JPH02238897A - 総ビリルビンの測定方法および測定用試薬 - Google Patents
総ビリルビンの測定方法および測定用試薬Info
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- JPH02238897A JPH02238897A JP1060323A JP6032389A JPH02238897A JP H02238897 A JPH02238897 A JP H02238897A JP 1060323 A JP1060323 A JP 1060323A JP 6032389 A JP6032389 A JP 6032389A JP H02238897 A JPH02238897 A JP H02238897A
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/26—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
（産業上の利用分野）
本発明は生体液中の各種ビリルビンの測定方法および測
定用試薬に関するものである。
定用試薬に関するものである。
（従来の技術）
ビリルビンはテトラピロール類に属する黄色色素であり
、生体液中では大別して非抱合型ビリルビン、抱合型ビ
リルビンとして存在する。抱合型ビリルビンはグルクロ
ン酸などの糖類がビリルビンのプロピオン酸基に１分子
または２分子の結合したものである。非抱合型ビリルビ
ンは化学的に修飾を受けていないビリルビンである。
、生体液中では大別して非抱合型ビリルビン、抱合型ビ
リルビンとして存在する。抱合型ビリルビンはグルクロ
ン酸などの糖類がビリルビンのプロピオン酸基に１分子
または２分子の結合したものである。非抱合型ビリルビ
ンは化学的に修飾を受けていないビリルビンである。
ところで、溶血性貧血、溶血性黄直などの病態では主に
非抱合聖ビリルビン量が増大し、また閉塞性黄直などの
病態では、抱合型どりルビン量が増大することが知られ
ている。従ってこれら各種のビリルビンの分別定量は臨
床診断などにおいて重要な位置を占めている。
非抱合聖ビリルビン量が増大し、また閉塞性黄直などの
病態では、抱合型どりルビン量が増大することが知られ
ている。従ってこれら各種のビリルビンの分別定量は臨
床診断などにおいて重要な位置を占めている。
各種のビリルビンを分別定量しうるものとしては、ジア
ゾ試薬を用いる方法、高速液体クロマトグラフィーを利
用する方法、ビリルビンオキシダーゼなどの酸化酵素を
利用する方法などが挙げられる。
ゾ試薬を用いる方法、高速液体クロマトグラフィーを利
用する方法、ビリルビンオキシダーゼなどの酸化酵素を
利用する方法などが挙げられる。
このうちジアゾ試薬を用いる方法については、使用する
ジアゾ化反応促進剤の種類と、生成するアゾビリルビン
の定量方法の違いにより、種々のものが報告されている
。例えば代表的なものとしては、マロイと工ヴエリン（
Ｍａｌｌｏｙ ＆ Ｅｖｅｌｙｎ）らによる試薬〔ジャ
ーナル オブ バイオ口ジカル ケミストリー（Ｊｏｕ
ｒｎａｌ ｏｒ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈ６ｍｉｓ
ｔｒｙ）第１１９巻，４８ｌ頁（１９３７年）〕などか
ある。
ジアゾ化反応促進剤の種類と、生成するアゾビリルビン
の定量方法の違いにより、種々のものが報告されている
。例えば代表的なものとしては、マロイと工ヴエリン（
Ｍａｌｌｏｙ ＆ Ｅｖｅｌｙｎ）らによる試薬〔ジャ
ーナル オブ バイオ口ジカル ケミストリー（Ｊｏｕ
ｒｎａｌ ｏｒ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈ６ｍｉｓ
ｔｒｙ）第１１９巻，４８ｌ頁（１９３７年）〕などか
ある。
高速液体クロマトグラ７イーによって分画定量する方法
には、逆相ＨＰＬＣ力ラムを使用し各種ビリルビンをリ
ン酸緩衝液とインプロパノールのグラジエントによって
溶出、分析するラウフ（Ｌａｕｆｆ）らの方法〔ジャー
ナル オプ クロマトグラフ｛ −（Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈい第２２６巻，第３
９１頁（１９８１年）〕などがある。
には、逆相ＨＰＬＣ力ラムを使用し各種ビリルビンをリ
ン酸緩衝液とインプロパノールのグラジエントによって
溶出、分析するラウフ（Ｌａｕｆｆ）らの方法〔ジャー
ナル オプ クロマトグラフ｛ −（Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈい第２２６巻，第３
９１頁（１９８１年）〕などがある。
酸化酵素を利用する方法は、酸化酵素を作用させること
によってビリルビンを酸化し、ビリルビン自体の持つ４
５０ｎｍ付近の黄色を消失させ、反応前後の吸光度変化
量よりビリルビンを測定するものである。この場合反応
条件を種々変えることにより、各種ビリルビンのみを特
異的に若しくは全てのビリルビンを酸化させることが出
来る。この方法に於いて使用される試薬としては、例え
ばビリルビンオキシダーゼを用いる試薬〔クリニカル
ケミストリ−（Ｃ Ｉｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒ
ｙ）第２ ０巻，第７８３頁（１９７４年）〕、ラッカ
ーゼ、チロシナーゼ、アスコノレビン酸オキシダーゼな
どの酸化酵素を用いる試薬（特開昭５９−１７９９９号
公報）、コール酸などの陰イオン性界面活性剤や芳香族
カルボン酸などを反応促進剤として使用している総ビリ
ルビン測定用試薬（特開昭６０−２４９０６０号公報な
ど）、ｐＨ，緩衝液、界面活性剤の選定によって抱合型
ビリルビンのみにビリルビンオキシダーゼが働く条件を
設定した抱金型１リルビン測定用試薬が提出されている
。この抱合型ビリルビン測定用試薬としては、例えばｐ
Ｈ９〜１１の範囲の緩衝液中でビリルビンオキシダーゼ
を作用させて抱合型ビリルビンを定量する試薬（特開昭
６２−５８９９９号公報）、陰イオン性界面活性剤を含
有するｐＨ５〜６の酸性緩衝液中でビリルビンオキシダ
ーゼを作用させて抱合型ビリルビンを定量する試薬（特
開昭６０−１５２９５５号公報）、ｐＨ３．５〜４．５
の緩衝液中でビリルビンオキシダーゼを作用させて抱金
型ビリルビンを定量する試薬（特公昭６１−４４０００
号公報）などがある。以上に述べた他に、陰イオン性界
面活性剤を含有するｐＨ８．０以上のアルカリ性緩衝液
中で、検体中のビリルビンと試薬中のビリルビンオキシ
ダーゼの比をある限定された範囲に保持することにより
、非抱合型ビリルビン（遊離ビリルビン）を定量する方
法（特開昭６０−１５４１６２号公報）も提出されてい
る。
によってビリルビンを酸化し、ビリルビン自体の持つ４
５０ｎｍ付近の黄色を消失させ、反応前後の吸光度変化
量よりビリルビンを測定するものである。この場合反応
条件を種々変えることにより、各種ビリルビンのみを特
異的に若しくは全てのビリルビンを酸化させることが出
来る。この方法に於いて使用される試薬としては、例え
ばビリルビンオキシダーゼを用いる試薬〔クリニカル
ケミストリ−（Ｃ Ｉｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒ
ｙ）第２ ０巻，第７８３頁（１９７４年）〕、ラッカ
ーゼ、チロシナーゼ、アスコノレビン酸オキシダーゼな
どの酸化酵素を用いる試薬（特開昭５９−１７９９９号
公報）、コール酸などの陰イオン性界面活性剤や芳香族
カルボン酸などを反応促進剤として使用している総ビリ
ルビン測定用試薬（特開昭６０−２４９０６０号公報な
ど）、ｐＨ，緩衝液、界面活性剤の選定によって抱合型
ビリルビンのみにビリルビンオキシダーゼが働く条件を
設定した抱金型１リルビン測定用試薬が提出されている
。この抱合型ビリルビン測定用試薬としては、例えばｐ
Ｈ９〜１１の範囲の緩衝液中でビリルビンオキシダーゼ
を作用させて抱合型ビリルビンを定量する試薬（特開昭
６２−５８９９９号公報）、陰イオン性界面活性剤を含
有するｐＨ５〜６の酸性緩衝液中でビリルビンオキシダ
ーゼを作用させて抱合型ビリルビンを定量する試薬（特
開昭６０−１５２９５５号公報）、ｐＨ３．５〜４．５
の緩衝液中でビリルビンオキシダーゼを作用させて抱金
型ビリルビンを定量する試薬（特公昭６１−４４０００
号公報）などがある。以上に述べた他に、陰イオン性界
面活性剤を含有するｐＨ８．０以上のアルカリ性緩衝液
中で、検体中のビリルビンと試薬中のビリルビンオキシ
ダーゼの比をある限定された範囲に保持することにより
、非抱合型ビリルビン（遊離ビリルビン）を定量する方
法（特開昭６０−１５４１６２号公報）も提出されてい
る。
（発明が解決しようとする課題）
ジアゾ試薬を用いる方法は、ジアゾ化反応の反応促進剤
を含有するか否かによって総ビリルビンと抱合型ビリル
ビンを分別測定しているが、その分別性は実際上不十分
であるという問題点を有している。特にこの分別性の不
十分さは、アルブミンを含まない検体若しくはサリチル
酸などの薬剤を含む検体について顕著である。またこの
方法の問題点として、抱合型ビリルビン、非抱合型ビリ
ルビンがアゾ化されて生じた各種のアゾビリルビンは、
吸光係数などの分光学的性質において、それぞれ異なる
ため、測定値に誤差が生じるということが挙げられる。
を含有するか否かによって総ビリルビンと抱合型ビリル
ビンを分別測定しているが、その分別性は実際上不十分
であるという問題点を有している。特にこの分別性の不
十分さは、アルブミンを含まない検体若しくはサリチル
酸などの薬剤を含む検体について顕著である。またこの
方法の問題点として、抱合型ビリルビン、非抱合型ビリ
ルビンがアゾ化されて生じた各種のアゾビリルビンは、
吸光係数などの分光学的性質において、それぞれ異なる
ため、測定値に誤差が生じるということが挙げられる。
さらに現在抱合型ビリルビンの標準物質として使用され
ている人工基質のジタウロビリルピンと、生体液中に存
在する実際の抱合型ビリルビンは、反応性およびアゾ化
したときの吸光係数等において、大きく異なるため問題
がある。
ている人工基質のジタウロビリルピンと、生体液中に存
在する実際の抱合型ビリルビンは、反応性およびアゾ化
したときの吸光係数等において、大きく異なるため問題
がある。
高速液体クロマトグラフィーによって分画定量する方法
は、十分な分別性を有してはいるが、高価で特殊な装置
を使用すること、分析時間が長いこと、及び多数の検体
を処理できないことなどの問題点を有する。
は、十分な分別性を有してはいるが、高価で特殊な装置
を使用すること、分析時間が長いこと、及び多数の検体
を処理できないことなどの問題点を有する。
酸化酵素を利用した試薬による測定方法の大きな問題点
としては、ジアゾ試薬を用いる方法と同様に、現在適切
な標準物質が存在しないことが挙げられる。すなわち標
準物質として使用されるジタウロビリルビンもしくは非
抱合型ビリルビンは、実際の生体液中の抱金型ビリルビ
ンとは、分光学的性質（吸光係数、極大吸収波長など）
あるいは試薬との反応性において異なるため測定誤差が
生じ、各種ビリルビンの測定値は正確な値を示していな
い。このように一種類の標準物質を用いて、複数種のビ
リルビンが含まれる生体液中の各種ビリルビンを分別測
