JPH04333673A - セルロース系繊維の改質方法 - Google Patents
セルロース系繊維の改質方法Info
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- JPH04333673A JPH04333673A JP13551191A JP13551191A JPH04333673A JP H04333673 A JPH04333673 A JP H04333673A JP 13551191 A JP13551191 A JP 13551191A JP 13551191 A JP13551191 A JP 13551191A JP H04333673 A JPH04333673 A JP H04333673A
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Landscapes
- Chemical Or Physical Treatment Of Fibers (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明はセルロース系繊維の改質
方法に関する。さらに詳しくは、セルロース系繊維の強
度を低下させずに吸湿性や風合いを改善する方法に関す
る。
方法に関する。さらに詳しくは、セルロース系繊維の強
度を低下させずに吸湿性や風合いを改善する方法に関す
る。
【0002】
【従来技術およびその課題】セルロース系繊維の風合い
を改良する方法としては、古くから強アルカリ性の条件
下高温度で処理する方法が知られているが、この方法で
処理された繊維は吸湿性や風合い等の改良は達成される
が、処理条件の調節が困難であり、また、繊維の強度が
著しく損なわれるという欠点を持つ。
を改良する方法としては、古くから強アルカリ性の条件
下高温度で処理する方法が知られているが、この方法で
処理された繊維は吸湿性や風合い等の改良は達成される
が、処理条件の調節が困難であり、また、繊維の強度が
著しく損なわれるという欠点を持つ。
【0003】また、セルラーゼ含有溶液により処理する
方法が、例えば、特公昭52−48236号、特公平1
−23591 号などに開示されている。これらの方法
では、コニオシリウム・ジプルスジエラ(Coniot
hyrium diplsdiella)、アスペル
ギルス・オリザエ(Aspergillus ory
zae)、フサリウム・モニリホルメ(Fusariu
m moniriforme)、イルペックス・ラク
テウス(Irpex lacteus)、トリコデル
マ・コニンギ(Trichoderma konin
gi)、トリコデルマ・ビリデ(Trichoderm
a viride)、リゾプス・アリツス・フィッシ
ャー(Rizopus arrhizus Fis
cher)、アスペルギルス・ニガー(Aspergi
llus niger)など、いずれもかびに属する
微生物の生産する結晶性セルロース分解活性の高いセル
ラーゼを用いており、繊維の強度低下を招くために実用
上難点がある。また、これらの方法で使用するセルラー
ゼは至適pHが酸性域にあるものが多いため酸性条件下
で処理されているが、一般にセルロース系繊維の改質を
酸性条件下で行なうと強度が低下するため、アルカリ条
件下で処理する方が好ましいとされている。
方法が、例えば、特公昭52−48236号、特公平1
−23591 号などに開示されている。これらの方法
では、コニオシリウム・ジプルスジエラ(Coniot
hyrium diplsdiella)、アスペル
ギルス・オリザエ(Aspergillus ory
zae)、フサリウム・モニリホルメ(Fusariu
m moniriforme)、イルペックス・ラク
テウス(Irpex lacteus)、トリコデル
マ・コニンギ(Trichoderma konin
gi)、トリコデルマ・ビリデ(Trichoderm
a viride)、リゾプス・アリツス・フィッシ
ャー(Rizopus arrhizus Fis
cher)、アスペルギルス・ニガー(Aspergi
llus niger)など、いずれもかびに属する
微生物の生産する結晶性セルロース分解活性の高いセル
ラーゼを用いており、繊維の強度低下を招くために実用
上難点がある。また、これらの方法で使用するセルラー
ゼは至適pHが酸性域にあるものが多いため酸性条件下
で処理されているが、一般にセルロース系繊維の改質を
