 1990-07-24 | 1993-07-27 | Showa Denko K.K. | Cellulase isolated from bacillus ferm bp-3431 or a mutant strain thereof |
| WO1997000020A1 (fr) * | 1995-06-14 | 1997-01-03 | Novo Nordisk A/S | Compose pour les animaux ou l'homme a prendre par voie orale et contenant des enzymes, et procede pour produire ledit compose |
-
1989
- 1989-02-15 JP JP3376289A patent/JP2731212B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5231022A (en) * | 1990-07-24 | 1993-07-27 | Showa Denko K.K. | Cellulase isolated from bacillus ferm bp-3431 or a mutant strain thereof |
| US5314637A (en) * | 1990-07-24 | 1994-05-24 | Showa Denko K.K. | Detergent comprising isolated cellulase from bacillus ferm bp-3431 or a mutant strain thereof, surfactant and builder |
| US5318905A (en) * | 1990-07-24 | 1994-06-07 | Showa Denko K.K. | Composition containing celluase from Bacillus Ferm BP-3431 or a mutant strain thereof, and paper pulp and method of using celluase to treat paper pulp slurry |
| WO1997000020A1 (fr) * | 1995-06-14 | 1997-01-03 | Novo Nordisk A/S | Compose pour les animaux ou l'homme a prendre par voie orale et contenant des enzymes, et procede pour produire ledit compose |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2731212B2 (ja) | 1998-03-25 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |