JPH037165A - リンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法 - Google Patents
リンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法Info
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Landscapes
- External Artificial Organs (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、リンパ球中の特定の亜群を分離・精製するた
めのリンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法に関
するものである。詳しく述べると、本発明はヒトあるい
は非ヒト動物山来の白血球分画から簡便、迅速かつ安価
に高い純度のリンパ球亜群を分離・精製するリンパ球亜
群の分離材、分離器および分離方法を示すものである。
めのリンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法に関
するものである。詳しく述べると、本発明はヒトあるい
は非ヒト動物山来の白血球分画から簡便、迅速かつ安価
に高い純度のリンパ球亜群を分離・精製するリンパ球亜
群の分離材、分離器および分離方法を示すものである。
リンパ球は、血球系の幹細胞から分化した免疫機能を担
う細胞であり、機能あるいは細胞膜形質等の点からいく
つかの亜群に分けられる。それらは、抗体を産生じ体液
性免疫を担う8128球、免疫調節性リンホカインや炎
症性リンホカイン等を産生じ細胞性免疫を担うTリンパ
球、およびヌル細胞等のリンパ球サブクラスであり、さ
らに、T、 8128球には、機能的に異なるサブセ
ットが存在する。近年、このような免疫学的特性の異な
るT、8128球等のサブクラスを、機能的損傷を最小
限にとどめ純粋に分離、精製、濃縮する技術が、広範囲
にわたる社会的分野で強く望まれている。例えば細胞学
、免疫学などの基礎研究においては生体内免疫系の生体
外(in vitro)での解析において、少なくとも
T、Bリンパ球Rfまでの分離が必要であり、臨床医学
における診断、治療等では、機能低下あるいは昂進した
特定分画の移入あるいは除去が必要であり、またリンパ
系の生理活性物質の取得においては、産生細胞分画の分
離、濃縮が重要である。
う細胞であり、機能あるいは細胞膜形質等の点からいく
つかの亜群に分けられる。それらは、抗体を産生じ体液
性免疫を担う8128球、免疫調節性リンホカインや炎
症性リンホカイン等を産生じ細胞性免疫を担うTリンパ
球、およびヌル細胞等のリンパ球サブクラスであり、さ
らに、T、 8128球には、機能的に異なるサブセ
ットが存在する。近年、このような免疫学的特性の異な
るT、8128球等のサブクラスを、機能的損傷を最小
限にとどめ純粋に分離、精製、濃縮する技術が、広範囲
にわたる社会的分野で強く望まれている。例えば細胞学
、免疫学などの基礎研究においては生体内免疫系の生体
外(in vitro)での解析において、少なくとも
T、Bリンパ球Rfまでの分離が必要であり、臨床医学
における診断、治療等では、機能低下あるいは昂進した
特定分画の移入あるいは除去が必要であり、またリンパ
系の生理活性物質の取得においては、産生細胞分画の分
離、濃縮が重要である。
(従来の技術)
Tリンパ球と8128球の分離方法としては、まずソデ
ィウムメトリゾエイトフイコール混液などの高密度等張
液を用いた比重遠心法により末梢血あるいは生体組織等
からリンパ球分画を得、続いてこれを分離処理してTリ
ンパ球と8128球に分離するのが従来−射的である。
ィウムメトリゾエイトフイコール混液などの高密度等張
液を用いた比重遠心法により末梢血あるいは生体組織等
からリンパ球分画を得、続いてこれを分離処理してTリ
ンパ球と8128球に分離するのが従来−射的である。
この後続する分離処理方法としては、大きく (1)細
胞膜表面の特異抗原、レセプター、免疫グロブリンを指
標とするもの、(2)物理的細胞分離および(3)吸着
クロマトグラフィーの3つに分けられる。
胞膜表面の特異抗原、レセプター、免疫グロブリンを指
標とするもの、(2)物理的細胞分離および(3)吸着
クロマトグラフィーの3つに分けられる。
(1)の方法としては、ロゼツト形成法、(抗体や免疫
複合体を結合させた)アフィニティータロマ!・グラフ
ィー、抗体、補体による細胞融解法、マイトジェン活性
化リンパ球の除去、フルオレセインアクチベイテッドセ
ルソータ−(F、A、C。
複合体を結合させた)アフィニティータロマ!・グラフ
ィー、抗体、補体による細胞融解法、マイトジェン活性
化リンパ球の除去、フルオレセインアクチベイテッドセ
ルソータ−(F、A、C。
S、)などが知られているが、これらの方法では、生物
学的に特異性の高い強固な結合や刺激を受けるため、イ
ンタクトな状態でTリンパ球もしくは8128球を回収
するのが難しく、かつ大量処理に向かない手法も多い。
学的に特異性の高い強固な結合や刺激を受けるため、イ
ンタクトな状態でTリンパ球もしくは8128球を回収
するのが難しく、かつ大量処理に向かない手法も多い。
また、(2)の方法としては、密度勾配遠心法、細胞電
気泳動法などが知られているが、Tリンパ球と8128
球との間に比重、表面電荷等の物理的諸物性に際だった
差がないため、分離回収された細胞の収率あるいは純度
に高い精度が要求できない。さらに(3)の方法として
は、ナイロン、テトロン、綿繊維等の異物に対するTリ
ンパ球と8128球の非特異的接着能力の差を利用する
ものが知られているが、高精度に分離細胞を得るために
は、吸着担体の牛胎児血清(Fe2)等による処理が必
要であることや流速などの実施条件の設定が難しく、マ
クロファージ等の不純物の混入も多い。加えて、これら
の従来の方法は、全般に、繁雑な操作、あるいは準備が
ともない、分離操作を行う場合の経験的技術的習熟が必
須であるという大きな課題も存在しているものであった
。
気泳動法などが知られているが、Tリンパ球と8128
球との間に比重、表面電荷等の物理的諸物性に際だった
差がないため、分離回収された細胞の収率あるいは純度
に高い精度が要求できない。さらに(3)の方法として
は、ナイロン、テトロン、綿繊維等の異物に対するTリ
ンパ球と8128球の非特異的接着能力の差を利用する
ものが知られているが、高精度に分離細胞を得るために
は、吸着担体の牛胎児血清(Fe2)等による処理が必
要であることや流速などの実施条件の設定が難しく、マ
クロファージ等の不純物の混入も多い。加えて、これら
の従来の方法は、全般に、繁雑な操作、あるいは準備が
ともない、分離操作を行う場合の経験的技術的習熟が必
須であるという大きな課題も存在しているものであった
。
(発明が解決しようとする問題点)
従って、本発明は、新規なリンパ球亜群の分離器、分離
器および分離方法を提供することを目的とする。本発明
はまた、細胞の諸活性に影響を与えることなく、簡便か
つ迅速に高収率、高純度でリンパ球を分離・精製するリ
ンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法を示すもの
である。本発明はさらに、大量処理に適した白血球分離
材、分離器および分離方法を提供することを目的とする
。
器および分離方法を提供することを目的とする。本発明
はまた、細胞の諸活性に影響を与えることなく、簡便か
つ迅速に高収率、高純度でリンパ球を分離・精製するリ
ンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法を示すもの
である。本発明はさらに、大量処理に適した白血球分離
材、分離器および分離方法を提供することを目的とする
。
(問題点を解決するための手段)
−に2諸目的は、リンパ球中のTリンパ球分画を他のリ
ンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親
水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体
物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の
分離材により達成される◇
。
ンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親
水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体
物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の
分離材により達成される◇
。
本発明はまた、前記アルキル鎖におけるメチレンの繰返
しが25以下であるリンパ球亜群の分離材を示すもので
ある。本発明はさらに前記アルキル鎖が直鎖アルキル鎖
であるリンパ球亜群の分離材を示すものである。本発明
はさらに、スペーサーが親水部と疎水部とを有するもの
であるリンパ球亜群の分離材を示すものである。本発明
はまた不溶性固体物質として粒径0.05〜5mmの粒
子状体を用いるものであるリンパ球亜群の分離材を示す
ものである。
しが25以下であるリンパ球亜群の分離材を示すもので
ある。本発明はさらに前記アルキル鎖が直鎖アルキル鎖
であるリンパ球亜群の分離材を示すものである。本発明
はさらに、スペーサーが親水部と疎水部とを有するもの
であるリンパ球亜群の分離材を示すものである。本発明
はまた不溶性固体物質として粒径0.05〜5mmの粒
子状体を用いるものであるリンパ球亜群の分離材を示す
ものである。
」−記諸目的はまた、リンパ球中のTリンパ球分画を他
のリンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を
、親水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性
固体物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜
群の分離材を充填したカラムを有することを特徴とする
リンパ球亜群の分離器により達成される。
のリンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を
、親水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性
固体物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜
群の分離材を充填したカラムを有することを特徴とする
リンパ球亜群の分離器により達成される。
本発明はまたカラムの出入口と分離材層との間にはリン
パ球分画液中の細胞成分は通過するが分離材は通過でき
ない網目を何するフィルターを備えてなるものであるリ
ンパ球亜群の分離器を示すものである。
パ球分画液中の細胞成分は通過するが分離材は通過でき
ない網目を何するフィルターを備えてなるものであるリ
ンパ球亜群の分離器を示すものである。
、に2諸目的はさらに、リンパ球中のTリンパ球分画を
他のリンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖
を、親水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶
性固体物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球
亜群の分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリンパ
球分画を接触させ、−f、x泥分離材にTリンパ球を効
率よく捕捉させることでBリンパ球に富む非捕捉分画液
を分離回収することを特徴とするリンパ球亜群の分離方
法を示すものである。
他のリンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖
を、親水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶
性固体物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球
亜群の分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリンパ
球分画を接触させ、−f、x泥分離材にTリンパ球を効
率よく捕捉させることでBリンパ球に富む非捕捉分画液
を分離回収することを特徴とするリンパ球亜群の分離方
法を示すものである。
(作用)
本発明は、リンパ球中のTリンパ球分画を他のリンパ球
分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親水的な
分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体物質表
面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の分離材
を用いるために、ヒトあるいは非ヒト動物山来リンパ球
浮遊液を直接上記分離材に接触させただけで、効率よ<
、T、Bリンパ球を分離・精製あるいは除去することが
できるものである。
分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親水的な
分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体物質表
面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の分離材
を用いるために、ヒトあるいは非ヒト動物山来リンパ球
浮遊液を直接上記分離材に接触させただけで、効率よ<
、T、Bリンパ球を分離・精製あるいは除去することが
できるものである。
すなわち、本発明のリンパ球亜群の分離材にリンパ球浮
遊液を接触させると、リンパ球の中でも異物に対する接
着において疎水的相互作用の寄与が比較的高いTリンパ
球は、前記吸着剤の末端部に存在する疎水性の高いアル
キル鎖に効率よく吸着され、・一方、異物に対する疎水
的相互作用の寄与がより低いBリンパ球は、水不溶性担
体と末端部のアルキル鎖との間に介在するスペーサーが
、その分子運動によって細胞が分離材表面に接近して相
互作用することを妨げるために、吸着材に対する付着が
抑制され、Tリンパ球の選択的な付着が達成されるもの
と考えられる。
遊液を接触させると、リンパ球の中でも異物に対する接
着において疎水的相互作用の寄与が比較的高いTリンパ
球は、前記吸着剤の末端部に存在する疎水性の高いアル
キル鎖に効率よく吸着され、・一方、異物に対する疎水
的相互作用の寄与がより低いBリンパ球は、水不溶性担
体と末端部のアルキル鎖との間に介在するスペーサーが
、その分子運動によって細胞が分離材表面に接近して相
互作用することを妨げるために、吸着材に対する付着が
抑制され、Tリンパ球の選択的な付着が達成されるもの
と考えられる。
さらに、本発明の分離材は、有機合成された物質を結合
させたものであるために、安定性が高く、複数回のオー
トクレーブ処理にも耐え、また経済性、多量生産性の面
でも優れたものとなる。さらに、本発明の分離材を用い
ての分離操作に廃して、リンパ球浮遊液中には、ウシ胎
児血清などを特に添加する必要もなく (なお、場合に
よって添加することは可能である。)、滅菌処理された
分離材にリンパ球浮遊液を接触させるだけで無菌的にB
リンパ球に富む非捕捉分画液を分離回収することができ
、血清を用いなくとも回収細胞の生存率は常に97%以
上を維持することからリンパ球に対する刺激も極めて低
いことが示唆されるものである。
させたものであるために、安定性が高く、複数回のオー
トクレーブ処理にも耐え、また経済性、多量生産性の面
でも優れたものとなる。さらに、本発明の分離材を用い
ての分離操作に廃して、リンパ球浮遊液中には、ウシ胎
児血清などを特に添加する必要もなく (なお、場合に
よって添加することは可能である。)、滅菌処理された
分離材にリンパ球浮遊液を接触させるだけで無菌的にB
リンパ球に富む非捕捉分画液を分離回収することができ
、血清を用いなくとも回収細胞の生存率は常に97%以
上を維持することからリンパ球に対する刺激も極めて低
いことが示唆されるものである。
以下、本発明を実施態様に基づきより詳細に説明する。
本発明のリンパ球亜群の分離材は、リンパ球中のTリン
パ球分画を他のリンパ球分画よりも優先的に吸着させる
アルキル鎖を、親水的な分子構造をAむスペーサーを介
して水不溶性固体物質表面に固定化したことを特徴とす
るものである。
パ球分画を他のリンパ球分画よりも優先的に吸着させる
アルキル鎖を、親水的な分子構造をAむスペーサーを介
して水不溶性固体物質表面に固定化したことを特徴とす
るものである。
本発明において用いられる疎水的アルキル鎖としては、
種々の鎖長のアルキル鎖を用いることができ、場合によ
っては分岐状のものであってもよいが、好ましくは、メ
チレンの繰返しが25以下の直鎖状のもの、特にメチレ
ンの繰返しが2〜14程度のものがより高い特性を付与
することができるために望ましい。またその原料として
も、アルキルアミン類、脂肪酸類、アルコール類やこれ
らを含む単純脂質や複合脂質などの各種の化合物を用い
ることができる。しかしながら、これらの原料化合物の
有するOH基、NH2基、C0OH基などの親水性基は
後述するスペーサーとの結合において消費され、末端側
にはアルキル鎖が露出していることが必要である。
種々の鎖長のアルキル鎖を用いることができ、場合によ
っては分岐状のものであってもよいが、好ましくは、メ
チレンの繰返しが25以下の直鎖状のもの、特にメチレ
ンの繰返しが2〜14程度のものがより高い特性を付与
することができるために望ましい。またその原料として
も、アルキルアミン類、脂肪酸類、アルコール類やこれ
らを含む単純脂質や複合脂質などの各種の化合物を用い
ることができる。しかしながら、これらの原料化合物の
有するOH基、NH2基、C0OH基などの親水性基は
後述するスペーサーとの結合において消費され、末端側
にはアルキル鎖が露出していることが必要である。
また、本発明の分離材において用いられる親水的な分子
構造を含むスペーサーとは、分子状をなし、水不溶性担
体表面と末端のアルキル鎖との間に介在して任意の長さ
を設けることのできるものであって、末端に存在する疎
水的なアルキル鎖どうしの強い分子間相互作用を抑制す
るものであればどのような貴格構造を有するものでもよ
い。例えば、カルボキシル基、スルホン基および種々の
アミン類などの解離性の官能基、および水酸基、または
エーテル結合などのうち、いずれかのものがスペーサー
分子内に単独あるいは複合して存在していればよい。水
不溶性担体とアルキル鎖との間にこのようなスペーサー
が介在していると、スペーサーの分子運動性によって、
細胞が分離材表面に接近して相互作用することが妨げら
れ、この結果、分離材との相互作用力の弱いBリンパ球
の接層が優先的に抑制されるものと考えられる。
構造を含むスペーサーとは、分子状をなし、水不溶性担
体表面と末端のアルキル鎖との間に介在して任意の長さ
を設けることのできるものであって、末端に存在する疎
水的なアルキル鎖どうしの強い分子間相互作用を抑制す
るものであればどのような貴格構造を有するものでもよ
い。例えば、カルボキシル基、スルホン基および種々の
アミン類などの解離性の官能基、および水酸基、または
エーテル結合などのうち、いずれかのものがスペーサー
分子内に単独あるいは複合して存在していればよい。水
不溶性担体とアルキル鎖との間にこのようなスペーサー
が介在していると、スペーサーの分子運動性によって、
細胞が分離材表面に接近して相互作用することが妨げら
れ、この結果、分離材との相互作用力の弱いBリンパ球
の接層が優先的に抑制されるものと考えられる。
このようなスペーサーは、分子鎖の両端に有していたエ
ポキシ基やイソチオシアネート基等の公知の反応性官能
基を水不溶性担体表面および前記のごとき末端アルキル
鎖を形成する化合物にそれぞれ反応させて分子鎖の一端
において水不溶性担体表面に、他端においてアルキル鎖
に共有結合しているものである。またジアミン系、ジカ
ルボン酸系のスペーサー分子をビスエポキシド、ジイソ
シアネート、ジアルデヒドなどのカップリング剤で固定
化しても同等の効果を維持する。
ポキシ基やイソチオシアネート基等の公知の反応性官能
基を水不溶性担体表面および前記のごとき末端アルキル
鎖を形成する化合物にそれぞれ反応させて分子鎖の一端
において水不溶性担体表面に、他端においてアルキル鎖
に共有結合しているものである。またジアミン系、ジカ
ルボン酸系のスペーサー分子をビスエポキシド、ジイソ
シアネート、ジアルデヒドなどのカップリング剤で固定
化しても同等の効果を維持する。
このうち、特に、メチレンの繰返しが2〜8個である直
鎖アルキルジオール、エチレンオキシドの繰返しが2〜
25である直鎖エーテル、あるいはアミン含有率が85
%以下であるジエチレントリアミン、トリエチレンテト
ラミン等の直鎖状アミン含有化合物などが取扱いが容易
で好適に用いられる。これらは複合して用いることも可
能であり、むしろより良好な特性を得られる場合が多い
。
鎖アルキルジオール、エチレンオキシドの繰返しが2〜
25である直鎖エーテル、あるいはアミン含有率が85
%以下であるジエチレントリアミン、トリエチレンテト
ラミン等の直鎖状アミン含有化合物などが取扱いが容易
で好適に用いられる。これらは複合して用いることも可
能であり、むしろより良好な特性を得られる場合が多い
。
なお、より疎水的な水不溶性固体物質を担体として用い
る場合、アルキル鎖との疎水結合によって分子運動性が
制限され、Bリンパ球の付着抑制効果が失われることが
あるので、その場合より親水的なスペーサーを選択する
必要がある。
る場合、アルキル鎖との疎水結合によって分子運動性が
制限され、Bリンパ球の付着抑制効果が失われることが
あるので、その場合より親水的なスペーサーを選択する
必要がある。
本発明において用いられる担体としての水不溶性固体物
質としては、アガロース系、デキストラン系、セルロー
ス系、ポリアクリルアミド系、ポリビニルアルコール系
、ポリビニルピロリドン系、ポリアクリロニトリル系、
スチレン−ジビニルベンゼン共重合体、ポリスチレン系
、アクリル酸エステル系、メタクリル酸エステル系、ポ
リエチレン系、ポリプロピレン系、ポリ4−フッ化エチ
レン系、エチレン−酢酸ビニル共重合体系、ポリアミド
系、ポリカーボネート系、ポリフッ化ビニリデン系、ポ
リビニルホルマール系、ボリアリレート系、ポリエーテ
ルスルフォン系などのh″機高分子、ガラス系、アルミ
ナ系、チタン系、活性炭系、セラミックス系などの無機
物などが挙げられるが、特に細胞接着性の高すぎないも
の、すなわち、細胞−担体間の相互作用が比較的穏やか
なものが好まれる。また、生体由来の天然有機高分子で
あるコラーゲン、キトサン等も用いられ得る。このよう
な水不溶性固体物質の形態としては、特に限定されず、
平板上のものも用いることができるが、好ましくは、粒
子状、特に平均粒径が0.05〜5mmの粒子状のもの
が望ましい。なお平均粒径はJ l5−Z−8801に
規定されるフルイを用いて分級した後、各級の上限粒径
と下限粒径の中間値を各級の粒径とし、その重量平均と
して算出したものである。さらに粒子形状は細胞に物理
的な損傷を与えにくいことや均一な粒子を寿やすい等の
点から球形のものが好ましい。
質としては、アガロース系、デキストラン系、セルロー
ス系、ポリアクリルアミド系、ポリビニルアルコール系
、ポリビニルピロリドン系、ポリアクリロニトリル系、
スチレン−ジビニルベンゼン共重合体、ポリスチレン系
、アクリル酸エステル系、メタクリル酸エステル系、ポ
リエチレン系、ポリプロピレン系、ポリ4−フッ化エチ
レン系、エチレン−酢酸ビニル共重合体系、ポリアミド
系、ポリカーボネート系、ポリフッ化ビニリデン系、ポ
リビニルホルマール系、ボリアリレート系、ポリエーテ
ルスルフォン系などのh″機高分子、ガラス系、アルミ
ナ系、チタン系、活性炭系、セラミックス系などの無機
物などが挙げられるが、特に細胞接着性の高すぎないも
の、すなわち、細胞−担体間の相互作用が比較的穏やか
なものが好まれる。また、生体由来の天然有機高分子で
あるコラーゲン、キトサン等も用いられ得る。このよう
な水不溶性固体物質の形態としては、特に限定されず、
平板上のものも用いることができるが、好ましくは、粒
子状、特に平均粒径が0.05〜5mmの粒子状のもの
が望ましい。なお平均粒径はJ l5−Z−8801に
規定されるフルイを用いて分級した後、各級の上限粒径
と下限粒径の中間値を各級の粒径とし、その重量平均と
して算出したものである。さらに粒子形状は細胞に物理
的な損傷を与えにくいことや均一な粒子を寿やすい等の
点から球形のものが好ましい。
本発明のリンパ球亜群の分離器は、上記のごときリンパ
球中のTリンパ球分画を他のリンパ球分画よりも優先的
に吸着させるアルキル鎖を、親水的な分子構造を含むス
ペーサーを介して水不溶性固体物質表面に固定化したこ
とを特徴とする分離材を充填したカラムを有することを
特徴とするものである。
球中のTリンパ球分画を他のリンパ球分画よりも優先的
に吸着させるアルキル鎖を、親水的な分子構造を含むス
ペーサーを介して水不溶性固体物質表面に固定化したこ
とを特徴とする分離材を充填したカラムを有することを
特徴とするものである。
本発明のリンパ球亜群の分離材をリンパ球浮遊液に接触
させるには、例えば、平板状のリンパ球亜群の分離材に
リンパ球浮遊液を接触させて行なうことも可能であるが
、上記のごとき分離材の表面上に存在して細胞吸着に作
用する疎水性サイ!・の絶対量や十分な細胞吸着スペー
スを5i寿するという点から、粒子状の分離材を充填し
てなるカラムを有する分離器を用いて接触させることが
望ましい。
させるには、例えば、平板状のリンパ球亜群の分離材に
リンパ球浮遊液を接触させて行なうことも可能であるが
、上記のごとき分離材の表面上に存在して細胞吸着に作
用する疎水性サイ!・の絶対量や十分な細胞吸着スペー
スを5i寿するという点から、粒子状の分離材を充填し
てなるカラムを有する分離器を用いて接触させることが
望ましい。
この粒子状の分離材を充填してなるカラムをHするリン
パ球亜群の分離器において、カラム容器を構成する材質
としては、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリカーボ
ネート、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の
゛合成樹脂、ガラスおよびステンレス等の金属などが使
用できるが、オー!・クレープ滅菌が可能で取り扱いや
すいポリプロピレンやポリカーボネート等が特に好まし
い。
パ球亜群の分離器において、カラム容器を構成する材質
としては、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリカーボ
ネート、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等の
゛合成樹脂、ガラスおよびステンレス等の金属などが使
用できるが、オー!・クレープ滅菌が可能で取り扱いや
すいポリプロピレンやポリカーボネート等が特に好まし
い。
またこのリンパ球亜群の分離器のカラムの出入口とリン
パ球亜群の分離材を充填した分離材層との間には、リン
パ球浮遊液中の細胞成分は通過するが分離材は通過でき
ない網目を有するフィルターを備えていることが好まし
く、このフィルターを構成する材質としては、生理学的
に不活性で強度の高いものであればよいが、特にポリエ
ステル、ポリアミドであることが好まれる。
パ球亜群の分離材を充填した分離材層との間には、リン
パ球浮遊液中の細胞成分は通過するが分離材は通過でき
ない網目を有するフィルターを備えていることが好まし
く、このフィルターを構成する材質としては、生理学的
に不活性で強度の高いものであればよいが、特にポリエ
ステル、ポリアミドであることが好まれる。
第1図は本発明のリンパ球亜群の分離器の一実施態様の
使用状態における模式図である。第1図に示す実施態様
において、カラム1は、両端部が開口され、かつ下端開
口部のやや上方の部位より流出口5となる下端開口部ま
では漸次縮径され先細とされた管形状のものであり、さ
らにこの先細部7には三方活栓4が備えられ、流出口5
に至る流路を開閉可能なものとしている。このカラム1
の前記先細部7より上方の実径部6内には−1−記のご
とき本発明のリンパ球亜群の分離器2が充填されており
、この分離材2は、カラム1の大径部6のに三方に設け
られたフィルター3および下端に設けられたフィルター
3′によってカラム1内に保持され分離材層を形成して
いる。
使用状態における模式図である。第1図に示す実施態様
において、カラム1は、両端部が開口され、かつ下端開
口部のやや上方の部位より流出口5となる下端開口部ま
では漸次縮径され先細とされた管形状のものであり、さ
らにこの先細部7には三方活栓4が備えられ、流出口5
に至る流路を開閉可能なものとしている。このカラム1
の前記先細部7より上方の実径部6内には−1−記のご
とき本発明のリンパ球亜群の分離器2が充填されており
、この分離材2は、カラム1の大径部6のに三方に設け
られたフィルター3および下端に設けられたフィルター
3′によってカラム1内に保持され分離材層を形成して
いる。
また本発明の白血球分離法は、上記のごときリンパ球中
のTリンパ球分画を他のリンパ球分画よりも優先的に吸
着させるアルキル鎖を、親水的な分子構造を含むスペー
サーを介して水不溶性固体物質表面に固定化したことを
特徴とする分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリ
ンパ球分画を接触させ、上記分離材にTリンパ球を効率
よく捕捉゛させることでBリンパ球に富む非捕捉分画液
を分離回収することを特徴とするものである。
のTリンパ球分画を他のリンパ球分画よりも優先的に吸
着させるアルキル鎖を、親水的な分子構造を含むスペー
サーを介して水不溶性固体物質表面に固定化したことを
特徴とする分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリ
ンパ球分画を接触させ、上記分離材にTリンパ球を効率
よく捕捉゛させることでBリンパ球に富む非捕捉分画液
を分離回収することを特徴とするものである。
本発明のリンパ球亜群の分離方法を、前記第1図に示す
分離器を用いた場合を例にとり、より具体的に説明する
と、まず平衡塩溶液に浮遊させたリンパ球液あるいは動
物血漿に再浮遊させたリンパ球液などのリンパ球浮遊液
を、リンパ球亜群分離材2を充填してなるカラム1内に
注入し、リンパ球浮遊液をリンパ球亜群分離材2と接触
さ゛せる。
分離器を用いた場合を例にとり、より具体的に説明する
と、まず平衡塩溶液に浮遊させたリンパ球液あるいは動
物血漿に再浮遊させたリンパ球液などのリンパ球浮遊液
を、リンパ球亜群分離材2を充填してなるカラム1内に
注入し、リンパ球浮遊液をリンパ球亜群分離材2と接触
さ゛せる。
ここで、リンパ球浮遊液の通液方法は、特に限定される
ものではなく、必要に応じて連続あるいは非連続にして
もよい。
ものではなく、必要に応じて連続あるいは非連続にして
もよい。
このようにしてカラム1内において、リンパ球浮遊液を
分離材2と所定時間接触させた後、各種ポンプあるいは
ピペット等を用いてカラム1内にリンス液を注入し、三
方活栓4を開いて、流出口5から静かに洗浄液を落下さ
せ、試験管8などで回収する。
分離材2と所定時間接触させた後、各種ポンプあるいは
ピペット等を用いてカラム1内にリンス液を注入し、三
方活栓4を開いて、流出口5から静かに洗浄液を落下さ
せ、試験管8などで回収する。
これにより分離材2に吸着されなかったBリンパ球を多
く含む非捕捉分画を回収することができる。
く含む非捕捉分画を回収することができる。
なお、この洗浄操作の際用いられるリンス液としては、
分離材2に吸着された細胞成分を溶離することなく、吸
着されなかった細胞成分を洗い落とすことを目的とする
ものであるために、活性の低いものが望まれ、平衡塩溶
液、細胞培養液等が用いられ、好ましくは2価カチオン
フリーの平衡塩溶液、例えばハンクス平衡塩溶液(Il
ank’s batanccd 5alt 5olut
ion: IIBBS )などが用いられる。
分離材2に吸着された細胞成分を溶離することなく、吸
着されなかった細胞成分を洗い落とすことを目的とする
ものであるために、活性の低いものが望まれ、平衡塩溶
液、細胞培養液等が用いられ、好ましくは2価カチオン
フリーの平衡塩溶液、例えばハンクス平衡塩溶液(Il
ank’s batanccd 5alt 5olut
ion: IIBBS )などが用いられる。
(実施例)
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
実施例1
水不溶性固体物質として、オキシラン基を有するキトサ
ンビーズ[キトパール EP−810(IEI)−C)
、φ300μm、オキシラン基affi0. 12mm
ol/g(Wel) 富士紡績■製]を用い、スペー
サーとしてトリエチレンテトラミン(T E T)とブ
タンジオール(BDO)を介して、メチレンの繰返しが
2であるアルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
ンビーズ[キトパール EP−810(IEI)−C)
、φ300μm、オキシラン基affi0. 12mm
ol/g(Wel) 富士紡績■製]を用い、スペー
サーとしてトリエチレンテトラミン(T E T)とブ
タンジオール(BDO)を介して、メチレンの繰返しが
2であるアルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
まず、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて0.
2MのTET溶液を調製し、蒸溜水洗浄したEP−Cを
0. 3〜0. 5g(wcl)/mlの割合で投入し
した。これを80°Cの水浴中で3時間加温した後に、
ブラッドミキサー(萱垣医理科T業製、BM−101)
を使用して室温で約20時間撹拌した。次に反応物を蒸
留水で洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用
いて調製された5 w/w%のブタンジオールジグリシ
ジルエーテル溶液に添加し、8,0℃の水浴中で3時間
加温した後にブラッドミキサーを使用して室温で約20
時間攪拌した。この後、0.2Mの炭酸緩衝液(pH1
0)を用いて調製された0、2Mのエチルアミン溶液に
洗浄された反応物を添加し、80°Cの水浴中で3時間
加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約2
0時間攪拌した。次いで、未反応のオキシラン基を除去
するため、濃度1M (pH8)のエタノールアミン溶
液に蒸留水洗浄した固定化ビーズを添加し、約20時間
撹拌した。最後に、酢酸緩衝液(0,1M pH4)
、リン酸緩衝液(0,1M pH7,4)を順次用1
.5121°C130分でオートクレーブ処理した。
2MのTET溶液を調製し、蒸溜水洗浄したEP−Cを
0. 3〜0. 5g(wcl)/mlの割合で投入し
した。これを80°Cの水浴中で3時間加温した後に、
ブラッドミキサー(萱垣医理科T業製、BM−101)
を使用して室温で約20時間撹拌した。次に反応物を蒸
留水で洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用
いて調製された5 w/w%のブタンジオールジグリシ
ジルエーテル溶液に添加し、8,0℃の水浴中で3時間
加温した後にブラッドミキサーを使用して室温で約20
時間攪拌した。この後、0.2Mの炭酸緩衝液(pH1
0)を用いて調製された0、2Mのエチルアミン溶液に
洗浄された反応物を添加し、80°Cの水浴中で3時間
加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約2
0時間攪拌した。次いで、未反応のオキシラン基を除去
するため、濃度1M (pH8)のエタノールアミン溶
液に蒸留水洗浄した固定化ビーズを添加し、約20時間
撹拌した。最後に、酢酸緩衝液(0,1M pH4)
、リン酸緩衝液(0,1M pH7,4)を順次用1
.5121°C130分でオートクレーブ処理した。
このようにして得られた分離材をハンクス平衡塩溶液(
HBSSSpH7,4)に分散させ、ポリプロピレン製
カラムに湿潤状態で1.5mlとなるように充填した。
HBSSSpH7,4)に分散させ、ポリプロピレン製
カラムに湿潤状態で1.5mlとなるように充填した。
次に、マウス(ICR,8M令以上)の1坪臓より採取
したリンパ球をRPMI 1640 (日永製薬■製
)に懸濁させ濃縮し、2X107個以上の細胞を含む懸
濁液全体を分離材に浸した。そしてこのカラム内を1m
1以上のRPMI 1640を用いて直ちに洗浄しリ
ンパ球を回収した。
したリンパ球をRPMI 1640 (日永製薬■製
)に懸濁させ濃縮し、2X107個以上の細胞を含む懸
濁液全体を分離材に浸した。そしてこのカラム内を1m
1以上のRPMI 1640を用いて直ちに洗浄しリ
ンパ球を回収した。
回収された分画中の細胞数、単球とリンパ球の割合、お
よびTSBリンパ球の割合は、自動血球計数器(オルソ
インスツルメンツ[OR1’lIOINSTRLIM
EN’l’S]社製、ELT−8)と自動細胞分析装置
(日本分光■製、Cyto ACE−100)と螢光
標識された抗マウスIg抗体(ベクトン ディッキンソ
ン社製)を用いて評価した。これらの測定結果に基づき
分離材への細胞付着率を算出した。結果を第1表に示す
。
よびTSBリンパ球の割合は、自動血球計数器(オルソ
インスツルメンツ[OR1’lIOINSTRLIM
EN’l’S]社製、ELT−8)と自動細胞分析装置
(日本分光■製、Cyto ACE−100)と螢光
標識された抗マウスIg抗体(ベクトン ディッキンソ
ン社製)を用いて評価した。これらの測定結果に基づき
分離材への細胞付着率を算出した。結果を第1表に示す
。
実施例2
エチルアミンに代えてヘキシルアミンを用いる以外は実
施例1の方法に準じて、メチレンの繰返しが6である直
鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作
成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。
施例1の方法に準じて、メチレンの繰返しが6である直
鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作
成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。
得られた結果を第1表に示す。
実施例3
エチルアミンに代えてデシルアミンを用い、また溶媒を
100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例1
の方法に準じて、メチレンの繰返しが10である直鎖ア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成し
、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得ら
れた結果を第1表に示す。
100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例1
の方法に準じて、メチレンの繰返しが10である直鎖ア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成し
、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得ら
れた結果を第1表に示す。
実施例4
デシルアミンに代えてテトラデシルアミンを用いる以外
は実施例3の方法に準じて、メチレンの繰返しが14で
ある直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビー
ズを作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行な
った。得られた結果を第1表に示す。
は実施例3の方法に準じて、メチレンの繰返しが14で
ある直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビー
ズを作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行な
った。得られた結果を第1表に示す。
比較例1
未処理のキトサンビーズ[キトパール 3010(C1
1)、φ300μm、富士紡績■製]そのものを用い、
実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得られ
た結果を第1表に示す。
1)、φ300μm、富士紡績■製]そのものを用い、
実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得られ
た結果を第1表に示す。
比較例2
オキシラン基を有するキ!・サンビーズしキトパール
臼)−810(IEP−C)、φ300μm、オキシラ
ン基3量0. 12mmol/g(wet) 富士紡
績銖製]を濃度LM (pH8)のエタノールアミン溶
液に添加し、約20時間室温で攪拌した。この後、酢酸
緩衝液(0,1M pH4)、燐酸緩衝液(0゜LM
pH7,4)を順次用い、121℃にて20分間オ
ートクレーブ処理した。このようにして得られた末端に
−CH2CH20Hを有するモノエタノールアミン固定
化ビーズを用いて実施例1と同様のリンパ球分離実験を
行なった。得られた結果を第1表に示す。
臼)−810(IEP−C)、φ300μm、オキシラ
ン基3量0. 12mmol/g(wet) 富士紡
績銖製]を濃度LM (pH8)のエタノールアミン溶
液に添加し、約20時間室温で攪拌した。この後、酢酸
緩衝液(0,1M pH4)、燐酸緩衝液(0゜LM
pH7,4)を順次用い、121℃にて20分間オ
ートクレーブ処理した。このようにして得られた末端に
−CH2CH20Hを有するモノエタノールアミン固定
化ビーズを用いて実施例1と同様のリンパ球分離実験を
行なった。得られた結果を第1表に示す。
比較例3
不溶性担体としてオキシラン基を有するキトサンビーズ
[キトパール El)−810(El)−C)、φ30
0pm、オキシラン基台ff1O,12o+ll1ol
/g(wet)富士紡績■製]を用い、スペーサーであ
るトリエチレンテトラミンだけを結合させた分離材を実
施例1の方法に準じて作成し、実施例1と同様のリンパ
球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示す。
[キトパール El)−810(El)−C)、φ30
0pm、オキシラン基台ff1O,12o+ll1ol
/g(wet)富士紡績■製]を用い、スペーサーであ
るトリエチレンテトラミンだけを結合させた分離材を実
施例1の方法に準じて作成し、実施例1と同様のリンパ
球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示す。
比較例4
比較例3で調製された反応物を、0.2Mの炭酸緩衝液
(pH10)を用いて調製された5 w/v%のブタン
ジオールグリシジルエーテル溶液に添加し、80℃の水
浴中で3時間加温した後にブラッドミキサーを使用して
室温で約20時間攪拌した。次に、濃度LM (pH8
)のエタノールアミン溶液に蒸留水洗浄した固定化ビー
ズを添加し、約20時間室温で撹拌した。このようにし
て末端が−CH2CHt OHであるスペーサーを固定
化した分離材を用いて実施例1と同様のリンパ球分離実
験を行なった。得られた結果を第1表に示す。
(pH10)を用いて調製された5 w/v%のブタン
ジオールグリシジルエーテル溶液に添加し、80℃の水
浴中で3時間加温した後にブラッドミキサーを使用して
室温で約20時間攪拌した。次に、濃度LM (pH8
)のエタノールアミン溶液に蒸留水洗浄した固定化ビー
ズを添加し、約20時間室温で撹拌した。このようにし
て末端が−CH2CHt OHであるスペーサーを固定
化した分離材を用いて実施例1と同様のリンパ球分離実
験を行なった。得られた結果を第1表に示す。
比較例5
不溶性担体としてオキシラン基をaするキトサンビーズ
[キトパール CP−810(IEP−C)、φ300
μm、オキシラン基台ff1o、 12mmol/
g(wet)富士紡績側製]を用い、これに直接メチレ
ンの繰返しが4である直鎖アルキル鎖を固定化した。
[キトパール CP−810(IEP−C)、φ300
μm、オキシラン基台ff1o、 12mmol/
g(wet)富士紡績側製]を用い、これに直接メチレ
ンの繰返しが4である直鎖アルキル鎖を固定化した。
まず、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて0.
2Mのブチルアミン溶液を調製し、蒸溜水洗浄したEP
−Cを添加した。これを80℃の水浴中で3時間加温し
た後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間
撹拌した。次に濃度LM(pH8)のエタノールアミン
溶液に蒸溜水洗浄した反応物を添加し、約20時間室温
で攪拌し残存するグリシジル基をブロックした。最後に
、酢酸緩衝液(0,1M pH4) 、リン酸緩衝液
(0,1M pH7,4)を順次用い、121℃、3
0分でオートクレーブ処理した。
2Mのブチルアミン溶液を調製し、蒸溜水洗浄したEP
−Cを添加した。これを80℃の水浴中で3時間加温し
た後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間
撹拌した。次に濃度LM(pH8)のエタノールアミン
溶液に蒸溜水洗浄した反応物を添加し、約20時間室温
で攪拌し残存するグリシジル基をブロックした。最後に
、酢酸緩衝液(0,1M pH4) 、リン酸緩衝液
(0,1M pH7,4)を順次用い、121℃、3
0分でオートクレーブ処理した。
このようにして得られた分離材を、実施例1と同様のリ
ンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示
す。
ンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示
す。
比較例6
ブチルアミンに代えてオクチルアミンを用い、また溶媒
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は比較例
5の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖ア
ルキル鎖を直接固定化したビーズを作成し、実施例1と
同様のリンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第
1表に示す。
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は比較例
5の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖ア
ルキル鎖を直接固定化したビーズを作成し、実施例1と
同様のリンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第
1表に示す。
比較例7
オクチルアミンに代えてアミノドデカンを用いる以外は
比較例6の方法に準じて、メチレンの繰返しが12であ
る直鎖アルキル鎖を直接固定化したビーズを作成し、実
施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得られた
結果を第1表に示す。
比較例6の方法に準じて、メチレンの繰返しが12であ
る直鎖アルキル鎖を直接固定化したビーズを作成し、実
施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得られた
結果を第1表に示す。
実施例5
水不溶性担体としてキトサンビーズ[キトパール 30
10(C11)、φ300μm、富士紡績■製]を用い
、スペーサーとしてヘキサンジオール(HDO)を介し
て、メチレンの繰返しが4であるアルキル鎖を疎水性末
端として固定化した。
10(C11)、φ300μm、富士紡績■製]を用い
、スペーサーとしてヘキサンジオール(HDO)を介し
て、メチレンの繰返しが4であるアルキル鎖を疎水性末
端として固定化した。
まず、30 mo1%水酸化ナトリウムをAむジメチル
ホルムアミド溶液を用い5 a+o1%ヘキサンジオー
ルジグリシジルエーテル溶液を調製し、蒸溜水洗浄され
たCHを添加した。これを80℃の水浴中で3時間加温
した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約20時
間撹拌した。次に、0゜2Mの炭酸緩衝液(pH10)
を用いて調製された0、2Mのブチルアミン溶液に洗浄
された反応物を添加し、80℃の水浴中で3時間加温し
た後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間
攪拌した。次いで、未反応のオキシラン基を除去するた
め、濃度IM(pH8)のエタノールアミン溶液に蒸留
水洗浄した固定化ビーズを添加し、約20時間撹拌した
。最後に、酢酸緩衝液(C1。
ホルムアミド溶液を用い5 a+o1%ヘキサンジオー
ルジグリシジルエーテル溶液を調製し、蒸溜水洗浄され
たCHを添加した。これを80℃の水浴中で3時間加温
した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約20時
間撹拌した。次に、0゜2Mの炭酸緩衝液(pH10)
を用いて調製された0、2Mのブチルアミン溶液に洗浄
された反応物を添加し、80℃の水浴中で3時間加温し
た後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間
攪拌した。次いで、未反応のオキシラン基を除去するた
め、濃度IM(pH8)のエタノールアミン溶液に蒸留
水洗浄した固定化ビーズを添加し、約20時間撹拌した
。最後に、酢酸緩衝液(C1。
IM p)14) 、リン酸緩衝液(0,1M p
H7,4)を順次用い121℃、30分でオートクレー
プ処理した。
H7,4)を順次用い121℃、30分でオートクレー
プ処理した。
このようにして得られた分離材を、実施例1と同様のリ
ンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示
す。
ンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示
す。
実施例6
ブチルアミンに代えてオクチルアミンを用い、また溶媒
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例
5の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖ア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成し
、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得ら
れた結果を第1表に示す。
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例
5の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖ア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成し
、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得ら
れた結果を第1表に示す。
実施例7
オクチルアミンに代えてアミノドデカンを用いる以外は
実施例6の方法に準じて、メチレンの繰返しが12であ
る直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズ
を作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なっ
た。得られた結果を第1表に示す。
実施例6の方法に準じて、メチレンの繰返しが12であ
る直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズ
を作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なっ
た。得られた結果を第1表に示す。
実施例8
水不溶性担体としてキトサンビーズ[キトパール 30
10(C1+)、φ300μmS富士紡績側製]を用い
、スペーサーとしてヘキサンジオール(HDO)、トリ
エチレンテトラミン(T E T)およびブタンジオー
ル(BDO)を介して、メチレンの繰返しが4であるア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
10(C1+)、φ300μmS富士紡績側製]を用い
、スペーサーとしてヘキサンジオール(HDO)、トリ
エチレンテトラミン(T E T)およびブタンジオー
ル(BDO)を介して、メチレンの繰返しが4であるア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
まず、実施例5で調製されたHDO処理処理C前留水で
洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて調
製されたO、、2M TET溶液に添加し、80℃の
水浴中で3時間加温した後に、ブラッドミキサーを使用
して室温で約20時間撹拌した。さらに0゜2Mの炭酸
緩衝液(pH10)を用いて調製された5 w/v%の
ブタンジオールグリシジルエーテル溶液に洗浄された反
応物を添加し、80℃の水浴中で3時間加温した後に、
ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間撹拌した
。この後、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて
調製された0、2Mのブチルアミン溶液に洗浄された反
応物を添加し、80℃の水浴中で3時間加温した後に、
ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間攪拌した
。次いで、未反応のオキシラン基を除去するため、濃度
IM (pH8)のエタノールアミン溶液に蒸留水洗浄
した固定化ビーズを添加し、約20時間撹拌した。最後
に、酢酸緩衝液(0,IM pH4)、リン酸緩衝液
(0,1mo ! pH7,4)を順次用い121℃
、30分でオートクレーブ処理した。
洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて調
製されたO、、2M TET溶液に添加し、80℃の
水浴中で3時間加温した後に、ブラッドミキサーを使用
して室温で約20時間撹拌した。さらに0゜2Mの炭酸
緩衝液(pH10)を用いて調製された5 w/v%の
ブタンジオールグリシジルエーテル溶液に洗浄された反
応物を添加し、80℃の水浴中で3時間加温した後に、
ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間撹拌した
。この後、0.2Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて
調製された0、2Mのブチルアミン溶液に洗浄された反
応物を添加し、80℃の水浴中で3時間加温した後に、
ブラッドミキサーを使用して室温で約20時間攪拌した
。次いで、未反応のオキシラン基を除去するため、濃度
IM (pH8)のエタノールアミン溶液に蒸留水洗浄
した固定化ビーズを添加し、約20時間撹拌した。最後
に、酢酸緩衝液(0,IM pH4)、リン酸緩衝液
(0,1mo ! pH7,4)を順次用い121℃
、30分でオートクレーブ処理した。
このようにして得られた分離材を、実施例1と同様のリ
ンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示
す。
ンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1表に示
す。
実施例9
ブチルアミンに代えてオクチルアミンを用い、また溶媒
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例
8の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖ア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成し
、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得ら
れた結果を第1表に示す。
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例
8の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖ア
ルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成し
、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得ら
れた結果を第1表に示す。
実施例10
オクチルアミンに代えてアミノドデカンを用いる以外は
実施例9の方法に準じて、メチレンの繰返しが12であ
る直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズ
を作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なっ
た。得られた結果を第1表に示す。
実施例9の方法に準じて、メチレンの繰返しが12であ
る直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズ
を作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なっ
た。得られた結果を第1表に示す。
実施例11
水不溶性担体としてキトサンビーズ[キトパール 30
10(C11)、φ300μm、富士紡績■製]を用い
、スペーサーとしてエチレングリコール(EDO)、ト
リエチレンテトラミン(T E T)およびブタンジオ
ール(BDO)を介して、メチレンの繰返しが4である
アルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
10(C11)、φ300μm、富士紡績■製]を用い
、スペーサーとしてエチレングリコール(EDO)、ト
リエチレンテトラミン(T E T)およびブタンジオ
ール(BDO)を介して、メチレンの繰返しが4である
アルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
まず、CHを蒸溜水で洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液を
用いて調製された5ν/V%のエチレングリコールジグ
リシジルエーテル溶液に添加し、80℃の水浴中で3時
間加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約
20時間撹拌した。以下のTETおよびBDO処理は実
施例8の方法に準じ、メチレンの繰返しが4である直鎖
アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成
し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。
用いて調製された5ν/V%のエチレングリコールジグ
リシジルエーテル溶液に添加し、80℃の水浴中で3時
間加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約
20時間撹拌した。以下のTETおよびBDO処理は実
施例8の方法に準じ、メチレンの繰返しが4である直鎖
アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成
し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。
得られた結果を第1表に示す。
実施例12
ブチルアミンに代えてオクチルアミンを用い、また溶媒
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例
11の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖
アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成
し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得
られた結果を第1表に示す。
を100%ジメチルホルムアミドに代える以外は実施例
11の方法に準じて、メチレンの繰返しが8である直鎖
アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビーズを作成
し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行なった。得
られた結果を第1表に示す。
実施例13
オクチルアミンに代えてアミノドデカンを用いる以外は
実施例12の方法に準じて、メチレンの繰返しが12で
ある直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビー
ズを作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行な
った。得られた結果を第1表に示す。
実施例12の方法に準じて、メチレンの繰返しが12で
ある直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化したビー
ズを作成し、実施例1と同様のリンパ球分離実験を行な
った。得られた結果を第1表に示す。
実施例14
水不溶性担体として、オキシラン基を白゛するアクリル
ビーズ[オイパーキツドC(EC)、φ1501tm、
オキシラン基含量13 p mol / g(wet)
レーム ファルマ[Rohm Pharma ]社
製]を用い、トリエチレンテトラミン(T E T)と
エチレンオキシドの繰返しが22であるポリエチレング
リコール(EG)を介して、メチレンの繰返しが12で
ある直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
ビーズ[オイパーキツドC(EC)、φ1501tm、
オキシラン基含量13 p mol / g(wet)
レーム ファルマ[Rohm Pharma ]社
製]を用い、トリエチレンテトラミン(T E T)と
エチレンオキシドの繰返しが22であるポリエチレング
リコール(EG)を介して、メチレンの繰返しが12で
ある直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
まず、ECを洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液(p H1
0)を用で調製された0、2MのTET溶液に添加し、
80℃の水浴中で3時間加温した後に、ブラッドミキサ
ーを使用して室温で約20時間撹拌した。次に、0.2
Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて調製されたLow
/w%のポリエチレングリシジルエーテル溶液に添加し
、80℃の水浴中で3時間加温した後に、ブラ・ソドミ
キサーを使用して室温で約20時間撹拌した。さらに、
実施例10の方法に準じてアミノドデカンを固定化した
後、未反応のオキシラン基を除去するためにIM (p
H8)のエタノールアミン溶液に蒸留水洗浄した固定化
ビーズを添加し、約20時間撹拌した。最後に、酢酸緩
衝液(0,1M pH4)リン酸緩衝液(0,1M
pH7,4)を順次用い121℃、30分でオートク
レーブ処理した。
0)を用で調製された0、2MのTET溶液に添加し、
80℃の水浴中で3時間加温した後に、ブラッドミキサ
ーを使用して室温で約20時間撹拌した。次に、0.2
Mの炭酸緩衝液(pH10)を用いて調製されたLow
/w%のポリエチレングリシジルエーテル溶液に添加し
、80℃の水浴中で3時間加温した後に、ブラ・ソドミ
キサーを使用して室温で約20時間撹拌した。さらに、
実施例10の方法に準じてアミノドデカンを固定化した
後、未反応のオキシラン基を除去するためにIM (p
H8)のエタノールアミン溶液に蒸留水洗浄した固定化
ビーズを添加し、約20時間撹拌した。最後に、酢酸緩
衝液(0,1M pH4)リン酸緩衝液(0,1M
pH7,4)を順次用い121℃、30分でオートク
レーブ処理した。
このようにして得られた分離材を用いて、実施例1と同
様ρリンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1
表に示す。
様ρリンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1
表に示す。
実施例15
水不溶性担体としてキトサンビーズ[キトパール 30
10(C11)、φ300μm、富士紡績■製]を用い
、エチレンオキシドの繰返しが15であるポリエチレン
グリコール(EG)を介して、メチレンの繰返しが12
である直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
10(C11)、φ300μm、富士紡績■製]を用い
、エチレンオキシドの繰返しが15であるポリエチレン
グリコール(EG)を介して、メチレンの繰返しが12
である直鎖アルキル鎖を疎水性末端として固定化した。
まず、CHを蒸留水で洗浄し、0.2Mの炭酸緩衝液(
pH10)を用いて調製された10v/w%のラウリル
アルコールグリシジルエーテル((:、j+、6.Cl
IC11−0(ell。el120)15−(C11□
)1□e113)溶液に添加し、80℃の水浴中で3時
間加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約
20時間撹拌した。次に、0.2Mの炭酸緩衝液(pH
10)を用で調製された10w/w%のポリエチレング
リシジルエーテル溶液に添加し、80℃の水浴中で3時
間加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約
20時間撹拌した。この後、酢酸緩衝液(0,1M
pH4)、リン酸緩衝液(0,1M pH7,4)を
順次用い121℃、30分でオートクレーブ処理した。
pH10)を用いて調製された10v/w%のラウリル
アルコールグリシジルエーテル((:、j+、6.Cl
IC11−0(ell。el120)15−(C11□
)1□e113)溶液に添加し、80℃の水浴中で3時
間加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約
20時間撹拌した。次に、0.2Mの炭酸緩衝液(pH
10)を用で調製された10w/w%のポリエチレング
リシジルエーテル溶液に添加し、80℃の水浴中で3時
間加温した後に、ブラッドミキサーを使用して室温で約
20時間撹拌した。この後、酢酸緩衝液(0,1M
pH4)、リン酸緩衝液(0,1M pH7,4)を
順次用い121℃、30分でオートクレーブ処理した。
このようにして得られた分離材を用いて、実施例1と同
様のリンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1
表に示す。
様のリンパ球分離実験を行なった。得られた結果を第1
表に示す。
比較例1
比較例2
比・咬例3
比較例4
実施例1
実施例2
実施例3
実施例4
第1表
細胞付着率
リンパ球 T細胞
77.2 74.6
77.7 77.2
71.4 68.0
74.0 72.2
41.7
49.1
53.0
61.8
44゜4
55.1
60.0
73.0
比較例5
比較例6 100.0
比較例7 100.0
100.0
100.0
ioo、。
100.0
(%)
B細胞
81.2
85゜9
76.6
76.7
38.3
41.5
462
45.6
too、。
100.0
100.0
実施例5
実施例6
実施例7
実施例8
実施例9
実施例10
実施例11
実施例12
実施例13
実施例14
実施例15
リンパ球
73.2
73.8
65.3
72.9
66.1
60.7
70.4
69.5
59.5
43.7
45.0
第1表(続き)
細胞付着率(%)
T細胞 B細胞
7B、9 64.0
7B、0 65.8
68.9 53.6
76.6 Go、9
71.2 49.8
71.6 261
76゜l 57.1
74.8 57.7
6g、6 40.3
47.5 38.4
60.6 23.3
第1表に示す結果から明らかなように、親水的な分子構
造を含むスペーサーを介し、直鎖アルキル鎖を固定化し
た分離材は、Tリンパ球に対し強い親和性を有し、一方
、Bリンパ球の付着を適度に抑制するものであった。
造を含むスペーサーを介し、直鎖アルキル鎖を固定化し
た分離材は、Tリンパ球に対し強い親和性を有し、一方
、Bリンパ球の付着を適度に抑制するものであった。
(発明の効果)
以上述べたように本発明は、リンパ球中のTリンパ球分
画を他のリンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキ
ル鎖を、親水的な分子構造を倉むスペーサーを介して水
不溶性固体物質表面に固定化したことを特徴とするリン
パ球亜群の分離材であるから、リンパ球浮遊液と接触さ
せることで、リンパ球浮遊液から選択的にTリンパ球を
吸着するため、リンパ球浮遊液からの簡便かつ迅速なり
リンパ球の分離、濃縮を可能にすることがあきらかとな
った。従って、本発明のリンパ球亜群の分離器は免疫機
能に関連した白血球亜群の細胞間相互作用の解析、リン
パ球由来の生理活性物質を効率的に得るための基礎技術
、さらには各種免疫病害の治療に応用できることを示す
とともに、本発明の分離材によって、特殊な生理活性物
質を用いることなく、精度の高いT、 Bリンパ球分
離が達成できることも示された。
画を他のリンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキ
ル鎖を、親水的な分子構造を倉むスペーサーを介して水
不溶性固体物質表面に固定化したことを特徴とするリン
パ球亜群の分離材であるから、リンパ球浮遊液と接触さ
せることで、リンパ球浮遊液から選択的にTリンパ球を
吸着するため、リンパ球浮遊液からの簡便かつ迅速なり
リンパ球の分離、濃縮を可能にすることがあきらかとな
った。従って、本発明のリンパ球亜群の分離器は免疫機
能に関連した白血球亜群の細胞間相互作用の解析、リン
パ球由来の生理活性物質を効率的に得るための基礎技術
、さらには各種免疫病害の治療に応用できることを示す
とともに、本発明の分離材によって、特殊な生理活性物
質を用いることなく、精度の高いT、 Bリンパ球分
離が達成できることも示された。
また、本発明のリンパ球亜群の分離器において、前記ア
ルキル鎖におけるメチレンの繰返しが25以下のもので
あり、また前記アルキル鎖が直鎖アルキル鎖であり、不
溶性固体物質として粒径0゜05〜5mmの粒子状体を
用いるものであるとより効率のよいリンパ球亜群分離操
作が可能となるものである。
ルキル鎖におけるメチレンの繰返しが25以下のもので
あり、また前記アルキル鎖が直鎖アルキル鎖であり、不
溶性固体物質として粒径0゜05〜5mmの粒子状体を
用いるものであるとより効率のよいリンパ球亜群分離操
作が可能となるものである。
本発明はまた、リンパ球中のTリンパ球分画を他のリン
パ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親水
的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体物
質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の分
離材を充填したカラムを有することを特徴とするリンパ
球亜群の分離器であるから、」−2のごとく優れた特性
を有するリンパ球亜群の分離材と血球浮遊液との接触を
より効率よく行なうことができ、リンパ球亜群の分離操
作を短時間でかつ守備よ〈実施することが可能となるも
のである。
パ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親水
的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体物
質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の分
離材を充填したカラムを有することを特徴とするリンパ
球亜群の分離器であるから、」−2のごとく優れた特性
を有するリンパ球亜群の分離材と血球浮遊液との接触を
より効率よく行なうことができ、リンパ球亜群の分離操
作を短時間でかつ守備よ〈実施することが可能となるも
のである。
さらに本発明は、リンパ球中のTリンパ球分画を曲のリ
ンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親
水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体
物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の
分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリンパ球分画
を接触させ、1−泥分離材にTリンパ球を効率よく捕捉
させることでBリンパ球に富む非捕捉分画液を分離回収
することを特徴とするリンパ球亜群の分離方法であるか
ら、前記のごときリンパ球亜群の分離材の優れた特性を
生かし、リンパ球浮遊液から、Tリンパ球分画とBリン
パ球とに分離回収することができるため、従来の分離法
に比べ、操作の習熟を必要としないでリンパ球亜群の分
画を極めて高い収率で得ることができ、さらに安価で、
際だった細胞損傷も一切与えないことから、極めてG用
な技術であると言うことができるものである。
ンパ球分画よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親
水的な分子構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体
物質表面に固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の
分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリンパ球分画
を接触させ、1−泥分離材にTリンパ球を効率よく捕捉
させることでBリンパ球に富む非捕捉分画液を分離回収
することを特徴とするリンパ球亜群の分離方法であるか
ら、前記のごときリンパ球亜群の分離材の優れた特性を
生かし、リンパ球浮遊液から、Tリンパ球分画とBリン
パ球とに分離回収することができるため、従来の分離法
に比べ、操作の習熟を必要としないでリンパ球亜群の分
画を極めて高い収率で得ることができ、さらに安価で、
際だった細胞損傷も一切与えないことから、極めてG用
な技術であると言うことができるものである。
第1図は本発明のリンパ球亜群の分離器の一実施態様の
使用状態における模式図である。 1・・・カラム、 2・・・リンパ球亜群の分離)rA
、3.3′・・・フィルター、 4・・・三方活栓、5
・・・流出口、 6・・・実径部、 7・・・縮径部、
8・・・試験管。
使用状態における模式図である。 1・・・カラム、 2・・・リンパ球亜群の分離)rA
、3.3′・・・フィルター、 4・・・三方活栓、5
・・・流出口、 6・・・実径部、 7・・・縮径部、
8・・・試験管。
Claims (7)
- (1)リンパ球中のTリンパ球分画を他のリンパ球分画
よりも優先的に吸着させるアルキル鎖を、親水的な分子
構造を含むスペーサーを介して水不溶性固体物質表面に
固定化したことを特徴とするリンパ球亜群の分離材。 - (2)前記アルキル鎖におけるメチレンの繰返しが25
以下である請求項1に記載のリンパ球亜群の分離材。 - (3)前記アルキル鎖が直鎖アルキルである請求項1ま
たは2に記載のリンパ球亜群の分離材。 - (4)スペーサーが親水部と疎水部とを有するものであ
る請求項1〜3のいずれかに記載のリンパ球亜群の分離
材。 - (5)不溶性固体物質として粒径0.05〜5mmの粒
子状体を用いるものである請求項1〜4のいずれかに記
載のリンパ球亜群の分離材。 - (6)請求項1〜5のいずれかに記載のリンパ球亜群の
分離材を充填したカラムを有することを特徴とするリン
パ球亜群の分離器。 - (7)請求項1〜5のいずれかに記載のリンパ球亜群の
分離材に、ヒトあるいは非ヒト動物山来のリンパ球分画
を接触させ、上記分離材にTリンパ球を効率よく捕捉さ
せることでBリンパ球に富む非捕捉分画液を分離回収す
ることを特徴とする白血球分離法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1139142A JPH037165A (ja) | 1989-06-02 | 1989-06-02 | リンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1139142A JPH037165A (ja) | 1989-06-02 | 1989-06-02 | リンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH037165A true JPH037165A (ja) | 1991-01-14 |
Family
ID=15238536
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1139142A Pending JPH037165A (ja) | 1989-06-02 | 1989-06-02 | リンパ球亜群の分離材、分離器および分離方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH037165A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5977330A (en) * | 1992-03-27 | 1999-11-02 | Ciba Specialty Chemicals Corporation | Crosslinked N-substituted chitosan derivatives |
-
1989
- 1989-06-02 JP JP1139142A patent/JPH037165A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5977330A (en) * | 1992-03-27 | 1999-11-02 | Ciba Specialty Chemicals Corporation | Crosslinked N-substituted chitosan derivatives |
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