酸性条件下で行なうと強度が低下するため、アルカリ条
件下で処理する方が好ましいとされている。
【0004】従って、本発明は、セルラーゼを使用して
、セルロース系繊維の強度低下をもたらすことなく風合
いおよび吸湿性を向上させる方法を提供することを課題
とするものである。
、セルロース系繊維の強度低下をもたらすことなく風合
いおよび吸湿性を向上させる方法を提供することを課題
とするものである。
【0005】
【課題を解決する手段】一般にセルラーゼと呼ばれてい
るものは、セルロースおよびその類似多糖をグルコース
、セロビオースあるいはセロオリゴ糖にまで分解する複
雑な酵素系からなる複合酵素群の総称である。その構成
酵素は作用機構により、C1酵素(エキソ−1,4−β
−グルカナーゼ、エキソセロビオヒドラーゼあるいはア
ビセラーゼとも呼ばれる。)、CX酵素(エンド−1,
4−β−グルカナーゼあるいはCMCアーゼとも呼ばれ
る。)およびβ−グルコシダーゼ(セロビアーゼとも呼
ばれる。)などの名称で呼ばれ、これらの協同作用によ
りセルロースを分解するものと考えられている。
るものは、セルロースおよびその類似多糖をグルコース
、セロビオースあるいはセロオリゴ糖にまで分解する複
雑な酵素系からなる複合酵素群の総称である。その構成
酵素は作用機構により、C1酵素(エキソ−1,4−β
−グルカナーゼ、エキソセロビオヒドラーゼあるいはア
ビセラーゼとも呼ばれる。)、CX酵素(エンド−1,
4−β−グルカナーゼあるいはCMCアーゼとも呼ばれ
る。)およびβ−グルコシダーゼ(セロビアーゼとも呼
ばれる。)などの名称で呼ばれ、これらの協同作用によ
りセルロースを分解するものと考えられている。
【0006】本発明者らはC1酵素、CX酵素、β−グ
ルコシダーゼの協同作用を制御することによりセルロー
スの分解を調節できるという考えに至った。すなわち、
結晶性セルロースに作用するC1酵素作用が弱く、非晶
性セルロースに作用するCX酵素作用が強いセルラーゼ
を用いることにより上記課題が解決できるのではないか
と考え、C1酵素についてはアセビル分解活性を、CX
酵素についてはカルボキシメチルセルロース(CMC)
分解活性を指標とし、多数の微生物を分解、培養して上
記のような性質を有するセルラーゼを鋭意探索した結果
、バチルス(Bacillus)属に属する細菌が産出
するセルラーゼが結晶性セルロースに作用するC1酵素
作用が弱く、非晶性セルロースに作用するCX酵素作用
が強いセルラーゼであることを見出した。
ルコシダーゼの協同作用を制御することによりセルロー
スの分解を調節できるという考えに至った。すなわち、
結晶性セルロースに作用するC1酵素作用が弱く、非晶
性セルロースに作用するCX酵素作用が強いセルラーゼ
を用いることにより上記課題が解決できるのではないか
と考え、C1酵素についてはアセビル分解活性を、CX
酵素についてはカルボキシメチルセルロース(CMC)
分解活性を指標とし、多数の微生物を分解、培養して上
記のような性質を有するセルラーゼを鋭意探索した結果
、バチルス(Bacillus)属に属する細菌が産出
するセルラーゼが結晶性セルロースに作用するC1酵素
作用が弱く、非晶性セルロースに作用するCX酵素作用
が強いセルラーゼであることを見出した。
【0007】すなわち、バチルス(Bacillus)
属細菌SD402(微工研寄託第11533号)が生産
するセルラーゼは、1)基質特異性がCMC分解活性を
100とするとアビセル分解活性が1以下であり、2)
カルボキシメチルセルロース(CMC)を基質とした場
合の至適pHが9.5 〜10.5、至適温度が約55
℃であり、3)安定pH領域が30℃、30分処理した
ときpH6〜11の範囲にあり、セルロース系繊維の改
質の目的に適したものものであることを確認し本発明に
至った。
属細菌SD402(微工研寄託第11533号)が生産
するセルラーゼは、1)基質特異性がCMC分解活性を
100とするとアビセル分解活性が1以下であり、2)
カルボキシメチルセルロース(CMC)を基質とした場
合の至適pHが9.5 〜10.5、至適温度が約55
℃であり、3)安定pH領域が30℃、30分処理した
ときpH6〜11の範囲にあり、セルロース系繊維の改
質の目的に適したものものであることを確認し本発明に
至った。
【0008】なお、本発明において用いられるセルラー
ゼは、上記バチルス(Bacillus)属細菌SD4
02のものに限らず、バチルス(Bacillus)属
