JPH1198978A - トリペプチド高生産性ラクトバチルス・ヘルベチカス乳酸菌 - Google Patents
トリペプチド高生産性ラクトバチルス・ヘルベチカス乳酸菌Info
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Abstract
株及び血圧降下活性及びストレス緩和作用を有する成分
を多く含み、かつ飲食に供しやすい発酵乳製品を提供す
る。 【解決手段】特定の菌学的性質を有し、無脂乳固形分を
9重量%以上含む獣乳を培地として培養した際に、培養
液中にトリペプチドVal−Pro−Pro及び/又は
Ile−Pro−Proを、Val−Pro−Pro換
算量で60μg/ml以上生産し、且つ菌体外プロテイ
ナーゼ活性400U/OD590以上を示すことを特徴と
するラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳酸菌、ラ
クトバチルス・ヘルベチカスCM4株(工業技術院生命
工学工業技術研究所 寄託番号:FERM BP−60
60)、及び獣乳をこれら乳酸菌を用いて発酵させて得
た発酵乳製品。
Description
て培養することにより、強い血圧降下作用及びストレス
緩和作用を有するトリペプチドを産生することができ、
かつ菌体外プロテイナーゼ活性が高いラクトバチルス・
ヘルベチカス(Lactobacillus helveticus)に属する乳酸
菌に関する。
から代表的な酪農乳製品用乳酸菌スターターとして、発
酵乳等の製造に用いられている。ラクトバチルス・ヘル
ベチカスは強い蛋白分解活性を有し、特に高い活性を有
する菌体外プロティナーゼは、獣乳の発酵性に対して重
要な働きをする。即ち、菌体外プロティナーゼは獣乳蛋
白質を分解し各種のペプチド断片を生成する。生成され
たペプチドはペプチダーゼ群の作用を受けて、さらに低
分子のペプチドになる。蛋白質分解酵素群の作用により
培地中に生成したペプチドの一部は、乳酸菌菌体内へ取
り込まれて、窒素源として利用されることが知られてい
る。一方、培地中に生成したペプチドには、血圧上昇作
用の原因物質であるアンギオテンシン変換酵素(Angiote
nsin Converting Enzyme、以下ACEと称す)に対して
阻害活性を有するものが存在することが報告されている
(J. Dairy Sci. 78:777-783(1995))。
制することを目的としたペプチドについては、既に乳蛋
白質、大豆蛋白質あるいは魚肉蛋白質分解物等から、多
くの有効ペプチドが報告されているが、ラクトバチルス
・ヘルベチカス発酵乳中のACE阻害活性を有するペプ
チドは、Val−Pro−ProとIle−Pro−P
ro(以下、それぞれVPP及びIPPと略す。またこ
れらを合わせてラクトトリペプチドと称す。)であるこ
と、さらにこれらラクトトリペプチドは強い血圧降下作
用を有することが自然発症高血圧ラット(SHR)を用
いた実験により確認されている(J. Dairy Sci.78:1253-
1257(1995))。さらに、ラクトトリペプチドは、血圧降
下活性に加え、ストレス緩和作用を有することが示唆さ
れている。
天然物由来の、低毒性で安全性が高く、経口的に摂取で
きる降圧剤又はストレス緩和剤として、実用化が検討さ
れている。
ルス・ヘルベチカス株により発酵させて得たラクトトリ
ペプチド含有発酵乳は、発酵の進行に従い多量に生成さ
れる乳酸に起因して高い酸度を示すため、直接飲食する
ことは困難であるという問題点がある。
より多く含む発酵乳を製造することができれば、各種の
飲食品へ発酵乳を少量配合することによっても、機能性
を維持したまま飲食しやすい形態の製品を簡便に製造し
消費者へ提供することが可能になる。従って、ラクトト
リペプチドをより多く産生する乳酸菌株が求められてい
る。
トトリペプチドを大量に産生しうる乳酸菌株を提供する
ことにある。
トレス緩和作用を有する成分を多く含み、かつ飲食に供
しやすい発酵乳製品を提供することにある。
菌学的性質を有し、無脂乳固形分を9重量%以上含む獣
乳を培地として培養した際に、培養液中にトリペプチド
Val−Pro−Pro及び/又はIle−Pro−P
roを、Val−Pro−Pro換算量で60μg/m
l以上生産し、且つ菌体外プロテイナーゼ活性400U
/OD590以上を示すことを特徴とするラクトバチルス
