JPH0829430A - ヘモグロビンの測定方法 - Google Patents
ヘモグロビンの測定方法Info
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- JPH0829430A JPH0829430A JP16137594A JP16137594A JPH0829430A JP H0829430 A JPH0829430 A JP H0829430A JP 16137594 A JP16137594 A JP 16137594A JP 16137594 A JP16137594 A JP 16137594A JP H0829430 A JPH0829430 A JP H0829430A
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- hemoglobin
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- enzyme
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】 試料の長期保存が可能なヘモグロビンの測定
法を提供する。 【構成】 ヘモグロビン含有試料に、過酸化水素を基質
とする含有することを添加することを特徴とするヘモグ
ロビンの分解抑制方法。
法を提供する。 【構成】 ヘモグロビン含有試料に、過酸化水素を基質
とする含有することを添加することを特徴とするヘモグ
ロビンの分解抑制方法。
Description
【０００１】
【産業上の利用方法】本発明は便潜血検査等のヘモグロ
ビン含有試料中のヘモグロビンの分解抑制方法に関す
る。該分解抑制方法を、ヘモグロビン含有試料の保存を
必要とする臨床検査法に適用することにより、正確なヘ
モグロビンの測定方法が可能となる。
ビン含有試料中のヘモグロビンの分解抑制方法に関す
る。該分解抑制方法を、ヘモグロビン含有試料の保存を
必要とする臨床検査法に適用することにより、正確なヘ
モグロビンの測定方法が可能となる。
【０００２】
【従来の技術】大腸癌等の消化器癌を検査する方法とし
て、消化管からの出血に起因する糞便中の潜血成分（ヘ
モグロビン）を、抗ヘモグロビン抗体を用いた免疫学的
測定法により測定する方法が行われている。これらの臨
床検査法において、ヘモグロビンを含有した被検試料は
測定までに数日間放置されることが多くあり、保存期間
中に試料中のヘモグロビンが分解し、正確にヘモグロビ
ンを測定できないことがある。
て、消化管からの出血に起因する糞便中の潜血成分（ヘ
モグロビン）を、抗ヘモグロビン抗体を用いた免疫学的
測定法により測定する方法が行われている。これらの臨
床検査法において、ヘモグロビンを含有した被検試料は
測定までに数日間放置されることが多くあり、保存期間
中に試料中のヘモグロビンが分解し、正確にヘモグロビ
ンを測定できないことがある。
【０００３】被検試料中のヘモグロビンの分解を抑制す
る目的でチメロサール、クロルヘキシジン、アジ化ナト
リウム等一般的抗菌剤が用いられている。また、動物血
清を被検液に添加する方法（特開平４−１４５３６６号
公報）、含窒素複素環化合物を被検液に添加する方法
（特開昭６０−３５２７０号公報）、鉄プロトポルフィ
リンを添加する方法（特開平５−２８１２２７号公
報）、動物ヘモグロビンを添加する方法（特開平２−２
９６１４９号公報）が知られているが、過酸化水素を基
質とする酵素を含有する方法は知られていない。
る目的でチメロサール、クロルヘキシジン、アジ化ナト
リウム等一般的抗菌剤が用いられている。また、動物血
清を被検液に添加する方法（特開平４−１４５３６６号
公報）、含窒素複素環化合物を被検液に添加する方法
