JPS5936102A - シアル酸又はシアル酸含有物質の分離・精製法 - Google Patents
シアル酸又はシアル酸含有物質の分離・精製法Info
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Landscapes
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
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- Indole Compounds (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、特異的吸着体及びそれを用いるシアル酸又は
シアル酸含有物質の分離・精製法に関する。
シアル酸含有物質の分離・精製法に関する。
動物のホルモン及び神経伝達物質と考えられている
次式(■):
で示されるセロトニン(5−ヒドロキシトリプタミン喜
以下[5−HTJという。)は牛脳ガングリオシド類の
ミセル構造、ガングリオシド類を含むりぎシーム、フェ
ツイン特のシアル酸含有物質と結合することが知られて
いる(J。
以下[5−HTJという。)は牛脳ガングリオシド類の
ミセル構造、ガングリオシド類を含むりぎシーム、フェ
ツイン特のシアル酸含有物質と結合することが知られて
いる(J。
Neuroche・m・、、26.1193(1976
))。また、5−HTとサル脳ガングリオシド類との間
に、特異的な相互作用があることも知られている。
))。また、5−HTとサル脳ガングリオシド類との間
に、特異的な相互作用があることも知られている。
従来、シアル階含有タンパク質のアフィニティークロマ
トグラフィーによる精製には、高価なアメリカ産カブト
ガニ(Limulus polyph−emus )の
レクチン又は小麦胚芽凝集素(以下「WGA」という。
トグラフィーによる精製には、高価なアメリカ産カブト
ガニ(Limulus polyph−emus )の
レクチン又は小麦胚芽凝集素(以下「WGA」という。
)等を用いねばならず、その利用範囲が非常に制限され
ている。特に、WGAはN−アセチルグルコサミンとも
結合するという欠点もある。また、最近、インド産カブ
トガニ(Carcinoscorpius rotu
ndacauda ) のレクチンを不溶化してシア
ル酸含有物質を吸着させている報告(Ana I 、B
iochem、。
ている。特に、WGAはN−アセチルグルコサミンとも
結合するという欠点もある。また、最近、インド産カブ
トガニ(Carcinoscorpius rotu
ndacauda ) のレクチンを不溶化してシア
ル酸含有物質を吸着させている報告(Ana I 、B
iochem、。
115.130(1981))もあるが、他のレクチン
と同様の問題点を有している。これらの問題点を解決す
るために、5−HTを固定化してシアル酸含有物質を特
異的に吸着し、精製する方法L Carbohyd、R
es、、103(2) 、213 (1982)〕が開
発されたが、セロトニンは動物ホルモンとしての活性を
有するが、不安定で酸化され易い。従って、クレアチン
酸との複合体としてでなければ直ちに分解してしまい、
遊離の状態では入手困難であり、クレアチン酸を除失し
てから使用されているが、不安定なため調製が難しく、
工業的には不適である。
と同様の問題点を有している。これらの問題点を解決す
るために、5−HTを固定化してシアル酸含有物質を特
異的に吸着し、精製する方法L Carbohyd、R
es、、103(2) 、213 (1982)〕が開
発されたが、セロトニンは動物ホルモンとしての活性を
有するが、不安定で酸化され易い。従って、クレアチン
酸との複合体としてでなければ直ちに分解してしまい、
遊離の状態では入手困難であり、クレアチン酸を除失し
てから使用されているが、不安定なため調製が難しく、
工業的には不適である。
本発明者らは、前述の問題点を解消するため鋭意研究を
重ねた結果、 次式(■): で示される5−ヒドロキシインドール酢酸又は次式(■
): で示される5−ヒドロキシトリプトファンが固定化され
た不溶性高分子を得ることに成功し、更に、これらを吸
着体として用いることにより、前述の問題点を解消でき
ることを見出し、本発明を完成するに至った。
重ねた結果、 次式(■): で示される5−ヒドロキシインドール酢酸又は次式(■
): で示される5−ヒドロキシトリプトファンが固定化され
た不溶性高分子を得ることに成功し、更に、これらを吸
着体として用いることにより、前述の問題点を解消でき
ることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、
(式中、R1、R2及びR3はそれぞれ水素原子又はア
シル基を表わし+R4は水酸基、アシルオキシ基、アミ
