JPS6024712B2 - セルラ−ゼの生産方法 - Google Patents

セルラ−ゼの生産方法

Info

Publication number
JPS6024712B2
JPS6024712B2 JP3843483A JP3843483A JPS6024712B2 JP S6024712 B2 JPS6024712 B2 JP S6024712B2 JP 3843483 A JP3843483 A JP 3843483A JP 3843483 A JP3843483 A JP 3843483A JP S6024712 B2 JPS6024712 B2 JP S6024712B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
enzyme
cellulase
cellulose
polyethylene glycol
action
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP3843483A
Other languages
English (en)
Other versions
JPS59166083A (ja
Inventor
安 三石
倫 山辺
義幸 高崎
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
Original Assignee
Agency of Industrial Science and Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Agency of Industrial Science and Technology filed Critical Agency of Industrial Science and Technology
Priority to JP3843483A priority Critical patent/JPS6024712B2/ja
Priority to US06/586,723 priority patent/US4562150A/en
Publication of JPS59166083A publication Critical patent/JPS59166083A/ja
Publication of JPS6024712B2 publication Critical patent/JPS6024712B2/ja
Expired legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、ァクレモニウム属菌によるセルラーゼの緒造
方法に関するものである。
セルラーゼはセルロースをグルコースまたはセロビオー
スやセロオリゴ糖にまで分解する酵素反応系を触媒する
酵素群の総称であり、その作用様式により、C,酵素、
Cx酵素とB−グルコシダーゼあるいはエキソー8ーグ
ルカナーゼ、エンド‐Bーグルカナーゼとセロビアーゼ
など種々の名称で呼ばれる酵素で構成されているが、い
まだその実体は明らかでない。
それは、セルラーゼを生産する微生物起源により、結晶
性セルロース、カルボキシメチルセルロース(CMC)
、セロデキストリン、セロオリゴ糖、セロビオース等に
対する作用様式の異なる酵素が多種多様に存在すること
と、天然セルロースの構造上の複雑さに起因している。
しかし、セルラーゼは、これら複数の酵素が調和のとれ
た相互作用をすることによりセルロースをその構成糖に
分解する複合酵素である。近年、セルラーゼはバイオマ
ス資源の有効利用を図るという観点から注目を集め、盛
んに研究されるようになった。しかし、従来、よく知ら
れているトリコデルマ属やアスベルギルス属等の微生物
の生産するセルラーゼは天然セルロースに対する分解力
が充分でなく、またセルロースを完全にグルコースに分
解できないでセロビオースや、それ以上のセロオリゴ糖
を多量に生成するなどの問題があった。更にまた、従来
、知られているセルラーゼは、通常、熱安定性に劣って
いるため、長時間の糖化反応では45〜50q0程度で
の反応しか行えないため、糖化中いまいま雑菌に汚染さ
れるという危険があった。本発明者らは、結晶性セルロ
ースに対する分解力が優れ、且つグルコースへの糖化力
の優れたセルラーゼ生産菌を求めて、広く自然界より微
生物の検索を行ってきた結果、土壌中より分離し、アク
レモニウム(Acremonium)属と同定した糸状
菌を分離した。
そしてこの菌の生産するセルラーゼを工業的に使用すべ
く、生産力価の向上について、鋭意、研究を続けてきた
結果、セルラーゼを生産するアクレモニウム属菌をポリ
エチレングリコールの存在下で培養するとセルラーゼの
生産量が顕著に増加することを認めた。本発明はこの知
見にもとづいてなされたものである。すなわち、本発明
