JPS597694B2 - 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 - Google Patents
不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法Info
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- JPS597694B2 JPS597694B2 JP56108289A JP10828981A JPS597694B2 JP S597694 B2 JPS597694 B2 JP S597694B2 JP 56108289 A JP56108289 A JP 56108289A JP 10828981 A JP10828981 A JP 10828981A JP S597694 B2 JPS597694 B2 JP S597694B2
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はアフイニテイークロマトグラフイーにおいて、
不活化トロンビンをリガンドとして結合させた親水性ゲ
ルを用い、緩衝液と中性塩溶液及び血漿タンパク質混合
液とから成る溶離液をカラムを用いて通液させるか、あ
るいは回分法により容器内で両者を混合することにより
ゲルと接触させ、アンチトロンビン■を特異的に吸着さ
せることにより分離精製する方法に関するものである。
不活化トロンビンをリガンドとして結合させた親水性ゲ
ルを用い、緩衝液と中性塩溶液及び血漿タンパク質混合
液とから成る溶離液をカラムを用いて通液させるか、あ
るいは回分法により容器内で両者を混合することにより
ゲルと接触させ、アンチトロンビン■を特異的に吸着さ
せることにより分離精製する方法に関するものである。
さらに詳しくは、トロンビンの反応中心セリン残基がデ
ヒドロアラニン残基に変換した不活化型トロンビンを基
体としたアフイニテイーゲルを用い、アンチトロンビン
■のトロンビンとの親和力を利用して分離精製する方法
に係るものである。
ヒドロアラニン残基に変換した不活化型トロンビンを基
体としたアフイニテイーゲルを用い、アンチトロンビン
■のトロンビンとの親和力を利用して分離精製する方法
に係るものである。
血液は、赤血球、白血球、血小板から成る有形成分と血
漿と呼ばれる無形成分とから成り、血漿中には100種
類以上のタンパク質が含まれる。
漿と呼ばれる無形成分とから成り、血漿中には100種
類以上のタンパク質が含まれる。
これらのタンパク質は電気泳動的にアルブミン、α、β
およびγ−グロプリンおよびフィブリノーゲンに分類さ
れる。
およびγ−グロプリンおよびフィブリノーゲンに分類さ
れる。
アンチトロンビン■は、α2 −グロプリンに属する糖
タンパク質である。
タンパク質である。
血漿中に通常30〜5 0 mg/dlの割合で含まれ
ているのみである。
ているのみである。
しかし、トロンビンや活性型X因子等と反応し、複合体
をつくることにより、血漿凝固反応を阻害し、血管内で
の凝固反応の調節に大きな役割をはたしている。
をつくることにより、血漿凝固反応を阻害し、血管内で
の凝固反応の調節に大きな役割をはたしている。
アンチトロンビン■の分離精製法としては従来(1)硫
酸アンモニウムなどの中性塩添加、ポリエチレングリコ
ール等の水溶性高分子の添加による分別沈澱法 (2)分子の荷電を利用したイオン交換クロマトグラフ
イー法 (3)分子の大きさを利用した分子篩クロマトグラフイ
ー法 (4)分子の等電点の差を利用する電気泳動法(5)ヘ
パリンとの親和力を利用するアフイニテイーク口マトグ
ラフイー法 などが知られており、これらの方法の一つ又は幾つかを
組み合せた方法が用いられている。
酸アンモニウムなどの中性塩添加、ポリエチレングリコ
ール等の水溶性高分子の添加による分別沈澱法 (2)分子の荷電を利用したイオン交換クロマトグラフ
イー法 (3)分子の大きさを利用した分子篩クロマトグラフイ
ー法 (4)分子の等電点の差を利用する電気泳動法(5)ヘ
パリンとの親和力を利用するアフイニテイーク口マトグ
ラフイー法 などが知られており、これらの方法の一つ又は幾つかを
組み合せた方法が用いられている。
これらの方法のうち、(5)のアフイニテイークロマト
グラフイー法を除《他の組み合せは爽雑タンパク質の分
離除去が難しく、何回も操作をくり返さねばならないこ
とから、回収量が少ないこと操作が繁雑であるといった
欠点がある。
グラフイー法を除《他の組み合せは爽雑タンパク質の分
離除去が難しく、何回も操作をくり返さねばならないこ