定する場合には、必然的に測定誤差が生じる。またジタ
ウロビリルビン、非抱合型ビリルビンなどを複数混合し
て標準物質とする場合も生体液に応じてその最適な混合
比率の選択が不可欠であることからその調製がきわめて
難しい等の問題点を有する。また抱金型ビリルビン測定
用試薬で設定されている分別測定条件は、検体中のアル
ブミンなどの蛋白質の存在を前提として設定されている
ため、不十分であり、新生児の血清あるいはサリチル酸
等の薬剤を含む血清などに見られる様な、蛋白質と遊離
した状態のビリルビンの割合が高い検体などを正確に測
定することは困難である。さらに特公昭６１−４４００
０号公報における抱合聖ビリルビン測定用試薬のｐＨ範
囲はビリルビンオキシダーゼにとって安定性、活性の両
方の面できわめて不利な条件であり、測定法としても不
都合な状況を呈している。
としては、ジアゾ試薬を用いる方法と同様に、現在適切
な標準物質が存在しないことが挙げられる。すなわち標
準物質として使用されるジタウロビリルビンもしくは非
抱合型ビリルビンは、実際の生体液中の抱金型ビリルビ
ンとは、分光学的性質（吸光係数、極大吸収波長など）
あるいは試薬との反応性において異なるため測定誤差が
生じ、各種ビリルビンの測定値は正確な値を示していな
い。このように一種類の標準物質を用いて、複数種のビ
リルビンが含まれる生体液中の各種ビリルビンを分別測
定する場合には、必然的に測定誤差が生じる。またジタ
ウロビリルビン、非抱合型ビリルビンなどを複数混合し
て標準物質とする場合も生体液に応じてその最適な混合
比率の選択が不可欠であることからその調製がきわめて
難しい等の問題点を有する。また抱金型ビリルビン測定
用試薬で設定されている分別測定条件は、検体中のアル
ブミンなどの蛋白質の存在を前提として設定されている
ため、不十分であり、新生児の血清あるいはサリチル酸
等の薬剤を含む血清などに見られる様な、蛋白質と遊離
した状態のビリルビンの割合が高い検体などを正確に測
定することは困難である。さらに特公昭６１−４４００
０号公報における抱合聖ビリルビン測定用試薬のｐＨ範
囲はビリルビンオキシダーゼにとって安定性、活性の両
方の面できわめて不利な条件であり、測定法としても不
都合な状況を呈している。
非抱合型ビリルビン（遊離ビ゜リルビン）を定量する方
法（特開昭６０−１５４１６２号公報）はビリルビンオ
キシダーゼの使用量を検体中の非抱合型ビリルビンに応
じて調節しなければならず、未知濃度の試料を測定する
には極めて不適当なものである。またこの方法による試
薬は非抱合型ビリルビンのみに作用するとされているが
、抱金型ビリルビンにも一部作用するため、臨床検査に
適用するのに十分な分別性を有していない。
法（特開昭６０−１５４１６２号公報）はビリルビンオ
キシダーゼの使用量を検体中の非抱合型ビリルビンに応
じて調節しなければならず、未知濃度の試料を測定する
には極めて不適当なものである。またこの方法による試
薬は非抱合型ビリルビンのみに作用するとされているが
、抱金型ビリルビンにも一部作用するため、臨床検査に
適用するのに十分な分別性を有していない。
（課題を解決するための手段）
本発明者らは現在行われているビリルビン測定において
最も重要な標準物質に関わる問題点を解決するために鋭
意検討した結果、β−グルクロニダーゼなどの脱抱合能
を有する酵素を主成分として含む反応試薬をビリルビン
含有検体に作用させて、抱合型ビリルビンを非抱合型ビ
リルビンに精度良く変換し、検体中の全てのビリルビン
を非抱合型ビリルビンとする。その後さらにビリルビン
酸化能を有する酸化剤を作用させてこの非抱合型ビリル
ビンを酸化し、それに伴う吸光度変化量を求めれば、既
知濃度の非抱合型ビリルビンのみを標準物質として、検
体中の非抱合型ビリルビン、即ち総ビリルビンを精度良
く測定できることを見出した。
最も重要な標準物質に関わる問題点を解決するために鋭
意検討した結果、β−グルクロニダーゼなどの脱抱合能
を有する酵素を主成分として含む反応試薬をビリルビン
含有検体に作用させて、抱合型ビリルビンを非抱合型ビ
リルビンに精度良く変換し、検体中の全てのビリルビン
を非抱合型ビリルビンとする。その後さらにビリルビン
酸化能を有する酸化剤を作用させてこの非抱合型ビリル
ビンを酸化し、それに伴う吸光度変化量を求めれば、既
知濃度の非抱合型ビリルビンのみを標準物質として、検
体中の非抱合型ビリルビン、即ち総ビリルビンを精度良
く測定できることを見出した。
またさらに、ビリルビン酸化能を有する酵素等の酸化剤
、ビリルビンと錯体を形成しうる金属イオン、界面活性
剤、ｐＨ６．５以下に緩衝能を有する緩衝剤を主成分と
する試薬をビリルビン含有検体と作用させることにより
、抱合型ビリルビンのみを特異的に酸化消去して吸光度
を測定した後、ｐＨ７．０以上にするなどの方法により
残存する非抱合型ビリルビンを酸化し、それに伴う吸光
度変化量を求めれば、既知濃度の非抱合型ビリルビンの
みを標準物質として、検体中の非抱合型ビリルビンを精
度良く測定できることを見出し、本発明を達成するに至
った。
、ビリルビンと錯体を形成しうる金属イオン、界面活性
剤、ｐＨ６．５以下に緩衝能を有する緩衝剤を主成分と
する試薬をビリルビン含有検体と作用させることにより
、抱合型ビリルビンのみを特異的に酸化消去して吸光度
を測定した後、ｐＨ７．０以上にするなどの方法により
残存する非抱合型ビリルビンを酸化し、それに伴う吸光
度変化量を求めれば、既知濃度の非抱合型ビリルビンの
みを標準物質として、検体中の非抱合型ビリルビンを精
度良く測定できることを見出し、本発明を達成するに至
った。
すなわち第一の発明は、検体中の総ビリルビン量を測定
するに際し、脱抱合能を有する酵素を含む試薬によって
抱合型ビリルビンを予め脱抱合して非抱合型ビリルビン
とした後、検体中に存在する非抱合型ビリルビンを求め
ることによって総ビリルビンを測定することを特徴とす
る総ビリルビンの測定方法を要旨とするものであり、第
二の発明は、ピリルビン酸化能を有する酵素、過酸化物
および遷移金属イオンを単独もしくは組合せて調製した
酸化剤と、脱抱合能を有する酵素とを含有することを特
徴とする総ビリルビン測定用試薬を要旨とするものであ
り、第三の発明は、検体中の非抱合型ビリルビン量を測
定するに際し、ビリルビンと錯体を形成しうる金属イオ
ンおよび界面活性剤の共存下、ビリルビン酸化能を有す
る酵素、過酸化物および遷移金属イオンを単独もしくは
組合せて調製した酸化剤を用いて、ｐＨ６．５以下で検
体中の抱合型ビリルビンを予め特異的に酸化消去後、検
体中に存在する非抱合型ビリルビンを測定することを特
徴とする非抱合型ビリルビンの測定方法を要旨とするも
のであり、第四の発明は、ビリルビン酸化能を有する酵
素、過酸化物及び遷移金属イオンを単独もしくは組合せ
て調製した酸化剤、ビリルビンと錯体を形成しうる金属
イオン、界面活性剤、ｐＨ６．５以下の緩衝液を含む試
薬とキレート剤、ｐＨ６．５以上の緩衝液および界面活
性剤のうちから選ばれる１種以上の成分よりなる試薬と
からなることを特徴とする非抱合型ビリルビン測定用試
薬を要旨とするものである。
するに際し、脱抱合能を有する酵素を含む試薬によって
抱合型ビリルビンを予め脱抱合して非抱合型ビリルビン
とした後、検体中に存在する非抱合型ビリルビンを求め
ることによって総ビリルビンを測定することを特徴とす
る総ビリルビンの測定方法を要旨とするものであり、第
二の発明は、ピリルビン酸化能を有する酵素、過酸化物
および遷移金属イオンを単独もしくは組合せて調製した
酸化剤と、脱抱合能を有する酵素とを含有することを特
徴とする総ビリルビン測定用試薬を要旨とするものであ
り、第三の発明は、検体中の非抱合型ビリルビン量を測
定するに際し、ビリルビンと錯体を形成しうる金属イオ
ンおよび界面活性剤の共存下、ビリルビン酸化能を有す
る酵素、過酸化物および遷移金属イオンを単独もしくは
組合せて調製した酸化剤を用いて、ｐＨ６．５以下で検
体中の抱合型ビリルビンを予め特異的に酸化消去後、検
体中に存在する非抱合型ビリルビンを測定することを特
徴とする非抱合型ビリルビンの測定方法を要旨とするも
のであり、第四の発明は、ビリルビン酸化能を有する酵
素、過酸化物及び遷移金属イオンを単独もしくは組合せ
て調製した酸化剤、ビリルビンと錯体を形成しうる金属
イオン、界面活性剤、ｐＨ６．５以下の緩衝液を含む試
薬とキレート剤、ｐＨ６．５以上の緩衝液および界面活
性剤のうちから選ばれる１種以上の成分よりなる試薬と
からなることを特徴とする非抱合型ビリルビン測定用試
薬を要旨とするものである。
本発明の総ビリルビン測定用試薬は、２試薬系で構成さ
れる。第ｌ試薬は抱合型ピリルビンを非抱合型ビリルビ
ンに変換するための脱抱合能を有する酵素を主成分とし
て含み、第２試薬は第１試薬によって生成した非抱合型
ビリルビンを定量するための酸化剤を主成分として含む
。
れる。第ｌ試薬は抱合型ピリルビンを非抱合型ビリルビ
ンに変換するための脱抱合能を有する酵素を主成分とし
て含み、第２試薬は第１試薬によって生成した非抱合型
ビリルビンを定量するための酸化剤を主成分として含む
。
総ビリルビン測定用第ｌ試薬に主成分として使用する脱
抱合能を有する酵素としては、例えばグル久ロニダーゼ
、グルコシダーゼ及びガラクトシダーゼなと種々の糖エ
ステル加水分解酵素あるいはスルファターゼがあり、こ
れらを単独にもしくは複数混合して用いることができる
。特に検体がヒト生体液である場合は、グルクロニダー
ゼ単独の使用が可能である。これら脱抱合能を有する酵
素は動物、植物若しくは微生物のいずれの起源由来のも
のも使用することができるが、例えばグルクロニダーゼ
としては、ウシ肝臓、カタツムリ若しくは大腸菌由来の
もの、グルコシダーゼとしては酵母若しくはアーモンド
由来のもの、ガラクトシダーゼとしては大腸菌由来のも
の及びスルファターゼとしてはカタツノ、り由来のもの
などが使用できる。これらの脱抱合能を有する酵素は０
．０１−１００ユニット／ｍａの濃度範囲で使用できる
。
抱合能を有する酵素としては、例えばグル久ロニダーゼ
、グルコシダーゼ及びガラクトシダーゼなと種々の糖エ
ステル加水分解酵素あるいはスルファターゼがあり、こ
れらを単独にもしくは複数混合して用いることができる
。特に検体がヒト生体液である場合は、グルクロニダー
ゼ単独の使用が可能である。これら脱抱合能を有する酵
素は動物、植物若しくは微生物のいずれの起源由来のも
のも使用することができるが、例えばグルクロニダーゼ
としては、ウシ肝臓、カタツムリ若しくは大腸菌由来の
もの、グルコシダーゼとしては酵母若しくはアーモンド
由来のもの、ガラクトシダーゼとしては大腸菌由来のも
の及びスルファターゼとしてはカタツノ、り由来のもの
などが使用できる。これらの脱抱合能を有する酵素は０
．０１−１００ユニット／ｍａの濃度範囲で使用できる
。
さらに好ましくは０．０５〜５０ユニット／ｍＱの濃度
範囲で使用できる。０．Ｏｌユニット／ｍＱ以下だと脱
抱合反応が完結するのに長時間を要するため好ましくな
く、又１００ユニット／ｍ（１以上だと試薬が高価とな
り又高蛋白濃度のため反応が遅くなり、更に酵素溶液中
の夾雑物により抱合型ビリルビンが酸化されるなどの影
響が出る場合もあり好ましくない。
範囲で使用できる。０．Ｏｌユニット／ｍＱ以下だと脱
