JPH05271299A - プロテインa固定化吸着体 - Google Patents
プロテインa固定化吸着体Info
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 プロテインA特有の抗体(免疫グロブリン)
との特異的吸着性を良好に保持しており、極めて効率的
に分離、精製することができるプロテインA固定化吸着
体を提供する。 【構成】 繊維表面に酸無水物基を有する化合物を反応
させ、プロテインAを固定化したことを特徴とする。
との特異的吸着性を良好に保持しており、極めて効率的
に分離、精製することができるプロテインA固定化吸着
体を提供する。 【構成】 繊維表面に酸無水物基を有する化合物を反応
させ、プロテインAを固定化したことを特徴とする。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、繊維表面にプロテイン
Aを固定化し、抗体の効率的な分離、精製に用いられる
プロテインA固定化吸着体に関するものである。
Aを固定化し、抗体の効率的な分離、精製に用いられる
プロテインA固定化吸着体に関するものである。
【0002】
【従来の技術】従来より、ポリエステル、ポリアミド、
ポリアクリロニトリルなどの繊維を用いて抗体等の生理
活性物質を吸着させて、分離、精製することが提案され
ている(特公昭48−23891号公報等参照)。この
ような吸着に使用する吸着体に要求される性能として
は、抗体等の目的物質に対する特異的吸着性が大きいこ
と、単位重量あたりの吸着容量が大きいこと、分離,精
製操作を行う際、十分な機械的強度と安定性を有するこ
となどがあげられる。
ポリアクリロニトリルなどの繊維を用いて抗体等の生理
活性物質を吸着させて、分離、精製することが提案され
ている(特公昭48−23891号公報等参照)。この
ような吸着に使用する吸着体に要求される性能として
は、抗体等の目的物質に対する特異的吸着性が大きいこ
と、単位重量あたりの吸着容量が大きいこと、分離,精
製操作を行う際、十分な機械的強度と安定性を有するこ
となどがあげられる。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、従来の
吸着体においては、これらの性能を十分に満足させるも
のが得られていない。特に、単位重量あたりの吸着容量
が小さいので、吸着に要する装置が大型化するため、効
率的ではなく経済的に不利であった。
吸着体においては、これらの性能を十分に満足させるも
のが得られていない。特に、単位重量あたりの吸着容量
が小さいので、吸着に要する装置が大型化するため、効
率的ではなく経済的に不利であった。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、この点に
かんがみ、単位重量あたりの吸着容量の大きい抗体特異
的吸着体を開発すべくプロテインA固定化吸着体につい
て種々検討した結果、本発明に到達したものである。
かんがみ、単位重量あたりの吸着容量の大きい抗体特異
的吸着体を開発すべくプロテインA固定化吸着体につい
て種々検討した結果、本発明に到達したものである。
【0005】すなわち、本発明におけるプロテインA固
定化吸着体は、繊維表面に酸無水物基を有する化合物を
反応させ、プロテインAを固定化したことを特徴とする
ものである。
定化吸着体は、繊維表面に酸無水物基を有する化合物を
反応させ、プロテインAを固定化したことを特徴とする
ものである。
【0006】以下、本発明を詳細に説明する。本発明に
使用する繊維としては、ナイロン4、ナイロン6、ナイ
ロン12などのポリアミド、ポリウレタンなどの繊維の
ほか、ポリエチレンテレフタレートなどのポリエステ
ル、ポリアクリロニトリル、ポリビニルアルコール、再
生セルロース等の繊維を使用することができる。また、
これらの繊維は共重合体からなるものでもよい。単糸繊
度は10〜0.001デニールが好ましく、特に好まし
くは4〜0.001デニールである。また、繊維は、紡
績糸,わた,不織布,紙,織物,編物などの各種形状の
繊維集合体として使用することができる。
使用する繊維としては、ナイロン4、ナイロン6、ナイ
ロン12などのポリアミド、ポリウレタンなどの繊維の
ほか、ポリエチレンテレフタレートなどのポリエステ
ル、ポリアクリロニトリル、ポリビニルアルコール、再
生セルロース等の繊維を使用することができる。また、
これらの繊維は共重合体からなるものでもよい。単糸繊
度は10〜0.001デニールが好ましく、特に好まし
くは4〜0.001デニールである。また、繊維は、紡
績糸,わた,不織布,紙,織物,編物などの各種形状の
繊維集合体として使用することができる。
【0007】本発明に使用する酸無水物基を有する化合
