JPH09508111A

JPH09508111A - Ｂ型肝炎ウイルス感染症の治療のための１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ−ｄ−グルシトールのｎ−アルキル誘導体の使用

Info

Publication number: JPH09508111A
Application number: JP7519024A
Authority: JP
Inventors: エム．ブロック，ティモシー; エス．ブラムバーグ，バルチ; エイ．ドウェク，レイモンド
Original assignee: ジー．ディー．サールアンドカンパニー; モンサントカンパニー
Priority date: 1994-01-13
Filing date: 1994-12-23
Publication date: 1997-08-19
Anticipated expiration: 2020-03-09
Also published as: ATE186836T1; EP0739205B1; EP0739205A1; DK0739205T3; CN1149253A; ES2140652T3; DE69421828D1; CA2181033A1; DE69421828T2; US6037351A; CA2181033C; WO1995019172A1; PT739205E; JP3628021B2; CN1074921C; AU1403795A; KR100348657B1; GR3032527T3

Abstract

(57)【要約】感染した宿主に１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ−Ｄ−グルシトールのＮ−アルキル誘導体（ここで、アルキル基は３〜６個の炭素原子を含有する）を投与することを含んでなる、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染症の治療のための方法が開示される。

Description

【発明の詳細な説明】Ｂ型肝炎ウイルス感染症の治療のための１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ− Ｄ−グルシトールのＮ−アルキル誘導体の使用関連出願への相互参照本願は、１９９４年１月１３日出願の同時係属出願第０８／１８１，５１９号の一部継続出願である。発明の背景本発明は、Ｂ型肝炎ウイルスを阻害する新規な方法、より詳しくは、Ｂ型肝炎ウイルスに感染した細胞中のＢ型肝炎ウイルスの複製と分泌を阻害するための１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ−Ｄ−グルシトールのＮ−アルキル誘導体の使用に関する。Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）は、急性および慢性肝疾患の原因物質である［アヨーラ（Ayoola）ら，Bull. World Health Organ. 66，443-455(1988)］。Ｂ型肝炎の有効な予防接種が利用可能であるが［現在利用可能な２つのＨＢＶワクチンは、メルク（Merck）のリコンビバックスＨＢ（Recombivax HB）とスミスクライン・ビーチャム（SmithKline Beecham）のエンゲリックス−Ｂ（Engerix-B）である］、世界中にはこのウイルスに慢性感染した人がなお３００万人以上存在する［エダー（Eder）ら、「肝臓疾患の進展（Progress in Liver Diseases）」、ポッパーとシャフナー（Popper and Schaffner）編（グルンとストラットン（ Grune & Stratton）、オーランド、フロリダナ州、第８巻、367〜394（1986）］。彼らにとって、ワクチンは全く治療的価値はない。感染性疾患のための国家財団（National Foundation for Infectious Diseases）の専務理事であるリチャード・デュマ博士（Dr. Richard Duma）によれば、米国単独でも年間推定３００，０００例のＨＢＶ感染が発生している［Med. World News 34(8)，20-21（1993 ）］。ＨＢＶに慢性に感染している人の２５〜４０％は重篤な肝臓疾患を発症する。従って有効な抗ＨＢＶ治療法を見い出すことは重要である。アルファインターフェロンはＨＢＶ感染の治療に使用されており、少数の患者で有望な結果をあげている［フーフナグルとジョーンズ（Hoofnagle and Jones ），Seminars in Liver Disease 9，231-233（1989）；およびペリロ（Perrillo ），Seminars in Liver Disease 9，240-248（1989）］。現在米国ＦＤＡにより承認されている慢性ＨＢＶ感染症に対する唯一の治療法は、組換えインターフェロンアルファ−２ｂ（イントロンＡ（Intron A）、シェーリング・プラウ（Sche ring-Plough））である。慢性Ｂ型肝炎の治療のための、ヌクレオシド類似体であるファイアルウリジン（fialuridine）の使用に関する臨床試験は、２０名中６名の患者で薬剤に関連した肝機能不全が発現したため、現在中断している。従って、Ｂ型肝炎の安全な薬剤治療が極めて必要とされている。最近の報告は、逆転写酵素として機能するこのウイルスがコードするＤＮＡポリメラーゼが魅力ある標的であることを示唆している［ドゥーング（Doong）ら，Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88,8495-8499（1991）；リー（Lee）ら，Antimi crob. Agent Chem．33 ，336-339(1989)；プライス（Price）ら，Proc．Natl．Ac ad．Sci．USA 86 ，8541-8544（1989）；およびベンカテスワラン（Venkateswara n）ら，Proc.Natl．Acad．Sci．USA 84,274-278(1987)］。他のウイルスが介在する過程は、ウイルス介入の標的にはなっていない。ＨＢＶに対する有効な抗ウイルス治療は、宿主の免疫系に影響する薬剤や、ウイルスの生活環の異なる段階を妨害する薬剤を含む多数の戦略を必要とする。従って、ウイルスの生活環におけるポリメラーゼが介在しない他の段階が治療的介入の影響を受けやすいという可能性を探究することは興味深い。