JPH0363289A - 抗生物質ge2270因子a↓1、a↓2、a↓3およびh - Google Patents
抗生物質ge2270因子a↓1、a↓2、a↓3およびhInfo
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- JPH0363289A JPH0363289A JP2174621A JP17462190A JPH0363289A JP H0363289 A JPH0363289 A JP H0363289A JP 2174621 A JP2174621 A JP 2174621A JP 17462190 A JP17462190 A JP 17462190A JP H0363289 A JPH0363289 A JP H0363289A
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- C07K5/04—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
- C07K5/06—Dipeptides
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、抗生物質GE2270因子AI、A、、A、
またはHと命名する新規な抗生物質、それらの付加塩、
それらの製剤学的組成物、および薬物として、とくにそ
れらに対して感受性の微生物を包含する伝染病の処置に
おける薬物としてのそれらの使用に関する。
またはHと命名する新規な抗生物質、それらの付加塩、
それらの製剤学的組成物、および薬物として、とくにそ
れらに対して感受性の微生物を包含する伝染病の処置に
おける薬物としてのそれらの使用に関する。
本発明の化合物は、また、動物、例えば、家禽、ブタ、
反舞動物などにおける成長促進剤として活性である。
反舞動物などにおける成長促進剤として活性である。
本発明の目的は、抗生物質GE2270因子Aの選択的
処理により抗生物質GE2270因子A、、A、、As
またはHを調製する方法である。
処理により抗生物質GE2270因子A、、A、、As
またはHを調製する方法である。
この抗生物質GE2270因子Aは、プラノビスボラ−
aセア(Planobispora r。
aセア(Planobispora r。
5ea)ATCC53773またはその産生変異種また
は突然変異体の試料を培養し、そして所望の抗生物質を
菌糸体および/または発酵プロスを単離することによっ
て調製される。プラノビスボラφロセア(Planob
ispora rosea)ATCC53773は、
土の試料から分離され、モしてプダベスト条約の規定に
従いアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(
the American Type Cu1t
ure Co11ection)(ATCC)(米国
マリイランド州208520ツクビレ)に1988年6
月14日に受託された。
は突然変異体の試料を培養し、そして所望の抗生物質を
菌糸体および/または発酵プロスを単離することによっ
て調製される。プラノビスボラφロセア(Planob
ispora rosea)ATCC53773は、
土の試料から分離され、モしてプダベスト条約の規定に
従いアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(
the American Type Cu1t
ure Co11ection)(ATCC)(米国
マリイランド州208520ツクビレ)に1988年6
月14日に受託された。
この菌株は受は入れ番号ATCC53773を与えられ
た。
た。
抗生物質GE2270因子Aおよびプラノビスボラ・ロ
セア(Planobispora r。
セア(Planobispora r。
5ea)ATCC53773は、欧州特許出願公開第3
5902号に記載されている。
5902号に記載されている。
抗生物質GE2270因子A□、A2、A3またはHお
よび対応する製剤学的に許容されうる塩類の抗微生物活
性の間の類似性にかんがみて、有効である場合、この出
願において抗生物質GE2270因子A、A、、A、ま
たはHの生物学的活性を取り扱うとき、また、対応する
塩類を包含し、そしてまた、抗生物質GE 2270因
子A3、A2、A、またはHの製剤学的に許容されうる
付加塩を取り扱うとき、また、対応する「非付加塩」の
形態を包含する。
よび対応する製剤学的に許容されうる塩類の抗微生物活
性の間の類似性にかんがみて、有効である場合、この出
願において抗生物質GE2270因子A、A、、A、ま
たはHの生物学的活性を取り扱うとき、また、対応する
塩類を包含し、そしてまた、抗生物質GE 2270因
子A3、A2、A、またはHの製剤学的に許容されうる
付加塩を取り扱うとき、また、対応する「非付加塩」の
形態を包含する。
さらに、抗生物質GE2270因子A、は通常の手順に
従い塩基の付加塩を形成することができる。
従い塩基の付加塩を形成することができる。
これらの塩基の代表例は、次の通りである:アルカリ金
属またはアルカリ土類金属の水酸化物、例えば、ナトリ
ウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびバ
リウムの水酸化物;アンモニアおよび脂肪族、脂環族ま
たは芳香族の有機アミン、例えば、メチルアミン、ジメ
チルアミン、トリメチルアミン、およびプロリン。また
、塩基性アミノ酸またはそれらの誘導体、例えば、アル
ギニン、リジンまたはオルニチンとの塩類は塩基性塩類
の本発明の定義に包含される。
属またはアルカリ土類金属の水酸化物、例えば、ナトリ
ウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびバ
リウムの水酸化物;アンモニアおよび脂肪族、脂環族ま
たは芳香族の有機アミン、例えば、メチルアミン、ジメ
チルアミン、トリメチルアミン、およびプロリン。また
、塩基性アミノ酸またはそれらの誘導体、例えば、アル
ギニン、リジンまたはオルニチンとの塩類は塩基性塩類
の本発明の定義に包含される。
本発明の「非塩」の化合物の対応する付加塩への転化お
よびその逆、すなわち、本発明の付加塩の非塩への転化
は、当業者の技量の範囲内であり、そして本発明に包含
される。
よびその逆、すなわち、本発明の付加塩の非塩への転化
は、当業者の技量の範囲内であり、そして本発明に包含
される。
抗生物質GE2270因子A3の塩基の付加塩は、例え
ば、非塩の形態を水性溶媒中に溶解または懸濁し、そし
てわずかにモル過剰の選択した塩基を添加することによ
って調製することができる。
ば、非塩の形態を水性溶媒中に溶解または懸濁し、そし
てわずかにモル過剰の選択した塩基を添加することによ
って調製することができる。
最終の塩は非塩の形態が可溶性である溶媒中に不溶性で
ある場合、それは、わずかにモル過剰の選択した塩基を
添加した後、非塩の形態の有機溶液から濾過により回収
される。
ある場合、それは、わずかにモル過剰の選択した塩基を
添加した後、非塩の形態の有機溶液から濾過により回収
される。
非塩の形態は、水性溶媒中に溶解した対応する塩基の塩
から、次いでそれを中和して非塩の形態を遊離して調製
することができる。
から、次いでそれを中和して非塩の形態を遊離して調製
することができる。
中和後、過剰の酸または塩基の排除が必要であるとき、
普通の脱塩手順を使用することができる。
普通の脱塩手順を使用することができる。
例えば、シラン化シリカゲル、非官能化ポリスチレン、
アクリルおよび制御した孔のポリデキストラン樹脂(S
e phadex@LH20)または活性化炭素のカラ
ムクロマトグラフィーを便利に使用することができる。
アクリルおよび制御した孔のポリデキストラン樹脂(S
e phadex@LH20)または活性化炭素のカラ
ムクロマトグラフィーを便利に使用することができる。
望ましくない塩を水溶液で溶離後、所望の生成物は水お
よび極性または非極性の有機溶媒の混合物の直線または
段階的勾配、例えば、50 : 50から約100%の
アセトニトリルまでのアセトニトリル/水により溶離す
る。
よび極性または非極性の有機溶媒の混合物の直線または
段階的勾配、例えば、50 : 50から約100%の
アセトニトリルまでのアセトニトリル/水により溶離す
る。
本発明の化合物は、抗生物質GE2270因子Aから選
択的化学的転化条件下に調製される。
択的化学的転化条件下に調製される。
さらに詳しくは、抗生物質GE2270因子A1、A2
またはA、は抗生物質GE2270因子Aにより選択的
加水分解条件下に調製されるが、還元性条件下に選択的
切り放しにより、抗生物質GE2270因子Hは抗生物
質GE2270因子Aから得られる。
またはA、は抗生物質GE2270因子Aにより選択的
加水分解条件下に調製されるが、還元性条件下に選択的
切り放しにより、抗生物質GE2270因子Hは抗生物
質GE2270因子Aから得られる。
一般に、前述の加水分解条件は緩衝化または非緩衝化水
性酸性媒質および極性有機溶媒の使用を包含する。反応
温度は、因子、例えば、使用する酸の強度および濃度に
依存して変化し、そして−般に一10℃〜90℃の範囲
内である。また、反応時間は、他のパラメーター、例え
ば、温度および酸の強度および濃度に依存して変化し、
そして一般に数分から数時間に変化することができる。
性酸性媒質および極性有機溶媒の使用を包含する。反応
温度は、因子、例えば、使用する酸の強度および濃度に
依存して変化し、そして−般に一10℃〜90℃の範囲
内である。また、反応時間は、他のパラメーター、例え
ば、温度および酸の強度および濃度に依存して変化し、
そして一般に数分から数時間に変化することができる。
一般に、よりおだやかな加水分解条件、例えば、より短
い時間およびより低い温度またはより低い強度または濃
度を使用する場合、抗生物質GE2270因子A1が通
常得られるが、より強い条件下において、抗生物質GE
2270因子A、が得られる。酸性加水分解条件下に抗
生物質GE2270因子A、得ることは、なおより劇的
な条件は必要である。
い時間およびより低い温度またはより低い強度または濃
度を使用する場合、抗生物質GE2270因子A1が通
常得られるが、より強い条件下において、抗生物質GE
2270因子A、が得られる。酸性加水分解条件下に抗
生物質GE2270因子A、得ることは、なおより劇的
な条件は必要である。
しかしながら、反応の過程は通常の手順、例えば、TL
CまたはHPLCに従い、出発物質の消失および/また
は最終生成物の出現を追跡することによって監視するこ
とができるので、この反応が完結した考えるすることが
できかつ回収手順を開始することができるときを当業者
は決定することができる。
CまたはHPLCに従い、出発物質の消失および/また
は最終生成物の出現を追跡することによって監視するこ
とができるので、この反応が完結した考えるすることが
できかつ回収手順を開始することができるときを当業者
は決定することができる。
緩衝化または非緩衝化の水性酸性媒質の例は、次の通り
である二次の鉱酸または有機酸の水性の溶液または懸濁
液:例えば、ハロゲン化水素、例えば、炭化水素、臭化
水素またはヨウ化水素;リン酸;強酸; (c+ −c
m )脂肪族、ハロゲン化(Cz Cs)脂肪族また
は芳香族の酸;(C3cm)アルキルスルホン酸または
アリールスルホン酸;酸の形態のカチオン性交換樹脂、
およびポリプロトン酸の部分的塩化の生成物、すなわち
、水中の酸性反応を有する塩、例えば、アルカリ金属水
素リン酸塩または二水素リン酸塩、アルカリ金属硫酸塩
など。アルカリ金属の例はナトリウムおよびカリウムで
ある。
である二次の鉱酸または有機酸の水性の溶液または懸濁
液:例えば、ハロゲン化水素、例えば、炭化水素、臭化
水素またはヨウ化水素;リン酸;強酸; (c+ −c
m )脂肪族、ハロゲン化(Cz Cs)脂肪族また
は芳香族の酸;(C3cm)アルキルスルホン酸または
アリールスルホン酸;酸の形態のカチオン性交換樹脂、
およびポリプロトン酸の部分的塩化の生成物、すなわち
、水中の酸性反応を有する塩、例えば、アルカリ金属水
素リン酸塩または二水素リン酸塩、アルカリ金属硫酸塩
など。アルカリ金属の例はナトリウムおよびカリウムで
ある。
前述の(c+ −CI )脂肪族酸の代表例は、ギ酸、
酢酸、プロパン酸、酪酸、イソ酪酸、バレリン酸、イソ
バレリン酸、トリメチル酢酸などである。
酢酸、プロパン酸、酪酸、イソ酪酸、バレリン酸、イソ
バレリン酸、トリメチル酢酸などである。
前述のハロゲン化(cz−cs)脂肪族または芳香族の
酸の代表例は、モノ−またはポリ−クロロ、ブロモまた
はヨウド脂肪族酸、例えば、フルオロ酢酸、クロロ酢酸
、ジフルオロ酢酸、ジクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、
トリクロロ酢酸、ペンタフルオロプロピオン酸、2,2
,3.4.4.4へキサフルオロ酪酸、ヘプタフルオロ
i[などである。
酸の代表例は、モノ−またはポリ−クロロ、ブロモまた
はヨウド脂肪族酸、例えば、フルオロ酢酸、クロロ酢酸
、ジフルオロ酢酸、ジクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、
トリクロロ酢酸、ペンタフルオロプロピオン酸、2,2
,3.4.4.4へキサフルオロ酪酸、ヘプタフルオロ
i[などである。
芳香族酸の代表例は、安息香酸およびモノ−またはポリ
−置換安息香酸、例えば、クロロ安息香酸、メチル安息
香酸、フタル酸、テレフタル酸、ベンジル酸などである
。
−置換安息香酸、例えば、クロロ安息香酸、メチル安息
香酸、フタル酸、テレフタル酸、ベンジル酸などである
。
前述のスルホン酸の代表例は、次の通りである:メタン
スルホン酸、トリフルオロメタンスルホンe、p−トル
エンスルホン酸、シクロヘキサンスルホン酸、ショウノ
ウスルホン酸、σ−またはβ−ナフタレンスルホン酸で
ある。
スルホン酸、トリフルオロメタンスルホンe、p−トル
エンスルホン酸、シクロヘキサンスルホン酸、ショウノ
ウスルホン酸、σ−またはβ−ナフタレンスルホン酸で
ある。
前述の「カチオン性交換樹脂」は、普通に知られている
、商業的に入手可能な樹脂、例えば、酸型のスルホン酸
化スチレン系およびスチレン−ジビニルベンゼン樹脂で
ある。
、商業的に入手可能な樹脂、例えば、酸型のスルホン酸
化スチレン系およびスチレン−ジビニルベンゼン樹脂で
ある。
前述の適当な有機溶媒は、次のようなものである:
a) それらは出発物質を少なくとも部分的に可溶化す
ることが、でき、 b) 生成物は、いったん得られると、分離されている
か、あるいは通常の技術に従い分離することができ、そ
して C) いずれの場合においても、それらは反応の過程を
不都合に妨害しない。
ることが、でき、 b) 生成物は、いったん得られると、分離されている
か、あるいは通常の技術に従い分離することができ、そ
して C) いずれの場合においても、それらは反応の過程を
不都合に妨害しない。
前記有機極性溶媒の例は、次の通りである:環状酸素含
有脂肪族溶媒、例えば、ジオキサン(すなわち、ジエチ
レンジオキシド)、テトラヒドロフランなど;低級アル
カノール:フェニル置換低級アルカノール;低級アルキ
ルカルボキシアミド;低級アルキルスルホキシアミド;
低級アルキルホスホルアミド;低級アルキルスルホキシ
アミドおよび低級アルキルスルホンなど、および混合物
。
有脂肪族溶媒、例えば、ジオキサン(すなわち、ジエチ
レンジオキシド)、テトラヒドロフランなど;低級アル
カノール:フェニル置換低級アルカノール;低級アルキ
ルカルボキシアミド;低級アルキルスルホキシアミド;
低級アルキルホスホルアミド;低級アルキルスルホキシ
アミドおよび低級アルキルスルホンなど、および混合物
。
上で使用した用語「低級アルキル」は、好ましくは1〜
6個の炭素原子を有するアルキルを表す。
6個の炭素原子を有するアルキルを表す。
低級アルカノールの例は、次の通りである:C3−C,
アルカノール、例えば、メタノール、エタノール、プロ
パノール、l−メチルメタノール、ブタノールおよび2
−メチルプロパノール。
アルカノール、例えば、メタノール、エタノール、プロ
パノール、l−メチルメタノール、ブタノールおよび2
−メチルプロパノール。
フェニル置換低級アルカノールの例は、次の通りでアル
:ベンジルアルコール、m−クロロベンジルアルコール
、0−フルオロアルコール、m−フルオロベンジルアル
コール、p−フルオロベンジルアルコール、m−メチル
ベンジルアルコール、m−メトキシベンジルアルコール
、0−エトキシベンジルアルコール、m−ブトキシベン
ジルアルコール、p−t−ブトキシベンジルアルコール
、p−t−ブチルベンジルアルコール、7エネチルアル
コール、0−クロロ7エネチルアルコール、m−クロロ
フェネチルアルコール、0−メトキシフェネチルアルコ
ール、m−メトキシフェネチルアルコール、0−プロピ
ルフェネチルアルコール、0−エトキシ7エネチルアル
コール、p−フルオロ7エネチルアルコール、p7’ロ
モフェネチルアルコール、0−プロパキシフェネチルア
ルコール、0−ブトキシフェネチルアルコール、1−(
p〜イソプロピルフェニル)エタノール、3−7エニル
ー1−プロパノール、2−フェニル−1−プロパノール
、4−フェニル−1−プロノールオヨび3−7エニルー
■−ブタノール。
:ベンジルアルコール、m−クロロベンジルアルコール
、0−フルオロアルコール、m−フルオロベンジルアル
コール、p−フルオロベンジルアルコール、m−メチル
ベンジルアルコール、m−メトキシベンジルアルコール
、0−エトキシベンジルアルコール、m−ブトキシベン