抱合反応が完結するのに長時間を要するため好ましくな
く、又１００ユニット／ｍ（１以上だと試薬が高価とな
り又高蛋白濃度のため反応が遅くなり、更に酵素溶液中
の夾雑物により抱合型ビリルビンが酸化されるなどの影
響が出る場合もあり好ましくない。
総ビリルビン測定用第２試薬に用いる酸化剤としては、
例えばビリルビンオキシダーゼ及びラツカーゼなどの酸
化酵素、グルコースオキシダーゼなどの過酸化水素を生
成するオキシダーゼとそれらの基質およびベルオキシダ
ーゼとの混合物、ビリルビン酸化能を有する２価の銅イ
オン及び３価の鉄イオンなどの金属イオン若しくはその
塩、例えば硫酸銅、塩化銅、硫酸第２鉄など、過硫酸カ
リウム及び過安息香酸ナトリウムなどの過酸化物、或い
は例えばスルファニル酸と亜硝酸の塩酸溶液、２．４−
ジクロロアニリンとスルファニル酸の混液なとのジアゾ
試薬を、いずれか単独でまたは組合せて用いることがで
きる。これらの酸化剤は、酵素の場合０．Ｏｌ〜３０ユ
ニット／ｍＱ，好ましくは０．０５〜ｌＯユニット７ｍ
Ｑ，過酸化物を用いる場合は０．０ １〜５０ｍＭ，好
ましくは０．０５〜３０ユニット／ｒｎＱ，金属イオン
およびその塩を用いる場合は０．０１〜２０ｍＭ，好ま
しくは、０．０５〜５ｍＭ１更にジアゾ試薬を用いる場
合は、０．０５〜５ｍＭ，好ましくはＯ．１〜２ｍＭの
濃度範囲で使用できる。これらの成分が上記範囲外の量
で存在すると、非抱合型ビリルビンに対する酸化反応の
完結に長時間を要するか、試薬の劣化が著しくなるか、
或は試薬中に沈澱を生成する可能性があるため好ましく
ない。尚、酸化酵素の給源は限定されるものではなく、
種々の起源のものが使用される。例えばラッカーゼはウ
ルシ由来あるいはポリポーラス属などの微生物由来、ビ
リルビンオキシダーゼはミロセシウム属若しくはエピタ
ケ属由来のものが使用でき、又グルコースオキシダーゼ
はアスペルギルス属由来のものなどを使用すれば良い。
例えばビリルビンオキシダーゼ及びラツカーゼなどの酸
化酵素、グルコースオキシダーゼなどの過酸化水素を生
成するオキシダーゼとそれらの基質およびベルオキシダ
ーゼとの混合物、ビリルビン酸化能を有する２価の銅イ
オン及び３価の鉄イオンなどの金属イオン若しくはその
塩、例えば硫酸銅、塩化銅、硫酸第２鉄など、過硫酸カ
リウム及び過安息香酸ナトリウムなどの過酸化物、或い
は例えばスルファニル酸と亜硝酸の塩酸溶液、２．４−
ジクロロアニリンとスルファニル酸の混液なとのジアゾ
試薬を、いずれか単独でまたは組合せて用いることがで
きる。これらの酸化剤は、酵素の場合０．Ｏｌ〜３０ユ
ニット／ｍＱ，好ましくは０．０５〜ｌＯユニット７ｍ
Ｑ，過酸化物を用いる場合は０．０ １〜５０ｍＭ，好
ましくは０．０５〜３０ユニット／ｒｎＱ，金属イオン
およびその塩を用いる場合は０．０１〜２０ｍＭ，好ま
しくは、０．０５〜５ｍＭ１更にジアゾ試薬を用いる場
合は、０．０５〜５ｍＭ，好ましくはＯ．１〜２ｍＭの
濃度範囲で使用できる。これらの成分が上記範囲外の量
で存在すると、非抱合型ビリルビンに対する酸化反応の
完結に長時間を要するか、試薬の劣化が著しくなるか、
或は試薬中に沈澱を生成する可能性があるため好ましく
ない。尚、酸化酵素の給源は限定されるものではなく、
種々の起源のものが使用される。例えばラッカーゼはウ
ルシ由来あるいはポリポーラス属などの微生物由来、ビ
リルビンオキシダーゼはミロセシウム属若しくはエピタ
ケ属由来のものが使用でき、又グルコースオキシダーゼ
はアスペルギルス属由来のものなどを使用すれば良い。
総ビリルビン測定用第１試薬及び第２試薬には、上記の
必須成分の他に、反応促進剤としての芳香族カルポン酸
、界面活性剤、緩衝液、キレート剤、通常使用される賦
活剤及び塩類を含むことができる。
必須成分の他に、反応促進剤としての芳香族カルポン酸
、界面活性剤、緩衝液、キレート剤、通常使用される賦
活剤及び塩類を含むことができる。
上記芳香族カルボン酸としては例えばｐ−｝ルエンスル
７才ン酸、安息香酸などがあり、５〜７５ｍＭ，好まし
くは１０〜５０ｍＭの濃度範囲で使用できる。この範囲
外の濃度では反応が完結するのに長時間を要するか、試
薬中に沈澱を生じる場合もあるため好ましくない。
７才ン酸、安息香酸などがあり、５〜７５ｍＭ，好まし
くは１０〜５０ｍＭの濃度範囲で使用できる。この範囲
外の濃度では反応が完結するのに長時間を要するか、試
薬中に沈澱を生じる場合もあるため好ましくない。
また上記界面活性剤としては陰イオン性界面活性剤、非
イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤及び両性界
面活性剤のいずれも使用できる。
イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤及び両性界
面活性剤のいずれも使用できる。
例としてはドデシル硫酸ナトリウム、コール酸あるいは
ポリオキシエチレングリコール、トリトンＸ− １ ０
０、ツイン８０、塩化ラウリルピリジニ９ム、塩化ラ
ウリルトリメチルアンモニウム、Ｎ−ラウリル・ミリス
チルーβ−アミノプロピオン酸、Ｎ−ラウリルーβ−イ
ミノージプロピオン酸などがある。これらの界面活性剤
は通常使用される０．０１−１０％、好ましくは０．０
５〜２％の濃度範囲で使用できる。ｌＯ％を越えると試
薬中に沈澱を生じる可能性がある他、試薬の流動性が悪
くなるため自動分析機などへ適用できず好ましくない。
ポリオキシエチレングリコール、トリトンＸ− １ ０
０、ツイン８０、塩化ラウリルピリジニ９ム、塩化ラ
ウリルトリメチルアンモニウム、Ｎ−ラウリル・ミリス
チルーβ−アミノプロピオン酸、Ｎ−ラウリルーβ−イ
ミノージプロピオン酸などがある。これらの界面活性剤
は通常使用される０．０１−１０％、好ましくは０．０
５〜２％の濃度範囲で使用できる。ｌＯ％を越えると試
薬中に沈澱を生じる可能性がある他、試薬の流動性が悪
くなるため自動分析機などへ適用できず好ましくない。
上記第１試薬の緩衝液としては、使用する脱抱合能を有
する酵素の至適ｐＨ付近に緩衝能を持つものを、上記第
２試薬の緩衝液としては、使用する酸化剤の作用する至
適ｐＨ付近に緩衝能をもつものを使用すれば良い。その
様な第１試薬の緩衝液としては、例えば牛肝臓由来β−
グルクロニダーゼを用いた場合、フタル酸一水酸化ナト
リウム緩衝液（ｐＨ５．０）、コハク酸一水酸化ナトリ
ウム緩衝液（ｐＨ５．０）などがある。第２試薬の緩衝
液としては、酸化剤として例えばビリルビンオキシダー
ゼを用いたときはリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、ＨＥＰ
ＥＳ緩衝液（ｐＨ７．０）などがある。それら緩衝液の
濃度としては２０〜５００ｍＭ，好ましくは３０〜２０
０ｍＭ使用すれば良い。２０ｍＭ以下だと試薬に検体を
加えた段階で設定したｐｔ−ｔからずれる可能性が大き
く、また５００ｍＭ以上であると反応に長時間を要した
り、試薬中に沈澱を生じる場合もあるため好ましくない
。
する酵素の至適ｐＨ付近に緩衝能を持つものを、上記第
２試薬の緩衝液としては、使用する酸化剤の作用する至
適ｐＨ付近に緩衝能をもつものを使用すれば良い。その
様な第１試薬の緩衝液としては、例えば牛肝臓由来β−
グルクロニダーゼを用いた場合、フタル酸一水酸化ナト
リウム緩衝液（ｐＨ５．０）、コハク酸一水酸化ナトリ
ウム緩衝液（ｐＨ５．０）などがある。第２試薬の緩衝
液としては、酸化剤として例えばビリルビンオキシダー
ゼを用いたときはリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、ＨＥＰ
ＥＳ緩衝液（ｐＨ７．０）などがある。それら緩衝液の
濃度としては２０〜５００ｍＭ，好ましくは３０〜２０
０ｍＭ使用すれば良い。２０ｍＭ以下だと試薬に検体を
加えた段階で設定したｐｔ−ｔからずれる可能性が大き
く、また５００ｍＭ以上であると反応に長時間を要した
り、試薬中に沈澱を生じる場合もあるため好ましくない
。
キレート剤としてはエチレンジアミン四酢酸などのポリ
アミノカルボン酸あるいはクエン酸などのすキシカルボ
ン酸などを０．０ １＝ｌ ＯＯｍＭ，好ましくは０．
０５〜５０ｍＭを適宜使用することができる。
アミノカルボン酸あるいはクエン酸などのすキシカルボ
ン酸などを０．０ １＝ｌ ＯＯｍＭ，好ましくは０．
０５〜５０ｍＭを適宜使用することができる。
賦活剤としてはポリエチレングリコール、アルプミン、
糖類などを使用できる。ポリエチレングリコールを用い
る場合は０．０１−１０％、好ましくは０．０５〜２％
、アルブミンを用いる場合は０．０ １−５０ｍＭ，好
ましくは０．０５〜ｌＯｍＭ１糖類を用いる場合はｌ〜
１００ｍＭ，好ましくは５〜５０ｍＭを適宜使用するこ
とができる。
糖類などを使用できる。ポリエチレングリコールを用い
る場合は０．０１−１０％、好ましくは０．０５〜２％
、アルブミンを用いる場合は０．０ １−５０ｍＭ，好
ましくは０．０５〜ｌＯｍＭ１糖類を用いる場合はｌ〜
１００ｍＭ，好ましくは５〜５０ｍＭを適宜使用するこ
とができる。
更に、塩類としては、例えば塩化ナトリウム、塩化アン
モニウム、硫酸カリウムなどを１〜５００ｍＭの範囲で
、好ましくは５〜１００ｍＭの範囲で使用しても良い。
モニウム、硫酸カリウムなどを１〜５００ｍＭの範囲で
、好ましくは５〜１００ｍＭの範囲で使用しても良い。
さらに本発明の総ビリルビン測定用標準物質は、既知濃
度の非抱合型ビリルビンを含むものである。
度の非抱合型ビリルビンを含むものである。
濃度としては１〜８ ｍ Ｍ ％好ましくは２〜６０ｍ
Ｍである。この非抱合型ビリルビンとしては、通常市販
されている非抱合型ビリルビン（第一化学薬品社製、シ
グマ社製など）あるいはブタ、ウマ、ヒトなどの胆嚢か
ら採取、精製したものを使用できる。標準物質としては
これら非抱合型ビリルビンを単独にまたはポリエチレン
グリコール、アルブミン、糖類、キレート剤、塩類など
の安定化剤あるいは賦活剤を適宜添加して調製できる。
Ｍである。この非抱合型ビリルビンとしては、通常市販
されている非抱合型ビリルビン（第一化学薬品社製、シ
グマ社製など）あるいはブタ、ウマ、ヒトなどの胆嚢か
ら採取、精製したものを使用できる。標準物質としては
これら非抱合型ビリルビンを単独にまたはポリエチレン
グリコール、アルブミン、糖類、キレート剤、塩類など
の安定化剤あるいは賦活剤を適宜添加して調製できる。
添加する場合はポリエチレングリコール、アルプミン、
糖類などをそれぞれ０．Ｏｌ〜３０％、０．０１〜５
０ａ＋Ｍ， １ 〜３ ０ ０ｍＭ，キレート剤とし
てエチレンジアミン四酢酸などのポリアミノカルボン酸
あるいはクエン酸などのオキシカルボン酸などを０．０
１−１ ００ｍＭ１塩類として塩化ナトリウム、塩化
アンモニウム、硫酸カリウムなどを１〜５００ｍＭの濃
度範囲で使用できる。また市販の高ビリルビンコントロ
ール標準血清を使用することもできるが、その場合非抱
合型ビリルビンのみを含みかつその含量が正確であるこ
とが望ましい。
糖類などをそれぞれ０．Ｏｌ〜３０％、０．０１〜５
０ａ＋Ｍ， １ 〜３ ０ ０ｍＭ，キレート剤とし
てエチレンジアミン四酢酸などのポリアミノカルボン酸
あるいはクエン酸などのオキシカルボン酸などを０．０
１−１ ００ｍＭ１塩類として塩化ナトリウム、塩化
アンモニウム、硫酸カリウムなどを１〜５００ｍＭの濃
