JPS6030682A - β−アミラ−ゼの製造法 - Google Patents
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はバチルス属に属するβ−アミラーゼ生産菌を培
地に培養してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ、これを
採取する方法において、培地に特定の添加剤を含有せし
めβ−アミラーゼの生産を増強する方法に関する。
地に培養してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ、これを
採取する方法において、培地に特定の添加剤を含有せし
めβ−アミラーゼの生産を増強する方法に関する。
β−アミラーゼ〔系統名:1,4−α−D−1’ルカン
マルトハイドロラーゼ(L4−ex D−Glucan
maltohydrolase) +UC3,2,1,
2)は澱粉、グリコーゲン、デキストリンなどからマル
トースを分離する酵素として有用である。従来β−アミ
ラーゼの供給源としては主として高等植物、例えば大麦
麦芽、小麦、大豆、甘藷などが利用されてきた。
マルトハイドロラーゼ(L4−ex D−Glucan
maltohydrolase) +UC3,2,1,
2)は澱粉、グリコーゲン、デキストリンなどからマル
トースを分離する酵素として有用である。従来β−アミ
ラーゼの供給源としては主として高等植物、例えば大麦
麦芽、小麦、大豆、甘藷などが利用されてきた。
近年バチルス属などの微生物にβ−アミラーゼの生産能
が見いだされたが、多くは生産性が低(実用に至ってい
るものは少ない。従来、バチルス属微生物によるβ−ア
ミラーゼ生産の改良法としては、例えば、バチルス・メ
ガテリウム(Bacillusmegateriun+
)を澱粉を含む培地に培養する方法(特公昭53−4
5393号公報)、バチルス・セレウス(Bacill
us cereus )を培養するに際し・バリウムイ
オンあるいはクエン酸または酒石酸を存在せしめた培地
を用いる方法並びに種培養を特定のpHで行う方法(特
公昭53−5748号公報、同52−30590号公報
、同52−30589号公@)等が知られている。
が見いだされたが、多くは生産性が低(実用に至ってい
るものは少ない。従来、バチルス属微生物によるβ−ア
ミラーゼ生産の改良法としては、例えば、バチルス・メ
ガテリウム(Bacillusmegateriun+
)を澱粉を含む培地に培養する方法(特公昭53−4
5393号公報)、バチルス・セレウス(Bacill
us cereus )を培養するに際し・バリウムイ
オンあるいはクエン酸または酒石酸を存在せしめた培地
を用いる方法並びに種培養を特定のpHで行う方法(特
公昭53−5748号公報、同52−30590号公報
、同52−30589号公@)等が知られている。
本発明者らはバチルス属微生物のβ−アミラーゼ生産性
を更に増強すべ(鋭意研究したところ、培地に従来には
ない特定の添加剤を含有せしめることにより著しくβ−
アミラーゼの生産性が高まることを知り本発明を完成す
るに至った。
を更に増強すべ(鋭意研究したところ、培地に従来には
ない特定の添加剤を含有せしめることにより著しくβ−
アミラーゼの生産性が高まることを知り本発明を完成す
るに至った。
即ち、本発明は、バチルス属に属するβ−アミラーゼ生
産菌を培地に培養してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ
、これを採取する方法において、培地にサイクロデキス
トリン、サイクロデキストリンを生成する酵素、イソマ
ルトース、イソマルトースを生成する酵素または糖アル
コールからなる群より選ばれる一種以上を含有せしめる
ことを特徴とするβ−アミラーゼの製造法に関する。本
発明においてサイクロデキストリンとしてはα−サイク
ロデキストリン、β−サイクロデキストリンまたはT−
サイクロデキストリンが例示される。
産菌を培地に培養してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ
、これを採取する方法において、培地にサイクロデキス
トリン、サイクロデキストリンを生成する酵素、イソマ
ルトース、イソマルトースを生成する酵素または糖アル
コールからなる群より選ばれる一種以上を含有せしめる
ことを特徴とするβ−アミラーゼの製造法に関する。本
発明においてサイクロデキストリンとしてはα−サイク
ロデキストリン、β−サイクロデキストリンまたはT−
サイクロデキストリンが例示される。
サイクロデキストリンを生成する酵素としてはサイクロ