とから、回収量が少ないこと操作が繁雑であるといった
欠点がある。
一方、リガンドとの特異的な親和力により分離するアフ
イニテイークロマトグラフイー法は、アンチトロンビン
■のもつ特異的な性質を利用することから精製操作が簡
単であり爽雑物の分離がよく、活性回収率もよい利点を
もつ。
イニテイークロマトグラフイー法は、アンチトロンビン
■のもつ特異的な性質を利用することから精製操作が簡
単であり爽雑物の分離がよく、活性回収率もよい利点を
もつ。
ところで、従来使用されているヘパリンを基体としたア
フイニテイーク口マトグラフイー法は、アンチトロンビ
ン■がヘパリンと結合することを利用したものであり、
他の方法に比べ、簡単で効率的である。
フイニテイーク口マトグラフイー法は、アンチトロンビ
ン■がヘパリンと結合することを利用したものであり、
他の方法に比べ、簡単で効率的である。
しかしながら、現在工業的に広く行なわれている冷エタ
ノール法による副分画からこの方法によってアンチトロ
ンビン■を精製すると収率がきわめて低い。
ノール法による副分画からこの方法によってアンチトロ
ンビン■を精製すると収率がきわめて低い。
また、加熱処理血漿より精製した場合においても収・率
が低い。
が低い。
すなわち、この方法はアンチトロンビン■のヘパリン結
合部位であるリジン残基付近の構造に依存するものであ
るので、この部分の構造が低温エタノール処理、熱処理
に対し不安定であるため効率が悪いものと推定される。
合部位であるリジン残基付近の構造に依存するものであ
るので、この部分の構造が低温エタノール処理、熱処理
に対し不安定であるため効率が悪いものと推定される。
したがって、アフイニテイーク口マトグラフイーに利用
する構造としては、アンチトロンビン■中の他の構造部
位である、アルギニン反応中心残基付近の構造を利用す
ることが望ましい。
する構造としては、アンチトロンビン■中の他の構造部
位である、アルギニン反応中心残基付近の構造を利用す
ることが望ましい。
本発明者らは、前述の点に着目しこれらの欠点を改善す
べく鋭意研究の結果、アンチトロンビン■のアルギニン
反応中心を利用したアフイニテイークロマトグラフイー
により、血漿中および冷エタノール分画等の血漿タンパ
ク質混合液中に含有されるアンチトロンビン■を効率良
《、分画することが出来る方法を見出し本発明を完成し
たものである。
べく鋭意研究の結果、アンチトロンビン■のアルギニン
反応中心を利用したアフイニテイークロマトグラフイー
により、血漿中および冷エタノール分画等の血漿タンパ
ク質混合液中に含有されるアンチトロンビン■を効率良
《、分画することが出来る方法を見出し本発明を完成し
たものである。
すなわち、本発明は、アフイニテイーク口マトグラフイ
ーにおいて従来用いられていたりガンドに代わり、不活
化トロンビンすなわち、アンチトロンビン■と反応し共
有結合性の複合体形成はしないが、親和性をもつトロン
ビンを用い、緩衝液、中性塩溶液および血漿タンパク質
からなる混合液を接触させ、アンチトロンビン■を特異
的に吸着せしめ、それを溶出することにより迅速かつ簡
便に効率よく分離精製する方法を提供するものである。
ーにおいて従来用いられていたりガンドに代わり、不活
化トロンビンすなわち、アンチトロンビン■と反応し共
有結合性の複合体形成はしないが、親和性をもつトロン
ビンを用い、緩衝液、中性塩溶液および血漿タンパク質
からなる混合液を接触させ、アンチトロンビン■を特異
的に吸着せしめ、それを溶出することにより迅速かつ簡
便に効率よく分離精製する方法を提供するものである。
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明に用いる不活化トロンビンは精製人トロンビンを
pH8.0イオン強度0.05のトリス塩酸MUU?で
、フエニルメタンスルホニルフルオリドと反応させ、活
性中心セリン残基とエステル結合を形成せしめ、トロン
ビン活性を失わせた。
pH8.0イオン強度0.05のトリス塩酸MUU?で
、フエニルメタンスルホニルフルオリドと反応させ、活
性中心セリン残基とエステル結合を形成せしめ、トロン
ビン活性を失わせた。
その後pH9.0に調整し、低温に保ち、エステル結合
を解離させると共にセリン残基をデヒドロアラニン残基
に変換した。
を解離させると共にセリン残基をデヒドロアラニン残基
に変換した。
次に、ベンズアミジンを基体とするアガロースゲルを用
い、アフイニテイーク口マトグラフイーを行い、親和性
を示す分画を採取し、アンヒドロトロンピンとして用い
たものである。
