JPH062648B2

JPH062648B2 - 抗菌剤

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Publication number: JPH062648B2
Application number: JP1057815A
Authority: JP
Inventors: 泰内田; 順一田村; 勉横山
Original assignee: Higeta Shoyu Co Ltd
Current assignee: Higeta Shoyu Co Ltd
Priority date: 1989-03-13
Filing date: 1989-03-13
Publication date: 1994-01-12
Anticipated expiration: 2009-01-12
Also published as: JPH02237905A

Description

【発明の詳細な説明】（産業上の利用分野）本発明はグラム陽性及びグラム陰性の細菌に対する抗菌
剤に関するものである。更に詳細には、本発明はα-1,4
結合のポリガラクトサミンを有効成分とする抗菌剤に関
するものである。

本発明の抗菌剤は、その添加または散布によりグラム陽
性の細菌及びグラム陰性の細菌の成育を阻止することが
可能であり、例えばグラム陰性細菌であるEscherichia
属、Pseudomonas属及びグラム陽性細菌であるStaphyroc
occus属、Bacillus属の細菌の成育阻止剤として非常に
有効に利用できる。

（従来技術及び問題点）従来の抗菌製剤はサルフア剤に代表されるような化学合
成製剤または主に放線菌の生産する抗生物質等多種の物
質が知られている。しかし、近年薬剤の急性毒性、慢性
毒性、発ガン性の他に遺伝毒性等にも関心が寄せられ、
より安全性の高い製剤が要求されている。

これらのことを反映して、天然の物質であるペクチン分
解物、プロタミン、スパイス類それにエビやカニの殻の
成分であるチキン、キトサンまたはその軽度分解物等に
ついての研究が行われ一部実用化の検討が行われてい
る。

α-1,4ポリガラクトサミンも微生物の生産する天然の多
糖類で構造上グルコサミンを構成糖とするキトサンとは
類似しており、生理活性等の類似性も期待されている。

しかしながら、ポリガラクトサミン（α-1,4ガラクトサ
ミノガラクタン）は自然界では非常に珍しく、不完全菌
由来のPF-101及びPF-102が知られている程度である（特
公昭56-12639号、特開昭62-294093号）。

また、一般に多糖類は低分子化することにより物理化学
的性質が変わり、高分子の状態より取扱いが容易になっ
たり、生理活性が顕著になったりする等のことが知られ
ている。本ポリガラクトサミンに於いても、低分子化す
る方法として酸やアルカリで処理する方法だけでなく酵
素分解による方法、即ちシュードモナス属菌の生産する
ポリガラクトサミン分解酵素についても既に明らかにさ
れている（特開昭63-164884号、特開昭63-164885号）。

（問題点を解決するための手段）本発明の目的は、より安全性の高い抗菌製剤を提供する
ことにある。

本発明はα-1,4結合のガラクトサミンを有効成分とする
抗菌剤に関するものである。本発明に於ける抗菌剤の有
効成分であるα-1,4結合のガラクトサミンは、不完全菌
ペエシロマイセスI-1（微工研条寄第1180 FERM BP-118
0）を培養することにより、PF-101及びPF-102として得
ることが出来る。また、PF-101、PF-102をシュードモナ
スsp H881（微工研菌寄第8955）の生産するポリガラク
トサミン分解酵素で加水分解することにより、または、
酸加水分解することにより得た分解物を限外濾過膜で分
画することにより各々、分画分子量５万以上、１万以上
〜５万未満、１万未満のα-1,4結合のポリガラクトサミ
ンとして得ることが出来る。

本発明の抗菌剤としては、PF-101、PF-102、これらの分
解物及び分画物などα-1,4結合のガラクトサミンはすべ
て、単独もしくは混合して使用できるものである。

次に、α-1,4ポリガラクトサミン、PF-101及びPF-102の
生産菌について説明する。

和歌山県の腐植層より分離した不完全菌I-1菌はペエシ
ロマイセス属(Paecilomyces)に属するものと認められ、
ペエシロマイセスI-1と命名され、該菌下部は微工研にF
ERM BP-1180として寄託されている。

