JPH09154591A - フェルラ酸の製造法 - Google Patents
フェルラ酸の製造法Info
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- JPH09154591A JPH09154591A JP34495595A JP34495595A JPH09154591A JP H09154591 A JPH09154591 A JP H09154591A JP 34495595 A JP34495595 A JP 34495595A JP 34495595 A JP34495595 A JP 34495595A JP H09154591 A JPH09154591 A JP H09154591A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】オイゲノールを原料としてフェルラ酸を効率よ
く蓄積し得る菌株および、この菌株を用いてフェルラ酸
を効率よく製造する方法を提供すること。 【解決手段】 オイゲノールのフェルラ酸への変換能を
有する菌株を用いて、オイゲノールを基質とする休止菌
体反応を行い、反応液中のオイゲノールを効率的にフェ
ルラ酸に変換させる。
く蓄積し得る菌株および、この菌株を用いてフェルラ酸
を効率よく製造する方法を提供すること。 【解決手段】 オイゲノールのフェルラ酸への変換能を
有する菌株を用いて、オイゲノールを基質とする休止菌
体反応を行い、反応液中のオイゲノールを効率的にフェ
ルラ酸に変換させる。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、オイゲノールを資
化する菌株をオイゲノールが含まれた休止菌体反応液中
で、接触させ、オイゲノールをフェルラ酸に変換させ、
休止菌体反応液からフェルラ酸を得ることを特徴とする
フェルラ酸の製造法に関する。
化する菌株をオイゲノールが含まれた休止菌体反応液中
で、接触させ、オイゲノールをフェルラ酸に変換させ、
休止菌体反応液からフェルラ酸を得ることを特徴とする
フェルラ酸の製造法に関する。
【0002】
【背景技術】フェルラ酸は植物の細胞壁の構成成分であ
り、医薬品、化粧品、農薬、食品添加物、飼料添加物、
液晶等の原料として広範な用途が期待されている物質で
ある。フェルラ酸はバニリンとマロン酸の縮合反応によ
ってできることが知られている(ジャーナル・オブ・ア
メリカン・ケミカル・ソサエティ74巻5346頁(1
952年))が、この方法は製造に3週間程かかるので
工業的な方法ではない。米糠廃油等をアルカリ加水分解
してフェルラ酸を得る方法も知られているが(特告平7
−78032号公報)、この製法もコストが高くつき、
実用的ではない。一方、安価なオイゲノールを微生物に
作用させてバニリン関連物質を製造する試みがなされて
いるが、(特開平5−227980号公報、特開平3−
30683号公報、特開昭62−190092号公報、
アグリカリチュラル・バイオロジカル・ケミストリー4
1巻925−929頁(1977年)及び同誌47巻2
639−2640頁(1983年))いずれもバニリン
またはバニリン酸は生成するものの、フェルラ酸の効率
的な製造には成功していない。また、これらの方法は、
微生物を培養した後の培養液からフェルラ酸を精製して
得るもので、コストと時間を要し実用的ではない。
り、医薬品、化粧品、農薬、食品添加物、飼料添加物、
液晶等の原料として広範な用途が期待されている物質で
ある。フェルラ酸はバニリンとマロン酸の縮合反応によ
ってできることが知られている(ジャーナル・オブ・ア
メリカン・ケミカル・ソサエティ74巻5346頁(1
952年))が、この方法は製造に3週間程かかるので
工業的な方法ではない。米糠廃油等をアルカリ加水分解
してフェルラ酸を得る方法も知られているが(特告平7
−78032号公報)、この製法もコストが高くつき、
実用的ではない。一方、安価なオイゲノールを微生物に
作用させてバニリン関連物質を製造する試みがなされて
いるが、(特開平5−227980号公報、特開平3−
30683号公報、特開昭62−190092号公報、
アグリカリチュラル・バイオロジカル・ケミストリー4
1巻925−929頁(1977年)及び同誌47巻2
639−2640頁(1983年))いずれもバニリン