い、アフイニテイーク口マトグラフイーを行い、親和性
を示す分画を採取し、アンヒドロトロンピンとして用い
たものである。
なお、本発明における精製トロンビンは、低温エタノー
ル法( E, J .Cohh : Journal
ofAmerican Chemical Socie
ty, 6 8 : 4 5 9(1946))により
得られたコーンペースト■分画より、ポリエチレングリ
コール沈澱およびBaC■2沈澱によりプロトロンビン
複合体を精製し、牛脳より抽出したトロンボプラスチン
により活性化し、その後に、DEAEセファデツクス力
ラムクロマトグラフイーおよびベンズアミンセファロー
スカラムクロマトグラフイーにより精製したトロンビン
を用いた。
ル法( E, J .Cohh : Journal
ofAmerican Chemical Socie
ty, 6 8 : 4 5 9(1946))により
得られたコーンペースト■分画より、ポリエチレングリ
コール沈澱およびBaC■2沈澱によりプロトロンビン
複合体を精製し、牛脳より抽出したトロンボプラスチン
により活性化し、その後に、DEAEセファデツクス力
ラムクロマトグラフイーおよびベンズアミンセファロー
スカラムクロマトグラフイーにより精製したトロンビン
を用いた。
そして、該リガンドをアガロースに固定したゲルに血漿
タンパク質混合液を接触することにより、アンチトロン
ビン■を特異的に吸着し、それを溶出することにより分
離精製するものである。
タンパク質混合液を接触することにより、アンチトロン
ビン■を特異的に吸着し、それを溶出することにより分
離精製するものである。
本発明において該リガンドを結合するのに用いられる担
体ぱ通常用いられている親和性の担体から任意に選ぶこ
とができる。
体ぱ通常用いられている親和性の担体から任意に選ぶこ
とができる。
架橋アガロースゲル(商品名:セファロース4B、およ
び6B)架橋デキストランゲル(商品名:セファデツク
スG100、G150、G200)架橋アクリルアミド
ゲル(商品名:セフアクリルS200、S300)など
を挙げることができる。
び6B)架橋デキストランゲル(商品名:セファデツク
スG100、G150、G200)架橋アクリルアミド
ゲル(商品名:セフアクリルS200、S300)など
を挙げることができる。
本発明において、血漿タンパク質混合液の吸着には、p
H6〜8かつイオン強度0〜IOの緩衝液と中性塩溶液
とからなる溶離液を用いるものである。
H6〜8かつイオン強度0〜IOの緩衝液と中性塩溶液
とからなる溶離液を用いるものである。
溶離液中の緩衝液はpH 6〜8域を示す緩衝液を任意
に選ぶことができるが特にトリス緩衝液、リン酸緩衝液
が好ましく、中性塩溶液は通常用いられる中性塩溶液か
ら任意に選ぶことができるが、特にNaCl,KCIの
水溶液が好ましい。
に選ぶことができるが特にトリス緩衝液、リン酸緩衝液
が好ましく、中性塩溶液は通常用いられる中性塩溶液か
ら任意に選ぶことができるが、特にNaCl,KCIの
水溶液が好ましい。
本発明における吸着アンチトロンビン■分画の溶出液に
はpH 5、0〜5.5イオン強度1〜4の緩衝液かあ
るいは、pH4.0〜5.5の基質類似物を用いるもの
である。
はpH 5、0〜5.5イオン強度1〜4の緩衝液かあ
るいは、pH4.0〜5.5の基質類似物を用いるもの
である。
緩衝液はpH4.0〜5.5のpH域を示す緩衝液を任
意に選ぶことができるが、特に酢酸緩衝液がよく、中性
塩溶液は通常用いられる中性塩溶液から任意に選ぶこと
ができるがNaClの水溶液が好ましい。
意に選ぶことができるが、特に酢酸緩衝液がよく、中性
塩溶液は通常用いられる中性塩溶液から任意に選ぶこと
ができるがNaClの水溶液が好ましい。
基質類似物としては、ペンズアミジン、ニトoベンズア
ミジン、アミノベンズアミジンを挙げることができる。
ミジン、アミノベンズアミジンを挙げることができる。
0.INNaOH を用い、pH4.0〜5.5とし
て用いるものである。
て用いるものである。
次に本発明において使用される血漿タンパク質の状態に
ついて説明する。
ついて説明する。
血漿タンパク質の一つにフイブリノーゲンがある。
血液が体外に出ると凝固するが、これはフィブリノーゲ
ンがフイブリンとなって血栓をつくることが原因となっ
ている。
ンがフイブリンとなって血栓をつくることが原因となっ
ている。
したがってクロマトグラフイーにおいてもフイブリンが
折出し、担体に付着する。
折出し、担体に付着する。
この現象を防ぐため、フイブリンを除く前処理を施した
方が好ましい。
方が好ましい。