１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ−Ｄ−グルシトール（１−デオキシノジリマイシンまたはＤＮＪとしても知られている）およびそのＮ−アルキル誘導体は、Ｎ結合オリゴ糖処理酵素であるα−グルコシダーゼＩおよびIIの公知の阻害剤である。サウニアー（Saunier）ら，J．Biol．Chem．257，14155-14161（1982 ）；エルベイン（Elbein），Ann．Rev．Biochem．56，497-534（1987）。グルコース類似体として、これらもグルコシルトランスフェラーゼを阻害する能力を有する。ニューブラン（Newbrun）ら，Arch．Oral Biol．28，516-536（1983）；ワング（Wang）ら，Tetrahedron Lett．34，403-406(1993)。これらのグルコシダーゼに対する阻害活性により、これらの化合物は抗高血糖剤および抗ウイルス剤として。例えば、ＰＣＴ国際出願ＷＯ８７／０３９０９および米国特許：第４，０６５，５６２号；第４，１８２，７６７号；第４，５３３，６６８号；第４，６３９，４３６号；第４，８４９，４３０号；第４，９５７，９２６号；第５，０１１，８２９号；および第５，０３０，６３８号を参照。Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）に及ぼす阻害剤の影響に関する検討は、アッセイ目的のための許容細胞培養系がなかったため、現在まであまりされていない。すなわち、組織培養物をこのウイルスで充分に感染させて繁殖させることができなかったことが、有用な抗ＨＢＶ剤の発見にとって重大な制限になっていた。１つの検討で、Ｎ−メチルデオキシノジリマイシンが、マウス肝炎ウイルス（ＭＨＶ）の形成を阻害し、従って細胞表面上のＥ２の出現を遅延させることが報告されている。レップ（Repp）ら，J．Biol．Chem．280，15873-15879（1985）；ダテマ（Datema）ら，Pharmac．Ther．33，221-286，260で(1987)を参照。しかし、ＭＨＶはＢ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）とは関連がない。一方で、ＨＢＶはヘパドナウイルス（Hepadnavirus）族の一員であって人の小さなウイルス病原体である。ＨＢＶの大きさは約４２ｎＭであり、３．５ｋｂの大きさのＤＮＡゲノムを含んでいる。他方で、ＭＨＶはコロナウイルス族の一員であり、（上気道感染を引き起こすヒトコロナウイルス病原体は普通に見られるものであるが）ヒトに対して病原性のない大きなＲＮＡ含有ウイルスである。ＭＨＶの大きさは、約１００〜１５０ｎＭ（どちらかというと多面発現性である）であり、約３０ｋｂの大きさのＲＮＡゲノムを含んでいる。ＨＢＶとＭＨＶの間にはほとんど類似性がない。コロナウイルス（ＭＨＶを含む）のさらなる背景情報と完全な説明は、ケー・ホルムズ（K．Holmes）、「ウイルス学（Virology）」、第２版、ビー・フィールズ（B． Fields）編、841-856、ラベン出版（Raven Press）、ニューヨーク、ニューヨーク州、1990を参照されたい。１つのウイルスから別のウイルスによる結果を予測できないことは、Ｄ型肝炎ウイルス（ＨＤＶ）分泌はＨＢＶｓＡｇグリコシル化に依存しなかったという２つの異なる研究グループによる最近の報告から明らかである。「Ｂ型肝炎ウイルスの分子生物学（Molecular Biology of Hepatitis B Viruses）」、１９９４年１０月３〜６日、パスツール研究所（Institut Pasteur）、パリ、フランスの１９９４年ミーティングで発表された論文の抄録集中のダブリュー・フイ−リン（W．Hui-Lin）らの抄録１１５およびシー・グルー（C．Gureau）らの抄録１１７。ＨＤＶはそれ自体のエンベロープ蛋白を指定しない。これは、ＨＢＶと同じ細胞に感染し、ＨＢＶＳ抗原（ＨＢＶエンベロープ蛋白）を使用して感染性の成熟したＨＤＶ粒子を作る。区別のため、ＨＢＶ分泌はグリコシル化とグリカントリミングに依存する。すなわち、ＨＢＶとＨＤＶは同じエンベロープ蛋白を含むが、ＨＤＶ分泌はグリコシル化非依存性であり、一方ＨＢＶはグリコシル化に対して非常に感受性である。Ｂ型肝炎ウイルス細胞培養系に及ぼすグリコシル化阻害剤であるツニカマイシン（tunicamycin）の影響がパイザー（Pizer）ら，J．Virol．34，134-153（198 0）；ダテマ（Datema）らの上記文献（270で）により記載されている。しかし、ツニカマイシンは、残念なことに新規に合成されたポリペプチドへのＮ結合オリゴ糖の付加を完全に防止する。すなわち、ツニカマイシンで処理すると、蛋白のＮ結合グリコシル化の完全な阻害が起こり、細胞に対して非常に毒性である。さらに、ＨＢＶ感染細胞のツニカマイシン処理は、ＨＢＶ分泌の有意な低下を引き起こさなかった。発明の簡単な説明本発明により、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）に感染した細胞においてこのウイルスを阻害するための方法が提供される。本方法は、ＨＢＶビリオンの複製と分泌を阻害するのに有効な量の、１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ−Ｄ−グルシトールのＮ−アルキル誘導体（ここで、該アルキル基は、３〜６個の炭素原子を含有する）による該細胞の処理を含む。好ましくはＮ−アルキル基はブチルである。本発明の好ましい例示的実施例において、Ｎ−ブチル−１，５−ジデオキシ− １，５−イミノ−Ｄ−グルシトール（ＮＢ−ＤＮＪ）はＨＢＶ粒子の分泌を抑制し、安定にトランスフェクションしたＨｅｐＧ２．２．１５細胞およびＨＢＶ感染ＨｅｐＧ２細胞の両方でＨＢＶＤＮＡの細胞内保持を引き起こすことが示される。ＨｅｐＧ２細胞は、周知の広範に分布している容易に入手可能なヒト肝癌細胞である。ＨｅｐＧ２細胞株の樹立と性状解析は、米国特許第４，３９３，１３３号に記載されている。この細胞株の試料も、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（American Type Culture Collection）、ロックビル（Rockville ）、メリーランド州から寄託番号ＡＴＣＣＨＢ８０６５で、およびヨーロッパ動物細胞培養物寄託機関（European Collection of Animal Cell Cultures）、ポートンダウン（Porton Down）、英国からも入手可能である。