またはバニリン酸は生成するものの、フェルラ酸の効率
的な製造には成功していない。また、これらの方法は、
微生物を培養した後の培養液からフェルラ酸を精製して
得るもので、コストと時間を要し実用的ではない。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】フェルラ酸には広範な
用途が期待できるものの、フェルラ酸の実用的な製造方
法が見いだされていなかったため、その利用が妨げられ
ていた。本発明者らは、かかる課題を解決するために鋭
意検討した結果、オイゲノールを資化する微生物を土壌
より探索し、得られた菌株を用いてオイゲノールを基質
とする休止菌体反応を行い、反応液中のオイゲノールを
効率的にフェルラ酸に変換させる方法を見いだした。す
なわち、本発明は、オイゲノールを原料としてフェルラ
酸を効率よく蓄積し得る菌株および、この菌株を用いて
フェルラ酸を効率よく製造する方法を提供することを目
的としている。
用途が期待できるものの、フェルラ酸の実用的な製造方
法が見いだされていなかったため、その利用が妨げられ
ていた。本発明者らは、かかる課題を解決するために鋭
意検討した結果、オイゲノールを資化する微生物を土壌
より探索し、得られた菌株を用いてオイゲノールを基質
とする休止菌体反応を行い、反応液中のオイゲノールを
効率的にフェルラ酸に変換させる方法を見いだした。す
なわち、本発明は、オイゲノールを原料としてフェルラ
酸を効率よく蓄積し得る菌株および、この菌株を用いて
フェルラ酸を効率よく製造する方法を提供することを目
的としている。
【0004】
(1)オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有する菌
株を、オイゲノールが含まれた休止菌体反応液中でオイ
ゲノールと接触させて該オイゲノールをフェルラ酸に変
換させ、これを採取することを特徴とするフェルラ酸の
製造法。 (2)オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有する菌
株がシュードモナス・フルオレッセンス(Pseudomonas f
luorescens) E118(FERM P-15185)である前記第1項記
載のフェルラ酸の製造法。 (3)オイゲノールが含まれた休止菌体反応液が水不溶
性有機溶媒を1種以上含んだものである前記第1項記載
のフェルラ酸の製造法。 (4)水不溶性有機溶媒が、炭素数が6から20までの
飽和炭化水素またはトルエンである前記第3項記載のフ
ェルラ酸の製造法。 (5)オイゲノールが含まれた休止菌体反応液が界面活
性剤を1種以上含んだものである前記第1項、第3項ま
たは第4項のいずれか1項記載のフェルラ酸の製造法。 (6)オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有するシ
ュードモナス・フルオレッセンス(Pseudomonas fluores
cens) E118(FERM P-15185)。
株を、オイゲノールが含まれた休止菌体反応液中でオイ
ゲノールと接触させて該オイゲノールをフェルラ酸に変
換させ、これを採取することを特徴とするフェルラ酸の
製造法。 (2)オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有する菌
株がシュードモナス・フルオレッセンス(Pseudomonas f
luorescens) E118(FERM P-15185)である前記第1項記
載のフェルラ酸の製造法。 (3)オイゲノールが含まれた休止菌体反応液が水不溶
性有機溶媒を1種以上含んだものである前記第1項記載
のフェルラ酸の製造法。 (4)水不溶性有機溶媒が、炭素数が6から20までの
飽和炭化水素またはトルエンである前記第3項記載のフ
ェルラ酸の製造法。 (5)オイゲノールが含まれた休止菌体反応液が界面活
性剤を1種以上含んだものである前記第1項、第3項ま
たは第4項のいずれか1項記載のフェルラ酸の製造法。 (6)オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有するシ
ュードモナス・フルオレッセンス(Pseudomonas fluores
cens) E118(FERM P-15185)。
