JPH0453519B2 - - Google Patents

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JPH0453519B2
JPH0453519B2 JP59173461A JP17346184A JPH0453519B2 JP H0453519 B2 JPH0453519 B2 JP H0453519B2 JP 59173461 A JP59173461 A JP 59173461A JP 17346184 A JP17346184 A JP 17346184A JP H0453519 B2 JPH0453519 B2 JP H0453519B2
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    • C12N9/0006Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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    • C12Q1/26Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
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Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 ヒトの組織はトランスアミナーゼのグルタメー
ト/ピルベート−トランスアミナーゼ(GPT)
EC2.6.1.2及びグルタメート/オキサロアセテー
ト−トランスアミナーゼ(GOT)EC2.6.1.1を筋
肉、血清及び器管中に含有する。特に血清中の
GPT含量の測定は、肝疾患と心疾患とを区別す
るための1つの重要な臨床上のパラメータであ
る。
たいていの場合、GPTは専ら肝中に現出し、
そこでは実質細胞の細胞質中にのみ存在してお
り、一方GOTは細胞質及びミトコンドリア中に
それぞれ約50%ずつ存在する。両方のトランスア
ミナーゼのこの局在化から種々の肝疾患で有用な
診断上の示唆が得られる。より高いGOT値は重
症の肝実質細胞疾患を表わす。
急性肝炎では血清中のGOT及びGPTは高ま
り、無黄疽症の場合もそうである。しばしば、既
に黄疽の症状の前に酵素活性度上昇を検出するこ
とができる。
慢性肝炎及び肝硬変ではGOT及びGPTはビー
ルス性肝炎の場合よりも低い。それらの測定は慢
性肝炎の場合、とりわけ疾患の進行及び治療の観
察に有用である。
それと共にGOTの測定は、心筋疾患の診断に
も使用される。
従来の技術 GPTもしくはGOTを測定するための常用のか
つ使われる多くの方法は、これらの酵素により接
触されかつグルタミン酸とピルベートもしくはオ
キサロアセテートを形成するアラニンもしくはア
スパルテートとα−ケトグルタル酸とのアミノ基
転移を適用する。ピルベートもしくはオキサロア
セテートはラクテートデヒドログナーゼ(LDH)
及び場合によりMDHの存在においてNADHで還
元することによりラクテートもしくはマレート及
びNAD+に変換され、その際にNAD+を公知方法
により直接UV中で又は後続の呈色反応により測
定する。
発明が解決しようとする問題点 この方法の基本的な欠点は、LDH自体が非特
異性(副活性)を有することであり、これはα−
ケト酸、特にα−ケトグルタル酸をα−ヒドロキ
シグルタル酸の形成下に変換させかつα−ヒドロ
キシグルタレートデヒドロゲナーゼ活性として表
わすことができる。
更に、この非特異性は、この公知方法を実施す
るための相応する試薬が不十分な安定性しか有し
ていないという結果をもたらす。それというのも
α−ヒドロキシグルタレートの形成の際に
NADHがNADに酸化されるからである。これは
潜行反応を惹起する。
問題点を解決するための手段 本発明はこの問題を解決するという課題に基ず
く。
