JPH0358273B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明は、微生物によるピロガロールの製造法
に関するものである。 ピロガロールは、皮膚病の外用薬、写真の現像
薬、分析用試薬等として、あるいは工業薬品の中
間体として極めて有用な化合物である。 従来、微生物によるピロガロールの製造法とし
ては、例えば、シトロバクター(Citrobacter)
属の細菌(特開昭57−138393号公報)、ペニシリ
ウム(Penicillium)属のカビ〔バイオヒミカ・
エト・バイオフイジカ・アクタ(Biochimicaet
Biophysica Acta)、第28巻、21頁(1958年)及
び科学、第26巻、42頁(1959年)〕若しくはクレ
ブシエラ属(Klebsiella)の細菌〔アントニーバ
ン・リーブウエンホーク(Antonievan
Leevwenhoek)、第35巻、325頁(1969年)〕等に
よりピロガロールを製造する方法が知られている
に過ぎない。 そこで本発明者等は、上記とは別に、広く自然
界からピロガロールを生産し得る微生物の検索を
行なつた結果、森林土壌中より新たに分離して得
たエアロモナス(Aeromonas)属又はエルビニ
ア(Erwinia)属に属する2新菌種が、加水分解
型タンニンあるいは没食子酸よりピロガロールを
極めて効率良く生産すること等の知見を得、本発
明を完成した。 すなわち本発明は、エアロモナス属又はエルビ
ニア属に属し、ピロガロール生産能を有する微生
物、その含有物若しくは菌体処理物を、加水分解
型タンニン及び/又は没食子酸に作用させてピロ
ガロールを生成せしめ、該化合物を採取すること
を特徴とするピロガロールの製造法である。 以下本発明を具体的に説明する。 先ず、本発明に使用する菌としては、エアロモ
ナス属又はエルビニア属に属し、加水分解型タン
ニン及び/又は没食子酸からピロガロールを生産
する微生物であれば、如何なる菌でも良く、ま
た、これら菌の変種もしくは変異株であつてもよ
い。 そして、上記微生物の具体例としては、夫々エ
アロモナスsp.631及びエルビニアsp.932等が挙げ
られ、それらの菌学的性質は、以下に示すとおり
である。 実験方法は、「微生物の分類と同定」、長谷川武
治編、初版を参考として、同定は、バージエイ
ズ・マニユアル・オブ・デイターミネイテイブ・
バクテリオロジー(Bergey's Manual of
Determinative Bacteriology)、第8版、(1974
年)に基づいて行なつたものである。 エアロモナスsp.631の菌学的性質 (a) 形態顕微鏡的観察(ブイヨン培地で、30℃、
16時間培養) 細胞の形及び大きさ: 0.5〜1.0×0.6〜4.0μmの短桿菌である。 細胞の多形性の有無:認められない。 運動性の有無:1〜2本の極鞭毛を有し、
運動性を有する。 胞子の有無:形成せず。 グラム染色性:陰性。 抗酸性:陰性。 (b) 各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:温度30℃、24時間の培
養により、正円形、淡黄色で半透明のコロニ
ーを形成する。コロニーの表面は、滑らかで
光沢を有するが、色素は、生産しない。 肉汁寒天斜面培養:生育は、拡布状に良好
に生育する。 肉汁液体培養:全体に良好に生育し、沈査
を生成する。 肉汁ゼラチン穿刺培養:穿刺線に沿つて生
育し、液化されない。 リトマスミルク:6日目では、変化は認め
られないが、11日目では弱アルカリ化する。 (c) 生理的性質 硝酸塩の還元:還元しない。 脱窒反応:陰性。 MRテスト:陰性。 VPテスト:微陽性。 インドールの生成:陰性。 硫化水素の生成: 酢酸鉛試験紙法:陽性。 TSI寒天法:陰性。 デンプンの加水分解:陰性。 クエン酸の利用:クリステンセン
(Christensen)及びコーザー(Koser)培地
で共に利用する。 無機窒素源の利用:アンモニウム塩及び硝
酸塩を、共に僅かに利用する。 色素の生成:陰性。 〓〓 螢光の有無:陰性。 〓〓 ウレアーゼ:陽性。 〓〓 オキシダーゼ:微陽性。 〓〓 カタラーゼ:陽性。 〓〓 生育の範囲: 至適温度:10〜38℃ 至適PH:5〜9 〓〓 酸素に対する態度:通性嫌気性。 〓〓 O−Fテスト:発酵的に生酸する。 〓〓 糖類から酸及びガスの生成
に関するものである。 ピロガロールは、皮膚病の外用薬、写真の現像
薬、分析用試薬等として、あるいは工業薬品の中
間体として極めて有用な化合物である。 従来、微生物によるピロガロールの製造法とし
