JPH06233693A - 連鎖球菌m蛋白免疫原 - Google Patents

連鎖球菌m蛋白免疫原

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JPH06233693A
JPH06233693A JP5172076A JP17207693A JPH06233693A JP H06233693 A JPH06233693 A JP H06233693A JP 5172076 A JP5172076 A JP 5172076A JP 17207693 A JP17207693 A JP 17207693A JP H06233693 A JPH06233693 A JP H06233693A
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 連鎖球菌感染予防用ワクチンの免疫原として
使用することができるポリペプタイドを提供する。 【構成】 ストレプトコッカス・ピオゲネス(Streptoc
occus pyogenes)の免疫反応性抗原決定部位を有するポ
リペプタイドをコードするストレプトコッカス・ピオゲ
ネスM蛋白質をコードする精製されたDNA配列を含む
組換えプラスミドを含む単細胞生物により生成されるス
トレプトコッカス・ピオゲネスM蛋白質の免疫反応性抗
原決定部位を有するポリペプタイド、及びその製法。

Description

【発明の詳細な説明】 【産業上の利用分野】
【0001】ここに記載されている発明は、その一部に
つき厚生省(Department of Healthand Human Service
s)の国立衛生研究所からの補助金の援助を受けてなさ
れたものである。 1.発明の分野 本発明はA群連鎖球菌のM6蛋白質のような抗食菌作用
性連鎖球菌蛋白質を診断用プローブとして用いるため
の、及びそれを免疫原として利用したワクチンを製造す
るための組成物及び方法に関する。M蛋白質は繊維状表
面分子であって、それは連鎖球菌を、感染した宿主生物
のマクロファージ及び多形核(polymorphonuclear )好
中球(neutrophiles)により、食菌作用に抵抗するよう
になしうる。
【0002】本発明はM蛋白質又はその一部をコードす
るDNA配列をビールスDNA、プラスミドDNA又は
コスミドDNAのようなプラスミドDNAに挿入するた
めに組換えDNA技術を利用し、これによりそのプラス
ミドは細菌の宿主又は他の単細胞系中にM蛋白質の遺伝
子を複製し発現させることができる。生ずる組換えDN
A分子はM蛋白質、又はそのある部分又は分子の変化し
たものを製造しうるように宿主細胞に導入される。産生
した蛋白質はついで分離され、精製され連鎖球菌感染に
対するワクチン中の免疫原として用いるために修飾され
る。
【0003】本発明はさらにA群、C群及びG群の連鎖
球菌の検出法を提供する。かかる検出はA群連鎖球菌の
M蛋白質をコードする全遺伝子又はその遺伝子の断片に
基づく特定の分子状プローブを使用して達成される。交
雑スクリーニング法において有用なDNAプローブが連
鎖球菌感染と疑われる場合の臨床的分離物の検査のため
にここに記載されている。
【0004】
【従来の技術、発明が解決しようとする課題】
2.発明の背景 急性リウマチ熱や急性糸球体腎炎(glomerulonephriti
s)がA群連鎖球菌感染の後遺症であることは広く認め
られているところである。熱帯及び亜熱帯の開発途上国
においてはリウマチ性心臓疾患が現在心障害の最も普通
の形である。世界のある開発途上の都市部の貧民街にお
ける学齢児童についてこの病気の流行率は1,000人
に対し22−23人もの高さであることが報告されてい
る。インドだけでも6百万もの多くの子供が苦しんでい
ることとなる。この病気の正確な発病機構はわからない
が、リウマチ熱、さらに急性腎炎がストレプトコッカス
・ピオゲネス(streptococcus pyogenes)(A群連鎖球
菌)の感染に伴うものであることは明らかである。
【0005】連鎖球菌M蛋白質は、それが食細胞攻撃に
対する抵抗性を生物に与えるという事実に基づいてこの
細菌の重要な毒性因子である。抗原的変化は、それによ
りA群連鎖球菌が宿主の免疫反応を避けることができ、
その結果人間に病気を起こすという最初の機構である。
A群連鎖球菌感染に対する抵抗性は、生物の表面に見い
だされる繊維状分子であるM蛋白質に対する形質特異的
(type-specific )な抗体の存在によるものである。分
類し得ない(nontypable)株のいくつかに加えて、現在
では約70の明らかなA群連鎖球菌M形が認められてい
る。ある種のM型の間で交叉反応性があるのは普通であ
るという事実にも拘わらず、同族の型に対してつくられ
た抗体のみが生体の食菌作用を発生せしめうる(すなわ
ち、それらはオプソニン抗体である)。さらに、すべて
の同族体、又は形質特異性抗体が食菌性であるというわ
けではない。
【0006】特定の抗血清がA群連鎖球菌に対してつく
られうるという事実は、咽喉洗滌によって得られるもの
のような臨床上の分離物を血清学的な試験に付すること
により連鎖球菌感染を検出することを可能にした。感染
におけるA群連鎖球菌の同定は純粋培養中の生物の単
離、群特異的炭水化物の抽出、及び群特異的抗血清との
反応とを必要とする。すべての病原性株に対してのみ共
通な性質に基づきうる連鎖球菌感染に対する臨床試験
は、従って非常に望ましいものとなる。
【0007】2.1組換えDNA技術と遺伝子の発現 組換えDNA技術は、それにより特定のDNA断片が宿
主細胞中で複製し、転写しうるベクターと呼ばれる遺伝
学的要素中に挿入されるDNAクローニングの技術を包
含している。ベクターはプラスミド又はビールスのいず
れでもありうる。プラスミドは小さい環状の二重螺旋D
NAの分子で、それは天然にバクテリアや酵母中に見出
され、そこで宿主細胞の繁殖とは無関係な単位として複
製する。これらのプラスミドは通常全宿主細胞DNAの
わずかなフラクションとしてのみ説明され、しばしば抗
生物質に対する耐性を与える遺伝子を保有している。こ
れらの遺伝子、そして比較的小さい大きさのプラスミド
DNAが組換えDNA技術において利用される。
【0008】組換えDNA分子の挿入されたDNA断片
は自然には宿主生物と情報を交換しない生物から誘導さ
れうるものであり、また全体的にあるいは部分的に合成
的に作られうるものである。制限酵素及び結合方法(li
gation method)を用いて組換えプラスミドを製造する方
法はコーエン及びボイヤー発明にかかわる発行された米
国特許第4,237,224号に記載されている。この
ようにしてつくられた組換えプラスミドは形質転換の手
段により単細胞生物中に導入され、複製される。そこに
記載されている技術の一般的適用性の故に、米国特許第
4,237,224号はここに本明細書中に参考文献と
して包含される。
【0009】単細胞生物中に組換えDNA分子を導入す
る別の方法は、コリンズ及びホーンにより、米国特許第
4,304,863号に記載されており、それもまたこ
こに参考文献として包含される。この方法は、バクテリ
オファージ・ベクターによるパッケージング/トランス
ダクション(packaging/transduction)システムを利用
するものである。
【0010】プラスミドは高次螺旋であるので、宿主細
胞のDNAから容易に分離することができ、精製するこ
とができる。クローニング・ベクターとして用いるに
は、このような精製プラスミドDNA分子は制限ヌクレ
アーゼで切断され、クローンさるべきDNA断片に結合