本発明により、この課題は相応するアミノ酸と
α−ケトグルタル酸とを反応させてグルタミン酸
と、使用したアミノ酸に相応するα−ケト酸に変
換しかつ形成したα−ケト酸を、ラクテートデヒ
ドロゲナーゼ(LDH)及び場合によりマレート
デヒドロゲナーゼ(MDH)の存在において
NAD+及びα−オキシ酸の形成下にNADHで還
元して、測定することによりトランスアミナーゼ
を測定する方法において、乳酸菌のD−LDHを
使用することを特徴とする方法により解決され
る。
本発明は、乳酸菌のD−LDHがNADHの存在
においてもα−オキソグルタル酸を還元しないと
いう驚異的な発見に基ずいている。それ故、本発
明により前記の方法において従来常用の豚の心臓
からのLDHを乳酸菌のD−LDHに代える場合
に、妨害的な潜行反応は起らずかつその貯蔵安定
性の点で著しく改良された試薬が得られる。
本発明による有利な結果は乳酸菌からのすべて
のD−LDHにより得られる。D−LDHを形成す
る乳酸菌は、主にラクトバチルス属
(Lactobacillus)、ペジオコツクス属
(Pediococcus)ロイコノストツク属
(Leuconostoc)に含まれる〔Antonie nan
Leeuwenhoek、49巻、210頁(1983年)〕。乳酸菌
がL−LDHを形成する場合は好適ではない。菌
株がD−LDHもL−LDHも形成する場合、両方
の酵素の分離を行なうべきである。それ故、D−
LDHだけを含有する菌株からのL−DDH製剤が
優れている。特に良好な結果は、ラクトバチル
ス・ライヒマンニイ(Lactobacillus
leichmannii)DSM2699からのLDHにより得ら
れ、これはD−LDHに該当する。他の優れた菌
株はラクトバチルス・ラクチス(Lactobacillus
lactis)DSM20072、ラクトバチルス・プランタ
ルム(Lactobacillus plantarum)DSM20174、
ロイコノストツク・メセンテロイヂス
(Leuconostoc mesenteroides)DSM20193又は
ペジオコツクス・ペントサセウス(Pediococcus
Pentosaceus)DSM20280である。
本発明方法をグルタメート/ピルベードトラン
スアミナーゼ(GPT)の測定に使用する場合、
アミノ酸としてアラニンを使用し、これはピルベ
ートに脱アミノ反応しかつその後でラクテートに
還元される。グルタメート/オキサロアセテート
−トランスアミナーゼ(GOT)を測定する場合、
アミノ酸としてアスパルテートを使用し、これは
オキサロアセテートに脱アミノ反応し、その後で
マレートに還元される。
それ故、LDH、α−オキソグルタレート、相
応するアミノ酸、NADH、緩衝物質(PH6.5〜
8.5)及び場合によりMDHからなるトランスアミ
ナーゼを測定するための本発明による試薬は
LDHが乳酸菌のD−LDHであることを特徴とす
る。
GPT測定の場合は試薬のアミノ酸はアラニン
である。GOT測定の場合は試薬のアミノ酸はア
スパルテートであり、更にマレートデヒドロゲナ
ーゼ(MDH)である。
優れた実施形ではGPTを測定するための本発
明による試薬は、 乳酸菌からのD−LDH 250〜20000U/ α−オキソグルタレート2.5〜100ミリモル/ アラニン 50〜1000ミリモル/ NADH 0.01〜0.25ミリモル/ 及び 緩衝物質(PH6.5〜8.5) 10〜500ミリモル/ からなる。
他の優れた実施形ではGOTを測定するための
本発明による試薬は、 乳酸菌からのD−LDH 250〜20000U/ α−オキソグルタレート2.5〜100ミリモル/ アスパルテート 20〜10000ミリモル/ NADH 0.01〜0.25ミリモル/ NDH 100〜20000U/ 及び 緩衝物質(PH6.5〜8.5) 10〜500ミリモル/ をからなる。
本発明範囲においてGPT試薬の各成分の特に
優れている最終濃度はLDH1000〜1400U/、