デキストリングルカノトランスフェラーゼ(Cyclo
dextrin glucanotransferas
e、 EC2,4,1゜19)、イソマルI・−スを生
成する酵素としてはα−D−グルコシダーゼ(α−D
−Glucosidase +fIC3,2,1,20
)が例示される。また糖アルコールとしてはソルビトー
ルまたはマルチトールがそれぞれ例示される。
デキストリングルカノトランスフェラーゼ(Cyclo
dextrin glucanotransferas
e、 EC2,4,1゜19)、イソマルI・−スを生
成する酵素としてはα−D−グルコシダーゼ(α−D
−Glucosidase +fIC3,2,1,20
)が例示される。また糖アルコールとしてはソルビトー
ルまたはマルチトールがそれぞれ例示される。
上記添加剤のうちα−D−グルコシダーゼは通常マルト
ースなどを基質としてそのα−1,4−グルコシド結合
を加水分解する酵素として知られているが、特定の反応
条件下では基質からグルコース残基を種々の糖およびア
ルコールなどへ転移する活性、即ちトランスグルコシダ
ーゼ活性を持つものがある。本発明で使用するα−D−
グルコシダーゼはトランスグルコシダーゼ活性を有する
ものでなければならない。
ースなどを基質としてそのα−1,4−グルコシド結合
を加水分解する酵素として知られているが、特定の反応
条件下では基質からグルコース残基を種々の糖およびア
ルコールなどへ転移する活性、即ちトランスグルコシダ
ーゼ活性を持つものがある。本発明で使用するα−D−
グルコシダーゼはトランスグルコシダーゼ活性を有する
ものでなければならない。
本発明法で使用する微生物はバチルス属に属するβ−ア
ミラーゼ生産菌であればいずれでもよく、例えばバチル
ス・セレウス(Bacillus cereus )、
バチルス・メガテリウム(B、 megaterium
) %バチルス・号−キュランス(B、 circu
lans) 、バチルス・ポリミキサ(B、 poly
myxa )等が示される。
ミラーゼ生産菌であればいずれでもよく、例えばバチル
ス・セレウス(Bacillus cereus )、
バチルス・メガテリウム(B、 megaterium
) %バチルス・号−キュランス(B、 circu
lans) 、バチルス・ポリミキサ(B、 poly
myxa )等が示される。
より具体的にはバチルス・セレウス IFo 3001
、バチルス・セレウス・バリエータス・ミコイデス(B
、 cereus var、 mycoides )
JAM 1190、バチルス・メガテリウム IAM
1030 、ノマチルス・サーキュランス IFO33
29、バチルス・ポリミキサIFO3020、バチルス
・ポリミキサATC:CB523などの保存菌株が例示
される。
、バチルス・セレウス・バリエータス・ミコイデス(B
、 cereus var、 mycoides )
JAM 1190、バチルス・メガテリウム IAM
1030 、ノマチルス・サーキュランス IFO33
29、バチルス・ポリミキサIFO3020、バチルス
・ポリミキサATC:CB523などの保存菌株が例示
される。
上記菌株を培養するための培地としては炭素源、窒素源
、無機塩、有機酸および発育素などと前記特定の添加剤
を含む培地であれば合成培地または天然培地のいずれで
も用いることができる。例えば、炭素源としてはシュー
クロース、アミロース、アミロペクチン、ポテトスター
チ、コーンスターチ、コーンミール、ワキシースターチ
など、窒素源としてはミルクカゼイン、ポリペプトン、
大豆カゼイン、酵母エキス、肉エキスなど、無機塩とし
ては塩化ナトリウム、硫酸マグネシウム、リン酸二カリ
ウム、塩化亜鉛、塩化バリウム、硫酸カリウム、硫酸銅
、塩化第二鉄、酸化カルシウム、リン酸−ナトリウム、
リン酸二ナトリウムなど、有機酸としてはクエン酸ナト
リウムなど、発育素としてはビタミンB1、ビオチン、
ビタミンB5、D−パントテン酸ナトリウム、イノシト
ールなどが用いられる。
、無機塩、有機酸および発育素などと前記特定の添加剤
を含む培地であれば合成培地または天然培地のいずれで
も用いることができる。例えば、炭素源としてはシュー
クロース、アミロース、アミロペクチン、ポテトスター
チ、コーンスターチ、コーンミール、ワキシースターチ
など、窒素源としてはミルクカゼイン、ポリペプトン、
大豆カゼイン、酵母エキス、肉エキスなど、無機塩とし
ては塩化ナトリウム、硫酸マグネシウム、リン酸二カリ
ウム、塩化亜鉛、塩化バリウム、硫酸カリウム、硫酸銅
、塩化第二鉄、酸化カルシウム、リン酸−ナトリウム、
リン酸二ナトリウムなど、有機酸としてはクエン酸ナト
