JPH0768137B2 - アルブミン製剤及びその製法 - Google Patents
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Description
詳細には、擬集体含量、夾雑蛋白質含量等が低減された
血清アルブミン製剤及びその製法に関する。
で、血液中で浸透圧の維持、栄養物質や代謝物質と結合
してその運搬などの機能を果たしている。上記血清アル
ブミンを含有する製剤は、アルブミンの喪失及びアルブ
ミン合成低下による低アルブミン血症、出血性ショック
などの治療に用いられている。アルブミン製剤は、そこ
に混入してくる懸念のあるウイルスを不活化するため
に、通常、アルブミン含有水溶液の状態での加熱処理が
汎用されている。このような方法により製造される市販
のアルブミン製剤をゲル濾過分析法で分析すると、該製
剤中には擬集体が存在することが知られている。この擬
集体(通常、ポリマーと称されるので、以下、ポリマー
という)は上記の加熱処理前には殆ど存在しないことか
ら、加熱処理により熱に不安定な夾雑蛋白質の作用でア
ルブミンが擬集化したものと考えられる。市販ほアルブ
ミン製剤は安全に広く使用されていることから、このポ
リマーが特に人に害を及ぼすとは考えられていないが、
加熱変性物であることより、製剤中にできるだけ含有し
ないことが好ましい。
アルブミンと物理化学的性質の比較的よく似た夾雑蛋白
質が含まれており、分画法等の慣用の手段では効率的に
分離することが困難であり、アルブミン製剤中に夾雑蛋
白質が残存するという問題がある。
発明者らが種々検討を重ねた結果、アルブミンを高度に
精製することにより、トランスフェリン等の夾雑蛋白質
含量を激減させ得ると共に加熱処理してもポリマーが検
出されないことを見出して完成したものである。即ち、
本発明はポリマー含量及び夾雑蛋白質含量の少ないアル
ブミン製剤及びその製法を提供することを目的とする。
剤は、ゲル濾過分析法により測定したポリマー含量が検
出限界以下であることを特徴とする製剤、及びMancini
法により測定したトランスフェリン含量が検出限界以下
であることを特徴とする製剤である。また、本発明のア
ルブミン製剤の製法は、血清アルブミン含有水溶液を陰
イオン交換体処理した後、陽イオン交換体処理し、次い
で加熱処理することを特徴とするものである。なお、上
記の製法中、アルブミン水溶液の処理に用いられる陰イ
オン交換体及び陽イオン交換体としては、それぞれ強陰
イオン交換体及び強陽イオン交換体が好ましい。
法の出発原料であるアルブミンの由来には特に制限がな
く、具体的には哺乳動物、例えは、ヒト、ウシ、ウサギ
等に由来するものが挙げられ、特にヒト由来のものが使
用される。アルブミンを調製するための出発原料として
は、例えばコーン氏の冷アルコール分画によって得られ
た第V画分等が例示される。
当な精製水に溶解したアルブミン含有水溶液を陰イオン
交換体処理した後、陽イオン交換体処理し、次いで加熱
処理することにより得られる。
ミン含量としては、通常、0.1〜30%(W/V、特に明示の
ない限り以下同様)程度、好ましくは約1〜10%に調整
される。
交換体処理に付して精製する。この陰イオン交換体処理
により、ハプトグロビン、α1−酸性糖蛋白質などのア
ルブミンより等電点の低い夾雑蛋白質が除去され精製さ
れる。使用される陰イオン交換体としては陰イオン交換
基(例えば、ジエチルアミノエチル基等)を有する不溶
性担体であればいずれも使用することができ、より具体
的には、この分野で慣用の陰イオン交換体、例えば、DE
AE−セファロース 、Q−セファロース (いずれもフ
ァルマシア社製)、DEAE−トヨパール 、QAE−トヨパ
ール (いずれも東ソー社製)、A200セルロファイン
(生化学工業社製)、陰イオン交換樹脂等が例示され、
夾雑蛋白質除去効率の点からしてQ−セファロース、QA
E−トヨパール等の強陰イオン交換体を用いるのが好ま
しい。
液を陰イオン交換体と接触させることにより行なわれ、
陰イオン交換体の使用量はアルブミン含有水溶液中の夾
雑蛋白質含量、陰イオン交換体の交換能等により適宜調
整されるが、アルブミン1g当り、陰イオン交換体0.1〜5
ml、通常3ml程度使用される。本方法はカラム法、バッ
チ法のいずれの方法にて行ってもよいが、夾雑蛋白質の