度範囲で使用できる。また市販の高ビリルビンコントロ
ール標準血清を使用することもできるが、その場合非抱
合型ビリルビンのみを含みかつその含量が正確であるこ
とが望ましい。
以上の様な第１試薬；第２試薬および標準物質の存在形
態は、溶液状態、凍結状態あるいは乾燥状態等の何れに
限られるものではなく使用時において溶液状態であれば
よい。溶液状態、凍結状態、乾燥状態にするのは通常良
く知られた方法で行なうことができる。
態は、溶液状態、凍結状態あるいは乾燥状態等の何れに
限られるものではなく使用時において溶液状態であれば
よい。溶液状態、凍結状態、乾燥状態にするのは通常良
く知られた方法で行なうことができる。
次に本発明によってヒト血清中の総ビリルビン量を求め
るのに好ましい組成例を挙げる。
るのに好ましい組成例を挙げる。
第ｌ試薬は牛肝臓由来のβ−グルクロニダーゼ０．０５
〜１０ユニット／ ｍ（Ｉｓ ｐ−トルエンスルフオン
酸５〜７５ｍＭ，ＥＤＴＡ Ｏ．０ １〜２０ｍＭ，
ｐＨ４〜６に調製されたコハク酸一水酸化ナトリウム緩
衝液２０〜５００ｍＭを含む。第２試薬はビリルビンオ
キシダーゼ０．０５〜ｌＯユニット／ｍＱ，ｐ−トルエ
ンスルフオン酸１０〜５０ｍＭ，ＥＤＴＡ Ｏ．０５〜
５０ｍＭ，ｐＨ５〜８に調製されたリン酸緩衝液２０〜
５００＋ｎＭを含む。
〜１０ユニット／ ｍ（Ｉｓ ｐ−トルエンスルフオン
酸５〜７５ｍＭ，ＥＤＴＡ Ｏ．０ １〜２０ｍＭ，
ｐＨ４〜６に調製されたコハク酸一水酸化ナトリウム緩
衝液２０〜５００ｍＭを含む。第２試薬はビリルビンオ
キシダーゼ０．０５〜ｌＯユニット／ｍＱ，ｐ−トルエ
ンスルフオン酸１０〜５０ｍＭ，ＥＤＴＡ Ｏ．０５〜
５０ｍＭ，ｐＨ５〜８に調製されたリン酸緩衝液２０〜
５００＋ｎＭを含む。
検体中の総ビリルビンの測定方法としては、脱抱合能を
有する酵素を含む試薬によって、抱金型ビリルビンを含
む検体中の全てのビリルビンを非抱合型ビリルビンに変
換した後、ＨＰＬＣによってこれを直接測定するか、酸
化酵素を含む試薬若しくはジアゾ試薬によってこれをそ
れぞれ酸化、アゾ化非抱合型ビリルビンに変換し、特定
吸収波長に於ける吸光度変化量を測定すればよい。脱抱
合能を有する酵素を含む試薬としては例えば上記の総ビ
リルビン測定用第１試薬がある。また、酸化酵素を含む
試薬としては上記総ビリルビン測定用第２試薬がある。
有する酵素を含む試薬によって、抱金型ビリルビンを含
む検体中の全てのビリルビンを非抱合型ビリルビンに変
換した後、ＨＰＬＣによってこれを直接測定するか、酸
化酵素を含む試薬若しくはジアゾ試薬によってこれをそ
れぞれ酸化、アゾ化非抱合型ビリルビンに変換し、特定
吸収波長に於ける吸光度変化量を測定すればよい。脱抱
合能を有する酵素を含む試薬としては例えば上記の総ビ
リルビン測定用第１試薬がある。また、酸化酵素を含む
試薬としては上記総ビリルビン測定用第２試薬がある。
また本測定方法においては、抱合型ビリルビンを含む検
体中の全てのビリルビンを非抱合型ビリルビンに変換す
ることで、標準物質として非抱合型ビリルビンのみを使
用することが可能である。
体中の全てのビリルビンを非抱合型ビリルビンに変換す
ることで、標準物質として非抱合型ビリルビンのみを使
用することが可能である。
総ビリルビンの測定方法として具体的には、例えば次の
様にすれば良い。まず、上記の総ビリルビン測定用試薬
の第１試薬０．６ｍｌ２を分光計のセル室内にて予備加
温後、各種ビリルビンを含む検体（血清など）適当量を
加えてｌ−１ ０分間反応させ、検体中の抱合型ビリル
ビンをすべて非抱合型ビリルビンに変換し、４６０ｎｍ
における吸光度を測定する。次に上記の総ビリルビン測
定用試薬の第２試薬０．ｌ５ｍｆｆを添加してさらに１
−ｔｏ分間反応させて非抱合型ビリルビンをすべて酸化
させ、４６０止における吸光度を測定し、この値と先に
測定した吸光度の液量補正値とから吸光度変化量（Ａ）
を求める。次に既知濃度の非抱合型ビリルビンを含む標
準物質を同様に測定し吸光度変化量（Ｂ）を求める。検
体を作用させて求めた吸光度変化量と標準物質を作用さ
せて求めた吸光度変化量とから、下記の数式により検体
中の総ビリルビン含量を求めることができる。
様にすれば良い。まず、上記の総ビリルビン測定用試薬
の第１試薬０．６ｍｌ２を分光計のセル室内にて予備加
温後、各種ビリルビンを含む検体（血清など）適当量を
加えてｌ−１ ０分間反応させ、検体中の抱合型ビリル
ビンをすべて非抱合型ビリルビンに変換し、４６０ｎｍ
における吸光度を測定する。次に上記の総ビリルビン測
定用試薬の第２試薬０．ｌ５ｍｆｆを添加してさらに１
−ｔｏ分間反応させて非抱合型ビリルビンをすべて酸化
させ、４６０止における吸光度を測定し、この値と先に
測定した吸光度の液量補正値とから吸光度変化量（Ａ）
を求める。次に既知濃度の非抱合型ビリルビンを含む標
準物質を同様に測定し吸光度変化量（Ｂ）を求める。検
体を作用させて求めた吸光度変化量と標準物質を作用さ
せて求めた吸光度変化量とから、下記の数式により検体
中の総ビリルビン含量を求めることができる。
尚、予備加温温度、反応温度は２５℃、３０℃、３７°
Ｃなどが適当である。また、検体量としては０．００５
〜Ｏ ． ｌ ｍＱが好ましい。測定波長は４６０ｎｍ
に限定されるものでなく、４００ｎｍから４８０ｎｍの
任意の波長を選ぶことができる。また第１試薬、第２試
薬、検体の液量は適宜変化させることができる。
Ｃなどが適当である。また、検体量としては０．００５
〜Ｏ ． ｌ ｍＱが好ましい。測定波長は４６０ｎｍ
に限定されるものでなく、４００ｎｍから４８０ｎｍの
任意の波長を選ぶことができる。また第１試薬、第２試
薬、検体の液量は適宜変化させることができる。
なお本発明では検体中に抱合型ビリルビンのみを含む場
合、抱合型ビリルビンの非抱合型ビリルビンの変換後の
非ビリルビン量は抱合型ビリルビン量に相当し、従って
前述の第２試薬を作用させた時の吸光度変化量は、検体
中の抱金型ビリルビン量に対応する。
合、抱合型ビリルビンの非抱合型ビリルビンの変換後の
非ビリルビン量は抱合型ビリルビン量に相当し、従って
前述の第２試薬を作用させた時の吸光度変化量は、検体
中の抱金型ビリルビン量に対応する。
なお第２試薬で非抱合型ビリルビンを酸化してその吸光
度減少より定量する代りに、ジアゾ試薬によってアゾ色
素を生成させて定量することも可能である。また第１試
薬と検体を作用させた後、ＨＰＬＣにて直接抱合型ビリ
ルビンを分析定量することもできる。
度減少より定量する代りに、ジアゾ試薬によってアゾ色
素を生成させて定量することも可能である。また第１試
薬と検体を作用させた後、ＨＰＬＣにて直接抱合型ビリ
ルビンを分析定量することもできる。
本発明の非抱合型ビリルビン測定用試薬もまた２試薬系
よりなる。第１試薬は検体中の非抱合聖ビリルビンには
作用せず、抱金型ビリルビンのみに酸化剤によって作用
する試薬であり、第２試薬は第１試薬の作用後残った非
抱合型ビリルビンを測定するための試薬である。
よりなる。第１試薬は検体中の非抱合聖ビリルビンには
作用せず、抱金型ビリルビンのみに酸化剤によって作用
する試薬であり、第２試薬は第１試薬の作用後残った非
抱合型ビリルビンを測定するための試薬である。
非抱合型ビリルビン測定用第１試薬は、ｐＨ６．５以下
の緩衝液、界面活性剤、ビリルビンと錯体を形成しうる
金属イオン、酸化剤などが主成分であり、非抱合型ビリ
ルビン測定用第２試薬は、キレート剤、ｐＨ６．５以上
の緩衝液、界面活性剤のうちから選ばれる１種以上の成
分を主成分とする。
の緩衝液、界面活性剤、ビリルビンと錯体を形成しうる
金属イオン、酸化剤などが主成分であり、非抱合型ビリ
ルビン測定用第２試薬は、キレート剤、ｐＨ６．５以上
の緩衝液、界面活性剤のうちから選ばれる１種以上の成
分を主成分とする。
上記第１試薬にはハロゲン化物塩などの塩類を適宜添加
してもよい。また第２試薬には第１試薬の各成分を適宜
含ませることもできる。
してもよい。また第２試薬には第１試薬の各成分を適宜
含ませることもできる。
非抱合型ビリルビン測定用第ｌ試薬の緩衝液はｐＨ６．
５以下、好ましくはｐＨ２．０〜６．０までの間に緩衝
能を持つものであれば良いが、その様なものとしてはフ
タル酸一水酸化ナトリウム緩衝液、コハク酸一水酸化ナ
トリウム緩衝液、３．３−ジメチルグルタル酸緩衝液等
がある。またこれらの緩衝液は２０〜２００ｍＭ，好ま
しくは、３０〜１００ｍＭで使用すれば良い。２０ｍＭ
以下であると検体と混合した場合、設定ｐＨからずれる
危険性があり、また２００ｍＭ以上であると、第２試薬
を加えた段階で全体のｐＨを中性付近に戻すことが困難
となるため好ましくない。
５以下、好ましくはｐＨ２．０〜６．０までの間に緩衝
能を持つものであれば良いが、その様なものとしてはフ
タル酸一水酸化ナトリウム緩衝液、コハク酸一水酸化ナ
トリウム緩衝液、３．３−ジメチルグルタル酸緩衝液等
がある。またこれらの緩衝液は２０〜２００ｍＭ，好ま
しくは、３０〜１００ｍＭで使用すれば良い。２０ｍＭ
以下であると検体と混合した場合、設定ｐＨからずれる
危険性があり、また２００ｍＭ以上であると、第２試薬
を加えた段階で全体のｐＨを中性付近に戻すことが困難
となるため好ましくない。
非抱合型ビリルビン測定用第１試薬に用いる界面活性剤
としては、総ビリルビン測定用試薬で使用したものと同
様の界面活性剤が使用できるが、ｐＨ６．５以下で溶解
度が高く、使用の容易なものであることが好ましい。こ
の様な界面活性剤としては例えばトリトンｘ− ｔ ｏ
ｏ、ツイン８０などの非イオン性界面活性剤あるいは
ベンゼン硫酸ナトリウム、タウロデオキシコール酸ナト
リウム、グリココール酸ナトリウムなどの陰イオン性界
面活性剤の使用が好ましい。この濃度範囲としては０．
Ｏｌ〜２．０％、好ましくは０．０３〜０．５％が適当
である。この範囲より低濃度だと臨界ミセル濃度に達せ
ず非抱合型ビリルビンを保護せず、またこの範囲より高
濃度だと酸化剤による抱合型ビリルビンの消去に長時間
を要するため好ましくない。
としては、総ビリルビン測定用試薬で使用したものと同
様の界面活性剤が使用できるが、ｐＨ６．５以下で溶解
度が高く、使用の容易なものであることが好ましい。こ
の様な界面活性剤としては例えばトリトンｘ− ｔ ｏ
ｏ、ツイン８０などの非イオン性界面活性剤あるいは
ベンゼン硫酸ナトリウム、タウロデオキシコール酸ナト
リウム、グリココール酸ナトリウムなどの陰イオン性界
面活性剤の使用が好ましい。この濃度範囲としては０．
Ｏｌ〜２．０％、好ましくは０．０３〜０．５％が適当
である。この範囲より低濃度だと臨界ミセル濃度に達せ
ず非抱合型ビリルビンを保護せず、またこの範囲より高
濃度だと酸化剤による抱合型ビリルビンの消去に長時間
を要するため好ましくない。
非抱合聖ビリルビン測定用第１試薬に用いるビリルビン
と錯体を形成しうる金属イオンとしては、例えば銅イオ
ン、鉄イオン若しくはマンガンイオンなどの塩を使用で
きるが、銅イオンまたは鉄イオンの塩を使用すれば、低
濃度で非抱合型ビリルビンに作用しない条件を設定でき
るためにより好ましい。これらの塩としては、一般に市
販されている塩化物塩、酢酸塩、アンモニウム塩などを
使用すれば良い。使用濃度範囲としては０．Ｏｌ〜１０
ｍＭが適当である。より好ましくは０．０５〜５ｍＭが
適当である。これらがＯ−０１＝ｌＯｍＭの濃度範囲外
