JPS61282076A - 耐熱性トリプトファナーゼおよびその製法 - Google Patents
耐熱性トリプトファナーゼおよびその製法Info
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- JPS61282076A JPS61282076A JP60124546A JP12454685A JPS61282076A JP S61282076 A JPS61282076 A JP S61282076A JP 60124546 A JP60124546 A JP 60124546A JP 12454685 A JP12454685 A JP 12454685A JP S61282076 A JPS61282076 A JP S61282076A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、例えばトリプトファン(tryptopha
n)の工業的合成などの用途に有用な従来公知文献未記
載の耐熱性トリプトファナーゼ(tryptophan
α−8−)、その醗酵法による製法及びその製法に利用
する従来公知文献未記載の耐熱性トリプトファナーゼ生
産性微生物に関する。
n)の工業的合成などの用途に有用な従来公知文献未記
載の耐熱性トリプトファナーゼ(tryptophan
α−8−)、その醗酵法による製法及びその製法に利用
する従来公知文献未記載の耐熱性トリプトファナーゼ生
産性微生物に関する。
更に詳しくは、本発明は、その耐熱性特性において従来
公知のトリプトファナーゼと明瞭に区別される耐熱性ト
リプトファナーゼ、特に、約70℃(pH=8.0)に
作用至適温度を有し且つ約65℃(pH=&o、保持時
間40分)までは熱失活しない耐熱特性を有することを
特徴とする新規な耐熱性トリプトファナーゼに関する。
公知のトリプトファナーゼと明瞭に区別される耐熱性ト
リプトファナーゼ、特に、約70℃(pH=8.0)に
作用至適温度を有し且つ約65℃(pH=&o、保持時
間40分)までは熱失活しない耐熱特性を有することを
特徴とする新規な耐熱性トリプトファナーゼに関する。
本発明はまた、この新規耐熱性トリプトファナーゼの醗
酵法による製法及びこの製法の実施に使用するのに適し
た新規な耐熱性トリプトファナーゼ生産性微生物にも関
し、とくに、トリプトファン含有合成培地において単独
では生育しないが、バチルス・エスピー・S株(Bac
illws)sp、 5traitxS)との共生によ
り生育する従来完全に未知の耐熱性トリプトファナーゼ
生産性桿菌、及び該桿菌を培養し培養物から耐熱性トリ
プトファナーゼを採取することを特徴とする耐熱性トリ
プトファナーゼの製法にも関する。
酵法による製法及びこの製法の実施に使用するのに適し
た新規な耐熱性トリプトファナーゼ生産性微生物にも関
し、とくに、トリプトファン含有合成培地において単独
では生育しないが、バチルス・エスピー・S株(Bac
illws)sp、 5traitxS)との共生によ
り生育する従来完全に未知の耐熱性トリプトファナーゼ
生産性桿菌、及び該桿菌を培養し培養物から耐熱性トリ
プトファナーゼを採取することを特徴とする耐熱性トリ
プトファナーゼの製法にも関する。
従来、トリプトファナーゼは、ピリドキサールリン酸C
PLP>の関与のもとに、L−トリプトファンからピル
ビン酸、インドール、アンモニアを生成するα、β脱離
反応を触媒する反応の他に、たとえばインドールとL−
セリンからL−)リプトファンを合成する反応、すなわ
ち上記反応とは逆反応のβ置換反応も触媒する酵素とし
て知られており、たとえばエシェリキア・コリa胚江二
紅chia coli) 、アイ買モナス・リクイファ
シェンス(Attromonas LiqlLefac
tens)、プロテウx−レトゲリ(proteus
rettgeri)などの如き腸内細菌群を中心とする
微生物から見出されている公知酵素である。
PLP>の関与のもとに、L−トリプトファンからピル
ビン酸、インドール、アンモニアを生成するα、β脱離
反応を触媒する反応の他に、たとえばインドールとL−
セリンからL−)リプトファンを合成する反応、すなわ
ち上記反応とは逆反応のβ置換反応も触媒する酵素とし
て知られており、たとえばエシェリキア・コリa胚江二
紅chia coli) 、アイ買モナス・リクイファ
シェンス(Attromonas LiqlLefac
tens)、プロテウx−レトゲリ(proteus
rettgeri)などの如き腸内細菌群を中心とする
微生物から見出されている公知酵素である。
このような従来公知のトリプトファナーゼは、約33〜
35℃(pH=&o)付近に作用至適温度を有し且つ約
40℃(p H= & O、保持時間40分)以上では
実質的に熱失活する酵素特性を有する酵素であるため、
その利用に際し、反応温度、熱安定性などの耐熱性の点
で著るしい制約を受けるという技術的難点があった。
35℃(pH=&o)付近に作用至適温度を有し且つ約
40℃(p H= & O、保持時間40分)以上では
実質的に熱失活する酵素特性を有する酵素であるため、
その利用に際し、反応温度、熱安定性などの耐熱性の点
で著るしい制約を受けるという技術的難点があった。
本楯明者等は、上述の技術的難点を克服したトリプトフ
ァナーゼを創製すぺ研究を行ってきた。
ァナーゼを創製すぺ研究を行ってきた。
その結果、本発明者等の試験したかぎシ、天然培地及び
トリプトファン含有合成培地のいずれにおいても単独で
は生育しないが、バチルス・エスピー・S株(Eact
llus sp、5train S )との共生により
生育する従来完全に未知で且つ如何なる公知文献にも未
記載の特異な生育特性を有するトリプトファナーゼ生産
性桿菌を土壌試料より分離採取することに成功し、且つ
該新規桿菌が約70’C(pH=&o)に作用至適温度
を有し且つ約65℃(pH=lLo、保持時間40分)
までは熱失活しない熱安定性を示す点で、公知トリプト
ファナーゼとは全く別異の新規酵素である本発明に称す
る耐熱性トリプトファナーゼを産生ずることを発見した
。
トリプトファン含有合成培地のいずれにおいても単独で
は生育しないが、バチルス・エスピー・S株(Eact
llus sp、5train S )との共生により