リウムなど、発育素としてはビタミンB1、ビオチン、
ビタミンB5、D−パントテン酸ナトリウム、イノシト
ールなどが用いられる。
本発明で添加剤として用いるサイクロデキストリン、イ
ソマルトースまたは糖アルコールは殺菌前の培地に添加
することもできるが、サイクロデキストリングルカノト
ランスフェラーゼ並びにα−D−グルコシダーゼは熱に
弱いため、殺菌後の培地の温度が約30℃に冷却された
ときに添加するようにしなければならない。添加剤の培
地中での使用量は、例えばサイクロデキストリンおよび
イソマルトースの場合は約0.001〜1%(W/V%
、以下同じ)、サイクロデキストリングルカノトランス
フェラーゼは約0.01〜10u/m、α−D−グルコ
シダーゼはトランスグルコシダーゼ活性として約0.1
〜100u/dまた糖アルコールは約0.01〜5%で
ある。
ソマルトースまたは糖アルコールは殺菌前の培地に添加
することもできるが、サイクロデキストリングルカノト
ランスフェラーゼ並びにα−D−グルコシダーゼは熱に
弱いため、殺菌後の培地の温度が約30℃に冷却された
ときに添加するようにしなければならない。添加剤の培
地中での使用量は、例えばサイクロデキストリンおよび
イソマルトースの場合は約0.001〜1%(W/V%
、以下同じ)、サイクロデキストリングルカノトランス
フェラーゼは約0.01〜10u/m、α−D−グルコ
シダーゼはトランスグルコシダーゼ活性として約0.1
〜100u/dまた糖アルコールは約0.01〜5%で
ある。
本発明で使用する菌株の培養条件としては、培養温度は
菌が生育しβ−アミラーゼが生産される範囲内であれば
よく、通富約25〜35℃であり、培地のpiは約7.
5〜9.0である。また培養時間はβ−アミラーゼの活
性が最大に達する時間を選べばよく、通常約50〜70
時間である。
菌が生育しβ−アミラーゼが生産される範囲内であれば
よく、通富約25〜35℃であり、培地のpiは約7.
5〜9.0である。また培養時間はβ−アミラーゼの活
性が最大に達する時間を選べばよく、通常約50〜70
時間である。
以上のようにして得られた培養物からβ−アミラーゼを
採取するには、公知の方法に従って行えばよい。例えば
、まず遠心分離、ろ過などにより菌体を除去したのち、
上清またはろ液を濃縮、有機溶媒沈澱することにより粗
酵素粉末が得られ、さらに限外ろ過、吸着クロマトグラ
フィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過など
の公知の方法を適宜組み合せることにより精製β−アミ
ラーゼ標品が得られる。
採取するには、公知の方法に従って行えばよい。例えば
、まず遠心分離、ろ過などにより菌体を除去したのち、
上清またはろ液を濃縮、有機溶媒沈澱することにより粗
酵素粉末が得られ、さらに限外ろ過、吸着クロマトグラ
フィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過など
の公知の方法を適宜組み合せることにより精製β−アミ
ラーゼ標品が得られる。
本発明におけるβ−アミラーゼ活性の単位は、0.5%
可溶性澱粉液(pH7、o、リン酸緩衝液)を基質とし
て40℃、30分間反応し、生じた還元糖量をフェーリ
ング・レーマン・ジュール(Fehling−Lehm
ann−5chool)法により測定したとき、10m
gのグルコースに相当する還元力のマルトースを生成す
る酵素量を1単位とした。また、添加剤として使用する
サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼおよ
びα−D−グルコシダーゼの活性単位はそれぞれチルデ
ン・ハドソン(TILDEN −■υDSON)単位〔
ジャーナル・オブ・アプライド・ケミカル・バイオテク
ノロジー(J、 Appl、 Chem。
可溶性澱粉液(pH7、o、リン酸緩衝液)を基質とし
て40℃、30分間反応し、生じた還元糖量をフェーリ
ング・レーマン・ジュール(Fehling−Lehm
ann−5chool)法により測定したとき、10m
gのグルコースに相当する還元力のマルトースを生成す
る酵素量を1単位とした。また、添加剤として使用する
サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼおよ
びα−D−グルコシダーゼの活性単位はそれぞれチルデ
ン・ハドソン(TILDEN −■υDSON)単位〔
ジャーナル・オブ・アプライド・ケミカル・バイオテク
ノロジー(J、 Appl、 Chem。
Biotechnol、)第21巻、330頁、 19
71年〕、トランスグルコシダーゼ単位(日本醸造協会