次にペエシロマイセスI-1(Paecilomyces I-1)の菌学的
性質を示す。

〔ａ〕顕微鏡下での観察本菌は分生胞子柄(conidiophore)を欠き、分生胞子は栄
養菌糸または栄養菌糸束から直接生えている一本一本独
立したフィアライド(phialide)の先端に長い連鎖をなし
て派生している。フィアライドは半透明で20〜45μの長
さを持ち、基部はやや太く（1.0〜1.5μ）先端はやや先
細り（0.5〜1.0μ）で、直線的あるいは先端部がやや湾
曲したものもある。分生胞子は電子顕微鏡により葉巻タ
バコ型（あるいは桿菌型）であり、そのサイズは４〜６
×1.0〜1.4μである。

分生胞子は普通25〜35個の連鎖をなしているが、まれに
はもっと長鎖のものも観察される。この分生胞子の連鎖
は非常にもろく、一寸したショックで簡単にくずれる。

〔ｂ〕各培地における生育状態（25℃平面培養） (１)ツアペック寒天培地コロニーの生育は良く14日目で直径約45mmに達する。白
色のビロード状から羊毛状の菌叢で、中央部に房状に盛
上りがあり、コロニー周辺は円形である。水滴・シワ共
になし。コロニー裏面は培養初期白色、培養後期中央部
が淡黄色を呈する。寒天への色素産生は認められない。

(２)麦芽寒天培地コロニーの生育は良く、14日目で直径約54mm、コロニー
周辺は円形にならず梅鉢状を呈する。

菌叢の中央部は白色だが、周辺部は淡黄色を呈する。菌
叢の厚さは中程度で、中央部はやや凹状である。水滴・
シワ共に認められず、コロニー裏面は全面淡黄色を呈
す。寒天培地に淡黄色色素の産生あり。

(３)ポテトデキストロース寒天培地コロニーの生育は非常に良く14日目に直径約60mmに達す
る。白色のビロード状乃至羊毛状の可成り厚い菌叢を形
成し、中央部はやや盛上り、亜中央部は淡い黄色を呈す
るやや薄い菌叢、その周辺部は白色の比較的厚い菌叢と
なる。表面にシワはないが数個のうすい褐色の水滴が認
められる。コロニー裏面に放射状の数本のシワがあり、
同心円状の黄色の濃淡が認められる。寒天への淡黄色色
素の拡散がある。

(４)YpSs寒天培地（組成スターチ1.5％、イースエキス
0.4％、K₂HPO₄ 0.1％、MgSO₄ 0.05％、寒天２％）コロニーの生育は良好で14日目に直径約50mmに達する。
白色の全体にふっくらとした羊毛状の厚い菌叢である。
水滴・シワなし。コロニー裏面は特記すべき特徴なし。
色素産生なし。

(５)MY₂₀寒天培地（組成グルコース20％、ポリペプトン
0.5％、イーストエキス0.3％、モルトエキス0.3％、寒
天２％）コロニーの生育はあまり良くなく14日目で直径約30mmで
ある。気菌糸はあまりたたず細かいシワが多く、周辺部
は淡黄色、中央部は淡褐色を呈する。コロニーの裏面は
淡黄色で、細かいシワがある。色素産生なし。

ペエシロマイセスI-1は通常の糸状菌の液体培養方法で
培養することができる。

ペエシロマイセスI-1の胞子または菌糸を液体培地に接
種し、好気的に培養する。炭素源としてはブドウ糖、麦
芽糖、蔗糖、澱粉、廃糖蜜等を使用することが出来るが
好ましくはブドウ糖を用いるのが良い。窒素源としては
硫酸アンモニウム、硝酸ソーダなどの無機窒素、ペプト
ン、酵母エキスなどの有機窒素が使用出来る。