これらの細胞は、種々の蛋白（例えば、ブローズとミレティッヒ（Broze and Miletich），Pr oc．Natl．Acad．Sci．USA 84，1886-1890（1987）、および米国特許第４，９９６，８５２号、第５，１０６，８３３号および第５，２１２，０９１号による、リポ蛋白関連凝固インヒビター（lipoprotein associated coagulation inhibit or）（ＬＡＣＩ）としても知られる、組織因子インヒビター（ＴＦＩ））の供給源として使用されている。ＨｅｐＧ２．２．１５細胞は、ＨｅｐＧ２細胞の誘導体であり、セルズ（Sell s）ら，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84，1005-1009（1987）により記載されるように調製される。ＨＢＶ産生細胞のツニカマイシン処理が、正常なＨＢＶ粒子分泌をもたらしたことが以前に報告されていたため、本発明の方法によるＨＢＶ粒子の分泌の抑制は最も予期できないものであった。グリッポン（Grippon）ら，Mol．Biol．HBV ，サンジエゴ、カリフォルニア州、抄録６７ページ（１９９２）を参照。ウイルスの一部の構成体でなくＨＢＶビリオンの分泌が、ツニカマイシンにより阻害されることは、本発明者らにより見い出された。本発明の方法による処理から起こる細胞内ＨＢＶＤＮＡの増加も予期できないことであった。ＨＢＶエンベロープ蛋白は、分子当り１つか２つのＮ結合グリカンしか含有しないため、ＤＮＪのＮ−アルキル誘導体による、このような適度に（重量で）グリコシル化された蛋白とこれらのビリオン生成物の分泌を阻害する能力は、重度にグリコシル化されたエンベロープ蛋白を含有するＨＩＶの分泌に及ぼすこれらの影響が少ないことに対照させると、驚くべきことであった。また予期せず、大きなコカルボキシ末端蛋白のＬＨＢｓ、および中間のＭＨＢｓを含有するＨＢＶビリオンおよび粒子が、小さいＳＨＢｓの豊富な粒子よりもＮ−ブチルＤＮＪに対してより感受性であることを見い出した。定義されたＤＮＪのＮ−アルキル誘導体の使用における別の利点は、これらが比較的毒性がないことである。例えば、Ｎ−ブチル誘導体はＨＩＶ複製の阻害に有効な濃度（ＥＣ₅₀＝４３μＭ）で非毒性（ＴＤ₅₀＞５ｍＭ）であることが知られている。例えば、ブリアント（Bryant）ら、第１０回国際ＡＩＤＳ会議の抄録（Abstracts of 10th International Conference on AIDS）、ベルリン、１９９３年６月７〜１１日を参照。また本発明では、ＨＢＶに感染し、１０００μｇ／ｍｌのＤＮＪのＮ−ブチル誘導体で処理したＨｅｐＧ２．２．１５細胞の９０％が、未処理対照と同様に生存活性を有することが証明される。本発明で証明された結果により、ＨＢＶビリオンの輸送またはグリコシル化トリミング経路における段階を阻害する他の化合物も、組織培養物および哺乳動物宿主におけるＨＢＶの形態形成を阻害するのに有用であろうと考えられる。発明の詳細な説明本明細書は、本発明を形成するものと認識される主題を詳しく指摘して明確に請求する請求の範囲により完結するのであるが、本発明は、下記の内容の添付図面と関連させた以降の例示的な詳細な説明からさらに良く理解されるものと考えられる。図１は、ＨＢＶエンベロープ蛋白の遺伝子地図を示す。一番上の線は、図示されたｐｒｅＳ１、ｐｒｅＳ２およびＳドメインを有するＨＢｓ遺伝子の線状地図を示す。この地図の下の数字は、ドメインの境界をアミノ酸数として示す。この数は異なるＨＢＶ株により変化する。右のカラムの百分率は、各ＨＢｓのノン− 、モノ−、およびジ−グリコシル化蛋白の画分を示す。値は、ガーリッチとブラス（Gerlich and Bruss）、「Ｂ型肝炎ウイルスの分子生物学（Molecular Biolo gy of Hepatitis B Virus）」、エー・マクラクラン（A.McLachlan）編、ＣＲＣ出版（CRC Press）、１０９〜１４４ページ（１９９２）、および「臨床実践におけるＢ型肝炎ワクチン（Hepatitis B Vaccines in Clinical Practice）」、アール・ダブリュー・エリス（R.W．Ellis）編、マーセルデッカー社（Marcel Dekker，Inc．）、４１〜８２ページ（１９９２）からのものである。図２は、図２Ａおよび２Ｂの２部からなり、Ｎ−ブチルデオキシノジリマイシン（ＮＢＤＮＪ）で処理した培地および培養細胞中のＨＢＶＤＮＡのオートラジオグラムを示す。ＨｅｐＧ２．２．１５細胞を、指示された濃度のＮＢＤＮＪの存在下で培地を１回交換して６日間増殖させた。６日目の後（培養７日目）、細胞と培地を回収した。ＨＢＶプローブへの膜のハイブリダイゼーションにより検出したウイルスＤＮＡのオートラジオグラムを示す。図２Ａ：ＮＢＤＮＪなしの培地（レーン１および２）；および下記のＮＢＤＮＪ濃度：２００μｇ／ｍｌ（レーン３）；５００ｐｇ／ｍｌ（レーン４）；および１０００μｇ／ｍｌ（レーン５）の培地中で維持された２．２．１５細胞の培地から回収したＤＮＡのサザンブロットのオートラジオグラム。図２Ｂ：ＮＢＤＮＪの非存在下（レーン１）および下記のＮＢＤＮＪ濃度の存在下で維持した細胞からのＥｃｏＲＩで完全に消化した全細胞内ＤＮＡのサザンブロットのオートラジオグラム：レーン２：２００μｇ／ｍｌ；レーン３：５００μｇ／ｍｌ；レーン４：１０００μｇ／ｍｌ。レーン５：未処理２．２．１５細胞から調製されたビリオンから単離されたＥｃｏＲＩ消化ＤＮＡ。レーン６：ハイブリダイゼーション対照としてのプラスミドＤＮＡ。矢印：解けた（relaxed）環状ＨＢＶゲノム（Ａ）と線状化された３．２ｋｂゲノム（Ｂ）の予測移動度を示す。図３は、図３Ａ、３Ｂ、３Ｃおよび３Ｄの４部からなり、ＨＢＶに感染してＮＢＤＮＪで処理したＨｅｐＧ２細胞の細胞および培地中のＨＢＶＤＮＡのゲル電気泳動とヒストグラムを示す。図３Ａおよび図３Ｃ：ＭＨＢｓに対するモノクローナル抗体で免疫沈降したビリオンからのＤＮＡを、ポリメラーゼチェーン反応（ＰＣＲ）で増幅してアガロースゲル電気泳動により解像した。