される。製造された雑種のプラスミドDNA分子は、次
いで一時的に大分子(合理的に)に対して浸透性を有す
るようにされたバクテリア中に再導入される。処理され
た細胞のいくつかだけがプラスミドを拾いあげ、これら
の細胞はプラスミドによってそれらが獲得している抗生
物質耐性によって選択できる。それはそれらのものだけ
が抗生物質の存在下に生育するからである。これらのバ
クテリアは分裂するから、プラスミドもまた当初のDN
A断片の多数のコピーをつくるように複製する。繁殖期
間の終りに、雑種のプラスミドDNA分子は精製され当
初のDNA断片のコピーは同じエンドヌクレアーゼによ
る第二の処理で切断される。
【0011】構築に用いられた方法には無関係に、組換
えDNA分子は宿主細胞と両立し得なければならない。
すなわち、宿主細胞中で自律的に複製できなければなら
ない。組換えDNA分子は、その組換えDNA分子によ
り形質転換された宿主細胞を選択できるマーカーの機能
をも有していなければならない。さらに加えて、プラス
ミド上に適当な複製、転写及び翻訳のシグナルが正確に
配置されているならば、外来遺伝子は形質転換細胞及び
その子孫中に適切に発現するであろう。
【0012】2.2ワクチン ワクチンは病気の制御と予防へのアプローチである。ワ
クチンは抗原の免疫原部分をアジュバントと混合するこ
とにより製造できる。この製剤は宿主の動物又はヒトに
注射すると、その抗原に対する抗体の産生を誘導し、そ
の抗原を生ずる対象生物により起る病気に対する活性な
免疫を与える。
【0013】ペプタイド・ワクチンは、バクテリアおよ
びビールスの表面蛋白質の部分のような必要かつ適切な
免疫原物質のみを含んでいる。ペプタイド・ワクチンは
高度に純化されたバクテリアの画分から該当するペプタ
イドを単離することにより、又は該当するポリペプタイ
ドを合成することによってつくることができる。ペプタ
イド・ワクチンの大きい利点は、バクテリア起原の無関
係な物質や、宿主又は提供主から導かれる障害となる物
質の排除にある。しかし、現在において、これらの方法
を用いてのペプタイド・ワクチンの製造は、一般的に広
範囲の商業的使用にはあまりにも高価につく。組換えD
NA技術はペプタイド・ワクチンの製造に多くを提供す
る。バクテリアの適切な免疫原部分をコードするバクテ
リア遺伝子の分子クローニング及び宿主細胞での発現に
より、ペプタイド・ワクチンにおいて使用するための適
切な免疫原の充分な量を製造することができる。
【0014】ワクチンは、しばしば種々のアジュバンド
とともに乳化液として投与される。アジュバンドは、免
疫原それだけを投与するときよりも、よりわずかな投与
量でより少ない量の抗原を用いて、より持続性があり、
より高レベルの免疫を達成することに役立つ。アジュバ
ンドの作用機序は複雑であり、完全にはわからない。し
かし、それは細網内皮組織の食菌作用や他の活性を刺激
するとともに、抗原の放出と分解を遅延させることを含
んでいるであろう。アジュバンドの例としては、フロイ
ンドのアジュバンド(Freund′s adjuvant)(完全又は
不完全)、アジュバント65(落花生油、マンナイド・
モノオレエート及びモノステアリン酸アルミニウムを含
む)、及び水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム又
は明礬のような鉱物質ゲルが挙げられる。フロインドの
アジュバントは、もはやヒトや食用動物のためのワクチ
ン製剤には用いられない。それは代謝できない鉱物質油
を含んでいて、それが潜在的癌原性物質(potential ca
rcinogen) でありうることによる。しかし、鉱物質ゲル
は商業上獣医用ワクチンに広く用いられている。
【0015】2.3M蛋白質抗原を用いる連鎖球菌ワク
チン開発の試み フォックス(ジャーナル・オブ・イムノロジー93:8
26−837(1964))は、連鎖球菌から精製した
M蛋白質を型特異的(type−specific) な滅菌性抗体
(bactericidal antibodies)を誘導するためにウサギに
おける免疫原として用いた。しかし、部分的精製連鎖球
菌M蛋白質でヒトにワクチン接種をする試みは常に被接
種者に強い局所および組織的反応が起ったため成功に至
らなかった。シュミット、ジャーナル・インフェクシャ
ス・デイジーズ106:250−255(1960)及
びポッターら、ジャーナル・クリニカル・インベストメ
ント41:301−310(1962)参照。フォック
スら、ジャーナル・オブ・インフェクシャス・デイジー
120:598−604(1969)及びフォックス
ら、ジャーナル・オブ・エクスペリメンタル・メジシン
124:1135−1151(1966)は、精製され
た酸抽出したM蛋白質を用い、一部についてそのワクチ
ンを用いて成功した。ワクチン接種を受けた22名の成
人のうち15名は型特異性抗体力価の二次上昇を伴う反
応を示したが、5人についてのみ抗バクテリア抗体の上
昇を示したにすぎなかった。
【0016】ビーチェイら、ジャーナル・オブ・エクス
ペリメンタル・メジシン150:862−877(19
79)は、M24蛋白質のペプシン誘導画分(pepsin-d
erived fragment)(Pep M24)の明礬沈澱製剤で12
名の成人にワクチン接種を行なった。局所的又は全身的
反応が観察されなかったから、これは充分に親和性があ
るものと考えられた。ワクチン接種を受けた12名のう
ち10名がM24型特異的オプソニン抗体を産生するこ
とにより反応を示した。
【0017】デイルらによる免疫学的研究、ジャーナル
・オブ・エクスペリメンタル・メジシン151:102
6−1037(1980)によれば、12名のボランテ
アのうちの2名がM24で免疫されたがM5及びM6蛋
白質の両者に結合するように改良された抗体のM6だけ
がオプソニックであった。しかし、ビーチイらは、シン
ポジウム・オン・バクテリアル・ワクチン、ジェイ・ビ
ー・ロビンス編、ジェイ・シー・ヒル、ブライアン・デ
ッカー・パブリシャー、ニューヨーク、401−410
頁(1981)で、精製された Pep M5蛋白質(M5
蛋白質のペプシン誘導画分)で免疫された4匹の兎のう
ちの1匹が高い力価で心臓組織に対する抗体を生成した
ことを見出した。この抗血清は、M5型蛋白質と心臓組
織と交叉免疫反応を起した。
【0018】2.4DNA交雑検定 病原微生物の検出のための通常の診断的方法は、かかる
生物中に見出されると思われるゲノムのDNA断片が純
粋な形態で入手できるならば、創案できるだろう。もし
そうならば、化学的、酵素的又は放射性同位原素的レポ
ーター・グループで標識をつけることにより、そのDN
A断片を交雑プローブとして用いることができよう。
【0019】グルンスタイン及びホグネス[プロシージ
ングス・オブ・ナチュラル・アカデミー・オブ・サイエ
ンス,U.S.A.72:3961(1975)]は、
このアプローチをコロニー・ハイブリダイゼイションと
呼ばれる方法で使用した。この方法では、検定されるべ
きバクテリアはニトロセルロース・フィルターに移され
た。フィルター上のコロニーはついで分解され、溶出す
るゲノムDNAはフィルターに固定された。32Pで標識
されたプローブの配列に補充的に付加されたDNA中の
ヌクレオチド配列の存在はオートラジオグラフィーによ
って追跡された。DNAの交雑の他の一般的態様はファ
ルコウらにより米国特許第4,358,535号明細書
に記載されている。
【0020】
【課題を解決するための手段】
3.発明の概要 連鎖球菌のM蛋白質遺伝子の単細胞生物中でのクローニ
ングと発現のための方法と組成物とが提供される。ま
た、これらの新規な単細胞生物をM蛋白質を生産するた