ノ基又はアシルアミノ基を表わす。) で示される5−ヒドロキシインドール誘導体残基を有す
ることを特徴とする不溶性高分子、並びにそれを用いる
ことを特徴とするシアル酸又はシアル酸含有物質の分離
・精製法である。
シル基を表わし+R4は水酸基、アシルオキシ基、アミ
ノ基又はアシルアミノ基を表わす。) で示される5−ヒドロキシインドール誘導体残基を有す
ることを特徴とする不溶性高分子、並びにそれを用いる
ことを特徴とするシアル酸又はシアル酸含有物質の分離
・精製法である。
以下、本発明を更に詳細に説明する。
本発明に用いる5−ヒドロキシインドール酢酸及び5−
ヒドロキシトリプトファンは、5−)ITと同様に5−
ヒドロキシインドール骨格を有するが、5−HTに比し
著しく安定であり、遊離体が容易、かつ、安価に人手し
得るという長所を有する。更に、5−ヒドロキシトリプ
トファンは、担体と結合し得る官能基として、カルボキ
シル基と7ミノ基とを有するので、アミノ基又はヒドラ
ジノ基を有する担体とも、ホルミル基又はカルボキシル
基を有する担体とも結合させることができ、適用範囲が
広いという長所をも有する。また、両者のN−アセチル
ノイラミン酸(以下「NANAJという。)との親和力
を紫外線吸収法(Biochem、J、、劫、628(
1946))により測定したところ、5−HTとNAN
Aとの親和定数(Ka)が4.2X10 M−であるの
に対し、5−とドロキシインドール酢酸では1.9X1
0’M−1,5−ヒドロキシトリプトファンでは1.5
X10 M であった。
ヒドロキシトリプトファンは、5−)ITと同様に5−
ヒドロキシインドール骨格を有するが、5−HTに比し
著しく安定であり、遊離体が容易、かつ、安価に人手し
得るという長所を有する。更に、5−ヒドロキシトリプ
トファンは、担体と結合し得る官能基として、カルボキ
シル基と7ミノ基とを有するので、アミノ基又はヒドラ
ジノ基を有する担体とも、ホルミル基又はカルボキシル
基を有する担体とも結合させることができ、適用範囲が
広いという長所をも有する。また、両者のN−アセチル
ノイラミン酸(以下「NANAJという。)との親和力
を紫外線吸収法(Biochem、J、、劫、628(
1946))により測定したところ、5−HTとNAN
Aとの親和定数(Ka)が4.2X10 M−であるの
に対し、5−とドロキシインドール酢酸では1.9X1
0’M−1,5−ヒドロキシトリプトファンでは1.5
X10 M であった。
本発明の5−ヒドロキシインドール誘導体が固定化され
た不溶性高分子(以下[固定化5−HIJという。)の
うち、前記式(IV)又はMで示される5−ヒドロキシ
インドール誘導体残基(以−上l−5−)(I残基」と
いう。)を有するものは以下のようにして得ることがで
きる。
た不溶性高分子(以下[固定化5−HIJという。)の
うち、前記式(IV)又はMで示される5−ヒドロキシ
インドール誘導体残基(以−上l−5−)(I残基」と
いう。)を有するものは以下のようにして得ることがで
きる。
即チ、アカロース、セルロース、キチン、マンナン、ポ
リアクリルアミド系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂
等の水酸基を有する不溶性高分子を、既知の方法(有機
合成化学、第38巻、128〜138頁(1980年)
〕に従い、エピクロルヒドリン、エビブロムヒドリン等
のエビハロヒドリン蓼又は、エチレングリコールジグリ
シジルエーテル、1.3−プロパンジオールジグリシジ
ルエーテル、1.4−ブタンジオールジグリシジルエー
テル、1.5−ベンタンジオールジグリシジルエーテル
、1,6−ヘキサンシオールジグリシジルエーテル等の
ビスオキシラン化合物;で処理することにより得られる
エポキシ活性化不溶性高、分子を濃アンモニア水で処理
してアミノ化するか、又は、特願昭57−122835
号記載の方法に従い、ヒドラジン水化物、ヒドラジン水
化物塩、ヒドラジン硫酸塩等のヒドラジン類;又はシュ
ウ酸ジヒドラジド、マロン酸ジヒドラジド、コハク酸ジ
ヒドラジド、グルタル酸ジヒドラジド、アジピン酸ジヒ
ドラジド、ピメリン酸ジヒドラジド、スペリン醜ジヒド
ラジド、アゼライン酸ジヒドラジド、セバシン酸ジヒド
ラジド等の炭素数2〜12の直鎖状飽和ジカルボン酸ジ
ヒドラジド寥マレイン酸ジヒドラジド、7マル酸ジヒド
ラジド等の不飽和ジカルボン酸ジヒドラジド蓼及び7タ
ル酸ジヒドラジド、テレフタル酸ジヒドラジド等の芳香
族ジカルボン酸ジモドラジド等のジヒドラジド化合物で
処理することによりヒドラジノ化する。この時、エポキ
シ化の時間又はジヒドラジド化合物の種類等を適宜選択
することによって、基剤とリガンドとを結びつける腕(
スペーサー)の長さを調節することができる。とのよう
にして得たアミノ化担体又はヒドラジノ化担体に、カル
ボジイミド化合物の存在下において、5−ヒドロキシイ
