JPS6034181A - ノイラミニダ−ゼの製造法 - Google Patents
ノイラミニダ−ゼの製造法Info
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- JPS6034181A JPS6034181A JP58142803A JP14280383A JPS6034181A JP S6034181 A JPS6034181 A JP S6034181A JP 58142803 A JP58142803 A JP 58142803A JP 14280383 A JP14280383 A JP 14280383A JP S6034181 A JPS6034181 A JP S6034181A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はノイラミニダーゼの製造法に関する。
さらに詳しくは、本発明はミクロモノスポラ属に糾し、
ノイラミニダーゼを生産する能力を有する微生物を培地
に培養し、培養物中にノイラミニダーゼを蓄積せしめ、
該培養物から該酵素を採取することを特徴とするノイラ
ミニダーゼの製造法に関する。
ノイラミニダーゼを生産する能力を有する微生物を培地
に培養し、培養物中にノイラミニダーゼを蓄積せしめ、
該培養物から該酵素を採取することを特徴とするノイラ
ミニダーゼの製造法に関する。
ノイラミニダーゼ(RC3,2,1,18)は生体の重
要な構成成分である糖蛋白質や糖脂質等の末端に位置す
るシアル酸(ノイラミン酸のアシル訪導体の総称)のα
配位のケトシトを基質とし、このジアール酸残基を遊離
させる加水分解酵素である。
要な構成成分である糖蛋白質や糖脂質等の末端に位置す
るシアル酸(ノイラミン酸のアシル訪導体の総称)のα
配位のケトシトを基質とし、このジアール酸残基を遊離
させる加水分解酵素である。
このノイラミニダーゼは、ウィルス、細菌、放 −線菌
などの微生物、鳥類、@乳動物の種々の組織に広く分布
していることが知られている。
などの微生物、鳥類、@乳動物の種々の組織に広く分布
していることが知られている。
また、ノイラミニダーゼは血清等の生体中のシアル酸含
有物質の定量に用いられることはよく知られておシ、ノ
イラミニダーゼを安価に工業的に製造する方法を提供す
ることが望まれている。
有物質の定量に用いられることはよく知られておシ、ノ
イラミニダーゼを安価に工業的に製造する方法を提供す
ることが望まれている。
従来、微生物を用いてノイラミニダーゼを生産する方法
としては、ノイラミニダーゼ産生能を有する微生物をコ
ロミン酸や各種動物組織の浸出・抽出液をノイラミニダ
ーゼ紡導物質として加えた培養基中で培養してノイラミ
ニダーゼを製造する方法が知られている。〔代謝1s(
5L761 (1979)+ BIochlm、Bio
phys、Acta、 350 +425−431 (
1974)、 J、Blochem、 82.1425
−1433(1977)、 J、 Bacteriol
、119(21+ 394−400(1974)+ C
anadianJ、 Microblology18+
1007、(1972)、特公昭50−119911然
るにこれらのノイラミニダーゼ誘導物質を大量に使用す
ることは経済的に極めて困難であるので、ノイラミニダ
ーゼ生産量向上のためには、ノイラミニダーゼ生産性の
高い微生物を用いる必要がある。
としては、ノイラミニダーゼ産生能を有する微生物をコ
ロミン酸や各種動物組織の浸出・抽出液をノイラミニダ
ーゼ紡導物質として加えた培養基中で培養してノイラミ
ニダーゼを製造する方法が知られている。〔代謝1s(
5L761 (1979)+ BIochlm、Bio
