JPS6037995A - 単クローン性抗cea抗体 - Google Patents
単クローン性抗cea抗体Info
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- JPS6037995A JPS6037995A JP58181732A JP18173283A JPS6037995A JP S6037995 A JPS6037995 A JP S6037995A JP 58181732 A JP58181732 A JP 58181732A JP 18173283 A JP18173283 A JP 18173283A JP S6037995 A JPS6037995 A JP S6037995A
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- JP
- Japan
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- antigen
- antigens
- antibody
- carcinoembryonic
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、癌胎児性抗原(以下CEAという)の抗原決
定基に対して特異性を有する単クローン性抗体、その製
造方法および用法に関する。
定基に対して特異性を有する単クローン性抗体、その製
造方法および用法に関する。
CIAは周知の癌特異的胎児性抗原であって、分子量約
8万±3万、糖と蛋白質との比約1:1の、ある種の糖
蛋白質である。癌特異抗原としてCIAがヒトの消化器
のアデノカルシノーマに存在することは、GOlcLお
よびFreedmanによって報告された〔J、 E!
p、 Mea、 、 121.439 (1965)
+ 1bid、 、 122゜467 (1965)
〕。たとえば血中のCKA濃度をラジオイムノアッセイ
によって測定し、これを臨床的にヒトの癌の診断治療用
マーカーとする場合や各種の基礎医学研究用にCIAが
重要であることは周知である。しかし、ある種のCBA
関連正常抗原が存在しており、これらはCIAと免疫学
的交叉反応性を有しているので、CIAの癌特異性が不
明確になっている。
8万±3万、糖と蛋白質との比約1:1の、ある種の糖
蛋白質である。癌特異抗原としてCIAがヒトの消化器
のアデノカルシノーマに存在することは、GOlcLお
よびFreedmanによって報告された〔J、 E!
p、 Mea、 、 121.439 (1965)
+ 1bid、 、 122゜467 (1965)
〕。たとえば血中のCKA濃度をラジオイムノアッセイ
によって測定し、これを臨床的にヒトの癌の診断治療用
マーカーとする場合や各種の基礎医学研究用にCIAが
重要であることは周知である。しかし、ある種のCBA
関連正常抗原が存在しており、これらはCIAと免疫学
的交叉反応性を有しているので、CIAの癌特異性が不
明確になっている。
この種のCIA関連抗原の例は、非特異的交叉反応抗原
(以下N0人という)および正常糞便抗原(以下NFA
という)である。NCAは分子量約8万±3万、糖含量
的20%のある種の糖蛋白質で、たとえばヒトの肺や牌
に存在している[: Proc、 Natl。
(以下N0人という)および正常糞便抗原(以下NFA
という)である。NCAは分子量約8万±3万、糖含量
的20%のある種の糖蛋白質で、たとえばヒトの肺や牌
に存在している[: Proc、 Natl。
Acad、 8ci、USA、 、 69.2492
(1972) ]。次にNFAはさらにNF’A−1、
NFA −2および正常糞便交叉反応抗原(以下NFC
Aという)に分類される。NFA −2は分子量加万±
5万、糖と蛋白質との比約に1のある棟の糖蛋白質で、
その抗原性および理化学的性状はiAと極めて類似して
いる。NFA −1およびNFCAはNFk−2の分解
産物であると思われる。
(1972) ]。次にNFAはさらにNF’A−1、
NFA −2および正常糞便交叉反応抗原(以下NFC
Aという)に分類される。NFA −2は分子量加万±
5万、糖と蛋白質との比約に1のある棟の糖蛋白質で、
その抗原性および理化学的性状はiAと極めて類似して
いる。NFA −1およびNFCAはNFk−2の分解
産物であると思われる。
NFA −1は分子量約2〜3万−m会* Mll:(
偽の)1\分子抗原であり、NFCAは分子量約8万±
3万の1種の糖蛋白である。
偽の)1\分子抗原であり、NFCAは分子量約8万±
3万の1種の糖蛋白である。
他に、ヒトの正常糞便中に尖便非特異的交叉反応抗yX
(以下f−1iCA という)という抗原が存在してい
る。f −NCA の抗原性は前記のNCAのものと実
質的に同一で、CEiA 、 NFCAおよびNFA−
2と交叉反応性を示す。従って、ヒトの正常糞便中には
、本発明の目的に関係のある4種のCIA関連抗原が存
在している。
(以下f−1iCA という)という抗原が存在してい
る。f −NCA の抗原性は前記のNCAのものと実
質的に同一で、CEiA 、 NFCAおよびNFA−
2と交叉反応性を示す。従って、ヒトの正常糞便中には
、本発明の目的に関係のある4種のCIA関連抗原が存
在している。
癌ヤーカーとしてのCBiAの利用を改良するために、
CEiA関連抗原とIAとを正確に識別しなければなら
ない。このために、(JAの抗原決定基に対して明確な
特異性を有する抗CEA抗体の提供が従来試みられてい
る。しかし、公知の各種の多クローン性抗体には、反応
特異性が不明確であるという共通の欠点がある。すなわ
ち、これらの多クローン性CBA抗体は、各種の抗体混
合物であって、CJCA分子上の多くの抗原決定基のは
七んど全部と反応性を有している。この欠点をなくする
ために、各種の単クローン性抗CEA抗体が重要視され
ている。その理由は次の通シである。
CEiA関連抗原とIAとを正確に識別しなければなら
ない。このために、(JAの抗原決定基に対して明確な
特異性を有する抗CEA抗体の提供が従来試みられてい
る。しかし、公知の各種の多クローン性抗体には、反応
特異性が不明確であるという共通の欠点がある。すなわ
ち、これらの多クローン性CBA抗体は、各種の抗体混
合物であって、CJCA分子上の多くの抗原決定基のは
七んど全部と反応性を有している。この欠点をなくする
ために、各種の単クローン性抗CEA抗体が重要視され
ている。その理由は次の通シである。
(11細胞融合という常法によって得られる単りローン
性C凡A抗体は、唯一つの抗原決定基に対してのみ特異
性を有しているから、抗原との反応性が均一であろう。
性C凡A抗体は、唯一つの抗原決定基に対してのみ特異
性を有しているから、抗原との反応性が均一であろう。
(2) 単クローンの増殖によって、所望の均一性をも
つ多量の抗体が得られるであろう。
つ多量の抗体が得られるであろう。
(3) 多槙類の単クローンを得ることができる。これ
らは全体として、公知の多クローン性抗CEA抗体と同
様に広範囲の特異性を持つであろう。
らは全体として、公知の多クローン性抗CEA抗体と同
様に広範囲の特異性を持つであろう。
このようにして、単クローン性抗CEA抗体の製造が、
たとえば次の文献にあるように試みられている。
たとえば次の文献にあるように試みられている。
Accolla、R,S、et aユ、ProC,1J
atl、Acad、Sci、USA、。
atl、Acad、Sci、USA、。
77、563 (1980) ;Mitohell、
K+F、 、 Cancer工mmuno1゜工mmu
nother、IQ、 l (198Q ) ;Rog
ers、 G、’I’+et am。
K+F、 、 Cancer工mmuno1゜工mmu
nother、IQ、 l (198Q ) ;Rog
ers、 G、’I’+et am。
Br、J、 Cancer、 43.1 (1981)
; Kupchik、 H,Z、 etal、 Can
cer 1(C8,、41,33(16(1981)。
; Kupchik、 H,Z、 etal、 Can
cer 1(C8,、41,33(16(1981)。
これら既報の琳クローン性抗体の反応%異性tよ、次の
通りに費約さすしる。
通りに費約さすしる。
(1) Accollaら。 2つのハイプリドーマか
ら得られた抗体はNGD (NCAと同等であると思わ
れる)と微弱に反応し、CEAと強く反応した。これら
の2つの抗体とClとの反応には競合的阻害がみられな
かった。各抗体はCIA分子上の別の抗原決定基と反応
するようである。
ら得られた抗体はNGD (NCAと同等であると思わ
れる)と微弱に反応し、CEAと強く反応した。これら
の2つの抗体とClとの反応には競合的阻害がみられな
かった。各抗体はCIA分子上の別の抗原決定基と反応
するようである。
+2) ’ Mitchell。1つの抗CEA抗体が
得られた。
得られた。
これはCFIAと反応したがNCAと反応しなかった。
CEAとの反応を多クローン性ヤギ抗CEA抗体で阻止
できなかった。
できなかった。
(3) ROgerlilら。 1つの単りローン性抗
CIA抗体が得られた。これは腫瘍組織からのC11i
A標品と弱く反応したが、患者の血清中のCEAと強く
反応した。
CIA抗体が得られた。これは腫瘍組織からのC11i
A標品と弱く反応したが、患者の血清中のCEAと強く
反応した。
(41Kupchik 09個のクローンのうちの1個
の単りローン性抗CIA抗体が検討された。その反応特
異性と多クローン性ヤギ抗Ci抗体と比較したところ単
りローン性抗CFiA抗体は、多クローン性抗C]li