ンドール酢酸又は5−ヒドロキシトリプトファンを、−
3〜8、好ましくは、−14〜6の条件下で、室温で5
0〜500時間、好ましくは、100〜300時間反応
させることにより目的とする固定化5−)(Iを得るこ
とができる。溶媒としては、一般には、水が用いられて
、必要に応じて、塩化ナトリウム、塩化カリウム等の塩
を、好ましくは、0.1〜2モル濃度、更に好ましくは
、0.3〜1モル濃度にあるように添加してもよい。カ
ルボジイミド化合物としては、1−エチル−3−(3−
ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド・塩酸塩(以
下「EDCJという。)、1−シクロヘキシル−3−(
2−モルホリノエチル)カルボジイミド・メソ−p−)
ルエンスルホン酸塩、ジシクロへキシルカルボジイミド
等が単独で又は二種以上の混合物として用いられる。こ
のようにして得た固定化5−HIは、未反応の(5−ヒ
ドロキシインドール誘導体が固定化されていない)アミ
ン基又はヒドラジ7基を無水酢酸等でアシル化して不活
性化することが好ましい。
リアクリルアミド系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂
等の水酸基を有する不溶性高分子を、既知の方法(有機
合成化学、第38巻、128〜138頁(1980年)
〕に従い、エピクロルヒドリン、エビブロムヒドリン等
のエビハロヒドリン蓼又は、エチレングリコールジグリ
シジルエーテル、1.3−プロパンジオールジグリシジ
ルエーテル、1.4−ブタンジオールジグリシジルエー
テル、1.5−ベンタンジオールジグリシジルエーテル
、1,6−ヘキサンシオールジグリシジルエーテル等の
ビスオキシラン化合物;で処理することにより得られる
エポキシ活性化不溶性高、分子を濃アンモニア水で処理
してアミノ化するか、又は、特願昭57−122835
号記載の方法に従い、ヒドラジン水化物、ヒドラジン水
化物塩、ヒドラジン硫酸塩等のヒドラジン類;又はシュ
ウ酸ジヒドラジド、マロン酸ジヒドラジド、コハク酸ジ
ヒドラジド、グルタル酸ジヒドラジド、アジピン酸ジヒ
ドラジド、ピメリン酸ジヒドラジド、スペリン醜ジヒド
ラジド、アゼライン酸ジヒドラジド、セバシン酸ジヒド
ラジド等の炭素数2〜12の直鎖状飽和ジカルボン酸ジ
ヒドラジド寥マレイン酸ジヒドラジド、7マル酸ジヒド
ラジド等の不飽和ジカルボン酸ジヒドラジド蓼及び7タ
ル酸ジヒドラジド、テレフタル酸ジヒドラジド等の芳香
族ジカルボン酸ジモドラジド等のジヒドラジド化合物で
処理することによりヒドラジノ化する。この時、エポキ
シ化の時間又はジヒドラジド化合物の種類等を適宜選択
することによって、基剤とリガンドとを結びつける腕(
スペーサー)の長さを調節することができる。とのよう
にして得たアミノ化担体又はヒドラジノ化担体に、カル
ボジイミド化合物の存在下において、5−ヒドロキシイ
ンドール酢酸又は5−ヒドロキシトリプトファンを、−
3〜8、好ましくは、−14〜6の条件下で、室温で5
0〜500時間、好ましくは、100〜300時間反応
させることにより目的とする固定化5−)(Iを得るこ
とができる。溶媒としては、一般には、水が用いられて
、必要に応じて、塩化ナトリウム、塩化カリウム等の塩
を、好ましくは、0.1〜2モル濃度、更に好ましくは
、0.3〜1モル濃度にあるように添加してもよい。カ
ルボジイミド化合物としては、1−エチル−3−(3−
ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド・塩酸塩(以
下「EDCJという。)、1−シクロヘキシル−3−(
2−モルホリノエチル)カルボジイミド・メソ−p−)
ルエンスルホン酸塩、ジシクロへキシルカルボジイミド
等が単独で又は二種以上の混合物として用いられる。こ
のようにして得た固定化5−HIは、未反応の(5−ヒ
ドロキシインドール誘導体が固定化されていない)アミ
ン基又はヒドラジ7基を無水酢酸等でアシル化して不活
性化することが好ましい。
また、前記(VI)又は(■)で示される5−HI残基
を有する不溶性高分子は以下のようにして得ることがで
きる。
を有する不溶性高分子は以下のようにして得ることがで
きる。
即ち、前述のアミノ化担体又はヒドラジノ化担体を、無
水コハク酸で処理し、スクシニル化担体とした後、前記
カルボジイミド化合物の存在下において、5−ヒドロキ
シトリプトファンと反応させることにより目的とする固
定化5−HIを得ることができる。また、アミノ化担体
又はヒドラジノ化担体を、水素化シアノホウ素ナトリウ
ムの存在下において、グリオキサール、プロパンジアー
ル、ブタンジアール、グルタルアルデヒド(ペンタンジ
アール)、デカンジアール等のジアルデヒド化合物で処
理して、ホルミル化担体とした後、水素化シアノホウ素
ナトリウムの存在下において、5−とドロ、キシトリプ