ては、例えば、シトロバクター(Citrobacter)
属の細菌(特開昭57−138393号公報)、ペニシリ
ウム(Penicillium)属のカビ〔バイオヒミカ・
エト・バイオフイジカ・アクタ(Biochimicaet
Biophysica Acta)、第28巻、21頁(1958年)及
び科学、第26巻、42頁(1959年)〕若しくはクレ
ブシエラ属(Klebsiella)の細菌〔アントニーバ
ン・リーブウエンホーク(Antonievan
Leevwenhoek)、第35巻、325頁(1969年)〕等に
よりピロガロールを製造する方法が知られている
に過ぎない。 そこで本発明者等は、上記とは別に、広く自然
界からピロガロールを生産し得る微生物の検索を
行なつた結果、森林土壌中より新たに分離して得
たエアロモナス(Aeromonas)属又はエルビニ
ア(Erwinia)属に属する2新菌種が、加水分解
型タンニンあるいは没食子酸よりピロガロールを
極めて効率良く生産すること等の知見を得、本発
明を完成した。 すなわち本発明は、エアロモナス属又はエルビ
ニア属に属し、ピロガロール生産能を有する微生
物、その含有物若しくは菌体処理物を、加水分解
型タンニン及び/又は没食子酸に作用させてピロ
ガロールを生成せしめ、該化合物を採取すること
を特徴とするピロガロールの製造法である。 以下本発明を具体的に説明する。 先ず、本発明に使用する菌としては、エアロモ
ナス属又はエルビニア属に属し、加水分解型タン
ニン及び/又は没食子酸からピロガロールを生産
する微生物であれば、如何なる菌でも良く、ま
た、これら菌の変種もしくは変異株であつてもよ
い。 そして、上記微生物の具体例としては、夫々エ
アロモナスsp.631及びエルビニアsp.932等が挙げ
られ、それらの菌学的性質は、以下に示すとおり
である。 実験方法は、「微生物の分類と同定」、長谷川武
治編、初版を参考として、同定は、バージエイ
ズ・マニユアル・オブ・デイターミネイテイブ・
バクテリオロジー(Bergey's Manual of
Determinative Bacteriology)、第8版、(1974
年)に基づいて行なつたものである。 エアロモナスsp.631の菌学的性質 (a) 形態顕微鏡的観察(ブイヨン培地で、30℃、
16時間培養) 細胞の形及び大きさ: 0.5〜1.0×0.6〜4.0μmの短桿菌である。 細胞の多形性の有無:認められない。 運動性の有無:1〜2本の極鞭毛を有し、
運動性を有する。 胞子の有無:形成せず。 グラム染色性:陰性。 抗酸性:陰性。 (b) 各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:温度30℃、24時間の培
養により、正円形、淡黄色で半透明のコロニ
ーを形成する。コロニーの表面は、滑らかで
光沢を有するが、色素は、生産しない。 肉汁寒天斜面培養:生育は、拡布状に良好
に生育する。 肉汁液体培養:全体に良好に生育し、沈査
を生成する。 肉汁ゼラチン穿刺培養:穿刺線に沿つて生
育し、液化されない。 リトマスミルク:6日目では、変化は認め
られないが、11日目では弱アルカリ化する。 (c) 生理的性質 硝酸塩の還元:還元しない。 脱窒反応:陰性。 MRテスト:陰性。 VPテスト:微陽性。 インドールの生成:陰性。 硫化水素の生成: 酢酸鉛試験紙法:陽性。 TSI寒天法:陰性。 デンプンの加水分解:陰性。 クエン酸の利用:クリステンセン
(Christensen)及びコーザー(Koser)培地
で共に利用する。 無機窒素源の利用:アンモニウム塩及び硝
酸塩を、共に僅かに利用する。 色素の生成:陰性。 〓〓 螢光の有無:陰性。 〓〓 ウレアーゼ:陽性。 〓〓 オキシダーゼ:微陽性。 〓〓 カタラーゼ:陽性。 〓〓 生育の範囲: 至適温度:10〜38℃ 至適PH:5〜9 〓〓 酸素に対する態度:通性嫌気性。 〓〓 O−Fテスト:発酵的に生酸する。 〓〓 糖類から酸及びガスの生成
【表】
(d) その他の性質
リジンの脱炭酸:陰性。
炭素源としてのアミノ酸の利用:
L−アルギニン:陽性。
L−アスパラギン:陽性。
L−ヒスチジン:陽性。
L−セリン:陰性。
L−アラニン:陽性。
L−グルタミン酸:陽性。
フエニルアラニンデアミナーゼ:陽性。
ペクチン分解:陰性。
カゼイン分解:陰性。
DNase:陰性。
グルコン酸酸化:陽性。
シヨ糖還元物質の生成:陰性。
(0/129)テスト:
2,4−ジアミノ−6,7−ジイソプロピル
プテリジンに対する感受性:陰性。 上記エアロモナスsp.631は、オキシダーゼは、
