JPH0271152A - 固相免疫測定用成形品の製造法 - Google Patents
固相免疫測定用成形品の製造法Info
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- JPH0271152A JPH0271152A JP22251588A JP22251588A JPH0271152A JP H0271152 A JPH0271152 A JP H0271152A JP 22251588 A JP22251588 A JP 22251588A JP 22251588 A JP22251588 A JP 22251588A JP H0271152 A JPH0271152 A JP H0271152A
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Treatments Of Macromolecular Shaped Articles (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、血液学、細菌学、ウィルス学、病理学、薬理
学などの分野における固相免疫測定法に用いる蛋白質の
吸着性に優れた成形品の製造法に関する。
学などの分野における固相免疫測定法に用いる蛋白質の
吸着性に優れた成形品の製造法に関する。
(従来の技術)
近年、医学の幅広い分野で免疫反応を利用した分析手法
が取り入れられ、血中薬物の定量、癌性蛋白質の検出、
組織適合性の決定などが行なわれ。
が取り入れられ、血中薬物の定量、癌性蛋白質の検出、
組織適合性の決定などが行なわれ。
非常に有用な臨床データーを与えている。
また、現在著しい展開を見せているバイオテクノロジー
の各分野でも、この免疫反応を利用した分析手法が取り
入れられている1例えば、遺伝子変換によって生み出さ
れる生理活性物質の検知にこの手法は欠くべからざるも
のになっている。
の各分野でも、この免疫反応を利用した分析手法が取り
入れられている1例えば、遺伝子変換によって生み出さ
れる生理活性物質の検知にこの手法は欠くべからざるも
のになっている。
免疫反応を利用した分析法としては、様々な方法がある
。すなわち、免疫拡散法、免疫クロマトグラフィー、免
疫電気泳動法、補体結合反応、赤血球凝集反応、受身赤
血球凝集反応、けい光抗体法、ラジオイムノアッセイ、
酵素免疫測定法等である。この中でも、抗原もしくは抗
体を固相上に固定して測定を行なう手法を固相免疫測定
法といい、例えば、固相ラジオイムノアッセイや、固相
酵素免疫測定法(Enzyme Linked Lmm
unosorbantAssay以下ELISA)があ
る、この固相免疫測定法は。
。すなわち、免疫拡散法、免疫クロマトグラフィー、免
疫電気泳動法、補体結合反応、赤血球凝集反応、受身赤
血球凝集反応、けい光抗体法、ラジオイムノアッセイ、
酵素免疫測定法等である。この中でも、抗原もしくは抗
体を固相上に固定して測定を行なう手法を固相免疫測定
法といい、例えば、固相ラジオイムノアッセイや、固相
酵素免疫測定法(Enzyme Linked Lmm
unosorbantAssay以下ELISA)があ
る、この固相免疫測定法は。
多くの免疫測定法の中でも最も感度よく定量的に測定で
きる手法である。この測定法はあらかじめ固相上に抗原
もしくは抗体を固定し、ラジオアイソトープ、けい光性
物質もしくは酵素等の標識物を結合させた抗体もしくは
抗原と、抗原−抗体反応を行なわせる0反応物と未反応
物の分離は洗浄によって容易に行なうことができ、固相
表面に抗原−抗体反応によって固定された抗原もしくは
抗体は、標識物を測定することによって定量できる。
きる手法である。この測定法はあらかじめ固相上に抗原
もしくは抗体を固定し、ラジオアイソトープ、けい光性
物質もしくは酵素等の標識物を結合させた抗体もしくは
抗原と、抗原−抗体反応を行なわせる0反応物と未反応
物の分離は洗浄によって容易に行なうことができ、固相
表面に抗原−抗体反応によって固定された抗原もしくは
抗体は、標識物を測定することによって定量できる。
この測定法では、抗原もしくは抗体を固相に多量−に且
つ安定性良く吸着固定することが重要である。
つ安定性良く吸着固定することが重要である。
これまでは、固相としてガラス、ポリスチレン。
ポリ塩化ビニル、ポリカーボネート、シリコンゴム、ナ
イロン−6、ナイロン−66、アクリル樹脂、ABS樹
脂などが用いられてきているが、これらの表面は疎水性