A抗体と反応するCIA分子のうちの1部のCEA分子
とのみ反応した。
の単りローン性抗CIA抗体が検討された。その反応特
異性と多クローン性ヤギ抗Ci抗体と比較したところ単
りローン性抗CFiA抗体は、多クローン性抗C]li
A抗体と反応するCIA分子のうちの1部のCEA分子
とのみ反応した。
これらの公知の単りローン性抗CRA抗体の反応特異性
についてのよりくわしい検索はなされていない。
についてのよりくわしい検索はなされていない。
この間に我々は、ある種のC11JA連抗原すなわち前
記のNFA −1、NFA−2およびNFCAがヒトの
正常糞便に存在することを見出し、これらの分離に成功
したし%開明56−46819号、Cancer Re
s、 。
記のNFA −1、NFA−2およびNFCAがヒトの
正常糞便に存在することを見出し、これらの分離に成功
したし%開明56−46819号、Cancer Re
s、 。
玉、 713−720 (1981))。さらKこれら
のCEA関連正常抗原を用いてCEA分子の抗原構造を
調べた結果、CEA分子上の多くの抗原決定基を、たと
えは次の通りに分類し得ることを提案した。
のCEA関連正常抗原を用いてCEA分子の抗原構造を
調べた結果、CEA分子上の多くの抗原決定基を、たと
えは次の通りに分類し得ることを提案した。
(1)個体特異的抗原決定基
免疫抗原として用いた個々のCB、A標品にのみ見出さ
れる特異的な抗原決定基で、他の個体から得られたCE
A標品には見出されないもの。
れる特異的な抗原決定基で、他の個体から得られたCE
A標品には見出されないもの。
(21CIA特異決定基
癌組織から得られたCBA標品に共通して見出される抗
原決定基であるが、NFAやNCAなどCEA関連正常
抗原には見出されない。最も動物異性の:番層坩1σり
拉94ルマ寥ムス− (3) NFA −1共通決定基 CRiA%NFA−2およびNFA−1の3者に共通し
て見出される抗原決定基で、CInA分子上の主要抗原
決定基の1つである。
原決定基であるが、NFAやNCAなどCEA関連正常
抗原には見出されない。最も動物異性の:番層坩1σり
拉94ルマ寥ムス− (3) NFA −1共通決定基 CRiA%NFA−2およびNFA−1の3者に共通し
て見出される抗原決定基で、CInA分子上の主要抗原
決定基の1つである。
(4) NPCA共通決定基
Cf1A 、NFA −2およびNFCAの3者に共通
して見出される抗原決定基で、これもCFiA分子上分
子製抗原決定基の1つである。
して見出される抗原決定基で、これもCFiA分子上分
子製抗原決定基の1つである。
(51NCh共通決定基
OF;A 、 NFA −2、NFCAおよびNCAの
4者に共通して見出される抗原決定基で、CBAおよび
関連抗原に最も広く共通して認められる抗原決定基であ
る。
4者に共通して見出される抗原決定基で、CBAおよび
関連抗原に最も広く共通して認められる抗原決定基であ
る。
本発明は、我々がひとの正常糞便から分離した上記の(
JA M連抗原を用いることによって、単クローン性抗
CEA抗体産生能を有する単クローンを、抗原との反応
性の観点において選別し得るという知見に基いている。
JA M連抗原を用いることによって、単クローン性抗
CEA抗体産生能を有する単クローンを、抗原との反応
性の観点において選別し得るという知見に基いている。
不発明の目的は、単クローン性抗CEA抗体の製造方法
、この方法に用いられる単クローンおよびこの種の抗体
の用法を提供することにある。
、この方法に用いられる単クローンおよびこの種の抗体
の用法を提供することにある。
本発明は、哺乳動物を所与のCFiA標品(以下第1
CEAという)で免疫することによシ、抗体産生能を有
する細胞を産生じ、こうして産生きれた細胞を哺乳動物
から採取し、採取された細胞を他の哺乳動物由来の株化
glWJ細胞と融合させ、得られた融合細胞(ハイブリ
ドーマ)をクローニングし、得られた単クローンを培養
し、培養物から所望の単クローン性抗体を回収する工程
からなる癌胎児性抗原(CJ!8A )に対して持具性
を有する単クローン性抗体の製造方法に関する。本発明
の方法は、(イ)上記の所与のCFtA (第1 CF
iA )標品をマーカーとして用いることにより、上記
融合細胞を、マーカー抗原と反応する抗体産生能の観点
から選別すること、督よび(ロ)上記の所与のCBA
(第11A )以外のCKA標品(以下第2 CIAと
いう)と正常成人由来のCJICA関連抗原とからなる
群から選ばれた1 fm以上の抗原をマーカーとして用
いることにより、上記のクローニングによって得られた
単クローンを単クローンの産生する単クローン性抗体と
上記の1ffi以上のマーカー抗原との反応性の観点か
ら選別することを%徴としている。
CEAという)で免疫することによシ、抗体産生能を有
する細胞を産生じ、こうして産生きれた細胞を哺乳動物
から採取し、採取された細胞を他の哺乳動物由来の株化
glWJ細胞と融合させ、得られた融合細胞(ハイブリ
ドーマ)をクローニングし、得られた単クローンを培養
し、培養物から所望の単クローン性抗体を回収する工程
からなる癌胎児性抗原(CJ!8A )に対して持具性
を有する単クローン性抗体の製造方法に関する。本発明
の方法は、(イ)上記の所与のCFtA (第1 CF
iA )標品をマーカーとして用いることにより、上記
融合細胞を、マーカー抗原と反応する抗体産生能の観点
から選別すること、督よび(ロ)上記の所与のCBA
(第11A )以外のCKA標品(以下第2 CIAと
いう)と正常成人由来のCJICA関連抗原とからなる
群から選ばれた1 fm以上の抗原をマーカーとして用
いることにより、上記のクローニングによって得られた
単クローンを単クローンの産生する単クローン性抗体と
上記の1ffi以上のマーカー抗原との反応性の観点か
ら選別することを%徴としている。
次に本発明により、上記方法によって産生された単クロ
ーン性抗体および上記方法によって選別された単クロー
ンが提供される。
ーン性抗体および上記方法によって選別された単クロー
ンが提供される。
実用的には、(JA関連抗原としてはヒト成人の正常糞
便由来のNFA−1、NPA−2およびf−NCAが選
ばれ、選別は放射性物質で標識されたマーカーを用いる
周知のラジオイムノアッセイ法によって行なわれる。
便由来のNFA−1、NPA−2およびf−NCAが選
ばれ、選別は放射性物質で標識されたマーカーを用いる
周知のラジオイムノアッセイ法によって行なわれる。
本発明による単クローンから得られる単クローン性抗体
は、CIICA分子上の対応する抗原決定基との反応性
が均一かつ明確であるから、たとえばヒトの効の診断治
療のような臨床応用や各種の基礎医学研究用に有利に用
いることができる。
は、CIICA分子上の対応する抗原決定基との反応性
が均一かつ明確であるから、たとえばヒトの効の診断治
療のような臨床応用や各種の基礎医学研究用に有利に用
いることができる。
本発明の単クローンを、たとえd次のように常法によっ
て得ることができる。免疫される哺乳動物は、たとえば
マウス、ラット、モルモットのような小動物でも、ウサ
ギ、ヤギ、牛、馬のような大動物でもよい。動物を常法
により免疫する。たとえばマウスを、所与のCICA標
品すなわち第1 Cll1A加μtを含むフロイントの
完全アジュバントを用いた乳化液0.2dの皮下注射に
よって免疫し、5週間徒に食塩水0.21中の回置のc
mAの静脈注射によって免疫する。38彼に常法により
動物の牌およびリンパ節細胞を採取する。採取された抗
体産生細胞と適当な腫瘍細胞〔たとえばP3−X63−
Ag8.6.5.3(たとえばP3−X63−Ag8−
ul ’)、8p 210−Ag14.210、RCY
3、Agl、2.3 など〕とを1x108抗体産生細
胞/yd対1−2xlO″胛瘍細胞/耐の比で、すなわ
ち5対1から10対1の比で混合し、常法によシ、たと
えばHVJ (仙台ウィルス)またはPEG (ポリエ
チレングリコール)ヲ用いて融合する。HAT培地を用
いて選別すると、正常細胞は死滅し、融合細胞が残存す
る。第11Aと反応する抗体産生能の観点において、融
合細胞を選別する。選別された融合細胞は抗(jCA抗
体産生能を有する融合細胞である。これを常法によりク
ローニングし、得られた単クローンを、単りローー/I
4−1:ツこ11=−^4il+Ll”!mA*−Fr
Nl’i’R1AMシkl−”114−#++=rL/
7’+F応性の観点から選別する。それ自体公知のラジ
オイムノアッセイ法によって実用的に選別することがで
きる。下記の実施例で用いた選別法はFarrの硫安沈
殿法(1?’arr、 R,8,、J、工nf、 ])
1s、、 103.239(195B ) )である。
て得ることができる。免疫される哺乳動物は、たとえば
マウス、ラット、モルモットのような小動物でも、ウサ
ギ、ヤギ、牛、馬のような大動物でもよい。動物を常法
により免疫する。たとえばマウスを、所与のCICA標
品すなわち第1 Cll1A加μtを含むフロイントの
完全アジュバントを用いた乳化液0.2dの皮下注射に
よって免疫し、5週間徒に食塩水0.21中の回置のc
mAの静脈注射によって免疫する。38彼に常法により
動物の牌およびリンパ節細胞を採取する。採取された抗
体産生細胞と適当な腫瘍細胞〔たとえばP3−X63−
Ag8.6.5.3(たとえばP3−X63−Ag8−
ul ’)、8p 210−Ag14.210、RCY
3、Agl、2.3 など〕とを1x108抗体産生細
胞/yd対1−2xlO″胛瘍細胞/耐の比で、すなわ
ち5対1から10対1の比で混合し、常法によシ、たと