血漿を60℃で数分間加熱し、フイブリノーゲンを除去
後、用いることができる。
後、用いることができる。
血漿を低温でエタノールを用いてフイブリノーゲンを除
去すると共に沈澱、濃縮処理を行った後溶離緩衝液に溶
解して用℃・ることかできる。
去すると共に沈澱、濃縮処理を行った後溶離緩衝液に溶
解して用℃・ることかできる。
血漿に水溶性高分子を共存させてフイブリノーゲンを除
去する前処理として利用することができる。
去する前処理として利用することができる。
また、中性塩を共存させ、フイプリノーゲンを予め除去
後、塩強度を1.0以下になるように水で希釈し、用い
ることができる。
後、塩強度を1.0以下になるように水で希釈し、用い
ることができる。
したがって、本発明における血漿タンパク質を含む溶液
とは、水溶液、水溶性高分子、中性塩、またはアルコー
ル類を共存する水溶液を用いるものである。
とは、水溶液、水溶性高分子、中性塩、またはアルコー
ル類を共存する水溶液を用いるものである。
水溶性高分子とは、ポリエチレングリコール、ポリビニ
ルアルコール、ポリビニルピロリトン、ポリアクリル酸
、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシエチルデン
プンを挙げることができる。
ルアルコール、ポリビニルピロリトン、ポリアクリル酸
、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシエチルデン
プンを挙げることができる。
また、中性塩としては、NaCl,KCI、NH4Cl
,Na2SO4,K2SO4、(NH4)2S04を挙
げることができる。
,Na2SO4,K2SO4、(NH4)2S04を挙
げることができる。
アルコール類としては、炭素数2〜5を有するアルコー
ルを挙げることができる。
ルを挙げることができる。
以上、述べたように溶離液および血漿タンパク質を含む
溶液を通液あるいは混合し、不活化トロンビンゲルに吸
着させ、それを溶出液で回収しアフイニテイークロマト
グラフイーを行うものである。
溶液を通液あるいは混合し、不活化トロンビンゲルに吸
着させ、それを溶出液で回収しアフイニテイークロマト
グラフイーを行うものである。
本発明においてカラム法を用いる場合は不活化トロンビ
ンゲルはガラス製のカラム内に充填されたものをはじめ
処理量にみあった任意の大きさの種々のカラム内に充填
されて使用される。
ンゲルはガラス製のカラム内に充填されたものをはじめ
処理量にみあった任意の大きさの種々のカラム内に充填
されて使用される。
該カラムはあらかじめ溶離液を通し平衡化させてお《方
が望ましい。
が望ましい。
溶離液の流速は種々変化させることが出来るが、本発明
はアフイニテイークロマトグラフイー法を基本とするた
め、流速は0. 5 ml/cr;l以下であることが
より好ましい。
はアフイニテイークロマトグラフイー法を基本とするた
め、流速は0. 5 ml/cr;l以下であることが
より好ましい。
流速をさらに高めることは、溶離液中に1〜5単位/1
rllのヘパリンを共存させることにより可能である。
rllのヘパリンを共存させることにより可能である。
溶出液の流速は、使用した担体の機械的強度の範囲にお
いて変化させることができる。
いて変化させることができる。
また、溶出液に基質類似物を含む水溶液を用いた場合は
、本法による分離精製後、基質類似物を除去するためp
H7.0、イオン強度1.0以上の緩衝液中で、透析あ
るいは分子篩クロマトグラフイーを行い該物質の除去す
ること望ましい。
、本法による分離精製後、基質類似物を除去するためp
H7.0、イオン強度1.0以上の緩衝液中で、透析あ
るいは分子篩クロマトグラフイーを行い該物質の除去す
ること望ましい。
本発明において回分法を用いる場合も血漿タンパク質を
含む溶離液とゲルの量は処理量にみあって変化させるこ
とができる。
含む溶離液とゲルの量は処理量にみあって変化させるこ
とができる。
ゲルと溶液の混合時間は攪拌の度合あるいは容器の形状
により異なるが一般に2時間以上行なうことが望ましい
。
により異なるが一般に2時間以上行なうことが望ましい
。
この操作でアンチトロンビン■を吸着されたゲルは、ガ
ラスフィルター上等で溶離液により洗浄を行なった後、
前述のカラム法に準じ溶出液で洗浄しアンチトロンビン
■を回収するものである。
ラスフィルター上等で溶離液により洗浄を行なった後、
前述のカラム法に準じ溶出液で洗浄しアンチトロンビン
■を回収するものである。
以上の操作はアンチトロンビン■の活性を安定に保存す
るため低温で行うことが望ましい。
