JPH08508492A - 非環式ヌクレオシド類似体及びそれらを含むオリゴヌクレオチド配列 - Google Patents

非環式ヌクレオシド類似体及びそれらを含むオリゴヌクレオチド配列

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JPH08508492A JP6522133A JP52213394A JPH08508492A JP H08508492 A JPH08508492 A JP H08508492A JP 6522133 A JP6522133 A JP 6522133A JP 52213394 A JP52213394 A JP 52213394A JP H08508492 A JPH08508492 A JP H08508492A
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Abstract

(57)【要約】 式I: 〔式中、R1は、水素またはオリゴヌクレオチド合成に適合するブロッキング基であり;R2は、水素またはメチルであり;R3は、水素または−P(R4)OR5であり;R4は、塩素、4−ニトロイミダゾール、イミダゾール、テトラゾール、トリアゾールまたはジ(低級アルキル)アミノ−であり;R5はメチル、2−シアノエチルまたは2,2,2−トリクロロエチルであり;nは0〜2であり;Xは酸素、硫黄または−NR6であり;R6は水素または低級アルキルであり;Qは からなる群から選ばれ;R7は低級アルキルであり;且つR8は水素、ベンゾイル、アニソイルまたは低級アルキルカルボニルである〕の化合物及びその医薬として許容され得る付加塩はヌクレオチド類似体である。式Iのヌクレオシド類似体を含む修飾オリゴヌクレオチドは、ヌクレアーゼ分解に対して安定であり、遺伝子発現の抑制、配列決定及び突然変異誘発において有用である。

Description

【発明の詳細な説明】 非環式ヌクレオシド類似体及びそれらを含むオリゴヌクレオチド配列 発明の分野 本発明は、新規1,ω−アルキレンジオールヌクレオシド類似体、これらの類 似体を含むオリゴヌクレオチド配列、該ヌクレオシド及びそれらを含むオリゴヌ クレオチドの製造方法、ヌクレアーゼ分解及び遺伝子発現を抑制するための修飾 オリゴヌクレオチドの使用方法、ならびに該修飾オリゴヌクレオチドを含む組成 物に関する。 情報開示記述 schneider及びBenner〔J. Am. Chem. Soc. 112, 453〜455(1990)〕は、 及びこのユニットを含むオリゴヌクレオチド類似体を開示している 。これらのオリゴヌクレオチド類似体は、相補的天然オリゴヌクレオチドとハイ ブリッドを形成するものであった。著者らは、結果を「可変オリゴヌクレオチド 類似体をアンチセンス化合物として使用することを期待する人々の期待に反する 」ものと記載した。九量体中のたった1個のヌクレオシドを置換した場合でさえ 、デュプレックスの融解温度が12〜15℃低下した。 Prisbeら〔J. Med. Chem. 29, 671〜675(1986)〕は抗ウィルス剤として 〔式中、Rは水素または燐酸残基である〕 を開示している。 Harndenらの米国特許第4,965,270号は、抗ウィルス剤として、9−(3−ヒド ロキシ−2−ヒドロキシメチルプロプ−1−オキシ)グアニン: を開示している。 Schwarzとその同僚〔Science 228, 585〜587(1985);J. Molecular Evoluti on 29, 284〜287(1989);J.Molecular Evolution3〜6(1990)〕は、非環式 ヌクレオチド類似体の、鋳型に関連したホモオリゴマー化を記載している。モノ マーは、式 〔式中、Bはシトシン、イミン、グアニンまたはアデニンである〕 を有する。 Augustynsら〔Nucleic Acids Research 19 2587〜93(1991)〕は、酵素安定 性及びオリゴデオキシヌクレオチドの塩基対合性に対する、(S)−9−(3, 4−ジヒドロキシブチル)アデニンの取り込みの影響を議論している。 発明の背景 アンチセンス化合物は、核酸、RNAまたはDNA中のヌクレオチド配列に結合する かまたはそれとハイブリッドを形成して、該核酸の作用または合成を阻害する化 合物である。アンチセンス化合物はRNAとDNAの両者とハイブリッド形成できるた め、転写、RNAプロセッシングまたは翻訳のレベルで遺伝子発現を妨害すること ができる。 アンチセンス分子は、ゲノムDNAとハイブリッド形成して、RNA ポリメラーゼの作用を直接または間接的に阻害することによって、特定の遺伝子 のmRNAへの転写を妨害するように、設計及び合成することができる。DNAを標的 とする場合に理論上有利な点は、治療効果を達成するのに必要なアンチセンス化 合物がごく少量でよいことである。あるいは、アンチセンス化合物はRNAとハイ ブリッド形成して、転写後修飾(RNAプロセッシング)または蛋白合成(翻訳) メカニズムを阻害するかまたはmRNAの安定性に影響を与えるように、設計及び合 成することができる。標的RNAの例は、メッセンジャーRNA(mRNA)、トランスフ ァーRNA(tRNA)、リボソームRNA(rRNA)、ヘテロ核RNA(hnRNA)などである。 プロセッシング及び翻訳メカニズムの例としては、前mRNAのスプライシングによ るイントロンの除去、mRNAの5′末端のキャッピング、細胞質への輸送、ハイブ リッド形成の停止及びリボヌクレアーゼHが介在するmRNA加水分解が挙げられる 。 