めに培養する方法、M蛋白質DNAを発現する単一のコ
ロニーを同定する急速検定、及び遺伝子産物の特定のた
めの方法も記載されている。ここに記されている組変え
DNA技術により製造されるM蛋白質は、ストレプトコ
ッカス・ピオゲネス(Streptococcus Pyogenes) 感染に
対して保護するためワクチン中の免疫原として用いるた
めに調製されうるものである。
【0021】ここに記載されている特定の態様では、大
腸菌トランスダクタント(E. colitransductants)によ
り生産される蛋白質はA群連鎖球菌の細胞壁の可溶化に
よって単離されるM6蛋白質よりごく少し大きいが、連
鎖球菌のプロトプラストとL型により分泌されるものと
同程度の大きさを有している。免疫学的に大腸菌トラン
スダクタントにより合成される分子は連鎖球菌M6蛋白
質と同じ型特異性決定部位を有している。M蛋白質は、
オクターロニー(Ouchterlony)二重融合実験により抗原
的に、(a)オプソニン抗体除去試験及び(b)オプソ
ニン抗体の生産誘導能により免疫原的に特徴づけられ
る。クロン化されたM蛋白質は単離され、ドデシル硫酸
ナトリウム・ポリアクリルアミド・ゲル電気泳動法で分
画される。さらに発現された遺伝子産物の単離方法も記
載されている。
【0022】本発明は連鎖球菌のオプソニン抗体及び抗
原の製造法を提供する。それらは、ヒトの医薬及び微生
物学的研究において一般的重要性を有するものである。
この用途は本発明で生産される連鎖球菌M蛋白質をラジ
オイムノアッセイのような超高感度検定のための高度に
再現性を有する標準抗原として用いることを含むもので
ある。これらの検定は生物学的標本中の連鎖球菌に対す
る抗体の発見のための診断的手段として用いられうる。
【0023】連鎖球菌M蛋白質遺伝子又はその画分の分
子プローブとしての使用を通じて、生体組織及び体液中
の病原性連鎖球菌の診断的同定のための方法も提供され
ている。本方法においては、DNAが微生物的単離物か
ら抽出され、分子状プローブへの交雑により相補的ヌク
レオチド配列が試験される。この手段によって多数の単
離物中の、比較的容易に連鎖球菌の存在を高感度、高信
頼度でスクリーニングできる。その結果は現在用いられ
ているより厄介な血清学的診断検査よりも顕著に有利な
スクリーニング・テストを提供するものである。
【0024】4.発明の詳細な記載 4.1M蛋白質免疫原 本発明はワクチン製剤における免疫原として用いられう
る連鎖球菌M蛋白質を製造する組変えDNA技術に関す
るものである。さらに特定すれば、M6蛋白質の製造が
記載されている。
【0025】ここに記載されているように構成された組
換えプラスミドは、宿主細胞(原核又は真核)に対し宿
主細胞の分解に対して安定かつ抵抗性のある連鎖球菌M
蛋白質の生産性を与える。かかるプラスミドは天然に存
在するM蛋白質の免疫学的、抗原的決定部位を含む多量
の蛋白質又はその画分を生成することができる。ここに
記されている特定の態様はM6蛋白質に関する。しか
し、ここに記載されるDNA分子はM6蛋白質の生産に
限定されるものではなく、いかなるA群連鎖球菌M蛋白
の製造にも用いうるものである。
【0026】M6蛋白質についてここに記載されている
組成物と方法とのすべてのM蛋白質への一般的応用可能
性はフィシエティ及びマンジュラの研究(1982,ロ
ビンス,ヒル及びサドフ(編集)、バクテリアル・ワク
チン中の411−448頁、連鎖球菌M蛋白質及び哺乳
動物トロポミオシン間の構造の関係の免疫学的連係)か
ら明らかである。たとえばこれまでに配列がきめられた
すべてのM蛋白質はM5、M6及びM24を含んで明瞭
な同族性を示し、すべて多重コイル構造である。アミノ
末端及び他の配列がきめられた画分は3種のM分子のす
べてについて7個の残基の周期的くりかえしを示してい
る。さらに数種のM型の免疫学的分析は、各種の型の間
の交叉反応を示した。フィシェッティ,ジャーナル・オ
ブ・エクスペリメンタル・メジシン146:1108−
1123(1977);マンジュラ及びフィシェッテ
ィ,ジャーナル・オブ・エクスペリメンタル・メジシン
151:695−708(1980);マンジュラ及び
フィシェッティ,ジャーナル・オブ・イムノロジー12
:261−267(1980)。さらに下記に示す交
雑のデータは試験した56種のM蛋白質遺伝子のすべて
の間で構造の類似性を示している。
【0027】この技術における熟達者にとっては、種々
の免疫原及びワクチン製剤をつくりうることを直ちに知
ることができよう。
【0028】4.2M蛋白質分子プローブ ここに記載されるM蛋白質遺伝子又はその画分は連鎖球
菌に対する診断試験における分子プローブとして使用さ
れうる。この試験の原理は、病原性連鎖球菌は、本発明
のM蛋白質の画分に対し相補的な遺伝子配列を有してい
るという事実である。かかる遺伝子の相補性は連鎖球菌
感染と疑われるものから微生物DNAを単離し、そのD
NAを固状担体上又は液状媒体中で適切な条件下に分子
プローブと結合させることにより直ちに検出されうる。
交雑の生起は適当なリポーター群のプローブに対する添
加により容易に検出されうる。
【0029】連鎖球菌状生物はいかなる体組織や体液中
の感染部位からも単離されうるが、単純な咽喉洗滌物は
最も好適な材料となろう。多分混合培養物であろうこの
ようにして得られた微生物は直接(すなわち洗滌物上
で)又は当該技術の専門家によく知られている培養媒体
のいづれかの中で多数の細胞を生成するよう生育させて
用いられうる。そして、混合培養物からのDNAは、凍
結−融解、音波処理又は他の機械的手段によりおよび/
または一般的あるいは特異的な細菌細胞壁分解試薬での
処理により分裂させたのち抽出されうる。
【0030】抽出されたDNAは通常水性アルカリの添
加により変性され、ついで緩衝溶液で洗浄される。アル
カリの特定の濃度や緩衝液の組成等は実験の条件によ
り、通常実験により容易に決定しうる。本発明の変性M
蛋白質遺伝子プローブは、ついで微生物のDNA製剤に
加えられ、DNA配列の点において相補的に交雑させら
れる。特異的結合は交雑混合物を充分に洗滌して非特異
的結合を除去したのちに残すことにより確認されよう。
【0031】交雑はその目的のために開発され、認めら
れて来ている多数の溶液のひとつの中で行われる。ファ
ルコウらは米国特許第4,358,535号明細書に全
般的に溶液組成及び交雑工程の多くの考察を記載した。
この特許はその一般的有用性の故に、ここに参考文献と
して包含される。他の交雑の指標となる特定の数値、た
とえば時間や温度、および用いられる方法は本発明にと
って必須のものではない。たとえばゴール及びパーデュ
[プロシージングス・オブ・ナチュラル・アカデミー・
オブ・サイエンスU.S.A.63:378−383
(1969)]及びジョンら[ネイチュアー223:5
82−587(1969)]によって記載された方法が
適用されうる。事実交雑のために選ばれる方法は技術水
準の進歩とともに変ってゆくものと期待される。
【0032】本発明の基礎となる分子プローブは、特定
の交雑を起しうるように遺伝子配列を保持するに充分で
あるかぎりは、M蛋白質遺伝子の全部又はその一部だけ
をも色括するものである。かかる交雑はごくわずかな程
度であってさえも、その分子プローブに適切なリポータ
ー・グループを結合させることによって検出されうる。
そのプローブは放射性同位原素で標識を付しうる(たと
えば32P,3 H,14C,35S等による標識)し、また化
学的あるいは酵素的リポーター・グループで標識されう
る。たとえば、生物的に細分化された(biotinylated)