のため、その吸着性に関しては十分ではない、そこで、
これらの材質に表面処理を行い抗原もしくは抗体の吸着
性を上げる検討がなされてきた。ポリスチレンに1級ア
ミノ基を導入し吸着性を上げる方法[J、Inmuno
lMethod 8.223(1975)]、ナイロン
−66を加水分解してから化学的に蛋白質を固定する方
法[C11n、Chem、29(5)、823(198
3)]などが提案されてきた。
イロン−6、ナイロン−66、アクリル樹脂、ABS樹
脂などが用いられてきているが、これらの表面は疎水性
のため、その吸着性に関しては十分ではない、そこで、
これらの材質に表面処理を行い抗原もしくは抗体の吸着
性を上げる検討がなされてきた。ポリスチレンに1級ア
ミノ基を導入し吸着性を上げる方法[J、Inmuno
lMethod 8.223(1975)]、ナイロン
−66を加水分解してから化学的に蛋白質を固定する方
法[C11n、Chem、29(5)、823(198
3)]などが提案されてきた。
しかし、これらはいずれも効果が少なかったり、非特異
的吸着値が高いなどの問題点があるばかりでなく、処理
工程が複雑なため大量に製造することが難しい欠点があ
る。
的吸着値が高いなどの問題点があるばかりでなく、処理
工程が複雑なため大量に製造することが難しい欠点があ
る。
(発明が解決しようとする課題)
本発明の目的は、従来の固相免疫測定法用成形品切持つ
欠点、すなわち蛋白質の吸着性が十分でないという点を
解決するために、単なる材質の検討や化学的表面処理の
手法検討にとどまらず、物理的、電気的な検討を進めた
結果1本発明を完成するに至ったものである。その目的
とする。ところは、蛋白質が安定に且つ多量に特異的に
吸着可能な固相免疫測定法用成形品を製造する方法を提
供本発明は、抗原又は抗体を吸着させるべき面に処理出
力が10〜500v、処理時間が0.1〜10秒の条件
下、好ましくは、330〜370v、 7〜9秒の条件
下でコロナ放電処理、または処理出力250%1以下、
空気圧1torr以下、処理時間5秒以内の条件下で低
温プラズマ処理して該面の抗原又は抗体の吸着量を高め
ることを特徴とする固相免疫測定用成形品の製造法であ
り、コロナ放電或は低温プラズマ処理によってその表面
を親水性化し、蛋白質の吸着性を高めるのである。コロ
ナ放電の場合、500v以上、10秒以上になると、親
水化されすぎて蛋白質の吸着量が下がり、また、 Lo
w、0.1秒未満では親水化度が低く5吸着量が少なく
なる。他方、低温プラズマ処理の場合、処理出力250
v、空気圧1torr、及び処理時間が5秒を超えた場
合には蛋白質の吸着性が低下する。
欠点、すなわち蛋白質の吸着性が十分でないという点を
解決するために、単なる材質の検討や化学的表面処理の
手法検討にとどまらず、物理的、電気的な検討を進めた
結果1本発明を完成するに至ったものである。その目的
とする。ところは、蛋白質が安定に且つ多量に特異的に
吸着可能な固相免疫測定法用成形品を製造する方法を提
供本発明は、抗原又は抗体を吸着させるべき面に処理出
力が10〜500v、処理時間が0.1〜10秒の条件
下、好ましくは、330〜370v、 7〜9秒の条件
下でコロナ放電処理、または処理出力250%1以下、
空気圧1torr以下、処理時間5秒以内の条件下で低
温プラズマ処理して該面の抗原又は抗体の吸着量を高め
ることを特徴とする固相免疫測定用成形品の製造法であ
り、コロナ放電或は低温プラズマ処理によってその表面
を親水性化し、蛋白質の吸着性を高めるのである。コロ
ナ放電の場合、500v以上、10秒以上になると、親
水化されすぎて蛋白質の吸着量が下がり、また、 Lo
w、0.1秒未満では親水化度が低く5吸着量が少なく
なる。他方、低温プラズマ処理の場合、処理出力250
v、空気圧1torr、及び処理時間が5秒を超えた場
合には蛋白質の吸着性が低下する。
更に本発明を詳細に述べると1本発明で言う抗原又は抗
体を吸着させるべき面とは、固相免疫測定用成形品の一
部分で抗原又は抗体を収容する面であり、これらの成形
品はポリスチレン、ポリカーボネート、ポリエチレン、
ポリプロピレン、トリメチルペンテン樹脂、ポリ塩化ビ
ニルポリメチルメタアクリレートないしはその混合物か
らなるプラスチックからなる成形品、或はガラス、金属
、プラスチック等に上記のプラスチックをコーティング
した成形品や、上記のプラスチックを複合シート化した
成形品等をも含む、そして、成形品の形状は、免疫測定
の方法によって自ず決まってくるもので、特に限定され