しかしながら、現在のところ、アンチセンス技術の科学及び治療への応用は、 数々の技術的問題によってその進展が妨げられている。合成アンチセンス分子は 、標的細胞中に存在するヌクレアーゼによって急速に分解されやすい。アンチセ ンスDNAまたはRNAのオリゴヌクレオチド配列は、例えば、核酸の5′または3′ 末端において作用するエクソヌクレアーゼによって破壊される。さらに、エンド ヌクレアーゼが個々のヌクレオチド間の内部ホスホジエステル結合においてDNA またはRNAを分解し得る。このような分解の結果、投与されるアンチセンス化合 物の有効半減期は極めて短いため、大用量を短い間隔で投与しなければならない 。 もう一つの問題は、入手できるDNA半自動合成装置では、アンチセンスDNAまた はRNAの製造コストが非常に高いことである。 さらに別の問題は、体及び細胞内の目的とする標的へのアンチセ ンス薬剤の送達に関するものである。ゲノムDNAを標的とするアンチセンス薬剤 は核内に入らなければならない(すなわち、薬剤は原形質膜及び核膜を透過しな ければならない)。膜透過性を増大しなければならない(疎水性を増大しなけれ ばならない)が、他方において、細胞質及び細胞サイトゾルのような体液区分に おいては水溶性が必要である(親水性を増大しなければならない)ので、そのい ずれかを優先するかを考えなければならない。 さらに別の問題は、体内で遊離しているかまたは標的核酸に対してハイブリッ ド形成するかという、アンチセンス薬剤の安定性に関するものである。アンチセ ンスDNAのようなオリゴヌクレオチド配列は、キラール燐(phosphorous)中心の 回りで立体配置の変換を受けやすい。 ヒトの治療において予測される次のステップは、遺伝子をアンチセンス薬剤の 標的とすることである〔Armstrong, Business Week、1990年3月5日、p.88〕。 しかしながら、疾病の治療にアンチセンス技術をうまく応用するには、前記問題 の解決法を見い出さなければならない。 安定で、ヌクレアーゼ抵抗性で、製造コストが安く、しかも体中の核酸標的に 送達でき且つそれらとハイブリッド形成できるアンチセンス化合物を製造するた めの1つのアプローチは、正常のホスフェート−糖バックボーン構造及びヌクレ オチド塩基への結合点に修飾を有するオリゴヌクレオチド配列を合成することで ある。本発明はこのようなアプローチに関する。 発明の要約 生成物の側面において、本発明は式I 〔式中、R1は、水素またはオリゴヌクレオチド合成に適合するブロッキング基 、たとえば、メトキシトリチルまたはジメトキシトリチルであり;R2は、水素 、ニトロ、低級アルキルアミノ、ジ低級アルキルアミノまたはメチルであり;R3 は、水素または−P(R4)OR5であり;R4は、クロロ、イミダゾリル、4−ニトロ イミダゾリル、テトラゾリル、トリアゾリルまたはジ低級アルキルアミノ、好ま しくはジイソプロピルアミノであり;R5は、メチル、2,2,2−トリクロロ エチルまたは2−シアノエチル、好ましくは2−シアノエチルであり;Xは、酸 素、硫黄または−NR6−、好ましくは酸素であり;R6は、水素または低級アルキ ル、好ましくはメチルであり;nは0〜2であり、且つQは (式中、R7は低級アルキルまたは低級アルキルオキシメチレンであり、且つR8 は水素、ベンゾイル、アニソイルまたは低級アルキルカルボニルである) からなる群から選ばれた複素環式残基である〕 の化合物に関する。複素環Qの結合点は、天然のヌクレオシドの場合のような9 −位の窒素ではなく8−位の炭素である。 さらに別の生成物の側面において、本発明は、1個またはそれ以上のヌクレオ シドが式V の残基で置換された、塩基数が約6〜約200、好ましくは約12〜約24、最も好ま しくは約15のオリゴヌクレオチド配列に関する。 式Iの化合物は、1個またはそれ以上の残基が置換されたオリゴヌクレオチド 配列の合成における中間体として有用である。オリゴヌクレオチド配列は、遺伝 子発現の抑制のために、核酸の配列決定、診断分析において及びヌクレアーゼ分 解の阻害のためにアンチセンス薬剤として有用である。 本発明においては、低級アルキルは、炭素数約1〜約4の直鎖、分枝鎖または 環状構造の炭化水素基を意味する。ヌクレオシド及びヌクレオチドは当業界にお ける標準的な意味を有する:すなわち、ヌクレオシドは、プリンの9位またはピ リミジンの1位を経てリボースまたは2−デオキシリボースに結合するヌクレオ シド塩基であり;ヌクレオチドはヌクレオシドの3′または5′−リボース−0 −ホスフェートエステルである。ヌクレオシド塩基は、ウラシル、チミン、シト シン、グアニン、アデニン及びそれらの公知の種々の修飾及び誘導同族体を含む 。このような修飾及び誘導塩基の例としては、5−フルオロウラシル、5−ブロ モウラシル、5−クロロウラシル、5−ヨードウラシル、ヒポキサンチン、キサ ンチン、4−アセチルシトシン、ジヒドロウラシル、イノシン、N6−イソペン テニルアデニン、1−メチルアデニン、1−メチルプソイドウラシル、1−メチ ルグアニン、1−メチルイノシン、2,2−ジメチルグアニン、2−メチルアデ ニン、2−エチルグアニン、3−メチルシトシン、5−メチルシトシン、N6− メチルアデニン、7−メチルグアニン、5−メチルアミノメチルウラシル、5− メトキシウラシル、プソイドウラシル、キューオシン(queuosine)、2−チオ シトシン、5−メチル−2−チオウラシル、2−チオウラシル、4−チオウラシ ル、5−メチルウラシル及び2,6−ジアミノプリンが挙げられる。