生育する従来完全に未知で且つ如何なる公知文献にも未
記載の特異な生育特性を有するトリプトファナーゼ生産
性桿菌を土壌試料より分離採取することに成功し、且つ
該新規桿菌が約70’C(pH=&o)に作用至適温度
を有し且つ約65℃(pH=lLo、保持時間40分)
までは熱失活しない熱安定性を示す点で、公知トリプト
ファナーゼとは全く別異の新規酵素である本発明に称す
る耐熱性トリプトファナーゼを産生ずることを発見した
。
本発明者等の研究によれば、本発明において耐熱性トリ
プトファナーゼと呼称する該新規トリプトファナーゼを
生産する新桿菌は、本発明者等の試みたかぎり、公知の
如何なる微生物用培地においても単独では生育しないが
、上記バチルス・エスピー、S株(Bacillus
sp、5trai?S5 )との共存下に、例えば、リ
ン酸塩でpH調節したトリプトファン含有合成液体培地
において、弱い攪拌条件下もしくは静置条件下で約58
〜約63℃の温度で活発に増殖生育し、酵素活性の強い
混合培養物を与えることが発見された。
プトファナーゼと呼称する該新規トリプトファナーゼを
生産する新桿菌は、本発明者等の試みたかぎり、公知の
如何なる微生物用培地においても単独では生育しないが
、上記バチルス・エスピー、S株(Bacillus
sp、5trai?S5 )との共存下に、例えば、リ
ン酸塩でpH調節したトリプトファン含有合成液体培地
において、弱い攪拌条件下もしくは静置条件下で約58
〜約63℃の温度で活発に増殖生育し、酵素活性の強い
混合培養物を与えることが発見された。
更に又、本発明者等の研究によれば、該バチルス・エス
ピー・S株(Bacillus sp、 5trai
n S)は、胞子を形成するバチルス(Bacillu
s)属に属し、一般細菌用培地を用いて純粋培養可能な
新菌株であって、 (4)でインドール生成(−) (ii)’硝酸還元(−) の生理学的性質を示し、トリプトファン含有合成培地に
おいて、単独でも、また前記耐熱性トリプトファナーゼ
生産性桿菌との共生条件においても、トリプトファナー
ゼ生産能を示さない新菌株であることがわかった。
ピー・S株(Bacillus sp、 5trai
n S)は、胞子を形成するバチルス(Bacillu
s)属に属し、一般細菌用培地を用いて純粋培養可能な
新菌株であって、 (4)でインドール生成(−) (ii)’硝酸還元(−) の生理学的性質を示し、トリプトファン含有合成培地に
おいて、単独でも、また前記耐熱性トリプトファナーゼ
生産性桿菌との共生条件においても、トリプトファナー
ゼ生産能を示さない新菌株であることがわかった。
従って、本発明の目的は新規な耐熱性トリプトファナー
ゼ及びその製法を提供するにある。
ゼ及びその製法を提供するにある。
本発明の他の目的は上記耐熱性トリプトファナーゼ生産
性桿菌を提供するVC4ある。
性桿菌を提供するVC4ある。
本発明の上記目的及び更に多くの他の目的ならびに利点
は、以下の記載から一層明らかとなるであろう。
は、以下の記載から一層明らかとなるであろう。
本発明の新桿菌であるトリプトファン含有合成培地にお
いて単独では生育しないが、バチルス・エスピー・S株
(Bacillus sp、 5train S )
との共生により生育して、菌体内に耐熱性トリプトファ
ナーゼを生産蓄積する耐熱性トリプトファナーゼ生産性
桿菌は、温泉、堆肥などの高温環境由来の土壌試料から
分離採取された。
いて単独では生育しないが、バチルス・エスピー・S株
(Bacillus sp、 5train S )
との共生により生育して、菌体内に耐熱性トリプトファ
ナーゼを生産蓄積する耐熱性トリプトファナーゼ生産性
桿菌は、温泉、堆肥などの高温環境由来の土壌試料から
分離採取された。
以下、その分離採取法について述べる。
リン酸塩でpH調節したトリプトファナーゼ誘導培地で
ある後記するTrp−PEP液体培地に、温泉、堆肥な
ど高温環境由来の土壌試料を入れ、L型試験管を用いて
約6 o!−r o℃で振盪培養を行ない、KOυαc
’s試薬によるインドール検出によってインドールの生
成が検出された試料培養物をトリプトファナーゼ生産菌
として分離する。斯くて、分離採取できる約60℃で生
育するトリプトファナーゼ生産菌を、希釈法、更に、バ
シトラシン(Eacitracin)に対する耐性を利
用して純化したトリプトファナーゼ生産菌を得ることが
できる。
ある後記するTrp−PEP液体培地に、温泉、堆肥な
ど高温環境由来の土壌試料を入れ、L型試験管を用いて
約6 o!−r o℃で振盪培養を行ない、KOυαc
’s試薬によるインドール検出によってインドールの生
成が検出された試料培養物をトリプトファナーゼ生産菌
として分離する。斯くて、分離採取できる約60℃で生
育するトリプトファナーゼ生産菌を、希釈法、更に、バ
シトラシン(Eacitracin)に対する耐性を利
用して純化したトリプトファナーゼ生産菌を得ることが
できる。
得られたトリプトファナーゼ生産菌を、常法に従って、
寒天固体培養によるコロニー分離を試みたが、試験した
すべての種類の寒天固体培地においてコロニー形成は認
められなかった。上記トリプトファナーゼ生産菌の高濃
度の懸濁液(1プレート当たシ100〜2・OOコ菌体
)を、メンブレン・フィルターをその表面上に貼着した
Trp−pEP寒天培地上に塗布し、約60℃で培養し
て、コロニーを形成させる。形成されたコロニーについ
て、Koταc’s試薬によるインドールの生成を検出
し、インドール生産菌コロニーとインドール非生産菌コ
ロニーとを分離することができる。
寒天固体培養によるコロニー分離を試みたが、試験した
すべての種類の寒天固体培地においてコロニー形成は認
められなかった。上記トリプトファナーゼ生産菌の高濃
度の懸濁液(1プレート当たシ100〜2・OOコ菌体
)を、メンブレン・フィルターをその表面上に貼着した
Trp−pEP寒天培地上に塗布し、約60℃で培養し
て、コロニーを形成させる。形成されたコロニーについ
て、Koταc’s試薬によるインドールの生成を検出
し、インドール生産菌コロニーとインドール非生産菌コ
ロニーとを分離することができる。
該インドール生産菌コロニーは、後に詳しく述べるとお
り、細胞の大きさの異なる二種類の桿菌の混合状態のコ
ロニーとして得られ、インドール非生産菌コロニーは該