細菌が生産し、酵素作用条件下においてアビセル分解活
性(C1酵素活性)がCMC分解活性(CX酵素活性)
の1%以下のセルラーゼである限りいかなる菌株のもの
であってもよい。例えば、バチルス(Bacillus
)属細菌SD403(微工研寄託第11647号)が生
産するセルラーゼも使用できる。また、これらバチルス
(Bacillus)属細菌の自然または人為的突然変
異や遺伝子工学的手法による改良株の生産するセルラー
ゼも包含される。
ゼは、上記バチルス(Bacillus)属細菌SD4
02のものに限らず、バチルス(Bacillus)属
細菌が生産し、酵素作用条件下においてアビセル分解活
性(C1酵素活性)がCMC分解活性(CX酵素活性)
の1%以下のセルラーゼである限りいかなる菌株のもの
であってもよい。例えば、バチルス(Bacillus
)属細菌SD403(微工研寄託第11647号)が生
産するセルラーゼも使用できる。また、これらバチルス
(Bacillus)属細菌の自然または人為的突然変
異や遺伝子工学的手法による改良株の生産するセルラー
ゼも包含される。
【0009】
【培養方法】本発明で用いるセルラーゼを製造するに当
たり、上述の如き微生物の培養方法については、特別な
要件はなく、慣用の方法により適宜培養することができ
る。培地の栄養源としては通常培養に用いられているも
のが広く利用できる。炭素源としては同化できる炭素化
合物またはこれを含有するものであればよく、例えばグ
ルコース、マルトース、デンプン、CMCなどが用いら
れる。窒素源としても同化可能な窒素化合物、またはこ
れを含有するものであればよく、例えばアンモニウム塩
、ペプトン、大豆粉、脱脂大豆粉などが用いられる。 また、無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩など
の塩類が使用される。その他、菌の生育および酵素生産
に必要な各種の有機物や無機物またはこれを含有するも
の、例えばビタミン類、酵母エキスを培地に添加するこ
とができる。
たり、上述の如き微生物の培養方法については、特別な
要件はなく、慣用の方法により適宜培養することができ
る。培地の栄養源としては通常培養に用いられているも
のが広く利用できる。炭素源としては同化できる炭素化
合物またはこれを含有するものであればよく、例えばグ
ルコース、マルトース、デンプン、CMCなどが用いら
れる。窒素源としても同化可能な窒素化合物、またはこ
れを含有するものであればよく、例えばアンモニウム塩
、ペプトン、大豆粉、脱脂大豆粉などが用いられる。 また、無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩など
の塩類が使用される。その他、菌の生育および酵素生産
に必要な各種の有機物や無機物またはこれを含有するも
の、例えばビタミン類、酵母エキスを培地に添加するこ
とができる。
【0010】培養は液体、または固体培養いずれでもよ
いが液体培養の方が好ましい。液体培養における培養条
件は培地組成により多少異なるが、生産の目的物である
セルラーゼの生産に最も有利な条件を選択する。培養温
度は25〜35℃の範囲であり、培養時間は12時間か
ら3日程度であり、セルラーゼ生産が最高に達したとき
に培養を終了すればよい。培地のpHは8以上がよく、
9〜10がセルラーゼ生産に好適である。このような培
養により、目的とするセルラーゼが培養液中に得られる
。
いが液体培養の方が好ましい。液体培養における培養条
件は培地組成により多少異なるが、生産の目的物である
セルラーゼの生産に最も有利な条件を選択する。培養温
度は25〜35℃の範囲であり、培養時間は12時間か
ら3日程度であり、セルラーゼ生産が最高に達したとき
に培養を終了すればよい。培地のpHは8以上がよく、
9〜10がセルラーゼ生産に好適である。このような培
養により、目的とするセルラーゼが培養液中に得られる
。
【0011】
【単離精製法】このようにして得られた培養液からのセ
ルラーゼの採取は、酵素を採取するための常法に従って
、分離、精製することができる。すなわち、ろ過法、遠
心分離法などの公知の適当な方法により菌体や培地固形
物を分離して、上澄液またはろ液を得ることができる。 これらの分離液を濃縮し、噴霧乾燥する方法や凍結乾燥
する方法、または濃縮することなく可溶性塩類を添加し
沈殿させる塩析法、親水性有機溶剤を添加して沈殿させ
る沈殿法によりセルラーゼを得ることができる。さらに
