JPH07624B2 - Bmy―41950抗腫瘍抗生物質 - Google Patents
Bmy―41950抗腫瘍抗生物質Info
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- JPH07624B2 JPH07624B2 JP2073173A JP7317390A JPH07624B2 JP H07624 B2 JPH07624 B2 JP H07624B2 JP 2073173 A JP2073173 A JP 2073173A JP 7317390 A JP7317390 A JP 7317390A JP H07624 B2 JPH07624 B2 JP H07624B2
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- C07H19/02—Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing nitrogen
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Description
特許出願第327,929号の部分継続出願である。
に関する。
スポレウス(Streptomyces staurosporeus)nov.sp.AT
CC55006の発酵による抗生物質AM-2282の製造を記載して
いる。この抗生物質は抗感染及び活性を有すると報告さ
れている。AM-2282は後にスタウロスポリン(staurospo
rine)と命名され、その構造はJ.Chem.Soc.Chem.Commu
n.1978:800-801、1978に であると報告されている。
CN-01(FERM BP-990)の発酵によって生産されるUCN-01
という名称の抗腫瘍抗生物質を記載している。化合物UC
N-01はJ.Antibiotics,p.1782、1987 12月号にも記載さ
れている。
mycin)と呼ばれる抗腫瘍抗生物質が、ノカルジア・ア
エロコロニゲネス(Nocardia aerocolonigenes)ATCC39
243の発酵によって生産されるとして記載されている。
レベッカマイシンは構造式 を有する。この生産菌は細菌サッカロトリックス・アエ
ロコロニゲネス(Saccharothrix acerocolonigenes)
(J. Antibiot. 40:668-678、1987)として分類しな
おされた。
コロニゲネス(Saccharothrix aerocolonigenes)ATCC
39243の発酵によって生産される4′−デスクロロレベ
ッカマイシンと呼ばれる抗腫瘍抗生物質を記載してい
る。この化合物は構造式 を有する。
びA13の少なくとも1つは-(CH2)n-NR1R2であり、 R1及びR2は、無関係に、水素、未置換及び置換C1-C6ア
ルキルと、アルキル部分中に1〜3個の炭素を有しかつ
アリール部分が未置換フェニルあるいは1〜3個のアル
キル、アルコキシ、ハロ、カルボキシル、アルコキシカ
ルボニル、及びアミノ並びにモノ−及びジ−低級アルキ
ルアミノ基で置換されたフェニルであるアリールアルキ
ルと、未置換フェニル及び1〜3個のアルキル、アルコ
キシ、ヒドロキシ、ハロ、アミノ、モノ−及びジアルキ
ルアミノ、ニトロ、カルボキシル、アルコキシカルボニ
ル及びシアノ基で置換されたフェニルから選ばれるアリ
ールとから選ばれ、但しR1とR2の両方共がおのおのアリ
ールであることはなくかつ、一緒になるとき、R1とR2と
は窒素原子と一緒に5−又は6−員環を形成するため-
(CH2)4-及び-(CH2)2-R3-(CH2)-(ここで、R3はCH2、N
H、O及びSから選ばれる)から選ばれ得ることを条件
とし、 XはH、F、Cl、Br、C1-C3アルキル、OH、カルボキシ
ル、アルキル部分がC1-C3アルキルであるアルコキシカ
ルボニル及びアルコキシ、ベンジルオキシ、アミノ、及
びモノ−及びジ−アルキルアミノから選ばれ、かつ R4はH及びCH3から選ばれる〕 及びその製剤上受容できる酸付加塩及び塩基塩の一連の
抗腫瘍抗生物質を記載している。
・メリアウラ(Actinomadura melliaura)ATCC39691の
発酵のよって生産されるAT2433A1、AT2433A2、AT2433B1
およびAT2433B2と称する4種の抗腫瘍抗生物質を記載し
ている。これらの化合物は構造式 (上記構造式中、XはH又はClであり、RはH又はCH3
である)を有する。
腫瘍活性を有すると報告されている化合物K252の誘導体
を記載している。記載されている化合物の中には、44頁
に化合物65〜76として見られる幾つかのK252 7−オキソ
誘導体がある。
抗生物質並びに実質的に純粋な形でのBMY-41950の製
造、単離及び精製方法に関する。
ポレウス(Streptomyces staurosporeus)nov.sp.のBM