二種類の桿菌の一方の桿菌からなるコロニーとして得る
ことができる。
り、細胞の大きさの異なる二種類の桿菌の混合状態のコ
ロニーとして得られ、インドール非生産菌コロニーは該
二種類の桿菌の一方の桿菌からなるコロニーとして得る
ことができる。
上記のトリプトファン含有合成培地において単独でも混
合状態でも生育するが、それ自身単独ではトリプトファ
ナーゼ生産能を示さない菌株(インドール非生産菌)は
、本発明者等によってバチルス・エスピー・S株(Ba
cillus sp.strainS)と命名された。
合状態でも生育するが、それ自身単独ではトリプトファ
ナーゼ生産能を示さない菌株(インドール非生産菌)は
、本発明者等によってバチルス・エスピー・S株(Ba
cillus sp.strainS)と命名された。
又、上述のようにして、バチルス・エスピー・5株との
混合菌の状態で分離採取でき、トリプトファン含有合成
培地において単独では生育しないが、上記バチ2ス・エ
スピー・5株との共生により生育して、菌体内に耐熱性
トリプトファナーゼを生産蓄積する耐熱性トリプトファ
ナーゼ生産性桿菌は、本発明者等によって、パクテリウ
AI7’株(Bacterium 5trai%T)と
命名された。
混合菌の状態で分離採取でき、トリプトファン含有合成
培地において単独では生育しないが、上記バチ2ス・エ
スピー・5株との共生により生育して、菌体内に耐熱性
トリプトファナーゼを生産蓄積する耐熱性トリプトファ
ナーゼ生産性桿菌は、本発明者等によって、パクテリウ
AI7’株(Bacterium 5trai%T)と
命名された。
上述のようにして高温環境由来の土壌試料からバチルス
・エスピー・5株との混合菌の状態で分離採取できる本
発明の耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌は、リン酸
塩でpH調節したトリプトファン含有の下記合成液体培
地(Trp−pEp液体培地〕で混合菌の状態で植継培
養を続けることができるし、また、L−乾燥菌体(混合
菌)として保存可能である。
・エスピー・5株との混合菌の状態で分離採取できる本
発明の耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌は、リン酸
塩でpH調節したトリプトファン含有の下記合成液体培
地(Trp−pEp液体培地〕で混合菌の状態で植継培
養を続けることができるし、また、L−乾燥菌体(混合
菌)として保存可能である。
Trp−P E P液体培地ニー
培地組成 100プ中
L−)リプトファン 0.22ポリペプトン
0.51酵母エキス
0.111KtHPO40,3,9 KN、PO,0,1F MgSO4・5H,00,051 ピリドキサール5′リン酸 o、 05 g培地
pHは6.8〜7.0になる。
0.51酵母エキス
0.111KtHPO40,3,9 KN、PO,0,1F MgSO4・5H,00,051 ピリドキサール5′リン酸 o、 05 g培地
pHは6.8〜7.0になる。
更に、上述のようKして高温環境由来の土壌試料からバ
チルス・エスピー・5株との混合菌の状態で分離採取で
き、混合菌の状態で植継培讐及びL−乾燥保存可能な本
発明の耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌バクテリウ
ム・T株は、たとえば、以下のようにして共生するバチ
ルス・エスピー・5株と分離することが可能である。
チルス・エスピー・5株との混合菌の状態で分離採取で
き、混合菌の状態で植継培讐及びL−乾燥保存可能な本
発明の耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌バクテリウ
ム・T株は、たとえば、以下のようにして共生するバチ
ルス・エスピー・5株と分離することが可能である。
(α)バクテリウム・T株とバチルス・エスピー・S株
μ、その細胞の大きさの相違を利用して分別遠心分離の
手法を応用して互いに分離可能である。
μ、その細胞の大きさの相違を利用して分別遠心分離の
手法を応用して互いに分離可能である。
(b)バクテリウム・T株とバチルス・エスピー・5株
は、そのリゾチーム感受性が相違し、バチルス・エスピ
ー・5株の方がより感受性が高いので、その差を利用し
て該5株を選択的に溶菌させることができ、それによっ
て混合菌から該T株を分離可能である。
は、そのリゾチーム感受性が相違し、バチルス・エスピ
ー・5株の方がより感受性が高いので、その差を利用し
て該5株を選択的に溶菌させることができ、それによっ
て混合菌から該T株を分離可能である。
しかしながら、本発明の耐熱性トリプトファナーゼ生産
性桿菌は、本発明者等の試みたかぎシの如何なる微生物
用天然及び合成培地においても、単独では生育しないた
め、その菌学的性質に関しては、形態上の性質及び生理
学的性質中カタラーゼについての性質以外は試験不可能
である。従って、以下に試験可能な性質について示す。
性桿菌は、本発明者等の試みたかぎシの如何なる微生物
用天然及び合成培地においても、単独では生育しないた
め、その菌学的性質に関しては、形態上の性質及び生理
学的性質中カタラーゼについての性質以外は試験不可能
である。従って、以下に試験可能な性質について示す。
バクテリウAl17’株(Bacteriurn 5t
rain T )α)形態 ■細胞の形及び大きさニー桿菌(太さ0.25〜0.3
5μ情、長さ 1、5〜7 p m ) o通 常、単独。
rain T )α)形態 ■細胞の形及び大きさニー桿菌(太さ0.25〜0.3
5μ情、長さ 1、5〜7 p m ) o通 常、単独。
■細胞の多形性の有無ニーなし。
■運動性の有無ニー 外し。
■胞子の有無ニー なし。
■グラム染色性ニー 不定。
b) 次の各培地における生育状態
■ 肉汁寒天平板培養ニー生育せず。
■ 肉汁寒天斜面培養ニー生育せず。
■ 肉汁液体培養ニー 生育せず。
■ 肉汁ゼラチン穿刺培養ニー生育せず。
■ リドマス・ミルクニー生育せず。
■ トリプトファン含有合成培地(Trp−PEP液体
液体培地− ニーでは生育せず。バチルス・エスピー・5株(微工研
条寄第809号)との共生条件下に上記培地で生育する
。尚、本発明において、トリプトファン含有合成培地に
おいて単独では生育しないが、バチルス・エスピー・5