phys、Acta、 350 +425−431 (
1974)、 J、Blochem、 82.1425
−1433(1977)、 J、 Bacteriol
、119(21+ 394−400(1974)+ C
anadianJ、 Microblology18+
1007、(1972)、特公昭50−119911然
るにこれらのノイラミニダーゼ誘導物質を大量に使用す
ることは経済的に極めて困難であるので、ノイラミニダ
ーゼ生産量向上のためには、ノイラミニダーゼ生産性の
高い微生物を用いる必要がある。
本発明者らは工業的に安価にノイラミニダーゼを製造す
る方法について種々検討した結果、ミクロモノスポラ属
に属する微生物を培地に培養したときに培養物中にノイ
ラミニダーゼが著廿に生産されることを見い出し、本発
明を完成した。
る方法について種々検討した結果、ミクロモノスポラ属
に属する微生物を培地に培養したときに培養物中にノイ
ラミニダーゼが著廿に生産されることを見い出し、本発
明を完成した。
以下に本発明の詳細な説明する。
本発明によれは、ミクロモノスポラ属に属し、ノイラミ
ニダーゼ生産能を有する微生物を培地に培養し、培養物
中にノイラミニダーゼを蓄積せしめ、該培養物から該酵
素を採取することにより、ノイラミニダーゼを製造する
こと力Fcきる。
ニダーゼ生産能を有する微生物を培地に培養し、培養物
中にノイラミニダーゼを蓄積せしめ、該培養物から該酵
素を採取することにより、ノイラミニダーゼを製造する
こと力Fcきる。
本発明に使用する微生物としては、ミクロモノスポラ属
に属し、ノイラミニダーゼを生産する能力を有するもの
であればいずれの菌株でもよい。
に属し、ノイラミニダーゼを生産する能力を有するもの
であればいずれの菌株でもよい。
具体的に好適な菌株の例としては、ミクロモノスポラ−
ビリディファシェンス(Micr(2)nnspora
viridifaciens) ATCO31146*
ミクロモノスポラ・グロボーサ(Micromono
spora globosa)NRItL B−267
3,ミクロモノスポラ・カルセア(Micrornon
ospora cbalcea) ATC(! 124
52があげられる。
ビリディファシェンス(Micr(2)nnspora
viridifaciens) ATCO31146*
ミクロモノスポラ・グロボーサ(Micromono
spora globosa)NRItL B−267
3,ミクロモノスポラ・カルセア(Micrornon
ospora cbalcea) ATC(! 124
52があげられる。
これらの菌の属する種の菌学的性質は次の文献に記載さ
れている。’ U8 Patent 3,991,18
3(1977)”ミクロモノスポラ・ビリディファシェ
ンス。
れている。’ U8 Patent 3,991,18
3(1977)”ミクロモノスポラ・ビリディファシェ
ンス。
” Bergey’s Manual of Dete
rmlnatlye Bacteriology”第8
版(1974)。
rmlnatlye Bacteriology”第8
版(1974)。
ミクロモノスポラ・グロボーサ(八fIcromonn
spora globosa)p852+ ミクロモノ
スポラ・カルセア(Micrcmonosporach
alcea) p 848゜ 本発明に使用される培地としては、炭素源。
spora globosa)p852+ ミクロモノ
スポラ・カルセア(Micrcmonosporach
alcea) p 848゜ 本発明に使用される培地としては、炭素源。
窒素源、無機物その他の栄養素を程よく含有するもので
あれば、天然培地2合成培地のいずれも用いることがで
きる。
あれば、天然培地2合成培地のいずれも用いることがで