物としては、例えば無水マレイン酸メチルビニルエーテ
ル共重合体、無水マレイン酸エチレン共重合体、無水マ
レイン酸スチレン共重合体などのポリカルボン酸無水
物、無水マレイン酸、無水フタル酸などがあげられる。
物としては、例えば無水マレイン酸メチルビニルエーテ
ル共重合体、無水マレイン酸エチレン共重合体、無水マ
レイン酸スチレン共重合体などのポリカルボン酸無水
物、無水マレイン酸、無水フタル酸などがあげられる。
【0008】本発明に使用するプロテインAは、細菌細
胞壁に存在する分子量が約42,000のタンパク質で
あって、免疫グロブリンと特異的に結合するものであ
る。
胞壁に存在する分子量が約42,000のタンパク質で
あって、免疫グロブリンと特異的に結合するものであ
る。
【0009】本発明のプロテインA固定化吸着体は、繊
維表面上に酸無水物基を有する化合物を反応させて、酸
無水物基を導入し、次いでプロテインAを反応させて上
記酸無水物基とプロテインAのアミノ基とを結合させて
固定化することにより得られる。
維表面上に酸無水物基を有する化合物を反応させて、酸
無水物基を導入し、次いでプロテインAを反応させて上
記酸無水物基とプロテインAのアミノ基とを結合させて
固定化することにより得られる。
【0010】本発明において、酸無水物基と反応しうる
反応基を有する繊維、例えばアミノ基等がある繊維の場
合は、酸無水物基を有する化合物を繊維表面に直接反応
させることができる。酸無水物基と反応しうる反応基を
有しない場合には、まず、エチレンジアミン、トリメチ
レンジアミン、テトラメチレンジアミンなどのアミン
や、エチレンイミンなどのイミンを、グルタルアルデヒ
ド、ヘキサメチレンジイソシアナートなどの2官能性試
薬あるいは、シクロヘキシルモルホリノエチルカルボジ
イミドメトトルエンスルホン酸、ジシクロヘキシルカル
ボジイミドなどの縮合剤などによりアミノ基を導入した
のち、酸無水物基を有する化合物を繊維表面に反応させ
ることができる。また、繊維表面上に無水マレイン酸を
γ線や電子線によりグラフト重合させ、酸無水物を反応
させることができる。酸無水物基を有する化合物を反応
させた繊維は、繊維表面に活性の酸無水物基を有するの
で、プロテインAの有するアミノ基との間に温和な条件
で容易に結合が生じ、共有結合により固定化することが
できる。プロテインA固定化処理は、プロテインAを水
あるいは生理食塩水に溶解した溶液に酸無水物基を有す
る化合物を反応させた繊維を加えて、常温で数時間攪拌
することにより達成できる。プロテインAの溶液中に
酸、塩基、塩などを添加してもよい。
反応基を有する繊維、例えばアミノ基等がある繊維の場
合は、酸無水物基を有する化合物を繊維表面に直接反応
させることができる。酸無水物基と反応しうる反応基を
有しない場合には、まず、エチレンジアミン、トリメチ
レンジアミン、テトラメチレンジアミンなどのアミン
や、エチレンイミンなどのイミンを、グルタルアルデヒ
ド、ヘキサメチレンジイソシアナートなどの2官能性試
薬あるいは、シクロヘキシルモルホリノエチルカルボジ
イミドメトトルエンスルホン酸、ジシクロヘキシルカル
ボジイミドなどの縮合剤などによりアミノ基を導入した
のち、酸無水物基を有する化合物を繊維表面に反応させ
ることができる。また、繊維表面上に無水マレイン酸を
γ線や電子線によりグラフト重合させ、酸無水物を反応
させることができる。酸無水物基を有する化合物を反応
させた繊維は、繊維表面に活性の酸無水物基を有するの
で、プロテインAの有するアミノ基との間に温和な条件
で容易に結合が生じ、共有結合により固定化することが
できる。プロテインA固定化処理は、プロテインAを水
あるいは生理食塩水に溶解した溶液に酸無水物基を有す
る化合物を反応させた繊維を加えて、常温で数時間攪拌
することにより達成できる。プロテインAの溶液中に
酸、塩基、塩などを添加してもよい。
【0011】
【作用】本発明においては、繊維表面に酸無水物基を有
する化合物を反応させて繊維上に活性な酸無水物基を導
入し、次いでこれにプロテインAを反応させることによ
り、プロテインAの活性を低下させることなく繊維上に
固定することができる。このプロテインAは優れた活性
を保持しているため、プロテインA特有の抗体(免疫グ
ロブリン)との特異的吸着性を良好に保持しており、こ
の吸着性を利用して抗体を効率的に分離、精製すること
ができる。
する化合物を反応させて繊維上に活性な酸無水物基を導
入し、次いでこれにプロテインAを反応させることによ
り、プロテインAの活性を低下させることなく繊維上に
固定することができる。このプロテインAは優れた活性
を保持しているため、プロテインA特有の抗体(免疫グ
ロブリン)との特異的吸着性を良好に保持しており、こ
の吸着性を利用して抗体を効率的に分離、精製すること