株との共生によシ生育して、菌体内に耐熱性トリプトフ
ァナーゼを生産蓄積するというのは、上記Trp−PE
P液体培地において単独では生育せず、バチルス・エス
ピー・5株との共生条件下に該培地で生育して、菌体内
に耐熱性トリプトファナーゼを生産蓄積することを意味
するものと定義される。
液体培地− ニーでは生育せず。バチルス・エスピー・5株(微工研
条寄第809号)との共生条件下に上記培地で生育する
。尚、本発明において、トリプトファン含有合成培地に
おいて単独では生育しないが、バチルス・エスピー・5
株との共生によシ生育して、菌体内に耐熱性トリプトフ
ァナーゼを生産蓄積するというのは、上記Trp−PE
P液体培地において単独では生育せず、バチルス・エス
ピー・5株との共生条件下に該培地で生育して、菌体内
に耐熱性トリプトファナーゼを生産蓄積することを意味
するものと定義される。
C) 生理学的性質
■硝酸塩の還元ニー試験不能。但し、バチルス・エスピ
ー・5株との共生 条件下においては(ト)。
ー・5株との共生 条件下においては(ト)。
■脱窒反応、■MRテスト、■VPテストニーいずれも
試験不能。
試験不能。
■インドールの生成ニー試験不能。但し、バチルス拳エ
スピー・5株との 共生条件下においては(ト)。
スピー・5株との 共生条件下においては(ト)。
■硫化水素の生成、■デンプンの加水分解、■クエン酸
の利用、■無機窒素源の利用、[相]色素の生成、■ウ
レアーゼ、■オキシダーゼニーいずれも試験不能。
の利用、■無機窒素源の利用、[相]色素の生成、■ウ
レアーゼ、■オキシダーゼニーいずれも試験不能。
■カタラーゼニー (ト)。
■生育の範囲(pH1温度など)、■酸素に対する態度
(好気性、嫌気性の区別など)、[相]0−Fテスト、
■糖類からの酸及びガスの生成の有無ニー いずれも
試験不能。
(好気性、嫌気性の区別など)、[相]0−Fテスト、
■糖類からの酸及びガスの生成の有無ニー いずれも
試験不能。
d) その他
■DNA中のグアニンeシトシン(G(’)を量(Tm
法)が約f35mola%。
法)が約f35mola%。
■前記b)■のトリプトファン含有合成培地において、
弱い攪拌条件下もしくは静置条件下において、温度約5
8L−63℃で、バチルス・エスピー・5株との共生条
件下で生育増殖する。
弱い攪拌条件下もしくは静置条件下において、温度約5
8L−63℃で、バチルス・エスピー・5株との共生条
件下で生育増殖する。
上記性質を持つ桿菌、すなわち、トリプトファン含有合
成培地において単独では生育しないが、バチルス・エス
ピー・5株との共生によシ生育して、菌体内に耐熱性ト
リプトファナーゼを生産蓄積する耐熱性トリプトファナ
ーゼ生産性桿菌は、パージエズ・マニュアルψオブ・デ
タミナテプ・パクテリオロジイ(Bergay’a M
anlLal ofDeterminative Ba
cterialogy、 g thd)第8版、その他
如何なる公知文献にも完全に未記載の桿菌であって、本
発明者等によって、バクテリウムΦτ株(Eacter
ium gtraイnT)と命名された。
成培地において単独では生育しないが、バチルス・エス
ピー・5株との共生によシ生育して、菌体内に耐熱性ト
リプトファナーゼを生産蓄積する耐熱性トリプトファナ
ーゼ生産性桿菌は、パージエズ・マニュアルψオブ・デ
タミナテプ・パクテリオロジイ(Bergay’a M
anlLal ofDeterminative Ba
cterialogy、 g thd)第8版、その他
如何なる公知文献にも完全に未記載の桿菌であって、本
発明者等によって、バクテリウムΦτ株(Eacter
ium gtraイnT)と命名された。
本発明者等により初めて分離された該桿菌は、バチルス
・エスピー・5株との混合菌の状態で、工業技術院微生
物工業技術研究所に、微工研条寄第810号(FERN
BP−slo)として寄託されている。
・エスピー・5株との混合菌の状態で、工業技術院微生
物工業技術研究所に、微工研条寄第810号(FERN
BP−slo)として寄託されている。
更に、本発明の耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌が
、それとの共生条件下でトリプトファン含有合成培地で
生育するバチルス・エスピー・5株は、胞子を形成する
BaC11las属に属する新菌株であって、一般細菌
用培地を用いて純粋培養が可能である。その菌学的性質
を以下に記載する。
、それとの共生条件下でトリプトファン含有合成培地で
生育するバチルス・エスピー・5株は、胞子を形成する
BaC11las属に属する新菌株であって、一般細菌
用培地を用いて純粋培養が可能である。その菌学的性質
を以下に記載する。
バチA/ス11 !スビー11S株(Bacillus
sp、 5traイn互」 α)形態 ■細胞の形及び大きさニー桿菌(太さ0.6〜α9μ常
、長さ25 〜6.0μm)。通常、 単独。
sp、 5traイn互」 α)形態 ■細胞の形及び大きさニー桿菌(太さ0.6〜α9μ常
、長さ25 〜6.0μm)。通常、 単独。
■細胞の多形性の有無ニー表し。
■運動性の有無ニー (ト)。周鞭毛。
■胞子の有無ニー 有り。だ円、1.1×20μ
m1細胞の一 端に内生。
m1細胞の一 端に内生。
■グラム染色性ニー 陽性。
b) 次の各培地における生育状態
L 肉汁寒天培地
円滑、無色半透明、光沢あり。
λ 肉汁液体培地
表面発育、白色菌膜を形成。
C) 生理学的性質
L 硝酸塩の還元ニー(ト)。
2、 MRテストニー (ト)。
l Vpテストニー(−)。
瓜 インドールの生成ニー(−)。
5、0.02 % Nap、耐性ニー(ト)。
& カタラーゼニー (ト)。
7、’5J食塩存在下での生育ニー(−)。
& 生育の範囲ニーpHs、rでの生育(ト)。
生育温度66℃(上限)、
40℃(下限)。
9、酸素に対する態度ニー嫌気性生育(ト)。
10、デンプン発酵性ニー(ト)。
11、 アラビノース、キシロース発酵性: −(−
)。
)。
1λ マンニトール発酵性ニー(−)。
1& グルコース発酵性ニー(ト)。ガス生成(=)。
65℃で生育するところから、バチルス・ステアロテル
モフィル、x、 (Bacillus 5tearot
hertnophi−1us)に類似するが、上記9.