・ヘルベチカスに属する乳酸菌が提供される。
を生成し、ガスの産生はない; 6)各種炭水化物の分解性 グルコース;+ ラクトース;+ マンノース;+ フラクトース;+ ガラクトース;+ シュークロース;− マルトース;− キシロース;− ラムノース;− セルビオース;− トレハロース;− メルビオース;− ラフィノース;− スタキオース;− マンニトール;− ソルビトール;− ユースクリン;− サリシン;− また、本発明によれば、前記ラクトバチルス・ヘルベチ
カスに属する乳酸菌であって、ラクトバチルス・ヘルベ
チカスCM4株(工業技術院生命工学工業技術研究所
寄託番号:FERM BP−6060)であることを特
徴とするラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳酸菌
が提供される。
ヘルベチカスに属する乳酸菌であって、その染色体DN
Aの制限酵素PstI及びEcoRIによる二重分解物
が15〜17kbの特徴的DNA断片を含むことを特徴
とするラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳酸菌が
提供される。
用いて発酵させて得た発酵乳製品が提供される。
ス・ヘルベチカスに属する乳酸菌であり、無脂乳固形分
を9重量%以上含む獣乳を培地として培養することによ
り、培養液中にトリペプチドVPP及び/又はIPP
を、VPP換算量で60μg/ml以上、好ましくは7
0μg/ml以上生産し、且つ菌体外プロテイナーゼ活
性400U/OD590以上、好ましくは430U/OD
590以上を示す。VPP及び/又はIPPの生産量の上
限については、特に限定されないが、培地中の蛋白質に
含まれる全てのVal−Pro−Pro及びIle−P
ro−Proの配列がトリペプチドとして切り出された
際の量が上限となる。また、菌体外プロテイナーゼ活性
の上限については、特に限定されないが、通常は800
U/OD590である。
としては、通常の、Val−Pro−Pro及びIle
−Pro−Proの配列を含む蛋白質を含む獣乳を挙げ
ることができる。
に乳酸菌を接種後、37℃で24時間培養する方法を挙
げることができる。
ルス・ヘルベチカスCM4株が工業技術院生命工学工業
技術研究所 寄託番号:FERM BP−6060とし
て寄託されている。ラクトバチルス・ヘルベチカスCM
4株は、以下に示す菌学的性質を有する。
を生成し、ガスの産生はない。
63(1974))により同定すると公知株ラクトバチ
ルス・ヘルベチカスNCDO−099と同一である。但
し、光岡らの方法に記載されていない下記の性質につい
ては明らかにNCDO−099とは異なっている。
間殺菌後の9重量%脱脂乳を用いて37℃、24時間発
酵した場合の乳酸酸度2.0重量%以上を示す発酵性 8)菌体外プロティナーゼ活性;400U/OD590以
上の活性 9)ラクトトリペプチド生産性;9重量%脱脂乳を用い
37℃で24時間培養した発酵液中に2種のトリペプチ
ド(VPP及び/又はIPP)を、VPP換算量で60
μg/ml以上含有 なお、前記菌体外プロティナーゼ活性は、Twiningらの
方法(Twining,S. Anal.Biochem. 143 3410(1984))を
もとにしたYamamotoらの方法(Yamamoto,N.ら J.Bioche
m.(1993)114,740)に従った反応条件において、1%の蛍
光強度を生じる酵素量を1U/OD590とした場合の値
である。
量%脱脂乳培地で37℃、24時間培養した発酵乳を1
mlとり、そのまま15,000rpmで10分間遠心
分離して得た上清中のVPP及びIPP量を測定し、V
PP量に換算した値である。前記換算は、IPPの重量
当りのACE阻害活性はVPPの1.7倍であることか
ら、以下の式によりVPP換算量を求める。
g/ml)=IPP量(μg/ml)×1.7+VPP
量(μg/ml) 本発明の乳酸菌株は、例えば以下に示すスクリーニング
方法により得ることができる。
培地を用いてスクリーニング株を37℃、24時間培養
する。培養終了後に乳酸菌数、乳酸酸度、ACE阻害活
性を測定する。乳酸菌数1×108個/ml以上、乳酸
酸度1.6重量%以上、ACE阻害活性40ユニット/
ml以上の菌株を選択する。なお、ACE阻害活性は、
CushmanとCheungの方法(Cushman,D.W. and Cheung,H.S.