酵素を精製するには、例えばイオン交換樹脂等を用いた
吸着脱離法、ゲルろ過法等の精製手段を単独または複数
組み合わせて、セルラーゼを精製することができる。
ルラーゼの採取は、酵素を採取するための常法に従って
、分離、精製することができる。すなわち、ろ過法、遠
心分離法などの公知の適当な方法により菌体や培地固形
物を分離して、上澄液またはろ液を得ることができる。 これらの分離液を濃縮し、噴霧乾燥する方法や凍結乾燥
する方法、または濃縮することなく可溶性塩類を添加し
沈殿させる塩析法、親水性有機溶剤を添加して沈殿させ
る沈殿法によりセルラーゼを得ることができる。さらに
酵素を精製するには、例えばイオン交換樹脂等を用いた
吸着脱離法、ゲルろ過法等の精製手段を単独または複数
組み合わせて、セルラーゼを精製することができる。
【0012】本発明に用いるセルラーゼの酵素活性測定
法およびバチルス(Bacillus)属細菌SD40
2が生産するセルラーゼについて、その詳細な性質を以
下に記載する。
法およびバチルス(Bacillus)属細菌SD40
2が生産するセルラーゼについて、その詳細な性質を以
下に記載する。
【0013】
【酵素活性の測定方法】■カルボキシメチルセルロース
分解活性(CMCアーゼ活性、CX酵素活性)CMCを
M/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウ
ム緩衝液(pH9.0 )に溶解したものを基質として
用い測定する。具体的には、0.5 %CMC(pH9
.0 )1.0 ml、M/20炭酸ナトリウム−M/
20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(pH9.0)0.9
mlからなる基質溶液に酵素液 0.1 ml を加
え、30℃、15分間反応させる。反応後、4−ヒドロ
キシベンゾイックヒドラジド(4−Hydroxybe
nzoic hydrazide)法(PHBAH法)
にて還元糖の定量を行なう。すなわち、反応液1.0
mlにPHBAH試薬3.0 mlを加え、10分間、
100℃で加熱発色させ、冷却後、波長410nmで比
色定量する。酵素力価は、上記の条件下で1分間に1μ
mol のグルコースに相当する還元糖を生成する酵素
量を1単位とする。
分解活性(CMCアーゼ活性、CX酵素活性)CMCを
M/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウ
ム緩衝液(pH9.0 )に溶解したものを基質として
用い測定する。具体的には、0.5 %CMC(pH9
.0 )1.0 ml、M/20炭酸ナトリウム−M/
20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(pH9.0)0.9
mlからなる基質溶液に酵素液 0.1 ml を加
え、30℃、15分間反応させる。反応後、4−ヒドロ
キシベンゾイックヒドラジド(4−Hydroxybe
nzoic hydrazide)法(PHBAH法)
にて還元糖の定量を行なう。すなわち、反応液1.0
mlにPHBAH試薬3.0 mlを加え、10分間、
100℃で加熱発色させ、冷却後、波長410nmで比
色定量する。酵素力価は、上記の条件下で1分間に1μ
mol のグルコースに相当する還元糖を生成する酵素
量を1単位とする。
【0014】■アビセル分解活性(アビセラーゼ活性、
C1酵素活性) アビセル(メルク社)を前処理により水溶性画分を洗浄
除去した後、M/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸
−塩化カリウム緩衝液(pH9.0 )に懸濁したもの
を基質に用いて測定する。具体的には、1.0 %アビ
セル(pH9.0 )0.9 mlに酵素液0.1ml
を加え、30℃、30分間反応させる。反応後、反応
液1.0 mlにPHBAH試薬3.0 mlを加え、
10分間、100℃で加熱発色させ、冷却後、波長41
0nmで比色定量する。酵素力価は、上記の条件下で1
分間に1μmol のグルコースに相当する還元糖を生
成する酵素量を1単位とする。
C1酵素活性) アビセル(メルク社)を前処理により水溶性画分を洗浄
除去した後、M/20炭酸ナトリウム−M/20ホウ酸
−塩化カリウム緩衝液(pH9.0 )に懸濁したもの
を基質に用いて測定する。具体的には、1.0 %アビ
セル(pH9.0 )0.9 mlに酵素液0.1ml