るものではないが、試験管、ビーズ、マイクロプレート
、キュベツト、ディスクなどがその好例である。これら
成形品で特に透明性を必要とされる場合は材質としてポ
リスチレン、ポリカーボネート、トリメチルペンテン樹
脂、もしくはポリメチルメタアクリレートが好適である
。
体を吸着させるべき面とは、固相免疫測定用成形品の一
部分で抗原又は抗体を収容する面であり、これらの成形
品はポリスチレン、ポリカーボネート、ポリエチレン、
ポリプロピレン、トリメチルペンテン樹脂、ポリ塩化ビ
ニルポリメチルメタアクリレートないしはその混合物か
らなるプラスチックからなる成形品、或はガラス、金属
、プラスチック等に上記のプラスチックをコーティング
した成形品や、上記のプラスチックを複合シート化した
成形品等をも含む、そして、成形品の形状は、免疫測定
の方法によって自ず決まってくるもので、特に限定され
るものではないが、試験管、ビーズ、マイクロプレート
、キュベツト、ディスクなどがその好例である。これら
成形品で特に透明性を必要とされる場合は材質としてポ
リスチレン、ポリカーボネート、トリメチルペンテン樹
脂、もしくはポリメチルメタアクリレートが好適である
。
ところで、上述のプラスチックは疎水性のため未処理状
態では抗体又は抗原が付着せず、その為本発明では抗原
又は抗体を吸着させるべき面をコロナ放電処理或は低温
プラズマ処理を行って、親水性にするのであるが、余り
親水化度が高くなると非特異的吸着量が大となって測定
感度が低下するのである。
態では抗体又は抗原が付着せず、その為本発明では抗原
又は抗体を吸着させるべき面をコロナ放電処理或は低温
プラズマ処理を行って、親水性にするのであるが、余り
親水化度が高くなると非特異的吸着量が大となって測定
感度が低下するのである。
そこで、本発明者らはコロナ放電及び低温プラズマの条
件と吸着量との関係について測定を行った。
件と吸着量との関係について測定を行った。
先づ、コロナ放電の条件と吸着量との関係について測定
する。測定方法としては、抗体としてIgG Frac
tion Rabbit抗ヒトアルブミン(以下、抗H
A IgGという)を固相化用緩衝液(炭酸ナトリウム
緩衝液、pl+9.6)に溶解し、その濃度を2.5μ
g/−〇とし、プレートに分注し、37℃1時間静置し
吸着させる。1時間後、非吸着物を1回洗浄した。この
洗浄とは、O,OS%ツイーン20(牛丼化学工業社製
界面活性剤)を含むリン酸塩緩衝液(以下、 Twe
en20−PBSという)を各ウェルに250μQ/ウ
エルの割合で入れ、プレート攪拌機で10秒間攪拌後排
液することである0次に、抗原としてのヒトアルブミン
(HA)をTveen20−PBSで、2.5ng/m
Q、5.0ng/m n 。
する。測定方法としては、抗体としてIgG Frac
tion Rabbit抗ヒトアルブミン(以下、抗H
A IgGという)を固相化用緩衝液(炭酸ナトリウム
緩衝液、pl+9.6)に溶解し、その濃度を2.5μ
g/−〇とし、プレートに分注し、37℃1時間静置し
吸着させる。1時間後、非吸着物を1回洗浄した。この
洗浄とは、O,OS%ツイーン20(牛丼化学工業社製
界面活性剤)を含むリン酸塩緩衝液(以下、 Twe
en20−PBSという)を各ウェルに250μQ/ウ
エルの割合で入れ、プレート攪拌機で10秒間攪拌後排
液することである0次に、抗原としてのヒトアルブミン
(HA)をTveen20−PBSで、2.5ng/m
Q、5.0ng/m n 。
7.5ng/mfl 、 IO,ong/鵬Aの濃度に
希釈後、それぞれのプレートに分注し、37℃で1時間
静置して吸着させる。1時間後非吸着物を洗滌し、次に
ペルオキシターゼを標識した抗11AIgGを加え、3
7℃で1時間放置した後、非吸着物を洗滌し、基質o−
phanylen diamineを加え、発色させ、
ソノ吸光度を一定した。
希釈後、それぞれのプレートに分注し、37℃で1時間
静置して吸着させる。1時間後非吸着物を洗滌し、次に
ペルオキシターゼを標識した抗11AIgGを加え、3
7℃で1時間放置した後、非吸着物を洗滌し、基質o−
phanylen diamineを加え、発色させ、
ソノ吸光度を一定した。
先ず、コロナ放電処理の処理条件として電極とプレート
との間の距離について検討した結果を第1表に示す。
との間の距離について検討した結果を第1表に示す。
第1表
吸光度 Hu+aan Albumin (ng
/m Q )サンプル 0 2.5 5.