ジルアルコール、p−t−ブトキシベンジルアルコール
、p−t−ブチルベンジルアルコール、7エネチルアル
コール、0−クロロ7エネチルアルコール、m−クロロ
フェネチルアルコール、0−メトキシフェネチルアルコ
ール、m−メトキシフェネチルアルコール、0−プロピ
ルフェネチルアルコール、0−エトキシ7エネチルアル
コール、p−フルオロ7エネチルアルコール、p7’ロ
モフェネチルアルコール、0−プロパキシフェネチルア
ルコール、0−ブトキシフェネチルアルコール、1−(
p〜イソプロピルフェニル)エタノール、3−7エニル
ー1−プロパノール、2−フェニル−1−プロパノール
、4−フェニル−1−プロノールオヨび3−7エニルー
■−ブタノール。
低級アルキルカルボキシアミドの例は、ジメチルホルム
アミド、ジエチルホルムアミドなどである。好ましい低
級アルキルスルホキシドはジメチルスルホキシドであり
、好ましい低級アルキルスルホンはジメチルスルホンで
あり、そして好ましい低級アルキルホスホルアミドはへ
キサメチルホスホルアミドである。
アミド、ジエチルホルムアミドなどである。好ましい低
級アルキルスルホキシドはジメチルスルホキシドであり
、好ましい低級アルキルスルホンはジメチルスルホンで
あり、そして好ましい低級アルキルホスホルアミドはへ
キサメチルホスホルアミドである。
本発明の好ましい実施態様は、抗生物質GE2270因
子Aを緩衝化または非緩衝化酸性と極性有機溶媒の存在
下に一10℃〜50℃、好ましくは4℃〜25℃の温度
において接触させることからなる、抗生物質GE227
0因子A、を調製する方法である。反応時間は、他の特
定の反応のパラメーターにかなり依存し、この場合にお
いて、一般に5分〜16時間である。
子Aを緩衝化または非緩衝化酸性と極性有機溶媒の存在
下に一10℃〜50℃、好ましくは4℃〜25℃の温度
において接触させることからなる、抗生物質GE227
0因子A、を調製する方法である。反応時間は、他の特
定の反応のパラメーターにかなり依存し、この場合にお
いて、一般に5分〜16時間である。
本発明の他の本発明の好ましい実施態様は、抗生物質G
E 2270因子Aまたは因子A1を緩衝化または非緩
衝化酸性と極性有機溶媒の存在下に40℃〜90℃、好
ましくは50℃〜70℃の温度において接触させること
からなる、抗生物質GE2270因子A2を調製する方
法である。反応時間は、他の特定の反応のパラメーター
にかなり依存し、この場合において、一般に12〜24
時間である。
E 2270因子Aまたは因子A1を緩衝化または非緩
衝化酸性と極性有機溶媒の存在下に40℃〜90℃、好
ましくは50℃〜70℃の温度において接触させること
からなる、抗生物質GE2270因子A2を調製する方
法である。反応時間は、他の特定の反応のパラメーター
にかなり依存し、この場合において、一般に12〜24
時間である。
上の条件下に因子A1を因子A、に転化するの場合にお
いて、アンモニアは出発物質の分子により失われる。
いて、アンモニアは出発物質の分子により失われる。
本発明のそれ以上の本発明の好ましい実施態様は、抗生
物質GE2270因子Aを緩衝化または非緩衝化酸性と
極性有機溶媒の存在下に40℃〜90℃、好ましくは6
5°C〜80℃の温度において接触させることからなる
、抗生物質GE2270因子A、を調製する方法である
。反応時間は、他の特定の反応のパラメーターにかなり
依存し、この場合において、一般に8〜48時間である
。
物質GE2270因子Aを緩衝化または非緩衝化酸性と
極性有機溶媒の存在下に40℃〜90℃、好ましくは6
5°C〜80℃の温度において接触させることからなる
、抗生物質GE2270因子A、を調製する方法である
。反応時間は、他の特定の反応のパラメーターにかなり
依存し、この場合において、一般に8〜48時間である
。
しかしながら、この場合において、変換収率は強い反応
条件を使用するこによってさせ一般に低い(5〜15%
モルの収率)である。
条件を使用するこによってさせ一般に低い(5〜15%
モルの収率)である。
許容されうる収率および純度で抗生物質GE2270因
子A3を調製する好ましい方法は、極性加水分解条件下
に抗生物質GE2270因子A!により表される。極性
有機溶媒の例は上に報告したとおりであるが、塩基性条
件は水性塩基性溶液または懸濁液により付与することが
できる。
子A3を調製する好ましい方法は、極性加水分解条件下
に抗生物質GE2270因子A!により表される。極性
有機溶媒の例は上に報告したとおりであるが、塩基性条
件は水性塩基性溶液または懸濁液により付与することが
できる。
便利に使用できる塩基の例は、次の通りである:無機ま
たは有機の塩基、例えば、アルカリ金属またはアルカリ
土類金属の水酸化物;水中の塩基性反応を有する塩、例
えば、アルカリ金属の炭酸塩または重炭酸塩:アンモニ
アおよび脂肪族または芳香族のアミン、例えば、アルキ
ルアミン(例えば、ジメチルアミン、ジエチルアミン、
トリエチルアミン、トリメチルアミン)およびピコリン
。
たは有機の塩基、例えば、アルカリ金属またはアルカリ
土類金属の水酸化物;水中の塩基性反応を有する塩、例
えば、アルカリ金属の炭酸塩または重炭酸塩:アンモニ
アおよび脂肪族または芳香族のアミン、例えば、アルキ
ルアミン(例えば、ジメチルアミン、ジエチルアミン、
トリエチルアミン、トリメチルアミン)およびピコリン
。
アルカリ土類金属の例は、カルシウムおよびマグネシウ
ムである。
ムである。
次の特定の反応条件は、本発明の方法をさらに単に例示
する。
する。
下表においてニ
ー rR,T、Jは「室温」、すなわち、はぼ15℃〜
25℃を意味する。
25℃を意味する。
−rEtOHJは「エタノール」を意味する。
−rTFAJは「トリプルオロ酢酸」を意味する。
rAcOHJは「酢酸」を意味する。
−rDowexJ 50WX2 (H+)は、酸型のカ
チオン交換樹脂である。
チオン交換樹脂である。
−rTEAJは「トリエチルアミン」である。
因子Aから抗生物質GE 2270因子AIを調製する
、とくに好ましい反応条件は次の通りである: 因子AまたはA□から抗生物質GE 2270因子A、
を調製する、とくに好ましい反応条件は次の通りである
: 因子A、から抗生物質GE2270因子A、を調製する
、とくに好ましい反応条件は次の通りである: 因子Aから抗生物質GE2270因子Asを調製する、
とくに好ましい反応条件は次の通りである: 抗生物質GE2270因子Hは、因子物質GE2270
因千Aにより、還元性条件下に制御された切り放しによ
り調製される。
、とくに好ましい反応条件は次の通りである: 因子AまたはA□から抗生物質GE 2270因子A、
を調製する、とくに好ましい反応条件は次の通りである
: 因子A、から抗生物質GE2270因子A、を調製する
、とくに好ましい反応条件は次の通りである: 因子Aから抗生物質GE2270因子Asを調製する、
とくに好ましい反応条件は次の通りである: 抗生物質GE2270因子Hは、因子物質GE2270
因千Aにより、還元性条件下に制御された切り放しによ
り調製される。
好ましい還元性条件は、アルカリ金属ホウ水素化物、例
えば、ホウ水素化ナトリウムまたはホウ水素化カリウム
により、相溶性極性有機溶媒、例えば、上に示した1つ
中で与えられる。好ましい溶媒は、水性テトラヒドロフ
ランである、そして好ましいホウ水素化物はホウ水素化
ナトリウムである。
えば、ホウ水素化ナトリウムまたはホウ水素化カリウム
により、相溶性極性有機溶媒、例えば、上に示した1つ
中で与えられる。好ましい溶媒は、水性テトラヒドロフ
ランである、そして好ましいホウ水素化物はホウ水素化
ナトリウムである。
本発明の化合物はそれ自体既知の技術により回収され、
この技術は溶媒を使用する抽出、沈澱剤による沈澱、p
Hの変化および/または濃縮、およびクロマトグラフの
技術、例えば、分配クロマトグラフィー、逆相分配クロ
マトグラフィー、イオン交換、分子排除クロマトグラフ
ィー、調製用HPLCなどを包含する。
この技術は溶媒を使用する抽出、沈澱剤による沈澱、p
Hの変化および/または濃縮、およびクロマトグラフの
技術、例えば、分配クロマトグラフィー、逆相分配クロ
マトグラフィー、イオン交換、分子排除クロマトグラフ
ィー、調製用HPLCなどを包含する。
抗生物質GE2270因子A、の物理化学的特性:
A)添付図面の第1図に示し、そして次の吸収最大を示
す紫外線吸収スペクトル: B)添付図面の第2図に示し、そして次の吸収最大を示
す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm−’): 3700−3000 ;3000−2800 (ヌジョ
ール’);1650;1535;1505;1460(
ヌジョール):1375(ヌジョール);1310;1
240;1190;1165;1130−1000;9
80;930;840;805 ; 750.720
(、!ショール);70o:C)添付図面の第3図に示
し、そして内部標準(0,OOppm)としてTMSを
使用してDMSo−Ds(ヘキサシューテロジメチルス
ルホキシド)中で記録した500MHzにおける次の信
号の群を示す’H−NMRスペクトル;各信号の多重度
を、また、下に記録する(s=1重;d=二重;m−多
重:dd■二重の二重:brs−広い一重): 0.84、d ; 0.87、d;1.35、rn ;
1.91. m ; 2.08、m;2.16、m
; 2.46、d ; 2.58、s ; 2.70、
dd ; 3.38、s ; 3.76、m ; 3−
84、m;4.26、dd ; 4.33、m ; 4
.89、m;4.97、s ; 5.00、dd ;
5.20、dd ; 5.22、dd;5.28(2プ
ロトン)、m ; 6.01、d;7.0?、s ;
7.2、s ; 7.34、s ; 7.22−7.3
8(6プロトン)、tn ; 8.29、s ; 8.
39、d 、 8.44、m ; 8.45、d 、
8.54、s ; 8.60、s ; 8.66、d
; 9.69、d ; 8.99、doD)次の条件下
に逆相HPLCにより分析したとき、13.4分の保持
時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)00S(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Al tex)(Beckman)4.6mm
(内径)X250mm。
す紫外線吸収スペクトル: B)添付図面の第2図に示し、そして次の吸収最大を示
す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm−’): 3700−3000 ;3000−2800 (ヌジョ
ール’);1650;1535;1505;1460(
ヌジョール):1375(ヌジョール);1310;1
240;1190;1165;1130−1000;9
80;930;840;805 ; 750.720
(、!ショール);70o:C)添付図面の第3図に示
し、そして内部標準(0,OOppm)としてTMSを
使用してDMSo−Ds(ヘキサシューテロジメチルス
ルホキシド)中で記録した500MHzにおける次の信
号の群を示す’H−NMRスペクトル;各信号の多重度
を、また、下に記録する(s=1重;d=二重;m−多
重:dd■二重の二重:brs−広い一重): 0.84、d ; 0.87、d;1.35、rn ;
1.91. m ; 2.08、m;2.16、m
; 2.46、d ; 2.58、s ; 2.70、
dd ; 3.38、s ; 3.76、m ; 3−
84、m;4.26、dd ; 4.33、m ; 4
.89、m;4.97、s ; 5.00、dd ;
5.20、dd ; 5.22、dd;5.28(2プ
ロトン)、m ; 6.01、d;7.0?、s ;
7.2、s ; 7.34、s ; 7.22−7.3
8(6プロトン)、tn ; 8.29、s ; 8.
39、d 、 8.44、m ; 8.45、d 、
8.54、s ; 8.60、s ; 8.66、d
; 9.69、d ; 8.99、doD)次の条件下
に逆相HPLCにより分析したとき、13.4分の保持
時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)00S(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Al tex)(Beckman)4.6mm
(内径)X250mm。
予備力ラム:ブラウンリー・ラプス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲ
ル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリルミ1829モルのNaH,P
Oい70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaHIP
Oい l O: 90 (V/v)s pH7−0に調
節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mΩ/分、 紫外線検出器:254nm。
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲ
ル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリルミ1829モルのNaH,P
Oい70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaHIP
Oい l O: 90 (V/v)s pH7−0に調
節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mΩ/分、 紫外線検出器:254nm。
内s標準:クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)、
E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/z1308質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった=6KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロールマ
トリックス:正のイオン化モード、抗生物質GE227
0因子A2の物理化学的特性: A)添付図面の第4図に示し、そして次の吸収最大を示
す紫外線吸収スペクトル: B)添付図面の第5図に示し、そして次の吸収最大を示
す赤外吸収スペクトル(スジ3−ル法)(am−’): 3700−3000i3000−2800 (ヌジョー
ル); 1725 ; 1655 ; 1590−14
80;1460(ヌジョール);1410;1375(
ヌジョール); 1335 ; 1305 ; 126
5−1130:1090i 1050; 1015;9
80 ;945 ;840 ; 805 ;745 ;
720(ヌジョール);700; C)添付図面の第6図に示し、そして内部標準(0,O
Oppm)としてTMSを使用してDMS O−D s
(ヘキサシューテロジメチルスルホキシド)中で記録
した500MHzにおける次の信号の群を示す’H−N
MRスペクトル;各信号の多重度を、また、下に記録す
る(s=1重、d−二重;m−多重1dd−二重の二重
;br−広い一重): 0.83、d 、 0.86、d;1.30、m;1.
82、m;1.90、m;2.17、m ; 2.46
、d ; 2.57、s ; 2.70、dd ; 3
.37、s ; 3.40、m ; 3.48、m ;
3.77、dd ; 4.24、m ; 4.28、
dd i 4.52、d ; 4.53、br s ;
4.67、d ; 4.96、S;4.98、dd
、 5.19、m ; 5.21SII ; 5.28
、ta ; 6.01゜d 、 7.34、s ; 7
.22−7.35、m ; 8.26、a ; 8.2
8、S:8.42、d 、 8.45、s ; 8.5
9、s ; 8−67(2プロトン)、d;8.73、
s ; 9.00、d。
いて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/z1308質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった=6KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロールマ
トリックス:正のイオン化モード、抗生物質GE227
0因子A2の物理化学的特性: A)添付図面の第4図に示し、そして次の吸収最大を示
す紫外線吸収スペクトル: B)添付図面の第5図に示し、そして次の吸収最大を示
す赤外吸収スペクトル(スジ3−ル法)(am−’): 3700−3000i3000−2800 (ヌジョー
ル); 1725 ; 1655 ; 1590−14
80;1460(ヌジョール);1410;1375(
ヌジョール); 1335 ; 1305 ; 126
5−1130:1090i 1050; 1015;9
80 ;945 ;840 ; 805 ;745 ;
720(ヌジョール);700; C)添付図面の第6図に示し、そして内部標準(0,O
Oppm)としてTMSを使用してDMS O−D s
(ヘキサシューテロジメチルスルホキシド)中で記録
した500MHzにおける次の信号の群を示す’H−N
MRスペクトル;各信号の多重度を、また、下に記録す
る(s=1重、d−二重;m−多重1dd−二重の二重
;br−広い一重): 0.83、d 、 0.86、d;1.30、m;1.