嫌気性生育(ト)、&0、02 % Nap、耐性(ト
)及び& p H5,7での生育(ト)の各試験結果が
一致せず、バージエズ・マニュアルφオプ・デタミナテ
ブ・バクテリオロジイ第8版により該当する菌株がない
。従って、新菌株と同定され、本発明者等により、バチ
ルス・エスピー・5株(Bacillus sp、 5
trai7LS)と命名された。本発明者等により初め
て分離された該菌株は、工業技術院微生物工業技術研究
所に微工研条寄第809号(FERN l’−809
)として寄託されている。
モフィル、x、 (Bacillus 5tearot
hertnophi−1us)に類似するが、上記9.
嫌気性生育(ト)、&0、02 % Nap、耐性(ト
)及び& p H5,7での生育(ト)の各試験結果が
一致せず、バージエズ・マニュアルφオプ・デタミナテ
ブ・バクテリオロジイ第8版により該当する菌株がない
。従って、新菌株と同定され、本発明者等により、バチ
ルス・エスピー・5株(Bacillus sp、 5
trai7LS)と命名された。本発明者等により初め
て分離された該菌株は、工業技術院微生物工業技術研究
所に微工研条寄第809号(FERN l’−809
)として寄託されている。
本発明によれば、上に詳しくのべた微生物、すなわち、
トリプトファン含有合成培地において単独では生育しな
いが、バチルス・エスピー・5株との共生により生育す
る耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌を培養し、培養
物から耐熱性トリプトファナーゼを採取することからな
る耐熱性トリプトファナーゼの製法が提供できる。
トリプトファン含有合成培地において単独では生育しな
いが、バチルス・エスピー・5株との共生により生育す
る耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌を培養し、培養
物から耐熱性トリプトファナーゼを採取することからな
る耐熱性トリプトファナーゼの製法が提供できる。
培養は、適当な炭素源、窒素源、ミネラル類を含有する
培地において、例えば、バチルス・エスピー・5株との
共生条件下に耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌を接
種して行なうことができる。
培地において、例えば、バチルス・エスピー・5株との
共生条件下に耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌を接
種して行なうことができる。
利用する炭素源の例としては、グルコース、デンプン、
マルトース、コハク酸ナトリウム、酢酸ナトリウムなど
の如き炭素源を例示でき、また窒素の例としては、NH
,C1,(NH4,50いカザミノ酸、ペプトン、酵母
エキスなどの如き有機もしくは無機窒素源を例示するこ
とができる。更に、ミオジル類の例としては、KtHP
O4,KH,PO4、Mg5O,*TH,0,FtC1
@、ビJXミ7類などを例示することができる。
マルトース、コハク酸ナトリウム、酢酸ナトリウムなど
の如き炭素源を例示でき、また窒素の例としては、NH
,C1,(NH4,50いカザミノ酸、ペプトン、酵母
エキスなどの如き有機もしくは無機窒素源を例示するこ
とができる。更に、ミオジル類の例としては、KtHP
O4,KH,PO4、Mg5O,*TH,0,FtC1
@、ビJXミ7類などを例示することができる。
培養は、たとえば、上記例示の如き炭素源、窒素源、さ
らにはミネラル及びビタミン類のほかに、L−)リプト
ファンを含有する液体培地を用いて、好気的に行なうこ
とができる。培養方式も適宜に選択できるが、たとえば
静置培養、振盪培養、通気攪拌培養などの培養方式を採
用して行なうことができる。培養条件としては、pH約
6〜約8の如きpH条件下、約55〜約65℃の温度条
件において、約1〜約3日の如き条件を例示することが
できる。
らにはミネラル及びビタミン類のほかに、L−)リプト
ファンを含有する液体培地を用いて、好気的に行なうこ
とができる。培養方式も適宜に選択できるが、たとえば
静置培養、振盪培養、通気攪拌培養などの培養方式を採
用して行なうことができる。培養条件としては、pH約
6〜約8の如きpH条件下、約55〜約65℃の温度条
件において、約1〜約3日の如き条件を例示することが
できる。
培養終了後、例えば、遠心分離、戸別などによって菌体
を採取し、たとえば、菌体を破砕たとえばアルミナ摩砕
などによって破砕して、得られる菌体抽出液から、たと
えば硫安分画法により分画して耐熱性トリプトファナー
ゼ含有分画を採取することにより、目的とする耐熱性ト
リプトファナーゼを分離取得することができる。更に、
たとえばイオン交換、ゲル濾過、カラムクロマトグラフ
ィーの如き適当な精製手法を用いて精製することができ
る。
を採取し、たとえば、菌体を破砕たとえばアルミナ摩砕
などによって破砕して、得られる菌体抽出液から、たと
えば硫安分画法により分画して耐熱性トリプトファナー
ゼ含有分画を採取することにより、目的とする耐熱性ト
リプトファナーゼを分離取得することができる。更に、
たとえばイオン交換、ゲル濾過、カラムクロマトグラフ
ィーの如き適当な精製手法を用いて精製することができ
る。
上述のようにして製造できる本発明の耐熱性トリプトフ
ァナーゼは、約70℃(pH=&o)に作用至適温度を
有し、且つ約65℃(pH=&o、保持時間40分)ま
では熱失活しない耐熱特性を有するトリプトファナーゼ
である点で、従来公知のトリプトファナーゼと明確に区
別できる新規酵素である。
ァナーゼは、約70℃(pH=&o)に作用至適温度を
有し、且つ約65℃(pH=&o、保持時間40分)ま
では熱失活しない耐熱特性を有するトリプトファナーゼ
である点で、従来公知のトリプトファナーゼと明確に区
別できる新規酵素である。
以下に、本発明耐熱性トリプトファナーゼの性質を示す
。
。
L 作用ニー
ピリドキサールリン酸の関与のもとに、L−トリプトフ