0 7.5 10.00.5cm O,1
200,450G、595 0.730 0.9001
.0cm O,1250,3300,
4050,5400,6702,5c+w
O,0900,2100,3600,4100,
595上記の結果を図示すると第1図のようになる。
/m Q )サンプル 0 2.5 5.
0 7.5 10.00.5cm O,1
200,450G、595 0.730 0.9001
.0cm O,1250,3300,
4050,5400,6702,5c+w
O,0900,2100,3600,4100,
595上記の結果を図示すると第1図のようになる。
次に電極とプレートとの距離を0.50謙と一定にし、
処理時間を変化させたときの結果を第2図に示す、この
場合の測定方法は、先ず、ベルオキシターゼを標識した
抗11A IgGを固相化用緩衝液で、10ng/m
Q 、50ng/m Q、1100n/+ Qの濃度に
希釈後、それぞれのプレートに分注する。また、ベルオ
キシターゼを標識した抗HA IgGをTween20
−PBSに溶解し、その濃度を1μg/v* Qとした
溶液を別のウェルに分注し、37℃で1時間静置して吸
着させる。1時間後、非吸着物を洗浄し、基質0−ph
erylen diawhinsを加え1発色させ、そ
の吸光度を測定した。
処理時間を変化させたときの結果を第2図に示す、この
場合の測定方法は、先ず、ベルオキシターゼを標識した
抗11A IgGを固相化用緩衝液で、10ng/m
Q 、50ng/m Q、1100n/+ Qの濃度に
希釈後、それぞれのプレートに分注する。また、ベルオ
キシターゼを標識した抗HA IgGをTween20
−PBSに溶解し、その濃度を1μg/v* Qとした
溶液を別のウェルに分注し、37℃で1時間静置して吸
着させる。1時間後、非吸着物を洗浄し、基質0−ph
erylen diawhinsを加え1発色させ、そ
の吸光度を測定した。
第2図より、約8秒の処理時間で、吸着量の増加が期待
できる6図中、バックグランドとは、ベルオキシターゼ
を標識した抗HA IgGをTveen20−PBSに
溶解した場合の結果である。
できる6図中、バックグランドとは、ベルオキシターゼ
を標識した抗HA IgGをTveen20−PBSに
溶解した場合の結果である。
同様な方法によって、低温プラズマ処理の場合について
測定した。
測定した。
先づ、真空度0.85torr、処理時間0秒と一定に
して、出力を変化させた場合の結果を第2表として示す
、この処理時間0秒とは出力0より所定の出力に到達後
直ちに出力を0にした場合のことを云う、その結果は第
2表である。
して、出力を変化させた場合の結果を第2表として示す
、この処理時間0秒とは出力0より所定の出力に到達後
直ちに出力を0にした場合のことを云う、その結果は第
2表である。
第2表
吸光度 11uman Albumin (ng
/m Q )サンプル 0 2,5 5.
0 7.5 10.0LOOwO,2540,440
0,6020,8181,012300110,557
0,8650,7700,6540,520この結果、
1001では吸着量は増加するが300vでは非特異的
吸着も大になり測定精度は上がらない。
/m Q )サンプル 0 2,5 5.