えばHVJ (仙台ウィルス)またはPEG (ポリエ
チレングリコール)ヲ用いて融合する。HAT培地を用
いて選別すると、正常細胞は死滅し、融合細胞が残存す
る。第11Aと反応する抗体産生能の観点において、融
合細胞を選別する。選別された融合細胞は抗(jCA抗
体産生能を有する融合細胞である。これを常法によりク
ローニングし、得られた単クローンを、単りローー/I
4−1:ツこ11=−^4il+Ll”!mA*−Fr
Nl’i’R1AMシkl−”114−#++=rL/
7’+F応性の観点から選別する。それ自体公知のラジ
オイムノアッセイ法によって実用的に選別することがで
きる。下記の実施例で用いた選別法はFarrの硫安沈
殿法(1?’arr、 R,8,、J、工nf、 ])
1s、、 103.239(195B ) )である。
CIA関連抗原の実用的な例は正常成人由来由来の訂A
−1,NFA−2およびf −NCAで、これらの性状
は前記の通りである。これらのIA関連抗原の製造は後
記参考例に記載されている。
−1,NFA−2およびf −NCAで、これらの性状
は前記の通りである。これらのIA関連抗原の製造は後
記参考例に記載されている。
後記実施例1において行なわれた選別の結果が第1表に
示されている。
示されている。
第1表において、正常成人糞便由来のClム関連抗g
NFA −2ij放射性ヨード標識され、次に単りロー
ン培養土清に加見られ、ラジオイムノアッセイが行なわ
れる。その結果、単り四−ン(クローンA%実施例1で
は約10株)と単クローン(クローンB、実施例1では
約200株)が選別される。
NFA −2ij放射性ヨード標識され、次に単りロー
ン培養土清に加見られ、ラジオイムノアッセイが行なわ
れる。その結果、単り四−ン(クローンA%実施例1で
は約10株)と単クローン(クローンB、実施例1では
約200株)が選別される。
クローンAの産生する抗体ムはNFA −2と反応しな
い。クローンBの産生する抗体BはNFA −2と反応
する。抗体AはヒトのCEAと反応し、正常成人糞便由
来のCIA関連抗原と反応しない。
い。クローンBの産生する抗体BはNFA −2と反応
する。抗体AはヒトのCEAと反応し、正常成人糞便由
来のCIA関連抗原と反応しない。
1つ以上の第2 cgA(実施例では4棟)を用いて、
同様の方法でラジオイムノアッセイを行なうと、クロー
ンムからクローンAI(実施例1では8株)の産生ずる
抗体1は第1 CIAと反応する。
同様の方法でラジオイムノアッセイを行なうと、クロー
ンムからクローンAI(実施例1では8株)の産生ずる
抗体1は第1 CIAと反応する。
第2 CBAと反応せず、クローンA2の産生する抗体
2l−Illおよび第2 CBAと反応する。
2l−Illおよび第2 CBAと反応する。
同様の方法でNIl′A−1を用いて、IJFA −2
と反応する抗体を産生ずるクローンBを選別すると、ク
ローンB1およびB2か得られる。クローンB111F
A−1およびNIFA−2と反応する。クローンB2(
実施例1では約100株)の産生する抗体B2H1NF
A −2と反応し、IJFA−1と反応しない。NFA
−1の分子側°は小さいが、抗原活性は強いので、実施
例1では約70株のクローンB1が得られた。
と反応する抗体を産生ずるクローンBを選別すると、ク
ローンB1およびB2か得られる。クローンB111F
A−1およびNIFA−2と反応する。クローンB2(
実施例1では約100株)の産生する抗体B2H1NF
A −2と反応し、IJFA−1と反応しない。NFA
−1の分子側°は小さいが、抗原活性は強いので、実施
例1では約70株のクローンB1が得られた。
f −NCAを用いて同様の方法でクローンB2から、
クローンB2−1(実施仙lでけ約印株)とB2−2(
実施例1では約40株)が選別される。クローンB2−
1の産生する抗体4はf −NCAと反応しないが、ク
ローンB2−2の産生する抗体5けf−NCAと反応す
る。
クローンB2−1(実施仙lでけ約印株)とB2−2(
実施例1では約40株)が選別される。クローンB2−
1の産生する抗体4はf −NCAと反応しないが、ク
ローンB2−2の産生する抗体5けf−NCAと反応す
る。
所望により、IIF’A−2以外の他の抗原をクローニ
ングで得られたクローンの最初の選別に用いることがで
きる。たとえば、NFA −1を最初に用いることによ
シ、産生される抗体との”A−1との反応性の観点から
単クローンを選別すること力;できる。
ングで得られたクローンの最初の選別に用いることがで
きる。たとえば、NFA −1を最初に用いることによ
シ、産生される抗体との”A−1との反応性の観点から
単クローンを選別すること力;できる。
本発明によって選別された5柚類の単クローンから産生
される単りローン性抗CBA抗体は、全体Ll−7″
めAn&雀工αM−釣シ)壬が工gG、約lOチがエg
AKj/Rすることがわかった。
される単りローン性抗CBA抗体は、全体Ll−7″
めAn&雀工αM−釣シ)壬が工gG、約lOチがエg
AKj/Rすることがわかった。
本発明による単りローン性抗CBA抗体を各種の臨床的
用途および基礎医学研究用に有利に用いることができる
。たとえば、抗体2は臨床用KGも有利であシ、抗体3
は血中CIA濃度の測定に価値があると考えられる。な
お、本発明による単クローンを常法によって工業的規模
で増殖することができる。
用途および基礎医学研究用に有利に用いることができる
。たとえば、抗体2は臨床用KGも有利であシ、抗体3
は血中CIA濃度の測定に価値があると考えられる。な
お、本発明による単クローンを常法によって工業的規模
で増殖することができる。
本発明による単クローン性抗CEA抗体の用法は抗体の
反応%異性および用途によって異なるが、代表的な用法
を次に例示する。
反応%異性および用途によって異なるが、代表的な用法
を次に例示する。
10組織学的検索法
たとえば細胞の浮遊液または塗抹標本あるいは組織切片
のような細胞標品を本発明の単りローン性抗CKA抗体
で37゛Cで加分処理し、食塩水で十分に洗浄したのち
、螢光色素(tetrame−thylrhodami
ne 1aothiocyanateまたはfluor
es−cein 1sothiocyanatθ)で標
識した抗マウス免疫グロブリン抗体溶液で37°Cで加
分処理し、螢光顕微鏡を用いて螢光陽性の細胞を検索す
る。
のような細胞標品を本発明の単りローン性抗CKA抗体
で37゛Cで加分処理し、食塩水で十分に洗浄したのち
、螢光色素(tetrame−thylrhodami
ne 1aothiocyanateまたはfluor
es−cein 1sothiocyanatθ)で標
識した抗マウス免疫グロブリン抗体溶液で37°Cで加
分処理し、螢光顕微鏡を用いて螢光陽性の細胞を検索す
る。
所望によシ螢光色累の代わシに抗マウス免疫グロブリン
抗体に結合されたペルオキシダーゼを用いる酵素抗体法
による検索も可能である。
抗体に結合されたペルオキシダーゼを用いる酵素抗体法
による検索も可能である。
■、血中CI!iA濃度測定法
本発明の単クローン性抗CEA抗体による血中CEA濃
度の正確な測定は、次に例示するよう忙、たとえは硫安
沈殿によるF’arrの方法、抗マウス免疫グロブリン
抗体を用いる二抗体法、ジルコニウムゲルを用いる2ゲ
ル法および同相抗体サンドイツチ法などによって行なう
ことができる。
度の正確な測定は、次に例示するよう忙、たとえは硫安
沈殿によるF’arrの方法、抗マウス免疫グロブリン
抗体を用いる二抗体法、ジルコニウムゲルを用いる2ゲ
ル法および同相抗体サンドイツチ法などによって行なう
ことができる。
(1) 抗マウス免疫グロブリン抗体による二抗体法の
例。
例。
ヒトの血清(資)μtをプラスチックチューブ(たとえ
ば栄研チューブIVh1:栄研化学社製;径9.8va
n、長さ8 cm )に入れ、Q、5 % BAAを含
むu、xuF!ji:酸緩衝液(1)H6,O) 20
0μtを加えて希釈する。0.1M酢酸緩衝液(pH6
,0)でI倍に希釈した正常マウス血清を用いて、適当
に希釈された本発明の単りローン性抗CIA抗体液刃μ
Lをとり、上記チューブに入れて37°Cで加分反応さ
せる。後記参考例1記載の方製 法で調デされ126エで標識された適当なC[A標品(
1,5nS’)の酢酸緩衝液溶液(50pL )をチュ
ーブニ加え37°Cで1時間反応させる。次いで正常マ
ウス血清(X50i50#L)中の免疫グロブリンを充
分に沈降させうる量の抗マウス免疫グロブリン抗体を含
むウサギまたはヤギ抗マウス免疫グロブリン血清lOO
μtfC反応混合液に加え4°Cで一夜反応させる。生
じた沈降物を遠心操作(3000r、 I)、 m、/
30分)で落し、0.9%食塩溶液で沈降物を洗浄し
たのち、沈降物の放射性をガンマ−計測機で測定する。
ば栄研チューブIVh1:栄研化学社製;径9.8va
n、長さ8 cm )に入れ、Q、5 % BAAを含
むu、xuF!ji:酸緩衝液(1)H6,O) 20
0μtを加えて希釈する。0.1M酢酸緩衝液(pH6
,0)でI倍に希釈した正常マウス血清を用いて、適当
に希釈された本発明の単りローン性抗CIA抗体液刃μ
Lをとり、上記チューブに入れて37°Cで加分反応さ
せる。後記参考例1記載の方製 法で調デされ126エで標識された適当なC[A標品(
1,5nS’)の酢酸緩衝液溶液(50pL )をチュ
ーブニ加え37°Cで1時間反応させる。次いで正常マ
ウス血清(X50i50#L)中の免疫グロブリンを充
分に沈降させうる量の抗マウス免疫グロブリン抗体を含
むウサギまたはヤギ抗マウス免疫グロブリン血清lOO
μtfC反応混合液に加え4°Cで一夜反応させる。生