トファンと反応させても、目的とする固定化5−HIを
得ることができる。
水コハク酸で処理し、スクシニル化担体とした後、前記
カルボジイミド化合物の存在下において、5−ヒドロキ
シトリプトファンと反応させることにより目的とする固
定化5−HIを得ることができる。また、アミノ化担体
又はヒドラジノ化担体を、水素化シアノホウ素ナトリウ
ムの存在下において、グリオキサール、プロパンジアー
ル、ブタンジアール、グルタルアルデヒド(ペンタンジ
アール)、デカンジアール等のジアルデヒド化合物で処
理して、ホルミル化担体とした後、水素化シアノホウ素
ナトリウムの存在下において、5−とドロ、キシトリプ
トファンと反応させても、目的とする固定化5−HIを
得ることができる。
以上のようにして得られた固定化5− HIは、洗浄後
、適当に緩衝化することにより、チログロブリン、ゴナ
ドトロピン、卵胞刺激ホルモン(FSH)、下垂体黄体
化ホルモン(1) L I−1)、エリスロボエチン(
EPO)等のシアロクルコホルモン、及びセルロプラス
ミン、フェツイン、フィブリノーゲン、α1−グリフプ
ロティン、ハプトグロブリン、α2−マクログロブリン
、トランスフェリン、オロソムフイド等の血中タンパク
質の分離・精製冨これらの化合物をプロテアーゼ等を用
いてシアル酸を含む糖鎖が外れないように分解して生ず
る各種シアーロペプチドとシアル酸を含まないペプチド
との分離寥シアロペブチド間におけるシアル酔含有喰の
差による相互分N6 +コロミン酸、シアリルラクトー
ス等のシアル酸含有多糖、オリゴ糖及びシアル酸そのも
のの分離・精製I細胞中のシアル酸を含む細胞器官及び
細胞断片の分離・精製;細胞表面におけるシアル酸含有
喰の差による血球及び培養細胞等の分離・精製を等に広
く利用できる。
、適当に緩衝化することにより、チログロブリン、ゴナ
ドトロピン、卵胞刺激ホルモン(FSH)、下垂体黄体
化ホルモン(1) L I−1)、エリスロボエチン(
EPO)等のシアロクルコホルモン、及びセルロプラス
ミン、フェツイン、フィブリノーゲン、α1−グリフプ
ロティン、ハプトグロブリン、α2−マクログロブリン
、トランスフェリン、オロソムフイド等の血中タンパク
質の分離・精製冨これらの化合物をプロテアーゼ等を用
いてシアル酸を含む糖鎖が外れないように分解して生ず
る各種シアーロペプチドとシアル酸を含まないペプチド
との分離寥シアロペブチド間におけるシアル酔含有喰の
差による相互分N6 +コロミン酸、シアリルラクトー
ス等のシアル酸含有多糖、オリゴ糖及びシアル酸そのも
のの分離・精製I細胞中のシアル酸を含む細胞器官及び
細胞断片の分離・精製;細胞表面におけるシアル酸含有
喰の差による血球及び培養細胞等の分離・精製を等に広
く利用できる。
固定化5− HIに吸着したシアル酸又はシアル酸含有
物質を溶離するには、一般には、1μM〜4Mの濃度範
囲のサリチル酸、サリチル酢塩、(N I(+ ) 2
CO3、NH411CO3を含有する水溶液又緩衝液が
用いられる。
物質を溶離するには、一般には、1μM〜4Mの濃度範
囲のサリチル酸、サリチル酢塩、(N I(+ ) 2
CO3、NH411CO3を含有する水溶液又緩衝液が
用いられる。
本発明によれば、容易、かつ、安価に高いリガンド濃度
を有する固定化5−HIを得ることができ、更に、これ
を用いることにより、シアル酸又はシアル酸含有物質を
効率よく分離・精製することができる。
を有する固定化5−HIを得ることができ、更に、これ
を用いることにより、シアル酸又はシアル酸含有物質を
効率よく分離・精製することができる。
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、こ
れらの実施例は、本発明の範囲を何隻制限するものでは
ない。
れらの実施例は、本発明の範囲を何隻制限するものでは
ない。
実施例1
アガロースとしてファルマシア社製のセファロースCL
6Bを用いた。グラスフィルター上で水でよく洗浄後、
吸引濾過したアガロース30りをフラスコに入れ、水4
5d、2MNaOH水溶液19.5−及びエピクロルヒ
ドリン4.5−を順次加えた。懸濁液を4Orのインキ
ュベーター中で3時間振盪後、グラスフィルター上で水
で充分に洗浄してエポキシ活性化アガロースを得た。こ
のエポキシ活性化アガロースに導入されたエポキシ基の
量をN a 2 S 203を用いる中和滴定法により
測定したところ、層重1111j’当たり、67.2μ
moleのエポキシ基が導入されていた。
6Bを用いた。グラスフィルター上で水でよく洗浄後、
吸引濾過したアガロース30りをフラスコに入れ、水4
5d、2MNaOH水溶液19.5−及びエピクロルヒ
ドリン4.5−を順次加えた。懸濁液を4Orのインキ
ュベーター中で3時間振盪後、グラスフィルター上で水
で充分に洗浄してエポキシ活性化アガロースを得た。こ