培養温度は本凝集活性物質生産菌が凝集活性物質を生産
する範囲内で適宜変更し得るが通常は20〜25℃で培養す
ることが好ましい。培養時間は培養条件によって異なる
が、通常４〜５日程度であり、凝集活性物質が最高に達
する時間を見積って適当な時間に終了すればよい。ここ
で培養濾液を減圧濃縮、限外濾過等の方法で濃縮して濃
縮液としてエタノール等の有機溶媒を加えて沈澱すれ
ば、特公昭56-12639号公報に記載のPF-101が得られるの
である。

また、PF-101生産菌であるペエシロマイセスI-1を培養
し、濾過し、得られた培養濾液または濾液濃縮液に各種
塩を添加し、沈澱が生じない場合は必要によってはアル
カリを添加してpHを７〜９として、析出させ、析出物を
分離し、水洗し、これを希酸水溶液に溶解し、再び塩を
添加するか、アルカリ等の添加によってpHを７〜９とし
て、析出させて、特開昭62-294093号公報に記載のPF-10
2を得ることができる。

PF-101の理化学的性質は次の通りである。

(１)凝集活性；きわめて微量で懸濁微細物を凝集する。

(２)凝集活性pH範囲；pH２〜９で安定に凝集活性を示
す。

(３)凝集活性温度範囲；０〜100℃で凝集活性が認めら
れる。

(４)凝集活性イオン強度；炭酸イオンおよびFe₂(SO₄)₃
により凝集活性が阻害させるがそれ以外の各種イオン及
びイオン強度によって凝集活性に影響はなく、NaCl、K₂S
O₄で1Mまで全く影響を与えない。

(５)元素分析；窒素5.44％、炭素37.45％、水素6.3％、
リン0.27％。

(６)紫外部吸収スペクトル；第１図に示すとおり。

(７)赤外部吸収スペクトル；第２図に示すとおり。

(８)呈色反応；ニンヒドリン反応 − キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応＋フェノール硫酸反応＋レローゼンテスト − (９)酸による加水分解；6N塩酸、110°、20時間分解に
よりガラクトサミンとアンモニアが得られ、4N塩酸、10
0℃、16時間分解により標品の74％のガラクトサミンの
少量のアンモニアが得られる。

(10)電気泳動；密度勾配等電点電気泳動により単一物質
として確認され、等電点(pI)は8.5である。

(11)物質の色；淡黄白色 (12)塩基性、酸性、中性の区別；等電点8.5でやや塩基
性を呈す。（0.1％水溶液のpHは6.2、脱イオン水のpHは
5.8） (13)溶剤に対する溶解性：・熱水に可溶、溶解後冷却しても析出しない。

・冷水に難溶。

・希酸、希アルカリに難溶。

・アルコール類、アセトン、クロロホルム、ベンゼン、
酢酸エチル、ｎ−ペンタンに不溶。

PF-102の理化学的性質は次の通りである。

(１)凝集活性；きわめて微量で懸濁微細物を凝集する。

(２)凝集活性pH範囲；pH２〜９で安定に凝集活性を示
す。

(４)凝集活性イオン強度；炭酸およびFe₂(SO₄)₃により
凝集活性が阻害されるがそれ以外の各種イオン及びイオ
ン強度によって凝集活性に影響はなく、NaCl、K₂SO₄で1M
まで全く影響を与えない。

(５)元素分析；窒素8.64％＆、炭素42.80％、水素6.87
％一般式：(C₆H₁₁NO₄・xH₂O)n (６)紫外部吸収スペクトル；第３図に示すとおり。

(７)赤外部吸収スペクトル；第４図に示すとおり。

(８)呈色反応；ニンヒドリン反応＋キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 − フェノール硫酸法 ± レローゼンテスト − (9)電気泳動；密度勾配等電点電気泳動により単一物質
として確認され、等電点(pI)は8.5である。

