JPH08211056A - 免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫学的測定法用キット - Google Patents
免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫学的測定法用キットInfo
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- UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-N triphosphoric acid Chemical compound OP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】 非特異反応抑制効果が高く、保存安定性に優
れた免疫反応組成物及び酵素標識抗体組成物を提供する
こと。又は、再現性の高い免疫学的測定法及び簡便な免
疫学的測定法用キットの提供。 【構成】 血清を含有し、かつ、フェノール誘導体、第
4級アンモニウム化合物又は低級脂肪酸から選ばれるい
ずれか一つあるいは複数種を含有することを特徴とする
免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の
安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫
学的測定法用キット。
れた免疫反応組成物及び酵素標識抗体組成物を提供する
こと。又は、再現性の高い免疫学的測定法及び簡便な免
疫学的測定法用キットの提供。 【構成】 血清を含有し、かつ、フェノール誘導体、第
4級アンモニウム化合物又は低級脂肪酸から選ばれるい
ずれか一つあるいは複数種を含有することを特徴とする
免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の
安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫
学的測定法用キット。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は免疫反応媒体組成物及び
酵素標識抗体組成物並びにこれら組成物の安定化方法に
関する。また、これら組成物を用いる免疫学的測定法及
び免疫学的測定法用キットに関する。
酵素標識抗体組成物並びにこれら組成物の安定化方法に
関する。また、これら組成物を用いる免疫学的測定法及
び免疫学的測定法用キットに関する。
【0002】
【従来の技術】免疫反応時において、免疫反応物質の非
特異反応の有無あるいはその程度は、その免疫反応系の
感度、精度に大きく影響する。そこで非特異反応を低減
させるために、免疫反応前あるいは反応時に各種タンパ
ク質をブロッキング剤として共存させることが一般的に
行われてる。しかし、反応系における非特異反応を誘引
する妨害物質は多様であり、免疫反応系の特質に左右さ
れ、非特異反応低減に効果のない場合もある。更に、免
疫反応緩衝液、検体希釈液、酵素標識抗体液など免疫反
応媒体組成物などにタンパク質を含ませることは、雑菌
の繁殖などが起こり腐敗しやすく、またそれに基ずく性
能劣化など組成物の品質として長期保存性に劣る場合が
多い。
特異反応の有無あるいはその程度は、その免疫反応系の
感度、精度に大きく影響する。そこで非特異反応を低減
させるために、免疫反応前あるいは反応時に各種タンパ
ク質をブロッキング剤として共存させることが一般的に
行われてる。しかし、反応系における非特異反応を誘引
する妨害物質は多様であり、免疫反応系の特質に左右さ
れ、非特異反応低減に効果のない場合もある。更に、免
疫反応緩衝液、検体希釈液、酵素標識抗体液など免疫反
応媒体組成物などにタンパク質を含ませることは、雑菌
の繁殖などが起こり腐敗しやすく、またそれに基ずく性
能劣化など組成物の品質として長期保存性に劣る場合が
多い。
【0003】また、酵素標識抗体液にペルオキシダーゼ
を標識化酵素として用いる場合、溶液中において抗体に
結合している酵素は、それが特に低濃度で存在する際は
酵素活性が不安定であり、短時間で失活することがあ
る。酵素標識抗体液中にタンパク質を含有させること
は、ペルオキシダーゼ安定化および免疫反応時において
非特異反応抑制に効果があがる一方で、長期保存性に劣
ることは上記と同様な理由である。加えて、ペルオキシ
ダーゼ活性保持、防菌静菌作用を持つフェノールおよび
その誘導体の一部は、防菌静菌作用を優先させる添加量
ではタンパク質を変性させてしまう可能性がある。特開
平6-133772号に記述の範囲では、例えばフェノールを0.
04%の濃度で添加した酵素抗体液は、少なからず酵素活
性を含む免疫反応系に影響を与えることが明らかであっ
た。
を標識化酵素として用いる場合、溶液中において抗体に
結合している酵素は、それが特に低濃度で存在する際は
酵素活性が不安定であり、短時間で失活することがあ
る。酵素標識抗体液中にタンパク質を含有させること
は、ペルオキシダーゼ安定化および免疫反応時において
非特異反応抑制に効果があがる一方で、長期保存性に劣
ることは上記と同様な理由である。加えて、ペルオキシ
ダーゼ活性保持、防菌静菌作用を持つフェノールおよび
その誘導体の一部は、防菌静菌作用を優先させる添加量
ではタンパク質を変性させてしまう可能性がある。特開
平6-133772号に記述の範囲では、例えばフェノールを0.