Pharmacol., 20 1637(1971))に基づいて測定する。
ニングにより選択された菌株の培養液を遠心分離機にて
15,000rpm、10分間処理後の上清を用いて、
HPLCによりラクトトリペプチドの定量分析を行う。
ラクトトリペプチド含量(VPP換算量)30μg/m
l以上の菌株を選択する。
ニングにより選択された菌株を9重量%脱脂乳培地中で
pH6に維持しながら培養して、対数増殖期中期でサン
プリング後に、クエン酸ナトリウムを1重量%になるよ
うに添加し、5,000rpm、10分間の遠心分離を
行い菌体を回収する。次いで、50mMβ−グリセロリ
ン酸にて菌体を洗浄後に、菌体を50mMトリス塩酸
(pH7.8)緩衝液に懸濁して、濁度(OD590)1
に調整し菌体表面のプロティナーゼ活性を測定する。測
定結果は、二次スクリーニングにおいて選択されるラク
トトリペプチド高生産株と相関することが確認できる。
たラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳酸菌株と他
の乳酸菌株との識別は、前記ラクトトリペプチド生産
性、菌体外プロティナーゼ活性等から同定することがで
きる。
チカスに属する乳酸菌の染色体DNAの制限酵素による
分解物のDNA断片の特徴的分子量分布より、同種に属
する他の菌株とはより明確に識別することができる。具
体的には例えば、染色体DNAの制限酵素PstI及び
EcoRIによる二重分解物が15〜17kbの特徴的
DNA断片を含むものを、本発明の乳酸菌として識別す
ることができる。
は、具体的には、染色体DNAをLeenhoutsらの方法(Le
enhouts,K.(1990) Appl.Environ.Microbiol. 56:2726)
で抽出し、EcoRIとPstIによる切断を行い0.
8%のアガロースゲル電気泳動し、その泳動パターンの
分析を行うことにより確認することができる。その際、
DNAのサイズマーカーとして、λファージDNAの制
限酵素HindIII分解物等を平行して泳動すること
により、明確にその存在を確認することができる。
菌を用いて発酵させて得たものである。
としては、牛乳、山羊乳、馬乳又はこれらの脱脂乳等の
乳培地等を挙げることができる。
−50℃、さらに好ましくは30−45℃とすることが
でき、発酵時間は6−30時間、さらに好ましくは10
−24時間とすることができる。また、前記発酵は、好
ましくは、乳製品中のラクトトリペプチド量がVPP換
算量で60μg/ml以上となるよう行うことが好まし
い。具体的には例えば培地として牛乳を使用した場合、
25−40℃で12−48時間発酵させることにより、
ラクトトリペプチド量をVPP換算量で70μg/ml
以上含有する発酵乳製品を得ることができる。
品は、そのまま製品とすることができるが、必要に応じ
約5℃に冷却し保存した後、他の成分との配合などを行
い、チルド商品等の製品とすることもできる。また、加
熱殺菌処理等を行い、さらに必要に応じて噴霧乾燥等に
より粉末化して常温流通商品とすることもできる。
乳酸菌飲料、チーズ、酸乳配合の加工食品、健康食品、
粉末、顆粒状食品、錠剤等の形態として製品にすること
ができる。
トリペプチドを含むので、ヒトに摂取された場合、血圧
降下作用、抗ストレス作用等を発現することができる。
例えば、血圧が高いヒトの場合、日常の食生活において
本発明の発酵乳製品を100ml程度摂取することによ
り、健康を図ることができる。また、ストレスが多いヒ
トの場合にも、同様の摂取量により、効果を発揮させる
ことができる。
養することによりラクトトリペプチドを大量に産生する
ことができるので、血圧降下活性及びストレス緩和作用
を有する成分を多く含み、かつ飲食に供しやすい発酵乳
製品を生産することができる。