プローブと組み合わされた比色検出装置を、たとえばフ
ルオレッセイン・アビジン,ローダミン・アピジン又は
酵素と結合したアビジン等のアビジン誘導体と共に用い
ることができる。
【0033】M6蛋白質のエシエリヒア・コリ(大腸
菌)(Escherichier coli)中でのクローニングと発現の
方法及び連鎖球菌感染を特徴づけるためのプローブとし
てのM6蛋白質遺伝子の使用法の下記する実施例は、例
示の目的で記されるもので、発明の範囲についての限定
の意図によるものではない。
【0034】
【実施例】
5.実施例:連鎖球菌M蛋白質遺伝子を含むクロンの製
造、及び該遺伝子の連鎖球菌感染の診断的試験における
分子プローブとしての使用 5.1連鎖球菌DNAの単離 M6蛋白質遺伝子の起原は、ストレプトコッカス・ピオ
ゲネス(Streptococcus Pyogenes) D471株(A群連
鎖球菌)であった。C群連鎖球菌ファージ細胞溶解素
(Group C streptococcal phage lysin)が、30%ラフ
イノーズの存在下に、安定なプロトプラストを残してA
群連鎖球菌の細胞壁を溶解するために用いられた(フィ
リップスら、プロシージングス・オブ・ナチュラル・ア
カデミー・オブ・サイエンス,U.S.A.78:46
89(1981))。ついでそのプロトプラストは充分
に洗浄され連鎖球菌のデオキシリボヌクレアーゼ(DNAs
e)を除去するため蛋白分解酵素Kで処理された。プロト
プラストはドデシル硫酸ナトリウム(SDS)中に希釈
して溶菌され、抽出物がRNAを消化するためリボヌク
レアーゼIで処理された。塩化セシウムが加えられた。
この製品は蛋白質を除去するために約100xgで遠心
分離され、一夜透析された。DNAはエタノールにより
沈澱させられた。使用のために選択されたDNA画分は
消化前に充分100キロベース(kb) 以上であった(P
1 ファージDNAを100kbの標準とし、P1分子の
半分を50kbの標準として0.4%アガローズ・ゲル
上でのアガローズ・ゲル電気泳動で検定した)。
【0035】5.2大腸菌へのクローニング M蛋白質生成のためにスクリーニングされるのに必要で
あり、かつM蛋白質の構造遺伝子に結合される調節部位
を残すのに必要な大腸菌クロンの候補の数を減らすため
に、連鎖球菌DNAの大きい断片がクローンされなけれ
ばならなかった。従って、35ないし40kbのDNA
の挿入を受け入れるコスミド・ベクターが必要であっ
た。クローニング・ビヒクルとして5.4kbのベクタ
ー,pJB8が選ばれた。このベクターは、イッシュ−
ホロウイッツ及びバーク、ヌクレイック・アシッヅ・リ
サーチ(13):2989−2998(1981)が
記載した方法によりアンピシリン耐性プラスミドHomer
Iと合成Bam HIリンカーとから構成された。
【0036】本発明においては、ベクターpJB8は、
ベクターを特有な位置で切断し「粘着末端」を生成する
マニアティスら、上掲書、104−106頁)が一般的
に記載したところによりBam HIで消化された。切断さ
れたベクターは、ベクター・ベクター間の再結合や再環
形成を防ぐために、アルカリ性フォスファターゼで処理
され(たとえばマニアティスら、上掲書、133−13
4)、線状化されたベクターの5′−フォスフェートが
除去された。ランダムなDNA断片を生成させるため、
第5.1節に記載したようにして単離された連鎖球菌D
NAを部分的に消化するためにSau 3a制限酵素が用い
られた(たとえばマニアティスら、前掲書、298)。
分画された連鎖球菌DNAはpJB8ベクター上のBam
HIの部分に結合された(第1図参照、たとえばマニア
ティスら、上掲書、298−299)。
【0037】連鎖球菌DNAが挿入されたベクターは試
験管内でラムダ・ファージの頭部にとりこまれた[ホー
ン及びコリンズ,ジーン11:291(1980)]。
とりこまれたキメラDNAを包含するファージは、熱的
に誘起されうるプロファージを有する大腸菌K12の制
限部位のない株C600(lambdac I857)rec Aを
形質導入するために用いられた。アンピシリン耐性コロ
ニーが30℃で選び出され、同じ選択培地に移され、一
夜30℃で培養されて、マスター・プレートをつくっ
た。
【0038】大腸菌中にクロンされたほとんどのグラム
陽性遺伝子は発現しているので、M蛋白質遺伝子が大腸
菌中で発現するという可能性は高かった。しかし、M蛋
白質はペリプラスム(periplasm)と外膜といういずれも
連鎖球菌には存在しないものを通して移送されなければ
ならないから、M蛋白質が大腸菌の表面に現われるとは
思われなかった。この理由から、その大腸菌のマスター
・プレートはプロファージを誘起し、宿主細胞を溶菌す
るために42℃に移され、クロン化された遺伝子の発現
を確認した。[シャルカ及びシャピロ,ジーン:65
(1976)]
【0039】5.3M蛋白質の発現のための単一コロニ
ーの高速検定 M蛋白質を発現する大腸菌のクロンを認識するため高速
検定法を開発した。この技術はM蛋白質を発現する単一
のコロニーを容易に見分けうる。
【0040】この検定法は、試験さるべき溶菌されたコ
ロニーをニトロセルローズフィルターに移し、蛋白質に
対するフィルターの非特異的親和性を減少させるため牛
血清アルブミン中で該フィルターを洗滌し、そのフィル
ターを大腸菌細胞で充分に予備吸収(pre-absorbed) し
た精製されたLys M6に対する抗血清と反応させ、適宜
に洗浄し、125 I−連鎖球菌蛋白質A(抗原−抗体複合
体に結合している)と反応させ、再び洗浄し、ついでオ
ートラジオグラフィーで測定することからなる。
【0041】M6蛋白質を検出するには抗血清は100
0倍以上に希釈される。抗血清が10倍希釈(さらに1
00倍以上濃縮された)で用いられたときは大腸菌と検
出しうる反応を起さない。この方法により、親の連鎖球
菌中に生産された1%未満の量のM6蛋白質の大腸菌ク
ロンによる生成が検出されうる。
【0042】スクリーンされた335のコロニーのう
ち、1つが精製M6蛋白質に対する抗血清と強く反応し
た。この株のうちに存在するキメラ・プラスミドは pJR
S 42と名づけられた。この大腸菌クロンのM6蛋白質
の生産能はアンピシリン含有培地中のサブ・カルチュア
上で安定に維持された。プラスミド pJRS 42は Eco
Iエンドヌクレアーゼで処理され、連鎖球菌DNAの画
分を除去し pJRS 42.13を生成した。このプラスミ
ドはすべての必要な複製機能とそのプロモーター系とと
もにM6蛋白質をコードする完全な配列を保持してい
る。
【0043】5.4遺伝子産物の同定 pJB 8と pJRS 42を含むC600NRトランスダクタ
ントを含む大腸菌C600NR株は、アンピシリン含有
のトッド−ヘウイット肉汁(牛心臓添加肉汁(beef hea
rt infusion broth))中で対数増殖期の終期まで30℃
で生育させた。細胞はペレット化され、二度洗浄され、
ついでエチレン・ジアミンテトラ酢酸(EDTA)−リ
ゾチームで溶菌され、乾燥氷−エタノール中で凍結し、
37℃で急速に解凍された。DNA−アーゼ(DNA s
e )処理にひきつづき、10,000xgで30分間遠
心分離して細胞の破片を除去し、抽出物を0.45ミク
ロンのミリボア・フィルターに通し、50mMの重炭酸
アンモニウムに対して透析した。
【0044】大腸菌中に生成したM蛋白質分子の同定は
免疫吸収分析(immunoblot analysis)で決定された。フ
ォリンの反応[ロウリーら、ジャーナル・オブ・バイオ
ロジカル・ケミストリー193:265(1951)]