るため低温で行うことが望ましい。
以上、説明したように本発明は不活化トロンビンゲルを
用い種々の血漿タンパク混合液と接触させ、アンチトロ
ンピン■を特異的に吸着せしめ、それを溶出することに
より、迅速かつ簡便に、効率よ《分離精製できるもので
ある。
用い種々の血漿タンパク混合液と接触させ、アンチトロ
ンピン■を特異的に吸着せしめ、それを溶出することに
より、迅速かつ簡便に、効率よ《分離精製できるもので
ある。
以下、本発明を実施及び比較例により詳細に説明する。
実施例 1
アンヒドロトロンビンは人トロンビンから次に示す方法
により調製した。
により調製した。
精製したヒトα一トロンビン(710000単位、30
0雫)を50rrLMトリス緩衝液(pH8.0)に溶
解し、21℃で1000倍量のフエニルメタンスルホニ
ルフルオライドを加え30分間放置し、トロンビン活性
を消失させた。
0雫)を50rrLMトリス緩衝液(pH8.0)に溶
解し、21℃で1000倍量のフエニルメタンスルホニ
ルフルオライドを加え30分間放置し、トロンビン活性
を消失させた。
トロンビンのエステラーゼ活性を測定したところ99。
95%が失なわれた。その後50mM}リス緩衝液(p
H9.0)で平衡化した脱塩カラム(商品名一セファデ
ツクスG−25)で脱塩を行ない、そのまま4℃で1昼
夜放置した,この分画を5 0 mM }リス緩衝液(
pH 7.5 )で平衡化したペンズアミジンアガロ
ース力ラム(ゲル床容積30ml)に通液し、同緩衝液
で洗浄した15rIllづつ分取し、2 8 0 nm
の吸光度とFolin法によるタンパク量を測定したと
ころ第1図に示される如《不活化トロンビンの大半はこ
のカラムに吸着し基質結合能を有することが示された。
H9.0)で平衡化した脱塩カラム(商品名一セファデ
ツクスG−25)で脱塩を行ない、そのまま4℃で1昼
夜放置した,この分画を5 0 mM }リス緩衝液(
pH 7.5 )で平衡化したペンズアミジンアガロ
ース力ラム(ゲル床容積30ml)に通液し、同緩衝液
で洗浄した15rIllづつ分取し、2 8 0 nm
の吸光度とFolin法によるタンパク量を測定したと
ころ第1図に示される如《不活化トロンビンの大半はこ
のカラムに吸着し基質結合能を有することが示された。
これは第1図に示されるごとく、0.2Mペンズアミジ
7(pH 7.5 )で溶出され、IMNaClを含む
50mMトリス緩衝液( pH 7.5 )で透析し、
ペンズアミジンを除去し、アンヒドロトロンピンとした
。
7(pH 7.5 )で溶出され、IMNaClを含む
50mMトリス緩衝液( pH 7.5 )で透析し、
ペンズアミジンを除去し、アンヒドロトロンピンとした
。
つぎに、アンチトロンビン■にあらかじめアンヒドロト
ロンビンを加え37℃でインキュベートし、トロンピン
と混和し、フイブリノーゲン液に加え凝固時間を測定す
ることによりその活性の阻害率を調べアンチトロンビン
活性を測定した。
ロンビンを加え37℃でインキュベートし、トロンピン
と混和し、フイブリノーゲン液に加え凝固時間を測定す
ることによりその活性の阻害率を調べアンチトロンビン
活性を測定した。
アンヒドロトロンピンと共に加温することによりアンチ
トロンビン活性は低下し、アンチトロンビン■とアンヒ
ドロトロンビンが相互作用することが示された。
トロンビン活性は低下し、アンチトロンビン■とアンヒ
ドロトロンビンが相互作用することが示された。
また、アンヒドロトロンビンをトロンビンに加えてもそ
の活性が上昇しないことから、アンヒドロトロンビンが
活性を示さないことが確かめられた。
の活性が上昇しないことから、アンヒドロトロンビンが
活性を示さないことが確かめられた。
該アンヒドロドロンビンを0.1MNaHC03( p
H 8.3 )で透析し、活性化架橋アガロースゲル(
商品名一活性化CHセファローズ4B)と混合スること
によりアンヒドロトロンビンセファローズゲルを合成し
た。
H 8.3 )で透析し、活性化架橋アガロースゲル(
商品名一活性化CHセファローズ4B)と混合スること
によりアンヒドロトロンビンセファローズゲルを合成し
た。
実施例 2
血漿を60℃に3分間加熱後、低温にて遠心分離し、上
澄みを集め0.2μのポアーサイズを有するフィルター
を用いて濾過し、その4771lを不活化トロンビンセ
ファローズ力ラム(ケル床容積4771l)に通液し、
50TrLMトリス緩衝液( pH 7.5 )につづ
いて0.1MNaClを含む同緩衝液で洗浄後、MNa
C1を含む5 0 mM酢酸緩衝液( pH 5.5
)で吸着タンパク質を溶出した。