【0005】土壌よりオイゲノールのフェルラ酸への変
換能を有する菌を得る方法としては、オイゲノールを単
一炭素源とした培養液で公知の方法により集積培養を行
うのがよい。たとえば、集積培養液50mLに土壌試料
2gを入れ28℃で7ないし10日間培養し、得られた
培養液一滴をさらに新たに調製した同一組成の培養液に
移し7ないし10日間培養する。同じ操作をさらに3回
繰り返し、最終の培養液中のフェルラ酸を薄層クロマト
グラフィー等の方法で測定する。該培養液から、フェル
ラ酸を検出できた菌、すなわち、オイゲノールのフェル
ラ酸への変換能を有する菌を得る。
換能を有する菌を得る方法としては、オイゲノールを単
一炭素源とした培養液で公知の方法により集積培養を行
うのがよい。たとえば、集積培養液50mLに土壌試料
2gを入れ28℃で7ないし10日間培養し、得られた
培養液一滴をさらに新たに調製した同一組成の培養液に
移し7ないし10日間培養する。同じ操作をさらに3回
繰り返し、最終の培養液中のフェルラ酸を薄層クロマト
グラフィー等の方法で測定する。該培養液から、フェル
ラ酸を検出できた菌、すなわち、オイゲノールのフェル
ラ酸への変換能を有する菌を得る。
【0006】オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有
する菌であればいかなる微生物でも本発明に利用できる
が、特に活性の高いE118株が好ましい。E118株は、グ
ラム陰性のかん菌で運動性があり芽胞を生成しない。普
通ブイヨン寒天平板培地で30℃、72時間培養した時
のコロニーの性状は3乃至4mmの直径で鈍黄色、円
形、全縁状、半透明、低い凸状であり、蛍光色素を産生
した。37及び41℃で生育せず、カタラーゼ、オキシ
ダーゼ活性がともに陽性、ブドウ糖OF試験では陰性で
あった。これらの結果から、E118株はシュードモナス
・フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)と同定
し、工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託した。寄
託番号はFERM P-15185である。
する菌であればいかなる微生物でも本発明に利用できる
が、特に活性の高いE118株が好ましい。E118株は、グ
ラム陰性のかん菌で運動性があり芽胞を生成しない。普
通ブイヨン寒天平板培地で30℃、72時間培養した時
のコロニーの性状は3乃至4mmの直径で鈍黄色、円
形、全縁状、半透明、低い凸状であり、蛍光色素を産生
した。37及び41℃で生育せず、カタラーゼ、オキシ
ダーゼ活性がともに陽性、ブドウ糖OF試験では陰性で
あった。これらの結果から、E118株はシュードモナス
・フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)と同定
し、工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託した。寄
託番号はFERM P-15185である。
【0007】本発明において、フェルラ酸は以下のよう
にして製造される。まず、休止菌体反応に用いる菌体を
得るために、オイゲノール資化菌をオイゲノールを含ん
だ培養液で好気的に培養する。培養液は、オイゲノール
を含んでいて本菌が生育するものであればいかなるもの
でも良いが、好ましくは、オイゲノールを0.1から
0.4%(v/v)、しょ糖0.5から3%(w/
v)、ペプトン0.05から0.2%(w/v)、硫酸
マグネシウム7水塩0.01から0.1%(w/v)、
酵母エキス0.1から1%(w/v)及び金属塩混液
0.05から0.2%(v/v)からなり、pH6.5
から8.0の培養液が用いられる。金属塩混液は脱イオ
ン水1L中に塩化カルシウム2水塩0.4g、ほう酸
0.3g,硫酸銅5水塩0.04g,よう化カリウム
0.1g,硫酸第一鉄7水塩0.2g,硫酸マンガン7
水塩0.4g,モリブデン酸ナトリウム2水塩0.2g
を溶かした溶液からなるものが好ましい。培養は30℃
で18から48ないし72時間通気攪拌培養する。培養
後、培養液を遠心分離またはろ過などして菌体を得、得
られた菌体0.5g(湿重量)に対して、1Mリン酸カ
リウム緩衝液(pH7.0)1mLの割合で懸濁し、菌