ができる。
【0012】
【実施例】以下、実施例によって本発明をさらに具体的
に説明する。 実施例1 ナイロン6からなる繊維(1デニール)を3N塩酸中に
30℃、30分間浸漬した後、蒸留水にて洗浄した。洗
浄、乾燥後、2%(w/v)無水マレイン酸−メチルビニル
エーテル共重合体の脱水アセトン溶液中に室温で1時間
浸漬し、アセトンにて洗浄後、真空乾燥した。得られた
繊維をプロテインA(SIGMA社製)を含む10mM酢
酸(pH4.0)緩衝液中に室温で2時間浸漬すること
によりプロテインAの固定化を行った。
に説明する。 実施例1 ナイロン6からなる繊維(1デニール)を3N塩酸中に
30℃、30分間浸漬した後、蒸留水にて洗浄した。洗
浄、乾燥後、2%(w/v)無水マレイン酸−メチルビニル
エーテル共重合体の脱水アセトン溶液中に室温で1時間
浸漬し、アセトンにて洗浄後、真空乾燥した。得られた
繊維をプロテインA(SIGMA社製)を含む10mM酢
酸(pH4.0)緩衝液中に室温で2時間浸漬すること
によりプロテインAの固定化を行った。
【0013】このようにして得られたプロテインA固定
化ナイロン繊維1gをカラム(0.5×15cm)に詰
め、0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝液
(pH7.2,以下PBS緩衝液と略す。)に0.1%
(w/v)アジ化ナトリウムを加えた溶液で平衡化し、その
後の反応に用いた。
化ナイロン繊維1gをカラム(0.5×15cm)に詰
め、0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝液
(pH7.2,以下PBS緩衝液と略す。)に0.1%
(w/v)アジ化ナトリウムを加えた溶液で平衡化し、その
後の反応に用いた。
【0014】ウサギ血液より得られる血清を等量のPB
S緩衝液で希釈したものを試料とした。この試料を流速
1ml/3min でプロテインA固定化ナイロン繊維充填カ
ラムに通し、通過液を分取した。さらに、280nmでの
吸光度測定により通過液中のタンパク質の有無を確認し
ながら、この波長でのタンパク質の吸収がなくなるまで
PBS緩衝液を通過させた。次いで、100mMクエン酸
緩衝液(pH4.0)でカラムに吸着したIgG(免疫
グロブリンG)を溶出し、溶出液に直ちに1MのPBS
緩衝液を加えた。
S緩衝液で希釈したものを試料とした。この試料を流速
1ml/3min でプロテインA固定化ナイロン繊維充填カ
ラムに通し、通過液を分取した。さらに、280nmでの
吸光度測定により通過液中のタンパク質の有無を確認し
ながら、この波長でのタンパク質の吸収がなくなるまで
PBS緩衝液を通過させた。次いで、100mMクエン酸
緩衝液(pH4.0)でカラムに吸着したIgG(免疫
グロブリンG)を溶出し、溶出液に直ちに1MのPBS
緩衝液を加えた。
【0015】このようにして得られた、カラムの通過液
の画分とカラムに吸着した画分をそれぞれSDS−ポリ
アクリルアミド電気泳動法(Laemmli 1970)を用いること
により含まれるタンパク質を同定した。その結果、プロ
テインA固定化ナイロン繊維カラムに吸着した画分には
分子量15万付近にIgGに相当する単一のバンドが確
認され、一方通過液画分には他の血漿タンパクが確認さ
れたが、IgGに相当する位置にバンドは検出されず、
IgGが良好にプロテインA固定化ナイロン繊維カラム
に吸着したことが分かった。
の画分とカラムに吸着した画分をそれぞれSDS−ポリ
アクリルアミド電気泳動法(Laemmli 1970)を用いること
により含まれるタンパク質を同定した。その結果、プロ
テインA固定化ナイロン繊維カラムに吸着した画分には
分子量15万付近にIgGに相当する単一のバンドが確
認され、一方通過液画分には他の血漿タンパクが確認さ
れたが、IgGに相当する位置にバンドは検出されず、
IgGが良好にプロテインA固定化ナイロン繊維カラム
に吸着したことが分かった。
【0016】実施例2 ポリエチレンテレフタレートからなる繊維(1デニー
ル)を1N水酸化ナトリウム中に70℃、1時間浸漬
し、蒸留水にて洗浄後、0.1N塩酸中に70℃、1時
間浸漬処理した。蒸留水にて洗浄、乾燥後、10%(w/
v)のポリエチレンイミン水溶液とメタノールとの1:
5混合液に室温で30分間浸漬し、5%(w/v)ジシクロ
ヘキシルカルボジイミドのメタノール溶液を加え、引き
続き室温で2時間浸漬した。メタノールにて洗浄、乾燥
後、2%(w/v)無水マレイン酸−メチルビニルエーテル
共重合体の脱水アセトン溶液中に室温で1時間浸漬し、
アセトンにて洗浄後、真空乾燥した。得られた繊維をプ
ロテインA(SIGMA社製)を含む10mM酢酸(pH