式及び置換 基は、明細書全体にわたって、最初に与えた定義を持つ。 さらに組成物の側面において、本発明は、前記修飾オリゴヌクレオチド及び医 薬として許容され得る担体を含んでなる遺伝子発現抑制用組成物に関する。 方法の側面において、本発明は、前記修飾オリゴヌクレオチドを供給すること を含んでなる、遺伝子発現の抑制方法、ならびにオリ ゴヌクレオチド配列の、ヌクレアーゼ、特にエクソヌクレアーゼ分解を阻害する 方法に関する。 製法の側面において、本発明は、式IIIの化合物を式IVの化合物と反応させる ことを含んでなる、式IIの化合物の製造方法に関する: 〔式中、Yは求核剤によって容易に置換される脱離基であり、且つR3及びR10 は水素(この場合には式IIの化合物は直接得られる)またはヒドロキシル官能基 の保護基(この場合には式IIの化合物は公知の手段による保護基の除去によって 得られる)である〕。好ましい脱離基Yは、臭素、塩素、ヨウ素、トルエンスル ホネート及びメタンスルホネートであり;最も好ましいのは臭素である。好まし い保護基は、t−ブチル、ベンジル、フェニルもしくは置換フェニルまたはイソ プロピリデンであり;最も好ましいのはイソプロピリデンである。 式III〔式中、nは0〜2である〕の化合物は市販されているか、公知である か、または公知の化合物の系に属し、純粋な対掌体として得ることができる。 別の製法の側面において、本発明は、遊離3′または5′ヒドロキシルを有す るオリゴヌクレオチド配列を式VI 〔式中、DMTはジメトキシトリチル残基を表し、且つQaはR8が水素以外である (R8a)Qのサブセットである〕 の化合物と反応させることを含んでなる、ヌクレオシドが式V の残基で置換された修飾オリゴヌクレオチドの合成方法に関する。好ましくは、 Qaである。次に、R8が水素であるオリゴマーは、対応するR8aオリゴマーから公 知の方法を用いて脱保護によって得られる。 ゴマーから公知の方法を用いて脱保護によって得られる。 好ましい実施態様を含む詳細な説明 式Iの化合物は、反応式Aに示した経路によって合成できる: 反応式A グアノシン類似体に関しては、市販の8−ブロモグアニンを適当な酸塩化物ま たは無水物、好ましくは無水イソ酪酸でアシル化し、適当な低級アルキルハロゲ ン化物またはスルホン酸エステル、好ましくはヨウ化メチルでアルキル化して、 式VIIaの2−アシル−9−アルキル−8−ブロモグアニンを生成する。アデノ シン類似体に関しては、市販のアデニンを低級アルキルハロゲン化物またはスル ホン酸エステル、好ましくはヨウ化メチルでアルキル化し、水性酢酸−酢酸ナト リウム緩衝液中でpH4.0において臭素分子で臭素化し、そして酸塩化物または無 水物、好ましくは塩化ベンゾイルでアシル化して、4,4−ジアシル−9−アル キル−8−ブロモアデニンVIIbを生成する。 8−ブロモプリン(例えば、式VIIaまたはVIIb)は、不活性溶媒、好ましく はDMF中で約2当量の1,ω−アルキレンジオールIIIの適当な誘導体と反応させ る。Xが酸素である場合には、R9及びR10は一緒になってイソプロピリデン残 基を形成する;すなわち、IIIが 〔式中、nは0〜2、好ましくは0または1である〕 であるのが好ましく、1当量の水素化ナトリウムの添加によって該アルコールの ナトリウム塩をあらかじめ形成するのが好ましい。次いで、8−ブロモプリンは 不活性溶媒中、該アルコラートに添加する。Xが硫黄または−NR6−である場合 には、1,ω−ジヒドロキシル官能価を保護する必要がなく、すなわち、R9及 びR10は水素であることができ、また、硫黄または窒素陰イオンをあらかじめ形 成する必要がない。 R9及びR10が水素以外である場合には、ブロモプリンとの縮合後に、それら を適当な脱保護によって水素に転化することが必要である。例えば、Xが酸素で あり且つR9及びR10が一緒になってプロピリデン残基(IIIa)を形成する好ま しい例においては、脱保護は、公知の方法によって、たとえば、ジオキサン中0. 25M H2SO4のような緩酸を用いて行う。 式IIaの化合物は、公知の方法〔Schaller,Lerch and Khorana,J. Am. Chem . Soc. 85 3821〜3827(1963)参照〕に従ってヒドロキシル基1個を4,4′− ジメトキシトリチルクロリドで保護してから、公知の方法〔Sinhaら、Tet. Lett . 24, 5843〜5846(1983)参照〕に従って他のヒドロキシルをTHF中、約3当量 の2−シアノエチル N,N−ジイソプロピルクロロホスホルアミダイトと反応 させることによって、オリゴヌクレオチド配列中への取り込みに備える。さらに 配列への合成に好ましい式VIの化合物は、R4がジイソプロピルアミノであり且 つR5がβ−シアノエチルである化合物であるが、R4が塩素、イミダゾール、4 −ニトロイミダゾール、テトラゾール、トリアゾール、または他のジ低級アルキ ルアミンであり且つR5がメチルまたは2,2,2−トリクロロエチルである他 の「モノマー」(VI)もまた、公知の方法〔Matteucci and Caruthers Tet. Let t. 22, 1859〜1862(1981)ならびにSchallerらの前掲書参照〕によって製造で きる。 モノマー単位VI及びその前駆体Xはキラール化合物である。説明した合成によ って生じるラセミ混合物は、オリゴマー中に取り込ませると、オリゴマーのジア ステレオマーの組を生じる可能性があり、それら自体は所望ならば、分離するこ ともできるしまたはモノマーの段階で対掌体を分離することもできる。