じた沈降物を遠心操作(3000r、 I)、 m、/
30分)で落し、0.9%食塩溶液で沈降物を洗浄し
たのち、沈降物の放射性をガンマ−計測機で測定する。
CEAを1 nf / tttlから5011り/dま
での各濃度で含有する0、1 M酢酸塩緩衝液(子牛ガ
ンマグロブリン1.2fyおよびERA 0.5 %と
を含み、pH6,0)を検体血清と同様に処理し、標準
検量線を作製する。検体血清中のCEAの測定値よシ血
中Cl1iA濃度を算出する。
での各濃度で含有する0、1 M酢酸塩緩衝液(子牛ガ
ンマグロブリン1.2fyおよびERA 0.5 %と
を含み、pH6,0)を検体血清と同様に処理し、標準
検量線を作製する。検体血清中のCEAの測定値よシ血
中Cl1iA濃度を算出する。
正常人血清の測定値(正常値)は用いる単力 m *ノ
j斗+# l’Tli!^ tか ノJ−1h 4&
K−5ly ) b 6n−1/ +nなるので、簡単
には特定できないが、平均正常値に標準偏差(8,D、
)の2倍の値を加えた値以上の値を病的高値として悪性
腫瘍検出の判断に用いることが実用的である。
j斗+# l’Tli!^ tか ノJ−1h 4&
K−5ly ) b 6n−1/ +nなるので、簡単
には特定できないが、平均正常値に標準偏差(8,D、
)の2倍の値を加えた値以上の値を病的高値として悪性
腫瘍検出の判断に用いることが実用的である。
(2)同相抗体サンドインチ法の例。
この方法は最も高感度である。原理は、プラスチック製
ビーズまfcはチューブに本発明で得られた単りローン
性抗IA抗体の中の一種の抗体を同相−次抗体として吸
着結合させる。この同相−次抗体と検体中のCIAとを
反応させたのち、−次抗体とは対応する抗原決定基の異
なった別の単りローン性抗(JA抗体を1261でヨー
ド化した標識二次抗体として反応させると、検体−ψの
CBA iに応じて標識二次抗体が結合する。既知量の
CJliAを同じ揄作で測定して得た検ttXよシ検体
中のCJlijA量を算出する。
ビーズまfcはチューブに本発明で得られた単りローン
性抗IA抗体の中の一種の抗体を同相−次抗体として吸
着結合させる。この同相−次抗体と検体中のCIAとを
反応させたのち、−次抗体とは対応する抗原決定基の異
なった別の単りローン性抗(JA抗体を1261でヨー
ド化した標識二次抗体として反応させると、検体−ψの
CBA iに応じて標識二次抗体が結合する。既知量の
CJliAを同じ揄作で測定して得た検ttXよシ検体
中のCJlijA量を算出する。
(al 固粕−次抗体の作製
一次抗体としてどのような特性をもった滋りローン性抗
CJIltA抗体を選ぶかは測定系の目的忙よシ変わシ
得るが、最も普遍的な目的には、C11iA分子上の最
も主な抗原部位と考えられるNFA −1共通部分に向
けられた抗体3を選ぶとよいので、抗体3の例について
次に説明する。抗体3として分類された単りローン性抗
CBA抗体の中からCEAとの反応親和性(Ka )が
強いもの(少なくともKa≧1 x 10’ f” )
を選ぶ。Kaの測定は次の如く行なう。抗体BIiii
品の一定う(たとえば10μ?)に最高200μ2まで
のいろいろな量の zTtllttたcBA(0,01
M1酸緩衝食塩水(J3.B、S、)pHs、o i正
常ウサヤ血清(1チ)および””s (0,05%)を
含む〕を加える。各混合液を37°C118時間保温し
た後、それぞれ75 %飽和硫安液(400μt)を加
え、4°Cに1時間保ち、次に遠心処理(1800X、
?/31J分間)により上滑を除去する。
CJIltA抗体を選ぶかは測定系の目的忙よシ変わシ
得るが、最も普遍的な目的には、C11iA分子上の最
も主な抗原部位と考えられるNFA −1共通部分に向
けられた抗体3を選ぶとよいので、抗体3の例について
次に説明する。抗体3として分類された単りローン性抗
CBA抗体の中からCEAとの反応親和性(Ka )が
強いもの(少なくともKa≧1 x 10’ f” )
を選ぶ。Kaの測定は次の如く行なう。抗体BIiii
品の一定う(たとえば10μ?)に最高200μ2まで
のいろいろな量の zTtllttたcBA(0,01
M1酸緩衝食塩水(J3.B、S、)pHs、o i正
常ウサヤ血清(1チ)および””s (0,05%)を
含む〕を加える。各混合液を37°C118時間保温し
た後、それぞれ75 %飽和硫安液(400μt)を加
え、4°Cに1時間保ち、次に遠心処理(1800X、
?/31J分間)により上滑を除去する。
沈降物を50%飽和硫安溶液で洗浄する。上滑(200
μt)および沈降物の放射活性をガンマカウンターを用
いて測定する。同様の方法をくり返し、結合されたCE
Aと遊離CEAとの比をめ、これから常法[Stewa
ra M。
μt)および沈降物の放射活性をガンマカウンターを用
いて測定する。同様の方法をくり返し、結合されたCE
Aと遊離CEAとの比をめ、これから常法[Stewa
ra M。
W、 & Petty R,K、、工mmuno1..
22.747 (1972))により反応親和性(K&
)を算出する。こうして得られた高親和性の抗体3標品
をラウリル硫酸ナトリウム(0,01%) 、 EDT
A (0,05チ)を含む0.001 Mリン酸紗衝液
(pH6,0)でたとえは500倍に希釈しく抗体濃度
として5〜10μS’/1ILt程度)、これをプラス
チックビーズまたはチューブのコーチングに用いる。
22.747 (1972))により反応親和性(K&
)を算出する。こうして得られた高親和性の抗体3標品
をラウリル硫酸ナトリウム(0,01%) 、 EDT
A (0,05チ)を含む0.001 Mリン酸紗衝液
(pH6,0)でたとえは500倍に希釈しく抗体濃度
として5〜10μS’/1ILt程度)、これをプラス
チックビーズまたはチューブのコーチングに用いる。
固相マトリックスとしては各種のプラスグーツク製チュ
ーブやビーズを用いうるが、たとえば直径約6flのポ
リスチレンビーズ(たとえば米国、Precision
Plastio Ba11社m)を十分洗浄したのち
、上記単りローン性抗CFiA抗体(抗体3)溶液に浸
し、室温に一夜静置する。ビーズを2回蒸貿水で洗浄し
たのち、0.001 Mグリシ/塩酸緩衝液])H2,
3で処理し、さらに蒸留水で2回洗浄したのち、0.5
Mの食塩と0.5 %ウシ血清アルブミン(BAA )
とを含む0.1 Mリン酸緩衝液中に3時間浸し、最後
は真空乾録して冷所に保存する。
ーブやビーズを用いうるが、たとえば直径約6flのポ
リスチレンビーズ(たとえば米国、Precision
Plastio Ba11社m)を十分洗浄したのち
、上記単りローン性抗CFiA抗体(抗体3)溶液に浸
し、室温に一夜静置する。ビーズを2回蒸貿水で洗浄し
たのち、0.001 Mグリシ/塩酸緩衝液])H2,
3で処理し、さらに蒸留水で2回洗浄したのち、0.5
Mの食塩と0.5 %ウシ血清アルブミン(BAA )
とを含む0.1 Mリン酸緩衝液中に3時間浸し、最後
は真空乾録して冷所に保存する。
(1)l 標識二次抗体の作製
標識二次抗体として例を用いるかにより、得られる結果
は著しく異なる。後記第2表かられかるように、たとえ
ば抗体2を二次抗体として用いることによって得られる
CIA測定系は、癌組織中のCBAとのみ反応するが、
NFAやNCAとは反応しない、最高の癌特異性をもつ
系であるが、抗体5を二次抗体として用いることによっ
て得られる測定系は、C1と共にNFA −1以外のす
べての関連抗原をも測定し得る系である。また抗体3と
して同定される各種抗体のなかでもその抗体と反応する
抗原決定基が一次抗体の抗原決定基と同一のものは二次
抗体に用い得ないが、抗体34CMする抗体のなかでも
、−次抗体の対応する抗原決定基以外の抗原決定基と反
応するものであれは、二次抗体として用いることができ
る。次の例は、抗体2を用いた最高の癌特異性を有する
測定系である。
は著しく異なる。後記第2表かられかるように、たとえ
ば抗体2を二次抗体として用いることによって得られる
CIA測定系は、癌組織中のCBAとのみ反応するが、
NFAやNCAとは反応しない、最高の癌特異性をもつ
系であるが、抗体5を二次抗体として用いることによっ
て得られる測定系は、C1と共にNFA −1以外のす
べての関連抗原をも測定し得る系である。また抗体3と
して同定される各種抗体のなかでもその抗体と反応する
抗原決定基が一次抗体の抗原決定基と同一のものは二次
抗体に用い得ないが、抗体34CMする抗体のなかでも
、−次抗体の対応する抗原決定基以外の抗原決定基と反
応するものであれは、二次抗体として用いることができ
る。次の例は、抗体2を用いた最高の癌特異性を有する
測定系である。
抗体2として同定された各樺抗体のなかから、CKAと
の反応親和恒数の最も高い(少なくともKa≧1x10
9M−” )ものを選ぶ。C1l!Aとセファロース4
Bを結合(10■/1.Ofドライゲル)させた(JA
吸着剤を用いて、上記単りローン性抗CBム抗体をIF
j!4的に精製しく参考例2参照)、得られた抗体標品
を公知のクロラミンT法(: Hunter & Gr
een−WOO(1,1962,Nature (Lo
nclon ) 194.495 )により12′51
で標識し、放射活性の強さ約5nC1/np抗体の標識
抗体を得る。
の反応親和恒数の最も高い(少なくともKa≧1x10
9M−” )ものを選ぶ。C1l!Aとセファロース4
Bを結合(10■/1.Ofドライゲル)させた(JA
吸着剤を用いて、上記単りローン性抗CBム抗体をIF
j!4的に精製しく参考例2参照)、得られた抗体標品
を公知のクロラミンT法(: Hunter & Gr