で決定された当量蛋白質濃度がSDS含有の12%ポリ
アクリルアミド・ゲルに適用された。6型連鎖球菌から
ファージ細胞溶解素で細胞壁を可溶化することにより、
6型連鎖球菌から抽出された精製M6蛋白質の標準製品
が対象として隣接するウェル(well) に対して適用され
た。電気泳動後、分離された蛋白質はニトロセルローズ
上に移され、フィルター上の未反応部位はツイーン20
(ポリオキシエチレン・ソルビタン・モノラウレート)
を用いて保護され、大腸菌で吸収された連鎖球菌から得
られた細胞溶解素で抽出されたM6蛋白質に対して向け
られた抗血清とともにフィルターが培養された。山羊の
抗ウサギ IgGに結合したアルカリ性フォスファターゼを
用いる酵素結合免疫検定法が結合抗体を検出するために
用いられた。アルカリ性フォスファターゼの基質として
インドキシル・フォスフェイトが、発色団としてニトロ
ブルー・テトラゾリウムが用いられ、ブレイクらの方法
[アナリティカル・バイオケミストリー136:175
−179(1984)]でバンドが可視化された。M6
抗血清は対照のM6と pJRS 42を含む大腸菌クロンの
抽出物のいづれとも反応したが、pJB 8ベクターのみを
含む親の大腸菌の抽出物とは反応しなかった。
【0045】大腸菌クロンにより生成されるM蛋白質の
分子量が、精製された LysM6蛋白質の標準製品と免疫
吸収分析(immunoblot analysis)で比較された。この分
子はファージ細胞溶解素という酵素によるストレプトコ
ッカスの細胞壁の可溶化とカラム・クロマトグラフィー
による精製の結果物である。それは連鎖球菌の細胞壁か
ら分離された最大のM蛋白質分子であることを示してい
る。
【0046】このM6蛋白質はつぎのようにして精製さ
れた。プラスミド pJRS 42.13を含む大腸菌をED
TA及び20%のショ糖の存在下にリゾチームで処理し
た。これにより原形質をとりまく内容物が周辺の液体中
に溶出される。生物の遠心分離により原形質外(peripl
asmic)の内容物を他の大腸菌関連蛋白質とともに上澄液
中にのこす。この技術を用いて、M蛋白質は原形質外空
間には高濃度で存在するが、実質上は細胞質には存在し
ないことが知られた。従って、この方法はM蛋白質精製
の出発原料を生成させるのに用いられた。
【0047】粗製の原形質外の内容物中のM蛋白質は他
の夾雑する蛋白質からカラム・クロマトグラフィーで精
製された。粗製の原形質外調製品は5mM重炭酸アンモ
ニウムのpH5.5緩衝液で透析され、カルボキシメチ
ルセルロースのカラムにかけられた。カラムは同じ緩衝
液の3倍量で洗浄し、pH7.0で100mMリン酸ナ
トリウムで1段で付着する蛋白質を溶出した。遊離蛋白
(M蛋白を含む)は25mM濃度のリン酸ナトリウムp
H7.0で平衡化したヒドロキシアパタイトに直接使用
した。カラムをカラムの2倍量のpH7.0の200m
Mリン酸ナトリウムで洗浄し、ついで付着するM蛋白質
をpH7.0のリン酸ナトリウム400mM溶液で溶出
した。この方法によって、高度に精製されたM蛋白質製
品が得られ、それはSDS−ポリアクリルアミド・ゲル
電気泳動法と配列分析法(sequence analysis)で決定さ
れた。
【0048】アミノ末端配列分析で精製大腸菌合成M6
蛋白質から単一のフェニルチオヒダントイン(PTH)
−アミノ酸が各分解段階で得られ、最終製品の均質性が
証明された。さらに、アミノ末端の配列は、アミノ末端
の残基を除く最初の配列された35箇の残基によって L
ys M6のアミノ末端配列と同一であることがわかっ
た。大腸菌の分子はリジン分子の精製の間に脱離されう
るアミノ末端に余分にアルギニン残基を有している。精
製された Lys M6製品はさきにM6分子でみられた多
重バンドの模様を有しているが、それはおそらく抽出と
精製との過程での分解によるものであろう。3つの大き
いバンドは51,000、52,000及び53,00
0ダルトンのはっきりした分子量に相当する。M6製品
の大きさの異質さは、おそらく蛋白質のカルボキシ末端
部分の相違からくるものであろう。この理由は、配列の
分解による本製品のアミノ末端配列分析の間に各段階ご
とに一つのアミノ酸残基のみが放出されることによる。
抗M6抗体と反応する pJRS42を含むクロンによるバ
ンドはすべて連鎖球菌製品からのものに比して大きい
(分子量55,000、57,000、59,000ダ
ルトン)。このことは、pJRS42はM6蛋白質の全構造
遺伝子を含んでいることを示唆していた。このことは、
この分子の大きさが12型連鎖球菌のプロトプラスト及
びL型から分泌されるM蛋白質の大きさとして報告され
ているもの(分子量58,000ダルトン)とよく一致
しているという事実によってうらづけられた。従って、
大腸菌製品中の蛋白質は、連鎖球菌の細胞溶解素抽出に
より放出されるものより完全な自然のM分子の大きさに
より近いものであろう。
【0049】さらに、分泌性の連鎖球菌L型及びプロト
プラストから分離されたM蛋白質はもっと均質性がある
と思われる。抗M6抗体と反応性を有する大腸菌蛋白質
と精製された標準M蛋白質のバンドとの泳動性における
差異については、いくつかの説明がありうる。たとえ
ば:1)蛋白質は、大腸菌では除去されていないリーダ
ー・配列を含みうるが、連鎖球菌では通常除去されてい
る。2)その Lys M6分子は連鎖球菌細胞壁に付着す
る間に生成する分解産物に相当する。3)そのLys M6
分子は蛋白の精製過程で生成した部分分解物かも知れな
い。4)その大腸菌蛋白質はベクター中のプロモータか
ら生成した「融合」物質かも知れない。5)連鎖球菌で
は機能できない翻訳開始配列が大腸菌中では活性なのか
も知れない。及び/又は6)連鎖球菌中では通常機能的
な「停止」コドンが大腸菌の株中では supE変異により
おさえられているのかも知れない。
【0050】5.5遺伝子産物の免疫原的特徴づけ 大腸菌のM蛋白質と連鎖球菌の細胞溶解素での抽出によ
るM蛋白質のオクテルロニー・イムノディフュージョン
(Ochterlony immnodiffusion)での比較を行った。ウェ
ル1( well 1)には連鎖球菌で合成された細胞溶解素
抽出M6に対して製造された吸収されていないウサギの
抗血清を入れた。ウェル2には精製された細胞溶解素抽
出M6蛋白質を入れた。ウェル3にはDEAEとCMセ
ルロース上のクロマトグラフィーで部分的に精製された
エスチェリチアコリー(E. coli)C600NR(pJRS4
2)株から得られたM6蛋白質を入れた。反応はpH
8.6で50mMバルビトール緩衝液中で調製した1%
寒天ゲル中で行われた。ゲルは乾燥し、クーマシー・ブ
ルー(Coomasie blue)で染色した。
【0051】この二重拡散実験の結果は(ゲルは示され
ていない)、pJRS42を有する大腸菌の抽出物(挿入な
しのプラスミドのそれではない)は、少なくとも連鎖球
菌M6蛋白質のそれらのあるものには共通な抗原決定部
位を含んでいるという結論を裏付けた。そこで、大腸菌
製品はより高い明瞭な分子置を有しているけれども、大
腸菌中で合成されたM6蛋白質は6型連鎖球菌から抽出
されたM蛋白質と同じ型特異性決定部位を有している。
【0052】5.6クロン化M蛋白質の減菌効果 大腸菌の生産したM蛋白質がウサギ及びヒトのオプソニ
ン抗血清の両者からのオプソニン抗体を除去するに要す
る抗原決定部位を含むかどうかを決定するため、次の吸
収実験を行った。
【0053】精製した大腸菌で合成したM6蛋白質が3
0μgづつ2つに分けて凍結乾燥された。一方にウサギ
の6型オプソニン抗血清(0.5ml)を加え、同様の
量の6型連鎖球菌に対するヒト血清オプソニンを他の乾