を加え、30℃、30分間反応させる。反応後、反応
液1.0 mlにPHBAH試薬3.0 mlを加え、
10分間、100℃で加熱発色させ、冷却後、波長41
0nmで比色定量する。酵素力価は、上記の条件下で1
分間に1μmol のグルコースに相当する還元糖を生
成する酵素量を1単位とする。
【0015】■β−グルコシダーゼ活性合成基質である
p−ニトロフェニル−β−D−グルコピラノシド(pN
PG)を基質に用い測定する。具体的には、M/20炭
酸ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(
pH9.0 )15ml、50mM pNPGまたは5
mM pNPG0.1mlからなる基質溶液に酵素液
0.1 mlを加え、30℃、30分間反応させ、遊離
するp−ニトロフェノールを波長400nmで比色定量
する。この条件下で1分間に1μmol のp−ニトロ
フェノールを遊離させる酵素量を1単位とする。
p−ニトロフェニル−β−D−グルコピラノシド(pN
PG)を基質に用い測定する。具体的には、M/20炭
酸ナトリウム−M/20ホウ酸−塩化カリウム緩衝液(
pH9.0 )15ml、50mM pNPGまたは5
mM pNPG0.1mlからなる基質溶液に酵素液
0.1 mlを加え、30℃、30分間反応させ、遊離
するp−ニトロフェノールを波長400nmで比色定量
する。この条件下で1分間に1μmol のp−ニトロ
フェノールを遊離させる酵素量を1単位とする。
【0016】
【酵素の性質】本酵素は、CMCや結晶性の高いアビセ
ルに作用して、β−グルコシド結合を加水分解する。 (1)基質特異性 本酵素は、CMC、アビセル、p−ニトロフェニル−β
−D−グリコピラノシド(pNPG)に作用する。CM
Cアーゼ活性を100としたときの相対活性を表1に示
す。
ルに作用して、β−グルコシド結合を加水分解する。 (1)基質特異性 本酵素は、CMC、アビセル、p−ニトロフェニル−β
−D−グリコピラノシド(pNPG)に作用する。CM
Cアーゼ活性を100としたときの相対活性を表1に示
す。
【0017】
【表1】
【0018】(2)至適pH
ブリトン・ロビンソン(Britton−Robins
on)の広域緩衝液(pH6〜11)を用い、CMCを
基質として測定した至適pHは9.5 〜10.5であ
る。
on)の広域緩衝液(pH6〜11)を用い、CMCを
基質として測定した至適pHは9.5 〜10.5であ
る。
【0019】(3)安定pH範囲
pHの異なる緩衝液の下で、30℃で30分間放置し、
CMCを基質として測定した安定pHは6〜11である
。
CMCを基質として測定した安定pHは6〜11である
。
【0020】(4)至適温度
CMCを基質として測定した至適温度は約55℃である
。
。
【0021】後述のアスペルギルス・ニガー(Aspe
rgillus niger)とトリコデルマ・ビリ
デ(Trichoderma viride)由来の
セルラーゼのアビセル分解活性/CMC分解活性の比(
参考例)から明らかなように、本発明に用いるセルラー
ゼは、従来公知のコニオシリウム・ジプルスジエラ(C
oniothyrium diplsdiella)
、アスペルギルス・オリザエ(Aspergillus
oryzae)、フサリウム・モニリホルメ(Fu
sarium moniriforme)、イルペッ
クス・ラクテウス(Irpex lacteus)、
トリコデルマ・コニンギ(Trichodermako
ningi)、トリコデルマ・ビリデ(Trichod
erma viride)、リゾプス・アリツス・フ
ィッシャー(Rizopus arrhizus
Fischer)、アスペルギルス・ニガー(Aspe
rgillus niger)などのいずれもかびに
属する微生物が生産するセルラーゼと比べて、アビセル
分解活性/CMC分解活性の比が非常に小さい点が大き
な特徴である。
rgillus niger)とトリコデルマ・ビリ
デ(Trichoderma viride)由来の
セルラーゼのアビセル分解活性/CMC分解活性の比(
参考例)から明らかなように、本発明に用いるセルラー
ゼは、従来公知のコニオシリウム・ジプルスジエラ(C
oniothyrium diplsdiella)
、アスペルギルス・オリザエ(Aspergillus
oryzae)、フサリウム・モニリホルメ(Fu
sarium moniriforme)、イルペッ
クス・ラクテウス(Irpex lacteus)、