82、m;1.90、m;2.17、m ; 2.46
、d ; 2.57、s ; 2.70、dd ; 3
.37、s ; 3.40、m ; 3.48、m ;
3.77、dd ; 4.24、m ; 4.28、
dd i 4.52、d ; 4.53、br s ;
4.67、d ; 4.96、S;4.98、dd
、 5.19、m ; 5.21SII ; 5.28
、ta ; 6.01゜d 、 7.34、s ; 7
.22−7.35、m ; 8.26、a ; 8.2
8、S:8.42、d 、 8.45、s ; 8.5
9、s ; 8−67(2プロトン)、d;8.73、
s ; 9.00、d。
D)次の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、1
7.0分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)ODS (逆相シラン化シリカゲル:5μm)アルテ
ックス(Altex)(Beckman)4.6mm
(内径)8250mm。
7.0分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)ODS (逆相シラン化シリカゲル:5μm)アルテ
ックス(Altex)(Beckman)4.6mm
(内径)8250mm。
予備カラム:ブラウンリー・ラプス(Brownlee
Labs)RP18 (オクタデシルシランシリカ
ゲル:5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのN a H
!P Oイ70 : 30 (V/ V)、pH7゜0
に調節、 溶離剤Bニアセトニトリル=18ミリモルのNaHiP
Oい l O: 90 (V/V) 、pH7,0に調
節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8m(2/分
、 紫外線検出器:254nm。
Labs)RP18 (オクタデシルシランシリカ
ゲル:5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのN a H
!P Oイ70 : 30 (V/ V)、pH7゜0
に調節、 溶離剤Bニアセトニトリル=18ミリモルのNaHiP
Oい l O: 90 (V/V) 、pH7,0に調
節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8m(2/分
、 紫外線検出器:254nm。
内部標準、クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)、
E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて曲成て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/ z l 291質量単位においてプロトン化
された分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すF
AB−MS分析ニスベクトル中の800m/2質量単位
より上のすべての他のピーク(アイソトープのピークを
計数しない)は、次の実験条件下にクラトス(Krat
os)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった:6Kvにおけ
るXe急速原子衝突:0.6mAの放電電流;グリセロ
ールマトリックス;正のイオン化モード、抗生物質GE
2270因子A、の物理化学的特性: A)添付図面の第7図に示し、そして次の吸収最大を示
す紫外線吸収スペクトル: B)添付図面の第8図に示し、そして次の吸収最大を示
す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm−’): 3700−3140 ; 3110 ; 3020−2
750(ヌジョール’);1720;1655;159
0−1520 ; 1500 ; l 460 (ヌジ
ョール);1375(ヌジョール)i1270−120
0 ; 1 1 30−1030 ; l
020 ; 980 ;930 ; 840 ;
805 : 750 ; 720 (ヌジョール);
700; C)添付図面の第9図に示し、そして内部標準(0,O
Oppm)としてTMSを使用してDMSo−D@Cへ
キサジューテロジメチルスルホキシド)中で記録した5
00MHzにおける次の信号の群を示す’H−NMRス
ペクトル;各信号の多重度を、また、下に記録する(s
=1重、d−二重;m=多重;dd−二重の二重;br
−広い一重): 9.02、IH(d) ; 8.71、IH(d) ;
8.70. IH(d) ; 8.65、IH(s)
; 8.57、IH(s) ; 8.46、LH(m
) ; 8.38、IH(d);8.28、IH(d)
; 8.25、IH(s) ; 7.38、IH(m
) ; 7.37、IH(s) ; 7.36−7.2
0.5H(a+) ; 6.05、IH(br s)
; 5.311LH(m) ; 5.27、IH(dd
) ; 5.20、IH(dd) ; 5.03、IH
(d) ; 4.99.2H(s) ; 4.32、I
H(dd) ; 3.82.1H(da) ; 3.3
8.3H(s) ; 2.74、IH(dd) ; 2
.60.3H(s); 2.49.38(d) ; 2
.17、IH(m) ; 1.35、IH(m) ;
0.88.3H(d) : 0.84.3 H(d )
。
いて曲成て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/ z l 291質量単位においてプロトン化
された分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すF
AB−MS分析ニスベクトル中の800m/2質量単位
より上のすべての他のピーク(アイソトープのピークを
計数しない)は、次の実験条件下にクラトス(Krat
os)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった:6Kvにおけ
るXe急速原子衝突:0.6mAの放電電流;グリセロ
ールマトリックス;正のイオン化モード、抗生物質GE
2270因子A、の物理化学的特性: A)添付図面の第7図に示し、そして次の吸収最大を示
す紫外線吸収スペクトル: B)添付図面の第8図に示し、そして次の吸収最大を示
す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm−’): 3700−3140 ; 3110 ; 3020−2
750(ヌジョール’);1720;1655;159
0−1520 ; 1500 ; l 460 (ヌジ
ョール);1375(ヌジョール)i1270−120
0 ; 1 1 30−1030 ; l
020 ; 980 ;930 ; 840 ;
805 : 750 ; 720 (ヌジョール);
700; C)添付図面の第9図に示し、そして内部標準(0,O
Oppm)としてTMSを使用してDMSo−D@Cへ
キサジューテロジメチルスルホキシド)中で記録した5
00MHzにおける次の信号の群を示す’H−NMRス
ペクトル;各信号の多重度を、また、下に記録する(s
=1重、d−二重;m=多重;dd−二重の二重;br
−広い一重): 9.02、IH(d) ; 8.71、IH(d) ;
8.70. IH(d) ; 8.65、IH(s)
; 8.57、IH(s) ; 8.46、LH(m
) ; 8.38、IH(d);8.28、IH(d)
; 8.25、IH(s) ; 7.38、IH(m
) ; 7.37、IH(s) ; 7.36−7.2
0.5H(a+) ; 6.05、IH(br s)
; 5.311LH(m) ; 5.27、IH(dd
) ; 5.20、IH(dd) ; 5.03、IH
(d) ; 4.99.2H(s) ; 4.32、I
H(dd) ; 3.82.1H(da) ; 3.3
8.3H(s) ; 2.74、IH(dd) ; 2
.60.3H(s); 2.49.38(d) ; 2
.17、IH(m) ; 1.35、IH(m) ;
0.88.3H(d) : 0.84.3 H(d )
。
D)次の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、7
.1分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフエアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4−6mm (
内径)X250mm、予備カラム:ブラウンリー・ラプ
ス(Brownlee Labs)RP18 (オク
タデシルシランシリカゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのNaHIP
Oい70 : 30 (V/V)、pH7,0に調節、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
oい 10 : 90 (v/v) 、pH7,0に調
節、 溶離のモード=45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.3rnD、7
分、 紫外線検出器:254nm。
.1分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフエアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4−6mm (
内径)X250mm、予備カラム:ブラウンリー・ラプ
ス(Brownlee Labs)RP18 (オク
タデシルシランシリカゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのNaHIP
Oい70 : 30 (V/V)、pH7,0に調節、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
oい 10 : 90 (v/v) 、pH7,0に調
節、 溶離のモード=45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.3rnD、7
分、 紫外線検出器:254nm。
内部標準: クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)
、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140°Cに
おいて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素51
.27%、水素4.02%、窒素14゜94%、イオウ
: F)m/zl125質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kra t o
s)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった: 6Kvにお
けるXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流:グリセ
ロールマトリックス:正のイオン化モード、G)添付図
面の第10図に示し、そして内部標準(0,OOppm
)としてTMSを使用してDMSo−D、中で記録した
125MHzにおける次の信号の群を示すロC−NMR
スペクトル:171.2; 169.9; 169
.6; 168.5; 167.8; 165.
7; 164.8 ; 162.2 ; 161.4
; 161.3; 160.5; 160.4;
153゜5; i50.4; f50.l;
149.5; 149.1; 147.0;
143.8;142.1; 141.8; 141
.4; 141.0; 139.6; 131.
8; 128.0(2炭素); 127.7 ; 1
27.6 ; 126.9; 126.8(2炭素);
123.1 ; 118.7 ; 116.4 ; 7
3.9 ; 67.4 ; 58.7 ; 5g、3;
55.5 ; 48.2 、41.2 ; 37.7
; 34.1 ; 25.9 、18.5 。
、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140°Cに
おいて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素51
.27%、水素4.02%、窒素14゜94%、イオウ
: F)m/zl125質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kra t o
s)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった: 6Kvにお
けるXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流:グリセ
ロールマトリックス:正のイオン化モード、G)添付図
面の第10図に示し、そして内部標準(0,OOppm
)としてTMSを使用してDMSo−D、中で記録した
125MHzにおける次の信号の群を示すロC−NMR
スペクトル:171.2; 169.9; 169
.6; 168.5; 167.8; 165.
7; 164.8 ; 162.2 ; 161.4
; 161.3; 160.5; 160.4;
153゜5; i50.4; f50.l;
149.5; 149.1; 147.0;
143.8;142.1; 141.8; 141
.4; 141.0; 139.6; 131.
8; 128.0(2炭素); 127.7 ; 1
27.6 ; 126.9; 126.8(2炭素);
123.1 ; 118.7 ; 116.4 ; 7
3.9 ; 67.4 ; 58.7 ; 5g、3;
55.5 ; 48.2 、41.2 ; 37.7
; 34.1 ; 25.9 、18.5 。
18.0 ; 12.0゜
H)比旋光度[a]”o−+ 182.5、CHCl3
+lO%のCH,OH。
+lO%のCH,OH。
抗生物質GE2270因子Hの物理化学的特性:A)添
付図面の第11図に示し、そして次の吸収最大を示す紫
外線吸収スペクトル: B)添付図面の第12図に示し、そして次の吸収最大を
示す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm”’)
: 3700−3000 ; 3000−2800 (ヌジ
ョール);1655;1590−1480;1460(
ヌジョール);1375(ヌジョール);1310 ;
1220 ; 1190 ; 1130−1000;
980:930:840;820−680;720(ヌ
ジョール);640゜ C)添付図面の第13図に示し、そして内部標準(0,
00ppm)としてTMSを使用してDMSODi(ヘ
キサシューテロジメチルスルホキシド)中で記録した5
00MHzにおける次の信号の群を示す’H−NMRス
ペクトル;各信号の多重度を、また、下に記録する(s
=1重;d−二重:m−多重、dd−二重の二重:br
−広い一重): 0.83、d; 0.87、d ; 1.30. ta
; 2.16、rrr ; 2.46、d;2.58
、s ; 2.70、dd ; 3.38、s ; 3
−52、m ; 3.6L rs:3.77、dd
、4.25、m ; 4.30. m ; 4.35
、m ; 4.47、m; 4.88、rn ; 4
.97、s ; 4.99、ad; 5.201 ;5
.23.5.28、m ; 6.02、d; 7.36
、s ; 7.22−7.40%m B 8.26、a
; 8.28、s ; 8.42、d 、 8.43
、+n ; 8.47、S;8゜60%s ; 8.6
7、d; 9.02、doD)次の条件下に逆相HPL
Cにより分析したとき、18.0分の保持時間(Rt)
: カラム:ウルトラス7エアー(Ultrasphare
)ODS (逆相シラン化シリカゲル;5sm)アルテ
ックス(Al tex)(Beckman)4.6mm
(内径)X250mm。
付図面の第11図に示し、そして次の吸収最大を示す紫
外線吸収スペクトル: B)添付図面の第12図に示し、そして次の吸収最大を
示す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm”’)
: 3700−3000 ; 3000−2800 (ヌジ
ョール);1655;1590−1480;1460(
ヌジョール);1375(ヌジョール);1310 ;
1220 ; 1190 ; 1130−1000;
980:930:840;820−680;720(ヌ
ジョール);640゜ C)添付図面の第13図に示し、そして内部標準(0,
00ppm)としてTMSを使用してDMSODi(ヘ
キサシューテロジメチルスルホキシド)中で記録した5
00MHzにおける次の信号の群を示す’H−NMRス
ペクトル;各信号の多重度を、また、下に記録する(s
=1重;d−二重:m−多重、dd−二重の二重:br
−広い一重): 0.83、d; 0.87、d ; 1.30. ta
; 2.16、rrr ; 2.46、d;2.58
、s ; 2.70、dd ; 3.38、s ; 3
−52、m ; 3.6L rs:3.77、dd
、4.25、m ; 4.30. m ; 4.35
、m ; 4.47、m; 4.88、rn ; 4
.97、s ; 4.99、ad; 5.201 ;5
.23.5.28、m ; 6.02、d; 7.36
、s ; 7.22−7.40%m B 8.26、a
; 8.28、s ; 8.42、d 、 8.43
、+n ; 8.47、S;8゜60%s ; 8.6