(10)物質の色；淡黄色 (11)塩基性、酸性、中性の区別 0.5％w/vで水に懸濁した場合のpHは7.5（脱イオン水のp
H5.8）である。

(12)溶剤に対する溶解性・熱水に難溶・冷水に難溶・希酸に易溶・希アルカリに難溶・アルコール類、アセトン、クロロホルム、ベンゼン、
ｎ−ペンタンに不溶。

(13)平均分子量 16万以上上記PF-101及びPF-102はいずれもα-1,4ポリガラクトサ
ミンであると同定され、そして本発明においていずれも
抗菌性が認められ、更にそれらの分解物及び分解物の分
画物にも抗菌性が認められ、本発明が完成されたのであ
る。

α-1,4ポリガラクトサミンの分解、即ち低分子化に際し
ては、塩酸、硫酸等の酸による加水分解又はポリガラク
トサミン分解酵素による加水分解が行なわれる。

次に、ポリガラクトサミン分解酵素の１例を説明する。
このポリガラクトサミン分解酵素はシュードモナスsp H
881 FERM P-8955によって生産されるものである。

(１)作用及び基質特異性本酵素は重合度ｎ＝４（テトラ−ガラクトサミン）以上
のオリゴ及びポリガラクトサミン（α-1,4ポリガラクト
サミン）に作用してオリゴガラクトサミンを生成する。

その他の多糖類、澱粉（α-1,4グルカン）、グリコーゲ
ン（α-1,4グルカン）、プルラン（α-1,4グルカン）、
デキストラン（α-1,6グルカン）、ラミナラン（β-1,3
グルカン）、カルボキシルセルロース（β-1,4-グルカ
ン）、キトサン（β-1,4グルコサミノグルカン）、エチ
レングリコールキチン（β-1,4N-アセチルグルコサミノ
グルカン）、 Pseudomonas solanacearumのポリN-アセチルガラクトサ
ミノガラクタン（ポリβ-1,3N-アセチルガラクトサミノ
ガラクタン）(Y.Akiyama.,et.al.,Agric.Biol.Chem.,50
(３)747,1986)などには全く作用しない。

また、重合度ｎ＝３（トリ−ガラクトサミン）以下のα
-1,4ガラクトサミノオリゴ糖にも作用しない。

(２)至適pH及び安定pH範囲クエン酸リン酸緩衝液を用いた場合、至適pHは4.5〜7.0
である。また、安定pH範囲はpH4.5〜8.0である。この測
定は37℃で１時間放置した酵素の残存活性を相対値で示
した。

(３)酵素活性の測定法酵素活性は基質にPaecilomyces I-1菌の生産するPF-101
又はPF-102（その主構成糖はα-1,4ガラクトサミノガラ
クタン）を用いた。この0.5％/0.1モル酢酸緩衝液pH6.0
溶液0.5mlに酵素溶液0.5mlを加え、37℃、10分間反応さ
せ、生じる還元力をSomogyi-Nelson法で測定した。なお
酵素単位は１分間当りに１μモルのガラクトサミンに相
当する還元力を増加させる活性を１単位とした。

(４)作用適温及び温度安定性の範囲この酵素の至適温度は55℃であり、それ以上で急激に低
下する。50℃、１時間で70％の活性が残存している。

α-1,4ポリガラクトサミンの溶液にポリガラクトサミン
分解酵素を添加して35〜40℃程度で酵素分解することに
よってα-1,4ポリガラクトサミンの分解物を得ることが
できる。

α-1,4ポリガラクトサミンの分解物には抗菌性が認めら
れるので、そのまま抗菌剤として使用することができる
が、α-1,4ポリガラクトサミンの分解物を限外濾過膜等
によって分画することによって各種の分子量単位に分か
れた分画物を得ることができる。

α-1,4ポリガラクトサミンの分解物は限外濾過膜によっ
て、分子量５万以上、分子量１万以上５万未満、分子量
１万未満とそれぞれの分画物を得ることができるが、い
ずれの分画物も抗菌性を有しており、本発明の抗菌剤と
なるものである。