体懸濁液を調製する。休止菌体反応のための反応液は、
菌体懸濁液と中性付近の緩衝液および反応基質であるオ
イゲノールが含まれるものであればいかなる組成のもの
でも良い。反応液中のオイゲノールの濃度は、菌体に対
して毒性を現さない5から10mM程度のものが好まし
い。オイゲノールが反応液から消費されて無くなる場合
は逐次、反応液に添加しても良い。
にして製造される。まず、休止菌体反応に用いる菌体を
得るために、オイゲノール資化菌をオイゲノールを含ん
だ培養液で好気的に培養する。培養液は、オイゲノール
を含んでいて本菌が生育するものであればいかなるもの
でも良いが、好ましくは、オイゲノールを0.1から
0.4%(v/v)、しょ糖0.5から3%(w/
v)、ペプトン0.05から0.2%(w/v)、硫酸
マグネシウム7水塩0.01から0.1%(w/v)、
酵母エキス0.1から1%(w/v)及び金属塩混液
0.05から0.2%(v/v)からなり、pH6.5
から8.0の培養液が用いられる。金属塩混液は脱イオ
ン水1L中に塩化カルシウム2水塩0.4g、ほう酸
0.3g,硫酸銅5水塩0.04g,よう化カリウム
0.1g,硫酸第一鉄7水塩0.2g,硫酸マンガン7
水塩0.4g,モリブデン酸ナトリウム2水塩0.2g
を溶かした溶液からなるものが好ましい。培養は30℃
で18から48ないし72時間通気攪拌培養する。培養
後、培養液を遠心分離またはろ過などして菌体を得、得
られた菌体0.5g(湿重量)に対して、1Mリン酸カ
リウム緩衝液(pH7.0)1mLの割合で懸濁し、菌
体懸濁液を調製する。休止菌体反応のための反応液は、
菌体懸濁液と中性付近の緩衝液および反応基質であるオ
イゲノールが含まれるものであればいかなる組成のもの
でも良い。反応液中のオイゲノールの濃度は、菌体に対
して毒性を現さない5から10mM程度のものが好まし
い。オイゲノールが反応液から消費されて無くなる場合
は逐次、反応液に添加しても良い。
【0008】界面活性剤あるいは水不溶性有機溶媒を反
応液中に添加すると休止菌体反応が促進され、20から
80mMのさらに高濃度のオイゲノールをフェルラ酸に
転換することができる。界面活性剤は菌体に対して毒性
を持たず休止菌体反応を活性化するものであればいかな
るものでも良いが、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪
酸エステル、デオキシコール酸、ドデシル硫酸ナトリウ
ム、臭化セチルトリメチルアンモニウム、塩化ドデシル
トリメチルアンモニウム、3−[(3−コラミドプロピ
ル)ジメチルアンモニオ]−1−プロパンスルホン酸、
n−オクチルグルコピラノシド、ポリオキシエチレンア
ルキルフェニルエーテル、アルコキシポリオキシエチレ
ンリン酸エステルの内のいずれかを反応液中に0.1か
ら5%(w/w)の間の濃度で添加するのが好ましい。
水不溶性有機溶媒は炭素数が6から20までの直鎖状飽
和炭化水素あるいはトルエンのいずれかを反応液中に2
から30%(w/w)の間の濃度で添加するのが好まし
い。
応液中に添加すると休止菌体反応が促進され、20から
80mMのさらに高濃度のオイゲノールをフェルラ酸に
転換することができる。界面活性剤は菌体に対して毒性
を持たず休止菌体反応を活性化するものであればいかな
るものでも良いが、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪
酸エステル、デオキシコール酸、ドデシル硫酸ナトリウ
ム、臭化セチルトリメチルアンモニウム、塩化ドデシル
トリメチルアンモニウム、3−[(3−コラミドプロピ
ル)ジメチルアンモニオ]−1−プロパンスルホン酸、
n−オクチルグルコピラノシド、ポリオキシエチレンア
ルキルフェニルエーテル、アルコキシポリオキシエチレ
ンリン酸エステルの内のいずれかを反応液中に0.1か
ら5%(w/w)の間の濃度で添加するのが好ましい。
水不溶性有機溶媒は炭素数が6から20までの直鎖状飽
和炭化水素あるいはトルエンのいずれかを反応液中に2
から30%(w/w)の間の濃度で添加するのが好まし
い。
【0009】休止菌体反応は25から35℃の間の温度
でオイゲノールをもはや消費しなくなるまでの時間、反
応液を振とうあるいは攪拌して行う。この時間は反応器
の容積、反応液中の菌体の量、オイゲノールの量によっ