7、d; 9.02、doD)次の条件下に逆相HPL
Cにより分析したとき、18.0分の保持時間(Rt)
: カラム:ウルトラス7エアー(Ultrasphare
)ODS (逆相シラン化シリカゲル;5sm)アルテ
ックス(Al tex)(Beckman)4.6mm
(内径)X250mm。
予備力ラム:ブラウンリー・ラプス(Brownlee
Labs)RP18 (オクタデシルシランシリカ
ゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのNaHIP
oい70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル=18ミリモルのNa Hx
P Oイl O: 90 (v/ v)、pH7,0に
調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mQ/分、 紫外線検出器:254nm。
Labs)RP18 (オクタデシルシランシリカ
ゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのNaHIP
oい70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル=18ミリモルのNa Hx
P Oイl O: 90 (v/ v)、pH7,0に
調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mQ/分、 紫外線検出器:254nm。
内sst準:クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)
、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: p) m/z l 180質量単位においてプロトン化
された分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すF
AB−MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位
より上のすべての他のピーク(アイソトープのピークを
計数しない)は、次の実験条件下にクラトス(Krat
os)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった: eJKVに
おけるXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリ
セロールマトリックス:正のイオン化モード、を有する
、抗生物質GE2270因子A、、A、、A、またはH
lおよびそれらの許容されうる塩類から選択される抗生
物質。
、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: p) m/z l 180質量単位においてプロトン化
された分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すF
AB−MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位
より上のすべての他のピーク(アイソトープのピークを
計数しない)は、次の実験条件下にクラトス(Krat
os)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった: eJKVに
おけるXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリ
セロールマトリックス:正のイオン化モード、を有する
、抗生物質GE2270因子A、、A、、A、またはH
lおよびそれらの許容されうる塩類から選択される抗生
物質。
本発明の抗微生物活性は、1系列の標準の生体外試験に
より実証することができる。
より実証することができる。
クロストリジウム・ジフィサイル(CI o s tr
idium ’difficile)、座唐プロピオ
ンバクテリウム(Propionibacterium
acnes)、およびバクテロイデス・フラギリス
(Bacteroides fragilis)につ
いての最小阻止濃度(MIC)を、寒天希釈法(接種1
0’/10’CFU/スポツト)により決定する。他の
有機体についてのMICは、ミクロブロス希釈(接種l
O4〜io’cFU/mQ)により決定する。インキュ
ベーション時間は、淋菌(Neisseria go
norrhaeae)、カタル球菌(Branhame
lla catrrhalis)インフルエンザ菌(
Haemophilus 1nfluenzas)、
クロストリジウム・ジフィサイル(C。
idium ’difficile)、座唐プロピオ
ンバクテリウム(Propionibacterium
acnes)、およびバクテロイデス・フラギリス
(Bacteroides fragilis)につ
いての最小阻止濃度(MIC)を、寒天希釈法(接種1
0’/10’CFU/スポツト)により決定する。他の
有機体についてのMICは、ミクロブロス希釈(接種l
O4〜io’cFU/mQ)により決定する。インキュ
ベーション時間は、淋菌(Neisseria go
norrhaeae)、カタル球菌(Branhame
lla catrrhalis)インフルエンザ菌(
Haemophilus 1nfluenzas)、
クロストリジウム・ジフィサイル(C。
difficile)、座癒グロビオンバクテリウム(
P、acnes)、バクテロイデス・フラギリス(Ba
cteroides fragilis)(48時間
)を除外して、18〜24時間である。すべての有機体
は37℃においてインキュベーションする。淋11(N
、gonorrhaeae)およびインフルエンf菌(
H,inf Iuenzae)を5%のCO,雰囲気中
で、嫌気性菌は嫌気的気体混合物中でインキュベーショ
ンする。使用する培地は、次の通りである:アイソーセ
ンシテスト(Iso−3ensjLest)のブロス(
Oxoid)[連鎖球菌(StreptOCOCCi)
・、糞便連鎖球菌(Strept。
P、acnes)、バクテロイデス・フラギリス(Ba
cteroides fragilis)(48時間
)を除外して、18〜24時間である。すべての有機体
は37℃においてインキュベーションする。淋11(N
、gonorrhaeae)およびインフルエンf菌(
H,inf Iuenzae)を5%のCO,雰囲気中
で、嫌気性菌は嫌気的気体混合物中でインキュベーショ
ンする。使用する培地は、次の通りである:アイソーセ
ンシテスト(Iso−3ensjLest)のブロス(
Oxoid)[連鎖球菌(StreptOCOCCi)
・、糞便連鎖球菌(Strept。
coccus faecalis)、大腸菌(Esc
herichta coli)、プロプウス・プルパ
リス(Proteus vulgris);トッド−
へウィツト(Todd−Hewi t t)ブロス(D
irco)(他の連鎖球菌):ムエラー・ヒントン(M
ueller H4nton)ブロス(BBL)[カ
タル球菌(Branhamella catrrha
lis)] ;GC塩基ブロス(Dirco)+1%
アイソバイタレックス(IsoVitalex)(BB
L)(淋菌(N。
herichta coli)、プロプウス・プルパ
リス(Proteus vulgris);トッド−
へウィツト(Todd−Hewi t t)ブロス(D
irco)(他の連鎖球菌):ムエラー・ヒントン(M
ueller H4nton)ブロス(BBL)[カ
タル球菌(Branhamella catrrha
lis)] ;GC塩基ブロス(Dirco)+1%
アイソバイタレックス(IsoVitalex)(BB
L)(淋菌(N。
gonorrhaeae)] ;脳心臓浸出ブロス(
Difair)+1%のサブルメントC(Dirco)
[インフルエンザ菌(H,1nfluenzae)]
;AC培地(Dirco)[ウルチ菌(C,perf
ringens);ウィルキンスーチャルグレン(Wi
lkjns−Chalgren)寒天(Dirco)(
他の嫌気性菌)(T。
Difair)+1%のサブルメントC(Dirco)
[インフルエンザ菌(H,1nfluenzae)]
;AC培地(Dirco)[ウルチ菌(C,perf
ringens);ウィルキンスーチャルグレン(Wi
lkjns−Chalgren)寒天(Dirco)(
他の嫌気性菌)(T。
D、Wilkjns8よびS、Cha IgransA
ntimicrob、Ag、Chemother、10
,926.1976)、タラムジアートラコマチス(C
hlamydia trach。
ntimicrob、Ag、Chemother、10
,926.1976)、タラムジアートラコマチス(C
hlamydia trach。
ma L j s)を、マイクロタイタープレート中で
シクロヘキシミド処理したマツコイ(McCoy)細胞
単層上で、10%の胎児仔ウシ血清を有するイーグルの
MEM培地(Giboco)中で5%のCO3雰囲気に
おいて培養した。接種物は、300x顕微鏡視野当たり
30〜60の細胞含有物(inc Ius 1on)を
与えるように調製した。
シクロヘキシミド処理したマツコイ(McCoy)細胞
単層上で、10%の胎児仔ウシ血清を有するイーグルの
MEM培地(Giboco)中で5%のCO3雰囲気に
おいて培養した。接種物は、300x顕微鏡視野当たり
30〜60の細胞含有物(inc Ius 1on)を
与えるように調製した。
48時間後、クラミジアの細胞含有物を主要な外部の膜
タンパク質に対する蛍光標識したモノクローナル抗体(
S y v a)で着色し、そして蛍光顕微鏡で計数し
た。MICは細胞含有物がもはや見られず、そして細胞
の形態が正常である濃度として取った。
タンパク質に対する蛍光標識したモノクローナル抗体(
S y v a)で着色し、そして蛍光顕微鏡で計数し
た。MICは細胞含有物がもはや見られず、そして細胞
の形態が正常である濃度として取った。
いくつかの微生物についての最小阻止濃度(MIC1p
g/mQ’)を下表1に反復する。
g/mQ’)を下表1に反復する。
表1
菫迷
表 工 (続き)
苗株
5taph、 aureus Tour L165St
aph、 aureus Tour Li2S + 3
0%ウシ血清5iaph、 epidern+1dis
L147 ATCC12228猷男也1M竺虹壮並凹
L602臨床的分離物5trep、 pyogenes
C203Strap、 pneumonias
1Ic41Strep、 faecalis AT
CC7080塾り止、岨工纒 L796 Clostridium perfringens I
SS 30543Propionibacterium
acnes ATCC69190,06 0,5 0,06 ≦0.13 〉128 〉128 0.06 6 0.06 0.03 熟」車、 aureus Tour L165Stap
h、 aureus Tour Li2S + 30%
ウシ血清5trep、 pyogenes C203
Strap、 pneumoniae UC41St
rap、 faecalis ATCC7080St
rap、 m1tis L796Clostridi
um perfringens Iss 30543P
ro ionibacterium acnes AT
CC6919〉■28 〉128 0.5 0.06 0.06 敗竺鮭竺艶urealyticua+ L 1479〉
128 表I(#!き) 璽迭 表 1 (j!き) 亜迭 5taph、 aureus Tour L165St
aph、 aureus Tour Li2S + 3
0%ウシ血清5taph、 eptdermidis
L147 ATCC12228Staph、 haem
olyticus L602臨床的分離物毀=、狸弧弘
竺 C203 Strep、 pneumonias UC41St
rep、 raecalis ATCC7080C1
ostridiuIIlperfringens IS
S 30543Pro 1onibacLeriull
acnes ATCC6919Bacteroidar
fragilis ATCC23745Neisse
ria gonorrhoeae 15M68/126
Haemophilus 1nfluenzas ty
pe b ATCC19418Ureaplasma
urealyticum L 1479因子A。
aph、 aureus Tour Li2S + 3
0%ウシ血清5iaph、 epidern+1dis
L147 ATCC12228猷男也1M竺虹壮並凹
L602臨床的分離物5trep、 pyogenes
C203Strap、 pneumonias
1Ic41Strep、 faecalis AT
CC7080塾り止、岨工纒 L796 Clostridium perfringens I
SS 30543Propionibacterium
acnes ATCC69190,06 0,5 0,06 ≦0.13 〉128 〉128 0.06 6 0.06 0.03 熟」車、 aureus Tour L165Stap
h、 aureus Tour Li2S + 30%
ウシ血清5trep、 pyogenes C203
Strap、 pneumoniae UC41St
rap、 faecalis ATCC7080St
rap、 m1tis L796Clostridi
um perfringens Iss 30543P
ro ionibacterium acnes AT
CC6919〉■28 〉128 0.5 0.06 0.06 敗竺鮭竺艶urealyticua+ L 1479〉
128 表I(#!き) 璽迭 表 1 (j!き) 亜迭 5taph、 aureus Tour L165St
aph、 aureus Tour Li2S + 3
0%ウシ血清5taph、 eptdermidis
L147 ATCC12228Staph、 haem
olyticus L602臨床的分離物毀=、狸弧弘
竺 C203 Strep、 pneumonias UC41St
rep、 raecalis ATCC7080C1
ostridiuIIlperfringens IS
S 30543Pro 1onibacLeriull
acnes ATCC6919Bacteroidar
fragilis ATCC23745Neisse
ria gonorrhoeae 15M68/126
Haemophilus 1nfluenzas ty
pe b ATCC19418Ureaplasma
urealyticum L 1479因子A。
St、aph、 aureus Tour L165S
taph、 aureus Tour Li2S +
30%ウシ血清加蝕、 epidermidis L1
47 ATCC12228Staph、 haemol
yticus L602臨床的分離物5trep、 p
yogenes C203Strap、 pneum
onias UC41SLrep、 faecali
s ATCC7080ジニ□、船土櫨 Li9S Ctostridiun perfringens I
SS 30543Propionibacterium
acnes ATCC6919Ureaplasma
7 L 1479因子H C906 0,25 0,25 0,5 0,06 0,5 0,03 0,25 2 K 1ebs ie l I a 匹剋殻吐鰭L 14
2〉128 表の化合物の抗微生物活性は、また、マウスにおいて実
験の敗血症において確証される。
taph、 aureus Tour Li2S +
30%ウシ血清加蝕、 epidermidis L1
47 ATCC12228Staph、 haemol
yticus L602臨床的分離物5trep、 p
yogenes C203Strap、 pneum
onias UC41SLrep、 faecali
s ATCC7080ジニ□、船土櫨 Li9S Ctostridiun perfringens I
SS 30543Propionibacterium
acnes ATCC6919Ureaplasma
7 L 1479因子H C906 0,25 0,25 0,5 0,06 0,5 0,03 0,25 2 K 1ebs ie l I a 匹剋殻吐鰭L 14
2〉128 表の化合物の抗微生物活性は、また、マウスにおいて実
験の敗血症において確証される。
両者の性の5匹のマウスの群(CharlesRive
r、平均体1t18〜22g)を、黄色ブドウ球菌(S
taphylococcus aureus)ATC
C19636で腹腔内で感染した。バクテリアの対抗(
106細胞/マウス)を0.5m+2の5%の細菌学ム
チン(Dirco)中に懸濁させて与えた。5%のジメ
チルホルムアミドおよび10%のクレモホール(Chr
em。
r、平均体1t18〜22g)を、黄色ブドウ球菌(S
taphylococcus aureus)ATC
C19636で腹腔内で感染した。バクテリアの対抗(
106細胞/マウス)を0.5m+2の5%の細菌学ム
チン(Dirco)中に懸濁させて与えた。5%のジメ
チルホルムアミドおよび10%のクレモホール(Chr
em。
phor)@EL (ポリエトキシル化ヒマシ油)を含
有する無菌の水溶液中で感染直後、試験化合物を1回静
脈内・に投与した。
有する無菌の水溶液中で感染直後、試験化合物を1回静
脈内・に投与した。
各投与量において生存する動物のパーセントからスーア
ーマン(S p e a rmam)およびケルベル(
kaerber)法により、ED、、を第7日に計算し
た;その値は抗生物質GE2270因子A、について1
5.4mg/kgであり、そして抗生物質GE2270
因子A、につぃて3.2であった。 同様な実験におい
て、8匹のマウスの詳を使用し、そして単一のレベルの
試験化合物(20mg/kg)を投与すると、第7日に
おいて生存動物/処置動物の比は、抗生物質GE227