のエポキシ活性化アガロースに導入されたエポキシ基の
量をN a 2 S 203を用いる中和滴定法により
測定したところ、層重1111j’当たり、67.2μ
moleのエポキシ基が導入されていた。
このエポキシ活性化アガロースに80%ヒドラジン水化
物水溶液30L/を加え、40Cのインキュベーター中
で2時間振盪した。反応後、グラスフィルター上で水で
充分に洗浄してヒドラジノ化アガロースを得た。
物水溶液30L/を加え、40Cのインキュベーター中
で2時間振盪した。反応後、グラスフィルター上で水で
充分に洗浄してヒドラジノ化アガロースを得た。
(1)で得たヒドラジノ化アガロース9yを0.5MN
aC1水溶液isyに懸濁した後、5−ヒドロキシイン
ドール酢酸100■とEDCo、3Fを加え、…を5に
調整し、室温で140時間反応させた。次いで、水で充
分に洗浄した後、無水酢酸を加えて、OCで30分間、
更に室温で30分間処理して、未反応の(5−ヒドロキ
シインドール酢酸が固定化されていない)ヒドラジ7基
をアセチル化した。反応後、充分に洗浄して目的とする
固定化5−ヒドロキシインドール酢酸を得た。この固定
化5−ヒドロキシインドール酢酸に固定化された5−ヒ
ドロキシインドール酢酸の級を紫外部吸収測定法により
測定したところ、層重11y当たり51.6μmole
の5−ヒドロキシインドール酢酸が固定化されているこ
とが判明した。
aC1水溶液isyに懸濁した後、5−ヒドロキシイン
ドール酢酸100■とEDCo、3Fを加え、…を5に
調整し、室温で140時間反応させた。次いで、水で充
分に洗浄した後、無水酢酸を加えて、OCで30分間、
更に室温で30分間処理して、未反応の(5−ヒドロキ
シインドール酢酸が固定化されていない)ヒドラジ7基
をアセチル化した。反応後、充分に洗浄して目的とする
固定化5−ヒドロキシインドール酢酸を得た。この固定
化5−ヒドロキシインドール酢酸に固定化された5−ヒ
ドロキシインドール酢酸の級を紫外部吸収測定法により
測定したところ、層重11y当たり51.6μmole
の5−ヒドロキシインドール酢酸が固定化されているこ
とが判明した。
(2)で得た吸着体IP(湿重量)をミニカラム(9″
′gφX10%)(生化学工業■製、セパコールミニカ
ラム(商品名)〕に充填し、水洗後、1 tt mol
eSONAN A水溶液(pH3,6)を過剰量を流し
た後、水洗し、次いで10 mM (NH4)2CO3
水溶液(+)H9,1)で溶出した。溶出液中のNAN
Aをレゾルシン法により測定したところ、湿重量IP当
たり43.4μmoleのNANAが吸着されていたこ
とが判明した。
′gφX10%)(生化学工業■製、セパコールミニカ
ラム(商品名)〕に充填し、水洗後、1 tt mol
eSONAN A水溶液(pH3,6)を過剰量を流し
た後、水洗し、次いで10 mM (NH4)2CO3
水溶液(+)H9,1)で溶出した。溶出液中のNAN
Aをレゾルシン法により測定したところ、湿重量IP当
たり43.4μmoleのNANAが吸着されていたこ
とが判明した。
実施例2
シアログリコペブチドの分離・精製
実施例1(2)で得た吸着体1y(湿重量)を実施例1
(3)と同様のミニカラムに充填し、水洗後、ブタ甲状
腺のチログロブリンをプロテアーゼで分解して得たグリ
コペプチド混合物2.5 wUiの水溶液を流した後、
水洗し、素通り画分として、シアル酸の検出されないグ
リコペプチド(マンノースに換算して約260μりの糖
を含む)を得た。次いで、10mMNH4HCO3水溶
液で溶出したところ、初めにシアル酸含有暇の少ないシ
アログリコペプチド(マンノースに換算して370μm
の糖及びシアル酸100μ7 を含む)が得られ、次い
でシアル酸含有級の多いシアログリコベプチド(マンノ
ースに換算して490μ)の糖及びシアル酸150μノ
を含む)が得られた。
(3)と同様のミニカラムに充填し、水洗後、ブタ甲状
腺のチログロブリンをプロテアーゼで分解して得たグリ
コペプチド混合物2.5 wUiの水溶液を流した後、
水洗し、素通り画分として、シアル酸の検出されないグ
リコペプチド(マンノースに換算して約260μりの糖
を含む)を得た。次いで、10mMNH4HCO3水溶
液で溶出したところ、初めにシアル酸含有暇の少ないシ
アログリコペプチド(マンノースに換算して370μm
の糖及びシアル酸100μ7 を含む)が得られ、次い
でシアル酸含有級の多いシアログリコベプチド(マンノ
ースに換算して490μ)の糖及びシアル酸150μノ
を含む)が得られた。
実施例3
ビニル系クロマト基剤[Toyopearl HW
65(商品名))10yを水15+1!4!に懸濁した
後、2MNaOH水溶液6.5 ml及びエピクロルヒ
ドリン2、3 mlを順次加えた。懸濁液を40Cのイ
ンキュベーター中で3時間振盪後、グラスフィルター上
で水で充分に洗浄してエポキシ活性化基剤を得た。これ