きる。
炭素源としては、グルコース、フラクトース。
シュクロース、マルトース、マンノース、澱粉。
澱粉加水分解液、楯蜜などの種々の炭水化物1、Sるい
はグリセロール、ソルビトール、マンニトールなどの種
々の糖アルコール、酢酸、乳酸。
はグリセロール、ソルビトール、マンニトールなどの種
々の糖アルコール、酢酸、乳酸。
ピルビン酸、フマール酸、クエン酸などの各種有機酸、
メタノール、エタノールなどの各種アルコール、エチレ
ングリコール、フロピレンゲリコールなどの各種グリコ
ール、各種アミノ酸あるいはn−ヘキサデカンなどの炭
化水素、牛心賑や牛脳の浸出液、牛血液粉末などが使用
可能である。
メタノール、エタノールなどの各種アルコール、エチレ
ングリコール、フロピレンゲリコールなどの各種グリコ
ール、各種アミノ酸あるいはn−ヘキサデカンなどの炭
化水素、牛心賑や牛脳の浸出液、牛血液粉末などが使用
可能である。
窒素源としではアンモニア、あるいは塩化アンモニウム
、炭酸アンモニウム、燐酸アンモニウム・?111rt
tアンモニウム、酢酸アンモニウムなど各紳無後および
有様アンモニウム塩、尿素。
、炭酸アンモニウム、燐酸アンモニウム・?111rt
tアンモニウム、酢酸アンモニウムなど各紳無後および
有様アンモニウム塩、尿素。
アミノ酸およびその他の窒素化合物、ならびにヘフトン
、NZ−アミン、肉エキス、″:I−ンスチーブリカー
、カゼイン加水分解物、蛸加水分解物、フィツシュミー
ルあるいはその消化物、脱脂大豆あるいはその消化物な
どの窒素含有有核物質などが用いられる。
、NZ−アミン、肉エキス、″:I−ンスチーブリカー
、カゼイン加水分解物、蛸加水分解物、フィツシュミー
ルあるいはその消化物、脱脂大豆あるいはその消化物な
どの窒素含有有核物質などが用いられる。
・ 無機物としては燐酸第一カリウム、燐酸第二カリウ
ム、塩化カリウム、硫酸゛マグネシウム。
ム、塩化カリウム、硫酸゛マグネシウム。
硫酸マノガン、硫酸第一鉄、塩化ナトリウム。
炭酸カルシウムなどが用いられる。
培地にコロミン酸やムチンなどのシアル酸含有物質を加
えれば、より大量のノイラミニダーゼを生成させること
ができる。この際、これら添加物の量は培地重量当シロ
。01〜1.0チ(w/v)で良い結果を得ることがで
きる。
えれば、より大量のノイラミニダーゼを生成させること
ができる。この際、これら添加物の量は培地重量当シロ
。01〜1.0チ(w/v)で良い結果を得ることがで
きる。
培養はp116・0〜7・0・温度25〜35℃で。
4〜5日間、通気攪拌しながら行う。
このようにして培養するととにより、培養物中、主に培
養液中にノイラミニダーゼが生成苔積する。培養物中か
らのノイラミニダーゼの採取は次のごとく行なう。
養液中にノイラミニダーゼが生成苔積する。培養物中か
らのノイラミニダーゼの採取は次のごとく行なう。
培養終了後、培讐液を濾過あるいは遠心分離し、菌体を
除きろ液あるいは上清を得る。このν液あるいは上清液
を通常酵素精製に用いられる方法、例えば、塩析、有機
溶媒沈殿、透析、イオン交換カラムクロマト、ゲル濾過
、凍結乾燥などの方法にて処理する。かくして精製ノイ
ラミニダーゼを採取することができる。
除きろ液あるいは上清を得る。このν液あるいは上清液
を通常酵素精製に用いられる方法、例えば、塩析、有機
溶媒沈殿、透析、イオン交換カラムクロマト、ゲル濾過
、凍結乾燥などの方法にて処理する。かくして精製ノイ
ラミニダーゼを採取することができる。
たとえば、培養p液を、硫酸アンモニウム90%飽和に
よる塩析を行ない、生じる沈殿を緩衝液に溶解、透析後
、DBAE−セファデックスやI)BA[−セルロース
のような陰イオン交換樹脂を充填したカラムに吸着させ