0因子A、の場合において1/8であり、そして抗生物
質GE2270因子Hの場合において678であった。
ーマン(S p e a rmam)およびケルベル(
kaerber)法により、ED、、を第7日に計算し
た;その値は抗生物質GE2270因子A、について1
5.4mg/kgであり、そして抗生物質GE2270
因子A、につぃて3.2であった。 同様な実験におい
て、8匹のマウスの詳を使用し、そして単一のレベルの
試験化合物(20mg/kg)を投与すると、第7日に
おいて生存動物/処置動物の比は、抗生物質GE227
0因子A、の場合において1/8であり、そして抗生物
質GE2270因子Hの場合において678であった。
試験化合物は、5机の水性グルコース中の10%のミル
ク状懸濁液として静脈内に与えた。
ク状懸濁液として静脈内に与えた。
本発明の化合物は、それらの性質にかんがみて、ヒトま
たは動物の処置のための薬物の調製において活性成分と
して有用である。
たは動物の処置のための薬物の調製において活性成分と
して有用である。
とくに、抗生物質GE2270因子A3、A2、A、お
よびHは、グラム陽性バクテリアおよびダラム陽性なら
びにダラム陰性の嫌気性菌に対して主として活性な抗微
生物剤である。
よびHは、グラム陽性バクテリアおよびダラム陽性なら
びにダラム陰性の嫌気性菌に対して主として活性な抗微
生物剤である。
こうして、本発明の抗生物質の主に治療学的適用は、そ
れらに対して感受性である微生物の存在に関する処置に
おいてである。
れらに対して感受性である微生物の存在に関する処置に
おいてである。
用語「処置」は、また、予防、治療および治癒を包含す
ることを意図する。
ることを意図する。
この処置を受ける患者は、動物であり、霊長類を包含し
、とくにヒト、および他の哺乳動物、例えば、サル、ウ
シ、ブタおよびヒツジ、および−般に家禽およびペット
である。
、とくにヒト、および他の哺乳動物、例えば、サル、ウ
シ、ブタおよびヒツジ、および−般に家禽およびペット
である。
本発明の化合物は、そのままであるいは製薬学的に許容
されうる担体と混合して投与することができそして、ま
た、他の抗微生物剤と組み合わせて投与することができ
る。結合した治療(conjunctive the
rapy)は、こうして、最初の投与したものの治療学
的効果が、引き続く投与のときに、完全に消失しないよ
うな方法で、活性化合物の順次の、同時のおよび別の投
与を包含する。
されうる担体と混合して投与することができそして、ま
た、他の抗微生物剤と組み合わせて投与することができ
る。結合した治療(conjunctive the
rapy)は、こうして、最初の投与したものの治療学
的効果が、引き続く投与のときに、完全に消失しないよ
うな方法で、活性化合物の順次の、同時のおよび別の投
与を包含する。
好ましい製剤学的配合物は、完全なまたは損傷した皮膚
または粘膜への局所的適用に適する配合物により代表さ
れる。このような配合物の例は粉末、軟膏、クリームお
よびローシaンである。これらの配合物中で賦形剤は、
次の通りである二通常の製剤学的に許容されうる賦形剤
、例えば、油性の軟膏基剤(例えば、セチルエステルワ
ックス、オレイン酸、オリーブ油、パラフィン、鯨ろう
、澱粉グセライト);吸収性軟膏基剤(例えば、無水ラ
ノリン、親水性ペトロラタム)、乳濁液の軟膏基剤(例
えば、セチルアルコール、グリセリルモノステアレート
、ラノリン1、ステアリン酸)、水溶性軟膏基剤(例え
ば、グリコールエーテルおよびそれらの誘導体、ポリエ
チレングリコール、ポリ(オキシ−1,2−エタンエシ
ル)−アルファーヒドローオメガーヒドロキシーオクタ
デカノエート、ポリソルベート、およびポリエチレング
リコールモノ−ステアレート)。
または粘膜への局所的適用に適する配合物により代表さ
れる。このような配合物の例は粉末、軟膏、クリームお
よびローシaンである。これらの配合物中で賦形剤は、
次の通りである二通常の製剤学的に許容されうる賦形剤
、例えば、油性の軟膏基剤(例えば、セチルエステルワ
ックス、オレイン酸、オリーブ油、パラフィン、鯨ろう
、澱粉グセライト);吸収性軟膏基剤(例えば、無水ラ
ノリン、親水性ペトロラタム)、乳濁液の軟膏基剤(例
えば、セチルアルコール、グリセリルモノステアレート
、ラノリン1、ステアリン酸)、水溶性軟膏基剤(例え
ば、グリコールエーテルおよびそれらの誘導体、ポリエ
チレングリコール、ポリ(オキシ−1,2−エタンエシ
ル)−アルファーヒドローオメガーヒドロキシーオクタ
デカノエート、ポリソルベート、およびポリエチレング
リコールモノ−ステアレート)。
これらの配合物は、他の既知の賦形剤、例えば、防腐剤
であることができ、そしてこの分野において知られてい
るようにして調製され、そして参考文献、例えば、次の
参考文献に記載されている:レミントンの製剤科学(R
emington’ sPharmaceutica
l 5ciences)、第17版、1985午、M
arkPublishing Co−。
であることができ、そしてこの分野において知られてい
るようにして調製され、そして参考文献、例えば、次の
参考文献に記載されている:レミントンの製剤科学(R
emington’ sPharmaceutica
l 5ciences)、第17版、1985午、M
arkPublishing Co−。
本発明の化合物は、また、それ自体既知の方法において
非経口的投与に適当な配合物に配合することができる。
非経口的投与に適当な配合物に配合することができる。
例えば、本発明の化合物はポリプロピレングリコールま
たはジメチルアセトアミドおよび表面活性剤またはポリ
トキシル化ヒマシ油である。
たはジメチルアセトアミドおよび表面活性剤またはポリ
トキシル化ヒマシ油である。
非経口的投与のための好ましい配合物は、次の賦形剤を
含む:クレモフオール(Cremopho r) @E
L (ポリオキシル35ヒマシ油USP/NFン20%
、ポリプロピレングリコール5〜lO%。
含む:クレモフオール(Cremopho r) @E
L (ポリオキシル35ヒマシ油USP/NFン20%
、ポリプロピレングリコール5〜lO%。
好ましくは、この配合物は、本発明の抗生物質に対する
感受性の微生物を包含する感染の処置において静脈内に
投与に使用される。
感受性の微生物を包含する感染の処置において静脈内に
投与に使用される。
偽膜性全腸炎または胃腸内の嫌気性菌の存在に起因する
他の病気の処置において、本発明の化合物の有効投与量
は製剤学的形態、例えば、カプセル剤または水性懸濁液
で経口的に投与することができる。
他の病気の処置において、本発明の化合物の有効投与量
は製剤学的形態、例えば、カプセル剤または水性懸濁液
で経口的に投与することができる。
活性成分は投与量は、患者のタイプ、年令および状態、
投与のために選択した特定の成分および配合物、投与の
スケジュールなどを包含する多数の因子に依存する。
投与のために選択した特定の成分および配合物、投与の
スケジュールなどを包含する多数の因子に依存する。
一般に、有効抗微生物投与量は単一の単位投与形態につ
き使用する。これらの投与形態の反復した適用、例えば
、2〜6回7日は、一般に好ましい。有効投与量は、一
般に、0.5〜50mg/kg/体重/日である。
き使用する。これらの投与形態の反復した適用、例えば
、2〜6回7日は、一般に好ましい。有効投与量は、一
般に、0.5〜50mg/kg/体重/日である。
好ましい局所用調製物は、1〜lO%の本発明の化合物
を含有する軟膏である。
を含有する軟膏である。
いずれにしても、処方の医師は所定の場合における所定
の患者について最適な投与量を決定できるであろう。
の患者について最適な投与量を決定できるであろう。
ヒトおよび獣の治療における薬物としての使用の外に、
本発明の化合物は、また、動物の増殖促進剤として使用
できる。
本発明の化合物は、また、動物の増殖促進剤として使用
できる。
この目的に対して、本発明の化合物は適当な飼料に含有
させて経口的に投与することができる。
させて経口的に投与することができる。
使用する正確な濃度は、正常の飼料が消費されていると
き、増殖促進有効量で活性剤を提供するために要する濃
度である。
き、増殖促進有効量で活性剤を提供するために要する濃
度である。
動物飼料への本発明の化合物の添加は、好ましくは、有
効量で活性化合物を含有する適当な飼料予備混合物を調
製し、そしてこの予備混合物を完全規定食中に混入する
ことによって調製される。
効量で活性化合物を含有する適当な飼料予備混合物を調
製し、そしてこの予備混合物を完全規定食中に混入する
ことによって調製される。
あるいは、活性成分を含有する中間の濃厚物または飼料
補充物を飼料中に配合することができる。
補充物を飼料中に配合することができる。
このような飼料予備混合物および完全規定食を調製しそ
して投与する方法は、参考文献に記載されている[例え
ば、「アプライド・アニマル・ニュートリジョン(Ap
plied AnimalNutrition)J、
W+H,Freedman and CO,、米国
サンフランシスコ、1969午または「家畜の飼料およ
び飼料供給(Livestock feeds a
nd Feeding)J、Oand Books
1米国オレゴン州コルパリス]。
して投与する方法は、参考文献に記載されている[例え
ば、「アプライド・アニマル・ニュートリジョン(Ap
plied AnimalNutrition)J、
W+H,Freedman and CO,、米国
サンフランシスコ、1969午または「家畜の飼料およ
び飼料供給(Livestock feeds a
nd Feeding)J、Oand Books
1米国オレゴン州コルパリス]。
次の実施例によって、本発明をさらに説明する。
れらの実施例は本発明の範囲を限定しない。
実施例1
抗生物質GE2270因子A1の調製
1.1 1モルの塩酸(3,3rr+12)を15m1
2の95%のエタノール中の150mgの抗生物質GE
2270因子Aの溶因子−加する。この混合物を室温に
5分間保持し、0.1モルのリン酸ナトリウムの緩衝液
pH’7.5で希釈し、次いで水酸化ナトリウムでpH
7,5に調節する。水性相に減圧下に濃縮した後、この
混合物を酢酸エチルで2回抽出した。次いで、有機相(
主として抗生物質GE2270因子A1を含有する)を
濃縮して固体残留物が得られ、これを5mffのテトラ
ヒドロ7ラン中に可溶化し、次いで水で溶解限界まで希
釈する。この溶液を、lOの引き統<HPLCの実験に
おいて、スタクロマ(Stacromae)を充填した
ヌクレオシル(Nucleosi1@)C18(5μm
)の逆相シリカゲルのカラム(250X20mm)を使
用し、相B中の相Aの64%〜93%の直線の勾配によ
り20分で約15mQ/分の流速において溶離すること
によって精製する。この系において、相Aは18ミリモ
ルのリン酸ナトリウムpH7,28よびアセトニトリル
の90710 (v/v)混合物であり、モして相Bは
18ミリモルのリン酸ナトリウムpH7,28よびアセ
トニトリルの40:60(v/V)混合物である。分画
を集め、そして紫外線で330nmにおいて監視する。
2の95%のエタノール中の150mgの抗生物質GE
2270因子Aの溶因子−加する。この混合物を室温に
5分間保持し、0.1モルのリン酸ナトリウムの緩衝液
pH’7.5で希釈し、次いで水酸化ナトリウムでpH
7,5に調節する。水性相に減圧下に濃縮した後、この
混合物を酢酸エチルで2回抽出した。次いで、有機相(
主として抗生物質GE2270因子A1を含有する)を
濃縮して固体残留物が得られ、これを5mffのテトラ
ヒドロ7ラン中に可溶化し、次いで水で溶解限界まで希
釈する。この溶液を、lOの引き統<HPLCの実験に
おいて、スタクロマ(Stacromae)を充填した
ヌクレオシル(Nucleosi1@)C18(5μm
)の逆相シリカゲルのカラム(250X20mm)を使
用し、相B中の相Aの64%〜93%の直線の勾配によ
り20分で約15mQ/分の流速において溶離すること
によって精製する。この系において、相Aは18ミリモ
ルのリン酸ナトリウムpH7,28よびアセトニトリル
の90710 (v/v)混合物であり、モして相Bは
18ミリモルのリン酸ナトリウムpH7,28よびアセ
トニトリルの40:60(v/V)混合物である。分画
を集め、そして紫外線で330nmにおいて監視する。
紫外線プロットのピークに相当する、実質的な抗生物質
GE2270因子A1を含有する分画をプールし、そし
て減圧下に濃縮して水性相が得られ、これを酢酸エチル
で2回抽出する。次いで、有機相を蒸留水で洗浄して残
留する無機塩を除去し、濃縮して固体が得られ、これを
テトラヒドロフラン中に溶解し、そして石油エーテルで
再沈澱させ、こうして抗生物質GE2270因子A r
因子−64m g )が得られる。
GE2270因子A1を含有する分画をプールし、そし
て減圧下に濃縮して水性相が得られ、これを酢酸エチル
で2回抽出する。次いで、有機相を蒸留水で洗浄して残
留する無機塩を除去し、濃縮して固体が得られ、これを
テトラヒドロフラン中に溶解し、そして石油エーテルで
再沈澱させ、こうして抗生物質GE2270因子A r
因子−64m g )が得られる。
1.2 抗生物質GE2270因子A1は、抗生物質
GE2270因子Aをジ因子−ンジオキシド、水および
トリフルオロ酢酸の5/4/l(v/V)混合物中で室
温において15分間インキュベーションするとき、抗生
物質GE2270因子Aの主因子一応生成物である。
GE2270因子Aをジ因子−ンジオキシド、水および
トリフルオロ酢酸の5/4/l(v/V)混合物中で室
温において15分間インキュベーションするとき、抗生
物質GE2270因子Aの主因子一応生成物である。
抗生物質GE2270因子AIは、また、抗生物質GE
2270因子Aをジ因子−ンジオキシドおよび水の1/
1 (V/V)中の0.5N硫酸または0.25モルの
リン酸中で室温においてインキュベーションするとき、
得られる。冷水で希釈しそして中和しl;後、この混合
物を酢酸エチルで抽出し、有機相を濃縮し、そして固体
を石油エーテルの添加により沈澱させる。
2270因子Aをジ因子−ンジオキシドおよび水の1/
1 (V/V)中の0.5N硫酸または0.25モルの
リン酸中で室温においてインキュベーションするとき、
得られる。冷水で希釈しそして中和しl;後、この混合
物を酢酸エチルで抽出し、有機相を濃縮し、そして固体
を石油エーテルの添加により沈澱させる。
純粋な抗生物質GE2270因子A、は、実施例1.1
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
1.3 抗生物質GE2270因子A1は、抗生物質
GE2270因子Aをジ因子−ンジオキシド/水のl
: 1 (V/V)混合物中の0.5モルの塩化アンモ
ニウム中で50°Cにおいて一夜インキユベーションす
るときの、抗生物質GE2270因子Aの主因子一応生
成物である。冷水で希釈しそして中和した後、この混合
物を酢酸エチルで抽出し、有機相を濃縮し、そして石油
エーテルにより固体を沈澱させる。
GE2270因子Aをジ因子−ンジオキシド/水のl
: 1 (V/V)混合物中の0.5モルの塩化アンモ
ニウム中で50°Cにおいて一夜インキユベーションす
るときの、抗生物質GE2270因子Aの主因子一応生
成物である。冷水で希釈しそして中和した後、この混合
物を酢酸エチルで抽出し、有機相を濃縮し、そして石油
エーテルにより固体を沈澱させる。
純粋な抗生物質GE2270因子A1は、実施例1.i
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
実施例2
抗生物質GE2270因子A2の調製
2、 1 抗生物質GE2270因子A(8因子−)
を17m(2の95%のエタノールおよびl。
を17m(2の95%のエタノールおよびl。
7rrlの酢酸中に溶解する。60°C℃において24
時間後、生ずる溶液をO,1モルのリン酸ナトリウム緩
衝液pH7,5(100mff)で希釈し、そして1モ
ルの水酸化ナトリウムでpH7,5に調節する。エタノ
ールを減圧下に蒸発させて除去し、そして水性・残留物
を酢酸エチル(loomα)で2回抽出する。有機相を
減圧下に蒸発させて、テトラヒドロ7ランで可溶化し、
次いで石油エーテルの添加により沈澱させる。抗生物質
GE2270因子A !因子−62rn g )は、少
量の抗生物質GE227’0因子AおよびA、とともに
得られる。
時間後、生ずる溶液をO,1モルのリン酸ナトリウム緩
衝液pH7,5(100mff)で希釈し、そして1モ
ルの水酸化ナトリウムでpH7,5に調節する。エタノ
ールを減圧下に蒸発させて除去し、そして水性・残留物
を酢酸エチル(loomα)で2回抽出する。有機相を
減圧下に蒸発させて、テトラヒドロ7ランで可溶化し、
次いで石油エーテルの添加により沈澱させる。抗生物質
GE2270因子A !因子−62rn g )は、少
量の抗生物質GE227’0因子AおよびA、とともに
得られる。
純粋な抗生物質GE2270因子A、は、次のようにし
て調製用HPLCにより得られる:10mgの上の反応
生成物をテトラヒドロフラン中に可溶化し、水で溶解限
界に希釈し、次いでスタクロマ(Stacroma■)
を充填したヌクレオシル(Nucleosil■)C1
8(5μm)の逆相シリカゲルのカラム(250X20
mm)に注入し、相A中の相Bの64%〜93%の直線
の勾配により20分で約15mQ/分の流速において溶
離する。この系において、相Aは18ミリモルのリン酸
ナトリウムpH7,28よびアセトニトリルの90 :
l O(v/v)混合物であり、モして相Bは18ミ
リモルのリン酸ナトリウムpH7,2およびアセトニト
リルの40二60 (V/V)混合物である。5回の連
続的実験の分画を集め、そして紫外線で330nmにお