トリコデルマ・コニンギ(Trichodermako
ningi)、トリコデルマ・ビリデ(Trichod
erma viride)、リゾプス・アリツス・フ
ィッシャー(Rizopus arrhizus
Fischer)、アスペルギルス・ニガー(Aspe
rgillus niger)などのいずれもかびに
属する微生物が生産するセルラーゼと比べて、アビセル
分解活性/CMC分解活性の比が非常に小さい点が大き
な特徴である。
【0022】このようなアビセル分解活性/CMC分解
活性の比が非常に小さいセルラーゼを用いてセルロース
系繊維を処理することにより、強度低下を防止しながら
、風合いを改善することができる。さらに、本セルラー
ゼを用いる方法では、アルカリ条件下でも繊維を処理す
ることができるので、従来の方法のように酸性から中性
条件下で処理するためのpH調整に必要な薬品類を節約
でき、また、pH調整のための時間と労力が削減できる
ので、実用上のメリットは大きい。さらに、本セルラー
ゼは界面活性剤に対しても安定であり、酵素処理と同時
に界面活性剤処理も可能である。
活性の比が非常に小さいセルラーゼを用いてセルロース
系繊維を処理することにより、強度低下を防止しながら
、風合いを改善することができる。さらに、本セルラー
ゼを用いる方法では、アルカリ条件下でも繊維を処理す
ることができるので、従来の方法のように酸性から中性
条件下で処理するためのpH調整に必要な薬品類を節約
でき、また、pH調整のための時間と労力が削減できる
ので、実用上のメリットは大きい。さらに、本セルラー
ゼは界面活性剤に対しても安定であり、酵素処理と同時
に界面活性剤処理も可能である。
【0023】本発明によりセルロース系繊維を処理する
に際しては、酵素濃度0.1 重量%から2%重量程度
の水溶液をつくり、pHを6〜11の任意に調整したも
の、好ましくはpH8〜10に調整したものを処理液と
して使用する。pHの調整には、適宜、例えば酢酸緩衝
液、りん酸緩衝液、ほう酸−炭酸緩衝液を用いる。ゼル
ラーゼ処理液の温度は活性が安定な領域であれば良く、
通常30〜55℃の範囲で選定される。酵素の作用温度
を考えた場合、40〜50℃の範囲が好ましい。
に際しては、酵素濃度0.1 重量%から2%重量程度
の水溶液をつくり、pHを6〜11の任意に調整したも
の、好ましくはpH8〜10に調整したものを処理液と
して使用する。pHの調整には、適宜、例えば酢酸緩衝
液、りん酸緩衝液、ほう酸−炭酸緩衝液を用いる。ゼル
ラーゼ処理液の温度は活性が安定な領域であれば良く、
通常30〜55℃の範囲で選定される。酵素の作用温度
を考えた場合、40〜50℃の範囲が好ましい。
【0024】また、処理時間は処理液の酵素濃度、pH
、処理温度および処理しようとするセルロース系繊維の
種類、繊度によって左右され、目的とする風合い度を考
慮して決定される。通常は4〜48時間の範囲であるが
、処理時間が短いと十分な風合いが得られない場合もあ
るので、長めにするほうが望ましい。さらに、必要に応
じて処理液中に界面活性剤などの補助剤を添加してもよ
い。繊維の処理方法としては、通常の浸漬法やバット法
などのいずれの方法にも適用することができる。
、処理温度および処理しようとするセルロース系繊維の
種類、繊度によって左右され、目的とする風合い度を考
慮して決定される。通常は4〜48時間の範囲であるが
、処理時間が短いと十分な風合いが得られない場合もあ
るので、長めにするほうが望ましい。さらに、必要に応
じて処理液中に界面活性剤などの補助剤を添加してもよ
い。繊維の処理方法としては、通常の浸漬法やバット法
などのいずれの方法にも適用することができる。
【0025】本発明によって処理されるセルロース系繊
維は、綿などの天然セルロース100%からなるものだ
けでなく、他種繊維を混紡あるいは混織等して得られた
セルロース系繊維を任意の割合で混用したものでもよい
。本発明により処理されたセルロース系繊維は、従来方
法で処理されたものとは異なり、減量による強度低下は
なく、かつ、従来にない独特の風合いを有する。
維は、綿などの天然セルロース100%からなるものだ
けでなく、他種繊維を混紡あるいは混織等して得られた
セルロース系繊維を任意の割合で混用したものでもよい
。本発明により処理されたセルロース系繊維は、従来方
法で処理されたものとは異なり、減量による強度低下は
なく、かつ、従来にない独特の風合いを有する。
【0026】
【実施例】以下に実施例およびを参考例を挙げて本発明