レーン１：分子量マーカー；レーン２：ブランク；レーン３：ＮＢＤＮＪを添加していない細胞からの培地；レーン４および５：２００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪを添加した細胞からの培地；レーン６および７：５００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ；レーン８および９：７００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ；レーン１０および１１：１０００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ。これらのバンドは、デンシトメトリーにより画像化した。ピーク下の面積を図３Ｃに示す。ここに各ＮＢＤＮＪ濃度の２つの試料の平均をプロットした。図３Ｂおよび図３Ｄ：図３ＡでＨＢＶにより感染してＮＢＤＮＪで処理した培養物の細胞内区画からのＤＮＡをＰＣＲにより増幅した。各レーンは、下記の試料からの増幅されたＤＮＡを含有する：レーン１および２：ＮＢＤＮＪなし；レーン３および４：２００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ；レーン５および６：５００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ；レーン７および８：７００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ；レーン９および１０：１０００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪ。図３Ｄ：図３Ｂのゲルのデンシトメトリーによりトレースした平均させたピークの下の面積のヒストグラム。図４は、図４Ａ、４Ｂ、４Ｃ、４Ｄ、４Ｅおよび４Ｆの６部からなり、分画していない培地および部分的に精製したビリオン調製物中に存在するＨＢＶ抗原を示す。酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）を使用して、示された試料の等容量をＨＢＶエンベロープ抗原について試験した。３日間の培養物からの分画していない培地（図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃ）、または部分的に精製したウイルス（図４Ｄ、４Ｅおよび４Ｆ）の試料を、ＨＢＶＳＨＢｓ（「Ｓ」）（図４Ａおよび４Ｄ）、ＬＨＢｓ：「ＰｒｅＳ１」（図４Ｂおよび４Ｅ）またはＭＨＢｓ「ＰｒｅＳ２」（図４Ｃおよび４Ｆ）エピトープについて試験した。培養物を、ミリモル濃度単位で表したＸ軸に示されるＮＢＤＮＪの示された濃度中で維持した。比較のため、２．２８ｍＭはほぼ５００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪに等しい。Ｙ軸は、プレートリーダーで読んだ任意のＯＤ単位のＥＬＩＳＡ反応の比色法のシグナルを示す。図５は、図５Ａ、５Ｂおよび５Ｃの３部からなり、ＮＢＤＮＪ処理および未処理培養物の培地中のＬＨＢｓおよびＭＨＢｓのウェスタンブロット解析を示す。培地のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）沈降物（図５Ａ）またはＮＢＤＮＪで処理していない（図５Ｃ）およびＮＢＤＮＪ処理した（図５Ｂ）培養物からの部分的に精製したビリオン、ＨＢｓの糸状体と球体を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１３．５％アクリルアミド）により解像して、イモビリン（immobilin）ペーパーに移してＰｒｅＳ１およびPｒｅＳ２特異的モノクローナル抗体と共にインキュベートした。 − レーンは図５の各部の一番上に示されるとおりである。ヒト血清から精製した１．０μｇのＨＢＶ遺伝子型Ｄが対照として使用される。 − キロダルトン（ｋｄ）で表した分子量マーカー（ｍｗ）が、図５の各部の右側に示される。 − 左の矢印は、ＬＨＢｓ（Ｓ１）およびＭＨＢｓ（Ｓ２）ポリペプチドを示す。ＨＢＶエンベロープは、大（ＬＨＢｓ）、中（ＭＨＢｓ）および小（ＳＨＢｓ）蛋白と呼ばれる３つのコカルボキシ末端蛋白（ＨＢｓ）を含有する（図１参照）。これらの蛋白は、単一の読み取り枠（ＯＲＦ）を交互に翻訳開始させることにより得られる［ガネム（Ganem）、「ヘパドナウイルス（Hepadnaviruses）」、メイソンとシーガー（Mason and Seeger）編（シュプリンガー・フェアラーク（Springer-Verlag））、６１〜８４ページ（１９９１）］。３つ全てのＨＢｓ蛋白は、Ｓドメインのアミノ酸１４６で複合型Ｎ結合オリゴ糖化物として存在する［図１と、ガーリッチとブラス（Gerlich and Bruss）、「Ｂ型肝炎ウイルスの分子生物学（Molecular Biology of Hepatitis B Virus）」、エー・マクラクラン（A．McLachlan）編、ＣＲＣ出版（CRC Press）、１０９〜１４４ページ（１９９２）、および「臨床実践におけるＢ型肝炎ワクチン（Hepatitis B Vacc ines in Clinical Practice）」、アール・ダブリュー・エリス（R.W．Ellis）編、マーセルデッカー社（Marcel Dekker，Inc．）、４１〜８２ページ（１９９２）を参照］。ＭＨＢｓも（ＬＨＢｓでは異なる）ｐｒｅＳ２ドメイン内でハイブリッド型オリゴ糖化物として存在する。ＨＢＶによる自然感染では、肝臓は大過剰のＨＢｓ蛋白を産生し、これらは直径２０ｎＭの糸状体または球体のウイルス構成粒子として分泌される［ガネム（Ganem）、「ヘパドナウイルス（Hepadnaviruses）」、メイソンとシーガー（Mason and Seeger）編（シュプリンガー・フェアラーク（Springer-Verlag））、６１〜８４ページ（１９９１）；および「臨床実践におけるＢ型肝炎ワクチン（Hepatitis B Vaccines in Clinical Practice）」、上記文献］。ＨＢｓ球体は、最も豊富に存在し、ＨＢｓ糸状体やＨＢＶ粒子よりも、５〜１０倍ＬＨＢｓの含有量が少ない。ＭＨＢｓは、３つ全ての型の粒子の中で少ない成分である［ガーリッチとブラス（Gerlich and Bruss）、「Ｂ型肝炎ウイルスの分子生物学（Molecular Biology of Hepatitis B Virus）」、および「臨床実践におけるＢ型肝炎ワクチン（Hepatitis B Vaccines in Clinical P ractice）」、上記文献］。