いて監視する。紫外線溶離フロフィルのピークに相当す
る、実質的な抗生物質GE2270因子A、を含有する
分画をプールし、そして減圧下に濃縮して水性相が得ら
れ、これを酢酸エチルで2回抽出する。次いで、有機相
を蒸留水で洗浄して残留する無機塩を除去し、濃縮して
固体を沈澱させ、これをテトラヒドロフラン中に溶解し
、そして石油エーテルで再沈澱させ、こうして抗生物質
GE2270因子A !因子−45m g )が得られ
る。
て調製用HPLCにより得られる:10mgの上の反応
生成物をテトラヒドロフラン中に可溶化し、水で溶解限
界に希釈し、次いでスタクロマ(Stacroma■)
を充填したヌクレオシル(Nucleosil■)C1
8(5μm)の逆相シリカゲルのカラム(250X20
mm)に注入し、相A中の相Bの64%〜93%の直線
の勾配により20分で約15mQ/分の流速において溶
離する。この系において、相Aは18ミリモルのリン酸
ナトリウムpH7,28よびアセトニトリルの90 :
l O(v/v)混合物であり、モして相Bは18ミ
リモルのリン酸ナトリウムpH7,2およびアセトニト
リルの40二60 (V/V)混合物である。5回の連
続的実験の分画を集め、そして紫外線で330nmにお
いて監視する。紫外線溶離フロフィルのピークに相当す
る、実質的な抗生物質GE2270因子A、を含有する
分画をプールし、そして減圧下に濃縮して水性相が得ら
れ、これを酢酸エチルで2回抽出する。次いで、有機相
を蒸留水で洗浄して残留する無機塩を除去し、濃縮して
固体を沈澱させ、これをテトラヒドロフラン中に溶解し
、そして石油エーテルで再沈澱させ、こうして抗生物質
GE2270因子A !因子−45m g )が得られ
る。
2.2 抗生物質GE2270因子A、は、抗生物質G
E2270因子Aを酢因子−び水の1/1(v/v)混
合物中で80℃においてインキュベーションするとき、
抗生物質GE2270因子Aの主因子反応生成物である
。水で希釈しそして中性した後、抗生物質GE2270
因子A、を酢酸エチルで抽出し、減圧下に濃縮し、そし
て石油エーテルの添加により沈澱させる。
E2270因子Aを酢因子−び水の1/1(v/v)混
合物中で80℃においてインキュベーションするとき、
抗生物質GE2270因子Aの主因子反応生成物である
。水で希釈しそして中性した後、抗生物質GE2270
因子A、を酢酸エチルで抽出し、減圧下に濃縮し、そし
て石油エーテルの添加により沈澱させる。
純粋な抗生物質GE2270因子A、は、実施例2.1
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
2.3 抗生物質GE2270因子A2は、抗生物質G
E2270因子Aをジ因子−ンジオキシド、水およびト
リフルオロ酢酸の5/4/1(v/V)混合物中で50
℃において一役インキユベーションするときの、抗生物
質GE2270因子Aの主因子反応生成物である。ある
いは、この反応は無機酸、例えば、ジエチレンジオキシ
ドおよび水の1/l (V/V)混合物中の005N強
酸または0.25モルのリン酸の存在下に実施すること
ができる。水で希釈しそして中性した後、抗生物質GE
2270因子A2を酢酸エチルで抽出し、減圧下に濃縮
し、そして石油エーテルの添加により沈澱させる。
E2270因子Aをジ因子−ンジオキシド、水およびト
リフルオロ酢酸の5/4/1(v/V)混合物中で50
℃において一役インキユベーションするときの、抗生物
質GE2270因子Aの主因子反応生成物である。ある
いは、この反応は無機酸、例えば、ジエチレンジオキシ
ドおよび水の1/l (V/V)混合物中の005N強
酸または0.25モルのリン酸の存在下に実施すること
ができる。水で希釈しそして中性した後、抗生物質GE
2270因子A2を酢酸エチルで抽出し、減圧下に濃縮
し、そして石油エーテルの添加により沈澱させる。
純粋な抗生物質GE2270因子A、は、実施例2.1
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
に記載されているように調製用HPLCにより得られる
。
2.4 抗生物質GE2270因子A、は、抗生物質G
E2270因子Aをジ因子−ンジオキシド、水およびト
リフルオロ酢酸の5/4/l(v/V)混合物中で50
℃において、酸性カチオン交換樹脂、例えば、酸イオン
型のDowex■50WX2の存在下に一夜インキユベ
ーションするときの、抗生物質GE2270因子Aの主
因子反応生成物である。次いで、この樹脂を反応混合物
から除去し、そしてこの溶液を冷水で希釈し、そして中
和する。抗生物質GE2270因子A!を酢酸エチルで
抽出し、減圧下に濃縮し、そして石油エーテルの添加に
より沈澱させる。
E2270因子Aをジ因子−ンジオキシド、水およびト
リフルオロ酢酸の5/4/l(v/V)混合物中で50
℃において、酸性カチオン交換樹脂、例えば、酸イオン
型のDowex■50WX2の存在下に一夜インキユベ
ーションするときの、抗生物質GE2270因子Aの主
因子反応生成物である。次いで、この樹脂を反応混合物
から除去し、そしてこの溶液を冷水で希釈し、そして中
和する。抗生物質GE2270因子A!を酢酸エチルで
抽出し、減圧下に濃縮し、そして石油エーテルの添加に
より沈澱させる。
純粋な抗生物質GE2270因子A!は、実施例2.1
に記載されているように調製用HP L Cにより得ら
れる。
に記載されているように調製用HP L Cにより得ら
れる。
2.5 抗生物質GE2270因子A、は、また、抗生
物質GE2270因子A、を実施例2゜L 2.2.2
.3または2.4に抗生物質GE2270因子Aについ
て記載した条件で処理すると、得られる。
物質GE2270因子A、を実施例2゜L 2.2.2
.3または2.4に抗生物質GE2270因子Aについ
て記載した条件で処理すると、得られる。
一般に、60〜8,5%のモルの収率がこの反応におい
て得られる。
て得られる。
実施例3
抗生物質GE2270因子A3の調製
3、 1 抗生物質GE2270因子A2を室温にお
いて0.5モルの炭酸ナトリウム中で1時間インキコベ
ーシーンする。次いで、反応混合物を冷水で希釈し、そ
して塩酸でpH6,5にする。
いて0.5モルの炭酸ナトリウム中で1時間インキコベ
ーシーンする。次いで、反応混合物を冷水で希釈し、そ
して塩酸でpH6,5にする。
中性した溶液は、主要な逆相として、抗生物質GE22
70囚子A、を含有する。この抗生物質を水性相から酢
酸エチルで溶離し、次いで濃縮有機相から石油エーテル
の添加により沈澱させる。
70囚子A、を含有する。この抗生物質を水性相から酢
酸エチルで溶離し、次いで濃縮有機相から石油エーテル
の添加により沈澱させる。
純粋な抗生物質GE2270因子A、は、後述するよう
にカラムクロマトグラフィーにより得られる。
にカラムクロマトグラフィーにより得られる。
3.2 1.5gの粗製の抗生物質GE2270因子A
、を60m12のメタノールおよびジクロロメタンのl
/l(v/v)の混合物中に溶解し、そして減圧下に溶
媒の蒸発によりシリカゲル(75〜230メツシユ)上
で吸着させる。次いで、固体残留物をジクロロメタンで
平衡化したシリカゲル(75〜230メツシユ)のカラ
ム(ベツドの高さ)の上部に配置する。次いで、このカ
ラムを次の順序でジクロロメタン中のメタノールの混合
物で溶離する:1)2%のメタノール(45゜rn<1
);2)5%ノメタ/−ル(500mff );3)1
0%のメタノール(600m<2 ); 4)15%の
メタノール(500mff ); 5)20%のメタノ
ール(500m+2);6)30%のメタノール(25
0ma)。
、を60m12のメタノールおよびジクロロメタンのl
/l(v/v)の混合物中に溶解し、そして減圧下に溶
媒の蒸発によりシリカゲル(75〜230メツシユ)上
で吸着させる。次いで、固体残留物をジクロロメタンで
平衡化したシリカゲル(75〜230メツシユ)のカラ
ム(ベツドの高さ)の上部に配置する。次いで、このカ
ラムを次の順序でジクロロメタン中のメタノールの混合
物で溶離する:1)2%のメタノール(45゜rn<1
);2)5%ノメタ/−ル(500mff );3)1
0%のメタノール(600m<2 ); 4)15%の
メタノール(500mff ); 5)20%のメタノ
ール(500m+2);6)30%のメタノール(25
0ma)。
分画を集め、そしてTLCBよびバクテリウム・スブチ
リス(B、5ubtilis)ATCC6633につい
ての微生物学的アッセイにより監視4°る。抗生物質G
E 2270因子Asハ、通S、約15〜20%のメタ
ノールを含有する溶離液中に存在する。
リス(B、5ubtilis)ATCC6633につい
ての微生物学的アッセイにより監視4°る。抗生物質G
E 2270因子Asハ、通S、約15〜20%のメタ
ノールを含有する溶離液中に存在する。
所望の生成物を含有する分画をプールし、そして減圧下
に濃縮する。残留物に石油エーテルを添加すると、抗生
物質GE 2270因子A、が沈澱する(854mgの
純粋な生成物)。
に濃縮する。残留物に石油エーテルを添加すると、抗生
物質GE 2270因子A、が沈澱する(854mgの
純粋な生成物)。
3.3 ジエチレンジオキシドおよび水のl/1(v/
v)混合物中に可溶化した抗生物質GE2270因子A
は、カチオン交換樹脂(Dowex@50WX2)H”
型の存在下に400時間インキュページンする。次いで
、この樹脂を反応混合物から除去し、そしてこの溶液を
冷水で希釈し、そして水性水酸化すトリウムでpH6,
5にする゛。
v)混合物中に可溶化した抗生物質GE2270因子A
は、カチオン交換樹脂(Dowex@50WX2)H”
型の存在下に400時間インキュページンする。次いで
、この樹脂を反応混合物から除去し、そしてこの溶液を
冷水で希釈し、そして水性水酸化すトリウムでpH6,
5にする゛。
この混合物を酢酸エチルで抽出し、そして濃縮した有機
相を石油エーテルの添加により沈澱させる。
相を石油エーテルの添加により沈澱させる。
次いで、抗生物質GE2270因子A3を、一実施例3
.2に記載されているようにカラムクロマトグラフィー
により、単離し、モしてカラムクロマトクラフィーによ
り精製する(全体のモルの収率:15%)。
.2に記載されているようにカラムクロマトグラフィー
により、単離し、モしてカラムクロマトクラフィーによ
り精製する(全体のモルの収率:15%)。
実施例4
抗生物質GE2270因子Hの調製
4.1 500mgのホウ水素化ナトリウムおよび25
0mgの抗生物質GE227C)因子Aを、100mn
のジエチレンジオキシドおよび水の1/1 (V/V)
混合物中に溶解する。室温において3日後、この溶液を
1モルのN a H2P O4でpH7にし、次いで減
圧下に濃縮する。水を酢酸エチルで抽出し、そして有機
相を濃縮乾固する。主として抗生物質GE2270因子
Hを含有する固体の残留物を、テトラヒドロ7ラン中に
溶解し、次いで石油エーテルを添加し、こうして213
mgの白色沈澱が生威し、これを次のように調製用HP
LCにより精製する: 10nngの上の反応生成物をテトラヒドロフラン中に
可溶化し、水で溶解限界に希釈し、次いでスタクロマ(
Stacroma■)を充填したヌクレオシル(Nuc
leosilI3)C18(5μm)の逆相シリカゲル
のカラム(250X20mm)に注入し、相A中の相B
の64%〜93%の直線の勾配により20分で約15m
12/分の流速において溶離する。この系において、相
Aは18ミリモルのリン酸ナトリウムpH7,2および
アセトニトリルの90 : l O(v/v)混合物で
あり、モして相Bは18ミリモルのリン酸ナトリウムp
H7,2およびアセトニトリルの40:60(v/v)
混合物である。10回の連続的実験の分画を集め、そし
て紫外線で330nmにおいて監視する。紫外線溶離フ
ロフィルのピークに相当する、実質的な抗生物質GE2
270因子Hを含有する分画をプールし、そして減圧下
に濃縮して水性相が得られ、これを酢酸エチルで2回抽
出する。次いで、有機相を蒸留水で洗浄して残留する無
機塩を除去し、濃縮して固体を沈澱させ、これをテトラ
ヒドロフラン中に溶解し、そして石油エーテルで再沈澱
させ、こうして抗生物質GE2270囚子H(55mg
)が得られる。
0mgの抗生物質GE227C)因子Aを、100mn
のジエチレンジオキシドおよび水の1/1 (V/V)
混合物中に溶解する。室温において3日後、この溶液を
1モルのN a H2P O4でpH7にし、次いで減
圧下に濃縮する。水を酢酸エチルで抽出し、そして有機
相を濃縮乾固する。主として抗生物質GE2270因子
Hを含有する固体の残留物を、テトラヒドロ7ラン中に
溶解し、次いで石油エーテルを添加し、こうして213
mgの白色沈澱が生威し、これを次のように調製用HP
LCにより精製する: 10nngの上の反応生成物をテトラヒドロフラン中に
可溶化し、水で溶解限界に希釈し、次いでスタクロマ(
Stacroma■)を充填したヌクレオシル(Nuc
leosilI3)C18(5μm)の逆相シリカゲル
のカラム(250X20mm)に注入し、相A中の相B
の64%〜93%の直線の勾配により20分で約15m
12/分の流速において溶離する。この系において、相
Aは18ミリモルのリン酸ナトリウムpH7,2および
アセトニトリルの90 : l O(v/v)混合物で
あり、モして相Bは18ミリモルのリン酸ナトリウムp
H7,2およびアセトニトリルの40:60(v/v)
混合物である。10回の連続的実験の分画を集め、そし
て紫外線で330nmにおいて監視する。紫外線溶離フ
ロフィルのピークに相当する、実質的な抗生物質GE2
270因子Hを含有する分画をプールし、そして減圧下
に濃縮して水性相が得られ、これを酢酸エチルで2回抽
出する。次いで、有機相を蒸留水で洗浄して残留する無
機塩を除去し、濃縮して固体を沈澱させ、これをテトラ
ヒドロフラン中に溶解し、そして石油エーテルで再沈澱
させ、こうして抗生物質GE2270囚子H(55mg
)が得られる。
出発物質の調製
出発物質は欧州特許出願公開第359062号に概説さ
れている手順に従い調製する。
れている手順に従い調製する。
本発明の主な特徴および態様は、次の通りである。
11非塩化形態で次の特徴:
抗生物質GE2270因子AIの物理化学的特性:
A)次の吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:B)次
の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(メジゴール法)
(am−’)= 3700−3000 ; 3000−2800 (ヌジ
ョール);1650;1535;1505;1460(
ヌジョール);1375(ヌジョール):1310;1
240;1190;1165;1130−1000 ;
980 ;930 ; 840 ; 805;750.
720(ヌジョール);700;C)内部標準(0,O
Oppm)としてTMSを使用してD M S O−D
a (ヘキサシューテロジメチルスルホキシド)中で
記録した500MHzにおける次の信号の群を示す’H
−NMRスペクトル:各信号の多重度を、また、下に記
録する(S−1,!1;d−二重;m−多重1dd−二
重の二重;br−広い一重): 0.84、d 、 0.87、d;1.35、rrh
; 1.9L m ; 2.08、m;2.16、m
; 2.46、d 、 2.58、S ; 2.70、
dd、 3.38、S ; 3.76、m ; 3.8
4、tm ; 4.26、dd ; 4.33、m ;
4.89、+a;4−97、s ; 5.00、dd
; 5.20、dd 、 5.22、dd;5.28
(2プロトン)、m ; 6.01%d ; 7.07
、s ; 7.2、s ; 7.34、S ; 7.2
2〜7.38(6プロトン)、m;8.29、s ;
8.39、d ; 8.44、ffl ; 8.45、
d ; 8.54、s ; 8.60゜s ; 8.6
6、d i 9.69、d ; 8.99、doD)次
の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、13.4
分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラス7エアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5pm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm (
内径)X250mm1予備力ラム:ブラウンリー・ラプ
ス(Brownlee Labs)RP18 (オク
タデシルシランシリカゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:1820モルのNaHzP
O*、70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調
節、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaHxP
oい 10:90 (v/v)、pH7,0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8m(1/分
、 紫外線検出器:254nm。
の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(メジゴール法)
(am−’)= 3700−3000 ; 3000−2800 (ヌジ
ョール);1650;1535;1505;1460(
ヌジョール);1375(ヌジョール):1310;1
240;1190;1165;1130−1000 ;
980 ;930 ; 840 ; 805;750.