だと上記第１試薬中で非抱合型ビリルビンを酸化剤より
保護することが出来ないか、又は金属塩による沈澱が生
成する可能性もあるため好ましくない。
と錯体を形成しうる金属イオンとしては、例えば銅イオ
ン、鉄イオン若しくはマンガンイオンなどの塩を使用で
きるが、銅イオンまたは鉄イオンの塩を使用すれば、低
濃度で非抱合型ビリルビンに作用しない条件を設定でき
るためにより好ましい。これらの塩としては、一般に市
販されている塩化物塩、酢酸塩、アンモニウム塩などを
使用すれば良い。使用濃度範囲としては０．Ｏｌ〜１０
ｍＭが適当である。より好ましくは０．０５〜５ｍＭが
適当である。これらがＯ−０１＝ｌＯｍＭの濃度範囲外
だと上記第１試薬中で非抱合型ビリルビンを酸化剤より
保護することが出来ないか、又は金属塩による沈澱が生
成する可能性もあるため好ましくない。
非抱合壓ビリルビン測定用第ｌ試薬に使用する酸化剤と
しては、前述の総ビリルビン測定用試薬と同様のものが
使用でき、使用可能な濃度範囲も同様である。特に上記
第１試薬において、銅イオン自体を酸化剤とする場合は
、酸化反応を促進するために塩化物イオン、臭化物イオ
ン、ヨウ化物イオン、チオシアン酸イオン、シアン酸イ
オン、シアンイオンなどを含む塩類を添加することがで
きる。これらの塩類のうち促進効果が高く、毒性が低い
チオシアン酸イオンを含む塩類の使用が特に望ましい。
しては、前述の総ビリルビン測定用試薬と同様のものが
使用でき、使用可能な濃度範囲も同様である。特に上記
第１試薬において、銅イオン自体を酸化剤とする場合は
、酸化反応を促進するために塩化物イオン、臭化物イオ
ン、ヨウ化物イオン、チオシアン酸イオン、シアン酸イ
オン、シアンイオンなどを含む塩類を添加することがで
きる。これらの塩類のうち促進効果が高く、毒性が低い
チオシアン酸イオンを含む塩類の使用が特に望ましい。
さらに非抱合型ビリルビン測定用第１試薬には、ビリル
ビンオキシダーゼなどの酸化酵素が安定性、活性の点で
有利となるｐＨ４．７〜６．５のｐＨ範囲の間で使用可
能にするために、塩化ナトリウム、フッ化ナトリウムな
どのハロゲン化物塩を添加することができる。その濃度
範囲としては１〜２０９ｍＭ１好ましくは５〜５０ｍＭ
が適当である。この範囲外だと抱合聖ビリルビンを消去
するのに長時間を要するため、好ましくない。ハロゲン
化物塩のうち特にフフ化物塩を添加すれば、低濃度でｐ
Ｈ４．７〜６．５の間で第１試薬の組成を設定できるた
めフッ化物塩の添加が好ましい。
ビンオキシダーゼなどの酸化酵素が安定性、活性の点で
有利となるｐＨ４．７〜６．５のｐＨ範囲の間で使用可
能にするために、塩化ナトリウム、フッ化ナトリウムな
どのハロゲン化物塩を添加することができる。その濃度
範囲としては１〜２０９ｍＭ１好ましくは５〜５０ｍＭ
が適当である。この範囲外だと抱合聖ビリルビンを消去
するのに長時間を要するため、好ましくない。ハロゲン
化物塩のうち特にフフ化物塩を添加すれば、低濃度でｐ
Ｈ４．７〜６．５の間で第１試薬の組成を設定できるた
めフッ化物塩の添加が好ましい。
非抱合型ビリルビン測定用第２試薬中に用いるキレート
剤としてはエチレンジアミン四酢酸などのポリアミノカ
ルポン酸あるいはクエン酸などのオキシカルボン酸を０
．０５〜１００ａＭ好ましくは０．０５〜５０ｍＭを適
宜使用することができる。
剤としてはエチレンジアミン四酢酸などのポリアミノカ
ルポン酸あるいはクエン酸などのオキシカルボン酸を０
．０５〜１００ａＭ好ましくは０．０５〜５０ｍＭを適
宜使用することができる。
使用量が上記範囲外だと第２試薬添加後の反応が不十分
となり好ましくない。
となり好ましくない。
また非抱合型ビリルビン測定用第２試薬中に用いるｐＨ
６．５以上の緩衝液としてはリン酸緩衝液、トリス塩酸
緩衝液、グリシンー水酸化ナトリウム緩衝液など種々の
ものを使用することができる。
６．５以上の緩衝液としてはリン酸緩衝液、トリス塩酸
緩衝液、グリシンー水酸化ナトリウム緩衝液など種々の
ものを使用することができる。
これらの緩衝液は２０〜１、０００ｍＭ，より好ましく
は５０〜５００ｍＭの範囲で使用することができる。使
用量が上記範囲外だと第２試薬添加後の反応が不十分と
なり好ましくない。
は５０〜５００ｍＭの範囲で使用することができる。使
用量が上記範囲外だと第２試薬添加後の反応が不十分と
なり好ましくない。
非抱合型ビリルビン測定用第２試薬中に用いる界面活性
剤としては、総ビリルビン測定用試薬の場合と同様に、
陰イオン性界面活性剤、非イオン性界面活性剤、陽イオ
ン性界面活性剤、両性界面活性剤のいずれも使用できる
。これらの界面活性剤は総ビリルビン測定用試薬の場合
と同様に、通常使用される０．０１−１０％、好ましく
は０．０５〜２％の濃度範囲で使用できる。使用量が上
記範囲外だと第２試薬添加後の反応が不十分となり好ま
しくない。
剤としては、総ビリルビン測定用試薬の場合と同様に、
陰イオン性界面活性剤、非イオン性界面活性剤、陽イオ
ン性界面活性剤、両性界面活性剤のいずれも使用できる
。これらの界面活性剤は総ビリルビン測定用試薬の場合
と同様に、通常使用される０．０１−１０％、好ましく
は０．０５〜２％の濃度範囲で使用できる。使用量が上
記範囲外だと第２試薬添加後の反応が不十分となり好ま
しくない。
さらに非抱合型測定用第ｌ試薬、第２試薬のその他の成
分として、総ビリルビン測定用試薬と同様に、反応促進
剤としての芳香族カルポン酸、賦活剤としてのマニトー
ルなどの糖類、ポリエチレングリコールなどのポリオー
ル類を添加することができる。これらは０．Ｏｌ〜３０
０ｍＭ，好ましくは０．０５〜１００ｍＭの濃度範囲で
用いることができる。この範囲外の使用は、反応が遅く
なるなどの問題が生じるため好ましくない。
分として、総ビリルビン測定用試薬と同様に、反応促進
剤としての芳香族カルポン酸、賦活剤としてのマニトー
ルなどの糖類、ポリエチレングリコールなどのポリオー
ル類を添加することができる。これらは０．Ｏｌ〜３０
０ｍＭ，好ましくは０．０５〜１００ｍＭの濃度範囲で
用いることができる。この範囲外の使用は、反応が遅く
なるなどの問題が生じるため好ましくない。
また本発明の非抱合型ビリルビン測定用標準物質として
は、総ビリルビン測定の場合と同様の標準物質、即ち非
抱合型ビリルビンを含む標準物質を使用することができ
る。
は、総ビリルビン測定の場合と同様の標準物質、即ち非
抱合型ビリルビンを含む標準物質を使用することができ
る。
次に具体的に上記非抱合型ビリルビン測定用試薬の好ま
しい組成例を示す。
しい組成例を示す。
第１試薬はｐＨ４．７〜６．０に調製されたフタル酸緩
衝液２０〜５００ｍＭ，｝リトンＸ−１０００．０２５
〜１％、硫酸鋼０．０ １”ｌ ＯｍＭ，ビリルビンオ
キシダーゼ０．０５〜２０ユニット／ｍＱ， ７ツ化ナ
トリウム５〜５０ｍＭを含む。第２試薬はｐＨ５．０〜
７．０に調製されたリン酸緩衝液、ＥＤＴＡＯ．１″−
５０ｍＭを含む。
衝液２０〜５００ｍＭ，｝リトンＸ−１０００．０２５
〜１％、硫酸鋼０．０ １”ｌ ＯｍＭ，ビリルビンオ
キシダーゼ０．０５〜２０ユニット／ｍＱ， ７ツ化ナ
トリウム５〜５０ｍＭを含む。第２試薬はｐＨ５．０〜
７．０に調製されたリン酸緩衝液、ＥＤＴＡＯ．１″−
５０ｍＭを含む。
第２試薬にはビリルビンオキシダーゼ０．１〜５０ユニ
ット／ｒａＱを含ませても良い。
ット／ｒａＱを含ませても良い。
検体中の非抱合型ビリルビンの測定方法としては、検体
にビリルビン酸化能を有する酵素、過酸化物および遷移
金属イオンを単独もしくは組合せて調製した酸化剤、ビ
リルビンと錯体を形成しうる金属イオン、非イオン性界
面活性剤、ｐＨ６．５以下の緩衝液を含む試薬を作用さ
せて、検体中の抱合型ビリルビンのみを酸化消去し、そ
の後残存する非抱合型ビリルビンを酸化酵素を含む試薬
、若しくはジアゾ試薬によって消去して特定波長の吸光
度変化を測定するか、あるいは残存する非抱合型ビリル
ビンを直接ＨＰＬＣなどによって測定すれば良い。抱合
型ビリルビンを酸化消去する試薬としては例えば、上記
の本発明の非抱合型ビリルビン測定用第１試薬などがあ
る。また非抱合型ビリルビンに作用する酸化酵素を含む
試薬としては上記第２試薬などがある。また本測定方法
においては、総ビリルビンの測定方法と同様に、標準物
質としては非抱合型ビリルビンのみを使用することが可
能である。
にビリルビン酸化能を有する酵素、過酸化物および遷移
金属イオンを単独もしくは組合せて調製した酸化剤、ビ
リルビンと錯体を形成しうる金属イオン、非イオン性界
面活性剤、ｐＨ６．５以下の緩衝液を含む試薬を作用さ
せて、検体中の抱合型ビリルビンのみを酸化消去し、そ
の後残存する非抱合型ビリルビンを酸化酵素を含む試薬
、若しくはジアゾ試薬によって消去して特定波長の吸光
度変化を測定するか、あるいは残存する非抱合型ビリル
ビンを直接ＨＰＬＣなどによって測定すれば良い。抱合
型ビリルビンを酸化消去する試薬としては例えば、上記
の本発明の非抱合型ビリルビン測定用第１試薬などがあ
る。また非抱合型ビリルビンに作用する酸化酵素を含む
試薬としては上記第２試薬などがある。また本測定方法
においては、総ビリルビンの測定方法と同様に、標準物
質としては非抱合型ビリルビンのみを使用することが可
能である。
非抱合型ビリルビンを測定する具体的な方法としては、
例えば次の様にすればよい。まず、上記の非抱合型ビリ
ルビン測定用第ｌの試薬０ ． ６ ｍＱを分光計のセ
ル室内にて予備加温後、各種ビリルビンを含む検体（血
清など）適当量を加えてｌ−１０分間反応させ、検体中
の抱金型ビリルビンをすべて酸化消去し４６０ｎｍにお
ける吸光度を測定する。次に上記の非抱合型ビリルビン
測定用の第２試薬０．１５ｍｆｆを添加してさらにｌ−
１０分間反応させて残存する非抱合型ビリルビンをすべ
て酸化させ、４６０ｎｍにおける吸光度を測定し、この
値と先に測定した吸光度の液量補正値とから吸光度変化
量（Ａ）を求める。次に既知濃度の非抱合型ビリルビン
を含む標準物質を同様に測定し吸光度変化量（Ｂ）を求
める。検体を作用させて求めた吸光度変化量と標準物質
を作用させて求めた吸光度変化量とから、下記数式によ
り検体中の非抱合型ビリルビン含量を求めることができ
る。
例えば次の様にすればよい。まず、上記の非抱合型ビリ
ルビン測定用第ｌの試薬０ ． ６ ｍＱを分光計のセ
ル室内にて予備加温後、各種ビリルビンを含む検体（血
清など）適当量を加えてｌ−１０分間反応させ、検体中
の抱金型ビリルビンをすべて酸化消去し４６０ｎｍにお
ける吸光度を測定する。次に上記の非抱合型ビリルビン
測定用の第２試薬０．１５ｍｆｆを添加してさらにｌ−
１０分間反応させて残存する非抱合型ビリルビンをすべ
て酸化させ、４６０ｎｍにおける吸光度を測定し、この
値と先に測定した吸光度の液量補正値とから吸光度変化
量（Ａ）を求める。次に既知濃度の非抱合型ビリルビン
を含む標準物質を同様に測定し吸光度変化量（Ｂ）を求
める。検体を作用させて求めた吸光度変化量と標準物質
を作用させて求めた吸光度変化量とから、下記数式によ
り検体中の非抱合型ビリルビン含量を求めることができ
る。
尚、予備加温温度、反応温度は２５゜Ｃ１３０°０１３
７°Ｃなどが適当である。また、検体量としては０．０
０５〜０．１ｍ（２が好ましい。測定波長は４６Ｑｎｍ
に限定されるものでなく、４００ｎｍから４８０ｎｍの