分割が望 ましい場合に 使用できる通常の方法としては、キラール媒体上におけるクロマトグラフィーま たはXのジアステレオマーエステルの、キラール酸の単一対掌体による促進、ジ アステレオマーの分離及び加水分解によるXの単一対掌体の生成が挙げられる。 式VIの化合物は、式VIの化合物を、オリゴヌクレオチドの標準合成法における その対応するジメトキシトリチルヌクレオシドホスホルアミダイトの代わりに用 いることによってオリゴヌクレオチド中に取り込ませる。特に好ましいのは、Ma tteucci及びCaruthers〔J. Am. Chem. Soc. 103, 3185〜3191(1981)〕ならび にGait〔Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach, M.J.Gait編、p. 35〜81,IRL Press,Washington,D.C.1984〕によって記載されたような固相合 成である。 固相合成の最初の工程は、固体支持体、好ましくは気孔制御ガラス(controll ed pore glass,CPG)支持体へのヌクレオシドの結合である。ヌクレオシドは、 ヌクレオシドの3′−ヒドロキシ位においてスクシネート結合を介してCPGに結 合させるのが好ましい。ヌクレオシドを固体支持体に結合させる他の手段は公知 であり、オリゴヌクレオチド合成技術の熟練者には容易にわかる。 第1のヌクレオシドを固体支持体に結合させた後、5′−ヒドロキシ保護基の 除去、ホスホルアミダイト試薬の存在下における5′ヒドロキシ基の活性化、所 望のヌクレオシドの添加、未反応ヌクレオシドのキャッピング及び燐結合の酸化 という一連の工程によって、鎖伸張が起こる。結合したヌクレオシドの5′−ヒ ドロキシ位の保護基は酸、好ましくはトリクロロ酢酸で除去する。 この方法に従って使用できる活性化試薬は当業者にはよく知られたものである 。好ましい活性化試薬は、テトラゾール及び活性化因子金である(Beckman Inst r.Inc.,Palo Alto,CA)。 活性化工程は、添加したヌクレオシド及びトリチルジオールシアノホスフィン 化合物の存在下で起こり、トリチルジオールシアノホスフィン化合物は常用の合 成法のヌクレオシドホスホルアミダイトに代わるものである。未反応鎖は終了さ せるか、または無水酢酸及びN−メチルイミダゾールのようなキャッピング試薬 でキャッピングする。 不安定な三価燐結合は、好ましくはヨウ素によって、オリゴヌクレオチドの安 定な五価ホスホジエステル結合に酸化する。 所期のオリゴヌクレオチド鎖アセンブリーが完成後、燐酸保護基を除去し、鎖 を固体支持体から分離し、塩基保護基を常法によって除去する。Gaits,上記、67 〜70。 本発明の化合物は、遺伝子発現メカニズムの変化に伴う遺伝疾患または遺伝病 を持つ哺乳類の治療に有用である。このような疾病の例は、HIV、サイトメガロ ウィルス、単純ヘルペス、B型肝炎、パピローマウィルス及びピコルナウィルス のようなウィルス感染;肺、結腸、子宮頸、乳房及び卵巣の癌;炎症性疾患;な らびに免疫系の疾患、たとえば、後天性免疫不全症候群(AIDS)、血液腫瘍及び 過増殖性疾患である。Armstrong,上記、89;Klausner,Biotechnology 8, 303 (1990)。 代表的な実施態様は、以下の例中で開示する。これらの例が長さ及び配列の異 なったヌクレオチドオリゴマーをするために標準的方法によって容易に修正でき ることは、当業者ならばわかるであろう。合成の標的は通常、ヌクレアーゼ分解 から保護すべき配列中または無能にすべき配列に相補的な配列中のグアノシンま たはアデノシンを各々、式VaまたはVbの残基に代えることによって選ぶもの とする。 本発明の化合物の構造は、合成の様式、元素分析、ならびに赤外分光学、核磁 気共鳴分光学及び質量分析法によって確認した。反応の過程ならびに生成物の同 一性及び均質性は、薄層クロマトグラフィーまたは高速液体クロマトグラフィー によって評価した。略語THFはテトラヒドロフランを、DMFはN,N−ジメチルホ ルムアミドを、iPrはイソプロピルを及びDMTは4,4′−ジメトキシトリチルを 表す。温度は摂氏度で示す。例1 9−メチルアデニン アデニン43.2g(0.23モル)と40%テトラブチルアンモニウムヒドロキシド水 溶液210mlとの混合物を室温で30分間攪拌し、塩化メチレン250mlを添加した。こ のヘテロ混合物に塩化メチレン200ml中ヨウ化メチル40ml(0.64モル)を添加し た。塩化メチレンをさらに450ml添加し、反応を10時間激しく攪拌した。反応を1 0℃に冷却し、形成された乳白色沈殿物から、塩化メチレン及び水を含む液相を デカントした。この沈殿物にメタノールを添加し、混合物を40℃までゆるやかに 加温し、10℃に冷却し、得られた粒状固体を濾去した。固体を水350mlから再結 晶して、9−メチルアデニン20.9gを生成した。例2 8−ブロモ−9−メチルアデニン 酢酸ナトリウム30.8g、水1.4l及びpHを4.0にするのに充分な量の酢酸から調 製した緩衝液1.5l中に、例1の9−メチルアデニン15g(0.1モル)を溶解させ た。この溶液に2時間にわたって水2l中臭素25mlを滴加した。反応をさらに2 時間攪拌し、得られた固体を濾去し、水ですすいだ。固体を風乾し、メタノール 約80ml中で約50℃に加温し、ストリッピングして濁りを帯びた懸濁液とし、濾過 した。沈殿物を水ですすいでから、一晩、減圧下で40℃において乾燥させたとこ ろ、重量が15.6gであった。濾液からメタノールをストリッピングし、さらに1. 