澄みを集め0.2μのポアーサイズを有するフィルター
を用いて濾過し、その4771lを不活化トロンビンセ
ファローズ力ラム(ケル床容積4771l)に通液し、
50TrLMトリス緩衝液( pH 7.5 )につづ
いて0.1MNaClを含む同緩衝液で洗浄後、MNa
C1を含む5 0 mM酢酸緩衝液( pH 5.5
)で吸着タンパク質を溶出した。
流速は1rnl/minとした。
その結果溶出物は波長280nrnの紫外部吸光度測定
により第2図に示す如く、爽雑タンパク質よりなるピー
クの他にpH5.5で溶出した分画があった。
により第2図に示す如く、爽雑タンパク質よりなるピー
クの他にpH5.5で溶出した分画があった。
この分画のアンチトロンビン■活性を測定し、アンチト
ロンビン■が含まれること、また第3図に示す如《、電
気泳動像より、極少量の爽雑タンパク質のみを含む、純
度の高いアンチトロンビン■分画であることが確認され
た。
ロンビン■が含まれること、また第3図に示す如《、電
気泳動像より、極少量の爽雑タンパク質のみを含む、純
度の高いアンチトロンビン■分画であることが確認され
た。
表1に示される如く、添加した加熱脱フイブリン血漿よ
り該アンチトロンビン■分画へのアンチトロンビン■の
活性回収率は90%であり、Folin法により測定し
たタンパク質量当りの活性の値は加熱脱フイプリン血漿
に比べて175倍に上昇した。
り該アンチトロンビン■分画へのアンチトロンビン■の
活性回収率は90%であり、Folin法により測定し
たタンパク質量当りの活性の値は加熱脱フイプリン血漿
に比べて175倍に上昇した。
電気泳動像においてみとめられる微量の爽雑タンパク質
は、陰イオン交換樹脂カラムクロマトグラフイー(商品
名一DEAEセファデックスA一50)により除去しさ
らに高純度のアンチトロンビン■を得ることができた。
は、陰イオン交換樹脂カラムクロマトグラフイー(商品
名一DEAEセファデックスA一50)により除去しさ
らに高純度のアンチトロンビン■を得ることができた。
(表1参照)実施例 3
実施例2において用いた溶出液を0.2Mペンズアミジ
ン( pH 5.5 )と変えfDL外は実施例2と同
様な操作・測定を行った。
ン( pH 5.5 )と変えfDL外は実施例2と同
様な操作・測定を行った。
ただし、アンチトロンビン■分画は、IMNaClを含
む50rrLMトリス緩衝液(pH7.5)で透析した
。
む50rrLMトリス緩衝液(pH7.5)で透析した
。
その結果、実施例2とほぼ同様の純度を保ち、アンチト
ロンビン■の活性も同程度に回収されることが確認され
た。
ロンビン■の活性も同程度に回収されることが確認され
た。
実施例 4
低温エタノール法を用いて人血漿タンパク質を分画する
方法は古<Cohnらにより系統的な分画法が開発され
( E , J , Cohn : Journal
ofAmerican Chemical Socie
ty , 6 8 : 4 5 9(1946))現在
も工業的に広く利用されている。
方法は古<Cohnらにより系統的な分画法が開発され
( E , J , Cohn : Journal
ofAmerican Chemical Socie
ty , 6 8 : 4 5 9(1946))現在
も工業的に広く利用されている。
ネ【 この
方法で分画されたIV−1ペイスト(湿重1グ)を4m
lの50771Mトリス緩衝液(pH7.5)に溶解し
、0.2μのポアーサイズを有するフィルターを用いて
濾過し、実施例2と同様な操作でアンチトロンビン■を
分離精製した。
方法で分画されたIV−1ペイスト(湿重1グ)を4m
lの50771Mトリス緩衝液(pH7.5)に溶解し
、0.2μのポアーサイズを有するフィルターを用いて
濾過し、実施例2と同様な操作でアンチトロンビン■を
分離精製した。
波長280nmの吸光度測定の結果、順次溶出するタン
パク質は実施例1と同様なピークに分れることを確認し
た。
パク質は実施例1と同様なピークに分れることを確認し
た。
実施例2と同様にpH5.5イオン強度4の溶出液で溶
出されるピークを採取したところ、表2に示される如《
、アンチトロンビン■の活性回収率は80%であり、効
率よく回収されていることが確認された。
出されるピークを採取したところ、表2に示される如《
、アンチトロンビン■の活性回収率は80%であり、効
率よく回収されていることが確認された。
また、タンパク当りのアンチトロンビン■の活性の比も
カラムに添加前に比べ177倍に上昇した。
カラムに添加前に比べ177倍に上昇した。
(表2参照)実施例 5
血漿に終濃度5 0 mMになるようにトリスアミノメ