0 7.5 10.0LOOwO,2540,440
0,6020,8181,012300110,557
0,8650,7700,6540,520この結果、
1001では吸着量は増加するが300vでは非特異的
吸着も大になり測定精度は上がらない。
次に、出力100v、真空度0.85torrと一定に
して処理時間を変化させた場合の結果を第3表に示す。
して処理時間を変化させた場合の結果を第3表に示す。
第3表
吸光度 11us+an Albumin (n
g/m 11 )サンプル 0 2.5
5.0 ?、5 10.00秒 0.1220
.2930.4580.5680.71510秒
0.603 0.497 G、405 0.486
0.665この場合処理時間0秒とは、前述のとおり
であり、また、10秒とは出力toovに到達後10秒
間処理したことを指す、この結果、10秒間では非特異
的吸着が増加する。
g/m 11 )サンプル 0 2.5
5.0 ?、5 10.00秒 0.1220
.2930.4580.5680.71510秒
0.603 0.497 G、405 0.486
0.665この場合処理時間0秒とは、前述のとおり
であり、また、10秒とは出力toovに到達後10秒
間処理したことを指す、この結果、10秒間では非特異
的吸着が増加する。
最後に出力toow、処理時間0秒と一定にし、真空度
を変化させた場合の結果を第4表に示す。
を変化させた場合の結果を第4表に示す。
第4表
吸光度 )1Nman Albumin (ng
/a+ Q )サンプル 0 2.5 5
.0 7.5 10.00.2torr O
,0960,2060,3350,45g 0.58
01.0torr O,1020,2050,
3250,4G3 0.5062.0torr
O,1050,1620,2340,3150,38
0この表より明らかなように真空度2.0torrにな
ると吸着量は未処理の場合と変わらず、吸着量の増加は
期待できない。
/a+ Q )サンプル 0 2.5 5
.0 7.5 10.00.2torr O
,0960,2060,3350,45g 0.58
01.0torr O,1020,2050,
3250,4G3 0.5062.0torr
O,1050,1620,2340,3150,38
0この表より明らかなように真空度2.0torrにな
ると吸着量は未処理の場合と変わらず、吸着量の増加は
期待できない。
以上の結果より、低温プラズマの処理条件としては、処
理出力250w以下、真空度1torr以下及び処理時
間5秒以内に設定する。
理出力250w以下、真空度1torr以下及び処理時
間5秒以内に設定する。
(実施例)
次に本発明の実施例をもって本発明を説明する。
(実施例1)
ポリスチレン製96ウエル平底マイクロプレートに低温
プラズマ処理し、これと未処理の平底マイクロプレート
とを抗原の吸着性について酵素免疫法により比較検討し
た。
プラズマ処理し、これと未処理の平底マイクロプレート
とを抗原の吸着性について酵素免疫法により比較検討し
た。
低温プラズマ処理の条件を、空気圧1torr以下。
高周波出力50〜100%I、処理時間プラズマ発生直
後−5秒の範囲で変動させ処理物を得た。
後−5秒の範囲で変動させ処理物を得た。
まず、HAを炭酸ナトリウム緩衝液で希釈し、5ng/
m n 、25ng/m Q *50ng/s Qに調
製する。lウェルあたり100μΩずつ各溶液を入れ、
37℃で1時間静置する6次に、0.05%ツイーン2
0(牛丼化学工業社製界面活性剤)を含むリン酸塩緩衝
液(以下、Tween20−PBSという)で、1回洗
浄する。この場合洗浄とはTveen20−PBS 2
50μQ/ウエルを入れ、プレート攪拌機でlθ秒間攪
伸した後排液することを言う0次いで、ペルオキシダー
ゼを標識した坑HAウサギ抗体を100μQ/ウェル加
え、37℃で1時間放置してから3回洗浄を行う、過酸
化水素水(30%)0.4pnjan、0−フェニレン
ジアミンLn+g/m Qをクエン酸−第2リン酸ナト
リウム液に溶解し、200μQ/ウエルずつ加え、15
分間の酵素反応を行う。
m n 、25ng/m Q *50ng/s Qに調
製する。lウェルあたり100μΩずつ各溶液を入れ、
37℃で1時間静置する6次に、0.05%ツイーン2
0(牛丼化学工業社製界面活性剤)を含むリン酸塩緩衝
液(以下、Tween20−PBSという)で、1回洗
浄する。この場合洗浄とはTveen20−PBS 2
50μQ/ウエルを入れ、プレート攪拌機でlθ秒間攪
伸した後排液することを言う0次いで、ペルオキシダー
ゼを標識した坑HAウサギ抗体を100μQ/ウェル加
え、37℃で1時間放置してから3回洗浄を行う、過酸
化水素水(30%)0.4pnjan、0−フェニレン
ジアミンLn+g/m Qをクエン酸−第2リン酸ナト
リウム液に溶解し、200μQ/ウエルずつ加え、15
分間の酵素反応を行う。
6Nの硫酸を50μQ/ウェル加え1反応を停止する。