任意の波長を選ぶことができる。また第ｌ試薬、第２試
薬、検体の液量は適宜変化させることができる。
７°Ｃなどが適当である。また、検体量としては０．０
０５〜０．１ｍ（２が好ましい。測定波長は４６Ｑｎｍ
に限定されるものでなく、４００ｎｍから４８０ｎｍの
任意の波長を選ぶことができる。また第ｌ試薬、第２試
薬、検体の液量は適宜変化させることができる。
なお第２試薬で非抱合聖ビリルビンを酸化してその吸光
度減少により定量する代わりに、ジアゾ試薬によってア
ゾ色素を生成させて定量することも可能である。また、
第１試薬と検体を作用させた後、ＨＰＬＣにて分析定量
することもできる。
度減少により定量する代わりに、ジアゾ試薬によってア
ゾ色素を生成させて定量することも可能である。また、
第１試薬と検体を作用させた後、ＨＰＬＣにて分析定量
することもできる。
さらに検体に非抱合型ビリルビン、抱合型ビリルビンが
混在する場合、抱合型ビリルビン量を、本発明の試薬ま
たは方法を組み合わせることにより容易に求めることが
できる。すなわち総ビリルビン量測定用試薬もしくは方
法によって検体中の総ビリルビン量を求め、さらに非抱
合聖ビリルビン量測定用試薬もしくは方法によって同一
検体中の非抱合型ビリルビン量を求め、それらの差より
容易に抱合型ビリルビン量を求めることができる。
混在する場合、抱合型ビリルビン量を、本発明の試薬ま
たは方法を組み合わせることにより容易に求めることが
できる。すなわち総ビリルビン量測定用試薬もしくは方
法によって検体中の総ビリルビン量を求め、さらに非抱
合聖ビリルビン量測定用試薬もしくは方法によって同一
検体中の非抱合型ビリルビン量を求め、それらの差より
容易に抱合型ビリルビン量を求めることができる。
両試薬は、検体中に実際に存在する非抱合聖ビリルビン
を共通の標準物質として使用しているため、本発明によ
って求めた抱合型ビリルビン量の値は、総ビリルビン量
、非抱合型ビリルビン量同様にきわめて正確な値となる
。
を共通の標準物質として使用しているため、本発明によ
って求めた抱合型ビリルビン量の値は、総ビリルビン量
、非抱合型ビリルビン量同様にきわめて正確な値となる
。
（作用）
本発明の総ビリルビン量測定用試薬により、検体中の抱
合型ビリルビンを非抱合型ビリルビンに変換し、次いで
この非抱合型ビリルビンと検体中に元より存在した非抱
合型ビリルビンとを酸化させ、生じた吸光度変化量より
検体中の総ビリルビン量を求めることができる。
合型ビリルビンを非抱合型ビリルビンに変換し、次いで
この非抱合型ビリルビンと検体中に元より存在した非抱
合型ビリルビンとを酸化させ、生じた吸光度変化量より
検体中の総ビリルビン量を求めることができる。
又、本発明の非抱合型ビリルビン測定用試薬により、検
体中の抱合型ビリルビンを選択的に酸化消去した後、第
２試薬を添加して残存する非抱合型ビリルビンを酸化さ
せ、生じた吸光度変化量より検体中の非抱合型ビリルビ
ン量を求めることができる。
体中の抱合型ビリルビンを選択的に酸化消去した後、第
２試薬を添加して残存する非抱合型ビリルビンを酸化さ
せ、生じた吸光度変化量より検体中の非抱合型ビリルビ
ン量を求めることができる。
（実施例）
次に本発明を実施例により具体的に説明する。
参考例ｌ
抱合型ビリルビンの一種であるグルクロナイドビリルビ
ンは、分析化学第３１巻、Ｅ６３頁（１９８２年）記載
の方法に準じて豚胆嚢中の胆汁から精製した。またこの
グルクロナイドビリルビン及び非抱合型ビリルビンはラ
ウフ（ Ｌ ａｕｆ ｆ ）らの方法「ジャーナルオブ
クロマトグラフイ−（ Ｊ ｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈ
ｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）第２２６巻，３９ｌ頁（１
９８１年）」を若干改良したＨＰＬＣ法にて分析した。
ンは、分析化学第３１巻、Ｅ６３頁（１９８２年）記載
の方法に準じて豚胆嚢中の胆汁から精製した。またこの
グルクロナイドビリルビン及び非抱合型ビリルビンはラ
ウフ（ Ｌ ａｕｆ ｆ ）らの方法「ジャーナルオブ
クロマトグラフイ−（ Ｊ ｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈ
ｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）第２２６巻，３９ｌ頁（１
９８１年）」を若干改良したＨＰＬＣ法にて分析した。
即ち、リクロソルブＲＰ−８ （粒子径１０μｍ）カラ
ムを用いて５％のメチルセルソルプを含有するリン酸緩
衝液（ｐＨ２．０）とアセトニトリルのグラジエント溶
出を行い試料を分析した。
ムを用いて５％のメチルセルソルプを含有するリン酸緩
衝液（ｐＨ２．０）とアセトニトリルのグラジエント溶
出を行い試料を分析した。
実施例ｌ
総ビリルビン測定用試薬は次の様に調製した。
第１試薬は、牛肝臓由来の脱抱合酵素であるβ−グルク
ロニダーゼ（シグマ社製，ＧＯ２５１）０．２ユニット
／ｍＱ、ｐ−トルエンスルフオン酸３０ｍＭ，ＥＤＴＡ
ｌｍＭ， トリトンＸ−１００ ０．０３％及び７
タル酸緩衝液（ｐＨ５．０）ｌ ＯＯｍＭとなる様に、
第２試薬は、酸化酵素のビリルビンオキシダーゼ（シグ
マ社，Ｂ ｌ ５ １ ５）４−Ｌニット／ｍｌ２、ｐ
ートルエンスルフオン酸３０ｍＭ，ＥＤＴＡｌｍＭ，ト
リトンＸ−ｔｏｏ Ｏ．０３％及びリン酸緩衝液２０
０ｍＭとなる様に、また第２試薬のｐＨが１０．０とな
る様に調製した。第１試薬１ｍＱを３７℃にて２分間予
備加温し、参考例ｌで精製した抱合梨グルクロナイドビ
リルビン０．０５＋ｎＱを加え３分間同温で反応させた
。さらに第２試薬０．２５ｍｆｆを加え３７℃にて３分
間反応させた。第１試薬で反応させた後の反応混液（ａ
）、さらに引続き第２試薬で反応させた後の反応混液（
ｂ）中の各種ビリルビンをＨＰＬＣにて分画し分析した
。それぞれの結果を第１図中に示す。また第１試薬から
β一グルクロニダーゼのみを除いて、グルクロナイドビ
リルビンサンプルとを反応させた反応混液（Ｃ）を同様
にＨＰＬＣにて分析した。その結果を第１図中に示す。
ロニダーゼ（シグマ社製，ＧＯ２５１）０．２ユニット
／ｍＱ、ｐ−トルエンスルフオン酸３０ｍＭ，ＥＤＴＡ
ｌｍＭ， トリトンＸ−１００ ０．０３％及び７
タル酸緩衝液（ｐＨ５．０）ｌ ＯＯｍＭとなる様に、
第２試薬は、酸化酵素のビリルビンオキシダーゼ（シグ
マ社，Ｂ ｌ ５ １ ５）４−Ｌニット／ｍｌ２、ｐ
ートルエンスルフオン酸３０ｍＭ，ＥＤＴＡｌｍＭ，ト
リトンＸ−ｔｏｏ Ｏ．０３％及びリン酸緩衝液２０
０ｍＭとなる様に、また第２試薬のｐＨが１０．０とな
る様に調製した。第１試薬１ｍＱを３７℃にて２分間予
備加温し、参考例ｌで精製した抱合梨グルクロナイドビ
リルビン０．０５＋ｎＱを加え３分間同温で反応させた
。さらに第２試薬０．２５ｍｆｆを加え３７℃にて３分
間反応させた。第１試薬で反応させた後の反応混液（ａ
）、さらに引続き第２試薬で反応させた後の反応混液（
ｂ）中の各種ビリルビンをＨＰＬＣにて分画し分析した
。それぞれの結果を第１図中に示す。また第１試薬から
β一グルクロニダーゼのみを除いて、グルクロナイドビ
リルビンサンプルとを反応させた反応混液（Ｃ）を同様
にＨＰＬＣにて分析した。その結果を第１図中に示す。
図中の約１１分に溶出するピークは抱合型グルクロナイ
ドビリルビンであり、約１８分に溶出するピークは非抱
合型ビリルビンである。第１図中（Ｃ）は脱抱合酵素の
β−グルクロニダーゼによって変換される前のサンプル
の状態を示す。第１図中（ａ）と（Ｃ）を比べることで
、第ｌ試薬によって抱金型グルクロナイドビリルビンが
非抱合型ビリルビンに完全に変換されたことが明らかで
あり、第１図中（ｂ）と（ａ）を比べることで、さらに
第２試薬によって非抱合型ビリルビンが酸化消去された
ことが明らかである。
ドビリルビンであり、約１８分に溶出するピークは非抱
合型ビリルビンである。第１図中（Ｃ）は脱抱合酵素の
β−グルクロニダーゼによって変換される前のサンプル
の状態を示す。第１図中（ａ）と（Ｃ）を比べることで
、第ｌ試薬によって抱金型グルクロナイドビリルビンが
非抱合型ビリルビンに完全に変換されたことが明らかで
あり、第１図中（ｂ）と（ａ）を比べることで、さらに
第２試薬によって非抱合型ビリルビンが酸化消去された
ことが明らかである。
実施例２
実施例ｌで精製したグルクロナイドビリルビンの各種濃
度の希釈溶液を作成し、参考例ｌで調製した総ビリルビ
ン測定用試薬を用いてグルクロナイドビリルビン含量と
吸光度変化量の関係を求めた。第１試薬１ｍｆｆを分光
計セル室内で３７℃にて２分間予備加温した後、各種濃
度のグルクロナイドビリルビン溶液を０．０５ｍＱ加え
、３７゜Ｃで３分間反応させ吸光度を４６０ｎｍにて測
定した。その後第２試薬０．２５ｍ（２を加え３７゜Ｃ
にて５分間反応させ吸光度を４６０ｎｍにて測定した。
度の希釈溶液を作成し、参考例ｌで調製した総ビリルビ
ン測定用試薬を用いてグルクロナイドビリルビン含量と
吸光度変化量の関係を求めた。第１試薬１ｍｆｆを分光
計セル室内で３７℃にて２分間予備加温した後、各種濃
度のグルクロナイドビリルビン溶液を０．０５ｍＱ加え
、３７゜Ｃで３分間反応させ吸光度を４６０ｎｍにて測
定した。その後第２試薬０．２５ｍ（２を加え３７゜Ｃ
にて５分間反応させ吸光度を４６０ｎｍにて測定した。
第１試薬、第２試薬をそれぞれ反応させた後の、液量補
正した吸光度変化量と希釈率の関係を求めた。その結果
広い範囲にわたって希釈率と吸光度変化量の間に良好な
直線関係が成立つことが分かった。
正した吸光度変化量と希釈率の関係を求めた。その結果
広い範囲にわたって希釈率と吸光度変化量の間に良好な
直線関係が成立つことが分かった。
実施例３
参考例ｌで精製したグルクロナイドビリルビンにヒトア
ルブミン（シグマ社製，Ａ３７８２）、サリチル酸、Ｅ
ＤＴＡ及びヘモグロビンを下記表１の濃度になる様に加
え、実施例ｌの総ビリルビン測定用試薬を用いて実施例
２と同様の方法で定量し、各添加物による測定値への影
響について調べた。その結果を表ｌに示す。標準物質と
して非抱合型ビリルビン（第一化学薬品社製）をトリス
ー塩酸（ｐＨ８．０）１００ｍＭ中に溶解して５ ｍｇ
／ｄｃとした溶液を用いた。
ルブミン（シグマ社製，Ａ３７８２）、サリチル酸、Ｅ
ＤＴＡ及びヘモグロビンを下記表１の濃度になる様に加
え、実施例ｌの総ビリルビン測定用試薬を用いて実施例
２と同様の方法で定量し、各添加物による測定値への影
響について調べた。その結果を表ｌに示す。標準物質と
して非抱合型ビリルビン（第一化学薬品社製）をトリス
ー塩酸（ｐＨ８．０）１００ｍＭ中に溶解して５ ｍｇ
／ｄｃとした溶液を用いた。
表ｌ
表ｌより本発明の試薬によって求めた総ビリルビン定量
値は種々の添加物によって全く影響を受けず、従来の試
薬で問題となっていた薬物などの影響に関する問題点を
解決できることを確認した。
値は種々の添加物によって全く影響を受けず、従来の試
薬で問題となっていた薬物などの影響に関する問題点を
解決できることを確認した。
実施例４及び５、比較例Ｉ〜３
非抱合型ビリルビン（第一化学薬品社製）及び抱合型ビ
リルビンの一種であるジタウロビリルビン〔ボルフィリ
ンプロダクツインク（ＰｏｒｐｈｉｒｉｎＰ ｒｏｄｕ