に、アジピン酸ジヒドラジド1.2F I O,I M
Na2CO3水溶液8mlに懸濁しタモノを加え、4
0Cで一夜反応させた。途中、…を9に調整した。反応
後、グラスフィルター上で水で充分に洗浄してヒドラジ
ノ化基剤を得た。
65(商品名))10yを水15+1!4!に懸濁した
後、2MNaOH水溶液6.5 ml及びエピクロルヒ
ドリン2、3 mlを順次加えた。懸濁液を40Cのイ
ンキュベーター中で3時間振盪後、グラスフィルター上
で水で充分に洗浄してエポキシ活性化基剤を得た。これ
に、アジピン酸ジヒドラジド1.2F I O,I M
Na2CO3水溶液8mlに懸濁しタモノを加え、4
0Cで一夜反応させた。途中、…を9に調整した。反応
後、グラスフィルター上で水で充分に洗浄してヒドラジ
ノ化基剤を得た。
(1)で得たヒドラジノ化基剤を0.5 M NaC1
水溶液に懸濁した後、5−ヒドロキシインドール酢酸3
00■とEDC11!を加え、…を5に調整し、室温で
300時間反応させた。次いで、水で充分に洗浄した後
、無水酢酸を加えて、OCで30分間、更に室温で30
分間処理して、未反応のヒドラジノ基をアセチル化した
。反応後、充分に洗浄して目的とする固定化5′−ヒド
ロキシインドール酢酸を得た。
水溶液に懸濁した後、5−ヒドロキシインドール酢酸3
00■とEDC11!を加え、…を5に調整し、室温で
300時間反応させた。次いで、水で充分に洗浄した後
、無水酢酸を加えて、OCで30分間、更に室温で30
分間処理して、未反応のヒドラジノ基をアセチル化した
。反応後、充分に洗浄して目的とする固定化5′−ヒド
ロキシインドール酢酸を得た。
(2)で得たビニル系吸着体10y(湿重量)をカラム
(13へφ×80%)〔生化学工業■製、プラクティ・
カラム(商品名)〕に充填し、7エライン及びノイラミ
ニダーゼ(5treptococcus由来を生化学工
業側部)処理したフェツインの混合物10■の水溶液を
流した後、水洗し、素通り画分として、約半吸のタンパ
ク質を得た。
(13へφ×80%)〔生化学工業■製、プラクティ・
カラム(商品名)〕に充填し、7エライン及びノイラミ
ニダーゼ(5treptococcus由来を生化学工
業側部)処理したフェツインの混合物10■の水溶液を
流した後、水洗し、素通り画分として、約半吸のタンパ
ク質を得た。
このタンパク質はアシアロ7エツインであることが、シ
アル酸の測定結果から判明した。次いで、t o mM
NH,HCO3水溶液で溶出して、更に、約半歌の7エ
ツインを得た。
アル酸の測定結果から判明した。次いで、t o mM
NH,HCO3水溶液で溶出して、更に、約半歌の7エ
ツインを得た。
実施例4
(1) 固定化5−ヒドロキシトリプトファンの調製
−一一−1−一一一、−m−− 顆粒状セルロース系ゲル濾過剤〔セルロファインGC7
00(商品名)〕のヒドラジノ化体12りを0.5 M
NaC1水溶液18mに懸濁した後、無水コハク酸0
.96j’を加え、…を4に調整し、室温で2時間振盪
攪拌した。水洗後、o、1MNaOH水溶液18tnl
を加え、室温で30分間放置して、スクシニル化担体を
得た。このスクシニル化担体5y(層重1りに、5−ヒ
ドロキシ) !J 7’ ) 77ンlQQmpを水1
3−に溶解した40を加えた後、NaC1O,38Fト
EDC0,17yを加えてよく攪拌し、…を5に調整し
て室温で200時間反応させた後、充分に洗浄して目的
とする固定化5−ヒドロキシトリプトファンを得た。
−一一−1−一一一、−m−− 顆粒状セルロース系ゲル濾過剤〔セルロファインGC7
00(商品名)〕のヒドラジノ化体12りを0.5 M
NaC1水溶液18mに懸濁した後、無水コハク酸0
.96j’を加え、…を4に調整し、室温で2時間振盪
攪拌した。水洗後、o、1MNaOH水溶液18tnl
を加え、室温で30分間放置して、スクシニル化担体を
得た。このスクシニル化担体5y(層重1りに、5−ヒ
ドロキシ) !J 7’ ) 77ンlQQmpを水1
3−に溶解した40を加えた後、NaC1O,38Fト
EDC0,17yを加えてよく攪拌し、…を5に調整し
て室温で200時間反応させた後、充分に洗浄して目的
とする固定化5−ヒドロキシトリプトファンを得た。
(2)細胞分化因子の分離・精製
(1)で得た固定化5−ヒドロキシトリプトファン5F
(層重軟)をカラム(13瓢φX40%)〔生化学工業
■製、プラクティ・カラム(商品名)〕に充填し、細胞
分化因子を含有するヒト尿を透析、ゲル濾過等で尿素、
塩類及び単糖、オリゴ糖、その他の低分子化合物を除失
し、濃縮したもの5*l(々ンパク質濃度10q/m/
)を流して、水洗後、10mMIJン酸緩衝液(pI(
7)を流して、アルブミン等の夾雑タンパク質の一部を
溶出除去した。次いで、10〜100mMサリチル酸ナ
トリウムを含む0.1 Mリン酸緩衝液で溶出すること