ペプチドを多く含有するので、血圧降下作用、抗ストレ
ス作用を有する食品として、機能性食品、健康食品、特
定保健用食品、高齢者用の特別用途食品又はこれらの材
料等に用いることができる。
本発明はこれらに限定されるものではない。
ティカス株のうち、CM4株は工業技術院生命工学工業
技術研究所 寄託番号:FERM BP−6060とし
て寄託されており、ATCC15009、NCDO−0
99、JCM1006、ATCC10797、JCM1
062、JCM1103、JCM1120及びJCM1
004は公知株である。実施例中のこれ以外の株は、出
願人が保有する菌株コレクションより選択されたもので
ある。
株の選択)各種酪農製品から分離されたラクトバチルス
・ヘルベティカス36株について、その発酵乳のACE
阻害活性を以下の方法で調べた。各ラクトバチルス・ヘ
ルベチカス株を9重量%脱脂粉乳培地で37℃、24時
間培養し、新しい同培地に3重量%添加し、さらに37
℃、24時間培養した。発酵終了後、乳酸酸度(重量
%)、ホエー内のペプチド量(mg/ml)、菌数及び
ACE阻害活性(U/ml)を測定した。結果を表1に
示す。36株中7株については発酵性が極めて弱かっ
た。乳酸酸度生成量が1.6重量%以上のものは15株
であり、さらにそのなかで発酵乳内ホエーのACE阻害
活性が40U/ml以上のもの8株を選択した。
E阻害活性の測定は、CushmanとCheungの方法(Cushman,
D.W. and Cheung,H.S. Pharmacol., 20 1637(1971))に
基づいて行った。即ち、各種発酵乳を15,000rp
m、5分間の遠心により上清(ホエー)を調製した。そ
のホエーを、測定可能な倍率に適宜希釈した後、その8
0μlを試験管に移し、次に基質として0.1Mホウ酸
緩衝液(0.3M NaClを含む、pH7.3)で5
mMに調製したヒプリル・ヒスチジン・ロイシン(Hip-H
is-Leu、シグマ社製)0.2mlを加えて、さらに酵素
溶液(0.1U/ml、シグマ社製)20μlを添加し
て37℃で30分間反応させた。その後、1N塩酸を2
50μl加えて反応を停止させた後、1.7mlの酢酸
エチルを加えて約20秒間撹拌した。次いで3,000
rpmで10分間遠心分離し、酢酸エチル層(上層)
1.4mlを回収し、120℃で40分間加熱し、溶媒
を除去した。溶媒除去後、蒸留水1mlを加えて、約2
0秒間撹拌し抽出されたヒプリル酸の228nmにおけ
る吸収の値を測定した。酵素活性ユニットはACE活性
の50%阻害を与える量を1ユニットとして、下記式に
より算出した。
−C))×100×1/50 A:試料を含まない場合の228nmの吸光度 B:試料を添加した場合の228nmの吸光度 C:酵素及び試料を添加しない場合の228nmの吸光
度 (発酵乳内ペプチド量の定量法)ペプチドの定量はOP
A法(Charch,F.C.らJ.Dairy.Sci.66 1219(1883))によ
り行った。検量線の作成には、標準物質として、カゼイ
ンのトリプシン分解物を用いた。
選択)続いて、上記ACE阻害活性の高い発酵乳使用菌
株8株について、発酵乳内のVPP及びIPPを測定し
た。
pmで10分間遠心分離し、その上清即ちホエーを回収
した。このホエー0.3mlをSep-Pak Cartridge(ウ
ォーターズ社製)に吸着させ、蒸留水で洗浄した。メタ
ノール5mlで溶出し、遠心処理下で減圧、乾燥させ
た。乾燥物を0.3mlの0.05%トリフルオロ酢酸
の水溶液に溶解し、以下の条件でHPLC分析した。
ー(215nmで検出)L6200インテリジェントポ
ンプL5030カラムオーヴン(35℃)分離条件:流
速0.5ml/分溶離液:0.3M NaCl、0.0
5%トリフルオロ酢酸の水溶液カラム:Asahipak GS320