ァンからピルビン酸、インドール及びアンモニアを生成
する。
ァンからピルビン酸、インドール及びアンモニアを生成
する。
λ 基質特異性ニー
トリプトファン、S−メチル−L−システイン、L−シ
ステイン及び5−メチル−L−)リプトファンを分解す
る。
ステイン及び5−メチル−L−)リプトファンを分解す
る。
λ 至適pH及び安定pHニー
至適p H= 7.0〜7.5(65℃)〔第1図参照
〕安定pH=6〜10(25℃、2日間〔第2図参照〕 添付図面第1図は、(050mMのリン酸カリウム緩衝
液(図中、−()−qつ−)、(2) 10 m Mの
KCIを含有する50mMのグリシン−N a OH緩
衝液(図中、−口−[ト)、(3) 5 m Mの(N
H,)、So、を含有する50mMのグリシン−N a
OH緩衝液(図中、べ)<コ臼及び(4) 50 t
nMのグリシン−NaOH緩衝液(図中、−Δ−△−)
の各々を用い、各pH(65℃におけるpH)条件下に
、本発明酵素のトリプトファナーゼ活性を測定した結果
を示す図である。至適pHは上記(1)、(2)及び(
3)の結果から7、0〜7.5(65℃)と決定される
。
〕安定pH=6〜10(25℃、2日間〔第2図参照〕 添付図面第1図は、(050mMのリン酸カリウム緩衝
液(図中、−()−qつ−)、(2) 10 m Mの
KCIを含有する50mMのグリシン−N a OH緩
衝液(図中、−口−[ト)、(3) 5 m Mの(N
H,)、So、を含有する50mMのグリシン−N a
OH緩衝液(図中、べ)<コ臼及び(4) 50 t
nMのグリシン−NaOH緩衝液(図中、−Δ−△−)
の各々を用い、各pH(65℃におけるpH)条件下に
、本発明酵素のトリプトファナーゼ活性を測定した結果
を示す図である。至適pHは上記(1)、(2)及び(
3)の結果から7、0〜7.5(65℃)と決定される
。
添付図面第2図は、1omMのKCI及び10μMのピ
リドキサール5′−リン酸を含有する50mMの各種緩
衝液(図中、クエン酸−A’ aJIP 04緩衝液4
−1置に、HpO4−KH,pO,緩衝液−Δ−Δ−;
7ria−HCI緩衝液H]→コー;グリシ7−NaO
H緩衝液−A −A−;NaHCOB−NaOH緩衝液
1−W−)のそれぞれを用い、各pH(25℃における
pH)条件下に、25℃で2日間、本発明酵素を処理し
た後の残存トリプトファナーゼ活性を測定した結果を示
す図であるーこの結果から安定pH範囲6〜10(25
℃、2日間)と決定される。
リドキサール5′−リン酸を含有する50mMの各種緩
衝液(図中、クエン酸−A’ aJIP 04緩衝液4
−1置に、HpO4−KH,pO,緩衝液−Δ−Δ−;
7ria−HCI緩衝液H]→コー;グリシ7−NaO
H緩衝液−A −A−;NaHCOB−NaOH緩衝液
1−W−)のそれぞれを用い、各pH(25℃における
pH)条件下に、25℃で2日間、本発明酵素を処理し
た後の残存トリプトファナーゼ活性を測定した結果を示
す図であるーこの結果から安定pH範囲6〜10(25
℃、2日間)と決定される。
t 力価の測定法ニー
山田ら(京大)の方法に準じた。すなわち、L−トリプ
トファン10μmole、 ピリドキサール、リン酸
(pLP)O14tt mo l e、 K、HPO+
−KHtPO4(pHs、o )20 o μmole
及び酵素を含む反応液4.0コを用い、65℃で10分
間反応後、3(1%)リクロロ酢酸(TCA)水溶液1
.0−を加えて反応を停止する。反応系中に生成したイ
ンドールを、マクエボイーボーエ(E、McEVOY−
B □FE)法〔アナリスト(The ANALYST
、 Vol。
トファン10μmole、 ピリドキサール、リン酸
(pLP)O14tt mo l e、 K、HPO+
−KHtPO4(pHs、o )20 o μmole
及び酵素を含む反応液4.0コを用い、65℃で10分
間反応後、3(1%)リクロロ酢酸(TCA)水溶液1
.0−を加えて反応を停止する。反応系中に生成したイ
ンドールを、マクエボイーボーエ(E、McEVOY−
B □FE)法〔アナリスト(The ANALYST
、 Vol。
88、p、893〜894 (1963))により定量
決定する。活性は1分間に生成するインドールのpmo
le数をI U (p mo l e s/m1n)と
して表わす。
決定する。活性は1分間に生成するインドールのpmo
le数をI U (p mo l e s/m1n)と
して表わす。
5、作用適温の範囲ニー
トリプトファン分解活性の至適温度(作用至適温度)は
、約70℃(pH= 8.0 )である〔第3図参照〕
。
、約70℃(pH= 8.0 )である〔第3図参照〕
。
添付図面第3図は、各測定温度におけるpHを&0とな
るように調製した50mMの1rtHpO,−KH,P
O,緩衝液(pff&0)中で、10分間酵素反応を
行わせることにより、トリプトファナーゼ活性を求めた
結果を示す図である。この結果から至適温度約70℃(
pH=&o)と決定される。
るように調製した50mMの1rtHpO,−KH,P
O,緩衝液(pff&0)中で、10分間酵素反応を
行わせることにより、トリプトファナーゼ活性を求めた
結果を示す図である。この結果から至適温度約70℃(
pH=&o)と決定される。
6、 pH1温度などによる失活の条件ニー約65℃
(p H= 8.0、保持時間40分)までは熱失活し
逢い〔添付第4図の(4−1図)〜(4−4図)参照〕
。
(p H= 8.0、保持時間40分)までは熱失活し
逢い〔添付第4図の(4−1図)〜(4−4図)参照〕
。
約70℃(pH=8.0.保持時間10分)で約20%
の残存活性を示す〔添付第4図の(4−5図)参照〕。
の残存活性を示す〔添付第4図の(4−5図)参照〕。
7、 阻害、活性化及び安定化ニー
に+及びNHすにより活性化が認められる。例えば、グ
リシン−NαOH緩衝液にこれらのイオンを加えると活
性化する〔第1図参照〕。
リシン−NαOH緩衝液にこれらのイオンを加えると活
性化する〔第1図参照〕。
& 精製方法ニー