ダブルビームマイクロプレート光度計(三光純薬社ER
−8000)で主波長490nm、補正波長630nm
で吸光度を測定する0表に示したとおり処理プレートの
吸光度が高く、抗原の吸着量が増加することがわかる。
−8000)で主波長490nm、補正波長630nm
で吸光度を測定する0表に示したとおり処理プレートの
吸光度が高く、抗原の吸着量が増加することがわかる。
吸光度測定結果
HA濃度ng/mQ O52550
処理品 0.012 0.269 0.93
1 1.321未処理比較品 0.004 0.0
44 0.119 0.240(実施例2) ポリスチレン製96ウエル平底マイクロプレートにコロ
ナ放電処理し、これと未処理の平底マイクロプレートと
を抗原の吸着性について酵素免疫法により比較検討した
。
1 1.321未処理比較品 0.004 0.0
44 0.119 0.240(実施例2) ポリスチレン製96ウエル平底マイクロプレートにコロ
ナ放電処理し、これと未処理の平底マイクロプレートと
を抗原の吸着性について酵素免疫法により比較検討した
。
コロナ放電処理の条件を、出力350w、処理時間を4
.7秒とした。
.7秒とした。
まず、HAを炭酸ナトリウム緩衝液で希釈し、5ng/
m Q 、25ng/m n 、50ng/la Qに
調製する。1ウェルあたり100μΩずつ各溶液を入れ
、37℃で1時間静置する0次に、O,OS%ツイーン
20(牛丼化学工業社製界面活性剤)を含むリン酸塩緩
衝液(以下。
m Q 、25ng/m n 、50ng/la Qに
調製する。1ウェルあたり100μΩずつ各溶液を入れ
、37℃で1時間静置する0次に、O,OS%ツイーン
20(牛丼化学工業社製界面活性剤)を含むリン酸塩緩
衝液(以下。
Tveen20−PBSという)で、1回洗浄する。こ
の場合も洗浄とはPBS−ツイーン20250μQ/ウ
エルを入れ、プレート攪拌機で10秒間攪攪伴た後排液
することを言う0次いで、ペルオキシダーゼをS識した
坑11Aウサギ抗体を100μn/ウェル加え、37℃
で1時間放置してから3回洗浄を行う、過酸化水素水(
30%)0.4μQ/脂Ω、0−フェニレンジアミン1
mg/m〔をクエン酸−第2リン酸ナトリウム液に溶解
し、200μfi/ウエルずつ加え、15分間の酵素反
応を行う、 6Nの硫酸を50μQ/ウェル加え、反応
を停止する。ダブルビームマイクロプレート光度計(三
光純薬社[ER−8000)で主波長490nm、補正
波長6300票で吸光度を測定する0表に示したとおり
処理プレートの吸光度が高く、抗原の吸着量が増加する
ことがわかる。
の場合も洗浄とはPBS−ツイーン20250μQ/ウ
エルを入れ、プレート攪拌機で10秒間攪攪伴た後排液
することを言う0次いで、ペルオキシダーゼをS識した
坑11Aウサギ抗体を100μn/ウェル加え、37℃
で1時間放置してから3回洗浄を行う、過酸化水素水(
30%)0.4μQ/脂Ω、0−フェニレンジアミン1
mg/m〔をクエン酸−第2リン酸ナトリウム液に溶解
し、200μfi/ウエルずつ加え、15分間の酵素反
応を行う、 6Nの硫酸を50μQ/ウェル加え、反応
を停止する。ダブルビームマイクロプレート光度計(三
光純薬社[ER−8000)で主波長490nm、補正
波長6300票で吸光度を測定する0表に示したとおり
処理プレートの吸光度が高く、抗原の吸着量が増加する
ことがわかる。
吸光度測定結果
OAa度ng/mQ 0 5 25 50処
理品 0.025 0.222 0.791
1.191未処理比較品 0.004 0.04
4 0.119 0.240(発明の効果) 本発明の固相免疫測定用成形品は、抗原もしくは抗体の
吸着性に優れ、良好な免疫学的分析結果を与えるもので
医療、バイオテクノロジーの研究等の分野で極めて有用
なものであり、その製造法においても成形品の形状を問
わず、薬品等を使用した複雑な作業も必要としないなど
の長所がある。
理品 0.025 0.222 0.791
1.191未処理比較品 0.004 0.04
4 0.119 0.240(発明の効果) 本発明の固相免疫測定用成形品は、抗原もしくは抗体の
吸着性に優れ、良好な免疫学的分析結果を与えるもので
医療、バイオテクノロジーの研究等の分野で極めて有用
なものであり、その製造法においても成形品の形状を問
わず、薬品等を使用した複雑な作業も必要としないなど
の長所がある。
第1図はコロナ放電処理における電極と処理面との距離
と吸着量との関係図、第2図は同処理における処理時間
と吸着量との関係図である。
と吸着量との関係図、第2図は同処理における処理時間
と吸着量との関係図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 抗原又は抗体を吸着させるべき面に処理出力が10
〜500w、処理時間が0.1〜10秒の条件下、好ま
しくは330〜370w、7〜9秒の条件下でコロナ放
電処理して、該面の抗原又は抗体の吸着能を高めること