04%の濃度で添加した酵素抗体液は、少なからず酵素活
性を含む免疫反応系に影響を与えることが明らかであっ
た。
【0004】ペルオキシダーゼ活性保持など安定化法に
おいて、安定なペルオキシダーゼ組成物として、ペルオ
キシダーゼ、血清を含む媒質にハロゲン化フェノールを
添加したもの(特開昭61-78385号)、ペルオキシダーゼ
安定化のためにアルコキシフェノールを添加したもの
(特開昭64-63380号)、ペルオキシダーゼおよび抗体の
安定化のために、特定のハメットシグマ値で規定した置
換基を有するフェノールを添加すること(特開平2-4298
2号)などが知られている。しかし、免疫反応系への影
響を与えずに保存性に優れかつ非特異反応抑制できるも
のはなかった。
おいて、安定なペルオキシダーゼ組成物として、ペルオ
キシダーゼ、血清を含む媒質にハロゲン化フェノールを
添加したもの(特開昭61-78385号)、ペルオキシダーゼ
安定化のためにアルコキシフェノールを添加したもの
(特開昭64-63380号)、ペルオキシダーゼおよび抗体の
安定化のために、特定のハメットシグマ値で規定した置
換基を有するフェノールを添加すること(特開平2-4298
2号)などが知られている。しかし、免疫反応系への影
響を与えずに保存性に優れかつ非特異反応抑制できるも
のはなかった。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、非特
異反応抑制効果が高く、保存安定性に優れた免疫反応組
成物及び酵素標識抗体組成物を提供することである。本
発明の別の目的は、再現性の高い免疫学的測定法及び簡
便な免疫学的測定法用キットの提供にある。
異反応抑制効果が高く、保存安定性に優れた免疫反応組
成物及び酵素標識抗体組成物を提供することである。本
発明の別の目的は、再現性の高い免疫学的測定法及び簡
便な免疫学的測定法用キットの提供にある。
【0006】
【課題を解決するための手段】本発明の上記目的は、下
記構成により達成される。
記構成により達成される。
【0007】1) 血清を含有し、かつフェノール誘導
体、第4級アンモニウム化合物又は低級脂肪酸から選ば
れる少なくとも一種を含有することを特徴とする免疫反
応媒体組成物。
体、第4級アンモニウム化合物又は低級脂肪酸から選ば
れる少なくとも一種を含有することを特徴とする免疫反
応媒体組成物。
【0008】2) 酵素標識抗体、血清及びフェノール
誘導体を含有し、かつ第4級アンモニウム化合物及び低
級脂肪酸から選ばれる少なくとも一種を含有することを
特徴とする酵素標識抗体組成物。
誘導体を含有し、かつ第4級アンモニウム化合物及び低
級脂肪酸から選ばれる少なくとも一種を含有することを
特徴とする酵素標識抗体組成物。
【0009】3) 酵素標識抗体、血清及び0.01(w/v)
%から0.80(w/v)%のフェノール誘導体を含有し、かつ
第4級アンモニウム化合物及び脂肪酸から選ばれる少な
くとも一種を含有することを特徴とする酵素標識抗体組
成物。
%から0.80(w/v)%のフェノール誘導体を含有し、かつ
第4級アンモニウム化合物及び脂肪酸から選ばれる少な
くとも一種を含有することを特徴とする酵素標識抗体組
成物。
【0010】4) 血清を含む免疫反応媒体組成物にフ
ェノール誘導体、第4級アンモニウム化合物又は低級脂
肪酸から選ばれる少なくとも一種を添加することを特徴
とする免疫反応媒体組成物の安定化方法。
ェノール誘導体、第4級アンモニウム化合物又は低級脂
肪酸から選ばれる少なくとも一種を添加することを特徴
とする免疫反応媒体組成物の安定化方法。
【0011】5) 酵素標識抗体と血清及び0.01%から
0.80%のフェノール誘導体を含有し、かつ第4級アンモ
ニウム化合物及び脂肪酸から選ばれる少なくとも一種を
添加することを特徴とする酵素標識抗体組成物の安定化
方法。
0.80%のフェノール誘導体を含有し、かつ第4級アンモ
ニウム化合物及び脂肪酸から選ばれる少なくとも一種を
添加することを特徴とする酵素標識抗体組成物の安定化
方法。
【0012】6) 上記免疫反応媒体組成物または上記
酵素標識抗体組成物を用いることを特徴とする免疫学的
測定法。
酵素標識抗体組成物を用いることを特徴とする免疫学的
測定法。
【0013】7) 上記免疫反応媒体組成物または上記
酵素標識抗体組成物を用いることを特徴とする免疫学的
測定法用キット。
酵素標識抗体組成物を用いることを特徴とする免疫学的
測定法用キット。
【0014】本発明において、免疫反応を行う際に反応
を媒体とする、例えば免疫一次反応緩衝液、酵素標識抗
体液に血清、ヒドロキシ安息香酸系フェノール誘導体、
デヒドロ酢酸等の脂肪酸又は塩化ベンザルコニウム等の
第4級アンモニウム化合物を規定量含有させることによ
り、非特異反応抑制効果が高く、酵素や抗体価の活性を
保持し、長期保存安定性に優れた免疫反応組成物が得ら
れた。
を媒体とする、例えば免疫一次反応緩衝液、酵素標識抗
体液に血清、ヒドロキシ安息香酸系フェノール誘導体、
デヒドロ酢酸等の脂肪酸又は塩化ベンザルコニウム等の
第4級アンモニウム化合物を規定量含有させることによ
り、非特異反応抑制効果が高く、酵素や抗体価の活性を
保持し、長期保存安定性に優れた免疫反応組成物が得ら
れた。
【0015】本発明の免疫反応媒体組成物は、おもに抗
原抗体反応の行われる場に供することができる。
原抗体反応の行われる場に供することができる。
【0016】本発明の組成物に含まれる血清は、経時的
に不活化してしまう抗体ならびに抗体結合酵素の安定
化、さらに免疫反応時における非特異反応の抑制に寄与
する。
に不活化してしまう抗体ならびに抗体結合酵素の安定
化、さらに免疫反応時における非特異反応の抑制に寄与
する。
【0017】血清としては、ヤギ、ヒツジ、ウサギの各
血清等が使用され、特に好ましくはウサギの血清等が用
いられる。血清は多量に用いてもその効果は飽和するば
かりでなく、かえって感度低下の遠因になることもあり
うる。また、各種雑菌が繁殖しやすくなるなどの問題が
生じる。一方、少量では本発明の効果を発揮するに至ら
ない。そのため血清等の添加量は、該組成物に対して0.
01(V/V)%〜50(V/V)%、好ましくは1(V/V)%〜20(V/V)
%で用いられる。なお、血清以外の血清成分として、血
清タンパクグロブリン画分等の血清粗精製タンパク質に
代替することも可能である。
血清等が使用され、特に好ましくはウサギの血清等が用
いられる。血清は多量に用いてもその効果は飽和するば
かりでなく、かえって感度低下の遠因になることもあり
うる。また、各種雑菌が繁殖しやすくなるなどの問題が
生じる。一方、少量では本発明の効果を発揮するに至ら
ない。そのため血清等の添加量は、該組成物に対して0.