により、タンパク質当たりの比活性を約5倍上昇させる
ことができた。
(層重軟)をカラム(13瓢φX40%)〔生化学工業
■製、プラクティ・カラム(商品名)〕に充填し、細胞
分化因子を含有するヒト尿を透析、ゲル濾過等で尿素、
塩類及び単糖、オリゴ糖、その他の低分子化合物を除失
し、濃縮したもの5*l(々ンパク質濃度10q/m/
)を流して、水洗後、10mMIJン酸緩衝液(pI(
7)を流して、アルブミン等の夾雑タンパク質の一部を
溶出除去した。次いで、10〜100mMサリチル酸ナ
トリウムを含む0.1 Mリン酸緩衝液で溶出すること
により、タンパク質当たりの比活性を約5倍上昇させる
ことができた。
実施例5
(1) 固定化5−ヒドロキシインドール酢酸(7)
#il顆粒状セルロース系ゲルp過剤〔セルロファイン
G C15m (商品名))10yを水15mに懸濁し
た後、2 M NaOH7ml 及びエピクロルヒドリ
ン2.5−を順次加えた。懸濁液を40cツインキユベ
ーター中で4時間振盪後、グラスフィルター上で水で充
分に洗浄してエポキシ活性化基剤を得た。これに、アジ
ピン酸ジヒドラジド1.2yを0.1 M N a 2
CO3水溶液f3tttlニ懸濁したものを加え、声
を9に調整し、40cで一夜反応させた。反応後、グラ
スフィルター上で水で充分に洗浄してヒドラジノ化基剤
を得た。
#il顆粒状セルロース系ゲルp過剤〔セルロファイン
G C15m (商品名))10yを水15mに懸濁し
た後、2 M NaOH7ml 及びエピクロルヒドリ
ン2.5−を順次加えた。懸濁液を40cツインキユベ
ーター中で4時間振盪後、グラスフィルター上で水で充
分に洗浄してエポキシ活性化基剤を得た。これに、アジ
ピン酸ジヒドラジド1.2yを0.1 M N a 2
CO3水溶液f3tttlニ懸濁したものを加え、声
を9に調整し、40cで一夜反応させた。反応後、グラ
スフィルター上で水で充分に洗浄してヒドラジノ化基剤
を得た。
これを0.5 M NaC]水溶液に懸濁した後、5−
ヒドロキシインドール酢酸300〜とEDclりを加え
、…を5に調整し、室温で200時間反応させた。次い
で、水で充分に洗浄した後、無水酢酸を加えて、OCで
30分間、更に室温で30分間処理して、未反応のヒド
ラジノ基をアセチル化した。反応後、充分に洗浄して目
的とする固定化5−ヒドロキシインドール酢酸を得た。
ヒドロキシインドール酢酸300〜とEDclりを加え
、…を5に調整し、室温で200時間反応させた。次い
で、水で充分に洗浄した後、無水酢酸を加えて、OCで
30分間、更に室温で30分間処理して、未反応のヒド
ラジノ基をアセチル化した。反応後、充分に洗浄して目
的とする固定化5−ヒドロキシインドール酢酸を得た。
(2) ヒト赤血球の分離・精製
(1)で得た固定化5−ヒドロキシインドール酢酸1り
(層重蔽)を、ノイラミニダーゼ処理したヒト0型赤血
球及び未処理ヒ)0型赤血球の等量混合懸濁液(PBS
中計4%含有)2*lに加え、室温に10分間置く。こ
の間、数回軽く振盪して吸着を促進した。次いで、33
0〜350メツシユ(30〜35μm)のナイロン又は
ポリエチレンメツシュで濾過し、PH1で洗浄すると、
血球の一部が濾過され、一部は吸着剤に結合していた。
(層重蔽)を、ノイラミニダーゼ処理したヒト0型赤血
球及び未処理ヒ)0型赤血球の等量混合懸濁液(PBS
中計4%含有)2*lに加え、室温に10分間置く。こ
の間、数回軽く振盪して吸着を促進した。次いで、33
0〜350メツシユ(30〜35μm)のナイロン又は
ポリエチレンメツシュで濾過し、PH1で洗浄すると、
血球の一部が濾過され、一部は吸着剤に結合していた。
血球が吸着されている吸着剤(赤色)を10mMサリチ
ル酸ナトリウムを含む10M NH4HCO3水溶液(
岨8.5)で洗浄したところ、血球が脱離した。それぞ
れの血球についてビーナツツレクチンによる凝集性を調
べたところ、吸着されない血球は凝集せず、吸着後脱離
した血球は凝集した。以上のことから細胞表面にシアル
酸を有する細胞と有さない細胞と力(本発明の吸着体に
より分離できることが判明した。
ル酸ナトリウムを含む10M NH4HCO3水溶液(
岨8.5)で洗浄したところ、血球が脱離した。それぞ
れの血球についてビーナツツレクチンによる凝集性を調
べたところ、吸着されない血球は凝集せず、吸着後脱離
した血球は凝集した。以上のことから細胞表面にシアル
酸を有する細胞と有さない細胞と力(本発明の吸着体に
より分離できることが判明した。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (式中、R,R及び几はそれぞれ水素原子又はアシル基
を表わし、几は水酸基、アシルオキシ基、アミ7基又は
アシルアミノ基を表わす。) で示される5−ヒドロキシインドール誘導体残基を有す
ることを特徴とする不溶性高分子。 2 次式: (式中、R1、R2及びR3はそれぞれ水素原子又はア