燥蛋白質標本に加えて溶液をつくった。これらの試験管
を37℃で1時間培養し、4℃で一夜放置した。かくし
て得られた沈澱を20,000xgで遠心分離し、得ら
れた上澄液を6型連鎖球菌を用いる滅菌検定に使用し
た。
【0054】間接的滅菌検定は当初ランスフィールドに
よって記載されたように(ジャーナル・オブ・エクスペ
リメンタル・メジシン110:271(1959))し
て行った。正常な提供者(normal donors)から得たペパ
リン処理された全人血を食細胞原として用いた。6型連
鎖球菌の希釈物(100μl)を、吸収され又は吸収さ
れていない血清(100μl)の存在又は不存在下に、
人血400μlに混合した。混合物を37℃で3時間回
転させた。生存している生物を埋没平板法で決定した。
抗血清なしで回転させた対照について提供者の血液中で
連鎖球菌が生育する能力のテストを行なった。大腸菌ト
ランスダクタントが生成したM蛋白質は、ウサギ及びヒ
トの血清からオプソニン抗体を除去した。第1表参照。
従って、大腸菌M蛋白質の抗食菌作用性決定部位は自然
のM6分子のそれと同様に機能する。
【0055】
【表1】
【0056】5.76型食菌性抗体の生産 精製された大腸菌が生産したM6蛋白質による免疫後の
ウサギ中での6型オプソニン抗体の生産は次のようにし
て行われた。精製された大腸菌が生産したM6蛋白質に
対する抗血清がニュージーランドシロウサギ中で作られ
た。。一次接種は完全フロインド担体で乳化した100
μgのM6蛋白質から成り、複数部位に皮下投与され
た。動物は4週間後に不完全フロインド担体中の同用量
のM6蛋白質で増強された。動物は10日後採血され
た。
【0057】滅菌検定(上記)により認められたところ
によれば、大腸菌M6蛋白質で免疫されたウサギは6型
連鎖球菌の食菌作用性を認める抗体を産生した。第2表
参照。
【0058】
【表2】
【0059】5.8連鎖球菌に対する診断試験 5.8.1M遺伝子DNAプローブの製造と精製 M6型蛋白質をコードする遺伝子(emm 6)をつきとめ
るため、上記第5.3節中に記載されたプラスミド pJR
S 42.13を種々の制限酵素又はその複合体による消
化に付した。かくして得られたDNA断片は上記マニア
チスらの文献150−161頁に記載されているところ
により0.8%アガロース・ゲルを通して電気泳動に付
して分画され、ついで種々のベクター中に結合された。
熱誘導性(thermally inducible)ラムダ・ファージに対
し溶原性エスチェリチア・コリー(E. coli)K12菌中
に、これらの組換えベクターが組み込まれ、第5.4節
に記載したように抗M6蛋白質抗血清と反応性を有する
蛋白質の生産についてスクリーニングされた。
【0060】多数のこれらのクロン化されたDNA断片
についてのM6蛋白質発現分析結果を第3図に示す。白
色のブロックで示されているクロンは抗M6抗血清と反
応性があったが、斜線を施したブロックで示されたもの
は反応性がなかった。pJRS42.19のようないくつか
の反応性クロンは全M6蛋白質をコードする連鎖球菌D
NAをごくわずかしか含んでいなかったが、その発現す
る物質はあきらかにポリクロナール抗血清と抗原性反応
性を示すに充分な大きさであった。
【0061】クロン化されたDNA断片中のemm 6遺伝
子の配置についてさらに検討するため、プラスミド pJR
S 42.19中の連鎖球菌DNAをプラスミド pUC9及
びpUC 8の Bam HI部分に挿入した[メッシング及び
ベイラ,ジーン19:269−276(1982)]。
これらプラスミド相互間の関係は挿入されたDNAがプ
ラスミド中で反対の方向に配列されている。抗M6抗血
清は、これらクロンの両方の製品と反応し、連鎖球菌D
NAがこれらのベクターのいづれの配列中にも存在する
ときにM6蛋白質画分が合成されることを示している。
従って、挿入された連鎖球菌DNAはそれ自身のプロモ
ータを有しているものと思われる。もしこの結論が正し
ければ、pJRS42.19はM6蛋白質のN末端をコード
するもののはずである。
【0062】pJRS42.19の連鎖球菌DNA断片をM
13 mp 8及び mp 9中に挿入[メシング及びベイラ
ル,上掲書]したのち、サンガーのジデオキシ法[サン
ガーら、プロシージングス・オブ・ナチュラル・アカデ
ミー・オブ・サイエンス・U.S.A.74:5463
(1977)]で挿入されたDNAの配列が決定され
た。M6蛋白質のアミノ末端をコードする部分配列をそ
れにより特定されるアミノ酸配列とともに第4図に示
す。逐次的エドマン分解により決定された(参考文献)
アミノ末端アミノ酸は、アミノ酸配列の下に「N」で示
してある。この方法で決定されたアミノ酸配列はペプシ
ン処理により、又はファージ溶菌により連鎖球菌ストレ
インD471[参考]から抽出されたM6蛋白質のアミ
ノ末端について確立されている配列と同一であった。そ
れはまた、上記第5.4節中の大腸菌における組換えD
NA方法により生成されたM蛋白質のアミノ末端部分と
も同一であった。
【0063】これらの結果は、emm 6遺伝子は pJRS 4
2.19中に含まれるDNA中に始まることを示した。
第4図に示されるDNA配列とアミノ酸配列の比較は、
さらに、第3図に示すように、M6蛋白質のN末端は N
ci I部位の左へ32塩基目の点であることを示してい
る。
【0064】大腸菌中で生成されたM6蛋白質は、ドデ
シル硫酸ナトリウム・ポリアクリルアミド・ゲル電気泳
動[フィシエッチら、ジャーナル・オブ・エクスペリメ
ンタル・メジシン159:1083−1095(198
4)]により明らかに59,000ダルトンの分子量を
有することが示された。この事実は遺伝子配列の他の末
端を第3図における Pvu II部位またはその付近に定め
ることとなる。さらに配列の分析をつづけたところ、蛋
白質を終了する無意味なコドンTAAが PvuII部位の右
へ38塩基目に位置していることが明らかとなった(ホ
リングシードら、原稿作成中)。
【0065】プラスミド pJRS 42.13を Nci I及
Pvu IIで処理して emm6遺伝子の大部分を含む適当
なプローブを作成した。pJRS42.13の制限酵素地図
中でのこのプローブの位置を第3図に太い矢印で示す。
このプローブ断片は、0.8%アガロース・ゲル中での
電気泳動法、電気的溶出及びエルチップ−d(Elutip-
d )のカラム(シュライヘル及びシュエル)を通過させ
ることにより精製された。
【0066】5.8.2細菌のDNAの単離 A群連鎖球菌の細胞をフィシエッチらの方法[ジャーナ
ル・オブ・エクスペリメンタル・メジシン133:11
05(1971)]で溶菌するのにはファージ細菌溶解
素を用いた。他の連鎖球菌については、一夜のトッド・
ヘウイット・酵母肉汁培養物(酵母抽出物を添加した牛
心臓浸出肉汁)を10倍に希釈し、37℃で細胞濃度を
1mlあたり約5×106 細胞となるまで生育させた。
3%(w/v)の濃度までグリセリンを添加し、細胞を
さらに2時間37℃で培養した。ついで細胞を洗浄し、
15秒のパルスで2度音波処理し、庶糖30%(w/
v)とリゾチーム10mg/mlを含む10mMトリス
・塩酸塩緩衝液(pH8.0)中に分散させた。
【0067】37℃で30分間培養したのち、最終濃度
10mMまでエチレンジアミンテトラ酢酸を加え、さら
に37℃で30分間培養を続けた。ついでプロテアーゼ
K[0.1mg/ml、源(source) ]及びドデシル硫
酸ナトリウム(1%w/v)を加え、これらの成分をゆ
っくりと回転させて混合し、さらに37℃で30分間培