01(V/V)%〜50(V/V)%、好ましくは1(V/V)%〜20(V/V)
%で用いられる。なお、血清以外の血清成分として、血
清タンパクグロブリン画分等の血清粗精製タンパク質に
代替することも可能である。
【0018】本発明の組成物において、抗体に結合させ
る酵素はペルオキシダーゼを好ましく用いることができ
る。ペルオキシダーゼは、それが動物、植物、微生物由
来などのものを用いることが可能である。特にHRP
(ホースラディッシュペルオキシダーゼ)が好ましい。
る酵素はペルオキシダーゼを好ましく用いることができ
る。ペルオキシダーゼは、それが動物、植物、微生物由
来などのものを用いることが可能である。特にHRP
(ホースラディッシュペルオキシダーゼ)が好ましい。
【0019】ペルオキシダーゼと結合する免疫活性をも
つ物質は直接的に抗原、抗体などを挙げることができ
る。抗原あるいは抗体に酵素を結合させる方法は、物理
的結合、イオン結合、共有結合等いずれでもよく、特に
共有結合が望ましい。その結合方法は、例えばグルタル
アルデヒドを架橋剤とし、結合双方の物質のアミノ基を
共有結合させる方法、あるいはペルオキシダーゼの糖鎖
を過ヨウ素酸で酸化処理し、導入したアルデヒド基に目
的抗体のアミノ基を結合させる方法等を挙げることがで
きる。ペルオキシダーゼの結合量は、その抗体とのモル
比で1.2対1から10対1程度であることが、測定時の発
色感度がよく好ましい。
つ物質は直接的に抗原、抗体などを挙げることができ
る。抗原あるいは抗体に酵素を結合させる方法は、物理
的結合、イオン結合、共有結合等いずれでもよく、特に
共有結合が望ましい。その結合方法は、例えばグルタル
アルデヒドを架橋剤とし、結合双方の物質のアミノ基を
共有結合させる方法、あるいはペルオキシダーゼの糖鎖
を過ヨウ素酸で酸化処理し、導入したアルデヒド基に目
的抗体のアミノ基を結合させる方法等を挙げることがで
きる。ペルオキシダーゼの結合量は、その抗体とのモル
比で1.2対1から10対1程度であることが、測定時の発
色感度がよく好ましい。
【0020】このペルオキシダーゼの酵素活性は過酸化
水素を含む基質と発色剤、例えばオルトフェニレンジア
ミン等を用い、比色により定量が可能である。
水素を含む基質と発色剤、例えばオルトフェニレンジア
ミン等を用い、比色により定量が可能である。
【0021】本組成物におけるフェノール誘導体は,抗
体活性を含む酵素活性を安定にする働きがある。また本
来有する静菌的作用により微生物繁殖による血清等の腐
敗を抑制し、性能面では血清に由来する非特異抑制効果
を長期にわたり安定化させることに寄与する。ここで用
いるフェノール誘導体は、フェノールがカルボキシル基
またはそのエステル各種のいずれか1種または複数種で
1個または複数個置換されているフェノール誘導体が好
ましい。例えば、o-,m-,p-ヒドロキシ安息香酸及びそ
の塩、またはそのメチル、エチル、プロピルエステル、
さらにその置換基が低級アルキル鎖等(炭素数が2ない
し4個)を介しているもの、例えばp-クマル酸、p-クマ
リン酸、さらにp-ヒドロキシフェニル-プロピオン酸、o
-ヒドロキシフェニル酢酸等が挙げられる。好ましく
は、p-ヒドロキシ安息香酸、p-ヒドロキシ安息香酸メチ
ル、p-ヒドロキシ安息香酸エチルが挙げられる。
体活性を含む酵素活性を安定にする働きがある。また本
来有する静菌的作用により微生物繁殖による血清等の腐
敗を抑制し、性能面では血清に由来する非特異抑制効果
を長期にわたり安定化させることに寄与する。ここで用
いるフェノール誘導体は、フェノールがカルボキシル基
またはそのエステル各種のいずれか1種または複数種で
1個または複数個置換されているフェノール誘導体が好
ましい。例えば、o-,m-,p-ヒドロキシ安息香酸及びそ
の塩、またはそのメチル、エチル、プロピルエステル、
さらにその置換基が低級アルキル鎖等(炭素数が2ない
し4個)を介しているもの、例えばp-クマル酸、p-クマ
リン酸、さらにp-ヒドロキシフェニル-プロピオン酸、o
-ヒドロキシフェニル酢酸等が挙げられる。好ましく
は、p-ヒドロキシ安息香酸、p-ヒドロキシ安息香酸メチ
ル、p-ヒドロキシ安息香酸エチルが挙げられる。
【0022】上記フェノール誘導体は、免疫反応組成物
に用いる際、多量に含有させる場合には免疫反応系に阻
害を与えることがある。逆に含有量が少量である場合は
本発明の目的を達成することができない。本発明の組成
物の基準では0.01%〜0.80%、好ましくは0.05%〜0.40
%がよい。
に用いる際、多量に含有させる場合には免疫反応系に阻
害を与えることがある。逆に含有量が少量である場合は
本発明の目的を達成することができない。本発明の組成
物の基準では0.01%〜0.80%、好ましくは0.05%〜0.40
%がよい。
【0023】本組成物における第4級アンモニウム化合
物は、好ましくはベンザルコニウムクロライド、セチル
ピリジウムクロライドが用いられる。特に好ましくはベ
ンザルコニウムクロライドが用いられる。同じく脂肪酸
は炭素数が2〜4個程度のものが用いられる。具体的に
はデヒドロ酢酸、ソルビン酸、プロピオン酸及びその塩
であり、好ましくはデヒドロ酢酸塩、ソルビン酸塩が用
いられる。組成物に含有させる量は、単独で含有させる
場合はそれぞれ0.001%〜1.2%、0.01%〜3.0%の範囲
であり、本発明に述べる作用を発する。複数種組み合わ
せる場合は、組み合わせの種類により変化するが、より
低い濃度でも効果を発揮することができる。