不明瞭であるが、極鞭毛を有し、ビブリオ科そし
て、曲がつた細胞及び球形の細胞が存在せず、螢
光がなく、食塩無添加の肉汁培地でも増殖し、ま
た、2,4−ジアミノ−6,7−ジイソプロピル
プテリジン(2,4−diamino−6,7−
diisopropylpteridine)に感受性を有しないこと
等の特徴からエアロモナス属に属するものと同定
した。 そして、温度37℃でも生育し、グルコースから
発酵的にアセトインを生成することからエアロモ
ナス・ハイドロフイラ(Aeromonas
hydrophilia)に近縁であるが、デンプンを分解
せず、ゼラチンを液化せず、ウレアーゼ陽性で、
インドール陰性及び7.5%食塩水中で生育する点
で、本菌株は、エアロモナス・ハイドロフイラと
は相違し、バージエイズ・マニユアル・オブ・デ
イターミネイテイブ・バクテリソロジー、第8
版、(1974年)にも、本菌株と一致する種の記載
がなく、本菌株を新種とみなしエアロモナス
sp.631と命名した。 なお、エアロモナスsp.631は、工業技術院微生
物工業技術研究所に、微工研菌寄第7899号
(FERM P−7899)として寄託されている。 エルビニアsp.932の菌学的性質 (a) 形態顕微鏡的観察(ブイヨン培地で、30℃、
16時間培養) 細胞の形及び大きさ: 0.5〜0.8×0.6〜2.5μmの短桿菌である。 細胞の多形性の有無:認められない。 運動性の有無:周鞭毛を有し、運動性を有
する。 胞子の有無:形成せず。 グラム染色性:陰性。 抗酸性:陰性。 (b) 各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:温度30℃、24時間の培
養により正円形、淡黄色で半透明のコロニー
を形成する。コロニーの表面は、滑らかで光
沢を有し、培地は、淡黄色に変化する。 肉汁寒天斜面培養:生育は、拡布状に良好
に生育する。 肉汁液体培養:全体に生育するが、生育
は、やゝ不良であり、沈査を生成する。 肉汁ゼラチン穿刺培養:穿刺線に沿つて生
育し、4週間目で弱く液化された。 リトマスミルク:変化は認められない。 (c) 生理的性質 硝酸塩の還元: 肉汁培地:3日間の培養では還元しない
が、5日間の培養では還元する。 コハク酸ナトリウム培地:還元する。 脱窒反応:陰性。 MRテスト:陰性。 VPテスト:微陽性。 インドールの生成:陰性。 硫化水素の生成: 酢酸鉛試験紙法:陽性。 TSI寒天法:陰性。 デンプンの加水分解:陰性。 クエン酸の利用:クリステンセン
(Christensen)及びコーザー(Koser)培地
で、共に未利用。 無機窒素源の利用:アンモニウム塩及び硝
酸塩を、共に僅かに利用する。 色素の生成:陰性。 螢光の有無:陰性。 ウレアーゼ:陽性。 オキシダーゼ:陰性。 カタラーゼ:陽性。 生育の範囲: 至適温度:10〜37℃ 至適PH:5〜9 酸素に対する態度:通性嫌気性。 O−Fテスト:発酵的に生酸する。 糖類から酸及びガスの生成
プテリジンに対する感受性:陰性。 上記エアロモナスsp.631は、オキシダーゼは、
不明瞭であるが、極鞭毛を有し、ビブリオ科そし
て、曲がつた細胞及び球形の細胞が存在せず、螢
光がなく、食塩無添加の肉汁培地でも増殖し、ま
た、2,4−ジアミノ−6,7−ジイソプロピル
プテリジン(2,4−diamino−6,7−
diisopropylpteridine)に感受性を有しないこと
等の特徴からエアロモナス属に属するものと同定
した。 そして、温度37℃でも生育し、グルコースから
発酵的にアセトインを生成することからエアロモ
ナス・ハイドロフイラ(Aeromonas
hydrophilia)に近縁であるが、デンプンを分解
せず、ゼラチンを液化せず、ウレアーゼ陽性で、
インドール陰性及び7.5%食塩水中で生育する点
で、本菌株は、エアロモナス・ハイドロフイラと
は相違し、バージエイズ・マニユアル・オブ・デ
イターミネイテイブ・バクテリソロジー、第8
版、(1974年)にも、本菌株と一致する種の記載
がなく、本菌株を新種とみなしエアロモナス
sp.631と命名した。 なお、エアロモナスsp.631は、工業技術院微生
物工業技術研究所に、微工研菌寄第7899号
(FERM P−7899)として寄託されている。 エルビニアsp.932の菌学的性質 (a) 形態顕微鏡的観察(ブイヨン培地で、30℃、
16時間培養) 細胞の形及び大きさ: 0.5〜0.8×0.6〜2.5μmの短桿菌である。 細胞の多形性の有無:認められない。 運動性の有無:周鞭毛を有し、運動性を有