除去効率の面からカラム法にて行うのが好ましい。
〜6程度、好ましくはpH4.5〜5.5、塩濃度としては0.00
1〜0.2Mの塩化ナトリウム程度、好ましくは0.001〜0.05
Mに調整し、緩衝液[例えは、0.02M酢酸ナトリウム(pH
5.1)]で平衡化した陰イオン交換体カラムを通過さ
せ、次いで同塩衝液で展開して非吸着分を回収すること
により行われる。上記の操作はアルブミンの変性を制御
するため、低温(通常、10℃以下)にて行うのが好まし
い。
ブミン水溶液に、陰イオン交換体を添加して接触させ、
10℃以下にて、30分〜2時間程度混和した後、遠心分離
等の手段により陰イオン交換体と分離し、上清を回収す
ることより行われる。
水溶液は、必要に応じて、pH調整、濃度調整等がされた
後、陽イオン交換体処理に付してさらに精製する。この
陽イオン交換体処理により、アルブミンなどよりも高pH
に等電点のあるトランスフェリンなどの夾雑蛋白質が除
去されて精製される。使用される陽イオン交換体として
は陽イオン交換基(例えば、スルホ基、カルボキシル基
等)を有する不溶性担体であればいずれも使用すること
ができ、より具体的には、この分野で慣用の陽イオン交
換体、例えば、SP−セファデックス (ファルマシア社
製)、SPトヨパール 、TSKge1SP−5PW (いずれも東
ソー社製)等が例示され、夾雑蛋白質除去効率の点から
してSP−セファデックス、SPトヨパール等の強陽イオン
交換体を用いるのが好ましい。
換体処理により精製されたアルブミン水溶液を陽イオン
交換体と接触させることにより行われる。陽イオン交換
体の使用量はアレブミン水溶液中の夾雑蛋白質含量、陽
イオン交換体の交換能等により適宜調整されるが、アル
ブミン1g当り、陽イオン交換体0.1〜5ml、通常2ml程度
使用される。本方法はカラム法、バッチ法のいずれの方
法にて行ってもよいが、夾雑蛋白質の除去効率の面から
カラム法にて行うのが好ましい。
〜8程度、好ましくはpH4.5〜6.5、より好ましくは5.5
〜6.0、塩濃度としては0.001〜0.2Mの塩化ナトリウム程
度、好ましくは0.001〜0.05Mに調整し、緩衝液[例え
ば、0.02M酢酸ナトリウム(pH5.5)]で平衡化した陽イ
オン交換体カラムを通過させ、次いで同緩衝液で展開し
て非吸着分を回収することにより行われる。上記の操作
はアルブミンの変性を抑制するため、低温(通常、10℃
以下)にて行うのが好ましい。
ブミン水溶液に、陽イオン交換体を添加して接触させ、
10℃以下にて、30分〜2時間程度混和した後、遠心分離
等の手段により陽イオン交換体と分離し、上清を回収す
ることにより行われる。
り精製されたアルブミン水溶液中に含まれる夾雑蛋白質
量は、ハプトグロビン、トランスフェリン及びα1−酸
性糖蛋白質が検出限界以下である。
り夾雑蛋白質含量が低減されたアルブミン水溶液は適当
な濃度に調整し、例えば、バイアルに充填するなどの所
望の製剤形態に製剤化された後、加熱処理されて本発明
のアルブミン製剤が得られる。上記の加熱処理はアルブ
ミン製剤中に混入するおそれのあるウイルスを不活性化
するもので、アルブミン濃度5〜30%程度、通常5又は
20〜25%程度に調整した水溶液として行われ、加熱温度
としては、夾雑ウイルスを不活性するに十分な温度及び
時間行えばよく、例えば、50〜70℃、好ましくは約60℃
で、5〜20時間、好ましくは約10時間行われる。なお、
上記の加熱処理に際しては、必要に応じてアルブミンの
安定化剤、例えばN−アセチルトリプトファンナトリウ
ム、カプリル酸ナトリウム等を単独で又は混合して添加
してもよい。これらアルブミンの安定化剤は、製剤中に
含有されるアルブミン1g当り20〜60mg、好ましくは40mg
程度使用される。
より測定したポリマー含量が検出限界以下であり、Manc
ini法により測定したトランスフェリン含量も検出限界
以下である。
様な用量、用法にて使用される。
不活性化されていると共にポリマー含量及びトランスフ
ェリン等の夾雑蛋白質含量が極めて少なく、安全性、安
定性等に優れた製剤である。
体及び陽イオン交換体による処理により、さまざまな等
電点を持つ夾雑蛋白質が除去されたアルブミン水溶液を
加熱処理するもので、夾雑蛋白質に起因するポリマー化
を抑制することができ、ポリマー含量及び夾雑蛋白質含