（特開昭６０−３５２７０号公報）、鉄プロトポルフィ
リンを添加する方法（特開平５−２８１２２７号公
報）、動物ヘモグロビンを添加する方法（特開平２−２
９６１４９号公報）が知られているが、過酸化水素を基
質とする酵素を含有する方法は知られていない。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】郵送検便試料による大
腸癌の検診等が普及するのに伴い、公知の方法よりも強
力な被検試料中のヘモグロビンの分解抑制方法の開発が
望まれている。本発明の分解抑制方法をヘモグロビン含
有試料の保存を必要とする臨床検査法に適用することに
より、正確なヘモグロビンの測定が可能な臨床検査法が
提供される。
腸癌の検診等が普及するのに伴い、公知の方法よりも強
力な被検試料中のヘモグロビンの分解抑制方法の開発が
望まれている。本発明の分解抑制方法をヘモグロビン含
有試料の保存を必要とする臨床検査法に適用することに
より、正確なヘモグロビンの測定が可能な臨床検査法が
提供される。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本発明はヘモグロビン含
有試料に過酸化水素を基質とする酵素を含有することを
特徴とするヘモグロビンの分解抑制方法に関する。さら
に本発明により、該ヘモグロビンの分解抑制方法を適用
し、被検試料中に過酸化水素を基質とする酵素を含有す
ることを特徴とするヘモグロビンの測定法を提供するこ
とができる。
有試料に過酸化水素を基質とする酵素を含有することを
特徴とするヘモグロビンの分解抑制方法に関する。さら
に本発明により、該ヘモグロビンの分解抑制方法を適用
し、被検試料中に過酸化水素を基質とする酵素を含有す
ることを特徴とするヘモグロビンの測定法を提供するこ
とができる。
【０００６】過酸化水素を基質とする酵素とは、過酸化
水素を基質として触媒反応を行う酵素であればどのよう
なものでもよいが、ペルオキシダーゼ、カタラーゼ等を
単独または２種以上混合して用いることが好ましい。
水素を基質として触媒反応を行う酵素であればどのよう
なものでもよいが、ペルオキシダーゼ、カタラーゼ等を
単独または２種以上混合して用いることが好ましい。
【０００７】ペルオキシダーゼは、酵素番号(E.C.1.11.
1.7)に属するペルオキシダーゼであればどのようなもの
でもよく、西洋ワサビ等植物由来の酵素、乳汁等動物体
液由来の酵素またはこれらを遺伝子工学等で改変したも
のが用いられる。また、カタラーゼは、酵素番号(E.C.
1.11.1.6)に属するカタラーゼであればどのようなもの
でもよく、細菌、クロロプラスト、赤血球由来の酵素ま
たはこれらを遺伝子工学等で改変したものが用いられ
る。
1.7)に属するペルオキシダーゼであればどのようなもの
でもよく、西洋ワサビ等植物由来の酵素、乳汁等動物体
液由来の酵素またはこれらを遺伝子工学等で改変したも
のが用いられる。また、カタラーゼは、酵素番号(E.C.
1.11.1.6)に属するカタラーゼであればどのようなもの
でもよく、細菌、クロロプラスト、赤血球由来の酵素ま
たはこれらを遺伝子工学等で改変したものが用いられ
る。
【０００８】被検試料中に含有される過酸化水素を基質
とする酵素の活性は０．１〜２００ｕｎｉｔｓ／ｍｌ、
好ましくは２〜１００ｕｎｉｔｓ／ｍｌであり、精製標
品（比活性；１００ｕｎｉｔｓ／ｍｇ）を用いる場合は
試料中、該酵素濃度が１〜２０００μｇ／ｍｌ、好まし
くは濃度２０〜１０００μｇ／ｍｌになるように添加す
ればよい。また、試料中のヘモグロビンに対する過酸化
水素を基質とする酵素の量は、前記の精製標品を用いる
場合、ヘモグロビン１に対して０．００００４〜２００