する。 胞子の有無:形成せず。 グラム染色性:陰性。 抗酸性:陰性。 (b) 各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:温度30℃、24時間の培
養により正円形、淡黄色で半透明のコロニー
を形成する。コロニーの表面は、滑らかで光
沢を有し、培地は、淡黄色に変化する。 肉汁寒天斜面培養:生育は、拡布状に良好
に生育する。 肉汁液体培養:全体に生育するが、生育
は、やゝ不良であり、沈査を生成する。 肉汁ゼラチン穿刺培養:穿刺線に沿つて生
育し、4週間目で弱く液化された。 リトマスミルク:変化は認められない。 (c) 生理的性質 硝酸塩の還元: 肉汁培地:3日間の培養では還元しない
が、5日間の培養では還元する。 コハク酸ナトリウム培地:還元する。 脱窒反応:陰性。 MRテスト:陰性。 VPテスト:微陽性。 インドールの生成:陰性。 硫化水素の生成: 酢酸鉛試験紙法:陽性。 TSI寒天法:陰性。 デンプンの加水分解:陰性。 クエン酸の利用:クリステンセン
(Christensen)及びコーザー(Koser)培地
で、共に未利用。 無機窒素源の利用:アンモニウム塩及び硝
酸塩を、共に僅かに利用する。 色素の生成:陰性。 螢光の有無:陰性。 ウレアーゼ:陽性。 オキシダーゼ:陰性。 カタラーゼ:陽性。 生育の範囲: 至適温度:10〜37℃ 至適PH:5〜9 酸素に対する態度:通性嫌気性。 O−Fテスト:発酵的に生酸する。 糖類から酸及びガスの生成
【表】
(d) その他の性質
リジンの脱炭酸:陰性。
炭素源としてのアミノ酸の利用:
L−アルギニン:陽性。
L−アスパラギン:陽性。
L−ヒスチジン:陽性。
L−セリン:陰性。
L−アラニン:陽性。
L−グルタミン酸:微陽性。
フエニルアラニンデアミナーゼ:陽性。
ペクチン分解:陰性。
カゼイン分解:陰性。
DNase:陰性。
グルコン酸酸化:陽性。
シヨ糖還元物質の生成:陰性。
(0/129)テスト:
2,4−ジアミノ−6,7−ジイソプロピル
プテリジンに対する感受性:陰性。 上記エルビニアsp.932は、オキシダーゼ陰性、
周鞭毛を有し、グルコースより発酵的に生酸する
ことによりエンテロバクター科
(Enterobacterioceae)に属することは明白であ
る。 そして、生育の最適温度が、30℃であること、
ウレアーゼ陰性、ベンゾエイト(Benzoate)、オ
キザレイト(Oxalate)及びプロピオネイト
(Propionate)を炭素源として利用せず、糖より
のガスの生成並びにデンプンの加水分解が陰性で
あることによりエルビニア(Erwinia)属に属す
るものと同定された。 更に、生育因子がなく、温度36℃でも生育する
こと、肉汁寒天斜面培地上で1週間の培養により
淡黄色を呈すること等よりエルビニア・ハービコ
ーラ・グループ(Erwinia herbicola group)に
属するものと思われるが、ゼラチン液化が微弱で
あること、糖類がらの酸の生成、すなわち、イノ
シツト、メリビオース、麦芽糖、アドニトール、
セロビオース、グリセリン、ソルビツトにおいて
相違し、本菌株と一致する種の記載が、バージエ
イズ・マニユアル・オブ・デイターミネイテイ
ブ・バクテリオロジー、第8版(1974年)にもな
く、本菌株を新種となみしエルビニアsp.932と命
名した。 なお、エルビニアsp.932は、工業技術院微生物
工業技術研究所に微工研菌寄第7900号(FERM
P−7900)として寄託されている。 そして、本発明において、加水分解型タンニン
及び/又は、没食子酸に上記微生物、その含有物
若しくはその菌体処理物を作用させるには、 加水分解型タンニン及び/又は没食子酸を含
有する培地に、前記微生物を接種、培養し、微
生物の培養と並行してピロガロールを培養物中
に生成蓄積させる方法。 上記微生物を、予め培地に接種、培養して得
られた培養物、すなわち、該微生物含有物と加
水分解型タンニン及び/又は没食子酸を接触作
用させることによりピロガロールを生成させる
方法。 上記微生物を、予め培地に接種、培養して得
られた培養物から分離した菌体又は菌体処理物
と加水分解型タンニン及び/又は没食子酸とを
接触作用させる方法等が挙げられる。 なお、加水分解型タンニンとしては、如何なる
ものでもよく、例えば、ガロタンニン、五倍子タ
ンニン、没食子タンニン、タラタンニン等が挙げ
られ、没食子酸は、如何なる由来、製法等による
ものであつてもよい。 前記の方法では、倍地は、通常の炭素源、窒
素源、無機塩、微量栄養源等以外に加水分解型タ
ンニン及び/又は没食子酸を含有するものであれ
ば、如何なるものでもよく、炭素源としては、グ