シル基を表わし、 R4は水酸基、アシルオキシ基、ア
ミノ基又はアシルアミノ基を表わす。) で示される5−ヒドロキシインドール誘導体残基を有す
る不溶性高分子を、吸着体として用いることを特徴とす
るシアル酸又はシアル酸含有物質の分離・精製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57145563A JPS5936102A (ja) | 1982-08-24 | 1982-08-24 | シアル酸又はシアル酸含有物質の分離・精製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57145563A JPS5936102A (ja) | 1982-08-24 | 1982-08-24 | シアル酸又はシアル酸含有物質の分離・精製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5936102A true JPS5936102A (ja) | 1984-02-28 |
| JPH0214924B2 JPH0214924B2 (ja) | 1990-04-10 |
Family
ID=15388025
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57145563A Granted JPS5936102A (ja) | 1982-08-24 | 1982-08-24 | シアル酸又はシアル酸含有物質の分離・精製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5936102A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2007011055A1 (ja) * | 2005-07-19 | 2007-01-25 | Otsuka Chemical Co., Ltd. | 糖鎖誘導体の製造方法、構造解析方法、及び糖鎖誘導体 |
-
1982
- 1982-08-24 JP JP57145563A patent/JPS5936102A/ja active Granted
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2007011055A1 (ja) * | 2005-07-19 | 2007-01-25 | Otsuka Chemical Co., Ltd. | 糖鎖誘導体の製造方法、構造解析方法、及び糖鎖誘導体 |
| AU2006270732B2 (en) * | 2005-07-19 | 2010-06-24 | Glytech, Inc. | Process for producing sugar chain derivative, structure analysis method, and sugar chain derivative |
| CN101223194B (zh) | 2005-07-19 | 2011-04-13 | 大塚化学株式会社 | 糖链衍生物的制造方法、结构解析方法、以及糖链衍生物 |
| AU2010202058B2 (en) * | 2005-07-19 | 2011-10-06 | Glytech, Inc. | Process for producing sugar chain derivative, structure analysis method, and sugar chain derivative |
| AU2010202058C1 (en) * | 2005-07-19 | 2012-07-26 | Glytech, Inc. | Process for producing sugar chain derivative, structure analysis method, and sugar chain derivative |
| JP5011108B2 (ja) * | 2005-07-19 | 2012-08-29 | 大塚化学株式会社 | 糖鎖誘導体の製造方法、構造解析方法、及び糖鎖誘導体 |
| US8318694B2 (en) | 2005-07-19 | 2012-11-27 | Otsuka Chemical Co., Ltd. | Process for producing sugar chain derivative, structure analysis method, and sugar chain derivative |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0214924B2 (ja) | 1990-04-10 |
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