ても異なるが、好ましくは2から18時間の間、振とう
あるいは攪拌する。反応液と等量のメタノールを反応液
に加えて休止菌体反応を停止する。炭化水素を添加した
場合は静置してデカンテーション等により炭化水素を取
り除く。その後、遠心分離またはろ過にて反応液から菌
体を除去し上清を得る。次に、公知の方法により上清か
らフェルラ酸を分離し精製する。すなわち、上清に塩酸
を滴加してフェルラ酸の粗結晶を得る。粗結晶を少量の
熱水に溶かし、冷却して再結晶を得る。再結晶を繰り返
して精製フェルラ酸を得る。本願発明の、休止菌体反応
からのフェルラ酸の精製は、先願の培養上清からの精製
と異なり、培地成分や代謝物が極めて少なく、カラム・
クロマトグラフィーが不要であり、非常に容易である。
でオイゲノールをもはや消費しなくなるまでの時間、反
応液を振とうあるいは攪拌して行う。この時間は反応器
の容積、反応液中の菌体の量、オイゲノールの量によっ
ても異なるが、好ましくは2から18時間の間、振とう
あるいは攪拌する。反応液と等量のメタノールを反応液
に加えて休止菌体反応を停止する。炭化水素を添加した
場合は静置してデカンテーション等により炭化水素を取
り除く。その後、遠心分離またはろ過にて反応液から菌
体を除去し上清を得る。次に、公知の方法により上清か
らフェルラ酸を分離し精製する。すなわち、上清に塩酸
を滴加してフェルラ酸の粗結晶を得る。粗結晶を少量の
熱水に溶かし、冷却して再結晶を得る。再結晶を繰り返
して精製フェルラ酸を得る。本願発明の、休止菌体反応
からのフェルラ酸の精製は、先願の培養上清からの精製
と異なり、培地成分や代謝物が極めて少なく、カラム・
クロマトグラフィーが不要であり、非常に容易である。
【0010】
【実施例】つぎに、実施例により本発明を具体的に説明
する。本発明はこれらの実施例にのみ限定されるもので
はない。
する。本発明はこれらの実施例にのみ限定されるもので
はない。
【0011】フェルラ酸は以下の方法により同定した。 1)薄層クロマトグラフィーによる同定 実施例で調製した上清のベンゼン−ジオキサン−酢酸
(90:25:4、v/v)で展開した薄層クロマトグ
ラフィーのスポットのRf値を測定し、標準のフェルラ
酸のRf値である0.52と比較した。 2)核磁気共鳴スペクトルによる同定 実施例で得られた試料をジメチルスルホキシドに溶かし
たものをトリメチルシリル化したのち核磁気共鳴スペク
トル法で測定し、標準のフェルラ酸のδ値である3.8
0、6.28(J=16Hz)、6.73(J=8H
z)、7.20、7.44(J=16Hz)及び9.4
6ppmと比較した。 3)質量分析スペクトルによる同定 試料の質量分析スペクトルの親ピークを測定し、標準の
フェルラ酸の親ピーク、194m/zと比較した。 4)赤外吸収スペクトルによる同定 試料の赤外吸収スペクトルと標準のフェルラ酸の赤外吸
収スペクトルと比較した。
(90:25:4、v/v)で展開した薄層クロマトグ
ラフィーのスポットのRf値を測定し、標準のフェルラ
酸のRf値である0.52と比較した。 2)核磁気共鳴スペクトルによる同定 実施例で得られた試料をジメチルスルホキシドに溶かし
たものをトリメチルシリル化したのち核磁気共鳴スペク
トル法で測定し、標準のフェルラ酸のδ値である3.8
0、6.28(J=16Hz)、6.73(J=8H
z)、7.20、7.44(J=16Hz)及び9.4
6ppmと比較した。 3)質量分析スペクトルによる同定 試料の質量分析スペクトルの親ピークを測定し、標準の
フェルラ酸の親ピーク、194m/zと比較した。 4)赤外吸収スペクトルによる同定 試料の赤外吸収スペクトルと標準のフェルラ酸の赤外吸
収スペクトルと比較した。
【0012】実施例1 シュードモナス・フルオレッセンスE118 FERM P-15185
をオイゲノール0.15%(V/V)、しょ糖1%(W
/V)、ペプトン0.1%(W/V)、りん酸2カリウ
ム0.2%(W/V)、硫酸マグネシウム7水塩0.0
5%(W/V)、酵母エキス0.03%(W/V)及び
金属塩混合液0.1%(V/V)からなるpHを7.0
に調製した培養液1Lで24時間、通気攪拌培養した。
金属塩混合液として脱イオン水1L中に塩化カルシウム
2水塩0.4g、ほう酸0.3g,硫酸銅5水塩0.0
4g,よう化カリウム0.1g,硫酸第一鉄7水塩0.