ＨＢＶの形態形成は複雑である。前もって構成されたウイルスコア粒子は、小胞体（ＥＲ）膜中に挿入されているウイルスエンベロープ（表面）蛋白の細胞質ゾル側に付着すると考えられる［ガーリッチとブラス（Gerlich and Bruss）、「Ｂ型肝炎ウイルスの分子生物学（Molecular Biology of Hepatitis B Virus）」、および「臨床実践におけるＢ型肝炎ワクチン（Hepatitis B Vaccines in Cl inical Practice）」、上記文献］。エンベロープ獲得後、ビリオンはＥＲの内腔に出芽して、ここからゴルジ装置を通って細胞外液に輸送される。未成熟な糖蛋白は、３つの末端グルコース残基をＮ結合オリゴ糖上に含有する。末端グルコース残基の脱離は、ＥＲからゴルジへの未成熟糖蛋白の移動に重要な役割を果たすと考えられる［ダテマとロメロ（Datema and Romero），Pharmac ol．Therra．33 ，221-286（1987）］。イミノ糖であるＮＢＤＮＪは、発生したオリゴ糖から末端グルコース残基を脱離する細胞内酵素であるα−グルコシダーゼＩの強力な阻害剤であり、細胞毒性のヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）のインビトロの形成を抑制することが見い出された［カーパス（Karpas）ら，Pr oc．Natl．Acad．Sci．USA 85 ，9229-9233（1988）；米国特許第４，８４９，４３０号；およびウォーカー（Walker）ら，Proc．Natl．Acad．Sci．USA84，8120 -8124（1987）］。ＨＢＶ分泌には、両方ともＮ結合オリゴ糖を有するＬＨＢｓとＳＨＢｓを要するため、ＮＢＤＮＪのウイルス合成に及ぼす影響を試験した。さらに本発明を例示するために、下記の詳細な実施例を行ったが、これらの具体的な実施例またはそこに記載される詳細に本発明が限定されると理解してはならない。実施例方法：細胞と培地：ＨｅｐＧ２細胞をヨーロッパ動物細胞培養物寄託機関（European Collection of Animal Cell Cultures）（ポートンダウン（Porton Down）、英国）から購入した。ＨｅｐＧ２．２．１５細胞［２．２．１５、セルズとチェン（Sells and Chen）,Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84，1005-1009（1987）］はジョージ・アクス（George Acs）博士（マウント・サイナイ医科大学（Mt．Sinai Medical Co llege）、ニューヨーク、米国）から得た。全ての組織培養物は、５％ＣＯ₂で、１０％熱不活化ウシ胎児血清（テクジェン（Techgen）、ロンドン、英国）、５０単位／ｍｌのペニシリンとストレプトマイシン、１ｍＭグルタミン（ギブコ（GIBCO））を補足したＲＰＭＩ１６４０（ギブコ（GIBCO））培地中で維持した。２．２．１５細胞については、セルズとチェン（Sells and Chen），Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84，1005-1009（19 87）のように、２００μｇ／ｍｌの抗生物質Ｇ４１８（ゲンチシン（Genticin）、ギブコ（GIBCO））を培地に添加した。細胞生存率は、プラットとジェーコブ（Platt and Jacob），Eur．J．Biochem ．208 ，187-193（1992）のように、ヨウ化プロピジウムと共にインキュベーション後、ファックスキャン・サイトメーター（FACscan cytometer）（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）、サニーベール（Sunnyvale）、カリフォルニア州、米国）を使用してフローサイトメトリーにより測定した。ＨｅｐＧ２細胞の感染：ヒト血清または培養細胞の培地から、超遠心分離後ショ糖４０％と４６％（ｗ／ｗ）の間の沈降によりＨＢＶを精製した［サイファー（Seifer）ら，Virol．1 79 ，300-311(1990)］。０．０２Ｍリン酸カリウム緩衝液、ｐＨ７．４でビリオンを透析し、濃縮し、３７℃で一晩Ｖ８プロテアーゼ（黄色ブドウ球菌（Staphy lococcus aureus ）由来、シグマ化学（Sigma Chemical Co.））で処理して、２０％ショ糖／０．０１Ｍトリス、ｐＨ７．４、０．１４ＭＮａＣｌ、０．００５ＭＥＤＴＡ（ＴＮＥ）緩衝剤で８時間遠心分離した。ペレットを増殖培地に再懸濁して、次いでＨｅｐＧ２細胞を接種するために使用した。イミノ糖化合物ＮＢＤＮＪの合成は、周知であり、フリート（Fleet）ら，FEBS Letters 237, 128-132(1988)に記載されている。ＮＢＤＮＪは、化合物ＳＣ−４８３３４としてジー・ディー・サール（G.D．Searle）／モンサント社（Monsanto Co.）より提供された。ウイルスＤＮＡの検出セルズとチェン（Sells and Chen），Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84，1005- 1009（1987）のように、約５×１０⁶細胞からの培地を、清澄化後、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）８０００（シグマ（Sigma））と共に沈殿させて、０．５ｍｌのリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）に再懸濁して、ＰＢＳ中の２０％ショ糖の緩衝剤によりベックマン（Beckman）Ｔ１００．３ローター中で５０，０００ｒｐｍ（約７５，０００×ｇ）で５時間沈降させた。セルズとチェン（Sells and Chen），Proc．Natl．Acad．Sci．USA 84，1005- 1009（1987）のように、このペレットからＤＮＡを調製した。サザンブロット［マニアティス（Maniatis）ら、「分子クローニング、実験室マニュアル（Molecu lar cloning，a laboratory manual）」、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Cold Spring Harbor Laboratory）、コールド・スプリング・ハーバー、ニューヨーク（１９８２）］については、１．