、吸着した酵素を食塩または硫酸アンモニウムの濃度勾
配によシ溶出させる。溶出された酵素を更にセファデッ
クスG−75やバイオ・ゲルP−100によるゲル濾過
法によシ精製する。
よる塩析を行ない、生じる沈殿を緩衝液に溶解、透析後
、DBAE−セファデックスやI)BA[−セルロース
のような陰イオン交換樹脂を充填したカラムに吸着させ
、吸着した酵素を食塩または硫酸アンモニウムの濃度勾
配によシ溶出させる。溶出された酵素を更にセファデッ
クスG−75やバイオ・ゲルP−100によるゲル濾過
法によシ精製する。
本発明で得られる酵素の有する性質をミクロモノスポラ
・ビリディファシェンスATOC31146から生産さ
れるノイラミニダーゼを代表とじて以下に述べるが、ミ
クロモノスポラ・グロボーサNTLRI、 B−267
3およびミクロモノスポラ・カルセアATCO1245
2から生産されるノイラミニダーゼもほぼ同様の性質を
有する。
・ビリディファシェンスATOC31146から生産さ
れるノイラミニダーゼを代表とじて以下に述べるが、ミ
クロモノスポラ・グロボーサNTLRI、 B−267
3およびミクロモノスポラ・カルセアATCO1245
2から生産されるノイラミニダーゼもほぼ同様の性質を
有する。
ノイラミニダーゼの酵素活性の測定は、酵素反応によっ
て生成するN−アセチルノイラミン酸に、N−アセチル
ノイラミン酸リアーゼ(lEtC4、1,3,3)を作
用させ1、生成したピルビン酸を乳酸脱水素酵素(Be
1.1.1.27 )の存在下にNADHと反応させ
、N A D Hの340 nm における吸光度の減
少量を分光光度計で測定することによって行なう。
て生成するN−アセチルノイラミン酸に、N−アセチル
ノイラミン酸リアーゼ(lEtC4、1,3,3)を作
用させ1、生成したピルビン酸を乳酸脱水素酵素(Be
1.1.1.27 )の存在下にNADHと反応させ
、N A D Hの340 nm における吸光度の減
少量を分光光度計で測定することによって行なう。
N−アセチルノイラミン酸+アグリコン (1)N−ア
セチル−D−マンノサミン+ピルビン酸(21ピルビン
酸十NADH二4!!t*ris奥−→乳酸 + N
A D (31 (イ)試薬 ■ 基質=40賜句コロミン酸水溶液 01.1ゴ■
緩衝液:200mMクエン酸−リン酸二ナトリウム緩衝
液(pH5,0) 0.1mj■ N−アセチルノイラ
ミン酸リアーゼ溶液:10mMリン酸緩衝液(pI(7
,0)で1単位/meになルヨうに調製 0.05m1
■ NADH: 100mMリン酸緩衝液(pi−17
,4)で0.3mMになるように調R2プ ■ 乳酸脱水素酵素: 100mMIJン酸緩衝液(1
)I(7,4)で30萌粕しiになるように調製 0.
011111!■ 1#累溶液 Q、1wLl (ロ) 操 作 上記試薬■、■を試験管に入れ、37℃5分間予φ;h
加温する。次いで酵素溶液■を加えて溶液の全針をQ、
5 mlに調整し37℃で15分間振とうして反応さ
せる。100℃3分間の加熱処理によって反応を停止す
る。
セチル−D−マンノサミン+ピルビン酸(21ピルビン
酸十NADH二4!!t*ris奥−→乳酸 + N
A D (31 (イ)試薬 ■ 基質=40賜句コロミン酸水溶液 01.1ゴ■
緩衝液:200mMクエン酸−リン酸二ナトリウム緩衝
液(pH5,0) 0.1mj■ N−アセチルノイラ
ミン酸リアーゼ溶液:10mMリン酸緩衝液(pI(7
,0)で1単位/meになルヨうに調製 0.05m1
■ NADH: 100mMリン酸緩衝液(pi−17
,4)で0.3mMになるように調R2プ ■ 乳酸脱水素酵素: 100mMIJン酸緩衝液(1
)I(7,4)で30萌粕しiになるように調製 0.