een−WOO(1,1962,Nature (Lo
nclon ) 194.495 )により12′51
で標識し、放射活性の強さ約5nC1/np抗体の標識
抗体を得る。
ta) ラジオイムノアッセイ
検体として得たヒト血清(または血漿)(資)μLをプ
ラスチック製試験管(たとえは栄研チューブ9.8 x
8omr ) Kとシ、BAA (0、,5qb)を
含む0.1 M酢酸緩衝液pH5,Qを200μL加え
、これに上記の抗CFliA抗体を結合したビーズ1個
を入れ、室温で試験管を回転させながら4時間反応させ
る。反応抜反応液を吸引除去し、0.9チ食塩水1 m
lで1回洗浄し、抗体2をヨード化して得た標識二次抗
体液(1% B8Aを含む0.05M ) !J ス塩
酸緩衝液で約600 nC1/ gdjに希釈した標識
塩水で2回洗浄したのち、ビーズの放射活性をガンマー
カクンクーで測定する。
ラスチック製試験管(たとえは栄研チューブ9.8 x
8omr ) Kとシ、BAA (0、,5qb)を
含む0.1 M酢酸緩衝液pH5,Qを200μL加え
、これに上記の抗CFliA抗体を結合したビーズ1個
を入れ、室温で試験管を回転させながら4時間反応させ
る。反応抜反応液を吸引除去し、0.9チ食塩水1 m
lで1回洗浄し、抗体2をヨード化して得た標識二次抗
体液(1% B8Aを含む0.05M ) !J ス塩
酸緩衝液で約600 nC1/ gdjに希釈した標識
塩水で2回洗浄したのち、ビーズの放射活性をガンマー
カクンクーで測定する。
検量線作製用として、yM製cEAを1171.3M’
/TRI!、10 nf / mli 、 30 nf
/wit オjび100 nf / we (D 濃
g VCll、2 % fy シカンマrロブリンおよ
び0.5 % B8Aを含む0.IM酢酸緩衝液’PH
6,0で調製した各標準溶液を用いる。各標準液刃μt
をとシ、上記検体の処置と同様の操作によって、抗体で
コーチングされたビーズおよび放射性ヨードで標識され
た二次抗体とそれぞれ反応させる。このようにして、各
標準溶液の放射活性(Bcpm)得る。BcpmからC
IAを含まないコントロールの値B′を差し引いたE
−B’を算出し、対応するCBA 9度をプロットして
検量線を描き、これを用いて検体中のCl濃度を算出す
る。
/TRI!、10 nf / mli 、 30 nf
/wit オjび100 nf / we (D 濃
g VCll、2 % fy シカンマrロブリンおよ
び0.5 % B8Aを含む0.IM酢酸緩衝液’PH
6,0で調製した各標準溶液を用いる。各標準液刃μt
をとシ、上記検体の処置と同様の操作によって、抗体で
コーチングされたビーズおよび放射性ヨードで標識され
た二次抗体とそれぞれ反応させる。このようにして、各
標準溶液の放射活性(Bcpm)得る。BcpmからC
IAを含まないコントロールの値B′を差し引いたE
−B’を算出し、対応するCBA 9度をプロットして
検量線を描き、これを用いて検体中のCl濃度を算出す
る。
抗体2を標識二次抗体と用いた本例では、正常人血清ま
たは血漿との反応は弱い。さらに正常人のCKA濃度の
平均値は用いる抗IA抗体標品の特性たとえばその親和
恒数Kaによって著しく異なυ、具体的数値を容易に特
定できない。しかし実用的には正常人の平均値に標準偏
差(S、D、)の2倍の値を加えた値以上の値を病的高
値として悪性腫瘍検出の判断に用いることができる。
たは血漿との反応は弱い。さらに正常人のCKA濃度の
平均値は用いる抗IA抗体標品の特性たとえばその親和
恒数Kaによって著しく異なυ、具体的数値を容易に特
定できない。しかし実用的には正常人の平均値に標準偏
差(S、D、)の2倍の値を加えた値以上の値を病的高
値として悪性腫瘍検出の判断に用いることができる。
(3)以上に述べたように本発明は、CBAおよびIA
関連抗原の濃度測定法を提供する。この方法は、本発明
による単りローン性抗CBム抗体を放射性物質で標識し
てマーカーとすることを%徴としている。この方法によ
って、従来の多クローン性および単りローン性抗CKA
抗体を同じ目的に用いる場合に比較して、所望の抗原の
濃度を−そう正確に測定することができる。
関連抗原の濃度測定法を提供する。この方法は、本発明
による単りローン性抗CBム抗体を放射性物質で標識し
てマーカーとすることを%徴としている。この方法によ
って、従来の多クローン性および単りローン性抗CKA
抗体を同じ目的に用いる場合に比較して、所望の抗原の
濃度を−そう正確に測定することができる。
癌の診断治療のほかに、本発明による単クローン性抗C
EA抗体を、たとえば、細胞の悪性変化に伴ガう遺伝子
発現のm1児期への先祖帰り現象としてのCHA産生や
C11iAの生物活性および分子構造の解明に用いるこ
とができる。
EA抗体を、たとえば、細胞の悪性変化に伴ガう遺伝子
発現のm1児期への先祖帰り現象としてのCHA産生や
C11iAの生物活性および分子構造の解明に用いるこ
とができる。
下記の本発明の実施例において、Parrのラジオイム
ノアッセイ法は次の通り行なわれた。
ノアッセイ法は次の通り行なわれた。
”””lj龍サすタCIA標品(5−10nf + 5
) itL )および単クローンの培養上清(50μt
)を96ウエルのマイクロタイタープレートの各ウェル
に入れ、よく混合した。37゛Cで1時間静置した後、
飽和硫安溶液(100μt)を各ウェルに加え、さらに
37°Cで1時間静置した。次に反応混合物を遠心処理
(2000r、 p、 m、/ 30分間)シテ上清を
分離し、ソノ100μtの放射活性をガンマカウンター
で測定した。
) itL )および単クローンの培養上清(50μt
)を96ウエルのマイクロタイタープレートの各ウェル
に入れ、よく混合した。37゛Cで1時間静置した後、
飽和硫安溶液(100μt)を各ウェルに加え、さらに
37°Cで1時間静置した。次に反応混合物を遠心処理
(2000r、 p、 m、/ 30分間)シテ上清を
分離し、ソノ100μtの放射活性をガンマカウンター
で測定した。
−ン性抗CEA抗体産生能をもつ融合細胞が同定された
。
。
実施例1
約5週令のBALB / cマウス(8PFマウス:靜
岡県実験動物農業協同組合より入手)2匹をCEiA
(参考例1の方法で[1lifi)で免疫した。すなわ
ち各動物按ついて、初回□□□μ2のCBAを70イン
ドの完全アジュバン)(Dlyco社[)を用いた乳化
液0.2rueと共に腹腔内投与し、5週間後に同量の
C11A(食塩水0.24中CE12Dμt)を各マウ
スの静脈内に投与した。その3日後に動物を殺し、牌お
よびリンパ節より抗体産生細胞C類リンパ球)を採取し
た。約1xlO’個の類リンパ球とlXl0’個のアゾ
グアニン制性マウス骨髄腫由来株化細胞P 3− X6
B−A(gB−u l [!alton、 D、 1.
at al、、 Curr、 Top。
岡県実験動物農業協同組合より入手)2匹をCEiA
(参考例1の方法で[1lifi)で免疫した。すなわ
ち各動物按ついて、初回□□□μ2のCBAを70イン
ドの完全アジュバン)(Dlyco社[)を用いた乳化
液0.2rueと共に腹腔内投与し、5週間後に同量の
C11A(食塩水0.24中CE12Dμt)を各マウ
スの静脈内に投与した。その3日後に動物を殺し、牌お
よびリンパ節より抗体産生細胞C類リンパ球)を採取し
た。約1xlO’個の類リンパ球とlXl0’個のアゾ
グアニン制性マウス骨髄腫由来株化細胞P 3− X6
B−A(gB−u l [!alton、 D、 1.
at al、、 Curr、 Top。
Microbiol、 Immunol、、 81.1
(1978) )と混合した。45 %(v/v)ポ
リエチレングリコール4000 (米国シグマ社# )
1 mlを混合物に滴下し、37°CVC7分間保ち
、その後D−MBM (日永製薬製)151を混合ルを
希釈した。融合細胞をD−MEM (30dl )で洗
い、10チウシ胎児血清(Fe2 ) (米国Gibc
o製)、ペニシリン+’lOo 単位/m ) 、!:
piンタマイシン(50μt/ld )とを含むp
−MEM (100m# )中に浮遊させた。細胞浮遊
液(各11)を%のウェルに入れ(各かウェルのミクロ
タイター板使用)、炭酸ガス存在下で37°CtIC−
夜放置した後、HAT培地(4X 10−7Mのアミノ
プテリン、1.6X10=Mのチミジンおよび1xlO
−’Mのヒボキサンチンを含む培地、pH7)各11を
各ウェルに分注し、次に培地の半分を2日おきに新しい
HAT培地と取りかえた。11日目に培地の半分をHT
培地(上記HAT培地からアミノプテリンを除いたもの
)と取りかえ、次に2日おきに培地の半分を10%FC
Bを含むD −M]liMと取りかえた。
(1978) )と混合した。45 %(v/v)ポ
リエチレングリコール4000 (米国シグマ社# )
1 mlを混合物に滴下し、37°CVC7分間保ち
、その後D−MBM (日永製薬製)151を混合ルを
希釈した。融合細胞をD−MEM (30dl )で洗
い、10チウシ胎児血清(Fe2 ) (米国Gibc
o製)、ペニシリン+’lOo 単位/m ) 、!:
piンタマイシン(50μt/ld )とを含むp
−MEM (100m# )中に浮遊させた。細胞浮遊
液(各11)を%のウェルに入れ(各かウェルのミクロ
タイター板使用)、炭酸ガス存在下で37°CtIC−
夜放置した後、HAT培地(4X 10−7Mのアミノ
プテリン、1.6X10=Mのチミジンおよび1xlO
−’Mのヒボキサンチンを含む培地、pH7)各11を
各ウェルに分注し、次に培地の半分を2日おきに新しい
HAT培地と取りかえた。11日目に培地の半分をHT