タンを加え、0.IN塩酸でpH7.5とし冷却しなが
ら50%ポリエチレングリコール4000溶液を加え、
ポリエチレングリコールの最終濃度を15%とする。
タンを加え、0.IN塩酸でpH7.5とし冷却しなが
ら50%ポリエチレングリコール4000溶液を加え、
ポリエチレングリコールの最終濃度を15%とする。
低温にて遠心分離し上澄みを集め、フィルターを用いて
濾過し4TfLlを不活化トロンビンゲル力ラム(ゲル
床容積4ml)に添加し、実施例2とほぼ同程度の純度
のアンチトロンビン■を同程度の効率で回収できること
がわかった。
濾過し4TfLlを不活化トロンビンゲル力ラム(ゲル
床容積4ml)に添加し、実施例2とほぼ同程度の純度
のアンチトロンビン■を同程度の効率で回収できること
がわかった。
回収率は85%比活性はクロマトグラフイーの前後で1
65倍上昇した。
65倍上昇した。
実施例 6
実施例2において用いた溶離液を50TrLMトリス緩
衝液(pH8.0)と変えた以外は実施例2と同様な操
作・測定を行った。
衝液(pH8.0)と変えた以外は実施例2と同様な操
作・測定を行った。
その結果得られたアンチトロンビン■は、実施例とほぼ
同程度の純度であったが、活性の回収率は60%であっ
た。
同程度の純度であったが、活性の回収率は60%であっ
た。
実施例 7
実施例2において用いた溶離液をIMNaClを含む5
0 mM IJン酸緩衝液( pH 6.0 )と変
えた以外は実施例2と同様な操作・測定を行った。
0 mM IJン酸緩衝液( pH 6.0 )と変
えた以外は実施例2と同様な操作・測定を行った。
その結果アンチトロンビン■は、実施例とほぼ同程度の
純度であったが、活性の回収率は50%と牛や低かった
。
純度であったが、活性の回収率は50%と牛や低かった
。
実施例 8
血漿に低温で終濃度20%となるように
( NH4 ) 2 SO4の粉末を加え、30分間放
置後、遠心分離し、上澄を取り、50mMト’Jス緩衝
液(pH7.5)で100倍に希釈した。
置後、遠心分離し、上澄を取り、50mMト’Jス緩衝
液(pH7.5)で100倍に希釈した。
その後、フィルターを用いて濾過400mlを実施例2
と同様な純度のアンチトロンビン■を回収率約80%で
精製することができた。
と同様な純度のアンチトロンビン■を回収率約80%で
精製することができた。
実施例 9
回分法によりアンチトロンビン■を精製した。
実施例2と同様な操作で加熱によりフイブリノーゲンを
除去した血漿100Tnlを得た。
除去した血漿100Tnlを得た。
それに50mlのアンヒドロトロンビンゲルを加え、4
℃で3時間攪拌した。
℃で3時間攪拌した。
グラスフィルター上で吸引しながらゲルを回収し、さら
に250mlの0. 1 MNaC 1を含む50mM
}リス緩衝液( pH 7.5 )で洗浄後、100r
/Llの50mM酢酸緩衝液( pH 5.5 )でア
ンチトロンビン■分画を溶出した。
に250mlの0. 1 MNaC 1を含む50mM
}リス緩衝液( pH 7.5 )で洗浄後、100r
/Llの50mM酢酸緩衝液( pH 5.5 )でア
ンチトロンビン■分画を溶出した。
タンパク質量とアンチトロンビン■活性を測定したとこ
ろ、回収率は約80%であること比活性はクロマトグラ
フイー前後で150倍に上昇し、純度は実施例2に近い
ものであることが確認された。
ろ、回収率は約80%であること比活性はクロマトグラ
フイー前後で150倍に上昇し、純度は実施例2に近い
ものであることが確認された。
さらに、DEAEセファデックスカラムク口マトグラフ
イーを行ったところ高純度の標品が得られた。
イーを行ったところ高純度の標品が得られた。
実施例 10
実施例5と同様な操作で血漿にポリエチレングリコール
を加え、フイブリノーゲンを除去した後その150ml
を実施例9と同様な操作で回分法によりアンチトロンビ
ン■の分離精製を行った。
を加え、フイブリノーゲンを除去した後その150ml
を実施例9と同様な操作で回分法によりアンチトロンビ
ン■の分離精製を行った。
回収率、純度とも実施例7と同程度であった。
比較例 1
ヘパリンをリガンドとしたアガロースゲル(商品名一ヘ
パリンセファロース(CL6B)を充填したカラム(ゲ
ル床容積20ml)にコーンIV−1ペイスト(湿重5
グ)を20mlの50rrLMトリス緩衝液(pH7.
5)に溶解し濾過後添加した。
パリンセファロース(CL6B)を充填したカラム(ゲ
ル床容積20ml)にコーンIV−1ペイスト(湿重5
グ)を20mlの50rrLMトリス緩衝液(pH7.