6g採取した。一緒にした固体をアセトン約100ml中で3時間こね、次いで、一晩 放置した。得られた沈殿物を濾過し、アセトンで洗浄し、一晩、真空ポンプ上で 40℃において乾燥させた後、13.3gが得られた。例3 6−(ジベンゾイルアミノ)−8−ブロモ−9−メチル−プリン 例2の方法に従って製造した6−アミノ−8−ブロモ−9−メチルプリン34g (0.15モル)を無水ピリジン100ml中に溶解させ、ストリッピングした。残渣を ピリジン800ml中に再溶解させ、0〜10℃に冷却し、塩化ベンゾイル80ml(0.69 モル)を2時間の間に滴加した。反応混合物をさらに4時間、15℃において攪拌 し、少量の不溶性残渣から、炭酸水素ナトリウムで飽和された氷水中にデカント した。生成物を塩化メチレン約2.5l中に抽出し、硫酸マグネシウム上で乾燥さ せ、濾過し、そしてストリッピングした。残渣をトルエンで2回ストリッピング して、極微量のピリジンを除去し、酢酸エチル約150ml中に溶解させ、結晶種を 入れた。結晶化が始まった後、酢酸エチルをさらに70ml添加し、2時間後に、混 合物を冷却し、生成物約34gを濾取した。生成物を塩化メチレン約500ml中に溶 解させ、シリカゲル約400mlを通して濾過し、ストリッピング後、6−(ジベン ゾイルアミノ)−8−ブロモ−9−メチル−プリン21.5gを生成した。例4 6−(ベンゾイルアミノ)−9−メチル−8−〔5−(2,2,5−トリメチル −1,3−ジオキシアニル)メトキシ〕プリン 油中60%水素化ナトリウム1.5g(37.5ミリモル)の懸濁液に、V.W.Gash,J .Org.Chem.37,2197−2201(1972)の方法に従って製造した2,2,5−トリ メチル−5−〔1,3〕ジオキサンメタノール5.0g(31ミリモル)を添加した 。混合物を30℃で約1時間攪拌し、例3の8−ブロモ−6−(ジベンゾイルアミ ノ)−9−メチル−プリン12g(27ミリモル)を攪拌しながら添加した。90分後 、TLCは主に出発原料を示したので、さらに18ミリモルのヒドロキシメチルジオ キサンのナトリウム塩を添加した。混合物を35℃において12時間攪拌した。TLC は若干量の残留出発原料を示したので、さらに8ミリモルのナトリウム塩を添加 し、反応を35℃においてさらに4時間攪拌した。反応を10℃に冷却し、氷水と酢 酸エチルとの混合物中に滴下した。層を分離し、約400mlからなる水層を酢酸エ チル500mlで3回抽出した。酢酸エチル洗液を合し、硫酸マグネシウム上で乾燥 させ、濾過し、真空ポンプを用いてrotovap上でストリッピングして、粘稠な黄 色油18.4gを生成したが、それは依然として水素化ナトリウムからの鉱油を含ん でいた。油18.4gを、トリエチルアミン1mlを含む塩化メチレン400ml中に溶解 させ、シリカゲル250mlに適用した。若干量の不純物を徹底的にすすぎ、生成物 を0.2%トリエチルアミンを含むジクロロメタン中10%メタノールで溶離した。 黄色固体生成物8g及び生成物と若干のDMFからなる淡黄色ガム1.4gが得られた 。例5 6−ベンゾイルアミノ−8−〔3−ヒドロキシ−2−(ヒドロキシメチル)−2 −メチルプロポキシ〕−9−メチルプリン 前記例の黄色固体8gをジオキサン60ml中に溶解し、0.25M硫酸60mlを添加し た。反応を室温で2時間攪拌した後、室温に5日間放置した。トリエチルアミン を用いてpHを7.5に調整し、反応を35℃においてストリッピングした。反応をト ルエンで2回ストリッピングして、残りの水を除去した。残渣11gを塩化メチレ ン150ml中に溶解させ、シリカゲル445ml上でクロマトグラフ処理し、ジクロロメ タン中1〜10%のメタノールの勾配で溶離させた。ジクロロメタン中10%メタノ ールによって溶出する生成物を、酢酸エチルから再結晶して、6−(ベンゾイル アミノ)−8−〔3−ヒドロキシ−2−(ヒドロキシメチル)−2−メチルプロ ポキシ〕−9−メチルプリン5.25gを生成した。例6 化合物X:R2=メチル、X=酸素、Qa=Qa1、R7=メチル 例5からのジオール500mg(13.5ミリモル)のピリジン20ml中溶液を、室温で1 8時間、塩化ジメトキシトリチル500mg(14ミリモル)と共に攪拌し、メタノール 1mlを添加した。反応をさらに6時間攪拌し、炭酸水素塩飽和水溶液中に注入し た。生成物を塩化メチレンで3回抽出し、水洗し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ 、濾過し、トルエンで2回ストリッピングした。得られたガラスを約0.1%のト リエチルアミンを含む塩化メチレン中5%メタノール中に溶解させ、シリカゲル 上でクロマトグラフ処理し、塩化メチレン中1〜10%のメタノールの勾配で溶離 した。生成物は約0.1%のトリエチルアミンを含む塩化メチレン中約2〜5%の メタノールで溶出した。得られた泡を少量のメタノール中に溶解させ、次いで、 トリエチル アミン2滴及び水約10mlを添加し、得られた固体を濾別して、生成物530mgを生 成した。例7 化合物VI;R2=メチル、R4=ジイソプロピルアミノ、R5=シアノエチル、X =酸素、Qa=Qa1及びR7=メチル 例6の生成物とホスホルアミダイトとの縮合を、Sinha et al.Tett.Letters 24, 5843〜5846(1983)によって記載されたようにして実施した。0.5%トリエ チルアミンを含む窒素飽和酢酸メチルであらかじめ平衡させられたシリカゲルカ ラム上に直接、反応混合物を置いた。