万の重量比で用いられるが、ヘモグロビン１に対して
０．０００８〜１００万の重量比で用いることが好まし
い。
とする酵素の活性は０．１〜２００ｕｎｉｔｓ／ｍｌ、
好ましくは２〜１００ｕｎｉｔｓ／ｍｌであり、精製標
品（比活性；１００ｕｎｉｔｓ／ｍｇ）を用いる場合は
試料中、該酵素濃度が１〜２０００μｇ／ｍｌ、好まし
くは濃度２０〜１０００μｇ／ｍｌになるように添加す
ればよい。また、試料中のヘモグロビンに対する過酸化
水素を基質とする酵素の量は、前記の精製標品を用いる
場合、ヘモグロビン１に対して０．００００４〜２００
万の重量比で用いられるが、ヘモグロビン１に対して
０．０００８〜１００万の重量比で用いることが好まし
い。
【０００９】ヘモグロビン含有試料としては、ヘモグロ
ビンを含有する試料であればどのようなものでもよい
が、糞便、血液、尿、痰等があげられる。
ビンを含有する試料であればどのようなものでもよい
が、糞便、血液、尿、痰等があげられる。
【００１０】被検試料は通常緩衝液等に溶解した状態
で、ヘモグロビンの測定に供せられる。緩衝液としては
リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、イミダゾール緩衝液、グ
リシン緩衝液、トリス塩酸緩衝液などが用いられ、これ
らの緩衝液はｐＨ６．０〜９．０、好ましくは６．５〜
８．５の範囲がよく、緩衝液中には塩化ナトリウム、抗
生物質、アジ化ナトリウム等の抗菌剤、乳酸またはアル
ブミンを１種以上含んでいてもよい。
で、ヘモグロビンの測定に供せられる。緩衝液としては
リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、イミダゾール緩衝液、グ
リシン緩衝液、トリス塩酸緩衝液などが用いられ、これ
らの緩衝液はｐＨ６．０〜９．０、好ましくは６．５〜
８．５の範囲がよく、緩衝液中には塩化ナトリウム、抗
生物質、アジ化ナトリウム等の抗菌剤、乳酸またはアル
ブミンを１種以上含んでいてもよい。
【００１１】抗生物質としては、ペニシリン、アセチル
スピラマイシン、ミノサイクリン等があげられ、アルブ
ミンとしては、ヒト、ウサギ、羊、山羊、馬、牛、ブタ
等の動物アルブミン、卵白アルブミンがあげられる。
スピラマイシン、ミノサイクリン等があげられ、アルブ
ミンとしては、ヒト、ウサギ、羊、山羊、馬、牛、ブタ
等の動物アルブミン、卵白アルブミンがあげられる。
【００１２】過酸化水素を基質とする酵素の効果を増強
するため、緩衝液中に抗生物質、アルブミン、アジ化ナ
トリウム、乳酸等を加えるときは、抗生物質は０．００
５〜０．５重量％、好ましくは０．０１〜０．２重量
％、アルブミンは０．０５〜５重量％、好ましくは０．
１〜２重量％、アジ化ナトリウムは０．０５〜０．５重
量％、好ましくは０．１〜０．３重量％、乳酸は０．１
〜１５重量％、好ましくは０．５〜５．０重量％の濃度
で加えることが好ましい。これらの添加剤は試料中のヘ
モグロビンに対しては、ヘモグロビン１に対して重量比
で、抗生物質０．００２〜５００万、アルブミン０．０
２〜５０００万、アジ化ナトリウム０．０２〜５００
万、乳酸０．０４〜１億５０００万の比で用いればよ
い。該緩衝液中の被検試料の保存温度は０〜４５℃、好
ましくは４〜１０℃である。
するため、緩衝液中に抗生物質、アルブミン、アジ化ナ
トリウム、乳酸等を加えるときは、抗生物質は０．００
５〜０．５重量％、好ましくは０．０１〜０．２重量
％、アルブミンは０．０５〜５重量％、好ましくは０．
１〜２重量％、アジ化ナトリウムは０．０５〜０．５重
量％、好ましくは０．１〜０．３重量％、乳酸は０．１
〜１５重量％、好ましくは０．５〜５．０重量％の濃度
で加えることが好ましい。これらの添加剤は試料中のヘ