本発明は、α-1,4ポリガラクトサミン、その分解物又は
分解物の分画物を有効成分とする抗菌剤である。

本発明において、有効成分はそのまま添加料として、又
は各種液剤、粉剤に製剤化して抗菌剤として有効に使用
されるものである。

次に本発明の製造例、実施例を示す。

製造例１ α-1,4ポリガラクトサミン(PF-102)の製造グルコース600ｇ、ポリペプトン60ｇ、CaCl₂・2H₂O125
ｇを水道水17に溶解し、濃NaON溶液でpH7.0に調整し
た後30容ジャーファーメンターに移した。

この培地溶液に蒸気を注入することにより加圧、加熱滅
菌（121℃、20分間）を行った。冷却後の培地（最終液
量20）に、500ml三角フラスコに150ml同組成の培地
（グルコース３％、ポリペプトン0.3％、CaCl₂0.5％、p
H7.0）で26℃、４日間振盪培養したペエシロマイセスI-
1、FERM BP-1180(FERM P-3928)を容量比で約10％無菌的
に接種した。接種後27℃、通気量0.5VVM、撹拌数200RPM
の条件で５日間培養した。

培養終了後培養物を濾布濾過することにより培養濾液17
を得た。この培養濾液を50℃〜60℃に加熱しながら分
画分子量16万の限外濾過膜（三菱レイヨン・エンジニア
リング社製UF膜チューブラーモジュールＦタイプ）を通
過させることにより、低分子画分を除き液量が約３に
なる迄濃縮した。更に、約14000×Ｇで遠心分離するこ
とにより菌体残渣、熱編成蛋白質を除去した。

遠心分離後に上澄液画分３に食塩約750ｇ（約25％濃
度）を加え撹拌し、溶解後、濃NaOHでpHを7.0〜8.5に調
整した。一夜放置し塩析物を十分析出させた後、サラン
製の布（塩化ビニリデンと塩化ビニール共重合体）上に
塩析物を回収した。更にこの塩析物の上から大量の微ア
ルカリ性の水（pH7.0以上）を撤布することにより余分
の食塩及び培養液に同時に混在している中性糖、その他
の夾雑物を洗い流した。

次に、水洗後の塩析物に0.1M塩酸溶液を容量比で約３倍
量加え溶解した。この溶解物に濃NaOH溶液を加えポリガ
ラクトサミンの等電点であるpH8.5に合せた。一夜放置
し十分析出物を析出させた後、上記と同様サラン製の布
上に析出物を回収し、大量の水道水で洗った。この水洗
物をもう１度0.1M塩酸に溶解後、等電点沈澱を行い水洗
を繰返すことにより精製した。

この精製した析出物を121℃、15分間滅菌後、凍結乾燥
することにより、ポリガラクトサミンを主成分とするPF
-102の精製粉末（α-1,4ポリガラクトサミンとしての純
度約99％を７ｇ得た。

製造例２ α-1,4ポリガラクトサミンの分画方法精製α-1,4ポリガラクトサミン(PF-102)100ｇを４規定
塩酸２に分散させ、冷却管付き三角フラスコ中にて、
80℃、４時間塩酸加水分解した。

分解後、この塩酸加水分解溶液を10規定水酸化ナトリウ
ムで中和しpH７とした。この、溶液を先ず分画分子量５
万の限外濾過膜で処理（グレースジャパン社製）し、更
に分画分子量１万の限外濾過膜で処理した。この様にし
て、各々分子量５万以上、１〜５万、１万未満のα-1,4
結合のポリガラクトサミンを得た。

各々の画分を凍結乾燥することにより、粉末試料とし
た。

製造例３ポリガラクトサミン分解酵素の製造シュードモナスsp H881、FERM P-8955を500ml三角フラス
コ中で、グルコース0.5％、酵母エキス0.05％、ポリペ
プトン0.05％の組成を有する種培地100mlに植菌し、30
℃で20時間培養する。