2g,硫酸マンガン7水塩0.4g,モリブデン酸ナト
リウム2水塩0.2gを溶かした溶液を用いた。培養後
の培養液を遠心分離して得た菌体を生理食塩水で洗浄
し、生理食塩水に懸濁し、菌体懸濁液を得た。得られた
菌体懸濁液の濃度は0.5g(湿重量)/mLであっ
た。この菌体懸濁液1mLに、1Mりん酸カリウム緩衝
液(pH7.0)0.2mLとオイゲノールを10mM
となるよう添加し、脱イオン水で2mLにした反応液
を、30℃で2時間振とうした。その後、2mLのメタ
ノールをこの反応液に加えて反応を停止した後、遠心分
離して菌体を除去し、上清について上記の方法でフェル
ラ酸の同定を行い、また、高速液体クロマトグラフィー
でフェルラ酸の定量分析を行った。高速液体クロマトグ
ラフィーは、サイズが4.6×150mmのODS C
18カラムを用い、メタノール:脱イオン水:酢酸=4
5:52:3の成分比の溶出液を毎分1.0mLの流速
で流して展開し、280nmでの吸光度を検出した。標
準のフェルラ酸の保持時間である3.4分付近のピーク
をフェルラ酸とした。この結果、9.8mMのフェルラ
酸が検出され、変換率は98%であった。
をオイゲノール0.15%(V/V)、しょ糖1%(W
/V)、ペプトン0.1%(W/V)、りん酸2カリウ
ム0.2%(W/V)、硫酸マグネシウム7水塩0.0
5%(W/V)、酵母エキス0.03%(W/V)及び
金属塩混合液0.1%(V/V)からなるpHを7.0
に調製した培養液1Lで24時間、通気攪拌培養した。
金属塩混合液として脱イオン水1L中に塩化カルシウム
2水塩0.4g、ほう酸0.3g,硫酸銅5水塩0.0
4g,よう化カリウム0.1g,硫酸第一鉄7水塩0.
2g,硫酸マンガン7水塩0.4g,モリブデン酸ナト
リウム2水塩0.2gを溶かした溶液を用いた。培養後
の培養液を遠心分離して得た菌体を生理食塩水で洗浄
し、生理食塩水に懸濁し、菌体懸濁液を得た。得られた
菌体懸濁液の濃度は0.5g(湿重量)/mLであっ
た。この菌体懸濁液1mLに、1Mりん酸カリウム緩衝
液(pH7.0)0.2mLとオイゲノールを10mM
となるよう添加し、脱イオン水で2mLにした反応液
を、30℃で2時間振とうした。その後、2mLのメタ
ノールをこの反応液に加えて反応を停止した後、遠心分
離して菌体を除去し、上清について上記の方法でフェル
ラ酸の同定を行い、また、高速液体クロマトグラフィー
でフェルラ酸の定量分析を行った。高速液体クロマトグ
ラフィーは、サイズが4.6×150mmのODS C
18カラムを用い、メタノール:脱イオン水:酢酸=4
5:52:3の成分比の溶出液を毎分1.0mLの流速
で流して展開し、280nmでの吸光度を検出した。標
準のフェルラ酸の保持時間である3.4分付近のピーク
をフェルラ酸とした。この結果、9.8mMのフェルラ
酸が検出され、変換率は98%であった。
【0013】実施例2 実施例1に準拠して得た菌体懸濁液1mL,1Mりん酸
カリウム緩衝液(pH7.0)0.2mLに、オイゲノ
ール及び各種の界面活性剤のうち1種を添加し、オイゲ
ノールを40mM及び界面活性剤を2%(W/W)とな
るよう脱イオン水で2mLにした反応液を、30℃で3
時間振とうした。ただし塩化ドデシルトリメチルアンモ
ニウムは0.25%(w/w)を添加した。界面活性剤
を含まない休止菌体反応液についても、同時に並行して
行った。2mLのメタノールを加えて反応を停止した
後、遠心分離して菌体を除去し、上清について実施例1
に準拠して、高速液体クロマトグラフィーで分析した。
その結果、表1に示すように、実験に用いた各種界面活
性剤の、休止菌体によるフェルラ産の生成促進効果が認
められた。
カリウム緩衝液(pH7.0)0.2mLに、オイゲノ
ール及び各種の界面活性剤のうち1種を添加し、オイゲ
ノールを40mM及び界面活性剤を2%(W/W)とな
るよう脱イオン水で2mLにした反応液を、30℃で3
時間振とうした。ただし塩化ドデシルトリメチルアンモ
ニウムは0.25%(w/w)を添加した。界面活性剤
を含まない休止菌体反応液についても、同時に並行して
行った。2mLのメタノールを加えて反応を停止した
後、遠心分離して菌体を除去し、上清について実施例1