720(ヌジョール);700;C)内部標準(0,O
Oppm)としてTMSを使用してD M S O−D
a (ヘキサシューテロジメチルスルホキシド)中で
記録した500MHzにおける次の信号の群を示す’H
−NMRスペクトル:各信号の多重度を、また、下に記
録する(S−1,!1;d−二重;m−多重1dd−二
重の二重;br−広い一重): 0.84、d 、 0.87、d;1.35、rrh
; 1.9L m ; 2.08、m;2.16、m
; 2.46、d 、 2.58、S ; 2.70、
dd、 3.38、S ; 3.76、m ; 3.8
4、tm ; 4.26、dd ; 4.33、m ;
4.89、+a;4−97、s ; 5.00、dd
; 5.20、dd 、 5.22、dd;5.28
(2プロトン)、m ; 6.01%d ; 7.07
、s ; 7.2、s ; 7.34、S ; 7.2
2〜7.38(6プロトン)、m;8.29、s ;
8.39、d ; 8.44、ffl ; 8.45、
d ; 8.54、s ; 8.60゜s ; 8.6
6、d i 9.69、d ; 8.99、doD)次
の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、13.4
分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラス7エアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5pm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm (
内径)X250mm1予備力ラム:ブラウンリー・ラプ
ス(Brownlee Labs)RP18 (オク
タデシルシランシリカゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:1820モルのNaHzP
O*、70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調
節、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaHxP
oい 10:90 (v/v)、pH7,0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8m(1/分
、 紫外線検出器:254nm。
内部a準:クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)、
E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F) m/z l 308質量単位においてプロトン化
された分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すF
AB−MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位
より上のすべての他のピーク(アイソトープのピークを
計数しない)は、次の実験条件下にクラトス(Kra
Los)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したと
き、20%より低い分子のイオンであった:6Kvにお
けるXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流:グリセ
ロールマトリックス:正のイオン化モード、抗生物質G
E2270因子A8の因子化8的特性: A)次の吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:B)次
の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法X
cm−’) : 3700−3000 ; 3000−2800 (ヌジ
ョール); 1725 ; 1655 ; 1590−
1480;1460(ヌジEl−ル);1410;13
75(ヌジ:!−/L=); l 335.1305
; 1265−1!30;1090;1050;101
5;980 ; 945 ; 840 ; 805.7
45 ;720(ヌジョール);700; C)内部標準(0,00ppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D、(ヘキサシューテロジメチルスルホキ
シド)中で記録した500MHzにおける次の信号の群
を示す’H−NMRスペクトル;各信号の多重度を、ま
た、下に記録する(3−1重;d=二重;m−多重、d
d−二重の二重;br−広い一重): 0.83、d; 0.86、d ; 1.30. m
; 1.82、m; 1.90. m;2.17、m
; 2.46、d ; 2.57、s ; 2.701
dd ; 3.37、s ; 3.40、m : 3.
48、m ; 3.77、dd ; 4′、24、+s
; 4.28、dd ; 4.52、d ; 4.5
3、br s ; 4.67、d ; 4.96、S;
4.98、aa 、 5.19、m ; 5.21.
m ; 5−28、m; 6.01. d、 7.34
、s ; 7.22−7.35、+i;8.26、d
; 8.28、S;8.42、d ; 8.45、s
; 8.59、s ; 8.67(2プロトン)、d
; 8.73、s ; 9.00. d−D)次の条件
下に逆相HPLCにより分析したとき、17.0分の保
持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultraspha r
e)ODS (逆相シラン化シリカゲル:5分m)アル
テックス(At tex)(Beckman)4.6m
m(内径)X250mm。
いて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F) m/z l 308質量単位においてプロトン化
された分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すF
AB−MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位
より上のすべての他のピーク(アイソトープのピークを
計数しない)は、次の実験条件下にクラトス(Kra
Los)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したと
き、20%より低い分子のイオンであった:6Kvにお
けるXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流:グリセ
ロールマトリックス:正のイオン化モード、抗生物質G
E2270因子A8の因子化8的特性: A)次の吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:B)次
の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法X
cm−’) : 3700−3000 ; 3000−2800 (ヌジ
ョール); 1725 ; 1655 ; 1590−
1480;1460(ヌジEl−ル);1410;13
75(ヌジ:!−/L=); l 335.1305
; 1265−1!30;1090;1050;101
5;980 ; 945 ; 840 ; 805.7
45 ;720(ヌジョール);700; C)内部標準(0,00ppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D、(ヘキサシューテロジメチルスルホキ
シド)中で記録した500MHzにおける次の信号の群
を示す’H−NMRスペクトル;各信号の多重度を、ま
た、下に記録する(3−1重;d=二重;m−多重、d
d−二重の二重;br−広い一重): 0.83、d; 0.86、d ; 1.30. m
; 1.82、m; 1.90. m;2.17、m
; 2.46、d ; 2.57、s ; 2.701
dd ; 3.37、s ; 3.40、m : 3.
48、m ; 3.77、dd ; 4′、24、+s
; 4.28、dd ; 4.52、d ; 4.5
3、br s ; 4.67、d ; 4.96、S;
4.98、aa 、 5.19、m ; 5.21.
m ; 5−28、m; 6.01. d、 7.34
、s ; 7.22−7.35、+i;8.26、d
; 8.28、S;8.42、d ; 8.45、s
; 8.59、s ; 8.67(2プロトン)、d
; 8.73、s ; 9.00. d−D)次の条件
下に逆相HPLCにより分析したとき、17.0分の保
持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultraspha r
e)ODS (逆相シラン化シリカゲル:5分m)アル
テックス(At tex)(Beckman)4.6m
m(内径)X250mm。
予備力ラム:ブラウンリー・ラプス(Brownlee
Labs)RP18 (オクタデシルシランシリカ
ゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
O4,70: 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
O,,10: 90 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mff1/
分、 紫外線検出器:254nm。
Labs)RP18 (オクタデシルシランシリカ
ゲル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
O4,70: 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
O,,10: 90 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mff1/
分、 紫外線検出器:254nm。
内ss準:クロラムフエニコール(Rt=3゜6分)、
E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140°Cに
おいて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水
素、窒素、イオウ: F)m/z1291質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析ニスベクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった: 5Kvにお、ける
Xe急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロー
ルマトリックス:正のイオン化モード、抗生物質GE2
270因子A、の物理化学的特性: B)次の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョー
ル法)(c1→: 3700−3140;31 10;3020−2750
(ヌジョール);1720;1655;1590−15
20;1500;1460 (ヌジョール);1375
(ヌジョール”); 1270−1200;1130−
1030;1020;980;93’O;840;80
5;’750;720 (ヌジョール);700; C)内部標準(0,OOppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D、(ヘキサシューテロジメチルスルホキ
シド)中で記録した5QQMHzにおける次の信号の群
を示すLH−NMRスペクトル:各信号の多重度を、ま
た、下に記録する(S−1重;d−二重:m−多!;
dd−二重の二重;br”広い一重): 9.02、LH(d) : 8.71.1B(d) ;
8.70.1)l(d) ; 8.65、IH(s)
; 8.57、IH(s) ; 8.46、IH(m
) ; 8.38、IH(d);8.28、IH(d)
; 8.25、LH(s) ; 7.38、IH(m
) ; 7.37、IH(s) ; 7.36−7.2
0.5H(m) ; 6.05、IH(br s) ;
5.31、IH(m) : 5.27、IH(dd)
; 5.20、uIcaa); 5.03、IH(d
) ; 4.99.2H(s) : 4.32、IH(
dd) ; 3.82、IH(ad) ; 3.38.
3H(s) ; 2.74、IH(dd) ; 2.6
0.3H(S); 2.49.3H(d) ; 2.1
7、LH(m) ; 1.35、LH(m) ; 0.
88.3H(d); 0.84.3H(d)。
おいて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水
素、窒素、イオウ: F)m/z1291質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析ニスベクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった: 5Kvにお、ける
Xe急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロー
ルマトリックス:正のイオン化モード、抗生物質GE2
270因子A、の物理化学的特性: B)次の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョー
ル法)(c1→: 3700−3140;31 10;3020−2750
(ヌジョール);1720;1655;1590−15
20;1500;1460 (ヌジョール);1375
(ヌジョール”); 1270−1200;1130−
1030;1020;980;93’O;840;80
5;’750;720 (ヌジョール);700; C)内部標準(0,OOppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D、(ヘキサシューテロジメチルスルホキ
シド)中で記録した5QQMHzにおける次の信号の群
を示すLH−NMRスペクトル:各信号の多重度を、ま
た、下に記録する(S−1重;d−二重:m−多!;
dd−二重の二重;br”広い一重): 9.02、LH(d) : 8.71.1B(d) ;
8.70.1)l(d) ; 8.65、IH(s)
; 8.57、IH(s) ; 8.46、IH(m
) ; 8.38、IH(d);8.28、IH(d)
; 8.25、LH(s) ; 7.38、IH(m
) ; 7.37、IH(s) ; 7.36−7.2
0.5H(m) ; 6.05、IH(br s) ;
5.31、IH(m) : 5.27、IH(dd)
; 5.20、uIcaa); 5.03、IH(d
) ; 4.99.2H(s) : 4.32、IH(
dd) ; 3.82、IH(ad) ; 3.38.
3H(s) ; 2.74、IH(dd) ; 2.6
0.3H(S); 2.49.3H(d) ; 2.1
7、LH(m) ; 1.35、LH(m) ; 0.
88.3H(d); 0.84.3H(d)。
D)次の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、7
゜1分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラス7エアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5重m)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm (
内径)X250mm。
゜1分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラス7エアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5重m)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm (
内径)X250mm。
予備力ラム:ブラウンリー・ラプス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲ
ル:5μm)、 溶離剤A;アセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
○い70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル=18ミリモルのNaH,P
oい 10:90 (v/v)、pH7−0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8m12/分
、 紫外線検出器:254nm。
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲ
ル:5μm)、 溶離剤A;アセトニトリル:18ミリモルのNaH2P
○い70 : 30 (v/v) 、pH7,0に調節
、 溶離剤Bニアセトニトリル=18ミリモルのNaH,P
oい 10:90 (v/v)、pH7−0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8m12/分
、 紫外線検出器:254nm。
内部標準二クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)、
E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて曲風て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素51.
27%、水素4.02%、窒素14゜94%、イオウ: F)m/zl125質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった:5KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流:グリセロールマ
トリックス:正のイオン化モード、G)内S標準(0,
OOppm)としてTMSを使用してDMSO−D、中
で記録した125MH2における次の信号の群を示す1
3C−NMRスぺクトル: !71.2; 169.9; 169.6; 1
68.5; 167.8; 165.7; 16
4.8; 162.2; 161.4; 161.3
; 160.5; 160.4; 153゜5;
L50.4; 150.1; 149.5;
149.1; 147.Q; L43.8;14
2.1; 141.8; 141.4; 141.0;
139.6; 131.8; 128.0(2炭素)
; 127.7 ; 127.6 ; 126.9:
126.8(2炭素);123.1 、118.7 ;
116.4 、73.9 ; 67.4 ; 58.
7 ; 58.3; 55.5 、48.2 、旧、2
、37.7 ; 34.1 ; 25.9 、18.
5 ;18.0 ; 12.0゜ H)比旋光度[α]2°、−+182.5、CHCl。
いて曲風て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素51.
27%、水素4.02%、窒素14゜94%、イオウ: F)m/zl125質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/2質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった:5KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流:グリセロールマ
トリックス:正のイオン化モード、G)内S標準(0,
OOppm)としてTMSを使用してDMSO−D、中
で記録した125MH2における次の信号の群を示す1
3C−NMRスぺクトル: !71.2; 169.9; 169.6; 1
68.5; 167.8; 165.7; 16
4.8; 162.2; 161.4; 161.3
; 160.5; 160.4; 153゜5;
L50.4; 150.1; 149.5;
149.1; 147.Q; L43.8;14
2.1; 141.8; 141.4; 141.0;
139.6; 131.8; 128.0(2炭素)
; 127.7 ; 127.6 ; 126.9:
126.8(2炭素);123.1 、118.7 ;
116.4 、73.9 ; 67.4 ; 58.
7 ; 58.3; 55.5 、48.2 、旧、2
、37.7 ; 34.1 ; 25.9 、18.
5 ;18.0 ; 12.0゜ H)比旋光度[α]2°、−+182.5、CHCl。
+10%のCH,OH。
抗生物質GE2270因子Hの物理化学的特性A)次の
吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:B)次の吸収最
大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm−
’): 3700−3000.3000−2800 (ヌジョー
ル):1655;1590−1480;1460(ヌジ
ョール);1375(ヌジョール);13to;122
0;1190;1130;1000 ; 980 ;
930 i 840 ; 820−680;720(ヌ
ジョール);640゜ C)内部標準(0,00ppm)としてTMSを使用し
てD M S OD s (ヘキサシューテロジメチル
スルホキシド)中で記録した500MHzにおける次の
信号の群を示す’H−NMRスペクトル;各信号の多重
度を、まt;、下に記録する(3−1!;d−二重;m
−多重;clcl−二重の二重;br−広い−IL): 0.83、d ; 0.87、d ; 1.30. m
; 2.16、II ; 2.46、d:2.58、
s ; 2.70、dd ; 3.38、s ; 3.
52、re ; 3.6L m; 3.77、dd ;
4.25、m;4.30、m ; 4.35、m;4
.47、mH4,88、m ; 4.97、s ; 4
.99、dd;5.2o、 ;5.23.5.28、m
; 6.02、d ; 7.36、s ; 7.22
−7.40. m ; 8.26、d ; 8.28、
s ; 8.42、d ; 8.43、rll i 8
.47、s ; 3゜60、s ; 8.67、d ;
9.02、doD)次の条件下に逆相HPLCにより
分析したとき、18.0分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー([Jltra91)ha
re)ODS (逆相シラン化シリカゲル;5μm)
アルテックス(Al tex)(Beckman)4.
6mm (内径)X250mm。
吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:B)次の吸収最
大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョール法)(cm−
’): 3700−3000.3000−2800 (ヌジョー
ル):1655;1590−1480;1460(ヌジ
ョール);1375(ヌジョール);13to;122
0;1190;1130;1000 ; 980 ;
930 i 840 ; 820−680;720(ヌ
ジョール);640゜ C)内部標準(0,00ppm)としてTMSを使用し
てD M S OD s (ヘキサシューテロジメチル
スルホキシド)中で記録した500MHzにおける次の
信号の群を示す’H−NMRスペクトル;各信号の多重
度を、まt;、下に記録する(3−1!;d−二重;m
−多重;clcl−二重の二重;br−広い−IL): 0.83、d ; 0.87、d ; 1.30. m
; 2.16、II ; 2.46、d:2.58、
s ; 2.70、dd ; 3.38、s ; 3.
52、re ; 3.6L m; 3.77、dd ;
4.25、m;4.30、m ; 4.35、m;4
.47、mH4,88、m ; 4.97、s ; 4
.99、dd;5.2o、 ;5.23.5.28、m
; 6.02、d ; 7.36、s ; 7.22
−7.40. m ; 8.26、d ; 8.28、
s ; 8.42、d ; 8.43、rll i 8
.47、s ; 3゜60、s ; 8.67、d ;
9.02、doD)次の条件下に逆相HPLCにより
分析したとき、18.0分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー([Jltra91)ha
re)ODS (逆相シラン化シリカゲル;5μm)
アルテックス(Al tex)(Beckman)4.