を説明するが、本発明は下記の記載に限定されるもので
はない。なお、下記の記載中の%は特に断らない限り重
量を基準とするものである。
を説明するが、本発明は下記の記載に限定されるもので
はない。なお、下記の記載中の%は特に断らない限り重
量を基準とするものである。
【0027】実施例1
バチルス(Bacillus)属細菌SD402を培養
して得られたセルラーゼ原末をM/20りん酸緩衝液(
pH6)およびM/20ほう酸−炭酸緩衝液(pH9)
に0.2 %溶解してセルラーゼ溶液を調製した。この
セルラーゼ溶液を40℃に保温し、その溶液中に浴比1
:30で綿100%丸編みニットを12時間浸漬した。 その後、供試布を取り出して十分に水洗し、80℃、1
5分間の熱処理により酵素を失活させた。比較のため、
市販セルラーゼ剤A(セルラーゼAP,天野製薬社製)
、B(セルライザー,ナガセ生化学工業社製)およびセ
ルラーゼを使用しないブランクについてpH6で同様に
処理した。以上の処理によって得られた供試布の減量率
、引張強度保持率、曲げかたさを測定した結果を表2に
示す。
して得られたセルラーゼ原末をM/20りん酸緩衝液(
pH6)およびM/20ほう酸−炭酸緩衝液(pH9)
に0.2 %溶解してセルラーゼ溶液を調製した。この
セルラーゼ溶液を40℃に保温し、その溶液中に浴比1
:30で綿100%丸編みニットを12時間浸漬した。 その後、供試布を取り出して十分に水洗し、80℃、1
5分間の熱処理により酵素を失活させた。比較のため、
市販セルラーゼ剤A(セルラーゼAP,天野製薬社製)
、B(セルライザー,ナガセ生化学工業社製)およびセ
ルラーゼを使用しないブランクについてpH6で同様に
処理した。以上の処理によって得られた供試布の減量率
、引張強度保持率、曲げかたさを測定した結果を表2に
示す。
【0028】
【表2】
市販品A:セルラーゼAP(天野薬品社製)市販品B:
セルライザー(ナガセ生化学工業社製)
セルライザー(ナガセ生化学工業社製)
【0029】実
施例2 バチルス(Bacillus)属細菌SD402を培養
して得られたセルラーゼおよび前記市販セルラーゼ剤B
を用いて実施例1と同様の方法により、pH6にて処理
した。酵素処理によって得られた供試布の吸水性をラロ
ーズ法により求めた結果をブランクの結果とともに表3
に示す。
施例2 バチルス(Bacillus)属細菌SD402を培養
して得られたセルラーゼおよび前記市販セルラーゼ剤B
を用いて実施例1と同様の方法により、pH6にて処理
した。酵素処理によって得られた供試布の吸水性をラロ
ーズ法により求めた結果をブランクの結果とともに表3
に示す。
【0030】
【表3】
【0031】実施例3
酵素濃度0.1 %、処理時間4時間で、実施例1と同
様な方法でpH6および9にて処理した。得られた供試
布の風合いを市販の風合い測定機KES−FB2にて測
定した結果をブランクの結果とともに表4に示す。
様な方法でpH6および9にて処理した。得られた供試
布の風合いを市販の風合い測定機KES−FB2にて測
定した結果をブランクの結果とともに表4に示す。
【0032】
【表4】
【0033】参考例
従来の方法で用いられているセルラーゼはアスペルギル
ス・ニガー(Aspergillus niger)
、トリコデルマ・ビリデ(Trichoderma
viride)等の微生物から抽出されたものであり、
セルロース分解力(C1酵素作用)が強いことが判明し
ている。従って、これらのセルラーゼ含有溶液でセルロ
ース系繊維を処理すると分解が進みすぎて強度を著しく
低下させるものと考えられる。
ス・ニガー(Aspergillus niger)
、トリコデルマ・ビリデ(Trichoderma
viride)等の微生物から抽出されたものであり、
セルロース分解力(C1酵素作用)が強いことが判明し
ている。従って、これらのセルラーゼ含有溶液でセルロ
ース系繊維を処理すると分解が進みすぎて強度を著しく
低下させるものと考えられる。
【0034】実施例で用いたセルラーゼAP[アスペル
ギルス・ニガー(Aspergillus nige
r)由来のセルラーゼ]およびセルライザー[トリコデ
ルマ・ビリデ(Trichoderma virid
e)由来のセルラーゼ]についてのC1酵素作用(CM
Cアーゼ活性)およびCX酵素作用(アビセラーゼ活性
)をCMCアーゼ活性100としたときの相対活性値と
してまとめた結果を表5および表6に示す。