に準拠して、高速液体クロマトグラフィーで分析した。
その結果、表1に示すように、実験に用いた各種界面活
性剤の、休止菌体によるフェルラ産の生成促進効果が認
められた。
【0014】
【表1】
【0015】実施例3 実施例1に準拠して得た菌体懸濁液1mLに、1Mりん
酸カリウム緩衝液(pH7.0)0.2mLと、オイゲ
ノール及び各種水不溶性有機溶媒を添加し、オイゲノー
ルが40mM及び各種水不溶性有機溶媒が20%(W/
W)となるよう脱イオン水で2mLにした反応液を30
℃で20分間振とうした。有機溶媒を含まない休止菌体
反応液についても、同時に並行して行った。2mLのメ
タノールを加えて反応を停止した後、5分間静置した。
休止菌体反応液の下層を取り出して、それを遠心分離し
て菌体を除去し、上清について実施例1に準拠して、高
速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、表2
に示すように実験に用いた各種の水不溶性有機溶媒によ
る休止菌体のフェルラ酸生成反応の促進効果が認められ
た。
酸カリウム緩衝液(pH7.0)0.2mLと、オイゲ
ノール及び各種水不溶性有機溶媒を添加し、オイゲノー
ルが40mM及び各種水不溶性有機溶媒が20%(W/
W)となるよう脱イオン水で2mLにした反応液を30
℃で20分間振とうした。有機溶媒を含まない休止菌体
反応液についても、同時に並行して行った。2mLのメ
タノールを加えて反応を停止した後、5分間静置した。
休止菌体反応液の下層を取り出して、それを遠心分離し
て菌体を除去し、上清について実施例1に準拠して、高
速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、表2
に示すように実験に用いた各種の水不溶性有機溶媒によ
る休止菌体のフェルラ酸生成反応の促進効果が認められ
た。
【0016】
【表2】
【0017】実施例4 実施例1に準拠して得た菌体懸濁液10mLに、1Mり
ん酸カリウム緩衝液(pH7.0)2mLとオイゲノー
ル及びツィーン20を添加し、オイゲノールが20mM
及びツィーン20が2%(W/W)となるよう脱イオン
水で20mLにした反応液を30℃で振とうした。2時
間後、反応液中のオイゲノール濃度を測定したところ、
オイゲノールががなくなっていたので、20mMとなる
ようオイゲノールを反応液に添加した。反応開始から4
時間後および7時間後にも同様に反応液中にオイゲノー
ルがなくなっていたので、20mMとなるようにオイゲ
ノールを逐次添加した。12時間反応後、20mLのメ
タノールを加えて反応を停止した後、遠心分離して菌体
を除去し、上清を得た。上清に塩酸を滴加してpHを4
とし、1夜静置してフェルラ酸の粗結晶を得た。粗結晶
を1mLの熱水に溶かし、塩酸を滴加してpHを4と
し、冷却して再び結晶を得た。同じ操作をもう一度繰り
返して精製フェルラ酸0.2gを得た。フェルラ酸の同
定は上記の方法により行った。
ん酸カリウム緩衝液(pH7.0)2mLとオイゲノー
ル及びツィーン20を添加し、オイゲノールが20mM
及びツィーン20が2%(W/W)となるよう脱イオン
水で20mLにした反応液を30℃で振とうした。2時
間後、反応液中のオイゲノール濃度を測定したところ、
オイゲノールががなくなっていたので、20mMとなる
ようオイゲノールを反応液に添加した。反応開始から4
時間後および7時間後にも同様に反応液中にオイゲノー
ルがなくなっていたので、20mMとなるようにオイゲ
ノールを逐次添加した。12時間反応後、20mLのメ
タノールを加えて反応を停止した後、遠心分離して菌体
を除去し、上清を得た。上清に塩酸を滴加してpHを4
とし、1夜静置してフェルラ酸の粗結晶を得た。粗結晶
を1mLの熱水に溶かし、塩酸を滴加してpHを4と
し、冷却して再び結晶を得た。同じ操作をもう一度繰り
返して精製フェルラ酸0.2gを得た。フェルラ酸の同
定は上記の方法により行った。
【0018】
【発明の効果】本願発明によって、オイゲノールを原料
としてフェルラ酸を効率よく多量に製造できる。