２％アガロースで電気泳動してＤＮＡを分離し、Ｈ＋ボンド（アマーシャム（Amersham））濾紙に移し、放射活性³²Ｐ（アマーシャム（Amersham））ＨＢＶプローブ［ｐＨＢＶを鋳型として使用してキット製造業者（アマーシャム（Amersham））により記載されたランダムプライミング方法により製造］とハイブリダイズさせた［フォスター（Foster）ら，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 88，2888-2892（1991）］。血清から得られるＨＢＶで感染したＨｅｐＧ２細胞の培地中の子孫ウイルスは、ＰｒｅＳ２エピトープに対するモノクローナル抗体と共に培地を沈殿させることにより検出した。免疫沈降したビリオンからのＤＮＡを、ウイルスゲノムに関するヌクレオチド２８１５および１９０からのプライマーを使用（ＥｃｏＲＩ部位をヌクレオチド１として使用）して、ポリメラーゼチェーン反応（ＰＣＲ）により増幅した。ＤＮＡは、［マニアティス（Maniatis）ら、「分子クローニング、実験室マニュアル（Molecular cloning，a laboratory manual）」、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー（Cold Spring Harbor Laboratory）、コールド・スプリング・ハーバー、ニューヨーク（１９８２）］により記載された標準方法により、細胞溶解物から調製した。酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）によるＨＢＶ蛋白の検出本発明に使用したモノクローナル抗体は、周知のものであり、以下の文献に記載されている：ヒアマン（Heerman）ら，J．Virol．52，396-402（1984）（ＰｒｅＳ１対する抗体（ＭＡ１８／７））；ヒアマン（Heerman）ら，Intervirology 28 :14-21（1987）（PｒｅＳ２に対する抗体（Ｑ１９／１０））、また、ガーリッチとブラス（Gerlich and Bruss）、「Ｂ型肝炎ウイルスの分子生物学（Molec ular Biology of Hepatitis B Virus）」、エー・マクラクラン（A．McLachlan ）編、ＣＲＣ出版（CRC Press）、１０９〜１４４ページ（１９９２）、および「臨床実践におけるＢ型肝炎ワクチン（Hepatitis B Vaccinesin Clinical Prac tice）」、アール・ダブリュー・エリス（R.W．Ellis）編、マーセルデッカー社（Marcel Dekker，Inc．）、４１〜８２ページ（１９９２）も参照；およびヒアマン（Heerman）ら、「ウイルス性肝炎および肝臓疾患（Viral Hepatitis and L iver Disease）」、ズッカーマン（Zuckermann）編、エー・アール・リス（A.R．Liss）、６９７〜７０１（１９８８）（Ｓに対する抗体（Ｃ２０−２））。ＬＨＢｓ、ＭＨＢｓまたはＳＨＢｓエピトープに特異的なモノクローナル抗体でコーティング（４℃で一晩）したマイクロタイターウェル中で試料をインキュベートして、ＰＢＳ中の１％ＢＳＡでブロッキングした。ウイルス試料と共に１時間（３７℃）インキュベーション後、プレートをＰＢＳ／０．１％ツイン２０非イオン性界面活性剤で４回洗浄した。ペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ＨＢｓ抗体（ベーリング（Behring））と共にインキュベーションし、次にオルトフェニレンジアミン（０．３３ｍｇ／ｍｌのＰＢＳ−過酸化物溶液）中で発色させることにより、結合した抗原を検出した。ベーリング（Behring）プレートリーダーで吸光度を読んだ。精製したウイルスと全培地の試験は、正確な定量を保証するために、連続試料希釈で行った。ウェスタンブロット：グルテキンとヒアマン(Gultekin and Heerman），Analytical Biochem. 172， 320-329（1989）に記載のように、試料を展開緩衝液に溶解して、１３．５％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の電気泳動により分離し、ＰＶＤＦ（ミリポア（Millipore））膜に移して５％粉末ミルクでブロッキングした。製造業者の説明書に記載されているように、一次抗体と共にＴＮＥ中の１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）中で室温で一晩、および二次抗体（ペルオキシダーゼ結合ヤギ抗マウスＩｇＧ血清）とＴＮＥ中で室温で１時間インキュベーション後、膜を過酸化物−ジアミノベンジジン（シグマ（Sigma））ＰＢＳ中で発色させた。結果ＮＢＤＮＪは２．２．１５細胞により培地中に放出されるＨＢＶＤＮＡ関連ビリオンの量を低下させる：２．２．１５細胞はＨｅｐＧ２株から得られ、培地中にウイルス構成粒子と共に感染性ＨＢＶ（ＨＢｓ粒子と球体）を慢性的に分泌する［ヒアマン（Heerman ）ら，J．Virol．52，396-402（1984）；およびセルズ（Sells）ら，Proc．Natl ．Acad．Sci．USA 84 ，1005-1009（1987）］。ＨＢＶの産生と分泌に及ぼすＮＢＤＮＪの影響を測定するために、ある範囲のＮＢＤＮＪ濃度を含有する培地中で、３日目に１回培地交換をして６日間２．２．１５細胞を維持した。混合物中６日後、ＤＮＡをウイルスから単離した（上記「方法」に記載される通り）。図２Ａに示すように、放射性標識ＨＢＶＤＮＡプローブへのサザンブロットハイブリダイゼーションによりウイルスＤＮＡを検出した。ゆるんだ（relaxed）環および線状ゲノム長ＤＮＡの予期される移動度で遊走するウイルス特異的ＤＮＡ［セルズ（Sells）ら，J．Virol．62，2836-2844(198 8)］は、未処理培地から得られた試料（レーン１および２）で検出された。ＮＢＤＮＪで処理した細胞の培地から得られたウイルス特異的ＤＮＡには明らかな用量依存的低下が見られる（レーン３、４および５）。図２Ａに示されるオートラジオグラフは、デンシトメトリーにより定量した。デンシトメトリーにより、５００μｇ／ｍｌ（２．２８ｍＭ）および１０００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪが各各９０および９９％の低下を引き起こしたことが明らかになった。