物は、好ましくはベンザルコニウムクロライド、セチル
ピリジウムクロライドが用いられる。特に好ましくはベ
ンザルコニウムクロライドが用いられる。同じく脂肪酸
は炭素数が2〜4個程度のものが用いられる。具体的に
はデヒドロ酢酸、ソルビン酸、プロピオン酸及びその塩
であり、好ましくはデヒドロ酢酸塩、ソルビン酸塩が用
いられる。組成物に含有させる量は、単独で含有させる
場合はそれぞれ0.001%〜1.2%、0.01%〜3.0%の範囲
であり、本発明に述べる作用を発する。複数種組み合わ
せる場合は、組み合わせの種類により変化するが、より
低い濃度でも効果を発揮することができる。
【0024】本発明の組成物には、任意の緩衝剤、塩化
ナトリウム、塩化カリウムなどの塩類、水を含んでもよ
い。緩衝剤は通常使われるものが使用可能で、具体的に
は、トリス系、リン酸系、酢酸系、炭酸系、グリシン系
等を挙げることができる。溶液中のpHは酵素の失活、
免疫反応系への影響を考慮して、pH3.5〜11.5を示すも
のが好ましい。
ナトリウム、塩化カリウムなどの塩類、水を含んでもよ
い。緩衝剤は通常使われるものが使用可能で、具体的に
は、トリス系、リン酸系、酢酸系、炭酸系、グリシン系
等を挙げることができる。溶液中のpHは酵素の失活、
免疫反応系への影響を考慮して、pH3.5〜11.5を示すも
のが好ましい。
【0025】以上のようにして安定化された免疫反応組
成物は、医療、生物学等の各分野で免疫学的測定法を用
いた測定検査薬に使用される。好ましくは、酵素免疫測
定法に使用される。
成物は、医療、生物学等の各分野で免疫学的測定法を用
いた測定検査薬に使用される。好ましくは、酵素免疫測
定法に使用される。
【0026】また、前記測定法を利用し、本組成物を組
み込んだ非特異反応が少なく、安定性に優れた測定用検
査キットを提供可能とした。
み込んだ非特異反応が少なく、安定性に優れた測定用検
査キットを提供可能とした。
【0027】
【実施例】以下、本発明を実施例にて説明する。
【0028】実施例1 〈ACTa-EIAキットの調製〉 1.材料の調製 a.抗体固定化ビーズ ポリスチレン製のビーズ(d;1/4inch)を適当数用意し
た。これをマヨネーズ瓶にいれ、エタノールを適当量加
え15分置き、軽く振盪して油分など汚れを除去した。蒸
留水でよくビーズを洗いエタノールを完全に除いた。さ
らに、0.2M炭酸バッファー;pH9.1で数回濯ぎ、抗A
CT関連物抗体(特開平6-7191号記載)を20μg/mlの
濃度で含有する上記炭酸バッファーをビーズが浸る量加
えた。4℃温度条件下で24±2時間静置し、上記抗体を
該ビーズに固定化させた。燐酸緩衝生理食塩水(PBS)
で数回ビーズを洗い、0.5%のカゼインを含むPBS中
に37℃の温度条件下で18±2時間ビーズを置き、ブロッ
キング反応を行った。
た。これをマヨネーズ瓶にいれ、エタノールを適当量加
え15分置き、軽く振盪して油分など汚れを除去した。蒸
留水でよくビーズを洗いエタノールを完全に除いた。さ
らに、0.2M炭酸バッファー;pH9.1で数回濯ぎ、抗A
CT関連物抗体(特開平6-7191号記載)を20μg/mlの
濃度で含有する上記炭酸バッファーをビーズが浸る量加
えた。4℃温度条件下で24±2時間静置し、上記抗体を
該ビーズに固定化させた。燐酸緩衝生理食塩水(PBS)
で数回ビーズを洗い、0.5%のカゼインを含むPBS中
に37℃の温度条件下で18±2時間ビーズを置き、ブロッ
キング反応を行った。
【0029】b.酵素標識抗体液 市販のウサギ抗ヒトα1-アンチキモトリプシン抗体
((株)医学生物学研究所製)をACTを固定化したアフ
ィニティーカラムクロマトグラフィーにより精製した。
ついで過ヨウ素酸法(石川栄治ら;酵素免疫測定法)に
従い、ペルオキシダーゼ(西洋わさび)を上記抗体に結
合させ酵素標識化を行った。それを0.05%のカゼインを
含有するPBSに適当量加えて希釈し、酵素標識抗体液
を調製した。酵素標識抗体液には0.05%のp-ヒドロキシ
安息香酸、0.05%のp-ヒドロキシ安息香酸メチルを加
え、4℃で保存した。
((株)医学生物学研究所製)をACTを固定化したアフ
ィニティーカラムクロマトグラフィーにより精製した。
ついで過ヨウ素酸法(石川栄治ら;酵素免疫測定法)に
従い、ペルオキシダーゼ(西洋わさび)を上記抗体に結
合させ酵素標識化を行った。それを0.05%のカゼインを
含有するPBSに適当量加えて希釈し、酵素標識抗体液
を調製した。酵素標識抗体液には0.05%のp-ヒドロキシ
安息香酸、0.05%のp-ヒドロキシ安息香酸メチルを加
え、4℃で保存した。
【0030】c.発色剤、基質液 発色剤は、オルトフェニレンジアミンニ塩酸塩30mgを使
い、安定化剤としてトリポリ燐酸50mgを含む純水に溶か
した後、凍結乾燥させた。0.02%過酸化水素水を含むク
エン酸炭酸緩衝液(pH5.0)10mlを添加し、発色液として
用いた。
い、安定化剤としてトリポリ燐酸50mgを含む純水に溶か
した後、凍結乾燥させた。0.02%過酸化水素水を含むク
エン酸炭酸緩衝液(pH5.0)10mlを添加し、発色液として
用いた。
【0031】d.反応停止液 発色反応停止は1N硫酸を用いた。
【0032】e.免疫反応用緩衝液 PBSに含有量0.5%となるようにカゼインを溶解し、
免疫反応用緩衝液とした。これに0.05%p-安息香酸メチ
ルを添加した。各調製した緩衝液は4℃で保存した。
免疫反応用緩衝液とした。これに0.05%p-安息香酸メチ
ルを添加した。各調製した緩衝液は4℃で保存した。