011111!■ 1#累溶液 Q、1wLl (ロ) 操 作 上記試薬■、■を試験管に入れ、37℃5分間予φ;h
加温する。次いで酵素溶液■を加えて溶液の全針をQ、
5 mlに調整し37℃で15分間振とうして反応さ
せる。100℃3分間の加熱処理によって反応を停止す
る。
次いで■を添加して70℃で15分間反応させる。さら
に■を添加してすぐに340 nmの吸光度をめる(
ODomin)。■を添加して25℃で10分間反応さ
せた後340 nmの吸光度(OD□。m1n)を測定
して、その差として Δ0Dtestをめ為。一方コントロール酵素の八 代シに、水を用いたものを上記と同様の操作を行ない吸
光度の変化ΔODblankをめる。
に■を添加してすぐに340 nmの吸光度をめる(
ODomin)。■を添加して25℃で10分間反応さ
せた後340 nmの吸光度(OD□。m1n)を測定
して、その差として Δ0Dtestをめ為。一方コントロール酵素の八 代シに、水を用いたものを上記と同様の操作を行ない吸
光度の変化ΔODblankをめる。
(ハ)力価の計算法
ノイラミニダーゼの1単位は37℃で1分間に1μmo
leのN−アセチルノイラミン酸を生成する酵素量と定
醗する。一方、1mMのNADHの吸光係数は6,22
と報告されている( The Merck Index
、 9版、p824)から請求める酵素溶液1ti当
シの力価(A)は =(Δ0Dt6st−Δ0Dblank)Xo、273
(単位/ml )よ請求められる。
leのN−アセチルノイラミン酸を生成する酵素量と定
醗する。一方、1mMのNADHの吸光係数は6,22
と報告されている( The Merck Index
、 9版、p824)から請求める酵素溶液1ti当
シの力価(A)は =(Δ0Dt6st−Δ0Dblank)Xo、273
(単位/ml )よ請求められる。
次に本発明で得られたノイラミニダーゼの諸性質を示す
。
。
(11作用
本酵素はシアロ糖複合体の末端に位置するN−アセチル
ノイラミン酸のα配位のケトシトを基質とし、とのN−
アセチルノイラミン酸残基を遊離させる反応を触媒する
。
ノイラミン酸のα配位のケトシトを基質とし、とのN−
アセチルノイラミン酸残基を遊離させる反応を触媒する
。
(2)基質特異性
本酵素はコロミン酸、N−アセチルノイラミン酸ラクト
ース、フェツイン、ムチy等の各種N−アセチルノイラ
ミン酸ケトシトを加水分解する。
ース、フェツイン、ムチy等の各種N−アセチルノイラ
ミン酸ケトシトを加水分解する。
ハ
フェツイン α、2−3 81.0
ムチン α、2−6 203
N−アセチルノイラミン酸ラクトースに対するh値は約
2mMであった。
2mMであった。
(3) 至適pH
本酵素の至適pHは37℃、15分間の反応でpH5,
0〜5.5付近にある。
0〜5.5付近にある。
(4)゛安定p)(範囲
本酵素の安定pH領域は4℃、20時間の処理でpH6
,0〜9.0の間にある。
,0〜9.0の間にある。
(5)作用適温の範囲
本酵素の最適温度はpH5,0+15分間の反応におい
て50°〜60℃付近にある。
て50°〜60℃付近にある。
(6)温度安定性
本酵素はpH6,0,15分間の処理で50℃まで安定
、55℃では50%程度失活する。
、55℃では50%程度失活する。
(7)阻害
37℃*pH5,0で反応させた場合、下記の物質によ
って阻害される。
って阻害される。
10−” 101
00PC” 10” 0゜6
10−” 99.2
TNB8” 10”’ 30.4
※ PCMB=パラクロロマーキュリ−ベンゾエイト峯
1[TNBs=)リニトロペンゼ/スルホン酸(8)分
子量 セファデックスG−150ゲル濾過法によシ、本酵素の
分子量は約30,000と算出された。
1[TNBs=)リニトロペンゼ/スルホン酸(8)分
子量 セファデックスG−150ゲル濾過法によシ、本酵素の
分子量は約30,000と算出された。
(9)結晶構造および元素分析値は本酵素が結晶化され
ていないので測定していない。
ていないので測定していない。
aQ 本酵素はディスク電気泳動によシ単一のバンドが
得られた。
得られた。
すなわち、7.5%ポリアクリルアミドゲルを用いて、
トリス−グリシン緩衝液(pH8,3)中で約90分間
泳動を行なった。そしてゲルをアミドブラック染色液で
染色することにょシ、単一の蛋白質のバンドが観察され
た。
トリス−グリシン緩衝液(pH8,3)中で約90分間
泳動を行なった。そしてゲルをアミドブラック染色液で
染色することにょシ、単一の蛋白質のバンドが観察され
た。
以下実施例をあげて本発明を具体的に説明する。
実施例1
ミクロモノスポラ・ビリディファシェンスATCC31
146を/ k :r −/(l fdl 、 可溶性
デンプンxt/dl、ペプトン0.75η〃、肉エキス
0、75 F/#1 食塩o、 a o y/dl*
Heマf + −/ fyムo、t o f/(#*
V7酸二カ’J ウA 0.10 f/di。
146を/ k :r −/(l fdl 、 可溶性
デンプンxt/dl、ペプトン0.75η〃、肉エキス
0、75 F/#1 食塩o、 a o y/dl*
Heマf + −/ fyムo、t o f/(#*
V7酸二カ’J ウA 0.10 f/di。