前記混合物で溶離すると、少量の出発原料 を含む生成物600mgが得られた。それを、0.5%トリエチルアミンを含む塩化メチ レン中窒素飽和20%酢酸エチルを用いてシリカゲル上で再びクロマトグラフ処理 して、純粋な生成物100mgが得られた。例8〜12 Applied Biosystems model 380B DNA合成装置上で標準法を用いて、例8〜12 のオリゴマーを合成した(修飾については概説した通りである)。全ての無事完 了したカップリングにおいて、例7からの非環式モノマーを5倍〜10倍過剰で用 いた。以下の表中において、A*は構造: の残基を示す。オリゴマーの純度は逆相及びイオン交換HPLCによっ て評価した。 例13 6−(ベンゾイルアミノ)−9−メチル−8−〔5−(2,2−ジメチル−1, 3−ジオキサニル)メトキシ〕プリン、IX:R2=H、R9+R10=イソプロピリ デン、X=O、Qa=Qa1、R7=CH3 例4と同様な方法によって、例3の8−ブロモ−6−(ジベンゾイルアミノ) −9−メチルプリン7.4g(17ミリモル)及び2,2−ジメチル−5−ヒドロキ シメチル−1,3−ジオキサン5.16g(35ミリモル)から、6−(ベンゾイルア ミノ)−9−メチル−8−〔5−(2,2−ジメチル−1,3−ジオキサニル) メトキシ〕プリン4.17gを合成した。例14 6−(ベンゾイルアミノ)−8−〔3−ヒドロキシ−2−(ヒドロキシメチル) プロポキシ〕−9−メチルプリン、IIa:R2=H、X=O、Qa=Qa1、R7=C H3 例5と同様な方法によって、例13のイソプロピリデン保護ジオール4.1gから 6−(ベンゾイルアミノ)−8−〔3−ヒドロキシ−2−(ヒドロキシメチル) プロポキシ〕−9−メチルプリン1.5gを合成した。生成物をメタノール/エー テルから再結晶した;m.p. :151〜153℃(一水和物として)。例15 N−(8−ブロモ−6,7−ジヒドロ−6−オキソ−3H−プリン−2−イル) −2−メチルプロパンアミド、XI:R8a=(CH32CHCO− 無水イソ酪酸100ml中8−ブロモグアニン3.45g(15ミリモル)の懸濁液を窒 素下で150℃において4時間、加熱し、冷却し、生成物3.6gを濾別した。生成物 をエーテルで洗浄し、例16で使用した。例16 N−(8−ブロモ−6,9−ジヒドロ−9−メチル−6−オキソ−3H−プリン −2−イル)−2−メチルプロパンアミド、VIIa:R7=CH3、R8a=(CH32C HCO− 例1と同様な方法によって、例15のN−(8−ブロモ−6,7−ジヒドロ−6 −オキソ−3H−プリン−2−イル)−2−メチルプロパンアミド3.0g(10ミ リモル)をN−(8−ブロモ−6,9−ジヒドロ−9−メチル−6−オキソ−1 H−プリン−2−イル)−2−メチルプロパンアミド610mgに転化した。m.p.:2 94℃(d)(クロロホルム/ヘキサンから)。例17 N−(8−ブロモ−6,9−ジヒドロ−6−オキソ−9−プロピル−3H−プリ ン−2−イル)−2−メチルプロパンアミド、VIIa:R7=n−プロピル、R8a =(CH32CHCO− 例16と同様な方法によって、ヨウ化メチルの代わりにヨウ化n−プロピルを用 いて、例15のN−(8−ブロモ−6,7−ジヒドロ−6−オキソ−3H−プリン −2−イル)−2−メチルプロパンアミドから、N−(8−ブロモ−6,9−ジ ヒドロ−6−オキソ−9− プロピル−3H−プリン−2−イル)−2−メチルプロパンアミドを合成できる と考えられる。例18 化合物IIa:R2=H、X=NCH3、Qa=Qa1、R7=CH3 例4と同様な方法によって、例3のブロモプリンと、2−メチルアミノ−1, 3−プロパンジオールのモノメチル化によって得られる2−〔(メチルアミノ) メチル〕−1,3−プロパンジオールとから、前記IIaの化合物が得られると考 えられる。例19 化合物IIa:R2=H、X=S、Qa=Qa1、R7=CH3 例4と同様な方法によって、例3のブロモプリンと5−メルカプトメチル−2 ,2−ジメチル−1,3−ジオキサンから、前記IIaの化合物が得られると考え られる。 5−メルカプトメチル−2,2−ジメチル−1,3−ジオキサンが対応するア ルコール(例4参照)から、ヨウ素/トリフェニルホスフィンによるヨウ素化と それに続く硫化ナトリウムによる置換によって合成できると考えられる。 本発明の代表的オリゴマーをヌクレアーゼ阻害、ハイブリッド形成及びmRNA翻 訳の阻害に関して試験した。ヌクレアーゼ安定性 アンチセンスオリゴヌクレオチドをそれらの安定性に関して、20mM HEPES緩衝 液を含むRPMI 1640細胞培養培地(完全培地)中で10%(v/v)ウシ胎児血清 (FBS)の存在下において評価した(未修飾オリゴヌクレオチドと比較した)。F BS及びヒト血清は3′-->5′エクソヌクレアーゼ活性を含むことが知られてい る。これは、FBS、ヒト血清及びヒト血漿中で検出することができた唯一のヌク レアーゼ活性である。オリゴヌクレオチドサンプルを完全培地中で 37℃において6時間にわたってインキュベートし、出発化合物の量を、HPLCに基 づく方法を用いて測定した。 例10の化合物はGEN−PAK FAX(Waters)陰イオン交換カラム上で2つの主ピー クとして溶出する。これらの2つのピークは、分子の予想されるR形及びS形を 表す。10%FBSの存在下で6時間後に、例10に関しては安定な反応生成物が観測 された。d(A)15の分解とは異なり、FBS関連3′-->5′エクソヌクレアーゼ 活性の進行は非環式残基で停止する。