ルコース、ガラクトース、フラクトース、マンノ
ース、アラビノース、キシロース、リボース、マ
ンニツト、イノシツト、グリセリン等が挙げら
れ、窒素源としては、ペプトン、酵母エキス、肉
エキス、カザミノ酸、コーンステイープリカー、
アミノ酸類等の天然窒素源、アンモニウム塩等の
無機窒素源等を、単独または、組み合せて用いる
ことができる。 更に、微量栄養源としては、ビタミン類、核酸
塩基類、アミノ酸類等のものが挙げられる。 倍地の初発PHは、5.0〜9.0、好ましくは、5.0〜
6.0であり、培養温度は、使用する微生物が生育
しえる温度であればよく、通常、15〜37℃、好ま
しくは20〜30℃である。 本微生物の培養は、固体培養法でもよいが、通
常液体培養法を採用するのが有利であり、具体的
には、通常撹拌培養、振盪培養あるいは静置培養
等により、通常24〜72時間、好ましくは、24〜48
時間培養して培地中にピロガロールを生成、蓄積
させる。 前記の方法においては、微生物を培養する培
地は、前記と同様な培地が使用され、本微生物
は、加水分解型タンニン及び/又は没食子酸を含
有しない培地でも充分生育させることができる
が、加水分解型タンニン及び/又は没食子酸を培
地中に少量添加することにより加水分解型タンニ
ン及び/又は没食子酸からピロガロールを生成す
る能力の増大した菌体を得ることができる。 また、培地のPH、培養温度及び培養方法は、前
記と同様でよいが、培養時間は、菌の生育が対
数増殖期に入つた頃から、ピロガロールへの生成
する能力を示すので、前記における培養時間よ
り短くてもよい。 この方法においては、加水分解型タンニン及
び/又は没食子酸を培養物に直接添加してもよ
く、培養物の濃縮等を行なつた培養処理物に、加
水分解型タンニン及び/又は没食子酸を添加して
もよい。 添加する該タンニン及び/又は没食子酸の濃度
は、特に制限はないが、通常は、培養物中又は培
養処理物中の濃度が、0.2〜10重量%とすること
が好ましい。反応のPHは、例えば、3.0〜8.0、好
ましくは4.0〜6.0であり、反応温度は、反応が進
行する温度であれば、如何なる温度でもよく、通
常は、20〜40℃程度であつて、振盪、撹拌あるい
は静置することによつてピロガロールを生成、蓄
積させることが好ましい。 前記の方法においては、微生物は、前記の
方法と同様にして培養され、培養終了後、培養物
より、例えば、遠心分離、濾過等の通常の手段に
よつて菌体を分離することができる。 の方法で使用される菌体は、分離後の未処理
菌体でもよく、また、超音波処理、ホモゲナイザ
ー、ブレンダー、ビブロゲンセルミル、ダイノー
ミル等の機械的破壊手段あるいはトリトンX・
100等の界面活性剤、リゾチーム等の酵素を使用
する方法、凍結融解、自己消化等の化学的破壊手
段等により破壊処理された菌体処理物でもよく、
これらの処理後、通常の酵素分離法を用いて分取
した酵素等も適宜用いられる。 また、菌体又は酵素を、通常の固定化法に従つ
て固定化したものを用いて連続的にピロガロール
を生産することも可能である。 このようにして生成、蓄積されたピロガロール
は、公知の方法で採取することができ、例えば、
ジエチルエーテルを用いて抽出したものを、活性
炭等により脱色して濃縮し、昇華する方法等によ
りピロガロールを単離することができる。 以上の如く本発明によれば、従来エアロモナス
属又はエルビニア属の細菌としては、加水分解型
タンニン及び/又は没食子酸よりピロガロールを
生産することが未公知で、かつまた極めて効率よ
く本化合物を生産することができるので、本発明
は、産業上極めて有意義である。 以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明す
る。 実施例 1 肉汁ブイヨン培地〔肉エキス0.3%(w/v)、
ペプトン1%(w/v)、NaCl0.5%(w/v)、
PH7.0〕を分注した綿栓付き試験管に、エアロモ
ナスsp.631株(FERM P−7899)及びエルビニ
アsp.932株(FERM P−7900)を、夫々1白金
耳ずつ接種し、温度30℃で18時間振盪培養して得
た前培養液全体を、ガロタンニンあるいはタラタ
ンニン4%(w/v)、リン酸1アンモニウム0.2
%(w/v)、リン酸1カリウム0.3%(w/v)、
硫酸マグネシウム0.1%(w/v)、PH5.5の液体
培地100ml中に接種し、温度30℃で30時間振盪培
養し、得られた培養物中のピロガロールの生成量
を高速液体クロマトグラフイー(日本分光・社・
製、トウインクル(Twincle)型HPLC)を用い