【0033】f.標準液 標準液は抗原(ACTa)を含有する腹水を、0.05%カゼイン
を含むPBSで希釈して360mU/mlの標準液を調製し
た。0mU/mlの標準液は0.05%カゼインを含むPBSを
用いた。
を含むPBSで希釈して360mU/mlの標準液を調製し
た。0mU/mlの標準液は0.05%カゼインを含むPBSを
用いた。
【0034】2.測定 検体等サンプルにおける吸光度を以下の操作に従い、測
定した。
定した。
【0035】〈測定操作〉サンプル100μl、次いで緩衝
液150μlをチューブ(トレイ)へ分注した。
液150μlをチューブ(トレイ)へ分注した。
【0036】ビーズをピンセットで1個ずつ加えた。シ
ールをして37℃水浴中、1.5時間静置した。次に1.5ml以
上のPBSで3回洗浄した。その後、250μlの酵素標識
抗体液を加え、室温(15〜25℃)で1.5時間静置した。続
いて1.5ml以上のPBSで4回洗浄した。ビーズを別の
チューブへ移動させ、300μlの発色液を加え、室温で30
分間静置した。1mlの反応停止液を加え、反応を停止し
た。溶液の波長492nmの吸光度を分光光度計により測定
した。
ールをして37℃水浴中、1.5時間静置した。次に1.5ml以
上のPBSで3回洗浄した。その後、250μlの酵素標識
抗体液を加え、室温(15〜25℃)で1.5時間静置した。続
いて1.5ml以上のPBSで4回洗浄した。ビーズを別の
チューブへ移動させ、300μlの発色液を加え、室温で30
分間静置した。1mlの反応停止液を加え、反応を停止し
た。溶液の波長492nmの吸光度を分光光度計により測定
した。
【0037】〈各添加剤の反応系への影響〉免疫反応緩
衝液を、ACTa-EIAキット(検体の吸光度測定などの
用法は下記に詳細)の構成部品である緩衝液の代わり
に、本発明組成物を緩衝液代替として、以下にある各条
件で調製して用いた。濃度は断りがなければ、すべて(W
/V)%とする。
衝液を、ACTa-EIAキット(検体の吸光度測定などの
用法は下記に詳細)の構成部品である緩衝液の代わり
に、本発明組成物を緩衝液代替として、以下にある各条
件で調製して用いた。濃度は断りがなければ、すべて(W
/V)%とする。
【0038】1.検体の調製 検体には管理血清(健常人プール血清)を用いた。
【0039】2.免疫反応媒体組成物 リン酸緩衝生理食塩水(PBS)にウサギ血清(ギブコ
社)を3(V/V)%添加し、p-ヒドロキシ安息香酸メチル
(MHB)とデヒドロ酢酸ナトリウム(SDA)またはソル
ビン酸カリ(PS)(それぞれ関東化学(株))の添加量を
それぞれ段階的に変化させたものをACTa-EIAキット
内の緩衝液の代替として用いた。
社)を3(V/V)%添加し、p-ヒドロキシ安息香酸メチル
(MHB)とデヒドロ酢酸ナトリウム(SDA)またはソル
ビン酸カリ(PS)(それぞれ関東化学(株))の添加量を
それぞれ段階的に変化させたものをACTa-EIAキット
内の緩衝液の代替として用いた。
【0040】3.反応系への影響 上記2の緩衝液を用いてキットの用法に従い、管理血清
における吸光度を測定した。結果を表1に示す。
における吸光度を測定した。結果を表1に示す。
【0041】
【表1】
【0042】免疫一次反応において、規定量以上の上記
添加物を含有させると、吸光度の低下がみられることか
ら、免疫反応系に対し、それらの添加が何らかの影響を
与えている。従って、免疫反応系では、該添加物の添加
限界量が存在する。表1から本実施例では、免疫一次反
応緩衝液に用いる場合、MHBは0.3%、SDAは1.2
%、PSは3.0%以下に添加量を抑えると免疫反応系は
安定である。
添加物を含有させると、吸光度の低下がみられることか
ら、免疫反応系に対し、それらの添加が何らかの影響を
与えている。従って、免疫反応系では、該添加物の添加
限界量が存在する。表1から本実施例では、免疫一次反
応緩衝液に用いる場合、MHBは0.3%、SDAは1.2
%、PSは3.0%以下に添加量を抑えると免疫反応系は
安定である。
【0043】〈血清の添加と免疫非特異反応抑制〉 1.検体の調製 管理血清(健常人プール血清)に、おもに免疫反応阻害
因子となりうる物質を次の通り添加した。すなわち2%
イントラリピッド、1%ヘモグロビン、0.1%ビリルビ
ン、570IU/mlリウマチ因子(RF)を添加し、阻害因子
添加検体(阻害検体)とした。対照に因子を添加しない
管理血清を阻害因子非添加検体(非阻害検体)として用
いた。
因子となりうる物質を次の通り添加した。すなわち2%
イントラリピッド、1%ヘモグロビン、0.1%ビリルビ
ン、570IU/mlリウマチ因子(RF)を添加し、阻害因子
添加検体(阻害検体)とした。対照に因子を添加しない
管理血清を阻害因子非添加検体(非阻害検体)として用
いた。
【0044】2.免疫反応希釈液の調製 免疫反応緩衝液にそれぞれウサギ、ヤギ、ヒツジ血清を
濃度を0〜50(v/v)%の範囲で変化させ添加した。ま
た、MHB、ソルビン酸カリ(PS)(関東化学)をそれ
ぞれ0.15%、0.5%添加した。
濃度を0〜50(v/v)%の範囲で変化させ添加した。ま
た、MHB、ソルビン酸カリ(PS)(関東化学)をそれ
ぞれ0.15%、0.5%添加した。
【0045】3.非特異反応抑制効果 上記添加検体、非添加検体の吸光度を比較することで行
い、結果を表2に示す。
い、結果を表2に示す。
【0046】
【表2】
【0047】表2から、本実施例によると、本キット緩
衝液において免疫非特異反応抑制効果は、血清添加量0.