培地(上記HAT培地からアミノプテリンを除いたもの
)と取りかえ、次に2日おきに培地の半分を10%FC
Bを含むD −M]liMと取りかえた。
はとんど全部(98%以上)の培地で融合細胞の発育が
認められた。培地の上清を各ウェルから採取し、前記の
第1 CICAを用いるFarrの硫安沈殿法によって
抗CEA抗体を産生する融合細胞(ハイブリッドーマ)
を選別した。次に抗CFliA抗体産生能を有すると認
められた融合細胞を次のように限界希釈法によって単ク
ローン化した。
認められた。培地の上清を各ウェルから採取し、前記の
第1 CICAを用いるFarrの硫安沈殿法によって
抗CEA抗体を産生する融合細胞(ハイブリッドーマ)
を選別した。次に抗CFliA抗体産生能を有すると認
められた融合細胞を次のように限界希釈法によって単ク
ローン化した。
10チのFe2 (ウシ胎児血清)を含むD−MBMで
融合細胞を3細胞/1になるように希釈し、各0.2d
をミクロタイタープレートの各ウェルに入れた。
融合細胞を3細胞/1になるように希釈し、各0.2d
をミクロタイタープレートの各ウェルに入れた。
4凝
xwM照射された若いBALIB10マウスの胸V細胞
く約5xlO’細胞/IItl)を含むD−MljMを
用いて37°Cで2週間培養後、ウェル中で増殖する細
胞を単クローン融合細胞として同定し、さらに限界希釈
法を〈シ返し行なうことによシ、単クローン性を確実に
した。
く約5xlO’細胞/IItl)を含むD−MljMを
用いて37°Cで2週間培養後、ウェル中で増殖する細
胞を単クローン融合細胞として同定し、さらに限界希釈
法を〈シ返し行なうことによシ、単クローン性を確実に
した。
こうして培養上清中に約10nf/d以上の抗Cl1i
A抗体産生能をもつ単クローン性融合細胞が得られた。
A抗体産生能をもつ単クローン性融合細胞が得られた。
実施例1で用いられた第1 CF!Aは稜記参考例1記
載の方法で得られたものであるが、所望によりその他の
適当なCIA標品を同じ目的に用いることもできる。2
匹のマウスより通常加−加個の単りローン性抗CRiA
抗体産生融合細胞が得られる。
載の方法で得られたものであるが、所望によりその他の
適当なCIA標品を同じ目的に用いることもできる。2
匹のマウスより通常加−加個の単りローン性抗CRiA
抗体産生融合細胞が得られる。
上記操作を士数回繰シ返して得られた約300株の抗C
IjA抗体産生融合細胞の培養上清と放射性式−ドで標
識したCll1A、IIIFム−2、NFA−1および
f −NCAとの反応性をFarrの硫安沈殿法による
ラジオイムノアッセイによって検索した。結果を前記の
第1表に示す。
IjA抗体産生融合細胞の培養上清と放射性式−ドで標
識したCll1A、IIIFム−2、NFA−1および
f −NCAとの反応性をFarrの硫安沈殿法による
ラジオイムノアッセイによって検索した。結果を前記の
第1表に示す。
実施例2
実施例1の方法で得られた抗体lから5まで(第1表参
照)を別々に第1cIA、第2 CEAおよび正常人糞
便由来のCIA関連抗原すなわちNFA −1、NFA
−2およびf−NCAを用いたFarrのラジオイム
ノアッセイ法によって調べ、全抗体1から5までと、上
記全抗原との反応性を解明した。その結果を示す第2表
において、r+J r−Jは反応性の有無を現わしてい
る。
照)を別々に第1cIA、第2 CEAおよび正常人糞
便由来のCIA関連抗原すなわちNFA −1、NFA
−2およびf−NCAを用いたFarrのラジオイム
ノアッセイ法によって調べ、全抗体1から5までと、上
記全抗原との反応性を解明した。その結果を示す第2表
において、r+J r−Jは反応性の有無を現わしてい
る。
第2表 単りローン性抗CIA抗体とC1!iAおよび
C11iム関連抗原との反応性 抗 原 抗体 12345 ヒトCBIA第1” + + + + +第z” −+
+ + + 正常関連抗原 NFA −1−−+ −− NFA−2−−+ + + f−1JCA −−−−+ (注) ネ動物免疫用C]iA 中中第1(JA以外のCBA 第2表から本@明の単りローン性抗CI[fA抗体が次
の反応特異性を有していることがわかる。
C11iム関連抗原との反応性 抗 原 抗体 12345 ヒトCBIA第1” + + + + +第z” −+
+ + + 正常関連抗原 NFA −1−−+ −− NFA−2−−+ + + f−1JCA −−−−+ (注) ネ動物免疫用C]iA 中中第1(JA以外のCBA 第2表から本@明の単りローン性抗CI[fA抗体が次
の反応特異性を有していることがわかる。
(1) 全部の抗体1−5は第1 CBAすなわち動物
の免役に用いられたCIICAと反応する。
の免役に用いられたCIICAと反応する。
(2)抗体1は第1 CIIIIAのみと反応する個体
特異的抗体である。本抗体は個体ごとの尚の診断治療に
有用であると考えられる。
特異的抗体である。本抗体は個体ごとの尚の診断治療に
有用であると考えられる。
(3)抗体2は第1 CBAおよび第2 CEAと反応
するが、すべてのCBA関連正常り便抗原すなわちNF
A−1、NFA −2およびf −NCAと反応しない
。なお実施例1では別々の患者から得られた4つのCF
iA標品を第2 CIAとして用いた。本抗体は抗CR
A特異抗体であって、最高の癌特異性゛を有するから、
各種の臨床用(たとえば癌の診断確定、放射性物質や抗
癌剤を癌組織に送るための担体など)や基礎医学研究用
等普遍的ガ用途に使用することができる。
するが、すべてのCBA関連正常り便抗原すなわちNF
A−1、NFA −2およびf −NCAと反応しない
。なお実施例1では別々の患者から得られた4つのCF
iA標品を第2 CIAとして用いた。本抗体は抗CR
A特異抗体であって、最高の癌特異性゛を有するから、
各種の臨床用(たとえば癌の診断確定、放射性物質や抗
癌剤を癌組織に送るための担体など)や基礎医学研究用
等普遍的ガ用途に使用することができる。
(4)抗体3は第1cII!iAオjび第2 (JAと
反応するほか、NFA −1およびNFA−2とも反応
するので、実用的価値のある抗体である。また抗体3産
生能をもつ単クローンを他の抗体産生能をもつ単クロー
ンよりも簡単な方法で選別することができる。
反応するほか、NFA −1およびNFA−2とも反応
するので、実用的価値のある抗体である。また抗体3産
生能をもつ単クローンを他の抗体産生能をもつ単クロー
ンよりも簡単な方法で選別することができる。
(5)他の抗体すなわち抗体4.5も、従来の多クロー
ン性および単りローン性抗CKA抗体とくらべて、より
明確な反応特異性と均一性とを有している。
ン性および単りローン性抗CKA抗体とくらべて、より
明確な反応特異性と均一性とを有している。
実施例3
抗CIA抗体産生融合細胞なりALB / cマウスの
腹腔内に移植して単りローン性抗CBA抗体を生産した
例。
腹腔内に移植して単りローン性抗CBA抗体を生産した
例。
市販(静岡系実験動物農業協同組合より入手)BALB
/cマウス(5〜6週令、雌または雄)を試験動物とし
て用いた。各マウスの腹腔K O,5mのプリスタンを
投与し、7−10日後に5X10’〜10′y個/dの
単クローン性融合細胞(実施例1の方法で得たもの)を
含むD−MIlfM O,5dを同じく腹腔内に注射し
た。7〜10日のち十分に腹水が貯留したマウスから腹
腔穿刺にて腹水を採取し、以後2日おきに5回腹水を採
取したのち、マウスを殺して全採血した。得られる腹水
量は融合細胞の性状により異なシ、約2 mlから20
−であったが、平均約10mが得られた。各動物の腹水
および血清中に含まれる単りローン性抗CIA抗体の濃
度も融合細胞の性状により異なり約1■/1から約10
■/dであり、得られる抗体の量も2〜3′#vから1
100WI以上とかなシの差が認められた。
/cマウス(5〜6週令、雌または雄)を試験動物とし
て用いた。各マウスの腹腔K O,5mのプリスタンを
投与し、7−10日後に5X10’〜10′y個/dの
単クローン性融合細胞(実施例1の方法で得たもの)を
含むD−MIlfM O,5dを同じく腹腔内に注射し
た。7〜10日のち十分に腹水が貯留したマウスから腹
腔穿刺にて腹水を採取し、以後2日おきに5回腹水を採
取したのち、マウスを殺して全採血した。得られる腹水
量は融合細胞の性状により異なシ、約2 mlから20
−であったが、平均約10mが得られた。各動物の腹水
および血清中に含まれる単りローン性抗CIA抗体の濃
度も融合細胞の性状により異なり約1■/1から約10
■/dであり、得られる抗体の量も2〜3′#vから1
100WI以上とかなシの差が認められた。
参考例
下記の参考例において、加圧風乾法による溶液の濃縮は
次の方法によって行なわれた(以下風乾法という)。風
乾されるべき浴液を数本のセロファンチューブに入れた
。たとえば溶液(3L)を8−9本のチューブ(米国ビ
スキング社製、18/32、長さ150crn)に分注
し、チューブの上部を適当な導管を介して、たとえば送
風機に連結した。チューブを垂直に支え、下方約%を脱
塩水または適当な緩衝液を満たした容器に浸漬し、残り
の部分に扇風機からの風を尚てた。
次の方法によって行なわれた(以下風乾法という)。風
乾されるべき浴液を数本のセロファンチューブに入れた
。たとえば溶液(3L)を8−9本のチューブ(米国ビ
スキング社製、18/32、長さ150crn)に分注
し、チューブの上部を適当な導管を介して、たとえば送
風機に連結した。チューブを垂直に支え、下方約%を脱
塩水または適当な緩衝液を満たした容器に浸漬し、残り
の部分に扇風機からの風を尚てた。