得られた種培養液を30のジャーファーメンター中で、
ポリガラクトサミン(PF-102)0.25％、グルコース0.25
％、酵母エキス0.05％、ポリペプトン0.05％の酵素生産
培地18に植菌し、30℃で48時間通気（18／分）撹拌
(200rpm)培養する。

得られた培養液を遠心分離(14000rpm)して、菌体を除
き、得られた培養濾液（酵素活性0.0035U/ml、総活性63
U/18）に冷却したエタノールを60％濃度まで加えて、
タンパク質を沈殿させ、この沈殿タンパク質を遠心し
て、溶液から分離する。得られたタンパク質を0.1モル
酢酸緩衝液(pH5.0)で平衡化したCM-セファデックスC-25
カラム(2.5×60cm)に吸着させ、０〜0.5モル食塩の濃度
勾配を有する同緩衝液を用いて溶出させる。

溶出した酵素活性区分を集め、限外濾過装置（分子量１
万保持）を使って濃縮する。次に、２モル食塩を含む0.
1モル酢酸緩衝液(pH6.0)溶液とし、同緩衝液で平衡化し
たセファデックスG-50カラム(5×90cm)クロマトグラフ
ィーにかける。次いで、活性区分の食塩濃度を４モルに
まで高め、同様な溶液で平衡化したフェニル−セファロ
ースCL-4Bカラム(2.5×20cm)に吸着させ、食塩の逆濃度
勾配を持つ0.1モル酢酸緩衝液で溶出して精製ポリガラ
クトサミン分解酵素50mg（収率23.1％、比活性52μｇ
galN/min/mg protein）を得た。

製造例４ α-1,4ポリガラクトサミンの分画方法精製ポリガラクトサミン25ｇを4.8の0.1モル酢酸に溶
解し、次に水酸化ナトリウムでpH6.0に調整し、全液料
を５とした。このポリガラクトサミン溶液を基質と
し、これに製造例３で得た精製ポリガラクトサミン分解
酵素10mgを加え37℃で酵素分解した。この分解後の溶液
を先ず、分画分子量５万の限外濾過膜で処理（グレース
ジャパン社製）し、更に分画分子量１万の限外濾過膜で
処理した。この様にして、各々分子量５万以上、１〜５
万、１万未満のα-1,4結合のポリガラクトサミンを得
た。

更に、各々の画分を凍結乾燥することにより、粉末試料
とした。

ここに得られた分画分子量５万以上のα-1,4結合のポリ
ガラクトサミンの理化学的諸性質は次の通りである。

１元素分析；窒素8.6％、炭素42.8％、水素6.9％、酸
素41.7％２比旋光度；▲〔α〕²⁰ _D▼＝＋215〜225 ３融点；160℃以上で褐変、210℃で炭化、230℃で灰
化４物質の色；淡黄色５呈色反応；ニンヒドリン反応＋キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 − フェノール硫酸反応 ± ６溶剤に対する溶解性；・水に難溶・希酸に可溶・メタノール、エタノール、アセトン、クロロフォル
ム、ヘキサンに難溶７紫外部吸収スペクトル；第５図に示される。

８赤外部吸収スペクトル；第６図に示される。

また、分画分子量１万以上５万未満のα-1,4結合のポリ
ガラクトサミンの理化学的諸性質は次の通りである。

１元素分析；窒素8.7％、炭素45.7％、水素3.2％、酸
素42.4％２比旋光度；▲〔α〕²⁰ _D▼＝＋210〜220 ３融点；特定の融点を持たず、160℃で褐変、210℃で
炭化、230℃で灰化４物質の色；淡黄色５呈色反応；ニンヒドリン反応＋キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 − フェノール硫酸法 ± ６溶剤に対する溶解性；・水に可溶・メタノールに微溶・ジメチルスルホオキシドに微溶・エタノール、アセトン、クロロホルム、ヘキサンに難
溶７紫外部吸収スペクトル；第７図に示される。