雑誌、第72巻、459頁、1977年)によった。
71年〕、トランスグルコシダーゼ単位(日本醸造協会
雑誌、第72巻、459頁、1977年)によった。
以下、実施例を以て本発明の詳細な説明する。
実施例 1
可溶性デンプン1.0%、ミルクカゼイン3.5%、酵
母エキス0.1%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マ
グネシウム・7水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4
%、グリシン0.075%、ビタミンB1塩酸塩2pp
mおよびクエン酸ナトリウム0.03%からなる組成の
培地(pH8,2) 50−を500d容の坂ロフラス
コに入れて殺菌後、第1表に示すごとく各添加剤を各濃
度となるように加え、同表に示すバチルス属菌株を接種
した。28℃において60時間振盪培養したのち、培養
液のβ−アミラーゼ活性を測定した。
母エキス0.1%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マ
グネシウム・7水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4
%、グリシン0.075%、ビタミンB1塩酸塩2pp
mおよびクエン酸ナトリウム0.03%からなる組成の
培地(pH8,2) 50−を500d容の坂ロフラス
コに入れて殺菌後、第1表に示すごとく各添加剤を各濃
度となるように加え、同表に示すバチルス属菌株を接種
した。28℃において60時間振盪培養したのち、培養
液のβ−アミラーゼ活性を測定した。
なお、添加剤として使用したサイクロデキストリングル
カノトランスフェラーゼはバチルス・マセランス(Ba
cillus macerans )起源の酵素(大野
製薬社製)であり、トランスグルコシダーゼはアスペル
ギルス・ニガー(Aspergillus niger
)起源の酵素(同社製)である。また、サイクロデキス
トリン混合物とは澱粉に上記サイクロデキストリングル
カノトランスフェラーゼを作用させて調整したβ−サイ
クロデキストリン約20%、グルコース約4%、マルト
ース約11%、その他約65%の混合物であり、イソマ
ルトース混合物とは澱粉加水分解物に上記トランスグル
コシダーゼを作用させて調整したイソマルトース約35
%、パノース約26%、イソマルトトリオース約11%
、その他のオリゴ糖約28%の混合物である。
カノトランスフェラーゼはバチルス・マセランス(Ba
cillus macerans )起源の酵素(大野
製薬社製)であり、トランスグルコシダーゼはアスペル
ギルス・ニガー(Aspergillus niger
)起源の酵素(同社製)である。また、サイクロデキス
トリン混合物とは澱粉に上記サイクロデキストリングル
カノトランスフェラーゼを作用させて調整したβ−サイ
クロデキストリン約20%、グルコース約4%、マルト
ース約11%、その他約65%の混合物であり、イソマ
ルトース混合物とは澱粉加水分解物に上記トランスグル
コシダーゼを作用させて調整したイソマルトース約35
%、パノース約26%、イソマルトトリオース約11%
、その他のオリゴ糖約28%の混合物である。
添加剤を加えない場合の活性を100%としたときの相
対活性を第1表に示す。同表から本発明法による効果が
よくわかる。
対活性を第1表に示す。同表から本発明法による効果が
よくわかる。
(以下余白)
実施例 2
実施例1に示したと同じ組成の培地50m1を500−
容の坂ロフラスコに入れて殺菌後、β−サイクロデキス
トリン90:α−サイクロデキストリン5:T−サイク
ロデキストリン5の混合物を0.1%、β−サイクロデ
キストリン50:イソマルトース50の混合物を0.1
%およびβ−サイクロデキストリン20:マルチトール
80の混合物を0.5%となるように加え、バチルス・
ポリミキサATCC8523株を接種し、28℃におい
て60時間振盪培養したところ、相対活性は各々160
.158.168%であった。
容の坂ロフラスコに入れて殺菌後、β−サイクロデキス
トリン90:α−サイクロデキストリン5:T−サイク
ロデキストリン5の混合物を0.1%、β−サイクロデ
キストリン50:イソマルトース50の混合物を0.1
%およびβ−サイクロデキストリン20:マルチトール
80の混合物を0.5%となるように加え、バチルス・
ポリミキサATCC8523株を接種し、28℃におい
て60時間振盪培養したところ、相対活性は各々160
.158.168%であった。
実施例 3
ポテトスターチ0.5%、ポリペブト′ン2.0%、リ
ン酸二カリウム0.3%、硫酸マグネシウム7水塩0.