ｃｔｓ Ｉ ｎｃ．）より市販〕を各々トリスー塩酸（
ｐＨ８．０）１ ００ｍＭにて溶解し、それぞれ５９ｍ
ｇ／ｄＱ， ８ ０ｍｇ／ｄＱの溶液を調製した。また
ヒトアルブミンをトリスー塩酸（ｐＨ７．０）ｌ ＯＯ
ｍＭにて溶解し、６７．０ｇ／Ｑの溶液を調製した。こ
れら非抱合型ビリルビン溶液、ジタウロビリルビン溶液
及びヒトアルブミン溶液を用いて次の６種のサンプルを
調製した。サンプルａは非抱合型ビリルビンのみを、サ
ンプルｂはジタウロビリルビンのみを、サンプルＣは非
抱合型ビリルビンとジタウロビリルビンを、サンプルｄ
は非抱合型ビリルビンとアルブミンを、サンプルｅはジ
タウロビリルピンとアルブミンを、及びサンプルｆは非
抱合型ビリルビンとジタウロビリルピンとアルプミンと
を含む。各サンプル中のジタウロビリルビンの濃度は２
０ ｍｇ／ｄ（１，非抱合型ビリルビンの濃度は２
０ ｍｇ／ｄＬ ヒトアルブミン濃度は２６．８ｇ／ｆ
ｆである。次に７タル酸緩衝液（ｐＨ５．０）６０ｍＭ
，ビリルビンオキシダーゼ（シグマ社Ｂ．ｌ ５ １
５）１ユニット／ｄ，硫酸銅０．１ｍＭ，｝リトンＸ−
１００（液体シンチレーション用，半井化学社製）０．
０３％、ｐ一トルエンスルホン酸ナトリウム５ｍＭ，フ
ッ化ナトリウム１５ｍＭとなる様に反応試薬Ａを調製し
た（実施例４）。さらに比較例として反応試薬Ａから硫
酸銅を除いた反応試薬Ｂを調製した（比較例ｌ）。さら
に比較例として反応試薬ＡからトリトンＸ−１００を除
いた反応試薬Ｃを調製した（比較例２）。また反応試薬
Ａのビリルビンオキシダーゼの代りにグルコースオキシ
ダーゼ（東洋紡社製） ０ ． ５ユニット／ ｍ（２
，ベルオキシダーゼ（東洋紡社製）０．１ユニット／ｍ
Ｑ，グルコースＩｏｎＭとなる様に加えた反応試薬Ｄを
調製した（実施例５）。更に特公昭６１−４４０００号
公報記載の実施例に従い次の抱金型ビリルビン測定用試
薬を調製した。即ち、クエン酸−リン酸緩衝液（ｐＨ４
．０）１００ｍＭ，ビリルビンオキシダーゼＯ．ｌユニ
ット／ｍＱを含む反応試薬Ｅを調製した（比較例３）。
リルビンの一種であるジタウロビリルビン〔ボルフィリ
ンプロダクツインク（ＰｏｒｐｈｉｒｉｎＰ ｒｏｄｕ
ｃｔｓ Ｉ ｎｃ．）より市販〕を各々トリスー塩酸（
ｐＨ８．０）１ ００ｍＭにて溶解し、それぞれ５９ｍ
ｇ／ｄＱ， ８ ０ｍｇ／ｄＱの溶液を調製した。また
ヒトアルブミンをトリスー塩酸（ｐＨ７．０）ｌ ＯＯ
ｍＭにて溶解し、６７．０ｇ／Ｑの溶液を調製した。こ
れら非抱合型ビリルビン溶液、ジタウロビリルビン溶液
及びヒトアルブミン溶液を用いて次の６種のサンプルを
調製した。サンプルａは非抱合型ビリルビンのみを、サ
ンプルｂはジタウロビリルビンのみを、サンプルＣは非
抱合型ビリルビンとジタウロビリルビンを、サンプルｄ
は非抱合型ビリルビンとアルブミンを、サンプルｅはジ
タウロビリルピンとアルブミンを、及びサンプルｆは非
抱合型ビリルビンとジタウロビリルピンとアルプミンと
を含む。各サンプル中のジタウロビリルビンの濃度は２
０ ｍｇ／ｄ（１，非抱合型ビリルビンの濃度は２
０ ｍｇ／ｄＬ ヒトアルブミン濃度は２６．８ｇ／ｆ
ｆである。次に７タル酸緩衝液（ｐＨ５．０）６０ｍＭ
，ビリルビンオキシダーゼ（シグマ社Ｂ．ｌ ５ １
５）１ユニット／ｄ，硫酸銅０．１ｍＭ，｝リトンＸ−
１００（液体シンチレーション用，半井化学社製）０．
０３％、ｐ一トルエンスルホン酸ナトリウム５ｍＭ，フ
ッ化ナトリウム１５ｍＭとなる様に反応試薬Ａを調製し
た（実施例４）。さらに比較例として反応試薬Ａから硫
酸銅を除いた反応試薬Ｂを調製した（比較例ｌ）。さら
に比較例として反応試薬ＡからトリトンＸ−１００を除
いた反応試薬Ｃを調製した（比較例２）。また反応試薬
Ａのビリルビンオキシダーゼの代りにグルコースオキシ
ダーゼ（東洋紡社製） ０ ． ５ユニット／ ｍ（２
，ベルオキシダーゼ（東洋紡社製）０．１ユニット／ｍ
Ｑ，グルコースＩｏｎＭとなる様に加えた反応試薬Ｄを
調製した（実施例５）。更に特公昭６１−４４０００号
公報記載の実施例に従い次の抱金型ビリルビン測定用試
薬を調製した。即ち、クエン酸−リン酸緩衝液（ｐＨ４
．０）１００ｍＭ，ビリルビンオキシダーゼＯ．ｌユニ
ット／ｍＱを含む反応試薬Ｅを調製した（比較例３）。
各種反応試薬１．０−を３７℃でそれぞれ２分間予備加
温した後、６種のサンプルをそれぞれ０．０５ｍＱ添加
し３７℃で反応させ、反応開始後５分間の４６０ｎｍに
於ける吸光度変化量を求めた。各反応試薬に各サンプル
を添加した時の吸光度変化量を表２に示す。
温した後、６種のサンプルをそれぞれ０．０５ｍＱ添加
し３７℃で反応させ、反応開始後５分間の４６０ｎｍに
於ける吸光度変化量を求めた。各反応試薬に各サンプル
を添加した時の吸光度変化量を表２に示す。
表２ 各反応試薬を用いた時の吸光度変化量表２より反
応試薬ＡＳＤはジタウロビリルビンを含むサンプルのみ
反応し吸光度変化を生じるが、非抱合型ビリルビンに対
しては反応せず吸光度変化を生じないことが分かった。
応試薬ＡＳＤはジタウロビリルビンを含むサンプルのみ
反応し吸光度変化を生じるが、非抱合型ビリルビンに対
しては反応せず吸光度変化を生じないことが分かった。
反応試薬Ｂ，Ｃ，Ｅは非抱合型ビリルビン、ジタウロビ
リルビンのいずれにも反応することが分かった。更に、
反応試薬Ａ，Ｄは分別性において反応試薬Ｅよりも優れ
ており、測定誤差を顕著に改善することができた。これ
らのことから本発明により正確に各種ビリルビンを分別
できることが判明した。
リルビンのいずれにも反応することが分かった。更に、
反応試薬Ａ，Ｄは分別性において反応試薬Ｅよりも優れ
ており、測定誤差を顕著に改善することができた。これ
らのことから本発明により正確に各種ビリルビンを分別
できることが判明した。
実施例６
非抱合型ビリルビン測定用試薬を次の様に調製した。第
１試薬は硫酸銅Ｏ．ｌＩＩＭ１ トリトンＸ１００
０．０３％、ｐ一トルエンスルフォン酸５ｍＭ，７タル
酸（ｐＨ５．０）６０ｍＭ，７ ッ化ナトリウム１５ｍ
Ｍ及びビリルビンオキシダーゼ１ユニット／ｒｏＱとな
る様調製した。第２試薬はトリトンＸ−１００ ０．
０３％、ｐ−｝ノレエンスノレフォン酸２０ｍＭ％ＥＤ
ＴＡ６ｍＭ，リン酸緩衝液２００ｍＭ及びビリルビンオ
キシダーゼ１０ユニット／ｍＱとなる様に、また第２試
薬のｐＨがｌＯ．０となる様に調製した。又、標準サン
プルとして非抱合型ビリノレビン２ ０ ｍｇ／ｄＱ、
ジタウロビリノレビンｌＯＩＩＩｇ／ｄｌ２，ヒトアル
プミン２６．８ｇ／１２の混液を調製し、更にその希釈
系列を調製した。
１試薬は硫酸銅Ｏ．ｌＩＩＭ１ トリトンＸ１００
０．０３％、ｐ一トルエンスルフォン酸５ｍＭ，７タル
酸（ｐＨ５．０）６０ｍＭ，７ ッ化ナトリウム１５ｍ
Ｍ及びビリルビンオキシダーゼ１ユニット／ｒｏＱとな
る様調製した。第２試薬はトリトンＸ−１００ ０．
０３％、ｐ−｝ノレエンスノレフォン酸２０ｍＭ％ＥＤ
ＴＡ６ｍＭ，リン酸緩衝液２００ｍＭ及びビリルビンオ
キシダーゼ１０ユニット／ｍＱとなる様に、また第２試
薬のｐＨがｌＯ．０となる様に調製した。又、標準サン
プルとして非抱合型ビリノレビン２ ０ ｍｇ／ｄＱ、
ジタウロビリノレビンｌＯＩＩＩｇ／ｄｌ２，ヒトアル
プミン２６．８ｇ／１２の混液を調製し、更にその希釈
系列を調製した。
次に第１試薬１．０−を３７℃にて２分間予備加温後、
各種濃度の標準サンプル０．０５ｍｌ２を加え３分間３
７℃で反応後、４６０ｎｍにおける各吸光度を測定した
。さらに第２試薬０．２５ｍＱを加え、３７℃にて５分
間反応させ４６０ｎｍにおける各吸光度を測定した。第
１試薬による反応後の吸光度と第２試薬による反応後の
吸光度から、液量補正して各吸光度変化量を求めた。こ
の吸光度変化量と非抱合型ビリルビン量との関係を第２
図に示す。
各種濃度の標準サンプル０．０５ｍｌ２を加え３分間３
７℃で反応後、４６０ｎｍにおける各吸光度を測定した
。さらに第２試薬０．２５ｍＱを加え、３７℃にて５分
間反応させ４６０ｎｍにおける各吸光度を測定した。第
１試薬による反応後の吸光度と第２試薬による反応後の
吸光度から、液量補正して各吸光度変化量を求めた。こ
の吸光度変化量と非抱合型ビリルビン量との関係を第２
図に示す。
第２図より標準血清中の非抱合型ビリルビン量と、本実
施例によって調製しｔ；ビリルビン測定用試薬によって
測定した吸光度変化量の間には極めて良好な直線関係が
成立つことが分かった。
施例によって調製しｔ；ビリルビン測定用試薬によって
測定した吸光度変化量の間には極めて良好な直線関係が
成立つことが分かった。
実施例７
参考例ｌで精製したグルクロナイドビリルビンに非抱合
型ビリルビンを添加したサンプルを調製した。このサン
プルを実施例６で調製した非抱合型ビリルビン測定用試
薬を用いて測定した。第１試薬とサンプルを反応させた
後の反応混液（ａ）、第１試薬とサンプルを反応させた
後さらに第２試薬を添加し反応させた後の反応混液（ｂ
）、第１試薬よりビリルビンオキシダーゼおよび硫酸銅
を除いた試薬とサンプルを反応させた後の反応混液（ｃ
）を参考例ｌに記載のＨＰＬＣ分析法によって分析した
。その結果を第３図中にそれぞれ示す。図中の約１１分
に溶出するピークはグルクロナイドビリルビンであり、
約１８分に溶出するピークは非抱合型ビリルビンである
。
型ビリルビンを添加したサンプルを調製した。このサン
プルを実施例６で調製した非抱合型ビリルビン測定用試
薬を用いて測定した。第１試薬とサンプルを反応させた
後の反応混液（ａ）、第１試薬とサンプルを反応させた
後さらに第２試薬を添加し反応させた後の反応混液（ｂ
）、第１試薬よりビリルビンオキシダーゼおよび硫酸銅
を除いた試薬とサンプルを反応させた後の反応混液（ｃ
）を参考例ｌに記載のＨＰＬＣ分析法によって分析した
。その結果を第３図中にそれぞれ示す。図中の約１１分
に溶出するピークはグルクロナイドビリルビンであり、
約１８分に溶出するピークは非抱合型ビリルビンである
。
第３図より、本発明の非抱合型ビリルビン測定用試薬の
第１試薬は抱合型ビリルビンのみを酸化消去できること
が分かり、さらに第２試薬添加により、第１試薬と反応
させた後に残存する非抱合型ビリルビンを定量的に測定
できることが分かった。
第１試薬は抱合型ビリルビンのみを酸化消去できること
が分かり、さらに第２試薬添加により、第１試薬と反応
させた後に残存する非抱合型ビリルビンを定量的に測定
できることが分かった。
実施例８
実施例４、５で使用した非抱合型ビリルビン溶液５ ９
ｍｇ／ｄＱ、ジタウロビリルビン溶液８ ０ ｍｇ／
ｄＱ，ヒトアルブミン溶液６７ｇ／１２を用いて非抱合
型ビリルビンｌ Ｏｍｇ／ｄ（２，ジタウロビリルビン
ｌＯｍｇ／ｄ１２、ヒトアルブミン２６．８ｇ／（ｌと
なる標準物質Ａを調製した。また参考例ｌのグルクロナ
イドビリルビンサンプルｌｍ＜２に非抱合型ビリルビン
ｌｏｍｇ／ｄＱをｌｍｌ２混合したサンプルＡを調製し
た。
ｍｇ／ｄＱ、ジタウロビリルビン溶液８ ０ ｍｇ／
ｄＱ，ヒトアルブミン溶液６７ｇ／１２を用いて非抱合
型ビリルビンｌ Ｏｍｇ／ｄ（２，ジタウロビリルビン
ｌＯｍｇ／ｄ１２、ヒトアルブミン２６．８ｇ／（ｌと
なる標準物質Ａを調製した。また参考例ｌのグルクロナ
イドビリルビンサンプルｌｍ＜２に非抱合型ビリルビン
ｌｏｍｇ／ｄＱをｌｍｌ２混合したサンプルＡを調製し