ヨウ化プロピジウム染色した細胞のファックス（FACs）解析および蛋白への^[3 ^5] −Ｓメチオニン取り込みにより測定されるように、１０００μｇｓ／ｍｌのＮＢＤＮＪ中で６日間維持した細胞の９０％が未処理対照と同じくらい生存していたため、この低下はＮＢＤＮＪの毒性のためではなかった。ＮＢＤＮＪで処理した２．２．１５細胞は細胞内ＨＢＶＤＮＡのレベルが上昇する。培地中のＨＢＶＤＮＡ関連ビリオンのＮＢＤＮＪが媒介する低下は、ウイルスＤＮＡ合成の低下によるものかも知れない。あるいは、ビリオン組み立て、輸送または細胞から外へ出るなどの合成後の現象のためかも知れない。これらの可能性を区別するため、未処理およびＮＢＤＮＪ処理２．２．１５細胞における細胞内ＨＢＶ特異的ＤＮＡの量を比較した。全細胞内ＤＮＡは処理細胞および未処理細胞から調製して、ＥｃｏＲＩで完全に消化してウイルスゲノムを線状にした。ほぼ等しいマイクログラム量の消化生成物（臭化アチジウム染色と細胞特異的プローブへのハイブリダイゼーションにより測定した）を、電気泳動により分離し、サザンブロットを行い、ＨＢＶ特異的プローブとハイブリダイズさせた（図２Ｂ）。３．２ｋｂバンドとして遊走する単位長ＨＢＶゲノムは、未処理２．２．１５細胞から得られたＤＮＡ（レーン１）および対照培地から単離したビリオン（レーン５）中に検出される。レーン２、３および４は、各々２００、５００および１０００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪで処理した細胞から得られたＤＮＡを含有する。未処理細胞に比較して、ＮＢＤＮＪ処理細胞に存在するＨＢＶＤＮＡの量には明らかな用量依存的増加が見られる。このオートラジオグラムのデンシトメトリーは、細胞ＭＨＣクラスIII遺伝子であるＧ１へのハイブリダイゼーションをローディング（loading）対照として使用してローディング変動を調整した時、２００、５００および１０００μｇｓ／ｍｌのＮＢＤＮＪで処理した細胞では、ＨＢＶコピー発生量が各々１．７、３．０、５．１倍の上昇を示すことを示唆する。ＨＢＶに感染してＮＢＤＮＪで処理したＨｅｐＧ２細胞は子孫ウイルスの放出が少ない。２．２．１５細胞は、安定にトランスフェクションした環境におけるＨＢＶ産生を検討するのに有用な系である。しかし、これらの細胞中のＨＢＶプレゲノム合成は、自然感染で起こると考えられるように、組み込まれたウイルスＤＮＡ鋳型から起こりうるのであって、共有結合で閉じた環状ウイルスＤＮＡ鋳型からではない［セルズ（Sells）ら，J．Virol．62，2836-2844(1988)］。さらに、これらの細胞は、培地中に放出される種々のゲノム構成ウイルスＤＮＡ生成物と共に、裸のコア粒子を産生する［セルズ（Sells）ら，上記文献］。従って、ＨｅｐＧ２細胞はプロテアーゼ修飾ＨＢＶで感染させた。翌日、培地を対照培地または種々の濃度のＮＢＤＮＪを含有する培地と置換した。感染の５日後、ＰｒｅＳ２ドメインの中心部分に特異的なモノクローナル抗体で子孫ビリオンを免疫沈降させた。ＨＢＶ特異的ＤＮＡ配列をＨＢＶ特異的プライマーを使用してＰＣＲにより増幅した。この反応生成物をアガロースゲル電気泳動により分離して、臭化エチジウム染色により画像化した（図３Ａ）。この５１９塩基対生成物（矢印、図３Ａ）をデンシトメトリー解析により定量して、プロットを図３Ｃに示す。ＰＣＲは開始時の試料中のＤＮＡ濃度の差を実際より小さく見積るかもしれないが、プロテアーゼで処理されたウイルスに感染した後で７００μｇ／ｍｌ（３．２ｍＭ）のＮＢＤＮＪで処理した細胞からの培地が、未処理の試料よりも一桁少ないウイルスＤＮＡを含有することは明らかである。これらの結果は、培地中に放出されるＨＢＶのＮＢＤＮＪ介在性の低下が２．２．１５トランスフェクションされた細胞系に特有のものではないことを示している。ＨＢＶで感染してＮＢＤＮＪで処理したＨｅｐＧ２細胞に含まれる細胞内ＨＢＶＤＮＡの量は増加している。ビリオン関連ＤＮＡの量が低下している点で、ＮＢＤＮＪで処理したＨＢＶ感染ＨｅｐＧ２細胞の培地は２．２．１５細胞と類似していたため、処理した細胞内のウイルスＤＮＡが同時に増加したかどうか知ることは興味あることであった。図３ＡおよびＣに示した試料に対応する試料から、全細胞ＤＮＡを調製した。細胞内ＨＢＶ特異的ＤＮＡをＰＣＲを用いて増幅した。この反応の生成物をアガロースゲル電気泳動により分離して、臭化エチジウム染色したゲル（図３Ｂ）をデンシトメトリーにより解析した（図３Ｄ）。明らかに、ＨＢＶで感染した後でＮＢＤＮＪで処理したＨｅｐＧ２細胞は、未処理細胞よりも大量のウイルスＤＮＡを蓄積している。ＮＢＤＮＪ処理および未処理の２．２．１５細胞の培地は同等量のＨＢＶエンベロープ抗原を含有する。２．２．１５細胞はウイルス構成粒子と同様にビリオンを分泌する［セルズ（ Sells）ら，J．Virol．62，2836-2844(1988)］。培地中のビリオン関連ＤＮＡのＮＢＤＮＪ介在性の低下は、全てのＨＢｓ含有粒子の分泌の一般的な低下の反映かも知れない。あるいは、大過剰にある他の型に比べて相対的に乏しい稀なビリオン粒子の選択的減少があったのかもしれない。これらの可能性を区別するため、培地中のエンベロープ抗原の量と性質をＥＬＩＳＡとウェスタン解析の両方により決定した。清澄化した培地中に存在するＳＨＢｓ、ＭＨＢｓおよびＬＨＢｓ抗原のＥＬＩＳＡ分析は、図４Ａ、ＢおよびＣに示される。この結果は、培地中のＳＨＢｓ（Ｓ）およびLＨＢｓ（ＰｒｅＳ１）抗原の全量には有意な影響がないことを示している。培地中のＭＨＢｓ（ＰｒｅＳ２）抗原の全量にはわずかの用量依存的低下がある。この低下は最大ＮＢＤＮＪ濃度（４．５ｍＭすなわち約１０００μｇ／ｍｌ）で約２．５倍である。これらの結果は、ウェスタンブロット解析により確認した。図５Ａは、対照培養物および１０００μｇ／ｍｌで処理した培養物からの培地のウェスタンブロットを示す。ここで、ＮＢＤＮＪ処理（図５Ａ、レーン３）および未処理培養物（図５Ａ、レーン２）からの培地は、同等量のＭＨＢｓ（Ｓ２）およびＬＨＢｓ（Ｓ１）抗原を含有することが示される。従って、ＮＢＤＮＪは培地中のＳＨＢｓおよびＬＨＢｓ抗原の量に全体的な低下を引き起こさない。しかし、ＥＬＩＳＡでの測定によれば、１０００μｇ／ｍｌのＮＢＤＮＪで処理した２．２．１５細胞の培地中のＭＨＢｓ抗原の量には２倍の低下が見られる。ＮＢＤＮＪ処理した２．