6mm (内径)X250mm。
予備力ラム:ブラウンリー・ラプス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲ
ル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:1829モルのNaHIP
Oい 70 : 30 (v/ v) 、 p
H7,0に調節、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaHff
iPO4,10: 90 (v/v)、pH7,0に調
節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mI2/分
、 紫外線検出器:254nm。
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲ
ル;5μm)、 溶離剤Aニアセトニトリル:1829モルのNaHIP
Oい 70 : 30 (v/ v) 、 p
H7,0に調節、 溶離剤Bニアセトニトリル:18ミリモルのNaHff
iPO4,10: 90 (v/v)、pH7,0に調
節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、流速:1.8mI2/分
、 紫外線検出器:254nm。
内si準:クロラムフェニコール(Rt−3゜6分)、
E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/zl180質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析ニスベクトル中の800m72質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kra t o
s)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった:6Kvにおけ
るXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロ
ールマトリックス;正のイオン化モード、を有する、抗
生物質GE2270因子A0、A1、A、またはHlお
よびそれらの許容されうる塩類から選択される抗生物質
。
いて前置て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/zl180質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析ニスベクトル中の800m72質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kra t o
s)MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき
、20%より低い分子のイオンであった:6Kvにおけ
るXe急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロ
ールマトリックス;正のイオン化モード、を有する、抗
生物質GE2270因子A0、A1、A、またはHlお
よびそれらの許容されうる塩類から選択される抗生物質
。
2、工程:
a)抗生物質GE2270因子Aを選因子的加水分解し
て抗生物質GE2270因子A、、A、またはA3を生
威し、 b)抗生物質GE2270因子Aを還因子的件下に選択
的に切り放して抗生物質GE 2270因子Hを生成し
、 C)得られる生成物をそれ自体既知の方法に従い単離お
よび精製する、 からなる、上記第1項記載の化合物を調製する方法。
て抗生物質GE2270因子A、、A、またはA3を生
威し、 b)抗生物質GE2270因子Aを還因子的件下に選択
的に切り放して抗生物質GE 2270因子Hを生成し
、 C)得られる生成物をそれ自体既知の方法に従い単離お
よび精製する、 からなる、上記第1項記載の化合物を調製する方法。
3、選択的加水分解の条件は水性酸性媒質および極性有
機側鎖により表される、上記第2頂点a)記載の方法。
機側鎖により表される、上記第2頂点a)記載の方法。
4、反応温度が一10℃〜50°Cである、抗生物質G
E2270因子A、を因子的に生成する、上記第3項記
載の方法。
E2270因子A、を因子的に生成する、上記第3項記
載の方法。
5、加水分解を酸性媒質中で極性有機溶媒の存在下に4
0°C〜90℃の温度において実施する、抗生物質GE
2270因子A、を選択的に生成する、上記第2項記載
の方法。
0°C〜90℃の温度において実施する、抗生物質GE
2270因子A、を選択的に生成する、上記第2項記載
の方法。
6、加水分解を酸性媒質中で極性有機溶媒の存在下に6
5℃〜90℃の温度において実施する、抗生物質GE2
270因子A、を選択的に生成する、上記g42項記載
の方法。
5℃〜90℃の温度において実施する、抗生物質GE2
270因子A、を選択的に生成する、上記g42項記載
の方法。
7、抗生物質GE2270因子A、を極性有機溶媒の存
在下に塩基性加水分解することからなる、抗生物質GE
2270因子A、を選択的に生成する、上記第2項記載
の方法。
在下に塩基性加水分解することからなる、抗生物質GE
2270因子A、を選択的に生成する、上記第2項記載
の方法。
8、還元性条件はアルカリ金属ホウ水素化物により相溶
性極性有機溶媒中で確立する、抗生物質GE2270囚
子Hを選択的に生成する、上記第2項記載の方法。
性極性有機溶媒中で確立する、抗生物質GE2270囚
子Hを選択的に生成する、上記第2項記載の方法。
9、製剤学的に許容されうる担体と混合した上記第1項
記載の化合物からなる製剤。
記載の化合物からなる製剤。
10、薬物として使用するための上記第1項記載の化合
物。
物。
11、抗微生物の用途のための薬物を調製するための上
記第1項記載の化合物の使用。
記第1項記載の化合物の使用。
第1図は、抗生物質GE2270因子A1の紫外線吸収
スペクトルである。 第2図は、抗生物質GE2270因子A1の赤外吸収ス
ペクトルである。 第3図は、抗生物質GE2270因子A1のl)l−N
MRスペクトルである。 第4図は、抗生物質GE2270因子A1の紫外線吸収
スペクトルである。 第5図は、抗生物質GE2270因子A2の赤外吸収ス
ペクトルである。 第6r!!Jは、抗生物ffGE 2270因子A2(
7)IH−NMRスペクトルである。 第7図は、抗生物質GE2270因子A、の紫外線吸収
スペクトルである。 第8図は、抗生物質GE2270因子A、の赤外吸収ス
ペクトルである。 第9図は、抗生物質GE2270因子A、のIH−NM
Rスペクトルである。 第10図は、抗生物質GE2270因子A、の”C−N
MRスペクトルである。 第11図は、抗生物質GE2270因子Hの紫外線吸収
スペクトルである。 第12図は、抗生物質GE2270因子Hの赤外吸収ス
ペクトルである。 第13図は、抗生物質GE2270因子Hの’H−NM
Rスペクトルである。 紫外線スペクトル中に使用した記号は、次の意味を有す
る。 一★□はO,INのHCl中のアッセイを意味する。 □ム□は0.INのKOH中のアッセイを意味する。 □厘□はメタノール中のアッセイを意味する。 □・□はリン酸塩緩衝液pH7゜ 4中のアラ セイを特徴する
スペクトルである。 第2図は、抗生物質GE2270因子A1の赤外吸収ス
ペクトルである。 第3図は、抗生物質GE2270因子A1のl)l−N
MRスペクトルである。 第4図は、抗生物質GE2270因子A1の紫外線吸収
スペクトルである。 第5図は、抗生物質GE2270因子A2の赤外吸収ス
ペクトルである。 第6r!!Jは、抗生物ffGE 2270因子A2(
7)IH−NMRスペクトルである。 第7図は、抗生物質GE2270因子A、の紫外線吸収
スペクトルである。 第8図は、抗生物質GE2270因子A、の赤外吸収ス
ペクトルである。 第9図は、抗生物質GE2270因子A、のIH−NM
Rスペクトルである。 第10図は、抗生物質GE2270因子A、の”C−N
MRスペクトルである。 第11図は、抗生物質GE2270因子Hの紫外線吸収
スペクトルである。 第12図は、抗生物質GE2270因子Hの赤外吸収ス
ペクトルである。 第13図は、抗生物質GE2270因子Hの’H−NM
Rスペクトルである。 紫外線スペクトル中に使用した記号は、次の意味を有す
る。 一★□はO,INのHCl中のアッセイを意味する。 □ム□は0.INのKOH中のアッセイを意味する。 □厘□はメタノール中のアッセイを意味する。 □・□はリン酸塩緩衝液pH7゜ 4中のアラ セイを特徴する
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、非塩化形態で次の特徴: 抗生物質GE2270因子A_1の物理化学的特性: A)次の吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:▲数式
、化学式、表等があります▼ B)次の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョー
ル法)(cm^−^1): 3700−3000;3000−2800(ヌジヨール
);1650;1535;1505;1460(ヌジヨ
ール);1375(ヌジヨール);1310;1240
;1190;1165;1130−1000;980;
930;840:805;750;720(ヌジヨール
);700;C)内部標準(0.00ppm)としてT
MSを使用してDMSO−D_6(ヘキサジューテロジ
メチルスルホキシド)中で記録した500MHzにおけ
る次の信号の群を示す^1H−NMRスペクトル;各信
号の多重度を、また、下に記録する(s=1重;d=二
重;m=多重;dd=二重の二重;br=広い一重): 0.84、d;0.87、d;1.35、m;1.91
、m;2.08、m;2.16、m;2.46、d;2
.58、s;2.70、dd;3.38、s;3.76
、m;3.84、m;4.26、dd;4.33、m;
4.89、m;4.97、s;5.00、dd;5.2
0、dd;5.22、dd;5.28(2プロトン)、
m;6.01、d;7.07、s;7.2、s;7.3
4、s;7.22−7.38(6プロトン)、m;8.
29、s;8.39、d;8.44、m;8.45、d
;8.54、s;8.60、s;8.66、d;9.6
9、d;8.99、d。 D)次の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、1
3.4分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm(内
径)×250mm、 予備カラム:ブラウンリー・ラブス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲル;
5μm)、 溶離剤A:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、70:30(v/v)、pH7.0に調節、 溶離剤B:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、10:90(v/v)、pH7.0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、 流速:1.8ml/分、 紫外線検出器:254nm、 内部標準:クロラムフェニコール(Rt=3.6分)、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/z1308質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/z質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった:6KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロールマ
トリックス;正のイオン化モード、 抗生物質GE2270因子A_2の物理化学的特性: A)次の吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:▲数式
、化学式、表等があります▼ B)次の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョー
ル法)(cm^−^1): 3700−3000;3000−2800(ヌジヨール
);1725;1655;1590−1480;146
0(ヌジヨール);1410;1375(ヌジヨール)
;1335;1305;1265−1130;1090
;1050;1015;980;945;840;80
5;745;720(ヌジヨール);700; C)内部標準(0.00ppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D_2(ヘキサジューテロジメチルスルホ
キシド)中で記録した500MHzにおける次の信号の
群を示す^1H−NMRスペクトル;各信号の多重度を
、また、下に記録する(s=1重;d=二重;m=多重
;dd=二重の二重;br=広い一重): 0.83、d;0.86、d;1.30、m;1.82
、m;1.90、m;2.17、m;2.46、d;2
.57、s;2.70、dd;3.37、s;3.40
、m;3.48、m;3.77、dd;4.24、m;
4.28、dd;4.52、d;4.53、brs;4
.67、d;4.96、s;4.98、dd;5.19
、m;5.21、m;5.28、m;6.01、d;7
.34、s;7.22−7.35、m;8.26、d;
8.28、s;8.42、d;8.45、s;8.59
、s;8.67(2プロトン)、d;8.73、s;9
.00、d。 D)次の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、1
7.0分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm(内
径)×250mm、 予備カラム:ブラウンリー・ラブス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲル;
5μm)、 溶離剤A:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、70:30(v/v)、pH7.0に調節、 溶離剤B:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、10:90(v/v)、pH7.0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、 流速:1.8ml/分、 紫外線検出器:254nm、 内部標準:クロラムフェニコール(Rt=3.6分)、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/z1291質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/z質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった:6KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロールマ
トリックス;正のイオン化モード、 抗生物質GE2270因子A_3の物理化学的特性: A)次の吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:▲数式
、化学式、表等があります▼ B)次の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョー
ル法)(cm^−^1): 3700−3140;3110;3020−2750(
ヌジヨール);1720;1655;1590−152
0;1500;1460(ヌジヨール);1375(ヌ
ジヨール);1270−1200;1130−1030
;1020;980;930;840;805;750
;720(ヌジヨール);700; C)内部標準(0.00ppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D_6(ヘキサジューテロジメチルスルホ
キシド)中で記録した500MHzにおける次の信号の
群を示す^1H−NMRスペクトル;各信号の多重度を
、また、下に記録する(s=1重;d=二重;m=多重
;dd=二重の二重;br=広い一重): 9.02、1H(d);8.71、1H(d);8.7
0、1H(d);8.65、1H(s);8.57、1
H(s);8.46、1H(m);8.38、1H(d
);8.28、1H(d);8.25、1H(s);7
.38、1H(m);7.37、1H(s);7.36
−7.20、5H(m);6.05、1H(brs);
5.31、1H(m);5.27、1H(dd);5.
20、1H(dd);5.03、1H(d);4.99
、2H(s);4.32、1H(dd);3.82、1
H(dd);3.38、3H(s);2.74、1H(
dd);2.60、3H(s);2.49、3H(d)
;2.17、1H(m);1.35、1H(m);0.
88、3H(d);0.84、3H(d)。D)次の条
件下に逆相HPLCにより分析したとき、7.1分の保
持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm(内
径)×250mm、 予備カラム:ブラウンリー・ラブス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲル;
5μm)、 溶離剤A:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、70:30(v/v)、pH7.0に調節、 溶離剤B:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、10:90(v/v)、pH7.0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、 流速:1.8ml/分、 紫外線検出器:254nm、 内部標準:クロラムフェニコール(Rt=3.6分)、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素51.
27%、水素4.02%、窒素14.94%、イオウ: F)m/Z1125質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/z質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった:6KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロールマ
トリックス;正のイオン化モード、 G)内部標準(0.00ppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D_6中で記録した125MHzにおける
次の信号の群を示す^1^3C−NMRスペクトル: 171.2;169.9;169.6;168.5;1
67.8;165.7;164.8;162.2;16
1.4;161.3;160.5;160.4;153
.5;150.4;150.1;149.5;149.
1;147.0;143.8;142.1;141.8
;141.4;141.0;139.6;131.8;
128.0(2炭素);127.7;127.6;12
6.9;126.8(2炭素);123.1;118.
7;116.4;73.9;67.4;58.7;58
.3;55.5;48.2;41.2;37.7;34
.1;25.9;18.5;18.0;12.0。 H)比旋光度[α]^2^0_D=+182.5、CH
Cl_3+10%のCH_3OH、 抗生物質GE2270因子Hの物理化学的特性A)次の
吸収最大を示す紫外線吸収スペクトル:▲数式、化学式
、表等があります▼ B)次の吸収最大を示す赤外吸収スペクトル(ヌジョー
ル法)(cm^−^1): 3700−3000;3000−2800(ヌジヨール
);1655;1590−1480;1460(ヌジヨ
ール);1375(ヌジヨール);1310;1220
;1190;1130−1000;980;930;8
40;820−680;720(ヌジヨール);640
。 C)内部標準(0.00ppm)としてTMSを使用し
てDMSO−D_6(ヘキサジューテロジメチルスルホ
キシド)中で記録した500MHzにおける次の信号の
群を示す^1H−NMRスペクトル;各信号の多重度を
、また、下に記録する(s=1重;d=二重;m=多重
;dd=二重の二重;br=広い一重): 0.83、d;0.87、d;1.30、m;2.16
、m;2.46、d;2.58、s;2.70、dd;
3.38、s;3.52、m;3.61、m;3.77
、dd;4.25、m;4.30、m;4.35、m;
4.47、m:4.88、m;4.97、s;4.99
、dd;5.20、;5.23、5.28、m;6.0
2、d;7.36、s;7.22−7.40、m;8.
26、d;8.28、s;8.42、d;8.43、m
;8.47、s;8.60、s;8.67、d;9.0
2、d。 D)次の条件下に逆相HPLCにより分析したとき、1
8.0分の保持時間(Rt): カラム:ウルトラスフェアー(Ultrasphare
)ODS(逆相シラン化シリカゲル;5μm)アルテッ
クス(Altex)(Beckman)4.6mm(内
径)×250mm、 予備カラム:ブラウンリー・ラブス(Brownlee
Labs)RP18(オクタデシルシランシリカゲル;
5μm)、 溶離剤A:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、70:30(v/v)、pH7.0に調節、 溶離剤B:アセトニトリル:18ミリモルのNaH_2
PO_4、10:90(v/v)、pH7.0に調節、 溶離のモード:45%から70%までの溶離剤B中の溶
離剤Aの直線の勾配、20分、 流速:1.8ml/分、 紫外線検出器:254nm、 内部標準:クロラムフェニコール(Rt=3.6分)、 E)元素分析、試料を不活性雰囲気下に約140℃にお
いて前以て乾燥後、これは次の組成を示す:炭素、水素
、窒素、イオウ: F)m/z1180質量単位においてプロトン化された
分子のイオンの低い質量のアイソトープを示すFAB−
MS分析;スペクトル中の800m/z質量単位より上
のすべての他のピーク(アイソトープのピークを計数し
ない)は、次の実験条件下にクラトス(Kratos)
MS−50二重焦点の質量分析計で分析したとき、20
%より低い分子のイオンであった:6KvにおけるXe
急速原子衝突;0.6mAの放電電流;グリセロールマ
トリックス;正のイオン化モード、 を有する、抗生物質GE2270因子A_1、A_2、
A_3またはH、およびそれらの許容されうる塩類から
選択される抗生物質。 2、工程: a)抗生物質GE2270因子Aを選択的に加水分解し
て抗生物質GE2270因子A_1、A_2またはA_
3を生成し、 b)抗生物質GE2270因子Aを還元性条件下に選択
的に切り放して抗生物質GE2270因子Hを生成し、 c)得られる生成物をそれ自体既知の方法に従い単離お
よび精製する、 からなる、上記第1項記載の化合物を調製する方法。 3、製剤学的に許容されうる担体と混合した上記第1項
記載の化合物からなる製剤。 4、薬物として使用するための上記第1項記載の化合物
。 5、抗微生物の用途のための薬物を調製するための上記
第1項記載の化合物の使用。
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