=r ロミ7 酸0.1 f/dl カラft、 ル培
m (pH7,0、)30 CJdヲ含ム21エルレン
マイヤーフラスコに植菌し、30℃で48時間振盪培養
した。
m (pH7,0、)30 CJdヲ含ム21エルレン
マイヤーフラスコに植菌し、30℃で48時間振盪培養
した。
この培養液600 mlを上記培地と同じ組成の培地1
sJを含む3(lジャーファーメンタ−に入れ、通気攪
拌(300rpm)しつつ、30℃で4日間培養を行っ
た。
sJを含む3(lジャーファーメンタ−に入れ、通気攪
拌(300rpm)しつつ、30℃で4日間培養を行っ
た。
この培養物151を大型ヌッチェで濾過助剤としてラジ
オライトφ100を用い濾過し、培養F液約15!を得
た。
オライトφ100を用い濾過し、培養F液約15!を得
た。
> n〜小を油化よ5詠1rr駄h−シ、輛シ ュ土
^ ntt 番輸イnで沈殿する部分を採取した。
^ ntt 番輸イnで沈殿する部分を採取した。
この沈殿のノイラミニダーゼ活性収率は約80チで、比
活性は約5倍に上昇していた。
活性は約5倍に上昇していた。
この沈殿を少種゛(約1001Lt)の0.01M)リ
ス−塩酸緩衝液(pH7,0)に溶解した。
ス−塩酸緩衝液(pH7,0)に溶解した。
この溶液を同緩衝液xolで24時間透析した。透析液
を同緩衝液で平衡化したDgAE−セファデックスカラ
ム(119口径60ml )に通塔した。この操作で、
ノイラミニダーゼはDEAE−セファデックスに吸着さ
れる。さらに、同緩衝液で不純蛋白質を洗い流した。
を同緩衝液で平衡化したDgAE−セファデックスカラ
ム(119口径60ml )に通塔した。この操作で、
ノイラミニダーゼはDEAE−セファデックスに吸着さ
れる。さらに、同緩衝液で不純蛋白質を洗い流した。
次に0. OI M )リス−塩酸緩衝液(pH7,0
)から1.01V+食塩を含む同緩衝液までの食塩の濃
度勾配液で溶出を行った。
)から1.01V+食塩を含む同緩衝液までの食塩の濃
度勾配液で溶出を行った。
溶出してくる活性画分をあわせ、これに硫安を加えて、
硫安90%飽和で沈殿する部分を遠心分離(1λ0OO
XIP + 20分)で集め、0.01Mトリス−塩酸
緩衝液(p)17.0 ) 10mに溶解した。
硫安90%飽和で沈殿する部分を遠心分離(1λ0OO
XIP + 20分)で集め、0.01Mトリス−塩酸
緩衝液(p)17.0 ) 10mに溶解した。
この溶液を同緩衝液5ノで24時間透析した。
透析後、酵素液を同緩衝液で平衡化したセファデックス
G−75のカラム(5001j+ 口径3、5 m )
に通した。溶出液を分画回収し、比活性の高い分画を集
め凍結乾燥し、ノイラミニダーゼの粉末精製酵素標品5
0117(比活性50単勅いを得た。
G−75のカラム(5001j+ 口径3、5 m )
に通した。溶出液を分画回収し、比活性の高い分画を集
め凍結乾燥し、ノイラミニダーゼの粉末精製酵素標品5
0117(比活性50単勅いを得た。
精製酵素は細胞ν液に比べて比活性は約2000倍に上
昇し、活性の収率は約50g6であった。
昇し、活性の収率は約50g6であった。
実施例2
使用菌株をミクロモノスポラ・グロポーサNRRLB−
2673に替え、発酵培地をペプトン0.2シU、肉エ
キス0.1シm、酵母エキス0、1 f/di、ムチン
2 f/diからなる培地(pH7,2)に替えて行う
以外は実施例1と同様に行って比活性 30単位4gの
精製ノイラミニダーゼ約201gを得た。活性の収率は
約30%であった。
2673に替え、発酵培地をペプトン0.2シU、肉エ
キス0.1シm、酵母エキス0、1 f/di、ムチン
2 f/diからなる培地(pH7,2)に替えて行う
以外は実施例1と同様に行って比活性 30単位4gの
精製ノイラミニダーゼ約201gを得た。活性の収率は
約30%であった。
実施例3
使用菌株をミクロモノスポラ・カルセアATCC124
52に替えて行う以外は実施例1と同様に行い、比活性
40単位4gのf#製ノイラミニダーゼ約30■を得た
。活性の収率は約40チであった。
52に替えて行う以外は実施例1と同様に行い、比活性
40単位4gのf#製ノイラミニダーゼ約30■を得た
。活性の収率は約40チであった。
′tノ
Claims (1)
- ミクロモノスポラ属に属し、ノイラミニダーゼを生産す
る能力を有する微生物を培地に培養し、培養物中にノイ
ラミニダーゼを蓄積せしめ、該培養物から該酵素を採取
することを特徴とするノイラミニダーゼの製造法。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58142803A JPS6034181A (ja) | 1983-08-04 | 1983-08-04 | ノイラミニダ−ゼの製造法 |
| US06/636,552 US4710470A (en) | 1983-08-04 | 1984-08-01 | Process for producing neuraminidase |
| DE8484109221T DE3482804D1 (de) | 1983-08-04 | 1984-08-03 | Verfahren zur herstellung von neuraminidase und verfahren und reagenz zur quantitativen bestimmung einer sialinsaeure enthaltenden substanz unter verwendung von neuraminidase. |