養を続けた。この工程につづいて、混濁を示さない細胞
懸濁液を界面に蛋白質がみえなくなるまでフェノール:
クロロフォルム(10:1)で抽出した。抽出されたD
NAは、ついでエタノールで沈澱させた。
【0068】試験した細菌株は、ストレプトコッカス・
アウレウス(Staphylococcus aureus),バチルス・スブ
チリス( B. subtilis )(CU1065株)、ストレプ
トコッカス・プノイモニエ(Streptococcus pneumonia
e) 及びロックフェラー大学のコレクションから得られ
た次の連鎖球菌株であって、それぞれ特異的抗血清をつ
くるに用いられる標準タイピング及びグルーピング株で
ある。M1,T1/195/2;M3,B930/61
/5;M3R,D58X;M4,T4/95/RB5;
M5,T5B/126/4;M6,S43/192/
3;M8,C256/86/3;M11,T11/13
7/3;M12,T12/126/4(COL6);M
14,T14/46/8,M15,T15/23/7,
M18,J17C/55/4;M22,T22/146
/1;M23,T23/102/RB5;M24,C9
8/135/2;M25,B346/136/1;M2
7,T27/87/1;M28,T28/150A/
5;M29,D23;M30,D24/126/3;M
31,J137/69/3;M32,C121/39/
8;M33,C107/102/2;M36,C119
/83/2;M37,C242;M38,C94/80
/2;M39,C95/95/1;M40,C143/
25/9;M41,C101/103/4;M42,C
113/55/5;M43,C126/170/2;M
46,C105/41/5;M47,C744/RB4
/6/5;M48,B403/48/5;M49,B7
37/137/2;M50,B514/33/6;M5
1,A309/77/1;M52,A871/106/
2;M53,A952/94/3;M54,A953/
87/3;M55,A928/73/1;M56,A9
63;M57,A995/91/2;M58,D315
/87/3;M60,D335/38/3;M63,D
459/50/2;M66,D794/76/2;M6
7,D795/95/1;A群,J17A4;B群,0
90R;C群,C74;D群,D76;E群,K13
1;F群,F68C;G群,D166B;H群,F90
A;L群,D167A;M群,D168A″X″;N
群,C559;O群,B361。次のA群でM型にタイ
ピングされるジョージア州アトランタのセンター・フォ
ー・デイジーズ・コントロールから入手された株も使用
された。M2,SS633;M9,SS754;M1
3,SS936;M17,SS631;M19,SS4
00;M34,SS134;M59,SS913及びM
62,SS984。
【0069】5.8.3ドット・ブロット( Dot blot
) 交雑実験 カファトスら[ヌクレイック・アシッド・リサーチ
1541−1552(1979)]が記載した特異的D
NA配列をみつける手段を用いて、抽出されたDNAの
標本についてドット・ハイブリダイゼーションが行われ
た。ボッチャンらの方法[セル:269−287(1
976)]でニック翻訳により32Pで標識したのち、プ
ローブに対して emm6遺伝子の大部分を含む Nci I/
Pvu IIDNA画分(第5.8.1節)が用いられた。
【0070】交雑を行うにあたって、種々の微生物原か
ら得られたDNA抽出物は室温で15分間0.6NNa
OH中で変性され、ついで0℃で10分間変性された。
さらに、試料は2M酢酸アンモニウムで中和され、DN
Aの画分はペセスダ・リサーチ・ラボラトリーの多枝管
中のバイオダインA0.2ミクロン・ナイロン・フィル
ター(ニューヨーク州グレン・コープ,ポール・フィル
トレーション・コーポレーション)上にスポットされ
た。交雑は1.8Mトリス塩酸塩を含み、0.2Mのト
リス塩基を含む緩衝液中でニック翻訳された32Pプロー
ブを少なくとも2×106 cpm /フィルターの割合で加
え、フィルターを一夜64℃に保持することにより行わ
れた。フィルターは、ついで同じ緩衝液を用いて64℃
で10回洗浄され、乾燥され、増感スクリーンを用いコ
ダックXAR−5フィルム上でオートラジオグラフィー
に付された。露光は−80℃で2−4日行われた。これ
らの実験結果の要約を第3表に示す。
【0071】
【表3】
【0072】全体としてドット・ブロット実験は、emm
プローブとA群連鎖球菌の56種中の56の異なるM
型から得られるDNA、及びA群株のタイプ分けできな
い4種及びすでにM- と特徴づけられている2つの株と
の間に交雑が認められた。グラム陽性菌であるスタフィ
ロコッカス・オウレウス(Staphylococcus aureus)又は
バチルス・スブチリス(Bacillus subtilis)からのDN
A、連鎖球菌ランスフィールドB,D,E,F,H,
L,M,N又はO群からのDNA、又はストレプトコッ
カス・プノイモニエ(Streptococcus pneumoniae) から
のDNAとは交雑は見られなかった。しかし、C群及び
G群連鎖球菌DNAとは交雑がみられた。この知見は、
C群連鎖球菌はしばしばヒトの感染に関係し、ある株は
その外面に機能的にM蛋白質と同様な分子を有している
らしいので予期し得ない知見ではなかった[ウールコッ
ク,インフェクション・アンド・インムノロジー10
568(1974)]。
【0073】G群連鎖球菌もまた広範囲のヒトへの感染
を起すことが報告されている。これらの生物の毒性が必
ずM様細胞表面蛋白質の存在によるかどうかははっきり
しないが、そういうこともありうるところである。ヒト
感染物から分離したG群連鎖球菌の3株を試験したとこ
ろ、12型M細胞蛋白質が株中に存在することがわかっ
た[マクステッド及びポター,ジャーナル・オブ・ゼネ
ラル・マイクロバイオロジー49:119(196
7)]。
【0074】試験されたA群株の中に、機能的にM-
(すなわち、保護的M蛋白質を生成せず食菌性化された
もの)が3株あった。これらのM- 株の2種からのDN
Aは、それにも拘わらず emm6遺伝子プローブと交雑
し、少なくともいくらかの emm遺伝子を完全に保持して
いることを示した。おそらく、これらの株は、その emm
遺伝子産物が無機能的( nonfunctional )であるかわず
かな量しか合成しないような変異株であろう。1つのM
- 株からのDNAはプローブと交雑せず、その株中では
emm遺伝子は実質的に除去されていることを示唆してい
た。
【0075】ドット・ブロット実験の結果は、種々のM
型A群連鎖球菌株から得られるDNAを抽出し、Nci
及び Hin d IIIで消化する実験により確かめられた。得
られるDNA断片の試料は、アミアティスら、上掲書、
150−161に記載のアガロース・ゲル・電気泳動で
分離され、emm 32Pで標識されたプローブと交雑さ
れ、雑種DNA断片の位置がオートラジオグラフィーで
示された。結果は第5図に示す。
【0076】第5図において、第1列は32Pで標識され
た10.9,7.74,5.15,2.44,1.80
及び0.60kbのDNA分子サイズのマーカーを示
す。第2列ないし第10列は連鎖球菌Mの型6,47,
5,19,26,11,24,12及び23のそれぞれ
から得られたDNAのプローブ交雑 Nci I/ HindIII
画分を含んでいる。各々の場合プローブで交雑された2
種または以上のDNAフラグメントが含まれていた。ド
ット・ブロット試験から予期されたように、T28/5
1/4のM- 株からのDNAは交雑しなかった(第11