量が少なく且つ混入が危惧されるウイルスが不活性され
たアルブミン製剤が得られる。
るが、本発明はこれらの実施例によってなんら限定され
るものではない。
ペースト(500g)を冷無菌蒸溜水2.0に溶解し、酢酸
を用いてpHを4.6に調整した後、約1時間撹拌した。次
いで、約−2℃にて濾過(フィルター:0.45μm)し、
さらに冷無菌蒸溜水2.0を加え、1N水酸化ナトリウム
でpH5.1に調整し、アルブミン水溶液を得た。
m)に充填し、0.5M塩化ナトリウムで十分に洗浄した
後、0.02M酢酸ナトリウム(pH5.1)で平衡化し、陰イオ
ン交換体カラムを作製した。このカラムに上記(1)の
アルブミン水溶液を通し、さらに冷0.02M酢酸ナトリウ
ム(pH5.1、2)で洗浄した。通過液と洗浄液とを合
わせ、0.8M炭酸水素ナトリウムにてpHを5.5に調整し
た。
ナトリウムで十分に洗浄した後、0.02M酢酸ナトリウム
(pH5.5)で平衡化し、陽イオン交換体カラムを作製し
た。このカラムに上記(2)で得られたアルブミン水溶
液を通し、さらに0.02M酢酸ナトリウム(pH5.5、1.2
)で洗浄した。通過液と洗浄液とを合わせた後、ペリ
コンにて透析・濃縮し、A280=149(アルブミン濃度:28
%)となるように調製した。
ml当り1.2mlの安定化剤水溶液(100ml中、N−アセチル
トリプトファン5.55g及びカプリル酸ナトリウム3.89g含
有)を添加し、1N水酸化ナトリウムにてpHを6.85に調整
した後、除菌濾過した。次いで、アルブミン濃度が25%
となるように調整した後、所定量をバイアルに分注し、
60℃にて10時間加熱処理してアルブミン製剤を得た。
により測定したところ、ポリマーは検出されなかった。
なお、比較として、SP−トヨパールカラム処理工程を除
外した以外は上記製法と実質的に同様にして調製したア
ルブミン製剤(以下、比較製剤という)のポリマー含量
な、アルブミン含量に対して2.49重量%であり、本発明
のアルブミン製剤のポリマー含量は著しく低いものであ
った。なお、ゲル濾過分析は下記の条件にて行った。
で50倍に希釈し、濾過(フィルター:0.45μm)した溶
液を20μ注入した。
ム(直径7.8mm×長さ30cm)を使用した。
糖蛋白質(α1−AG)、ハプトグロビン(Hp)及びトラ
ンスフェリン(Tf)含量の測定を行い、その結果を第1
表に示す。なお、夾雑蛋白質含量の測定は一元免疫拡散
法(Mancini法:Mancini Gら、Immunochemistry,第2
巻、第3号、第235−254頁、1965年)により行った。こ
の際、用いた抗α1−酸性糖蛋白質血清、抗ハプトグロ
ビン血清及び抗トランスフェリン血清は、ウサギを免疫
動物として常法により調整したものである。これらの抗
血清より作製した一元免疫拡散用ゲルを用い、それぞれ
に対応する夾雑蛋白質に対する沈降輪面積の標準曲線を
第1図〜第3図に示す。
1−AG、Hp及びTfがいずれも検出限界以下であり、夾雑
蛋白質含量の極めて少ないものであることが判明した。
なお、第1図〜第3図から明らかなように、α1−AGの
検出限界は4mg/dlであり、Hpの検出限界は6.5mg/dlであ
り、Tfの検出限界は2mg/dlである。
の0.8M炭酸水素ナトリウムによるpH調整をpH5.25とする
と共に(3)の陽イオン交換体処理工程のpH調整を5.25
とする以外は、実施例1と同様にして、アルブミン製剤
を調製した。
法でポリマー含量及び夾雑蛋白質含量を測定した。その
結果、ポリマーは検出限界以下であり、またHp、α1−
AG及びTf含量も検出限界以下であった。
プトグロビン及びトランスフェリンに対する一元免疫拡
散法による標準曲線を示すグラフである。
Claims (3)
- 【請求項1】アルブミン製剤において、ゲル濾過分析法
により測定した擬集体含量が検出限界以下であることを
特徴とするアルブミン製剤。 - 【請求項2】アルブミン製剤において、Mancini法によ
り測定したトランスフェリン含量が検出限界以下である
ことを特徴とするアルブミン製剤。 - 【請求項3】血清アルブミン含有水溶液を陰イオン交換
体処理した後、陽イオン交換体処理し、次いで加熱処理
することを特徴とするアルブミン製剤の製法。
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