８赤外部吸収スペクトル；第８図に示される。

また、分画分子量１万未満のα-1,4結合のポリガラクト
サミンの理化学的性質は次の通りである。

１元素分析；窒素8.6％、炭素44.3％、水素6.9％、酸
素40.2％２比旋光度；▲〔α〕²⁰ _D▼：＋206.8 ３融点；特定の融点を持たず、160℃以上で炭化をは
じめる。

４物質の色；淡黄色５呈色反応；ニンヒドリン反応＋インドール塩酸反応＋ソモギー−ネルソン反応＋フェノール硫酸反応 − ヨード反応 − ６溶剤に対する溶解性；・水に可溶・希酸に可溶・メタノールに微溶・ジメチルスルフォオキシドに微溶・エタノール、アセトン、クロロフォルムには難溶７紫外部吸収スペクトル；第９図に示される。

８赤外部吸収スペクトル；第10図に示される。

実施例１培養培地；肉エキス10ｇ、ペプトン10ｇ、塩化ナトリウ
ム５ｇを脱イオン水に溶解し、pHを6.0に調整した後、
１とした。

別に、製造例１で製造したα-1,4ポリガラクトサミン(P
F-102)、製造例２で製造したα-1,4ポリガラクトサミン
の塩酸分解物及び製造例２で調整した塩酸分解物の分画
物で各々の分子量のものについて、各α-1,4ポリガラク
トサミンを0.1規定の酢酸に溶解し、各々最終濃度で0.
1、0.05、0.0125、0.006、0.003％になるように培養培
地に添加した。

更に、寒天を最終1.5％になるように加え、121℃、15分
オートクレーブした後ポリガラクトサミン含有平板培地
とした。

抗菌作用の判定は、接種した菌株の増殖阻止が確認され
た培地中のポリガラクトサミンの最小濃度で示した。菌
株の培養は、30℃、２日間行いその観察結果で判定し
た。

試験に供した菌株は Escherichia coli IFO 12734, Bacillus subtilis IFO 3513, Pseudomonas aeruginosa IFO 3349, Micrococcus luteus IFO 12708, Mycobacterium phlei IFO 3158, Staphylococcus aureus IFO 12732である。

結果は、第１表に示した通りである。

【図面の簡単な説明】

第１図はPF-101の紫外部吸収スペクトルを示す図で、第
２図はPF-101の赤外部吸収スペクトルを示す図で、第３
図はPF-102の紫外部吸収スペクトルを示す図で、第４図
はPF-102の赤外部吸収スペクトルを示す図で、第５図は
PF-102の分解物の分子量５万以上の分画物の紫外部吸収
スペクトルを、第６図はその赤外部吸収スペクトルを示
す図で、第７図はPF-102の分解物の分子量１万以上５万
未満の分画物の紫外部吸収スペクトルを、第８図はその
赤外部吸収スペクトルを示す図で、第９図はPF-102の分
解物の分子量１万未満の分画物の紫外線吸収スペクトル
を、第10図はその赤外部吸収スペクトルを示す図であ
る。

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】α-1,4ポリガラクトサミン、その分解物又
は分解物の分画物を有効成分とする抗菌剤。
【請求項２】α-1,4ポリガラクトサミンの分解物の分画
物が分子量５万以上のα-1,4ポリガラクトサミンである
ことを特徴とする第１項記載の抗菌剤。
【請求項３】α-1,4ポリガラクトサミンの分解物の分画
物が分子量１万以上５万未満のα-1,4ポリガラクトサミ
ンであることを特徴とする第１項記載の抗菌剤。
【請求項４】α-1,4ポリガラクトサミンの分解物の分画
物が分子量１万未満のα-1,4ポリガラクトサミンである
ことを特徴とする第１項記載の抗菌剤。