はセルラーゼを生産するアクレモニゥム属菌を培養して
セルラーゼを生産するに際し、ポリエチレングリコール
の存在下で培養することを特徴とするセルラーゼの生産
方法に関するものである。
以下に、本発明の詳細を説明する。
本発明において使用される、ポリエチレングリコールと
しては例えば、ポリエチレングリコール1000ポリエ
チレングリコール200uポリエチレングリコール40
00など、重合度の異なる種々なものが知られており、
これらは、いずれも本発明に対し、有効に適用すること
ができるが、なかんずくポリエチレングリコール100
鼠室度の低重合度のものがより効果であった。
ポリエチレングリコールは、培地に対して、通常、0.
01〜5%程度、望ましくは、0.05〜0.5%程度
添加される。
そして、このようなポリエチレングリコールを添加した
培地で、アクレモニウム属菌を培養すると、セルラーゼ
の生産量が、無添加の場合に比べ顕著に増加する。例え
ば、セルラーゼのうちアビセラーゼ活性は1.1〜1.
5倍、カルボキシメチルセルラーゼは1.5〜2.9倍
、3−グルコシダーゼは1.3〜2倍に増加する。本発
明において使用されるセルラーゼ生産菌の菌学的性質は
下記の通りである。
生育:麦芽エキス寒天上では生育は速く、30007日
で直径7仇岬こ達する。
集落は最初白色で後にやや黄色味をおびる。気生菌糸は
ゆるく盛り上がり羊毛状を呈し、時に縄状の菌糸東を形
成する。培養後期には集落裏面は桃褐色ないし赤褐色を
呈する。ッァベック寒天上でもほぼ同様の生育を示すが
気生菌糸の盛り上がりはより少し、。生育pH範囲は3
.5〜6.0で最適pHは4付近、生育温度範囲はl5
qo〜43qoで、最適生育温度は30qo付近である
。形態:菌糸の直径は0.5〜2.5ムm、無色で菌糸
には隔壁が認められる。また、菌糸表面は滑面である。
分生子:分生子形成能は非常に不安定でッアベック寒天
および麦芽エキス寒天培地による継代培養により消滅す
る。
分離時における観察では、分生子柄は気生菌糸側面より
突出し、無色である。分生子は亜球形(2.5〜5×2
〜4.5〃m)で糟面、無色で連鎖は非常にゆるく分散
しやすい。以上の菌学的性質について、W.GamSの
「Cephalosporlumaれige Schi
mmelpilge」P84、G.Fisher(19
71年)及びC.日.Dickinson.Mycol
.Papeは115PI0(196母王)を参照した結
果、本菌はアクレモニゥム(Acremonimm)属
に近縁の糸状菌と考えるのが妥当であると考えた。なお
、アクレモニウム属菌には、従来、強力なセルラーゼ生
産性が知られていなかったこと、及び、本発明の菌株が
強力、かつ特徴的なセルラーゼを生産することから、本
菌をアクレモニウム・セルロリテイカス(Acremo
mmmcell山oyticus)と命名した。なお、
本菌は、FERMP−6867として、工業技術院微生
物工業技術研究所に寄託されている。アクレモニウム属
はCamsにより詳細な検討がなされ、以前にセフアロ
スポリゥム属として記載されていた属の再検討を行うこ
とにより、近年採用された属名であり、本発明の示すよ
うな結晶性セルロースに作用することのできる強力な真
のセルラーゼ、すなわちアビセラーゼやFPアーゼを生
産するアクレモニゥム属菌は、本発明以前には全く知ら
れていない。
本菌の生産するセルラーゼは、作用特性から結晶性の高
いセルロースであるアビセルに作用する酵素、すなわち
ァビセラーゼまたはFPアーゼで代表されるC,酵素、
カルボキシメチルセルロース(CMC)に作用する、い
わゆるCMCアーゼで代表されるCx酵素と、セロビオ
ースなどのセロオリゴ糖に作用する8ーグルコシダーゼ
の主として3種類の酵素群からなる複合酵素系である。
そして、これら酵素群の調和のとれた相互作用により、
天然のセルロースを完全にグルコースにまで分解するこ
とができるのである。以下にこれら酵素の性質を記載す
る。W アビセラーゼの酵素的性質 ‘1)作用 セルロース末、アビセル、脱脂綿など結晶性の高い不溶
性セルロースに対し作用してグルコース、セロビオース
等の還元糖を生成する‘21 作用pH及び最適作用p
H 本酵素の作用pH範囲は2〜8、最適作用内は約4.5
に認められた。
(第1図a)【3’安定pH クエン酸ーリン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間放置
したときの安定pH範囲は約3.5〜約6であった。
(第1図c)‘4} 作用温度範囲及び最適作用温度 本酵素は約90℃までの高温に作用するが、1%アビセ
ル0.08M酢酸緩衝液(pH4.5)の下で10分間
反応させたときの最適作用温度は約65午Cに認められ
た。
(第1図b)【5} 熱安定性 本酵素を0.08M酢酸緩衝液(pH4.5)の下で、