アラニン600〜800ミリモル/、NADH0.10〜
0.20ミリモル/、α−オキソグルタレート10〜
25ミリモル/及び緩衝物質(PH7.3〜7.5)50〜
100ミリモル/である。
GOT試薬の場合相応する濃度に関する数値は、
LDH1000〜1400U/、MDH500〜1000U/、
NADH0.10〜0.20ミリモル/、アスパルテート
150〜250ミリモル/及びα−オキソグルタレー
ト10〜20ミリモル/及び緩衝物質(PH7.3〜
7.5)50〜100ミリモル/である。
緩衝物質としては記載のPH範囲で有効な緩衝物
質が該当する。優れているのはトリス緩衝剤、ト
ラ緩衝剤(トリエタノールアミン)及びホスフエ
ート緩衝剤である。
本発明により達成される効果は、添付図面から
明らかである。添付図面には、貯蔵時間(時間)
に対する開始吸光度の低下率(%)を公知方法も
しくは試薬と本発明方法もしくは試薬とを比較し
て示す。その測定に当つては、“モノテスト
ア・ALAT/ALT/GPH(Monotest a・
ALAT/ALT/GPT)”という名前で市販され
ているベーリンガー・マンハイム社
(Boehringer Mannheim GmbH)製のGPTを測
定するための試薬を本発明による試薬と比較し
た。試験における濃度は次の通りであつた: LDH 1200U/ NADH 0.180ミリモル/ α−オキソグルタレート 15ミリモル/ アラニン 500ミリモル/ トリス緩衝液(PH7.5) 100ミリモル/ 公知の試薬のLDHは豚心からのLDHであり、
本発明よる試薬のLDHはラクトバチルス・ライ
ヒマンニイDSM2699からのD−LDHであつた。
添付図面から公知の試薬の場合水浴中25℃で約
34時間後には全NADHが消失し(曲線1)、本発
明による試薬の場合水浴中25℃で120時間後も開
始吸光度の約71%が測定される(曲線3)ことが
明らかである。4℃(氷浴)及び120時間の貯蔵
時間の相応する数値は公知の試薬では残留吸光度
30%(曲線2)、本発明による試薬では90%であ
る(曲線4)。豚心からのLDHの代りに、L.カゼ
イ(L.casei)、L.キシロスス(L.xylosus)、B.ス
テアロテルモフイルス(B.Searothermophilus)
又は、L.プランタルム(L.Plantarum)からのL
−LDHを使用する場合にも豚心−LDHの場合と
同様の結果が得られる。
GPT測定するための前記の市販の試薬の代り
に“モノテスト アASAT/AST/GOT
(Monotest aASAT/AST/GOT)”の名前で
市販されているGOT測定用の相応する試薬を使
用する場合にも同一の曲線が得られる。この場
合、試験における濃度は次の通りであつた。
LDH 600U/ MDH 420U/ NADH 0.180ミリモル/ α−オキソグルタレート 12ミリモル/ アスパルテート 240ミリモル/ トリス緩衝物質(PH7.8) 80ミリモル/ この試薬では、それぞれの試料が内生ピルベー
ト及び一般には内生LDHも含有するのでLDHを
含有する必要がある。これにより、ピルベートの
緩慢な分解による潜行反応が惹起される。この分
解は本発明で使用される過剰量のLDHの添加に
より短時間で進行する。
この“副反応”は明らかにGPT測定でも同様
に起るが、この場合にはα−ヒドロキシグルタレ
ートヒドロゲナーゼ活性という更に大きな問題が
重なつている。しかし本発明により両方の問題は
同時に解決される。
それ故、本発明により何倍もの貯蔵安定性が達
成されることが明らかである。
本発明に好適なラクトバチルス・ライヒマンニ
イDSM2699からの酵素製剤は微生物LDHを取得
するための公知方法により、例えば“ジヤーナ
ル・オブ・ジエネラル・マイクロバイオロジー
(J.of General Microbiology)”、62巻、243頁
(1970年)に記載の方法により製造することがで
きる。原理的に、この方法は次のように行なう: 0.5モル−リン酸カリウム緩衝液(PH7)中に