DNA/DNAデュプレックス融解温度の測定 Warsaw,Cantor,and Tinoco〔CRC Handbook of Biochemistry and Molecular Biology(G.D.Fasman,editor)1:589(1975)〕よって提示された方法及び 値を用いて計算された260nmにおける吸光係数を用いて、オリゴヌクレオチド濃 度を分光光度法によって測定した。等モル濃度のオリゴヌクレオチドとその相補 的配列を一緒にし(0.1mM EDTA,10mM燐酸ナトリウム、0.1 M Nacl,pH7.0中) 、80℃に加熱し、室温で徐々に冷却させた。サンプルを室温に約2.5時間放置し た。次いで、サンプルをサーモスタット制御ヒートブロック中で0.5℃/分(25 ℃〜75℃)の速度で加熱し、Perkin Elmer Lambda 4C UV分光光度計を用いて260 nmにおいて吸光度を監視した。A260測定値を15秒毎に取った。データを、RS/ 1データ分析ソフトウェアを用いる、データ分析用のDEC VAXに移した。dA260/ dT対温度のプロットからTmを求めた。TmはdA260/dTが極大である温度である。 結果を表2に示す。 例12(ジアステレオマー混合物)及びその相補鎖を一晩4℃でアニーリングし てから融解させ、温度上昇速度を18〜38℃の温度範囲にわたって0.1℃/分に設 定し、30秒ごとにA260測定値を取った。このデュプレックスに関する熱変性プ ロフィルは、それほど鋭敏ではなく、複数のdA260/dT極大が観測されたが;ハ イブリッド形成は起こったことがわかるであろう。ウサギα−グロビンmRNA翻訳の阻害 アンチセンスオリゴヌクレオチドの添加による、ウサギグロビンmRNA(Bethes da Res.Labs,Gaithersburg,MD)+/− 6.5単位/5μL E.coli RNase H (Boehringer Mannheim,Indianapolis,IN)の無細胞翻訳を、ウサギ網状赤血 球ライセート(Promega,Madison,WI)を総容量50μLで用いて実施した。各翻 訳反応に35S−メチオニン(New England Nuclear,Boston,MA)25μCiを添加 した 。翻訳を30℃において10分間インキュベートし、次いで、サンプルをドライアイ ス上でスナップフリーズした。α及びβグロビン鎖を、SDS−ポリアクリルアミ ドゲル電気泳動を用いて分離した。電気泳動緩衝液(0.1M燐酸ナトリウム、pH7 .2、SDS1.0g/L含有)を用いて15cmのゲルを調製した。それらは、アクリルア ミド12.5%及びビスアクリルアミド0.6%を含んでいた。翻訳反応のアリコート (1μL)を、電気泳動緩衝液、2−メルカプトエタノール1.1%、グリセロー ル2.5%及びブロモフェノールブルーからなるローディング緩衝液11μLで希釈 した。サンプルを、100℃に3分間加熱することによって変性させてから、ゲル 上にローディングした。ゲルを用いて30mAMPにおいて18時間実験した。電気泳動 後、ゲルをクーマシーブルーで染色し、乾燥させ、−70℃において16時間、オー トラジオグラフィーを行った。 α−グロビンの合成に対する、α−グロビンに関連したアンチセンスオリゴヌ クレオチドの作用の定量を、AT&T PC6300コンピュータに連結されたUItrascan XLレーザーデンシトメーター(LKB/Bromma)を用いてオートラジオグラフを走 査することによって行った。データを採取し、表示し、Gelscan XLデータ分析ソ フトウェアパッケージ(LKB/Bromma)を用いて積分した。オリゴマーの蛋白合 成に対する作用を対照αグロビン合成のパーセントとして表した。例8のオリゴ マーは、オリゴマー鎖濃度30μMで、RNAase Hの不存在下においては対照の74± 10%まで、RNase Hの存在下においては84±5%まで翻訳を阻害した。 本発明の医薬組成物は、本発明の1種またはそれ以上の化合物を1種またはそ れ以上の無毒性の生理的に許容され得る担体、補助剤または賦形剤(本明細書中 においてはこれらをひとまとめにして担体と称する)と共に非経口注射用、固体 または液体の形態の経口投 与用、直腸または局所投与用などの組成物に製剤化したものを含む。 組成物は、ヒト及び動物に経口、直腸、非経口(静脈内、筋肉内または皮下) 、槽内、膣内、腹腔内、局所(散剤、軟膏剤または点滴剤)投与することもでき るし、頬または鼻用噴霧剤として投与することもできる。 非経口注射に適当な組成物は、生理的に許容され得る水性または非水性の滅菌 溶液、分散液、懸濁液または乳濁液及び滅菌注射溶液もしくは分散液に再構成さ れる滅菌散剤を含むことができる。適当な水性及び非水性担体、希釈剤、溶剤ま たは賦形剤の例としては、水、エタノール、ポリオール(プロピレングリコール 、ポリエチレングリコール、グリセロールなど)、それらの適当な混合物、植物 油(例えば、オリーブ油)及び注射可能な有機エステル、例えば、オレイン酸エ チルが挙げられる。適当な流動性は、例えば、レシチンのようなコーティングの 使用、分散液の場合には必要な粒度の保持、及び界面活性剤の使用によって保持 できる。 これらの組成物はまた、補助剤、例えば、保存剤、湿潤剤、乳化剤及び分散助 剤を含むことができる。微生物の作用は、種々の抗菌剤及び抗真菌剤、たとえば 、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸などによって確実に防 止できる。等張化剤、たとえば、糖、塩化ナトリウムなどを添加するのも望まし い。