モグロビンに対しては、ヘモグロビン１に対して重量比
で、抗生物質０．００２〜５００万、アルブミン０．０
２〜５０００万、アジ化ナトリウム０．０２〜５００
万、乳酸０．０４〜１億５０００万の比で用いればよ
い。該緩衝液中の被検試料の保存温度は０〜４５℃、好
ましくは４〜１０℃である。
【００１３】本発明におけるヘモグロビンの測定方法と
しては、ヘモグロビンの検出方法または定量法であれば
いずれでもよいが、例えば抗ヘモグロビン抗体を用いた
免疫学的測定法等があげられる。
しては、ヘモグロビンの検出方法または定量法であれば
いずれでもよいが、例えば抗ヘモグロビン抗体を用いた
免疫学的測定法等があげられる。
【００１４】ヘモグロビンの免疫学的測定法としては、
抗ヘモグロビン抗体を用いた免疫学的測定法であればど
のようなものでもよく、例えば、寒天平板上で抗ヘモグ
ロビン抗体と被検試料中のヘモグロビンとを反応させる
単純免疫拡散法、二重免疫拡散法等の免疫拡散法、抗ヘ
モグロビン抗体を感作した動物血球を用いる逆受身赤血
球凝集法、酵素で標識した抗ヘモグロビン抗体を用いる
酵素免疫法、抗ヘモグロビン抗体を感作したラテックス
粒子を用いるラテックス凝集法、ラテックス凝集阻止
法、抗ヘモグロビン抗体を感作した金コロイド粒子を用
いる金コロイド凝集法等があげられる。
抗ヘモグロビン抗体を用いた免疫学的測定法であればど
のようなものでもよく、例えば、寒天平板上で抗ヘモグ
ロビン抗体と被検試料中のヘモグロビンとを反応させる
単純免疫拡散法、二重免疫拡散法等の免疫拡散法、抗ヘ
モグロビン抗体を感作した動物血球を用いる逆受身赤血
球凝集法、酵素で標識した抗ヘモグロビン抗体を用いる
酵素免疫法、抗ヘモグロビン抗体を感作したラテックス
粒子を用いるラテックス凝集法、ラテックス凝集阻止
法、抗ヘモグロビン抗体を感作した金コロイド粒子を用
いる金コロイド凝集法等があげられる。
【００１５】以下にラテックス凝集法を用いた免疫学的
測定法について例示する。
測定法について例示する。
【００１６】通常のポリクローナル抗体の作製方法（実
験生物学講座１４，「免疫生物学」，村松繁ら編，１９
８５年，丸善刊）に従い、ヒトヘモグロビンを抗原とし
てウサギ、羊、山羊等の抗体産生能のある動物に該抗原
で免疫した後、採血する。採血後、通常用いられる精製
方法（例えば、硫酸アンモニウムによる塩析、ＤＥＡＥ
セルロースでのＩｇＧ分画）で精製して抗ヒトヘモグロ
ビン抗体を得る。なお抗ヒトヘモグロビン抗体は常法
（モノクローナルとがん，谷内昭ら編，１９８５年，サ
イエンスフォーラム社刊；単クローン抗体，岩崎辰夫ら
編，１９８４年，講談社サイエンティフィック社刊）等
により作製したモノクローナル抗体を用いてもよいし、
市販の抗ヒトヘモグロビン抗体を用いてもよい。
験生物学講座１４，「免疫生物学」，村松繁ら編，１９
８５年，丸善刊）に従い、ヒトヘモグロビンを抗原とし
てウサギ、羊、山羊等の抗体産生能のある動物に該抗原
で免疫した後、採血する。採血後、通常用いられる精製
方法（例えば、硫酸アンモニウムによる塩析、ＤＥＡＥ
セルロースでのＩｇＧ分画）で精製して抗ヒトヘモグロ
ビン抗体を得る。なお抗ヒトヘモグロビン抗体は常法
（モノクローナルとがん，谷内昭ら編，１９８５年，サ
イエンスフォーラム社刊；単クローン抗体，岩崎辰夫ら
編，１９８４年，講談社サイエンティフィック社刊）等
により作製したモノクローナル抗体を用いてもよいし、
市販の抗ヒトヘモグロビン抗体を用いてもよい。
【００１７】得られた抗体を物理吸着法または共有結合
法［タンパク質化学１（アミノ酸、ペプチド），赤堀四
郎ら編，１９６９年，共立出版刊］等の常法によりラテ
ックス粒子（０．１〜０．６μｍ）に結合させ、牛血清