懸濁したラクトバチルスの超音波による細胞崩
壊、遠心及び細胞カスの廃棄。
得られた微生物粗製エキスを酢酸でPH5.5にし、
硫酸プロタミンを加えて0.3%W/Vにしかつ沈
殿を遠心分離する。上澄みをPH7に調節しかつ硫
酸アンモニウムで50〜85%飽和で沈殿するフラク
シヨンを取得する。このフラクシヨンを緩衝液
(PH7)中で弱いアニオン交換体(DEAE−
Sephadex A50)を介してクロマトグラフイ処
理しかつNaCl傾斜液で溶離する。
約25%の収率でLDH剤が得られ、これは粗製
エキスに比べて30倍又はそれ以上精製されてい
る。この方法は、ラクトバチルス属及びロイコノ
ストツク属の他の菌株、例えばL.ラクチス
DSM20072、L.プランタルムDSM2017及びロイ
コノストツク・メセンテロイデスDSM20193にも
好適である。ペジオコツクス菌株の場合は“ジヤ
ーナル・オブ・バクテリオロジー(J.of
Bacteriology)”、121巻、602頁による方法を適
用する。
実施例 次に本発明を実施例により詳説する。
例 1 GPT活性の測定(ホスフエート緩衝液を用い
る) 試料物質:血清、ヘパリン−又はEDTA−原
形質 試薬(試験における最終濃度): ホスフエート緩衝液(PH7.4)
80ミリモル/ L−アラニン 800ミリモル/ LDH 1200U/ NADH 0.18ミリモル/ α−ケトグルタレート 18.0ミリモル/ 測定条件 波長:Hg365nm、340nm又334nm キユベツト:層厚1cm 測定温度:25℃ 空気に対して測定(吸光度低下)アナログ表
示板を備えた光度計で0.500を上廻る開始吸光
度を縦続接続により補正する。
キユベツト中にピペツト装入し、試薬混合物
(25℃)2.5mlと試料0.5mlを混合する。約1分後
に吸光度を読み取り、同時にストツプウオツチを
始動させる。更に正確に1分後、2分後及び3分
後に読み取る。
吸光度差/分(△E/分)0.06〜0.08
(Hg365nm)もしくは0.11〜0.18(Hg334及び
340nm)の場合、最初の2分間の測定だけを考慮
する(1分間は恒温保持しかつ2分間は測定す
る)。
吸光度差/(△E/分)から平均値を計算しか
つこれを次の計算式に入れる。
計算:試料中のGPTの活性は次式により計算
する。
U/(25℃)=1765×△E365on/分 U/(25℃)=952×△E340on/分 U/(25℃)=971×△E334on/分 例 2 GOT活性の測定(トリス緩衝液を用いる) 試料物質:血清、ヘパリン−又はEDTA−原
形質 試薬(試験における最終濃度): トリス緩衝液(PH7.5) 100ミリモル/ NADH 0.18ミリモル/ MDH 600U/ LDH 1200U/ α−ケトグルタレート 12ミリモル/ L−アスパルテート 200ミリモル/ 測定条件: 波長:Hg365nm、340nm又334nm キユベツト:層厚1cm 測定温度:25℃ 空気に対して測定(吸光度低下) 試薬溶液(25℃)2.5mlと試料0.5mlを混合し、
溶液をキユベツト中に装入する。約1分後に吸光
度を読み取りかつ同時にストツプウオツチを始動
させる。更に正確に1分後、2分後及び3分後に
読み取る。
吸光度差/分(△E/分)から平均値を出しか
つ計算式に入れる。
計算:試料中のGOTの活性は次式から計算す
る。
U/(25℃)=2059×△E365on/分 U/(25℃)=1111×△E340on/分 U/(25℃)=1133×△E334on/分
【図面の簡単な説明】
添付図面は、貯蔵時間に対する開始吸光度低下
率を公知の方法もしくは試薬と本発明による方法
もしくは試薬とを比較して示す図表である。 曲線1:市販の試薬、25℃で(水浴)、曲線
2:市販の試薬、4℃で(氷浴)、曲線3:本発
明による試薬、25℃で(水浴)、曲線4:本発明
による試薬、4℃で(氷浴)。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1 相応するアミノ酸とα−ケトグルタル酸とを