を特徴とする固相免疫測定用成形品の製造法。 2 抗原又は抗体を吸着させるべき面に処理出力250
w以下、空気圧1torr以下、処理時間5秒以内の条
件下で低温プラズマ処理をして、該面の抗原又は抗体の
吸着能を高めることを特徴とする固相免疫測定用成形品
の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22251588A JPH0271152A (ja) | 1988-09-07 | 1988-09-07 | 固相免疫測定用成形品の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22251588A JPH0271152A (ja) | 1988-09-07 | 1988-09-07 | 固相免疫測定用成形品の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0271152A true JPH0271152A (ja) | 1990-03-09 |
Family
ID=16783638
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP22251588A Pending JPH0271152A (ja) | 1988-09-07 | 1988-09-07 | 固相免疫測定用成形品の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0271152A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1993016387A1 (en) * | 1992-02-05 | 1993-08-19 | Yamasa Corporation | Solid-phase reagent and assay of antibody using the same |
| JP2005527807A (ja) * | 2002-04-12 | 2005-09-15 | ミクロナス ゲーエムベーハー | 表面への分子の固定化のための方法 |
| JP2012211135A (ja) * | 2002-04-27 | 2012-11-01 | Univ Of Strathclyde | ウイルスの固定化及び安定化 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5980442A (ja) * | 1982-09-24 | 1984-05-09 | ベクトン・デイツキンソン・アンド・カンパニ− | 大分子結合用の化学的変成表面 |
| JPS62242857A (ja) * | 1986-04-15 | 1987-10-23 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 固相免疫測定用成形品の製造方法 |
-
1988
- 1988-09-07 JP JP22251588A patent/JPH0271152A/ja active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5980442A (ja) * | 1982-09-24 | 1984-05-09 | ベクトン・デイツキンソン・アンド・カンパニ− | 大分子結合用の化学的変成表面 |
| JPS62242857A (ja) * | 1986-04-15 | 1987-10-23 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 固相免疫測定用成形品の製造方法 |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1993016387A1 (en) * | 1992-02-05 | 1993-08-19 | Yamasa Corporation | Solid-phase reagent and assay of antibody using the same |
| US5472883A (en) * | 1992-02-05 | 1995-12-05 | Yamasa Corporation | Solid phase reagent and assay method for measuring antibodies specific to antiphospholipid syndrome |
| JP2005527807A (ja) * | 2002-04-12 | 2005-09-15 | ミクロナス ゲーエムベーハー | 表面への分子の固定化のための方法 |
| JP2012211135A (ja) * | 2002-04-27 | 2012-11-01 | Univ Of Strathclyde | ウイルスの固定化及び安定化 |
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