01(V/V)%から見受けられ、5(V/V)%添加でほぼ非特異
反応は抑制され、50(V/V)%添加まで非特異反応抑制効
果は変化なく、免疫反応系は安定している。
衝液において免疫非特異反応抑制効果は、血清添加量0.
01(V/V)%から見受けられ、5(V/V)%添加でほぼ非特異
反応は抑制され、50(V/V)%添加まで非特異反応抑制効
果は変化なく、免疫反応系は安定している。
【0048】実施例2 〈保存安定性の試験〉 1.SDAとMHB相互添加量と保存安定性 免疫反応組成物の保存安定性を以下の方法で確認した。
【0049】実施例1と同様に、ACTa-EIAキットの
緩衝液としてにウサギ血清5%を添加し、SDAとMH
Bの添加量を表3にあるように相互に変化させた。緩衝
液は42℃で10日間放置し、強制劣化を行った。検体には
非添加検体を用いた。強制劣化開始10日後に該緩衝液を
用いて非阻害検体を測定し、その吸光度を調べた。な
お、強制劣化を行わない(4℃保存)緩衝液を対照として
用いた。
緩衝液としてにウサギ血清5%を添加し、SDAとMH
Bの添加量を表3にあるように相互に変化させた。緩衝
液は42℃で10日間放置し、強制劣化を行った。検体には
非添加検体を用いた。強制劣化開始10日後に該緩衝液を
用いて非阻害検体を測定し、その吸光度を調べた。な
お、強制劣化を行わない(4℃保存)緩衝液を対照として
用いた。
【0050】また、バックグラウンドの変化を調べるた
めに、検体を添加せず(緩衝液のみ)に、以下全く同様
に吸光度を調べた。結果を表3に示す。
めに、検体を添加せず(緩衝液のみ)に、以下全く同様
に吸光度を調べた。結果を表3に示す。
【0051】
【表3】
【0052】表3から本実施例によれば、保存安定性に
優れるMHB,SDA各添加範囲はMHBでは0.01%以
上、SDAでは0.10%以上である。さらに免疫反応系に
影響を与えない範囲では、添加上限が、MHBの場合0.
30%、SDAの場合では0.80%である。相互に組み合わ
せて添加する場合は表3にあるようにこの限りでない。
優れるMHB,SDA各添加範囲はMHBでは0.01%以
上、SDAでは0.10%以上である。さらに免疫反応系に
影響を与えない範囲では、添加上限が、MHBの場合0.
30%、SDAの場合では0.80%である。相互に組み合わ
せて添加する場合は表3にあるようにこの限りでない。
【0053】このように、MHB,SDAを双方または
一方を規定量添加することにより、本発明の免疫反応組
成物が保存安定性に優れることがわかる。
一方を規定量添加することにより、本発明の免疫反応組
成物が保存安定性に優れることがわかる。
【0054】実施例3 免疫反応緩衝液を、ACTa-EIAキットの第二次反応標
識抗体液の代替として以下に示すように調製し用いた。
識抗体液の代替として以下に示すように調製し用いた。
【0055】〈各添加剤の反応系への影響〉 1.検体の調製 実施例1と同様に調製した。
【0056】2.酵素標識抗体含有組成物 リン酸緩衝生理食塩水(PBS)にウサギ血清タンパク画
分(硫安沈殿による粗精製物)を3(w/V)%添加し、M
HB,SDA,p-ヒドロキシ安息香酸(HB)(関東化
学)の添加量をそれぞれ段階的に変化させたものをACTa
-EIAキット内の酵素標識抗体液の代替として用い
た。
分(硫安沈殿による粗精製物)を3(w/V)%添加し、M
HB,SDA,p-ヒドロキシ安息香酸(HB)(関東化
学)の添加量をそれぞれ段階的に変化させたものをACTa
-EIAキット内の酵素標識抗体液の代替として用い
た。
【0057】3.反応系への影響 上記2の酵素標識抗体液を用いてキットの用法に従い、
非添加検体における吸光度を測定した。結果を表4に示
す。
非添加検体における吸光度を測定した。結果を表4に示
す。
【0058】
【表4】
【0059】表4から本実施例において、酵素標識抗体
液中MHB,HBは添加濃度が0.80%を越えると、
またSDAは1.0%を越えると酵素活性低下あるいは
免疫反応を阻害するという影響が現れる。フェノール(P
hOH)は、0.10%以上添加すると免疫反応系へ少なからず
影響を与えることがわかる。つまり、フェノール系誘導
体はその添加量の総量が0.8%以下で、SDAは1.0%以
下の添加量で抑えると免疫反応系は安定である。
液中MHB,HBは添加濃度が0.80%を越えると、
またSDAは1.0%を越えると酵素活性低下あるいは
免疫反応を阻害するという影響が現れる。フェノール(P
hOH)は、0.10%以上添加すると免疫反応系へ少なからず
影響を与えることがわかる。つまり、フェノール系誘導
体はその添加量の総量が0.8%以下で、SDAは1.0%以
下の添加量で抑えると免疫反応系は安定である。
【0060】〈血清の添加と免疫非特異反応抑制〉 1.検体の調製 実施例1と同様に調製した。
【0061】2.免疫反応希釈液の調製 ACTa-EIAキットの酵素標識抗体液にウサギ、ヤギあ
るいはヒツジ血清のいずれかを、その濃度が0〜50(v/
v)%の範囲になるよう変化させ添加した。また、p-ヒド
ロキシ安息香酸(HB)、MHB、塩化ベンザルコニウム
(BC)をそれぞれ0.05%,0.15%,0.002%添加した。
るいはヒツジ血清のいずれかを、その濃度が0〜50(v/
v)%の範囲になるよう変化させ添加した。また、p-ヒド
ロキシ安息香酸(HB)、MHB、塩化ベンザルコニウム
(BC)をそれぞれ0.05%,0.15%,0.002%添加した。
【0062】3.吸光度の測定 実施例1に準じた。結果を表5に示す。