Y-41950生産性株、好ましくはストレプトミセス・スタ
ウロスポレウス(Streptomyces staurosporeus)ATCC5
5006あるいはその突然変異株又は変異株、あるいはスト
レプトミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces hygr
oscopicus)のBMY-41950生産性株、好ましくはストレプ
トミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces hygrosco
picus)株C39280-450-9(ATCC53730)あるいはその突然
変異株又は変異株の、水性栄養培地中、液中好気条件下
での、該培地中で該菌によって実質的な量のBMY-41950
が生産されるまでの発酵並びに共生産物質を実質的に含
まないBMY-41950の培地からの回収によって得られる。
活性をも示す。
レウス(Streptomyces staurosporeus)又はストレプ
トミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces hygrosco
picus)のBMY-41950生産性株の発酵によって製造され
る。特に好ましいBMY-41950生産性株は米国農務省ノー
ザン・リジョナル・リサーチ・センター(Northern Reg
ional Research Center)、ARSパテント・カルチャー・
コレクション(Patent Culture Collection)から得ら
れ、そこでは該株はNRRL11,184ストレプトミセス(Stre
ptomyces)sp.として同定される。
州ロックビレのアメリカン・タイプ・カルチャ−コレク
ション(American Type culture Collection)に寄託さ
れかつATCC55006としてその永久菌コレクション加えら
れている。この株の培養菌は米国コネチカット州、ウォ
ーリングフォードのブリストルーマイヤーズ・スクイブ
・カンパニー(Bristol-Myers Squibb Company)PRDDア
クチノミセス・カルチャー・コレクション(Actinomyce
s Culture Collection)に凍結乾燥菌としても保存され
ている。
びJ.Antibiotics 30(4):272-282、1977中に詳細に
記載されている。この株はストレプトミセス・スタウロ
スポレウス(Streptomyces staurosporeus)nov.sp.と
いう名称をもつ新規のストレプトミセス(Streptomyce
s)種として分類されている。
でストレプトミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces
hygroscopicus)株C39280-450-9と称するストレプト
ミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces hygroscopi
cus)の新規株である。この株は沼津で集められた土壌
試料から単離された。株C39280-450-9の生物学的純粋培
養菌は米国メリーラント州ロックビレのアメリカン・タ
イプ・カルチャー・コレクション(American Type Cult
ure Collection)に寄託され、ATCC53730としてその永
久菌コレクションへ加えられた。
ーリングフォードのブリストル−マイヤーズ・スクイブ
・ファーマシュウティカル、リサーチ・アンド・ディベ
ロプメント・ディビジョン・カルチャー・コレクション
(Bristol-Myer Squibb Pharmaceutical Research and
Development Division Culture Collection)の凍結乾
燥管及び低温バイアル中の休眠培養菌としても保存され
ている。
ストレプトミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces
hygroscopicus)の新株であることを示す。株C39280-45
0-9はシャーリング及びゴットリーブ(Shirling & Got
tlieb)(Int.J.Sept.Bacteriology16:313-340、1966;
同上18:69-189、1968;同上22:265-394、1972)、スタネ
ック及びロバーツ(Staneck & Roberts(Appl.Microbi
ol.28:226-31、1974)、K.P.シャール(K.P.Shaal)
〔M.グッドフェロー及びD.E.ミニキン(M.Goodfellow a
nd D.E.Minnikin)編、ケミカル・メソッズ・イン・バ
クテリアル・システマティックス(Chemical Methods i
n Bacterial Systematics)、Academic Press Inc.,pp.