4.0)緩衝液中に室温で2時間浸漬することによりプ
ロテインAの固定化を行った。
ル)を1N水酸化ナトリウム中に70℃、1時間浸漬
し、蒸留水にて洗浄後、0.1N塩酸中に70℃、1時
間浸漬処理した。蒸留水にて洗浄、乾燥後、10%(w/
v)のポリエチレンイミン水溶液とメタノールとの1:
5混合液に室温で30分間浸漬し、5%(w/v)ジシクロ
ヘキシルカルボジイミドのメタノール溶液を加え、引き
続き室温で2時間浸漬した。メタノールにて洗浄、乾燥
後、2%(w/v)無水マレイン酸−メチルビニルエーテル
共重合体の脱水アセトン溶液中に室温で1時間浸漬し、
アセトンにて洗浄後、真空乾燥した。得られた繊維をプ
ロテインA(SIGMA社製)を含む10mM酢酸(pH
4.0)緩衝液中に室温で2時間浸漬することによりプ
ロテインAの固定化を行った。
【0017】このようにして得られたプロテインA固定
化ポリエステル繊維1gをカラム(0.5×15cm)に
詰め、0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝
液(pH7.2)に0.1%(w/v)アジ化ナトリウムを
加えた溶液で平衡化し、その後の反応に用いた。
化ポリエステル繊維1gをカラム(0.5×15cm)に
詰め、0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝
液(pH7.2)に0.1%(w/v)アジ化ナトリウムを
加えた溶液で平衡化し、その後の反応に用いた。
【0018】ウサギ血液より得られる血清を等量のPB
S緩衝液で希釈したものを試料とした。この試料を流速
1ml/3min でプロテインA固定化ポリエステル繊維カ
ラムに通過させ、通過液を分取した。さらに、280nm
での吸光度測定により通過液中のタンパク質の有無を確
認しながら、この波長でのタンパク質の吸収がなくなる
までPBS緩衝液を通過させた。次いで100mMクエン
酸緩衝液(pH4.0)でカラムに吸着したIgGを溶
出し、溶出液に直ちに1MのPBS緩衝液を加えた。
S緩衝液で希釈したものを試料とした。この試料を流速
1ml/3min でプロテインA固定化ポリエステル繊維カ
ラムに通過させ、通過液を分取した。さらに、280nm
での吸光度測定により通過液中のタンパク質の有無を確
認しながら、この波長でのタンパク質の吸収がなくなる
までPBS緩衝液を通過させた。次いで100mMクエン
酸緩衝液(pH4.0)でカラムに吸着したIgGを溶
出し、溶出液に直ちに1MのPBS緩衝液を加えた。
【0019】このようにして得られた、カラムの通過液
の画分とカラムに吸着した画分をそれぞれSDS−ポリ
アクリルアミド電気泳動法(Laemmli 1970)を用いること
により含まれるタンパク質を同定した。その結果、プロ
テインA固定化ポリエステル繊維カラムに吸着した画分
には分子量15万付近にIgGに相当する単一のバンド
が確認され、一方通過液画分には他の血漿タンパクが確
認されたが、IgGに相当する位置にバンドは検出され
なかった。
の画分とカラムに吸着した画分をそれぞれSDS−ポリ
アクリルアミド電気泳動法(Laemmli 1970)を用いること
により含まれるタンパク質を同定した。その結果、プロ
テインA固定化ポリエステル繊維カラムに吸着した画分
には分子量15万付近にIgGに相当する単一のバンド
が確認され、一方通過液画分には他の血漿タンパクが確
認されたが、IgGに相当する位置にバンドは検出され
なかった。
【0020】実施例3 ポリウレンタンからなる繊維(5デニール)を蒸留水中
に浸漬し、80℃、1時間熱水処理した。全モノマー濃
度3mol/ml、無水マレイン酸と2ーヒドロキシエチルメ
タクリレートのモノマー組成を1:3としたアセトン溶
液に、熱水処理後、蒸留水にて洗浄、乾燥したポリウレ
タン繊維を浸漬し、60COーγ線を線量率10kGy/h 、
窒素雰囲気下、常温常圧下で、1時間同時照射すること
によりグラフト重合反応を行った。照射後、繊維を取り
出しアセトンでよく洗浄した後、乾燥させた。得られた
繊維をプロテインA(SIGMA社製)を含む10mM酢
酸(pH4.0)緩衝液中に室温で2時間浸漬すること
によりプロテインAの固定化を行った。
に浸漬し、80℃、1時間熱水処理した。全モノマー濃
度3mol/ml、無水マレイン酸と2ーヒドロキシエチルメ
タクリレートのモノマー組成を1:3としたアセトン溶
液に、熱水処理後、蒸留水にて洗浄、乾燥したポリウレ
タン繊維を浸漬し、60COーγ線を線量率10kGy/h 、
窒素雰囲気下、常温常圧下で、1時間同時照射すること
によりグラフト重合反応を行った。照射後、繊維を取り
出しアセトンでよく洗浄した後、乾燥させた。得られた
繊維をプロテインA(SIGMA社製)を含む10mM酢