【0063】
【表5】
【0064】表5から本実施例において、酵素標識抗体
液の免疫非特異反応抑制効果は、血清添加量0.01(V/V)
%から見受けられ、ウサギ血清では1.0(V/V)%、ヒツジ
及びヤギ血清では5(V/V)%を添加するとほぼ非特異反
応は抑制され、50(V/V)%まで添加してもその性能は維
持される。
液の免疫非特異反応抑制効果は、血清添加量0.01(V/V)
%から見受けられ、ウサギ血清では1.0(V/V)%、ヒツジ
及びヤギ血清では5(V/V)%を添加するとほぼ非特異反
応は抑制され、50(V/V)%まで添加してもその性能は維
持される。
【0065】実施例4 〈酵素標識抗体液の保存安定性〉 1.SDA、塩化ベンザルコニウム(BC)及びMHBの
相互添加量と保存安定性、酵素標識抗体液の保存安定性
を以下の方法で確認した。
相互添加量と保存安定性、酵素標識抗体液の保存安定性
を以下の方法で確認した。
【0066】実施例1と同様に、ACTa-EIAキットの
酵素標識抗体液の緩衝液として、PBSにウサギ血清3
(V/V)%、HBを0.05%添加し、さらに、SDAを0.4
%、MHBを0.2%添加し本実施例とした。比較例1は
SDAを上記構成から除去し、比較例2はSDAとMH
Bを除去し、比較例3はSDA、MHB及びHBを除去
し、比較例4はこれら添加物を総て除去した。酵素標識
抗体液は42℃で10日間放置し、強制劣化を行った。検体
は阻害血清、非阻害血清を用いた。なお、強制劣化を行
わない(4℃保存)同様の処方を施したものを対照として
用い結果を表6、表7に示す。
酵素標識抗体液の緩衝液として、PBSにウサギ血清3
(V/V)%、HBを0.05%添加し、さらに、SDAを0.4
%、MHBを0.2%添加し本実施例とした。比較例1は
SDAを上記構成から除去し、比較例2はSDAとMH
Bを除去し、比較例3はSDA、MHB及びHBを除去
し、比較例4はこれら添加物を総て除去した。酵素標識
抗体液は42℃で10日間放置し、強制劣化を行った。検体
は阻害血清、非阻害血清を用いた。なお、強制劣化を行
わない(4℃保存)同様の処方を施したものを対照として
用い結果を表6、表7に示す。
【0067】
【表6】
【0068】
【表7】
【0069】次いで異なる添加剤を用いて保存安定性を
調べた、実施例1と同様に、酵素標識抗体液の緩衝液と
して、PBSにウサギ血清3(V/V)%、HBを0.05%添
加し、SDA、塩化ベンザルコニウム、MHBのうち2
種を組み合わせ、表8〜表10にあるように添加量を相互
に変化させた。酵素標識抗体液は42℃で10日間放置し、
強制劣化を行った。検体には非阻害血清を用いた。強制
劣化開始10日後に該抗体液を用いて検体を測定し、その
吸光度を調べた。なお、強制劣化を行わない(4℃保存)
緩衝液を対照として用いた。
調べた、実施例1と同様に、酵素標識抗体液の緩衝液と
して、PBSにウサギ血清3(V/V)%、HBを0.05%添
加し、SDA、塩化ベンザルコニウム、MHBのうち2
種を組み合わせ、表8〜表10にあるように添加量を相互
に変化させた。酵素標識抗体液は42℃で10日間放置し、
強制劣化を行った。検体には非阻害血清を用いた。強制
劣化開始10日後に該抗体液を用いて検体を測定し、その
吸光度を調べた。なお、強制劣化を行わない(4℃保存)
緩衝液を対照として用いた。
【0070】また、バックグラウンドの変化を調べるた
めに、検体を添加せず(緩衝液のみ)に、以下同様に吸
光度を調べた。結果を表8〜表10に示す。
めに、検体を添加せず(緩衝液のみ)に、以下同様に吸
光度を調べた。結果を表8〜表10に示す。
【0071】
【表8】
【0072】
【表9】
【0073】
【表10】
【0074】表6〜表10から本実施例においては、強制
劣化に起因する血清の有する非特異抑制効果作用の低減
を最小限に抑え、長期保存安定性に優れた標識抗体液を
提供できることが明らかになった。
劣化に起因する血清の有する非特異抑制効果作用の低減
を最小限に抑え、長期保存安定性に優れた標識抗体液を
提供できることが明らかになった。
【0075】
【発明の効果】本発明により、免疫反応を行う際、反応
を媒体とする、例えば免疫一次反応緩衝液、酵素標識抗
体液に規定量の血清、ヒドロキシ安息香酸エステル等フ
ェノール誘導体、デヒドロ酢酸等低級脂肪酸、塩化ベン
ザルコニウム等第4級アンモニウム化合物を規定量含有
させることにより、非特異反応抑制効果が高く、保存安
定性に優れた免疫反応組成物の提供が可能となった。ま
た、該組成物を免疫一次及び/または、二次反応時に用
いたEIA法では、1ステップサンドイッチEIA法と
ともに、特にその効果が高いと言える。本発明はこうし
た免疫学的測定法、さらにそれを応用したキットを同時
に提供可能とした。
を媒体とする、例えば免疫一次反応緩衝液、酵素標識抗
体液に規定量の血清、ヒドロキシ安息香酸エステル等フ
ェノール誘導体、デヒドロ酢酸等低級脂肪酸、塩化ベン
ザルコニウム等第4級アンモニウム化合物を規定量含有
させることにより、非特異反応抑制効果が高く、保存安
定性に優れた免疫反応組成物の提供が可能となった。ま
た、該組成物を免疫一次及び/または、二次反応時に用
いたEIA法では、1ステップサンドイッチEIA法と
ともに、特にその効果が高いと言える。本発明はこうし
た免疫学的測定法、さらにそれを応用したキットを同時
に提供可能とした。
Claims (7)
- 【請求項1】 血清を含有し、かつ、フェノール誘導
体、第4級アンモニウム化合物又は低級脂肪酸から選ば