359-381、1985〕によって記載されている物質及び方法
によって決定された下記の性質を有する。
ンティング(non-fragmenting)基質及び気中菌糸の生
成、2)気中菌糸上の枝分かれ担胞子体から生じた分節
胞子のらせん鎖でかつ該胞子鎖が2〜6巻きを有するこ
と、3)なめらかな胞子装飾が含まれる。
培地No.4及び改良ベネット(Modified Bennet's)培地
中で吸湿性変化が明らかである。可溶性馬鈴薯澱粉及び
ブドウ糖は増殖のために利用される。イノシットの利用
は疑わしい。生理的特性は第2表に示してある。
してLL−ジアミノピメリン酸、ガラクトース、リボー
ス、及びマンノースを示した。従ってこの菌はタイプI
細胞壁に割当てられる。燐脂質の分析はホスファチジル
エタノールアミンとホスファチジルグリセリンとの存在
を検出し、燐脂質パターンをPIIとして分類している。
ワンシャー(J.H.Wanscher)、ラインホールド・カラー
・アトラス(Reinhold Color Atlus),Reinhold Publis
hing Corporation,コペンハーゲン、デンマークからと
った。
レプトミセス(streptomyces)種に分類される。さらに
ストレプトミセス・ヒグロスコピクス(Streptomyces
hygroscopicus)種としての分類は菌のらせん胞子鎖の
菌株群形成及びその次の吸湿性によって確認される。
使用あるいはその説明に充分に答える菌に限定されるも
のではないことは言うまでもない。他のBMY-41950生産
性株あるいはX線照射、紫外線、窒素マスタードによる
処理、ファージ暴露などのような通常の手段によって生
成されることができる上記菌の突然変異株を含むことを
特に意図している。
staurosporeus)のBMY-41950生産性株、好ましくはス
トレプトミセス・スタウロスポレウス(streptomyces
staurosporeus)ATCC55006又はその突然変異株又は変異
株、あるいはストレプトミセス・ヒグロスコピクス(st
reptomyces hygroscopicus)のBMY-41950生産性株、好
ましくはストレプトミセス・ヒグロスコピクス(strept
omyces hygroscopicus)株C39280-450-9(ATCC53730)
又はその変異株又は突然変異株を水性栄養培地中で液中
好気条件下で培養することによってBMY-41950を製造す
ることができる。菌は資化性炭素源、例えば蔗糖、乳
糖、ブドウ糖、ラムノース、果糖、マンノース、メリビ
オース、グリセリン、又は可溶性澱粉を含む栄養培地中
で増殖する。栄養培地は魚粉、ペプトン、大豆粉、落花
生粉、綿実粉、とうもろこし浸漬液、酵母エキス又はア
ンモニウム塩のような資化性窒素源をも含むべきもので
ある。必要ならば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫
酸マグネシウム、炭酸カルシウム、燐酸塩などのような
無機塩が添加される。所望ならば、銅、マンガン、鉄、
亜鉛、などのような微量元素が培地へ添加され、あるい
はこれらを培地の他の成分の不純物として供給すること
ができる。
ける任意の温度、例えば20〜40℃で行うことができる
が、好ましくは25〜35℃、最も好ましくは27〜32℃で発
酵を行う。培地には好ましくは中性pHが用いられかつ該
抗生物質の製造は一般に約7〜約12日間行われる。
は工業用発酵槽中で行われる。タンク発酵を用いようと
するときには、該菌の斜面又は土壌培養菌あるいは凍結
乾燥培養菌を含む少量の培地を接種することによって栄
養ブロス中に増殖形接種物を生成させることが望まし
い。この方法で活性接種物を得た後、BMY-41950の大規
模生産用の発酵タンク培地へ無菌的に移す。増殖形接種
物がその中で生成される培地はBMY-41950生産性菌の良
好な増殖が得られるようなものである限り、タンク内で
利用されるものと同じであっても、あるいは異なっても
よい。発酵中の攪拌は機械的インペラーによっておこな
うことができかつラード油やシリコーン油のような通常
の消泡剤を所要ならば添加することができる。