トリプトファナーゼ誘導培地で培養した菌体をアルミナ
磨砕し、PLP10μM、 2−メルカプトエタノー
ル1常Mを含むKJp04−KH,pO,50mMの緩
衝液(pH8,0)で、50%飽和硫安溶液を用いて分
画し、沈殿を懸濁、透析後、DEAE−トヨパール、ケ
ル濾過ウルトロゲルAcA3“4及びハイトロキシルア
パタイトHTを用いて精製する。
磨砕し、PLP10μM、 2−メルカプトエタノー
ル1常Mを含むKJp04−KH,pO,50mMの緩
衝液(pH8,0)で、50%飽和硫安溶液を用いて分
画し、沈殿を懸濁、透析後、DEAE−トヨパール、ケ
ル濾過ウルトロゲルAcA3“4及びハイトロキシルア
パタイトHTを用いて精製する。
9、分子量
約44000〜約45,000(SDSゲル電気泳動に
よる)。
よる)。
本発明の耐熱性トリプトファナーゼは、従来公知のトリ
プトファナーゼとは異って、優れた耐熱特性を有するた
め、公知トリプトファナーゼがその利用に際して反応温
度や熱安定性などの面での利用に著るしい制約を受けた
技術的難点が克服でき、工業的に有利に利用することが
できる。
プトファナーゼとは異って、優れた耐熱特性を有するた
め、公知トリプトファナーゼがその利用に際して反応温
度や熱安定性などの面での利用に著るしい制約を受けた
技術的難点が克服でき、工業的に有利に利用することが
できる。
以下、実施例により本発明の数態様について更に詳しく
説明する。
説明する。
実施例L〔耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌バクテ
リウム・T株の分離採取。〕 (1−1) 堆肥試料IIiをTrp−pEp液体培
地IQijに添加し、L型試験管中で約60℃において
1日間振盪培養した。KoυαC’S試薬によりインド
ール生成を確認した後、その一部0.1 mJを新たな
Trp−PEP液体培地10m1に接種ビて同様な培養
を繰り返すことにより、インドール生成苗群が充分に生
育した培養物を得た。この培養物Q、 l atをバシ
トラシン1■/lを含有するTrp−PEP液体培地1
. o mjに接種して、さらに上記と同様な培養を行
った。
リウム・T株の分離採取。〕 (1−1) 堆肥試料IIiをTrp−pEp液体培
地IQijに添加し、L型試験管中で約60℃において
1日間振盪培養した。KoυαC’S試薬によりインド
ール生成を確認した後、その一部0.1 mJを新たな
Trp−PEP液体培地10m1に接種ビて同様な培養
を繰り返すことにより、インドール生成苗群が充分に生
育した培養物を得た。この培養物Q、 l atをバシ
トラシン1■/lを含有するTrp−PEP液体培地1
. o mjに接種して、さらに上記と同様な培養を行
った。
斯くして得られた培養液を滅菌生理食塩水を用いて約l
O万倍に希釈したのち、その0.1−をメンプラン・フ
ィルター(Toyo TM−2)を貼着したTrp−
pEp寒天培地(寒天15%添加)に塗布することによ
り、バクテリウム・T株〔以下において、T株と略記す
ることがある〕及びバチルス・エスピー・S株〔以下に
おいて、S株と略記することがある〕が混合状態で生育
しているコロニーとS株の単独よりなるコロニーを分離
採収した。
O万倍に希釈したのち、その0.1−をメンプラン・フ
ィルター(Toyo TM−2)を貼着したTrp−
pEp寒天培地(寒天15%添加)に塗布することによ
り、バクテリウム・T株〔以下において、T株と略記す
ることがある〕及びバチルス・エスピー・S株〔以下に
おいて、S株と略記することがある〕が混合状態で生育
しているコロニーとS株の単独よりなるコロニーを分離
採収した。
(1−2) 上記(1−1)により得られたT株とS
株の混合したコロニーより得られた混合培養物1dを、
トリプトファン含有合成培地(Trp−PEP液体培地
)2QQ++Ltに接種し、60℃で約30時間培養を
行うと、約4時間後にまずS株の活発々増殖が起こシ、
次いで、S株の増殖停止とほぼ同時に、1株増殖が始ま
シ、それと同時にS株は急速に死滅し、最終的には菌数
の99チ以上がT株である培養を得ることができた。さ
らにS株の混入率を低下させ、実質的なT株の純粋培養
物を作るためには、T株とS株の細胞壁分野酵素(リゾ
チーム)に対する耐性の差を利用する方法、または分別
遠心分離法を用いて、培養のどの段階でもT株を分離す
ることが可能であった。
株の混合したコロニーより得られた混合培養物1dを、
トリプトファン含有合成培地(Trp−PEP液体培地
)2QQ++Ltに接種し、60℃で約30時間培養を
行うと、約4時間後にまずS株の活発々増殖が起こシ、
次いで、S株の増殖停止とほぼ同時に、1株増殖が始ま
シ、それと同時にS株は急速に死滅し、最終的には菌数
の99チ以上がT株である培養を得ることができた。さ
らにS株の混入率を低下させ、実質的なT株の純粋培養
物を作るためには、T株とS株の細胞壁分野酵素(リゾ
チーム)に対する耐性の差を利用する方法、または分別
遠心分離法を用いて、培養のどの段階でもT株を分離す
ることが可能であった。
■ 細胞壁分解酵素(リゾチーム)を用いる方法。
上記のT株とS株の混合培養を18時間行い、下記の条
件でリゾチームを作用させると、その時点で約25チ存
在したS株が選択的に溶菌して全菌数の子分の一以下に
減少し、T株の純粋培養を得ることができた。
件でリゾチームを作用させると、その時点で約25チ存
在したS株が選択的に溶菌して全菌数の子分の一以下に
減少し、T株の純粋培養を得ることができた。
条件ニー
100m&のリン酸ナトリウム緩衝液(pH7,0)中
、 卵白リヂチーム 300μg/ゴ EDTA 200μg/凱lクエン酸ナト
リウム 30ffip、/++jの反応液を用い35
℃で15分間反応させる。
、 卵白リヂチーム 300μg/ゴ EDTA 200μg/凱lクエン酸ナト
リウム 30ffip、/++jの反応液を用い35
℃で15分間反応させる。
■ 分別遠心分離による方法。
上記のT株とS株の混合培養を20時間行った培養物を