れる少なくとも一種を含有することを特徴とする免疫反
応媒体組成物。 - 【請求項2】 酵素標識抗体、血清及びフェノール誘導
体を含有し、かつ第4級アンモニウム化合物及び低級脂
肪酸から選ばれる少なくとも一種を含有することを特徴
とする酵素標識抗体組成物。 - 【請求項3】 酵素標識抗体、血清及び0.01(w/v)%か
ら0.80(w/v)%のフェノール誘導体を含有し、かつ第4
級アンモニウム化合物及び脂肪酸から選ばれる少なくと
も一種を含有することを特徴とする酵素標識抗体組成
物。 - 【請求項4】 血清を含む免疫反応媒体組成物にフェノ
ール誘導体、第4級アンモニウム化合物又は低級脂肪酸
から選ばれる少なくとも一種を添加することを特徴とす
る免疫反応媒体組成物の安定化方法。 - 【請求項5】 酵素標識抗体と血清及び0.01%から0.80
%のフェノール誘導体を含有し、かつ第4級アンモニウ
ム化合物及び脂肪酸から選ばれる少なくとも一種を添加
することを特徴とする酵素標識抗体組成物の安定化方
法。 - 【請求項6】 上記免疫反応媒体組成物または上記酵素
標識抗体組成物を用いることを特徴とする免疫学的測定
法。 - 【請求項7】 上記免疫反応媒体組成物または上記酵素
標識抗体組成物を用いることを特徴とする免疫学的測定
法用キット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1926395A JPH08211056A (ja) | 1995-02-07 | 1995-02-07 | 免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫学的測定法用キット |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1926395A JPH08211056A (ja) | 1995-02-07 | 1995-02-07 | 免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫学的測定法用キット |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH08211056A true JPH08211056A (ja) | 1996-08-20 |
Family
ID=11994562
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1926395A Pending JPH08211056A (ja) | 1995-02-07 | 1995-02-07 | 免疫反応媒体組成物、酵素標識抗体組成物、該組成物の安定化方法、該組成物を用いる免疫学的測定法及び免疫学的測定法用キット |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH08211056A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013148496A (ja) * | 2012-01-20 | 2013-08-01 | Mitsubishi Chemical Medience Corp | 非特異反応を抑制する免疫学的測定試薬及び測定方法 |
| WO2016136918A1 (ja) * | 2015-02-25 | 2016-09-01 | 積水メディカル株式会社 | 免疫学的測定方法及び該方法に用いられる測定試薬 |
| WO2016136917A1 (ja) * | 2015-02-25 | 2016-09-01 | 積水メディカル株式会社 | 免疫学的測定方法及び該方法に用いられる測定試薬 |
-
1995
- 1995-02-07 JP JP1926395A patent/JPH08211056A/ja active Pending
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013148496A (ja) * | 2012-01-20 | 2013-08-01 | Mitsubishi Chemical Medience Corp | 非特異反応を抑制する免疫学的測定試薬及び測定方法 |
| WO2016136918A1 (ja) * | 2015-02-25 | 2016-09-01 | 積水メディカル株式会社 | 免疫学的測定方法及び該方法に用いられる測定試薬 |
| WO2016136917A1 (ja) * | 2015-02-25 | 2016-09-01 | 積水メディカル株式会社 | 免疫学的測定方法及び該方法に用いられる測定試薬 |
| JPWO2016136918A1 (ja) * | 2015-02-25 | 2017-11-30 | 積水メディカル株式会社 | 免疫学的測定方法及び該方法に用いられる測定試薬 |
| CN107533055A (zh) * | 2015-02-25 | 2018-01-02 | 积水医疗株式会社 | 免疫测定方法以及用于所述方法的测定试剂 |
| CN107533054A (zh) * | 2015-02-25 | 2018-01-02 | 积水医疗株式会社 | 免疫测定方法以及用于所述方法的测定试剂 |
| JPWO2016136917A1 (ja) * | 2015-02-25 | 2018-02-01 | 積水メディカル株式会社 | 免疫学的測定方法及び該方法に用いられる測定試薬 |
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