(Φ3.9×600mm)結果を表2に示す。
はVPPの1.7倍であることから、IPP量及びVP
P量からラクトトリペプチドを以下の式によりVPP換
算量として求めた。結果を表2に示す。
g/ml)=IPP量(μg/ml)×1.7+VPP
量(μg/ml)
M4株発酵乳のもので最も高く、78.5μg/mlホ
エーであった。それ以外の7株の平均値は34.2μg
/mlホエーであった。
・ヘルベチカス株の内の分離株18、分離株20、分離
株23、分離株24、分離株25、分離株26、JCM
1006及びCM4、並びに公知株のJCM1120及
びJCM1004の計10株を用いてCM4株の乳内で
の発酵性(増殖性)を評価した。すなわち、9重量%脱
脂粉乳培地で37℃、24時間培養したものを、115
℃で15分間、又は95℃で5分間殺菌した新しい同培
地に3%植菌後、37℃で24時間発酵させた。培養終
了後、乳酸酸度を滴定し発酵性を評価した。その結果、
試験された株のうち、95℃殺菌乳の発酵性が115℃
殺菌乳のものより高いものは分離株25、分離株26と
CM4株であった。またさらに95℃殺菌乳での最終酸
度が2.0重量%以上のものはCM4株発酵乳のみであ
った。
に示した発酵性についての試験結果が比較的良好であっ
た株16株の菌体外プロティナーゼを、Twiningらの方
法(Twining,S. Anal.Biochem. 143 3410(1984))をも
とにしたYamamotoらの方法(Yamamoto,N.ら J.Biochem.
(1993)114,740)に従って行った。即ち、各種菌株を9重
量%脱脂粉乳中でpHを6.0に維持して培養し、対数
増殖期の中期で集菌した。クエン酸ナトリウムを終濃度
1%になるように添加し、乳培地を透明化し、5,00
0rpmで10分間の遠心分離を行い菌体を回収した。
次に、50mMβ−グリセロリン酸により菌体を洗浄
後、菌体を50mMのトリス塩酸pH7.8の緩衝液に
懸濁し濁度(OD590即ち590nmの吸収で測定)を
1に合わせた。0.4%のフルオレセイン−カゼイン
(シグマ社製)20μlに菌体懸濁液30μlを加え4
2℃で1時間インキュベートし、5%トリクロロ酢酸を
120μl加え室温にて約20分間放置し、15,00
0回転で10分間の遠心分離を行った。上清60μlを
3mlの500mMトリス塩酸pH8.3に加え、蛍光
強度を測定した。蛍光強度は励起波長490nmで生じ
る525nmの蛍光を測定した。活性は上記反応条件
で、1%の蛍光強度を生じる酵素量を1ユニットと定義
し、それぞれの菌体外プロティナーゼのユニット数を求
めた。結果を表3に示す。
活性が最も高く450U/OD590であった。一方、そ
の他の16株の活性平均値は141U/OD590とCM
4株に比べ約3分の1程度であった。
ベチカス36株の中から選択した11株について、染色
体DNAをLeenhoutsらの方法(Leenhouts,K.(1990) App
l.Environ.Microbiol. 56:2726)で抽出し、いくつかの
制限酵素による切断を行い0.8%のアガロースゲル電
気泳動し、その泳動パターンの分析を行った。
二重分解物についてCM4株の染色体について特徴的D
NA断片が認められた(図1中矢印1)。CM4以外の
菌株の染色体にはこの断片は認められず、ほとんどの株
でそれより短い断片が認められた(図1中矢印2)。こ
こでDNAのサイズマーカーとしてλファージDNAの
制限酵素HindIII分解物(移動度の低いものから
23.1kb、9.4kb、6.6kb、4.4kb、
2.3kb及び2.0kb)を同時に電気泳動し、特徴
的断片の分子量を測定したところ約16kbであった。
従って、CM4株はその染色体のEcoRIとPstI
による二重分解物として、分子量約16kbの特徴的な