て測定した結果を下表に示した。
プテリジンに対する感受性:陰性。 上記エルビニアsp.932は、オキシダーゼ陰性、
周鞭毛を有し、グルコースより発酵的に生酸する
ことによりエンテロバクター科
(Enterobacterioceae)に属することは明白であ
る。 そして、生育の最適温度が、30℃であること、
ウレアーゼ陰性、ベンゾエイト(Benzoate)、オ
キザレイト(Oxalate)及びプロピオネイト
(Propionate)を炭素源として利用せず、糖より
のガスの生成並びにデンプンの加水分解が陰性で
あることによりエルビニア(Erwinia)属に属す
るものと同定された。 更に、生育因子がなく、温度36℃でも生育する
こと、肉汁寒天斜面培地上で1週間の培養により
淡黄色を呈すること等よりエルビニア・ハービコ
ーラ・グループ(Erwinia herbicola group)に
属するものと思われるが、ゼラチン液化が微弱で
あること、糖類がらの酸の生成、すなわち、イノ
シツト、メリビオース、麦芽糖、アドニトール、
セロビオース、グリセリン、ソルビツトにおいて
相違し、本菌株と一致する種の記載が、バージエ
イズ・マニユアル・オブ・デイターミネイテイ
ブ・バクテリオロジー、第8版(1974年)にもな
く、本菌株を新種となみしエルビニアsp.932と命
名した。 なお、エルビニアsp.932は、工業技術院微生物
工業技術研究所に微工研菌寄第7900号(FERM
P−7900)として寄託されている。 そして、本発明において、加水分解型タンニン
及び/又は、没食子酸に上記微生物、その含有物
若しくはその菌体処理物を作用させるには、 加水分解型タンニン及び/又は没食子酸を含
有する培地に、前記微生物を接種、培養し、微
生物の培養と並行してピロガロールを培養物中
に生成蓄積させる方法。 上記微生物を、予め培地に接種、培養して得
られた培養物、すなわち、該微生物含有物と加
水分解型タンニン及び/又は没食子酸を接触作
用させることによりピロガロールを生成させる
方法。 上記微生物を、予め培地に接種、培養して得
られた培養物から分離した菌体又は菌体処理物
と加水分解型タンニン及び/又は没食子酸とを
接触作用させる方法等が挙げられる。 なお、加水分解型タンニンとしては、如何なる
ものでもよく、例えば、ガロタンニン、五倍子タ
ンニン、没食子タンニン、タラタンニン等が挙げ
られ、没食子酸は、如何なる由来、製法等による
ものであつてもよい。 前記の方法では、倍地は、通常の炭素源、窒
素源、無機塩、微量栄養源等以外に加水分解型タ
ンニン及び/又は没食子酸を含有するものであれ
ば、如何なるものでもよく、炭素源としては、グ
ルコース、ガラクトース、フラクトース、マンノ
ース、アラビノース、キシロース、リボース、マ
ンニツト、イノシツト、グリセリン等が挙げら
れ、窒素源としては、ペプトン、酵母エキス、肉
エキス、カザミノ酸、コーンステイープリカー、
アミノ酸類等の天然窒素源、アンモニウム塩等の
無機窒素源等を、単独または、組み合せて用いる
ことができる。 更に、微量栄養源としては、ビタミン類、核酸
塩基類、アミノ酸類等のものが挙げられる。 倍地の初発PHは、5.0〜9.0、好ましくは、5.0〜
6.0であり、培養温度は、使用する微生物が生育
しえる温度であればよく、通常、15〜37℃、好ま
しくは20〜30℃である。 本微生物の培養は、固体培養法でもよいが、通
常液体培養法を採用するのが有利であり、具体的
には、通常撹拌培養、振盪培養あるいは静置培養
等により、通常24〜72時間、好ましくは、24〜48
時間培養して培地中にピロガロールを生成、蓄積
させる。 前記の方法においては、微生物を培養する培
地は、前記と同様な培地が使用され、本微生物
は、加水分解型タンニン及び/又は没食子酸を含
有しない培地でも充分生育させることができる
が、加水分解型タンニン及び/又は没食子酸を培
地中に少量添加することにより加水分解型タンニ
ン及び/又は没食子酸からピロガロールを生成す
る能力の増大した菌体を得ることができる。 また、培地のPH、培養温度及び培養方法は、前
記と同様でよいが、培養時間は、菌の生育が対
数増殖期に入つた頃から、ピロガロールへの生成
する能力を示すので、前記における培養時間よ
り短くてもよい。 この方法においては、加水分解型タンニン及
び/又は没食子酸を培養物に直接添加してもよ
く、培養物の濃縮等を行なつた培養処理物に、加
水分解型タンニン及び/又は没食子酸を添加して
もよい。 添加する該タンニン及び/又は没食子酸の濃度
は、特に制限はないが、通常は、培養物中又は培