参考例1
本明細病記載のC]IiA標品は、特記しない限シ、次
の方法によって作成された〔資料。特開昭56−477
62号公報〕。
の方法によって作成された〔資料。特開昭56−477
62号公報〕。
ヒトの大腸幅計転移巣120fに生理食塩水7001を
加えてすりつぶし、遠心処理(9000r、 p、 m
、740分間)により上清を得た。上清710m1m6
0%過塩素酸溶液80−(過塩素酸濃度0.6 M )
を加え、生じた沈殿を遠心処理(9000r、 I)、
m、/ 40分間)により除去し、得られた上清を一
夜流水で透析し、過塩素酸および透析性不純物を除去し
た。透析内液をセロファンチューブ(ビスキングfi、
18/32、長さ150crn)3本に分注し、前記の
風乾法により合It 8−に濃縮した。濃縮液を遠心処
理(15000r、 I)、 m、730分間)するこ
とにより、CFiA粗抽出液を得だ。
加えてすりつぶし、遠心処理(9000r、 p、 m
、740分間)により上清を得た。上清710m1m6
0%過塩素酸溶液80−(過塩素酸濃度0.6 M )
を加え、生じた沈殿を遠心処理(9000r、 I)、
m、/ 40分間)により除去し、得られた上清を一
夜流水で透析し、過塩素酸および透析性不純物を除去し
た。透析内液をセロファンチューブ(ビスキングfi、
18/32、長さ150crn)3本に分注し、前記の
風乾法により合It 8−に濃縮した。濃縮液を遠心処
理(15000r、 I)、 m、730分間)するこ
とにより、CFiA粗抽出液を得だ。
セファロース4B(スエーデン国、ファルマシア・ファ
イン・ケミカルズAB製)のカラム(2,6×171c
rn)を0.05 Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH5
,2)で洗浄し、上記のC凡A粗抽出液7.5−を負荷
し、上記と同様の緩衝液で溶出した。カラムの溶媒容量
と同じ位置に溶出する分画4B−1のほか、それぞれ2
.1.2.5および2.7倍の位置に溶出する分画4B
−2ないし4B−4が得られた。(JAの大部分を含む
分画4B−2を回収し、前記の風乾法により濃縮液(a
、5IILl)を得た。セファロース6B(スエーデン
国、ファルマシア・ファイン・ケミカルズ製)のカラム
(1,9x 145 cm )を上記と同様の緩衝液で
洗浄し、上記の濃縮液3,51を負荷し、同様の緩衝液
で溶出し、カラムの溶媒容量の1.6倍の位置に非対称
形のピークが出現した。溶出の初期に得られる分画6B
−1(約20mA)は高分子量の不純物を含み、終りに
得られる分画6B−3(約%)はNCA (非特異的交
叉反応抗原)を含んでいた。全体の約%に相当する中間
部(約60mg)を回収して集め、風乾法によって分画
6B−2(3ml ) ヲ得た。セファデックスa −
200(スエーデン国、ファルマシア・ファイン・ケミ
カルズ製)のカラム(1,9x 145 cm )を上
記と同様のリン酸ナトリウム緩衝液で洗浄した後、分画
6B−2(3d)を負荷して、同様の緩衝液で溶出した
ところ、カラムの溶媒各賞の約1.2倍の位置に対称形
のピークが出現した。このピークの中間%に位置する分
画(約45d)を回収して集め、風乾法によシ濃縮した
。このmIII液から精製されたCBA (50■)が
回収された。その高純度であることが、たとえば免疫電
気泳動法(ウサギ抗体使用)によって確認された。精製
されたcBh Id−8の糖蛋白質であって、分子蒼:
は約肋万±8万、糖と蛋白質との比は約1:1、紫外線
吸収ス械りトルにおける極大吸収は277nm、小さな
肩部が283nmK見られた。
イン・ケミカルズAB製)のカラム(2,6×171c
rn)を0.05 Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH5
,2)で洗浄し、上記のC凡A粗抽出液7.5−を負荷
し、上記と同様の緩衝液で溶出した。カラムの溶媒容量
と同じ位置に溶出する分画4B−1のほか、それぞれ2
.1.2.5および2.7倍の位置に溶出する分画4B
−2ないし4B−4が得られた。(JAの大部分を含む
分画4B−2を回収し、前記の風乾法により濃縮液(a
、5IILl)を得た。セファロース6B(スエーデン
国、ファルマシア・ファイン・ケミカルズ製)のカラム
(1,9x 145 cm )を上記と同様の緩衝液で
洗浄し、上記の濃縮液3,51を負荷し、同様の緩衝液
で溶出し、カラムの溶媒容量の1.6倍の位置に非対称
形のピークが出現した。溶出の初期に得られる分画6B
−1(約20mA)は高分子量の不純物を含み、終りに
得られる分画6B−3(約%)はNCA (非特異的交
叉反応抗原)を含んでいた。全体の約%に相当する中間
部(約60mg)を回収して集め、風乾法によって分画
6B−2(3ml ) ヲ得た。セファデックスa −
200(スエーデン国、ファルマシア・ファイン・ケミ
カルズ製)のカラム(1,9x 145 cm )を上
記と同様のリン酸ナトリウム緩衝液で洗浄した後、分画
6B−2(3d)を負荷して、同様の緩衝液で溶出した
ところ、カラムの溶媒各賞の約1.2倍の位置に対称形
のピークが出現した。このピークの中間%に位置する分
画(約45d)を回収して集め、風乾法によシ濃縮した
。このmIII液から精製されたCBA (50■)が
回収された。その高純度であることが、たとえば免疫電
気泳動法(ウサギ抗体使用)によって確認された。精製
されたcBh Id−8の糖蛋白質であって、分子蒼:
は約肋万±8万、糖と蛋白質との比は約1:1、紫外線
吸収ス械りトルにおける極大吸収は277nm、小さな
肩部が283nmK見られた。
参考例2
本明細書記載のIA関連正常抗原すなわちNFA−1、
NFA −2およびf−NCAは次の方法によって得ら
れた(資料。特開昭56−46819号公報)。
NFA −2およびf−NCAは次の方法によって得ら
れた(資料。特開昭56−46819号公報)。
成人の正常轟便2501を0.6M過過塩素浴溶液25
00−加え、よくかくけんし、ガーゼで濾過し、食物残
渣などの不溶解物を除いた。これを遠心処理(7000
r、 p、 m、/ 30分間)して得た上清を流水で
一夜透析して、過塩素酸および透析性不純物を除いた。
00−加え、よくかくけんし、ガーゼで濾過し、食物残
渣などの不溶解物を除いた。これを遠心処理(7000
r、 p、 m、/ 30分間)して得た上清を流水で
一夜透析して、過塩素酸および透析性不純物を除いた。
透析内液を9本のセロファンチューブ(/ビ
メスキング製、18/32、長さ150 crn)に分
注し、前記の風乾法で合計30dまで濃縮した。同様の
操作を4回くり返すことにより、合計120dの粗抽出
液を得た。このものは合計的10■の所望のCEA関連
正常抗原を含有していた。
注し、前記の風乾法で合計30dまで濃縮した。同様の
操作を4回くり返すことにより、合計120dの粗抽出
液を得た。このものは合計的10■の所望のCEA関連
正常抗原を含有していた。
特異抗CEA抗体と結合された抗CIDA抗体吸着剤(
1(19,後記の方法で製造された)を上記の粗抽出液
に加え、4°Cで冴時間反応させた。反応液を除去した
後、冷硼酸緩衝液(PH= 8.Of 0.01 M硼
酸緩衝液1.15MのNaC2を含む)で洗浄し、グリ
シン塩酸緩衝液(0,175M + pH= 2.3
; 200 d ”)で溶出した後、グリシンNaOH
緩衝液(1,Q M ;pH=9)で中和すること拠よ
シ、粗CBA関連抗原(乾燥N、量9W)を含む溶液を
得たこの溶液を上記の風乾法で1.2−まで濃縮し、セ
ファロース6B(スエーデン国、ファルマシア・ファイ
ン・ケミカルズ製)のカラム(1,3x 8ocm )
IC負荷した。リン酸塩緩衝液(0−01M ; p
H5,O: 0.15 M NaCtヲ含b )で溶出
し、各1dの分画を試験管に分取した。試験管番号60
−75および81−95をそれぞれ集め分画1と分画2
とした。
1(19,後記の方法で製造された)を上記の粗抽出液
に加え、4°Cで冴時間反応させた。反応液を除去した
後、冷硼酸緩衝液(PH= 8.Of 0.01 M硼
酸緩衝液1.15MのNaC2を含む)で洗浄し、グリ
シン塩酸緩衝液(0,175M + pH= 2.3
; 200 d ”)で溶出した後、グリシンNaOH
緩衝液(1,Q M ;pH=9)で中和すること拠よ
シ、粗CBA関連抗原(乾燥N、量9W)を含む溶液を
得たこの溶液を上記の風乾法で1.2−まで濃縮し、セ
ファロース6B(スエーデン国、ファルマシア・ファイ
ン・ケミカルズ製)のカラム(1,3x 8ocm )
IC負荷した。リン酸塩緩衝液(0−01M ; p
H5,O: 0.15 M NaCtヲ含b )で溶出
し、各1dの分画を試験管に分取した。試験管番号60
−75および81−95をそれぞれ集め分画1と分画2
とした。
分画1を約1ゴに濃縮し、セファデックスG−200(
100d)のカラムに負荷し、前記と同様のリン酸塩緩
衝液で溶出し、各1−の分画を試験管に分取した。′!
′I4製NF’A−2を含む試験管番号30−40を集
め濃縮した。この濃縮液自体を精製NPA−2の標品と
してそのまま用いることができる。こうして得られ九N
FA−2は一槙の糖蛋白質であって、分子蓋約加万±3
万、糖と蛋白質との比的1=1、紫外線吸収スペクトル
において極大吸収は277 nmにある。本品のアミノ
酸組成はCEAのものと極めて類似し、NFA−2のN
H,末端アミノ酸配列は少なくとも11位までは(JA
Oものと同一である。
100d)のカラムに負荷し、前記と同様のリン酸塩緩
衝液で溶出し、各1−の分画を試験管に分取した。′!