た。
本発明による実施例ｌの総ビリルビン測定用試薬を用い
て標準物質Ａを反応させ、吸光度変化量を求めた。次に
サンプルＡを同様に作用させ、吸光度変化量を求めた。
て標準物質Ａを反応させ、吸光度変化量を求めた。次に
サンプルＡを同様に作用させ、吸光度変化量を求めた。
これら２つの吸光度変化量よりサンプルＡ中の抱合型ビ
リルビン量、非抱合型ビリルビン量、総ビリルビン量を
求めた。その結果を表３に示す。
リルビン量、非抱合型ビリルビン量、総ビリルビン量を
求めた。その結果を表３に示す。
比較例４
また参考例ｌにＨＬＰＣ分析法にてサンプルＡおよび標
準物質Ａを分析した。各種ピリルビンのピーク面積を指
標として次の様にサンプルＡ中の総ビリルピン量、抱合
型ビリルビン量、非抱合型ビリルビン量を求めた。すな
わちサンプルＡの非抱合型ビリルビンのピーク面積と標
準物質Ａの非抱合型ビリルビンのピーク面積の比からサ
ンプルＡ中の非抱合型ビリルビン量を求め、サンプルＡ
のグルクロナイドビリルビンのピーク面積と標準物質Ａ
のジタウロビリルビンのピーク面積の比よりサンプルＡ
中の抱金型ビリルビン量を求めた。
準物質Ａを分析した。各種ピリルビンのピーク面積を指
標として次の様にサンプルＡ中の総ビリルピン量、抱合
型ビリルビン量、非抱合型ビリルビン量を求めた。すな
わちサンプルＡの非抱合型ビリルビンのピーク面積と標
準物質Ａの非抱合型ビリルビンのピーク面積の比からサ
ンプルＡ中の非抱合型ビリルビン量を求め、サンプルＡ
のグルクロナイドビリルビンのピーク面積と標準物質Ａ
のジタウロビリルビンのピーク面積の比よりサンプルＡ
中の抱金型ビリルビン量を求めた。
その結果を表３に示す。
表３
なお比較例４の総ビリルビン、抱合型ビリルビン量は、
計算により非抱合型ビリルビン量に換算してある（グル
クロナイドビリルビンはすべてジグルク口ナイドビリル
ピンとして扱い、ジタウロビリルビンの分子量と非抱合
型ピリルビンの分子量より計算した）。
計算により非抱合型ビリルビン量に換算してある（グル
クロナイドビリルビンはすべてジグルク口ナイドビリル
ピンとして扱い、ジタウロビリルビンの分子量と非抱合
型ピリルビンの分子量より計算した）。
表３より本発明による総ビリルビン測定用試薬、非抱合
型ビリルビン測定用試薬で求めた値が、ＨＬＰＣ分析で
求めた値と極めて近いことが判った。
型ビリルビン測定用試薬で求めた値が、ＨＬＰＣ分析で
求めた値と極めて近いことが判った。
特に非抱合型ビリルビン量については同一の値が得られ
ている。これより本発明による試薬が分別性において極
めて優れた性能を有していることが判った。
ている。これより本発明による試薬が分別性において極
めて優れた性能を有していることが判った。
（発明の効果）
本発明により、簡単な操作で精度良く、検体中のアルブ
ミンあるいは薬剤含量に影響されることなく、検体中の
各種ビリルビンを特異的に分別して定量できるようにな
った。これは安定で入手の容易な非抱合型ビリルビンの
みを標準物質として使用することで人工基質の使用時に
生じていた測定誤差、人工基質と血清中のグルクロナイ
ドビリルビンとの反応性の違い、あるいは真に相応しい
標準物質が存在しない等のビリルビン測定における問題
点を解決し、各種ビリルビンを非抱合型ビリルビンに統
一して測定でき、測定値として極めて正確な値を得るこ
とができた。また酵素を有利な条件で使用できるという
面でもビリルビン測定用試薬の性能を向上させ、臨床検
査の分野において従来にはなかった有利な試薬を提供で
きるものである。
ミンあるいは薬剤含量に影響されることなく、検体中の
各種ビリルビンを特異的に分別して定量できるようにな
った。これは安定で入手の容易な非抱合型ビリルビンの
みを標準物質として使用することで人工基質の使用時に
生じていた測定誤差、人工基質と血清中のグルクロナイ
ドビリルビンとの反応性の違い、あるいは真に相応しい
標準物質が存在しない等のビリルビン測定における問題
点を解決し、各種ビリルビンを非抱合型ビリルビンに統
一して測定でき、測定値として極めて正確な値を得るこ
とができた。また酵素を有利な条件で使用できるという
面でもビリルビン測定用試薬の性能を向上させ、臨床検
査の分野において従来にはなかった有利な試薬を提供で
きるものである。
第１図は実施例１で調製した総ビリルビン測定用試薬を
参考例ｌで精製したグルクロナイドビリルビンに作用さ
せた時のＨＰＬＣ分析パターンを示す。図内の実線は反
応混液（ａ）の分析パターンを、太破線は反応混液（ｂ
）の分析パターンを、細破線は反応混液（Ｃ）の分析パ
ターンを示す。 第２図は実施例７で調製した非抱合型ビリルビン測定用
試薬を用いて、各種濃度の標準血清を測定した時の吸光
度変化量と非抱合型ビリルビン量の関係を示したもので
ある。 第３図は実施例７で調製した非抱合型ビリルビン測定用
試薬を用いて、参考例ｌで精製したグルクロナイドビリ
ルピンと非抱合型ビリルビンを含むサンプルに作用させ
た時のＨＰＬＣ分析パターンを示す。図中の実線は反応
混液（ａ）の分析パタ一ンを、太破線は反応混液（ｂ）
の分析パターンを、細破線は反応混液（Ｃ）の分析パタ
ーンを示す。
参考例ｌで精製したグルクロナイドビリルビンに作用さ
せた時のＨＰＬＣ分析パターンを示す。図内の実線は反
応混液（ａ）の分析パターンを、太破線は反応混液（ｂ
）の分析パターンを、細破線は反応混液（Ｃ）の分析パ
ターンを示す。 第２図は実施例７で調製した非抱合型ビリルビン測定用
試薬を用いて、各種濃度の標準血清を測定した時の吸光
度変化量と非抱合型ビリルビン量の関係を示したもので
ある。 第３図は実施例７で調製した非抱合型ビリルビン測定用
試薬を用いて、参考例ｌで精製したグルクロナイドビリ
ルピンと非抱合型ビリルビンを含むサンプルに作用させ
た時のＨＰＬＣ分析パターンを示す。図中の実線は反応
混液（ａ）の分析パタ一ンを、太破線は反応混液（ｂ）
の分析パターンを、細破線は反応混液（Ｃ）の分析パタ
ーンを示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １、検体中の総ビリルビン量を測定するに際し、脱抱合
能を有する酵素を含む試薬によって抱合型ビリルビンを
予め脱抱合して非抱合型ビリルビンとした後、検体中に
存在する非抱合型ビリルビン量を求めることによって総
ビリルビンを測定することを特徴とする総ビリルビンの
測定方法。 ２、ビリルビン酸化能を有する酵素、過酸化物および遷
移金属イオンを単独もしくは組合せて調製した酸化剤と
、脱抱合能を有する酵素とを含有することを特徴とする
総ビリルビン測定用試薬。 ３、検体中の非抱合型ビリルビン量を測定するに際し、
ビリルビンと錯体を形成しうる金属イオンおよび界面活
性剤の共存下、ビリルビン酸化能を有する酵素、過酸化
物および遷移金属イオンを単独もしくは組合せて調製し
た酸化剤を用いて、ｐＨ６．５以下で検体中の抱合型ビ
リルビンを予め特異的に酸化消去後、検体中に存在する
非抱合型ビリルビンを測定することを特徴とする非抱合
型ビリルビンの測定方法。 ４、ビリルビン酸化能を有する酵素、過酸化物及び遷移
金属イオンを単独もしくは組合せて調製した酸化剤、ビ
リルビンと錯体を形成しうる金属イオン、界面活性剤お
よびｐＨ６．５以下の緩衝液を含む試薬とキレート剤、
ｐＨ６．５以上の緩衝液および界面活性剤のうちから選
ばれる１種以上の成分よりなる試薬とからなることを特
徴とする非抱合型ビリルビン測定用試薬。
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1060323A JP2856757B2 (ja) | 1989-03-13 | 1989-03-13 | 総ビリルビンの測定方法および測定用試薬 |
| EP90104720A EP0387784B1 (en) | 1989-03-13 | 1990-03-13 | Quantitative determination of bilirubin and a reagent therefor |
| DE69031397T DE69031397T2 (de) | 1989-03-13 | 1990-03-13 | Quantitativer Nachweis von Bilirubin und ein Reagenz dafür |
| US07/492,572 US5104794A (en) | 1989-03-13 | 1990-03-13 | Quantitative determination of bilirubin and a reagent therefor |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1060323A JP2856757B2 (ja) | 1989-03-13 | 1989-03-13 | 総ビリルビンの測定方法および測定用試薬 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP22892098A Division JP2963453B2 (ja) | 1998-08-13 | 1998-08-13 | 非抱合型ビリルビンの測定方法および測定用試薬 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02238897A true JPH02238897A (ja) | 1990-09-21 |
| JP2856757B2 JP2856757B2 (ja) | 1999-02-10 |
Family
ID=13138850
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1060323A Expired - Lifetime JP2856757B2 (ja) | 1989-03-13 | 1989-03-13 | 総ビリルビンの測定方法および測定用試薬 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5104794A (ja) |
| EP (1) | EP0387784B1 (ja) |
| JP (1) | JP2856757B2 (ja) |
| DE (1) | DE69031397T2 (ja) |
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| US10220500B2 (en) | 2012-04-13 | 2019-03-05 | Black & Decker Inc. | Electronic clutch for power tool |
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| CN111424070B (zh) * | 2020-03-03 | 2023-01-20 | 天津大学 | 含有枯草芽孢杆菌漆酶的总胆红素检测试剂盒 |
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- 1990-03-13 US US07/492,572 patent/US5104794A/en not_active Expired - Fee Related
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