養処理物中の濃度が、0.2〜10重量%とすること
が好ましい。反応のPHは、例えば、3.0〜8.0、好
ましくは4.0〜6.0であり、反応温度は、反応が進
行する温度であれば、如何なる温度でもよく、通
常は、20〜40℃程度であつて、振盪、撹拌あるい
は静置することによつてピロガロールを生成、蓄
積させることが好ましい。 前記の方法においては、微生物は、前記の
方法と同様にして培養され、培養終了後、培養物
より、例えば、遠心分離、濾過等の通常の手段に
よつて菌体を分離することができる。 の方法で使用される菌体は、分離後の未処理
菌体でもよく、また、超音波処理、ホモゲナイザ
ー、ブレンダー、ビブロゲンセルミル、ダイノー
ミル等の機械的破壊手段あるいはトリトンX・
100等の界面活性剤、リゾチーム等の酵素を使用
する方法、凍結融解、自己消化等の化学的破壊手
段等により破壊処理された菌体処理物でもよく、
これらの処理後、通常の酵素分離法を用いて分取
した酵素等も適宜用いられる。 また、菌体又は酵素を、通常の固定化法に従つ
て固定化したものを用いて連続的にピロガロール
を生産することも可能である。 このようにして生成、蓄積されたピロガロール
は、公知の方法で採取することができ、例えば、
ジエチルエーテルを用いて抽出したものを、活性
炭等により脱色して濃縮し、昇華する方法等によ
りピロガロールを単離することができる。 以上の如く本発明によれば、従来エアロモナス
属又はエルビニア属の細菌としては、加水分解型
タンニン及び/又は没食子酸よりピロガロールを
生産することが未公知で、かつまた極めて効率よ
く本化合物を生産することができるので、本発明
は、産業上極めて有意義である。 以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明す
る。 実施例 1 肉汁ブイヨン培地〔肉エキス0.3%(w/v)、
ペプトン1%(w/v)、NaCl0.5%(w/v)、
PH7.0〕を分注した綿栓付き試験管に、エアロモ
ナスsp.631株(FERM P−7899)及びエルビニ
アsp.932株(FERM P−7900)を、夫々1白金
耳ずつ接種し、温度30℃で18時間振盪培養して得
た前培養液全体を、ガロタンニンあるいはタラタ
ンニン4%(w/v)、リン酸1アンモニウム0.2
%(w/v)、リン酸1カリウム0.3%(w/v)、
硫酸マグネシウム0.1%(w/v)、PH5.5の液体
培地100ml中に接種し、温度30℃で30時間振盪培
養し、得られた培養物中のピロガロールの生成量
を高速液体クロマトグラフイー(日本分光・社・
製、トウインクル(Twincle)型HPLC)を用い
て測定した結果を下表に示した。
【表】
実施例 2
没食子酸1.5%(w/v)、ポリペプトン1%
(w/v)、グルコース5%(w/v)、酸母エキ
ス0.2%(w/v)、リン酸1カリウム0.2%
(w/v)、硫酸マグネシウム0.1%(w/v)、PH
5.0の液体培地100ml中に、前記実施例1と同様の
前培養液を接種し、温度30℃で24時間振盪培養
し、得られた培養物中のピロガロールの生成量
を、実施例1と同様にして測定して得た値、ま
た、没食子酸からの転換率を夫夫下表に示した。
(w/v)、グルコース5%(w/v)、酸母エキ
ス0.2%(w/v)、リン酸1カリウム0.2%
(w/v)、硫酸マグネシウム0.1%(w/v)、PH
5.0の液体培地100ml中に、前記実施例1と同様の
前培養液を接種し、温度30℃で24時間振盪培養
し、得られた培養物中のピロガロールの生成量
を、実施例1と同様にして測定して得た値、ま
た、没食子酸からの転換率を夫夫下表に示した。
【表】
実施例 3
没食子酸0.5%(w/v)、ガザミノ酸1%
(w/v)、グルコース1.0%(w/v)、酸母エキ
ス0.2%(w/v)、リン酸1カリウム0.2%
(w/v)、硫酸マグネシウム0.1%(w/v)、PH
5.5の液体培地100ml中に、前記実施例1と同様の
前培養液を接種し、温度30℃で10時間培養して得
た培養物を、12000r.p.m.で15分間遠心分離処理
して菌体を分離し、該菌体を、2%(w/v)没
食子酸及び0.05M(モル)MES〔2−(N−
Morpholino)ethane sulfonic acid,
monohydrate〕緩衝液(PH=5.0)を含有する液
に添加し、温度30℃で16時間ゆるく撹拌したの
ち、反応終了液中のピロガロール生成量を、実施
例1と同様にして測定した結果を、下表に示し
た。
(w/v)、グルコース1.0%(w/v)、酸母エキ
ス0.2%(w/v)、リン酸1カリウム0.2%