断片を有することが確認された。また、他の株における
CM4株の前記特徴的断片より短い断片の分子量は、約
13kbであった。
ルベチカスCM4株を用いて発酵乳の製造を行った。C
M4株を9重量%脱脂乳100gを用いて37℃、12
時間培養したものを、新しい同培地3kgに接種し、3
7℃、12時間培養した。培養終了した発酵乳全量をス
ターターとして用い、9重量%脱脂乳100kgを32
℃、20時間発酵させた。発酵終了時の発酵乳中には、
ラクトトリペプチドが74.8μg/ml含まれてい
た。
kg、水3kg、ハイメトキシペクチン0.15kgを
加えた後に均質化して、ドリンクヨーグルト50kgを
得た。このドリンクヨーグルトはマイルドな好ましい風
味を有し、pH3.6で、CM4の生菌数は4.6×1
08個/gであった。
グラニュウ糖45.0kg、ハイマルトース液糖4.7
kg、水13.8kgを加えて、撹拌しながら3重量%
ハイメトキシペクチン溶液10kgを加えた。得られた
混合液をラボラトリーホモゲナイザー(マントンゴーリ
ン社製、形式15M−8BA)を用いて、処理圧力15
0kg/cm2、処理流量2500ml/分で均質化処
理を行った。均質化処理液にバニラ系香料を加えて85
℃達温殺菌を行った。殺菌処理発酵乳を200l用ガラ
ス壜に熱時充填した。得られた殺菌処理発酵乳製品中の
ラクトトリペプチド量を測定したところ、殺菌前の発酵
乳配合量中に含まれるラクトトリペプチド相当量が含ま
れていた。
ス・ヘルベチカス株の染色体DNAの断片のアガロース
ゲル電気泳動による分析結果を示す写真である。
Claims (4)
- 【請求項1】 以下の菌学的性質を有し、無脂乳固形分
を9重量%以上含む獣乳を培地として培養した際に、培
養液中にトリペプチドVal−Pro−Pro及び/又
はIle−Pro−Proを、Val−Pro−Pro
換算量で60μg/ml以上生産し、且つ菌体外プロテ
イナーゼ活性400U/OD590以上を示すことを特徴
とするラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳酸菌: 形態学的性質 1)細胞の形状;桿菌 2)運動性;なし 3)胞子の有無;なし 4)グラム染色性;陽性 生理学的性質 1)カタラーゼ;陰性 2)インドール生成;陰性 3)硝酸塩の還元;陰性 4)酸素に対する態度;通性嫌気性菌 5)グルコースによりホモ乳酸発酵によりD(−)乳酸
を生成し、ガスの産生はない; 6)各種炭水化物の分解性 グルコース;+ ラクトース;+ マンノース;+ フラクトース;+ ガラクトース;+ シュークロース;− マルトース;− キシロース;− ラムノース;− セルビオース;− トレハロース;− メルビオース;− ラフィノース;− スタキオース;− マンニトール;− ソルビトール;− ユースクリン;− サリシン;−。 - 【請求項2】 請求項1に記載のラクトバチルス・ヘル
ベチカスに属する乳酸菌であって、ラクトバチルス・ヘ
ルベチカスCM4株(工業技術院生命工学工業技術研究
所 寄託番号:FERM BP−6060)であること
を特徴とするラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳
酸菌。 - 【請求項3】 請求項1又は2に記載のラクトバチルス
・ヘルベチカスに属する乳酸菌であって、その染色体D
NAの制限酵素PstI及びEcoRIによる二重分解
物が15〜17kbの特徴的DNA断片を含むことを特
徴とするラクトバチルス・ヘルベチカスに属する乳酸
菌。 - 【請求項4】 獣乳を、請求項1〜3のいずれか1項記
載の乳酸菌を用いて発酵させて得た発酵乳製品。
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