-41950の精製は通常の抽出及びクロマトグラフィー技術
によって達成される。好ましい単離及び精製方法は下の
実施例2に示される。
オキソスタウロスポリン)はスタウロスポリンの酸化に
よって化学的に合成することもできることが発見され
た。代表的な酸化は下記のようである。
塩化メチレンを大過剰(0.25g)の酸化マンガン〔MnO2
活性化(Aldrich)〕を添加した。この混合物を23℃で2
0分間音波処理した。追加のMnO2(0.25g)を添加し、さ
らに音波処理(20分間)した。この方法をさらに4回、
2時間にわたって繰返し、この時点で反応混合物を23℃
で1晩中(さらに14時間)攪拌させた。反応混合物ヘデ
ィカライト(Dicalite)を加えた後、濾過し、アセトン
−メタノール(9:1)で洗浄し、濃縮した。所望な7−
オキソスタウロスポリンを真空液体クロマトグラフィー
で精製した後、逆相(C18)HPLCで精製して5mgの精製物
を得た。
スペクトロメータ(Finnigan 4500 Single Quadrapole
Mass Spectrometer)〕 紫外線スペクトル:ヒューレット−パッカード(Hewlet
-Packard)(HP)8452Aダイオード・アレー・スペクト
ロフォトメーター(Diode Array Spectrophometer)
(濃度0.2mg/20mlメタノール) 中性:420nm(65)、372nm(81)、337nm肩、318nm(80
7、308nm肩、288nm(447)、260nm(374)、240nm(67
1) 360MHz1H−NMR:ブルカー(Bruker)モデルAM-3000分光
計。ジュアル(Dual)炭素−プロトンプローブ、5mm。
1H)9.06(d,1H),8.01(d,1H),7.70(d,1H),7.56
(m,1H),7.47(m,1H),7.39(m,1H),7.31(m,1H),6.
74(m,1H),4.10(m,1H),3.22(s,3H),2.32(s,3H),
1.96(m,1H),1.75(m,1H),1.40(s,3H)。
フラン(THF)、CHCl3-CH3OH(2:1v/v)に可溶。
3OH(9:1v/v):0.42。THF:0.20。ワットマン(Whatma
n)MK C18;0.1M NH4OAc‐THF(1:1v/v):0.25。
と決定された。
を示すことがわかった。例えば、BMY-41950はスタフィ
ロコックス・アウレウス(Staphylococcus aureus)A9
537に対して6.25μg/ml、エンテロコックス・ファエカ
リス(Enterococcus faecalis)A20688に対して12.5μg
/mlのMIC(最小阻止濃度)を示す。
系で試験するとき、抗腫瘍活性をも示す。
す。
外細胞毒活性について試験した。生体内では、ネズミの
白血病腫瘍モデルに対する活性を試験した。生体外で
は、マイトマイシンC及びシスプラチンを参照化合物と
して使用したが、生体内参照としてはエトポシド(VP-1
6)を用いた。
クローン)細胞をコンプリート・マッコイ培地(Comple
te McCoys Media)で培養した。この培地はマッコイ(M
cCoys)5A培地420ml+水6ml中の500mgの炭酸水素ナトリ
ウム、L−セリン6.56mg、L−アスパラギン1.5mg、水2
ml中の82.4mgのピルビン酸ナトリウム、必須アミノ酸
〔50×、ギブコ(Gibco)〕6.25ml、非必須アミノ酸〔1
00×、ギブコ(Gibco)〕3.0ml、3mlのL−グルタミン
(200MM)、3mlのMEMビタミン〔ギブコ(Gibco)〕、ペ
ニシリン/ストレプトマイシン〔ギブコ(Gibco)〕6.2
5ml及び50mlの熱不活性化、画定胎児子牛血清からな
る。
600細胞を96ウエルミクロタイタープレートの各ウエル
中に入れた。空気95%、二酸化炭素5%加湿インキュベ
ーター中で37℃で24時間インキュベーションして細胞を
プレートへ付着させた後、試料/参照薬品の50μlをウ
エルの最上列の12のうちの11へ入れるが、12番目には50
μlの培地を入れる。薬品/培地をプレートの8ウエル