| EP84109221A EP0133694B1 (en) | 1983-08-04 | 1984-08-03 | Process for producing neuraminidase and method and reagent for the quantitative determination of a sialic acid-containing substance using neuraminidase |
| DE198484109221T DE133694T1 (de) | 1983-08-04 | 1984-08-03 | Verfahren zur herstellung von neuraminidase und verfahren und reagenz zur quantitativen bestimmung einer sialinsaeure enthaltenden substanz unter verwendung von neuraminidase. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58142803A JPS6034181A (ja) | 1983-08-04 | 1983-08-04 | ノイラミニダ−ゼの製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6034181A true JPS6034181A (ja) | 1985-02-21 |
| JPH0236230B2 JPH0236230B2 (ja) | 1990-08-16 |
Family
ID=15323994
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58142803A Granted JPS6034181A (ja) | 1983-08-04 | 1983-08-04 | ノイラミニダ−ゼの製造法 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4710470A (ja) |
| EP (1) | EP0133694B1 (ja) |
| JP (1) | JPS6034181A (ja) |
| DE (2) | DE133694T1 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5268290A (en) * | 1988-07-26 | 1993-12-07 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Process for producing neuraminidase |
| CN107254508A (zh) * | 2017-07-21 | 2017-10-17 | 王贤俊 | 一种h2o2偶联的指示系统检测唾液酸的试剂盒 |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4695541A (en) * | 1985-01-31 | 1987-09-22 | Molecular Diagnostics, Inc. | Enzymatic detection of bacterial capsular polysaccharide antigens |
| JPH0775557B2 (ja) * | 1986-04-25 | 1995-08-16 | 富士レビオ株式会社 | 脂質結合性シアル酸の測定法 |
| JPH07114695B2 (ja) * | 1986-06-16 | 1995-12-13 | 丸金醤油株式会社 | ノイラミニダ−ゼの製造法 |
| US4960701A (en) * | 1986-12-04 | 1990-10-02 | Noda Institute For Scientific Research | N-acetylmannosamine dehydrogenase, process for its production, method for quantitatively analyzing N-acetylmannosamine or sialic acid, and kit for the quantitative analysis |
| US5312747A (en) * | 1990-12-17 | 1994-05-17 | Li Yu Teh | Isolation, purification and utilization of sialidase-L in the synthesis of 2,7-anhydro-N-acetylneuraminic acid and for the selective cleavage of sialylα2-3 D-galactose linkage |
| IT1252228B (it) * | 1991-12-17 | 1995-06-05 | T Associated Bio Technologies | Procedimento per la produzione di neuraminidasi |