としてフェルラ酸を効率よく多量に製造できる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:39)
Claims (6)
- 【請求項1】オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有
する菌株を、オイゲノールが含まれた休止菌体反応液中
でオイゲノールと接触させて該オイゲノールをフェルラ
酸に変換させ、これを採取することを特徴とするフェル
ラ酸の製造法。 - 【請求項2】オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有
する菌株がシュードモナス・フルオレッセンス(Pseudom
onas fluorescens) E118(FERM P-15185)である請求項
1記載のフェルラ酸の製造法。 - 【請求項3】オイゲノールが含まれた休止菌体反応液が
水不溶性有機溶媒を1種以上含んだものである請求項1
記載のフェルラ酸の製造法。 - 【請求項4】水不溶性有機溶媒が、炭素数が6から20
までの飽和炭化水素またはトルエンである請求項3記載
のフェルラ酸の製造法。 - 【請求項5】オイゲノールが含まれた休止菌体反応液が
界面活性剤を1種以上含んだものである請求項1、請求
項3または請求項4のいずれか1項記載のフェルラ酸の
製造法。 - 【請求項6】オイゲノールのフェルラ酸への変換能を有
するシュードモナス・フルオレッセンス(Pseudomonas f
luorescens) E118(FERM P-15185)。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34495595A JPH09154591A (ja) | 1995-12-05 | 1995-12-05 | フェルラ酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34495595A JPH09154591A (ja) | 1995-12-05 | 1995-12-05 | フェルラ酸の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09154591A true JPH09154591A (ja) | 1997-06-17 |
Family
ID=18373290
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP34495595A Pending JPH09154591A (ja) | 1995-12-05 | 1995-12-05 | フェルラ酸の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH09154591A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1999049068A1 (fr) * | 1998-03-24 | 1999-09-30 | Chisso Corporation | Procede de production de 1-substitues-3-methoxy-4-oxybenzenes |
| CN116179433A (zh) * | 2023-01-06 | 2023-05-30 | 四川轻化工大学 | 一种荧光假单胞菌Aw10及应用 |
-
1995
- 1995-12-05 JP JP34495595A patent/JPH09154591A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1999049068A1 (fr) * | 1998-03-24 | 1999-09-30 | Chisso Corporation | Procede de production de 1-substitues-3-methoxy-4-oxybenzenes |
| CN116179433A (zh) * | 2023-01-06 | 2023-05-30 | 四川轻化工大学 | 一种荧光假单胞菌Aw10及应用 |
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