２．１５細胞の培地に含まれる、完全なビリオンとして沈降するＨＢＶエンベロープ抗原の量は低下する。完全なビリオン中に存在するＨＢｓの量を測定するために、記載した培養物からの培地を超遠心分離によりショ糖勾配で分画した。処理および未処理培養物から得られ４０〜４６％ショ糖で沈降する分泌されたビリオンを濃縮して、ＥＬＩＳＡによりＨＢｓ蛋白について試験した。図４Ｄ、４Ｅおよび４Ｆに結果を示す。未処理２．２．１５細胞の培地から調製したビリオンを含有する試料中のＨＢｓの全ての型は容易に検出可能であった。一方、２．２５および４．５ｍＭ（各々約５００および１０００μｇ／ｍｌ、比較のため）のＮＢＤＮＪで処理した細胞の培地から調製した試料中のＨＢｓ蛋白は、実際上検出不可能であった。これは、これらの試料中の培地における完全なウイルスの量の低下を示唆している。このＥＬＩＳＡの結果は、完全なウイルス、糸状体または球体のいずれかを含有するショ糖勾配からの画分のウェスタンブロット解析により確認した（未処理培養物からの図５Ｂ、およびＮＢＤＮＪ処理した培養物からの図５Ｃ）。ショ糖勾配の画分からの等しい容量をＳＤＳゲル電気泳動により分離し、膜に移し、ＬＨＢｓ（ＰｒｅＳ１）に特異的な抗体と共にインキュベートして、画像化して、次にＭＨＢｓ（ＰｒｅＳ２）エピトープに特異的な抗体と共にさらにインキュベートした。ヒト血清から得られた部分精製したＨＢＶを対照としてレーン５に示す（図５Ｂおよび５Ｃ）。ビリオン含有画分（勾配の底近く）に遠い画分はレーン１で分離すると抗体に対する特異性を示した。レーン２、３および４（図５Ｂおよび図５Ｃ）は、ショ糖中の沈降およびウイルスＤＮＡの存在（ビリオンに関して）と非存在（ウイルス構成粒子に関して）により定義されるように、（それぞれ）完全なウイルス、ＨＢｓ糸状体および球体含有画分を含有する。ＮＢＤＮＪ処理培養物の培地から調製したビリオン、糸状体および球体中に存在する全てのＨＢｓ蛋白の量は低下している（図５Ｂおよび５Ｃのレーン２、３および４を比較）。ＭＨＢｓ（ＰｒｅＳ２エピトープ）の低下が特に大きい。図５Ｂおよび５Ｃに示される画像をデンシトメトリーにより定量した。デンシトメトリー解析により、未処理試料に比較してＮＢＤＮＪ処理ビリオン試料のＬＨＢｓの低下は、約４倍であることが判った。ＭＨＢｓの低下は同じレーン（図５Ｂ、レーン２に比較した図５Ｃ、レーン２）で１２倍であった。種々の型のＨＢｓ蛋白を分離するのに使用した勾配は、異なる型が「濃縮された」画分を与えることに注意されたい。すなわち、ビリオン含有画分はまた、糸状体と球体を含有している可能性がある。これにより、免疫測定法により判定すると、球体や糸状体に対してビリオンの放出に及ぼすＮＢＤＮＪの影響を小さく見積ってしまうかもしれない。それにもかかわらず、ウェスタンブロット解析の結果は、ＮＢＤＮＪ処理培養物からの培地が同等量の全ＨＢｓ抗原を含有するが、ビリオン画分における抗原性物質は大きく低下しているという点で、ＥＬＩＳＡの結果と一致する。本発明に記載された阻害化合物はまた、従来法により、好ましくは薬剤学的に許容しうる希釈剤および担体との製剤として、ＨＢＶに感染した患者への投与に使用することができる。これらの化合物は、遊離アミン型または塩の型で使用することができる。薬剤学的に許容しうる塩誘導体は、例えばＨＣｌ塩により例示される。これらの阻害化合物はまた、米国特許第５，０４３，２７３号および第５，１０３，００８号に記載される６−リン酸化誘導体、および例えば米国特許第５，００３，０７２号；第５，１４４，０３７号；および第５，２２１，７４６号に記載されるようなＯ−アシル化誘導体のような、プロドラッグの型で使用することができる。好ましいこのような誘導体は、四酪酸１，５−（ブチルイミノ）− １，５−ジデオキシ−Ｄ−グルシトールである。投与される活性化合物の量は、有効量、すなわち、医学的に有益であるが、その使用に伴う利点を超える毒性効果を表さない量である必要がある。成人の１日用量は、一般に活性化合物約１〜１０００ミリグラムの範囲であろうと予測される。好ましい投与経路は、カプセル剤、錠剤、シロップ剤、エリキシル剤などの形で経口投与であるが、非経口投与も使用することができる。治療用剤型中の薬剤学的に許容しうる希釈剤および担体中の活性化合物の適切な製剤は、例えば、「レミントンの製剤科学（Remington'ｓPharmaceutical Sciences）」、アーサー・オソル（Arthur Osol）編、第１６版、１９８０、マック出版（Mack Publis hing Co.）、イーストン、ペンシルバニア州、米国のような当該分野で一般的な教科書を参照して調製することができる。本開示を読んだ後では、本発明の精神と範囲から逸脱することなく、種々の他の実施例が当業者には明らかになろう。このような他の全ての実施例が添付した請求の範囲内に含まれることが意図される。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ)，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＬ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者ブロック，ティモシーエム. アメリカ合衆国 19046 ペンシルバニア州ジェンキンタウン，タウンシップラインロード 124 (72)発明者ブラムバーグ，バルチエス. イギリス国オーエックス１３キューユーオックスフォード，サウスパークスロード（番地なし），ユニバーシティーオブオックスフォード，ディパートメントオブバイオケミストリィ，グリコバイオロジィインスチチュート気付 (72)発明者ドウェク，レイモンドエイ. イギリス国オーエックス１３キューユーオックスフォード，サウスパークスロード（番地なし），ユニバーシティーオブオックスフォード，ディパートメントオブバイオケミストリィ，グリコバイオロジィインスチチュート気付

Claims

【特許請求の範囲】１．感染したヒト宿主におけるＢ型肝炎ウイルス感染症の治療方法であって、１，５−ジデオキシ−１，５−イミノ−Ｄ−グルシトールのＮ−アルキル誘導体（ここで、該アルキル基は、３〜６個の炭素原子を含有する）を、Ｂ型肝炎ウイルスビリオンの複製と分泌を阻害するのに有効な量で、この宿主に投与することを含んでなる上記方法。２．アルキル基はブチルである、請求の範囲第１項記載の方法。３．有効な阻害量は、約１〜約１０００ｍｇである、請求の範囲第１項記載の方法。