各温度で10分間加熱処理した結果、本酵素は約60q
oまでの温度ではほとんど失活せず、65o0、1び分
間の加熱で約50%、そして70℃、10分間の加熱で
約80%失活した。
(第1図d)【6} 阻害剤 各種重金属イオンのうちでlmM以上の水銀イオンおよ
び銅イオンにより強く阻害される。
また、SH阻害剤であるパラクロルマーキュリーベンゾ
ェイトによってもlmMで約80%の阻害を受ける。{
7} 精製法 本酵素は培養猿液からホロフアィバー(アミコンHI−
P5)により脱塩濃縮してのち、DEAEーセフアロー
ス(CL‐紐)による力ラムクロマトグラフイ一(Na
CI○→IMグラジェント)と同カラムによる再クロマ
トグラフィー(NaCI O→0.8M)により、より
精製することができる。
‘8ー 分子量 Bio−gel(AO.即)力ラムによるゲル櫨過法に
より測定した分子量は約140,000であった。
{91 活性測定法 0.1M酢酸緩衝液に0.5%濃度のアピセル懸濁物(
pH4.5)0.5の‘に適量の酵素液を加え、蒸溜水
で全量1.0泌とし、50℃で反応を行った。
そして生成する還元糖はソモギー・ネルソン法により測
定した。この条件で、1分間に1りmolのグルコース
に相当する還元力を生成する酵素量を1単位とした。‘
B} CMCアーゼの酵素的性質 ‘11 CMCアーゼの多成分性 CMCアーゼはディスク電気泳動的に少くとも4成分に
分離され、それぞれは分子量と等露点により区別される
CMCアーゼ1は分子量約160,000で等露点5.
08以下同様に0は約160,000、4.95、mは
約120,000、4.60、Wは約120,000、
4.48であり、これらアィソザィムの複合物よりCM
Cアーゼは成つている。‘2’カルポキシメチルセルロ
ース(CMC)等の可溶性セルロース誘導体に作用し、
これをグルコース及びセロビオース等に分解する成分(
CMCアーゼ1および0)とグルコースを極わずかしか
生成せずセロビオース以上のセロオリゴ糖に分解する作
用を持つ成分(CMCアーゼm,W)が存在する。
【3} 作用pH及び最適作用pH CMCアーゼ複合体の作用pH範囲は、ほぼ2〜8にわ
たり最適作用pHは約4.5に認められた。
(第1図a)‘4} 安定pH クエン酸ーリン酸塩緩衝液の下で4500で20時間放
置したときのCMCアーゼ複合体の安定斑範囲は約3.
5〜約6であった。
(第1図C){5} 作用温度範囲及び最適作用温度 このCMCアーゼ複合体は約90qoまでの高温に作用
するが、1%CMC、0.09M酢酸緩衝液(pH4.
5)の下で10分間反応させたときの最適作用温度は約
65ooに認められた。
(第1図b)‘6’熱安定性 本酵素を0.08 M酢酸緩衝液(pH4.5)の下「
で、各温度で10分間加熱処理した結果、本酵素は約6
0qoまでの温度ではほとんど失活せず、65qC、1
び分間の加熱で約40%、そして70℃、10分間の加
熱で約70%失宿した。
(第1図d)‘7)阻害剤 各種重金属イオンのうちでlmM以上の水銀イオンおよ
び銅イオンにより強く阻害される。
【8’精製法 本酵素は培養猿液からホロフアイバー(アミコンHI−
P5)により脱塩濃縮してのち、DEAE‐セフアロー
ス(CL−組)による力ラムクロマトグラフイ一(Na
CI O→IMグラジェント)と同カラムによる再クロ
マトグラフィー及びクロマトフオーカシングにより各成
分に精製できる。
‘9)活性測定法 0.1M酢酸緩衝液に溶解させた1%CMC溶液(pH
4.5)0.5肌に、適量の酵素液を加え、蒸溜水で全
量1.0の‘とし、50午0で反応を行った。
そして、生成する還元糖はソモギー・ネルソン法により
測定した。この条件で、1分間に1仏molのグルコー
スに相当する還元力を生成する酵素量を1単位とした。
‘C1 8−グルコシダーゼの酵素的性質【1}作用 サリシン、セロビオース、セロトリオー ス、セロテトラオース、セロベンタオース、セロヘキサ
オースのようなセロオリゴ糖に作用して、これをグルコ
ースに分解する。
また、本酵素はアビセルのような高分子セルロースにも
作用するがCMCやHEC(ヒドロキシェチルセルロー
ス)にはほとんど作用しない。
サリシン、セロビオース、セルトリオ−ス、セロテトラ
オース、セロベンタオース及びセロヘキサオースに対す
るKm値は、それぞれ3.40、2.26、1.16、
0.82、0.52そして0.51mKであった。■
作用柵及び最適作用pH 本酵素の作用餌範囲は2〜8、最適作用斑は約4.5に
認められた。
(第1図a)【3} 安定− クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で490で20時間放置
したときの安定pH範囲は約3.5〜約5であった。