| DE10021019A1 (de) * | 2000-05-02 | 2001-11-22 | Fessner Wolf Dieter | Verfahren zur Bestimmung von N-acetylneuraminsäure und deren Metaboliten |
| CN101469344B (zh) * | 2007-12-29 | 2013-07-24 | 上海铂锦诊断用品有限公司 | 一种稳定的酶法测定唾液酸液体双试剂及其应用 |
| GB2538724A (en) * | 2015-05-26 | 2016-11-30 | Imp Innovations Ltd | Methods |
| CN108982493A (zh) * | 2018-09-17 | 2018-12-11 | 迪瑞医疗科技股份有限公司 | 一种唾液酸苷酶干化学试纸及其制备方法 |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB1061095A (en) * | 1962-12-21 | 1967-03-08 | Nat Res Dev | Improvements relating to the production of neuraminidase |
| US3991183A (en) * | 1975-05-01 | 1976-11-09 | Pfizer Inc. | Antibiotic produced by a species of micromonospora |
| US4071408A (en) * | 1976-11-01 | 1978-01-31 | Research Corporation | Neuraminidase |
| US4246342A (en) * | 1978-03-25 | 1981-01-20 | Toyo Jozo Kabushiki Kaisha | Process for the manufacture of pyruvate oxidase, and analytical method and kit for the use of the same |
| US4316954A (en) * | 1980-04-18 | 1982-02-23 | Eastman Kodak Company | Assay for neuraminic acids |
| JPS5783287A (en) * | 1980-11-14 | 1982-05-25 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | Elimination of hydrogen peroxide |
-
1983
- 1983-08-04 JP JP58142803A patent/JPS6034181A/ja active Granted
-
1984
- 1984-08-01 US US06/636,552 patent/US4710470A/en not_active Expired - Lifetime
- 1984-08-03 EP EP84109221A patent/EP0133694B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1984-08-03 DE DE198484109221T patent/DE133694T1/de active Pending
- 1984-08-03 DE DE8484109221T patent/DE3482804D1/de not_active Expired - Lifetime
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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| US5268290A (en) * | 1988-07-26 | 1993-12-07 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Process for producing neuraminidase |
| CN107254508A (zh) * | 2017-07-21 | 2017-10-17 | 王贤俊 | 一种h2o2偶联的指示系统检测唾液酸的试剂盒 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0236230B2 (ja) | 1990-08-16 |
| DE133694T1 (de) | 1985-09-12 |
| EP0133694B1 (en) | 1990-07-25 |
| DE3482804D1 (de) | 1990-08-30 |
| EP0133694A3 (en) | 1987-03-04 |
| US4710470A (en) | 1987-12-01 |
| EP0133694A2 (en) | 1985-03-06 |
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