列)が、T28/150A/5のM+ 株(第12列)は
交雑した。
【0077】6.微生物の寄託 次表に示すプラスミドを有する次表の大腸菌は、イリノ
イ州ペオリアのアグリカルチュラル・リサーチ・カルチ
ュア・コレクション(NRRL)に寄託されており、次
の寄託番号を付与されている。
【0078】 大腸菌株 プラスミド 寄託番号 K−12,C600NR pJRS42.13 NRRL B−15529 ラムダ cI857 K−12,C600NR pJRS42 NRRL B−15535 ラムダ cI857
【0079】寄託微生物は本発明の幾多の態様を代表す
ることを意図したものであるから、本発明は寄託された
微生物により範囲として限定さるべきものではない。事
実、ここに示され、記載されたところに加えて、この発
明の種々の修飾は、以上の記載と添付の図面から、当該
技術の専門家にとっては明らかとなるであろう。かかる
修飾は、上記特許請求の範囲のうちに入るべきことを意
図している。
【0080】本明細書中でヌクレオタイドについての塩
基対の大きさは概略のものであって、記載の目的のため
に使用されたものである。
【図面の簡単な説明】
【図1】図1(大きさは比例していない)は連鎖球菌D
NA断片と pJB8から導かれた組換えプラスミドである
pJRS 42の構造を示している。(第5.2節参照)連
鎖球菌DNA中の種々の制限部位は示されていない。
【図2】図2は pJRS 42.13の制限地図を示す。本
プラスミドは pJRS 42から不必要な連鎖球菌を除くた
Eco RI で消化し再結合することにより誘導された。
プラスミド pJRS 42.13は Eco RI 部位を一箇所の
み有している。(第5.3節参照)
【図3】図3は6型A群連鎖球菌のM6蛋白質をコード
する遺伝子を含むプラスミドpJRS42.13の種々のサ
ブクロンの制限地図である。白色の四角形はM6蛋白質
を発現するクロンを示し、斜線を施した四角形は発現し
ないクロンを示している。ベクター pBR322は42.
21及び42.19を除くすべての場合に用いられた。
それらはそれぞれM13において及び pUC8及び pUC9
においてである。制限地図の上方の矢印は6型M蛋白質
( emm 6 )をコードする遺伝子の転写の方向及び遺伝子
の概略の範囲を示している。蛋白質のアミノ末端に相当
する分子の末端は″N″で示してある。
【図4】図4は、サンガーら[プロシージングス・オブ
・ナチュラル・アカデミー・オブ・サイエンス、U.
S.A.74:5463(1977)]の方法によって
決定されるM6蛋白質のアミノ末端をコードする emm
遺伝子のDNA配列の部分及びそのDNA配列から予
測される蛋白質のアミノ酸配列を示している。連続的エ
ドマン分解により決定されたアミノ末端アミノ酸はアミ
ノ酸配列の下の″N″で示されている。
【図5】図5は図3のプラスミド pJRS 42.13の制
限酵素消化で得られる NciI/Pvu II emm6DNAプロ
ーブによるDNA交雑の寒天ゲル電気泳動分析を示して
いる。各レーン中のDNAは次のとうりである:レーン
1,オリゴヌクレオチドの大きさの10.90,7.7
4,5.15,2.44,1.80及び0.60kbの
標準,レーン2,M6株D471;レーン3,M47;
レーン4,M5;レーン5,M19;レーン6,M2
6,レーン7,M11;レーン8,M24;レーン9,
M12;レーン10,M23,レーン11,M28(M
株T28/51/4から);及びレーン12,M28
(M+ 株T28/150A/5から)。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12N 1/00 U 7236−4B 15/62 C12Q 1/14 6807−4B G01N 33/569 9015−2J 33/577 9015−2J // C12Q 1/68 A 7823−4B (C12P 21/00 C12R 1:19) (C12N 1/00 C12R 1:19) (C12N 15/62 C12R 1:46) (72)発明者 ジューン アール. スコット アメリカ合衆国、30329 ジョージア、ア トランタ、リバリー リッジ ロード 1500 (72)発明者 ビンセント エイ.フィシェッティ アメリカ合衆国、11552 ニューヨーク、 ウエスト ヘンプステッド、ジョーン コ ート 448

Claims (16)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】(a)連鎖球菌蛋白質の免疫反応性と抗原
    的決定部位とを有するポリペプタイドをコードするDN
    A配列を含み、単細胞生物中で複製、転写及び翻訳され
    うる組換えプラスミドを含む単細胞生物を培養し、 (b)かかるポリペプタイドを培養物から単離すること
    を含む連鎖球菌M又はM様蛋白質の免疫反応性と抗原的
    決定部位とを有するポリペプタイドの製造法。
  2. 【請求項2】 そのポリペプタイドが免疫原性である請
    求項1記載の方法。
  3. 【請求項3】 そのポリペプタイドが抗原として用いら
    れたとき、オプソニック抗体を誘出しうるポリペプタイ
    ドである請求項1記載の方法。
  4. 【請求項4】 組換えプラスミドが形質転換により単細
    胞生物中に導入される請求項1記載の方法。
  5. 【請求項5】 組換えプラスミドが形質導入により単細
    胞生物に導入される請求項1記載の方法。
  6. 【請求項6】 組換えプラスミドが形質転換により単細
    胞生物に導入される請求項1記載の方法。
  7. 【請求項7】 M蛋白質がA群連鎖球菌の1員から得ら
    れるものである請求項1記載の方法。
  8. 【請求項8】 M様蛋白質がC群連鎖球菌の1員から得
    られるものである請求項1記載の方法。
  9. 【請求項9】 M様蛋白質がG群連鎖球菌の1員から得
    られるものである請求項1記載の方法。
  10. 【請求項10】 単細胞生物が真核生物である請求項1
    記載の方法。
  11. 【請求項11】 単細胞生物が原核生物である請求項1
    記載の方法。
  12. 【請求項12】 原核生物が大腸菌である請求項11記
    載の方法。
  13. 【請求項13】 連鎖球菌M蛋白質の免疫反応性と抗原
    的決定部位とを有するポリペプタイドをコードするDN
    A配列を含み、単細胞生物中で複製、転写及び翻訳され
    うる組換えプラスミドを誘導することからなる:連鎖球
    菌M蛋白質の免疫反応性と抗原的決定部位とを有するポ
    リペプタイドをコードするDNA配列を有する単細胞の
    製造法。
  14. 【請求項14】 ストレプトコッカス・ピオゲネス(St
    reptococcus pyogenes)の免疫反応性と抗原的活性部位
    とを有するポリペプタイドをコードするストレプトコッ
    カス・ピオゲネスM蛋白質又はそのいずれかの一部をコ
    ードする精製されたDNA配列を含む組換えプラスミド
    を含む単細胞生物により生成されるストレプトコッカス
    ・ピオゲネスM蛋白質の免疫反応性と抗原的決定部位と
    を有するポリペプタイド。
  15. 【請求項15】 単細胞生物が大腸菌である請求項14
    記載のポリペプタイド。
  16. 【請求項16】 請求項14記載のポリペプタイド及び
    それに適合しうる薬学的アジュバントとを含有するワク
    チン製剤。
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