(第1図c){4} 作用温度範囲及び最適作用温度 本酵素は約90つ0までの高温に作用するが、1%サリ
シン、0.09M酢酸緩衝液(pH4.5)の下で10
分間反応させたときの最適作用温度は約6yoに認めら
れた。
(第1図b)■ 熱安定性 0.09M酢酸緩衝液(pH4.5)の下で、各温度で
10分間加熱処理した結果、本酵素は約65℃までの高
温ではほとんど失活せず、70℃、10分間の加熱で約
40%失活し、そして80qo、10分間の加熱で90
%以上失活した。
(第1図d)‘6} 阻害剤 各種重金属イオンのうちlmM以上の水銀イオンおよび
銅イオンにより強く阻害される。
また、グルコース−6ーラクトンは基質に対して桔抗阻
害剤とした作用する。{7)精製法 本酵素は培養櫨液からホロフアィバー(アミコンHI−
P5)により脱塩濃縮したのち、DEAE−セフアロー
ス(CL−班)による力ラムクロマトグラフイ一(Na
CIO→IMグラジエント)とクロマトフオーカシング
(pH6一4)とBio−gel(AO.軌)によるゲ
ル樋過により、亀気泳動笛に均一なまで精製することが
できる■ 分子量 Bio‐gel(AO.弧)を用いるゲル櫨過法により
測定した分子量は約240,000であった。
‘9’活性測定法0.1M酢酸緩衝液に溶解させた1%
サリシン溶液(pH4.5)0.5の‘に適量の酵素液
を加え、蒸溜水で全量1.0の【とし、50℃で反応を
行った。
そして生成するグルコースをソモギー・ネルソン法によ
り測定した。この条件で、1分間にlrmolのグルコ
ースに相当する還元力を生成する酵素量を1単位とした
本発明のB−グルコシダーゼは、サリシンやセロビオ−
スのような小さい分子の基質よりもセロヘキサオースや
セロベンタオースのようなオリゴ糖に対してより親和性
が大きく、かつ本酵素はアビセルのような高分子量の基
質に対しても作用する。
特にセロビオースを分解し、かつアビセルを相当程度分
解できる基質特異性を持った酵素の存在は本発明により
初めて明らかになったものであり、しかも生成物はすべ
てグルコースであることなど本菌の生産する8−グルコ
シダーゼは、従来知られていない新規な8ーグルコシダ
ーゼであって、澱粉に対するグルコアミラーゼとよく似
た作用特性をもつことから本発明者らはこの酵素をグル
コセルラーゼと命名した。このように、本発明のアクレ
モニウム属菌により生産されるセルラーゼは、新規な8
ーグルコシダーゼを含む新規なセルラーゼ複合酵素剤で
ある。
次に実施例により本発明の詳細を説明する。
実施例 1セルロース4%、KH2P041.2%、バ
クトベプトン・%、ZnS〇4.7日2〇1×10‐3
%、KN〇30.6%、MnS04・7日201×10
‐3%、尿素0.2%、CuS04・8LOI×10‐
3%、KCIO.16%、PH4.0、M簿04・7比
00.12%、の組成からなる培地と、これにポリエチ
レングリコール1000を0.05〜0.4%量添加し
た培地、各20の‘を200M客三角フラスコに入れ、
常法により殺菌後、アクレモニウム・セルロリティカス
(FERM P−6867)を接種し、30午○で8日
間好気的に培養した。
培養後、遠心分離して得た上燈液について、生産された
セルラーゼのアビセラーゼ、力ルボキシメチルセルラー
ゼ(CMCアーゼ)及び8−グルコシダーゼ活性を測定
した。結果は第1表に示す通りであった。1表 表から明らかなように、0.05%量のポリエチレング
リコール1000の添加によりアピセラーゼは、無添加
の場合に比べ1.2倍に増加した。
CMCアーゼは、0.4%量のポリエチレングリコール
1000の添加により2.1倍に増加した。そして、8
−グルコシダーゼは0.4%量のポリエチレングリコー
ル1000の添加により1.7倍に増加した。実施例
2実施例1で使用した基本塔地にポリエチレングリコー
ル1000、2000と4000をそれぞれ0.1%添
加した倍地にアクレモニウム・セルロティカス(FER
M P−6867)を接種し、3000で6日間好気的
に培養した。
培養後、遠心分離して得た上燈液について、生産された
セルラーゼのアビセラーゼ、CMCアーゼと8ーグルコ
シダーゼ活性を測定した。得られた結果は第2表に示す
通りであった。表から明らかなように、試験したポリエ
チレングリコール1000 2000及び4000はい
ずれもアビセラーゼ、CMCアーゼと8ーグルコシダー
ゼの生産に対して有効であったが、中でもポリエチレン
グリコール1000はより効果的であった。
第 2 表
【図面の簡単な説明】
第1図はアクレモニウム(FERMP一般67)の生産
するセルラーゼのアビセラーゼ、CMCアーゼ及び8ー
グルコシダーゼについて、a・・・…最適作用pH、b
・・・・・・最適作用温度、c・・・・・・刊安定性そ
してd…・・・熱安定性を示している。 次′楓