    反応させてグルタミン酸と、使用したアミノ酸に
    相応するα−ケト酸に変換しかつ形成したα−ケ
    ト酸を、ラクテートデヒドロゲナーゼ(LDH)
    及び場合によりマレートデヒドロゲナーゼ
    (MDH)の存在においてNAD+及びα−オキシ
    酸の形成下にNADHで還元して測定することに
    よりトランスアミナーゼを測定する方法におい
    て、乳酸菌のD−LDHを使用することを特徴と
    するトランスアミナーゼの測定法。 2 ラクトバチルス属、ペジオコツクス属及び/
    又はロイコノストツク属の微生物からのD−
    LDHを使用する特許請求の範囲第1項記載の方
    法。 3 グルタメート/ピルベート−トランスアミナ
    ーゼ(GPT)を測定し、かつアミノ酸としてピ
    ルベートに脱アミノ反応しかつラクテートに還元
    されるアラニンを使用する特許請求の範囲第1項
    又は第2項記載の方法。 4 グルタメート/オキサロアセテート−トラン
    スアミナーゼ(GOT)を測定し、かつアミノ酸
    としてオキサロアセテートに脱アミノ反応しかつ
    マレートに還元されるアスパルテートを使用する
    特許請求の範囲第1項又は第2項記載の方法。 5 ラクトバチルス・ライヒマンニイDSM2699、
    ラクトバチルス・ラクチスDSM20072、ラクトバ
    チルス・プランタルムDSM20174、ロイコノスト
    ツク・メセンテロイデスDSM20193又はペジオコ
    ツクス・ペントサセウスDSM20280からのD−
    LDHを使用する特許請求の範囲第2項から第4
    項までのいずれか1項記載の方法。 6 LDH、α−オキソグルタレート、相応する
    アミノ酸、NADH、緩衝物質(PH6.5〜8.5)及び
    場合によりMDHからなるトランスアミナーゼ測
    定試薬において、LDHが乳酸菌のD−LDHであ
    ることを特徴とするトランスアミナーゼを測定す
    る試薬。 7 アミノ酸がアラニンである特許請求の範囲第
    6項記載の試薬。 8 アミノ酸がアスパルテートである特許請求の
    範囲第6項記載の試薬。 9 乳酸菌からのD−LDH 250〜20000U/ α−オキソグルタレート2.5〜100ミリモル/ アラニン 50〜1000ミリモル/ NADH 0.01〜0.25ミリモル/ 及び 緩衝物質(PH6.5〜8.5) 10〜500ミリモル/ からなる特許請求の範囲第7項記載の試薬。 10 乳酸菌からのD−LDH 250〜20000U/ α−オキソグルタレート2.5〜100ミリモル/ アスパルテート 20〜1000ミリモル/ NADH 0.01〜0.25ミリモル/ MDH 100〜20000U/ 及び 緩衝物質(PH6.5〜8.5) 10〜500ミリモル/ からなる特許請求の範囲第8項記載の試薬。 11 LDHがラクトバチルス属、ペジオコツク
    ス属及び/又はロイコノストツク属の微生物から
    のD−LDHである特許請求の範囲第6項から第
    10項までのいずれか1項記載の試薬。 12 LDHがラクトバチルス・ライヒマンニイ
    DSM2699、ラクトバチルス・ラクチス
    DSM20072、ラクトバチルス・プランタルム
    DSM20174、ロイコノストツク・メセンテロイデ
    スDSM20193又はペジオコツクス・ペントサセウ
    スDSM20280からのD−LDHである特許請求の
    範囲第11項記載の試薬。
JP59173461A 1983-08-22 1984-08-22 トランスアミナ−ゼを測定する方法及び試薬 Granted JPS6078598A (ja)

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