′I4製NF’A−2を含む試験管番号30−40を集
め濃縮した。この濃縮液自体を精製NPA−2の標品と
してそのまま用いることができる。こうして得られ九N
FA−2は一槙の糖蛋白質であって、分子蓋約加万±3
万、糖と蛋白質との比的1=1、紫外線吸収スペクトル
において極大吸収は277 nmにある。本品のアミノ
酸組成はCEAのものと極めて類似し、NFA−2のN
H,末端アミノ酸配列は少なくとも11位までは(JA
Oものと同一である。
ジエチルアミノエチル・セルロース・クロマトグラフィ
ーによって、分画2から褐色色素を除き[Cancer
RθB、、 41.713. (1981)参照〕、
残りの溶液に、後記の抗CE抗体吸着剤3.5mJを加
えた。混合物を4°Cで2日間反応させた。吸着剤を回
収し、よく洗浄し、次にグリシン塩酸緩衝液(0,17
5M + pH= 2.3320d )で溶出し、次に
グリシンNaOH緩衝液(I M + pH= 9 )
で中和し、そのHn、B、s、に対して透析し、透析内
液を風乾法で濃縮した。この濃縮液は精#NCA(乾燥
室ill■)を含み、それ以上nm製しなくても、本発
明の目的に用いられる。こうして得られたf−NCAi
j−柚の糖蛋白質で、分子量約8刀±3万、糖含量約加
チである。本品のNHII末端ア電ノ酸配列のうち、少
なくとも及位まではCEAと同一である。f−NCAの
理化学的性状は、たとえば肺や牌に存在するNCAのも
のと実質的に同一である。
ーによって、分画2から褐色色素を除き[Cancer
RθB、、 41.713. (1981)参照〕、
残りの溶液に、後記の抗CE抗体吸着剤3.5mJを加
えた。混合物を4°Cで2日間反応させた。吸着剤を回
収し、よく洗浄し、次にグリシン塩酸緩衝液(0,17
5M + pH= 2.3320d )で溶出し、次に
グリシンNaOH緩衝液(I M + pH= 9 )
で中和し、そのHn、B、s、に対して透析し、透析内
液を風乾法で濃縮した。この濃縮液は精#NCA(乾燥
室ill■)を含み、それ以上nm製しなくても、本発
明の目的に用いられる。こうして得られたf−NCAi
j−柚の糖蛋白質で、分子量約8刀±3万、糖含量約加
チである。本品のNHII末端ア電ノ酸配列のうち、少
なくとも及位まではCEAと同一である。f−NCAの
理化学的性状は、たとえば肺や牌に存在するNCAのも
のと実質的に同一である。
上記の抗CE抗体吸着剤に吸着されなかった物質を含む
溶液を0.51に濃縮し、セファデックスG −100
スーパーファイン(スエーデン国、ファルマシア・ファ
イン・ケミカルズ#)のカラム(1,3x 43.4
crIT) K負荷し、前記と同様のリン酸塩緩衝液(
0,01M + pH5,Oj 0−15 M NaC
Lを含む)で溶出し、試験管に各1−ずつ分取した。試
験管5 番号45−55(分画a)および65−# (分画b)
をそれぞれ回収して集めた。セファデックスG−100
スーパーフアインの同じカラム(1,3x 43.4c
rn)を用いて、分画aおよびbをそれぞれ再度クロマ
トグラフ処理した。このようにして、分1i1ilaか
ら精製N11’CA、分画すから精1i1i1NF’A
−1(各乾燥重量o、smy)が得られた。これらはさ
らに精製することなく、本発明の目的に用いることがで
きた。こうして得られたIJFA −1は一種の糖蛋白
質で、分子黄約2万ないし3万、糖含量約13チである
。
溶液を0.51に濃縮し、セファデックスG −100
スーパーファイン(スエーデン国、ファルマシア・ファ
イン・ケミカルズ#)のカラム(1,3x 43.4
crIT) K負荷し、前記と同様のリン酸塩緩衝液(
0,01M + pH5,Oj 0−15 M NaC
Lを含む)で溶出し、試験管に各1−ずつ分取した。試
験管5 番号45−55(分画a)および65−# (分画b)
をそれぞれ回収して集めた。セファデックスG−100
スーパーフアインの同じカラム(1,3x 43.4c
rn)を用いて、分画aおよびbをそれぞれ再度クロマ
トグラフ処理した。このようにして、分1i1ilaか
ら精製N11’CA、分画すから精1i1i1NF’A
−1(各乾燥重量o、smy)が得られた。これらはさ
らに精製することなく、本発明の目的に用いることがで
きた。こうして得られたIJFA −1は一種の糖蛋白
質で、分子黄約2万ないし3万、糖含量約13チである
。
NJ″A−1のアミノ酸組成はCgAのものに類似であ
るが、しかしフェニルアラニン、リジンおよびプロリン
のようないくつかのアミノ酸ではわずかでtまあるが有
意な差違が見られた。しかし、NFA−1のNH2末端
アミノ酸配列はCI!iA、 NFA−2またはNCA
のものと全く異なっている。
るが、しかしフェニルアラニン、リジンおよびプロリン
のようないくつかのアミノ酸ではわずかでtまあるが有
意な差違が見られた。しかし、NFA−1のNH2末端
アミノ酸配列はCI!iA、 NFA−2またはNCA
のものと全く異なっている。
前述の抗CEA抗体吸着剤および抗NCA抗体吸着剤は
次の方法で得られたものである。
次の方法で得られたものである。
参考例1の方法で得られた(BA標品(乾燥重量lO■
)を常法によりCNBRセファロース4B(乾fflケ
k 19 iスエーデン国、ファルマシア・ファイン・
ケミカルズ!11!りと結合させてCIA吸着剤を得た
。これを抗CEA抗体(50d)と4°Cで3日間反応
させた。この抗血清をつくるために、任意のCMムを用
いることができる。抗CEA抗体を結合したCFIA吸
着剤を回収し、蛋白への出現を認めなくなるまで冷B、
B、S、で洗浄し、次にグリシン塩酸緩衝液(各10
m1; 0.175 M; pH=2−3 )で5回溶
出した。溶出されだ液を集めてグリシンNaOH緩衝液
(IM;pH=9)で中和し、次にB、 B、 8.に
対して4°Cで一夜透析した。透析内液を10dまで濃
縮した。この液は特異的多クローン性抗CIItA抗体
5011vを含んでいた。上記の方法を2回〈シ返すこ
とによって得られた濃縮液20dは、特異的に精製され
た多クローン性抗C11fA抗体loo■を含んでいた
。こうして得られた多クローン性抗CFfA抗体100
■をCNBRセファロース4B(1ot;スエー≠ン国
、ファルマシア・ファイン・ケミカルズ!Ifりと常法
によって結合した。これによって、特異的に精製された
抗C11tA抗体100〜と結合された所望の抗CEA
抗体吸着剤が得られた。
)を常法によりCNBRセファロース4B(乾fflケ
k 19 iスエーデン国、ファルマシア・ファイン・
ケミカルズ!11!りと結合させてCIA吸着剤を得た
。これを抗CEA抗体(50d)と4°Cで3日間反応
させた。この抗血清をつくるために、任意のCMムを用
いることができる。抗CEA抗体を結合したCFIA吸
着剤を回収し、蛋白への出現を認めなくなるまで冷B、
B、S、で洗浄し、次にグリシン塩酸緩衝液(各10
m1; 0.175 M; pH=2−3 )で5回溶
出した。溶出されだ液を集めてグリシンNaOH緩衝液
(IM;pH=9)で中和し、次にB、 B、 8.に
対して4°Cで一夜透析した。透析内液を10dまで濃
縮した。この液は特異的多クローン性抗CIItA抗体
5011vを含んでいた。上記の方法を2回〈シ返すこ
とによって得られた濃縮液20dは、特異的に精製され
た多クローン性抗C11fA抗体loo■を含んでいた
。こうして得られた多クローン性抗CFfA抗体100
■をCNBRセファロース4B(1ot;スエー≠ン国
、ファルマシア・ファイン・ケミカルズ!Ifりと常法
によって結合した。これによって、特異的に精製された
抗C11tA抗体100〜と結合された所望の抗CEA
抗体吸着剤が得られた。
抗CEA抗体の代わりに抗CE抗体を用いて、上記の方
法をくり返すことKよって、セファロース4Bと結合さ
れた抗NCA抗体吸着剤が得られる。
法をくり返すことKよって、セファロース4Bと結合さ
れた抗NCA抗体吸着剤が得られる。
特許出願人 松 岡 雄 治
Claims (10)
- (1) Ill乳動物を所与の尚胎児性抗原で免疫する
ことによシ、抗体産生能を有する細胞を産生じ、こうし
て産生された細胞を哺乳動物から採取し、採取された細
胞を他の哺乳動物由来の株化腫瘍細胞と融合させ、得ら
れた融合細胞をクローニングし、得られた単クローンを
培養し、培養物からF9r望の単り四−ン性抗体を回収
する工程からなる癌胎児性抗原に対して特異性を有する
単クローン性抗体の製造方法において、(イ)上記の所
与の癌胎児性抗原をマーカーとし2て用いることにより
、上記融合細胞を、マーカー抗原と反応する抗体産生能
の観点から選別すること、および(ロ)上記の所与の幅
胎児性抗原以外の第2の勲胎児性抗原と正常成人由来の
幅胎児性抗原関連抗原とから々る群から選ばれたIN1
以上の抗原をマーカーとして用いることにより、上場己
のクローニングによって得られた単クローンを、単クロ
ーンの産生ずる単クローン性抗体と上り己の1 fjM
以上のマーカー抗原との反応性に関して選別することを
特徴とする癌胎児性抗原に対して特異性を有する単クロ
ーン性抗体の1!場造方法。 - (2)哺乳動物が、マウス、ラット、モルモット、ウサ
ギ、ヤギ、馬または牛である特許請求の範囲第1項によ
る方法。 - (3)癌胎児性抗原関連抗原が、正常糞便抗原1、正常
糞便抗原2および正常成人由来の非特異的父叉反応抗原
の3者の中から選ばれた1種以上の抗原である特許請求
の範囲第1項による方法。 - (4)選別が放射性物質でS識されたi−カー抗原を用
いるラジオイムノアッセイによって行なわれる特許請求
の範囲第1項による方法。 - (5)抗体が抗血清の形である特許請求の範囲第1項に
よる方法。 - (6)特許請求の範囲第1項記載の方法で選別された単
クローン性抗体産生能をもつ単クローン。 - (7)抗体産生のために@乳動物の免疫に用いられた癌
胎児性抗原と反応性を有するが、上記の灼胎児性抗原以
外の癌胎児性抗原およびすべての癌胎児性抗原関連抗原
とは反応性を有しない単クローン性抗体。 - (8)すべての癌胎児性抗原と反応性を有するが、すべ
ての癌胎児性抗原関連抗原と反応性を有しない単クロー
ン性抗体。 - (9)すべての癌胎児性抗原、正常糞便抗yA1および
正常糞便抗原2と反応性を有するか、正常成人由来の非
特異性交叉反応抗原と反応性を有しない単クローン性抗
体。 - (10) すべての癌胎児性抗原および正常糞便抗原2
と反応性を有するが、正常糞便抗原1および正常成人由
来の非特異的交叉反応抗原と反応性を有しない単クロー
ン性抗体。 θ1)すべての癌胎児性抗原、正常糞便抗原2および正
常成人由来の非特異的交叉反応抗原と反応性を有するが
、正常糞便抗原1と反応性を有しない単クローン性抗体
。 +125 癌胎児性抗原および尚胎児性抗原関連抗原の
濃度をラジオイムノアッセイによって測定する方法にお
いて、特許請求の範囲第1項記載の方法で得られた単ク
ローン性抗体を放射性物質で標識したマーカー抗体とし
て用いることを特徴とする方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US50843283A | 1983-06-27 | 1983-06-27 | |
| US508432 | 1995-07-31 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6037995A true JPS6037995A (ja) | 1985-02-27 |
Family
ID=24022726
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58181732A Pending JPS6037995A (ja) | 1983-06-27 | 1983-09-29 | 単クローン性抗cea抗体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6037995A (ja) |
-
1983
- 1983-09-29 JP JP58181732A patent/JPS6037995A/ja active Pending
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