注射用剤形の吸収の延長は、吸収を遅らせる薬剤、例えば、モノステアリン 酸アルミニウム及びゼラチンを用いれば可能である。 望ましくは、また、分布をより有効にするためには、化合物は徐放出系または 標的送達系、たとえば、ポリマーマトリックス、リポソーム及び微小球に取り込 ませることもできる。それらは、例えば、細菌固定フィルターを通して濾過する ことによって、または、使 用直前に滅菌水もしくは他のいくつかの滅菌注射用基材中に溶解できる滅菌固体 組成物の形態で滅菌剤を取り入れることによって滅菌できる。 経口投与用の固体剤形としては、カプセル剤、錠剤、丸剤、散剤及び顆粒剤が 挙げられる。このような固体剤形の場合には、活性化合物は、少なくとも1種の 常用の不活性賦形剤(または担体)、たとえば、クエン酸ナトリウムもしくは燐 酸二カルシウムまたは(a)充填剤または増量剤、例えば、澱粉、ラクトース、 スクロース、グルコース、マンニトール及び珪酸、(b)結合剤、例えば、カル ボキシメチルセルロース、アルギン酸塩、ゼラチン、ポリビニルピロリドン、ス クロース及びアラビアゴム、(c)保湿剤、例えば、グリセロール、(d)崩壊 剤、たとえば、寒天、炭酸カルシウム、ジャガイモまたはタピオカ澱粉、アルギ ン酸、ある種の複合珪酸塩及び炭酸ナトリウム、(e)溶解遅延剤、例えば、パ ラフィン、(f)吸収促進剤、例えば、第四アンモニウム化合物、(g)湿潤剤 、例えば、セチルアルコール及びモノステアリン酸グリセロール、(h)吸着剤 、たとえば、カオリン及びベントナイト、ならびに(i)滑沢剤、たとえば、タ ルク、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、固体ポリエチレン グリコール、ラウリル硫酸ナトリウムまたはそれらの混合物と混合する。カプセ ル剤、錠剤及び丸剤の場合には、剤形はさらに緩衝剤を含むことができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ギノッソ,チャールズ アメリカ合衆国,カリフォルニア 92083, ビスタ,エンチノ 313

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.式I: 〔式中、 R1は、水素またはオリゴヌクレオチド合成に適合するブロッキング基であり ; R2は、水素またはメチルであり; R3は、水素または−P(R4)OR5であり; R4は、塩素、4−ニトロイミダゾール、イミダゾール、テトラゾール、トリ アゾールまたはジ(低級アルキル)アミノ−であり; R5はメチル、2−シアノエチルまたは2,2,2−トリクロロエチルであり ; nは0〜2であり; Xは酸素、硫黄または−NR6であり; R6は水素または低級アルキルであり; Qは からなる群から選ばれ; R7は低級アルキルであり;且つ R8は水素、ベンゾイル、アニソイルまたは低級アルキルカルボニルである〕 の化合物。 2.R1及びR3が共に水素である請求の範囲第1項に係る化合物。 3.R7がメチルであり且つnが1である請求の範囲第2項に係る化合物。 4.Xが酸素である請求の範囲第3項に係る化合物。 5.請求の範囲第4項に係る、式 の化合物。 6.請求の範囲第4項に係る、式 の化合物。 7.式: 〔式中、R8はベンゾイルまたは低級アルキルカルボニルである〕 を有する、請求の範囲第1項に係る化合物。 8.R5がシアノエチルであり、nが1であり且つR4がジイソプロピルアミノ である請求の範囲第7項に係る化合物。 9.Xが酸素である請求の範囲第8項に係る化合物。 10.請求の範囲第9項に係る、式: の化合物。 11.1個またはそれ以上のヌクレオシドが式: 〔式中、 R2は、水素またはメチルであり; Xは酸素、硫黄または−NR6であり; nは0〜2であり; R6は水素または低級アルキルであり; Qは からなる群から選ばれ; R7は低級アルキルであり;且つ R8は水素、ベンゾイル、アニソイルまたは低級アルキルカルボニルである〕 の残基で置換された、塩基数約6〜約200のオリゴヌクレオチド配列を含んでな る化合物。 12.Xが酸素であり、且つnが1である請求の範囲第11項に係る化合物。 13.前記オリゴヌクレオチド配列が約12〜約24個の塩基を含んでなる請求の範 囲第12項に係る化合物。 14.前記オリゴヌクレオチド配列が15個の塩基を含んでなる請求の範囲第13項 に係る化合物。 15.請求の範囲第14項に係る、式: の化合物。 16.オリゴヌクレオチド内の1個またはそれ以上のヌクレオシドを式: 〔式中、 R2は、水素またはメチルであり; Xは酸素、硫黄または−NR6であり; nは0〜2であり; R6は水素または低級アルキルであり; Qは からなる群から選ばれる〕 の残基によって置換することを含んでなる、オリゴヌクレオチドのヌクレアーゼ 分解の阻害方法。 17.有効量の、請求の範囲第11項に係る化合物を供給することを含んでなる、 遺伝子発現の抑制方法。 18.有効量の、請求の範囲第13項に係る化合物を供給することを含んでなる、 遺伝子発現の抑制方法。 19.請求の範囲第11項に係る化合物及び医薬として許容され得る担体を含んで なる遺伝子発現抑制用組成物。 20.請求の範囲第13項に係る化合物及び医薬として許容され得る担体を含んで なる遺伝子発現抑制用組成物。
JP6522133A 1993-03-30 1994-03-21 非環式ヌクレオシド類似体及びそれらを含むオリゴヌクレオチド配列 Pending JPH08508492A (ja)

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