を下へ逐次希釈(4倍希釈)する。薬品/培地の存在下
で細胞を次に72時間インキュベートする。10%ホルマリ
ンで固定した後、薬品で死んだ細胞をプレートから洗浄
除去するが、生存細胞は0.0075%クリスタルバイオレッ
トで染色される。乾燥後、染着物を10%エタノール及び
1%酢酸で処理し、プレートをダイナテク(Dynatech)
MR600プレート読み機で定量化し、IC50値(50%の細胞
の死又は増殖阻止が起こる薬品濃度)を計算する。下表
はBMY-41950及び標準薬品マイトマイシンC及びシスプ
ラチンについて測定されたデータを示す。
た。雌CDF1マウスを、106個のリンパ球白血病P388細胞
を含む希釈腹水0.5mlで腹腔内接種した。10匹のマウス
は未処理であったが、この群の中間生存期間は10日であ
った。各4匹のマウス3群を、腫瘍移植の1、2、3、
4及び5日後にBMY-41950で処理した。BMY-41950は初め
にDMSO、Tween80及び緩衝食塩水に溶解した後、腹腔内
投与した。18及び6mg/kg/日で処理した群は薬品誘発毒
性を受け、全マウスが7日前に死亡した。2mg/kg/日を
投与された第3群は中間生存期間が13日であった。かく
して%T/C(薬品処理群の生存期間/未処理対照群の生
存期間×100)は130%であった。このネズミ腫瘍試験の
抗腫瘍活性の基準は125%以上の%T/Cである。かくし
て、BMY-41950はP3888ネズミ白血病腫瘍モデルに於ける
抗腫瘍活性の基準を満たしている。
ロコックス・アウレウス(Staphylococcus aureus)及
びエンテロコッカス・ファエカリス(Enterococcus fa
ecalis)のような細菌に対する活性を示す。
の治療法であって、宿主、例えば温血哺乳類へ、かかる
治療が必要なときに、かかる感染を治療するのに充分な
量のBMY-41950又はその製剤組成物を投与することを含
む治療法を提供する。
も示す。
の悪性腫瘍にかかっている哺乳動物宿主の治療法であっ
て、該宿主へ腫瘍抑制量のBMY-41950又はその製剤組成
物を投与することを含む治療法を提供する。
きる不活性担体又は希釈剤と組み合わせ有効な抗菌又は
腫瘍抑制量のBMY-41950を含む製剤組成物を提供する。
かかる組成物は他の抗菌剤又は抗腫瘍剤を含むことがで
きかつ所望な投与ルートのために適当な任意の形に作る
ことができる。かかる組成物の例には、錠剤、カプセ
ル、丸剤、散剤及び顆粒のような経口投与用の固体組成
物、液剤、懸濁液、シロップ又はエリキシルのような経
口投与用液体組成物及び滅菌溶液、懸濁液又はエマルジ
ョンのような非経口投与用製剤が含まれる。これらの組
成物は、使用直前に滅菌水、生理的食塩水又は他の滅菌
注射用媒質に溶解させることができる滅菌固体組成物の
形で製造することができる。
剤組織物を、活性成分の濃度が処理される特別な菌に対
する最小阻止濃度より高いように投与する。
剤組成物をEP 238,011号に記載されている化合物UCN-01
と実質的に同じ方法で投与することができる。与えられ
た哺乳類宿主に対するBMY-41950の最適投与量及び投与
法は当業者が容易に確かめることができる。勿論、用い
られるBMY-41950の実際の投与量は調合されるその組成
物、投与形式及びその投与部位、宿主及び治療される疾
病によって異なることは言うまでもない。薬品の作用を
変化させる年齢、性別、体重、食事、投与時間、投与ル
ート、排泄速度、患者の状態、薬品の組み合わせ、反応
感受性及び病気の重篤度を含む多くの因子を考慮に入れ
る。
範囲を限定するためのものではない。ヌートリソイ(Nu
trisoy)は米国イリノイス州デカター(Decatur)のア
ーチャーズ・ダニエルズ・ミドランド・カンパニー(Ar
chers Daniels Midland Co.)から発売されている大豆
粉である。ファーマメディア(Pharmamedia)は米国テ
キサス州フォートウォースのバッキー・オイル・シード
・プロダクツ・カンパニー(Buckeye Oil Seed Product
s Co.)から市販されている綿実内胚乳粉である。S.J.