酸(pH4.0)緩衝液中に室温で2時間浸漬すること
によりプロテインAの固定化を行った。
【0021】このようにして得られたプロテインA固定
化ポリウレタン繊維1gをカラム(0.5×15cm)に
詰め、0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝
液(pH7.2)に0.1%(w/v)アジ化ナトリウムを
加えた溶液で平衡化し、その後の反応に用いた。
化ポリウレタン繊維1gをカラム(0.5×15cm)に
詰め、0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝
液(pH7.2)に0.1%(w/v)アジ化ナトリウムを
加えた溶液で平衡化し、その後の反応に用いた。
【0022】ウサギ血液より得られる血清を等量のPB
S緩衝液で希釈したものを試料とした。この試料を流速
1ml/3min でプロテインA固定化ポリウレタン繊維カ
ラムに通過させ、通過液を分取した。さらに、280nm
での吸光度測定により通過液中のタンパク質の有無を確
認しながら、この波長でのタンパク質の吸収がなくなる
までPBS緩衝液を通過させた。次いで100mMクエン
酸緩衝液(pH4.0)でカラムに吸着したIgGを溶
出し、溶出液に直ちに1MのPBS緩衝液を加えた。
S緩衝液で希釈したものを試料とした。この試料を流速
1ml/3min でプロテインA固定化ポリウレタン繊維カ
ラムに通過させ、通過液を分取した。さらに、280nm
での吸光度測定により通過液中のタンパク質の有無を確
認しながら、この波長でのタンパク質の吸収がなくなる
までPBS緩衝液を通過させた。次いで100mMクエン
酸緩衝液(pH4.0)でカラムに吸着したIgGを溶
出し、溶出液に直ちに1MのPBS緩衝液を加えた。
【0023】このようにして得られた、カラムの通過液
の画分とカラムに吸着した画分をそれぞれSDS−ポリ
アクリルアミド電気泳動法(Laemmli 1970)を用いること
により含まれるタンパク質を同定した。その結果、プロ
テインA固定化ポリウレタン繊維カラムに吸着した画分
には分子量15万付近にIgGに相当する単一のバンド
が確認され、一方通過液画分には他の血漿タンパクが確
認されたが、IgGに相当する位置にバンドは検出され
なかった。
の画分とカラムに吸着した画分をそれぞれSDS−ポリ
アクリルアミド電気泳動法(Laemmli 1970)を用いること
により含まれるタンパク質を同定した。その結果、プロ
テインA固定化ポリウレタン繊維カラムに吸着した画分
には分子量15万付近にIgGに相当する単一のバンド
が確認され、一方通過液画分には他の血漿タンパクが確
認されたが、IgGに相当する位置にバンドは検出され
なかった。
【0024】比較例1 プロテインA−Sepharose CL-4B (ファルマシア社製)
1.5gを0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸
緩衝液(pH8.0)に0.1%(w/v)アジ化ナトリウ
ムを加えた溶液で膨潤させた後、カラム(0.5×15
cm)に詰め、同液で平衡化した。
1.5gを0.9%塩化ナトリウムを含む10mMリン酸
緩衝液(pH8.0)に0.1%(w/v)アジ化ナトリウ
ムを加えた溶液で膨潤させた後、カラム(0.5×15
cm)に詰め、同液で平衡化した。
【0025】こうして得られたプロテインA−Sepharos
e カラムに実施例1と同様にウサギ血清を通過させ、カ
ラムに吸着した画分と通過した画分をそれぞれSDS−
ポリアクリルアミド電気泳動にかけることによりIgG
の精製を確認した。その結果、カラムに吸着した画分で
はIgGに相当する位置のバンドの他に少量の血漿タン
パクのバンドが認められ、一方通過液の画分においては
血漿タンパクの他に少量ではあるが、IgGに相当する
バンドも認められ、カラムへのIgGの選択的吸着が良
好でないことが分かった。
e カラムに実施例1と同様にウサギ血清を通過させ、カ
ラムに吸着した画分と通過した画分をそれぞれSDS−
ポリアクリルアミド電気泳動にかけることによりIgG
の精製を確認した。その結果、カラムに吸着した画分で
はIgGに相当する位置のバンドの他に少量の血漿タン
パクのバンドが認められ、一方通過液の画分においては
血漿タンパクの他に少量ではあるが、IgGに相当する
バンドも認められ、カラムへのIgGの選択的吸着が良
好でないことが分かった。
【0026】
【発明の効果】本発明のプロテインA固定化吸着体によ
れば、プロテインAの活性を低下させることなく繊維上
に固定されているので、プロテインA特有の抗体(免疫
グロブリン)との特異的吸着性を良好に保持しており、
抗体を選択的に吸着することにより極めて効率的に分