アルブミン等を含む緩衝液などで遠心分離洗浄を行い抗
ヒトヘモグロビン抗体感作ラテックス試薬を作製する。
法［タンパク質化学１（アミノ酸、ペプチド），赤堀四
郎ら編，１９６９年，共立出版刊］等の常法によりラテ
ックス粒子（０．１〜０．６μｍ）に結合させ、牛血清
アルブミン等を含む緩衝液などで遠心分離洗浄を行い抗
ヒトヘモグロビン抗体感作ラテックス試薬を作製する。
【００１８】この様にして得られたラテックス試薬を用
い、スライド板法によりスライド板上での凝集像を判定
する方法や、凝集反応の速度を分光光度計、濁度計等に
より光学的または電気的に測定する方法によってヒトヘ
モグロビンを測定する。
い、スライド板法によりスライド板上での凝集像を判定
する方法や、凝集反応の速度を分光光度計、濁度計等に
より光学的または電気的に測定する方法によってヒトヘ
モグロビンを測定する。
【００１９】以下、本発明の実施例を示す。
【００２０】
実施例１ （１）抗ヒトヘモグロビン抗体感作ラテックス試薬の調
製 ヒトヘモグロビンをウサギに免疫して作製したポリクロ
ーナルの抗ヒトヘモグロビン抗体２ｍｇを含む０．２Ｍ
トリス塩酸緩衝液（ＰＨ８．２）２ｍｌと１％のポリス
チレンラテックス〔粒径０．３５μｍ；協和発酵工業社
製〕を懸濁させた０．２Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．
２）２ｍｌとを混合し、４℃で２４時間撹拌してラテッ
クスに抗体を吸着させた。その後、遠心分離機を用いて
ラテックスを上記のトリス塩酸緩衝液で洗い、ラテック
スが１％になるように０．５％牛血清アルブミン（ＢＳ
Ａ）を含む０．２Ｍトリス塩酸緩衝液（ＰＨ８．２）に
懸濁させ、抗ヒトヘモグロビン抗体感作ラテックス試薬
を調製した。
製 ヒトヘモグロビンをウサギに免疫して作製したポリクロ
ーナルの抗ヒトヘモグロビン抗体２ｍｇを含む０．２Ｍ
トリス塩酸緩衝液（ＰＨ８．２）２ｍｌと１％のポリス
チレンラテックス〔粒径０．３５μｍ；協和発酵工業社
製〕を懸濁させた０．２Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．
２）２ｍｌとを混合し、４℃で２４時間撹拌してラテッ
クスに抗体を吸着させた。その後、遠心分離機を用いて
ラテックスを上記のトリス塩酸緩衝液で洗い、ラテック
スが１％になるように０．５％牛血清アルブミン（ＢＳ
Ａ）を含む０．２Ｍトリス塩酸緩衝液（ＰＨ８．２）に
懸濁させ、抗ヒトヘモグロビン抗体感作ラテックス試薬
を調製した。
【００２１】（２）糞便溶解用緩衝液 糞便溶解用緩衝液として、アジ化ナトリウム０．１％、
ＢＳＡ０．２％、塩化ナトリウム０．８５％が入った
０．０５Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）に、１、２０、
１００、１０００μｇ／ｍｌの濃度のペルオキシダーゼ
（和光純薬工業社製、比活性１００ｕｎｉｔｓ／ｍｇ）
を添加した。
ＢＳＡ０．２％、塩化ナトリウム０．８５％が入った
０．０５Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）に、１、２０、
１００、１０００μｇ／ｍｌの濃度のペルオキシダーゼ
（和光純薬工業社製、比活性１００ｕｎｉｔｓ／ｍｇ）
を添加した。
【００２２】（３）対照用糞便溶解用緩衝液 （２）で作製した糞便溶解用緩衝液の対照としてアジ化
ナトリウム０．１％、ＢＳＡ０．２％、塩化ナトリウム
０．８５％が入った０．０５Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．
０）を作製した。
ナトリウム０．１％、ＢＳＡ０．２％、塩化ナトリウム