1%からなる組成の培地(pH7,5) 50−を50
〇−容坂ロフラスコに入れて殺菌後、バチルス・セレウ
スIF03001株−白金耳を接種し、28℃で7時間
振盪培養し種培養液とした。次いで、可、溶性デンプン
1.0%、ミルクカゼイン3.5%、酵母エキス0.1
%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マグネジカム・7
水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4%、グリシン0
.075%、ビタミンB1塩酸塩2ppm 、クエン酸
ナトリウム0.03%およびα−サイクロデキストリン
0.01%からなる組成の培地(pH8,2) 15β
の入った30β容ジャーファーメンタ−に上記種培養液
を接種し、28℃、60時間培養した。
ン酸二カリウム0.3%、硫酸マグネシウム7水塩0.
1%からなる組成の培地(pH7,5) 50−を50
〇−容坂ロフラスコに入れて殺菌後、バチルス・セレウ
スIF03001株−白金耳を接種し、28℃で7時間
振盪培養し種培養液とした。次いで、可、溶性デンプン
1.0%、ミルクカゼイン3.5%、酵母エキス0.1
%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マグネジカム・7
水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4%、グリシン0
.075%、ビタミンB1塩酸塩2ppm 、クエン酸
ナトリウム0.03%およびα−サイクロデキストリン
0.01%からなる組成の培地(pH8,2) 15β
の入った30β容ジャーファーメンタ−に上記種培養液
を接種し、28℃、60時間培養した。
培養液を遠心分離して菌体を除いたのち、上清を限外ろ
過濃縮、次いでアルコール沈降をすることにより粗β−
アミラーゼ粉末93gを得た。
過濃縮、次いでアルコール沈降をすることにより粗β−
アミラーゼ粉末93gを得た。
特許出願人 天野製薬株式会社
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 ■ バチルス属に属するβ−アミラーゼ生産菌をサイク
ロデキストリン、サイクロデキストリンを生成する酵素
、イソマルトース、イソマルトースを生成する酵素また
は糖アルコールからなる群より選ばれる一種以上を含有
せしめた培地に培養しβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ
、これを採取することを特徴とするβ−アミラーゼの製
造法。 2 サイクロデキストリンがα−サイクロデキストリン
、β−サイクロデキストリンまたはγ−サイクロデキス
トリンである特許請求の範囲第1項記載のβ−アミラー
ゼの製造法。 3 サイクロデキストリンを生成する酵素がサイクロデ
キストリングルカノトランスフェラーゼである特許請求
の範囲第1項記載のβ−アミラーゼの製造法。 4 イソマルトースを生成する酵素がα−D−グルコシ
ダーゼである特許請求の範囲第1項記載のβ−アミラー
ゼの製造法。 5 糖アルコールがソルビトールまたはマルチトールで
ある特許請求の範囲第1項記載のβ−アミラーゼの製造
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13991883A JPS6030682A (ja) | 1983-07-30 | 1983-07-30 | β−アミラ−ゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13991883A JPS6030682A (ja) | 1983-07-30 | 1983-07-30 | β−アミラ−ゼの製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6030682A true JPS6030682A (ja) | 1985-02-16 |
Family
ID=15256678
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP13991883A Pending JPS6030682A (ja) | 1983-07-30 | 1983-07-30 | β−アミラ−ゼの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6030682A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB2237574A (en) * | 1989-11-03 | 1991-05-08 | Secr Defence | Method of encapsulating polymer additives |
| WO2004003187A3 (en) * | 2002-07-01 | 2004-03-18 | Novozymes As | Mpg added to fermentation |
-
1983
- 1983-07-30 JP JP13991883A patent/JPS6030682A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB2237574A (en) * | 1989-11-03 | 1991-05-08 | Secr Defence | Method of encapsulating polymer additives |
| GB2237574B (en) * | 1989-11-03 | 1993-09-01 | Secr Defence | Method of encapsulating polymer additives |
| WO2004003187A3 (en) * | 2002-07-01 | 2004-03-18 | Novozymes As | Mpg added to fermentation |
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