(w/v)、硫酸マグネシウム0.1%(w/v)、PH
5.5の液体培地100ml中に、前記実施例1と同様の
前培養液を接種し、温度30℃で10時間培養して得
た培養物を、12000r.p.m.で15分間遠心分離処理
して菌体を分離し、該菌体を、2%(w/v)没
食子酸及び0.05M(モル)MES〔2−(N−
Morpholino)ethane sulfonic acid,
monohydrate〕緩衝液(PH=5.0)を含有する液
に添加し、温度30℃で16時間ゆるく撹拌したの
ち、反応終了液中のピロガロール生成量を、実施
例1と同様にして測定した結果を、下表に示し
た。
【表】
実施例 4
実施例2の方法で得た培地105mlの培養液を、
12000r.p.m.で15分間遠心分離処理して上清液100
mlを得、該上清液のPHを塩酸を用いてPH2.0に調
整したのち、2回100mlのジエチルエーテルを用
いて抽出し、該エーテル層を常法により蒸発乾固
し、得られた乾燥粉末を、常法により減圧下で昇
華させて結晶550mgを得た。 このようにして得られた結晶の融点は、131〜
134℃であり、薄層クロマトグラフイー(展開溶
媒ベンゼン:ジオキサン:酢酸=90:25:4)の
Rf値は、ピロガロールと一致し、IRスペクトル
は、ピロガロールのそれと完全に一致したため、
本結晶をピロガロールと同定した。
12000r.p.m.で15分間遠心分離処理して上清液100
mlを得、該上清液のPHを塩酸を用いてPH2.0に調
整したのち、2回100mlのジエチルエーテルを用
いて抽出し、該エーテル層を常法により蒸発乾固
し、得られた乾燥粉末を、常法により減圧下で昇
華させて結晶550mgを得た。 このようにして得られた結晶の融点は、131〜
134℃であり、薄層クロマトグラフイー(展開溶
媒ベンゼン:ジオキサン:酢酸=90:25:4)の
Rf値は、ピロガロールと一致し、IRスペクトル
は、ピロガロールのそれと完全に一致したため、
本結晶をピロガロールと同定した。
Claims (1)
- 1 エアロモナス属又はエルビニア属に属し、ピ
ロガロール生産能を有する微生物、その含有物若
しくは菌体処理物を、加水分解型タンニン及び/
又は没食子酸に作用させてピロガロールを生成せ
しめ、該化合物を採取することを特徴とするピロ
ガロールの製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22678684A JPS61108393A (ja) | 1984-10-30 | 1984-10-30 | ピロガロ−ルの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP22678684A JPS61108393A (ja) | 1984-10-30 | 1984-10-30 | ピロガロ−ルの製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61108393A JPS61108393A (ja) | 1986-05-27 |
| JPH0358273B2 true JPH0358273B2 (ja) | 1991-09-04 |
Family
ID=16850589
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP22678684A Granted JPS61108393A (ja) | 1984-10-30 | 1984-10-30 | ピロガロ−ルの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61108393A (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4769516B2 (ja) * | 2005-08-23 | 2011-09-07 | 東芝機械株式会社 | シート成形装置およびその制御方法 |
| JP4717551B2 (ja) * | 2005-08-23 | 2011-07-06 | 東芝機械株式会社 | シート成形装置およびロール間隙制御方法 |
-
1984
- 1984-10-30 JP JP22678684A patent/JPS61108393A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS61108393A (ja) | 1986-05-27 |
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