０．８５％が入った０．０５Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．
０）を作製した。
【００２３】（４）即時検出操作 （２）で調製した糞便溶解用緩衝液または（３）で作製
した対照用糞便溶解用緩衝液にヒトヘモグロビンの濃度
を変えて溶解し、更に健常人の糞便を６ｍｇ／ｍｌ濃度
で溶解させた。この被検液１００μｌと前記ラテックス
試薬２５μｌをスライド板上に滴下し、撹拌棒で両液を
混和してスライド板の円一杯に広げた。スライド板を前
後左右に３分間ゆるやかに動かした後、ラテックス試薬
の凝集像を観察した。その結果を第１表に示した。
した対照用糞便溶解用緩衝液にヒトヘモグロビンの濃度
を変えて溶解し、更に健常人の糞便を６ｍｇ／ｍｌ濃度
で溶解させた。この被検液１００μｌと前記ラテックス
試薬２５μｌをスライド板上に滴下し、撹拌棒で両液を
混和してスライド板の円一杯に広げた。スライド板を前
後左右に３分間ゆるやかに動かした後、ラテックス試薬
の凝集像を観察した。その結果を第１表に示した。
【００２４】
【表１】
【００２５】第１表の即時検出操作では本発明方法とペ
ルオキシダーゼ無添加の両サンプルともヒトヘモグロビ
ン１２５ｎｇ／ｍｌまで測定可能であった。 （５）７日保存後の検出操作 （２）で調製した糞便溶解用緩衝液または（３）で作製
した対照用糞便溶解用緩衝液にヒトヘモグロビンの濃度
を変えて溶解し、更に健常人の糞便を６ｍｇ／ｍｌ濃度
で溶解させた。得られた溶液を２３℃で７日間保存した
後、（４）と同様の方法でラテックス試薬を滴下し凝集
像を観察した。結果を第２表に示した。
ルオキシダーゼ無添加の両サンプルともヒトヘモグロビ
ン１２５ｎｇ／ｍｌまで測定可能であった。 （５）７日保存後の検出操作 （２）で調製した糞便溶解用緩衝液または（３）で作製
した対照用糞便溶解用緩衝液にヒトヘモグロビンの濃度
を変えて溶解し、更に健常人の糞便を６ｍｇ／ｍｌ濃度
で溶解させた。得られた溶液を２３℃で７日間保存した
後、（４）と同様の方法でラテックス試薬を滴下し凝集
像を観察した。結果を第２表に示した。
【００２６】
【表２】
【００２７】第２表によれば、２３℃で７日間保存して
も本発明法は高い感度を有し、ヒトヘモグロビンの分解
を抑制した。
も本発明法は高い感度を有し、ヒトヘモグロビンの分解
を抑制した。
【００２８】（６）高温保存後の検出 （２）で調製した糞便溶解用緩衝液または（３）で作製
した対照用糞便溶解用緩衝液にヒトヘモグロビンを濃度
を変えて溶解し、更に健常人の糞便を６ｍｇ／ｍｌ濃度
で溶解させた。得られた溶液を３７℃で１日間保存した
後、（４）と同様の方法で前記ラテックス試薬を滴下し
凝集像を観察した。結果を第３表に示した。
した対照用糞便溶解用緩衝液にヒトヘモグロビンを濃度
を変えて溶解し、更に健常人の糞便を６ｍｇ／ｍｌ濃度
で溶解させた。得られた溶液を３７℃で１日間保存した
後、（４）と同様の方法で前記ラテックス試薬を滴下し
凝集像を観察した。結果を第３表に示した。
【００２９】
【表３】
【００３０】第３表によれば、３７℃の高温保存におい
ても本発明法は高い感度を有し、ヒトヘモグロビンの分
解を抑制した。
ても本発明法は高い感度を有し、ヒトヘモグロビンの分
解を抑制した。
【００３１】実施例２ ０．０５Ｍホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）にペルオキシダ
ーゼ０．０１％（１０ｕｎｉｔｓ／ｍｌ）を添加した糞
便溶解用緩衝液、ＢＳＡ０．２％を添加した糞便溶解用
緩衝液、アジ化ナトリウム０．１％を添加した糞便溶解
用緩衝液または無添加の糞便溶解用緩衝液を用い実施例
１と同様の方法により、ヘモグロビン溶液を２３℃で７