ギルス・ニガー(Aspergillus nige
r)由来のセルラーゼ]およびセルライザー[トリコデ
ルマ・ビリデ(Trichoderma virid
e)由来のセルラーゼ]についてのC1酵素作用(CM
Cアーゼ活性)およびCX酵素作用(アビセラーゼ活性
)をCMCアーゼ活性100としたときの相対活性値と
してまとめた結果を表5および表6に示す。
【0035】
【表5】
【0036】
【表6】
【0037】
【発明の効果】本発明の方法によれば、従来のセルラー
ゼを用いる方法のようなセルロース繊維の強度低下はな
い。また、良好な吸水性やセルロース系繊維表面の平滑
度の向上が得られるとともに、従来方法で用いられてい
るセルラーゼとはC1酵素作用、CX酵素作用が異なる
ため、従来方法では得られなかった独特な風合いを創り
出すことができる。さらには、アルカリ側で処理するこ
とができるので、繊維処理工程途中でのpH調整のため
の時間、労力、費用を軽減できる。
ゼを用いる方法のようなセルロース繊維の強度低下はな
い。また、良好な吸水性やセルロース系繊維表面の平滑
度の向上が得られるとともに、従来方法で用いられてい
るセルラーゼとはC1酵素作用、CX酵素作用が異なる
ため、従来方法では得られなかった独特な風合いを創り
出すことができる。さらには、アルカリ側で処理するこ
とができるので、繊維処理工程途中でのpH調整のため
の時間、労力、費用を軽減できる。
Claims (3)
- 【請求項1】 セルロース系繊維を、酵素処理条件下
でのアビセル分解活性がCMC分解活性の1%以下であ
るバチルス(Bacillus)属細菌が産出するセル
ラーゼ含有水溶液で処理することを特徴とするセルロー
ス系繊維の改質方法。 - 【請求項2】 セルラーゼが、バチルス(Bacil
lus)属細菌SD402(微工研寄託第11533号
)が産出するものである請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 セルロース系繊維を処理する際のpH
が6から11の範囲である請求項1または2に記載の方
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13551191A JPH04333673A (ja) | 1991-05-10 | 1991-05-10 | セルロース系繊維の改質方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13551191A JPH04333673A (ja) | 1991-05-10 | 1991-05-10 | セルロース系繊維の改質方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04333673A true JPH04333673A (ja) | 1992-11-20 |
Family
ID=15153475
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP13551191A Pending JPH04333673A (ja) | 1991-05-10 | 1991-05-10 | セルロース系繊維の改質方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH04333673A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0636740A4 (en) * | 1993-02-18 | 1995-08-30 | Meiji Seika Co | PREPARATION OF CELLULASE AND ITS USE FOR THE TREATMENT OF CELLULOSE FIBERS. |
-
1991
- 1991-05-10 JP JP13551191A patent/JPH04333673A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0636740A4 (en) * | 1993-02-18 | 1995-08-30 | Meiji Seika Co | PREPARATION OF CELLULASE AND ITS USE FOR THE TREATMENT OF CELLULOSE FIBERS. |
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