5)に溶解し濾過後添加した。
同緩衝液1001rLlでカラムを洗浄後0〜2,OM
NaC1で直線的に濃度勾配をつけた同緩衝液で吸着タ
ンパク質を溶出した。
NaC1で直線的に濃度勾配をつけた同緩衝液で吸着タ
ンパク質を溶出した。
流速は0. 3 ml/minであった。
該溶出液は5ml毎に分取し、280nmの吸光度測定
およびアンチトロンビン■活性の測定を行った。
およびアンチトロンビン■活性の測定を行った。
その結果第4図に示す如く溶出される2つの爽雑タンパ
ク質ピークは各々アンチトロンビン■活性を示した。
ク質ピークは各々アンチトロンビン■活性を示した。
したがってアンチトロンビン■は三つのピークに分かれ
るが、その純度からアンチトロンビン■分画として採取
されるのは第3のピークのみである。
るが、その純度からアンチトロンビン■分画として採取
されるのは第3のピークのみである。
表3に示す如く、この分画のタンパク質当りのアンチト
ロンビン■活性は添加前と比べ150倍に上昇し、純度
が高い標品であることがわかった。
ロンビン■活性は添加前と比べ150倍に上昇し、純度
が高い標品であることがわかった。
しかし、アンチトロンビン■活性の回収率は30%と低
い値であり、効率が悪い。
い値であり、効率が悪い。
(表3参照)
第1図はアンヒドロトロンビンのペンズアミジンセファ
ローズアフイニテイークロマトグラムである。 ■. アンヒドロトロンビン 第2図および第4図はアンヒドロトロンビンセファロー
ズアフイニテイークロマトグラフイーにより分離された
血漿タンパク質混合液のクロマトグラムである。 2.アンチトロンビン■ 第3図は、アンヒドロトロンビンセファローズアフイニ
テイクロマトグラフイーにより精製されたアンチトロン
ビン■のポリアクリルアミドディスク電気泳動像である
。
ローズアフイニテイークロマトグラムである。 ■. アンヒドロトロンビン 第2図および第4図はアンヒドロトロンビンセファロー
ズアフイニテイークロマトグラフイーにより分離された
血漿タンパク質混合液のクロマトグラムである。 2.アンチトロンビン■ 第3図は、アンヒドロトロンビンセファローズアフイニ
テイクロマトグラフイーにより精製されたアンチトロン
ビン■のポリアクリルアミドディスク電気泳動像である
。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 親水性担体にアンヒドロトロンビンを結合した吸着
剤に、緩衝液、中性塩溶液および血漿タンパク質混合液
を含むpH 6〜8かつイオン強度O〜1の溶離液を接
触させることにより、アンチトロンビン■を特異的に吸
着せしめ、pH4.0〜5.5の中性塩溶液あるいは基
質類似物により溶出することを特徴とするアンチトロン
ビン■の分離精製法。 ただし、ここでいう基質類似物とは、トロンビンの競合
阻害剤のことである。 2 緩衝液力瓢 トリス緩衝液、リン酸緩衝液、酢酸緩
衝液である特許請求の範囲第1項記載の方法。 3 中性塩溶液が、NaC 1 、KC l , NH
4C 1、(NH4) 2So,である特許請求の範囲
第1項ないし第2項記載の方法。 4 基質類似物がペンズアミジン、アミノベンズアミ
ジン、ニトロベンズアミジンである特許請求の範囲第1
項記載の方法。 5 血漿タンパク質を含む溶液が水溶液である特許請求
の範囲第1項ないし第4項のいずれかの項記載の方法。 6 血漿タンパク質を含む溶液が中性塩を共存する溶液
である特許請求の範囲第1項ないし第4項のいずれかの
項記載の方法。 7 血漿タンパク質を含む溶液がポリエチレングリコー
ルなどの水溶性高分子を共存する水溶液である特許請求
の範囲第1項ないし第4項のいずれかの項記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56108289A JPS597694B2 (ja) | 1981-07-13 | 1981-07-13 | 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56108289A JPS597694B2 (ja) | 1981-07-13 | 1981-07-13 | 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5810522A JPS5810522A (ja) | 1983-01-21 |
| JPS597694B2 true JPS597694B2 (ja) | 1984-02-20 |
Family
ID=14480888
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP56108289A Expired JPS597694B2 (ja) | 1981-07-13 | 1981-07-13 | 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS597694B2 (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6582603B1 (en) | 1997-10-23 | 2003-06-24 | Fujimori Kogyo Co., Ltd. | Method for purifying thrombin substrate and/or inhibitors or method for eliminating the same |
| SE0203770D0 (sv) * | 2002-12-19 | 2002-12-19 | Biovitrum Ab | Method of separation |
-
1981
- 1981-07-13 JP JP56108289A patent/JPS597694B2/ja not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5810522A (ja) | 1983-01-21 |
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