日間保存した後のヘモグロビンを測定した。結果を第４
表に示した。
ーゼ０．０１％（１０ｕｎｉｔｓ／ｍｌ）を添加した糞
便溶解用緩衝液、ＢＳＡ０．２％を添加した糞便溶解用
緩衝液、アジ化ナトリウム０．１％を添加した糞便溶解
用緩衝液または無添加の糞便溶解用緩衝液を用い実施例
１と同様の方法により、ヘモグロビン溶液を２３℃で７
日間保存した後のヘモグロビンを測定した。結果を第４
表に示した。
【００３２】
【表４】
【００３３】第４表によれば、本願発明方法により最も
低濃度のヘモグロビンが検出できた。
低濃度のヘモグロビンが検出できた。
【００３４】
【発明の効果】本発明により、糞便中のヘモグロビンの
分解が抑制され、大腸癌の診断に用いられる臨床検査法
において、ヘモグロビンの高精度の測定が可能となる。
分解が抑制され、大腸癌の診断に用いられる臨床検査法
において、ヘモグロビンの高精度の測定が可能となる。
Claims (2)
- 【請求項１】 ヘモグロビン含有試料に、過酸化水素を
基質とする酵素を含有することを特徴とするヘモグロビ
ンの分解抑制方法。 - 【請求項２】 被検試料中のヘモグロビンの測定方法に
おいて、試料中に過酸化水素を基質とする酵素を含有す
ることを特徴とする方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16137594A JPH0829430A (ja) | 1994-07-13 | 1994-07-13 | ヘモグロビンの測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16137594A JPH0829430A (ja) | 1994-07-13 | 1994-07-13 | ヘモグロビンの測定方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0829430A true JPH0829430A (ja) | 1996-02-02 |
Family
ID=15733902
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP16137594A Pending JPH0829430A (ja) | 1994-07-13 | 1994-07-13 | ヘモグロビンの測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0829430A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017188426A1 (ja) * | 2016-04-28 | 2017-11-02 | 国立大学法人東京農工大学 | ペルオキシダーゼ活性増大アプタマー |
| JP2017200472A (ja) * | 2016-04-28 | 2017-11-09 | 国立大学法人東京農工大学 | ペルオキシダーゼ活性増大アプタマー |
-
1994
- 1994-07-13 JP JP16137594A patent/JPH0829430A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017188426A1 (ja) * | 2016-04-28 | 2017-11-02 | 国立大学法人東京農工大学 | ペルオキシダーゼ活性増大アプタマー |
| JP2017200472A (ja) * | 2016-04-28 | 2017-11-09 | 国立大学法人東京農工大学 | ペルオキシダーゼ活性増大アプタマー |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20030225 |