澱粉〔スタクリプス(Staclipse)J-UB澱粉〕は米国イ
リノイス州デカター(Decatur)のA.E.ステーリー・マ
ヌファクチャリング・カンパニー(A.E.Staley Manufac
turing Co.)が発売しているとうもろこし澱粉である。
staurosporeus)株R10069(ATCC55006)を保持し、試
験管内のCaCO3で補充された酵母エキス−麦芽エキス寒
天の寒天斜面上に移した。この培地はデキストロース4.
0g、酵母エキス4.0g、麦芽エキス10g、炭酸カルシウム
1.5g及び寒天20gと1にするための蒸留水からなる。
おのおのが移入された寒天斜面を28℃で5〜7日間イン
キュベートした。生産期の接種物をつくるため、斜面培
養からの表面増殖菌を、蒸留水1にしたセレロース30
g、ファーマメディア(Pharmamedia、綿実内胚乳粉)10
g、ヌートリソイ(Nutrisoy、大豆粉)10g、炭酸カルシ
ウム3.0gからなる滅菌培地100mlを含む500mlのエルレン
マイヤーフラスコへ移した。この増殖形培養物を250rpm
にセットしたロータリーシェーカーで28℃で48時間イン
キュベートした。この増殖形培養物5mlを、蒸留水で1
にしたS.J.澱粉(とうもろこし澱粉)60g、セレロー
ス10g、ヌートリソイ(Nutrisoy)10g、デビッタード・
ブリュワーズ(Debittered Brewer's)酵母5g、硫酸第
一鉄7水化物1g、硫酸アンモニウム1g、一塩基性燐酸ア
ンモニウム1g及び炭酸カルシウム10gからなる生産培地1
00mlをおのおの含む500mlのエルレンマイヤーフラスコ
中へ接種した。この生産培養物をロータリーシェーカー
で28℃でインキュベートし、回転速度を250rpmにセット
した。最適生産は一般に216〜264時間で起こった。
チル、クロロホルム、アセトン及びエチルエーテルはAC
S試薬等級であった。水とはバーンステッド・ナノピュ
ア(Barnstead Nanopure)IIシステム中を通した自家用
(in-house)脱イオン水である。テトラヒドロフランは
B&JブランドHPLC等級溶剤であった。酢酸アンモニウ
ムはフィッシャー(Fisher)HPLC等級であった。
ーン(sewn)フィルターバックでライニングされた12″
トルハースト・ラボラトリー・センタースラング・セン
トリヒューガル・フィルター・ユニット〔Tolhurst Lab
oratory Centerslung Centrifugal Filter Unit(Model
1B15,Ametek,Inc)〕で濾過した。
5cm×10cm×0.25mm厚)で正相TLCを行った。逆相TLCは
ワットマン(Whatman)MKC18プレート(Cat.4803-110、
0.2mm厚)で行った。プレートは、キャップ付きワット
マン円筒形ジャー及び10mlの溶離液で展開した。展開、
風乾したプレートを254及び266nm紫外線で可視化した。
正相TLCプレートもアルカロイド用ヨウ化白金酸噴霧試
薬で可視化した。
μ)、真空用側ホース及び受器フラスコ取付け用下部24
/40ジョイントを含むブフナー漏斗(Kontes,Art.K-9541
00)からなる。
溶剤を真空下に吸い込んで、密に充填した高さ5cmの吸
着剤床を形成させた。
く、あるいは最小極性溶出溶剤の溶液で装填される。
極性を増加して段階勾配で溶出する。各容量の溶出溶媒
使用の後、漏斗は吸引乾燥する。
ーズ・アソシエーツ(Waters Associates)モデル590ソ
ルベント・デリバリー・システム(Solvent Delibery S
ystem)ポンプ、320nmにセットしたクナバー(Knaver)
モデル87可変波長検出器、ウォーターズ・アソシエーツ
(WatersAssociates)モデルU6K注入器、ヒース(Heat
h)モデルSR-204ストリップ・チャート・レコーダー、
ワットマン・パーティシル(Whatman Partisil)16ODS-
3カラム(10mm×50cm)。各装置を316ステンレス鋼チュ
ーブ(外径1.6mm、内径0.23mm)で連結した。溶離液を4