離、精製することができ、経済的に有利である。
れば、プロテインAの活性を低下させることなく繊維上
に固定されているので、プロテインA特有の抗体(免疫
グロブリン)との特異的吸着性を良好に保持しており、
抗体を選択的に吸着することにより極めて効率的に分
離、精製することができ、経済的に有利である。
Claims (1)
- 【請求項1】 繊維表面に酸無水物基を有する化合物を
反応させ、プロテインAを固定化したことを特徴とする
プロテインA固定化吸着体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9738292A JPH05271299A (ja) | 1992-03-25 | 1992-03-25 | プロテインa固定化吸着体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9738292A JPH05271299A (ja) | 1992-03-25 | 1992-03-25 | プロテインa固定化吸着体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05271299A true JPH05271299A (ja) | 1993-10-19 |
Family
ID=14190964
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9738292A Pending JPH05271299A (ja) | 1992-03-25 | 1992-03-25 | プロテインa固定化吸着体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05271299A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005035585A1 (ja) * | 2003-10-10 | 2005-04-21 | National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology | 抗体アフィニティ担体 |
| US7781203B2 (en) | 2005-12-29 | 2010-08-24 | Corning Incorporated | Supports for assaying analytes and methods of making and using thereof |
| JP2019173244A (ja) * | 2018-03-29 | 2019-10-10 | 国立大学法人福井大学 | 芯鞘型複合繊維 |
-
1992
- 1992-03-25 JP JP9738292A patent/JPH05271299A/ja active Pending
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005035585A1 (ja) * | 2003-10-10 | 2005-04-21 | National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology | 抗体アフィニティ担体 |
| JP2005112827A (ja) * | 2003-10-10 | 2005-04-28 | National Institute Of Advanced Industrial & Technology | 抗体アフィニティ担体 |
| US7781203B2 (en) | 2005-12-29 | 2010-08-24 | Corning Incorporated | Supports for assaying analytes and methods of making and using thereof |
| US7981665B2 (en) | 2005-12-29 | 2011-07-19 | Corning Incorporated | Supports for assaying analytes and methods of making and using thereof |
| US8168399B2 (en) | 2005-12-29 | 2012-05-01 | Corning Incorporated | Supports for assaying analytes and methods of making and using thereof |
| JP2019173244A (ja) * | 2018-03-29 | 2019-10-10 | 国立大学法人福井大学 | 芯鞘型複合繊維 |
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