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 1 セルラーゼを生産するアクレモニウム属菌を培養し
    てセルラーゼを生産するに際し、ポリエチレングリコー
    ルの存在下で培養することを特徴とするセルラーゼの生
    産方法。
JP3843483A 1983-03-09 1983-03-09 セルラ−ゼの生産方法 Expired JPS6024712B2 (ja)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3843483A JPS6024712B2 (ja) 1983-03-09 1983-03-09 セルラ−ゼの生産方法
US06/586,723 US4562150A (en) 1983-03-09 1984-03-06 Method for manufacture of cellulase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3843483A JPS6024712B2 (ja) 1983-03-09 1983-03-09 セルラ−ゼの生産方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS59166083A JPS59166083A (ja) 1984-09-19
JPS6024712B2 true JPS6024712B2 (ja) 1985-06-14

Family

ID=12525200

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP3843483A Expired JPS6024712B2 (ja) 1983-03-09 1983-03-09 セルラ−ゼの生産方法

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS6024712B2 (ja)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04339751A (ja) * 1991-05-15 1992-11-26 Kuwabara Yasunaga カップ状容器

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999011767A1 (en) * 1997-08-28 1999-03-11 Meiji Seika Kaisha Ltd. Endoglucanase acc4

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04339751A (ja) * 1991-05-15 1992-11-26 Kuwabara Yasunaga カップ状容器

Also Published As

Publication number Publication date
JPS59166083A (ja) 1984-09-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0494207B1 (en) Thermostable purified cellulase from thermophilic bacterium acidothermus cellulolyticus
Riou et al. Purification, characterization, and substrate specificity of a novel highly glucose-tolerant β-glucosidase from Aspergillus oryzae
Yamanobe et al. Isolation of a cellulolytic enzyme producing microorganism, culture conditions and some properties of the enzymes
Hägerdal et al. Saccharification of cellolulose by the cellulolytic enzyme system of Thermonospora sp. I. Stability of cellulolytic activities with respect to time, temperature, and pH
US4956291A (en) Method for production of cellulolytic enzymes and method for saccharification of cellulosic materials therewith
Macris Production and characterization of cellulase and β-glucosidase from a mutant of Alternaria alternata
Nevalainen et al. A high cellulase-producing mutant strain of Trichoderma reesei
Castellanos et al. Comparative evaluation of hydrolytic efficiency toward microcrystalline cellulose of Penicillium and Trichoderma cellulases
Reese et al. β-d-1, 2-Glucanases in fungi
Rodríguez-Mendoza et al. Purification and biochemical characterization of a novel thermophilic exo-β-1, 3-glucanase from the thermophile biomass-degrading fungus Thielavia terrestris Co3Bag1
US4562150A (en) Method for manufacture of cellulase
JPH10501694A (ja) ピロジクチウム・キシラナーゼ、アミラーゼ及びプルラナーゼ
JP2003135052A (ja) セルロース原料の分解方法
JPS6043954B2 (ja) セルラ−ゼの製造法
Kalra et al. Optimal production of cellulolytic enzymes and their location in Trichoderma pseudokonigii
Rao et al. Induction and catabolite repression of cellulase in Penicillium funiculosum
JPS6024712B2 (ja) セルラ−ゼの生産方法
Sandhu et al. Use of lytic enzymes for protoplast production in Trichoderma reesei QM9414
JPS6117476B2 (ja)
JPH0112476B2 (ja)
Shanmugam et al. Biosynthesis of cellulolytic enzymes by Tricothecium roseum with citric acid mediated induction
JPS61162181A (ja) 耐熱性キシラナ−ゼの製造法
JPS61162178A (ja) セルラ−ゼの生産改良法
JPS61162167A (ja) 新規なアクレモニウム・セルロリテイカスtn株
JPS61162177A (ja) セルラ−ゼの生産法