ml/分でポンプ輸送した。
心分離濾過した。菌糸マットをテトラヒドロフラン(8
l)中に3時間懸濁し、24cmブフナー漏斗(Coors No.1
1)を通して濾過し、固体を追加の2lのアセトンで洗浄
した。有機相を合わせ、減圧下で蒸発して残留物33gを
得た。
l)との混合物で1回抽出した。
た。濾液を酢酸エチル(2l)で第2回の抽出を行い、濃
縮後266mgの残留物を得た。
めに合わせた。
し、この酸性水層を分液の漏斗で150mlずつのクロロホ
ルムで3回抽出した。有機層を合わせ、真空中で濃縮し
て4.04gの残留物を得た。
のクロロホルムでさらに3回洗浄して、有機層を合わせ
て濃縮した後、1.11gの残留物を得た。
rep Si 60、15-25μ(EM Science,Art.9336)16gを充填
した。塩基製pHでのクロロホルム抽出物(1.11g)を追
加の3gの吸着剤上に予め吸着させ、クロロホルムスラリ
ーとして漏斗に装填した。下記の容量及び組成の溶離液
から9分画が得られた。
色蛍光物質を含んでいたのでこれらを合わせた。
0、15-25μ(EM Science,Art.9336)を充填した。黄色
蛍光物質(67mg)を含む分画を5mlの酢酸エチルに溶解
し、漏斗の頂部へ装填した。所望の黄色帯を目で見なが
ら溶出し、従って、分画を下記のように分けた。
し、0.2M NH4OAc‐THF(1:1)流速4ml/分で平衡になっ
ているWhatman Partisil10ODS-3カラム(50cm×10mm)
上へ注入した。2種の青色蛍光物質が8.7分及び13分で
溶出した後、BMY-41950が17分で2つの分画にわたって
溶出した。これらの分画を集め、25mlずつのクロロホル
ムで2回抽出し、クロロホルム層を合わせ、真空中で濃
縮乾固してBMY-41950(1.8mg)を得た。
Claims (8)
- 【請求項1】式 を有するBMY-41950と称する化合物。
- 【請求項2】液中好気条件下で資化性炭素及び窒素源を
含む水性栄養培地中でストレプトミセス・スタウロスポ
レウス(Streptomyces staurosporeus)のBMY-41950生
産性株を該培地中で該菌によって実質的な量のBMY-4195
0が生産されるまで培養すること及び培地から共生産物
質を実質的に含まないBMY-41950を回収することを含む
式 を有するBMY-41950の製造法。 - 【請求項3】該菌がストレプトミセス・スタウロスポレ
ウス(Streptomyces staurosporeus)ATCC55006、ある
いはそのBMY-41950生産性突然変異株又は変異株である
請求項2記載の製造法。 - 【請求項4】製剤上受容できる不活性粗体又は希釈剤と
組み合わせて有効抗菌量のBMY-41950を含む抗菌組成
物。 - 【請求項5】製剤上受容できる不活性担体又は希釈剤と
組み合わせて有効腫瘍抑制量のBMY-41950を含む抗腫瘍
組成物。 - 【請求項6】ストレプトミセス・ヒグロスコピクス(St
reptomyces hygroscopicus)のBMY-41950生産性株を液
中好気条件下で資化性炭素及び窒素源を含む水性栄養培
地中で、該培地中で該菌によって実質的な量のBMY-4195
0が生産されるまで培養すること及び共生産物質を実質
的に含まないBMY-41950を培地から回収することを含む
式 を有するBMY-41950の製造法。 - 【請求項7】該菌がストレプトミセス・ヒグロスコピク
ス(Streptomyces hygroscopicus)株C39280-450-9(AT
CC53730)あるいはその変異株又は突然変異株である請
求項6記載の製造法。 - 【請求項8】資化性炭素及び窒化源を含む水素栄養培地
中で培養するとき回収可能な量の抗生物質BMY-41950を
生産することができるストレプトミセス・ヒグロスコピ
クス(Streptomyces hygroscopicus)株C39280-450-9
(ATCC53730)の生物学的純粋培養菌。
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