、1,000 .15分間の条件で遠心分離すること
によりS株を選択的に沈殿させ、改Z(7 めて、14,000 .20分間の条件で遠心分離す
ることによりT株のみを沈降分離できた。
、1,000 .15分間の条件で遠心分離すること
によりS株を選択的に沈殿させ、改Z(7 めて、14,000 .20分間の条件で遠心分離す
ることによりT株のみを沈降分離できた。
実施例z(T株の単独培養が不可能であることの例証。
〕
(2−1) T株とS株の混合培養から実施例1の(
1−2)に示した方法で分離したT株を、下記液体培地
に植菌し、60℃で培養を行ったが、いずれの培地でも
T株の生育は全く認められなかった。
1−2)に示した方法で分離したT株を、下記液体培地
に植菌し、60℃で培養を行ったが、いずれの培地でも
T株の生育は全く認められなかった。
t Trp−PEP液体培地
λ 普通ブイヨン培地
λ ハートイン7ユージヨンブイヨン
4、牛血清+ハートインクニージョンブイヨン5、
酵母エキス+ハートインフュージョンブイヨン 6.0.5%寒天を含有する上記1−5iでの各層。
酵母エキス+ハートインフュージョンブイヨン 6.0.5%寒天を含有する上記1−5iでの各層。
地
(2−2) S株の菌体生産物または菌体成分がT株
の生育を支持する可能性を検証するために、S菌のみを
Trp−pEp液体培地に接種し、60℃約12時間培
養した後、その培養上清及び菌体超音波破砕抽出液を調
製し、それらを無菌濾過した後、Tデル−pHp液体培
地に添加し、これに純粋分離したT株を接種したが、T
株の増殖は全く認められなかった。また、ストレプトマ
イシンにより細胞分裂を止めたS採苗体を共存させてT
株の培養を試みたが、増殖は全く認められなかつ゛た。
の生育を支持する可能性を検証するために、S菌のみを
Trp−pEp液体培地に接種し、60℃約12時間培
養した後、その培養上清及び菌体超音波破砕抽出液を調
製し、それらを無菌濾過した後、Tデル−pHp液体培
地に添加し、これに純粋分離したT株を接種したが、T
株の増殖は全く認められなかった。また、ストレプトマ
イシンにより細胞分裂を止めたS採苗体を共存させてT
株の培養を試みたが、増殖は全く認められなかつ゛た。
実施例&〔酵素生産。〕
51三角フラスコにトリプトファン含有合成培地CTr
p−PEP液体培地)を1.5ノ入れ、T株及びS株の
混合培養を54植菌し、60℃で30時間静置培養を行
ったのち、実施例1に示すと同様に処理して77.61
tの培養液から、120gのT株湿菌体を得た。これを
酸化アルミニウムにより摩砕し、次いで、下記 10μMのピリドキサール5′−リン酸CPLP>、L
mMの2−メルカプトエタ、ノール、250μMのpM
sF (セリンプロテアーゼ阻害剤)、〔フェニルメチ
ルスルホニルフルオライド (phenyl met
hyl slwfonyl fluoride)3
50mMのJ:*HPO4−KHz P O4緩衝液、
pH6,s、の組成の精製用緩衝液166dを添加する
ことにより、可溶画分として粗酵素液を得た。これから
θ〜50チ飽和硫安分画を集め、得られた粗酵素分画液
をストレプトマイシンによる除核酸処理に賦したのち透
析し、DEAE−トヨパール(東洋曹達工業製品)カラ
ム(Z6cWt(径)×12cWL)に吸着させ、0→
400mM KC1濃度勾配(400mJ)で溶出処理
して活性画分を集め、次いでウルトロゲルAcA34(
LKB社製社製力ラム(L 1 am (径)X85C
IK)でゲル濾過により精製する。さらに、ハイトロキ
シルアパタイトゲルHT(バイオラッド社製品)カラム
(Z6crILX8信)に吸着させ、O〜300 mM
(NH,)、 So。
p−PEP液体培地)を1.5ノ入れ、T株及びS株の
混合培養を54植菌し、60℃で30時間静置培養を行
ったのち、実施例1に示すと同様に処理して77.61
tの培養液から、120gのT株湿菌体を得た。これを
酸化アルミニウムにより摩砕し、次いで、下記 10μMのピリドキサール5′−リン酸CPLP>、L
mMの2−メルカプトエタ、ノール、250μMのpM
sF (セリンプロテアーゼ阻害剤)、〔フェニルメチ
ルスルホニルフルオライド (phenyl met
hyl slwfonyl fluoride)3
50mMのJ:*HPO4−KHz P O4緩衝液、
pH6,s、の組成の精製用緩衝液166dを添加する
ことにより、可溶画分として粗酵素液を得た。これから
θ〜50チ飽和硫安分画を集め、得られた粗酵素分画液
をストレプトマイシンによる除核酸処理に賦したのち透
析し、DEAE−トヨパール(東洋曹達工業製品)カラ
ム(Z6cWt(径)×12cWL)に吸着させ、0→
400mM KC1濃度勾配(400mJ)で溶出処理
して活性画分を集め、次いでウルトロゲルAcA34(
LKB社製社製力ラム(L 1 am (径)X85C
IK)でゲル濾過により精製する。さらに、ハイトロキ
シルアパタイトゲルHT(バイオラッド社製品)カラム
(Z6crILX8信)に吸着させ、O〜300 mM
(NH,)、 So。
濃度勾配(300m/)で溶出を行い、活性画分からト
リプトファナーゼ約100岬を得た。
リプトファナーゼ約100岬を得た。
本酵素は約70℃(p H= 8.0 )に作用至適温
度を有し且つ約65℃(pH=llLo、保持時間40
分)までは熱失活しない耐熱特性を示した。
度を有し且つ約65℃(pH=llLo、保持時間40
分)までは熱失活しない耐熱特性を示した。
また、本酵素のトリプトファン分解の比活性は市販品(
37℃)の8倍以上I、逆W’%によるインドール、ピ
ルビン酸、アンモニアよシのトリプトファン合成活性も
検出された。
37℃)の8倍以上I、逆W’%によるインドール、ピ
ルビン酸、アンモニアよシのトリプトファン合成活性も
検出された。
添付図面第1図は本発明の耐熱性トリプトファナーゼの
至適pH及び活性化を示すための各種緩衝液におけるト
リプトファナーゼ活性−7)Hの関係を示すグラフ、第
2図は本発明の耐熱性トリプトファナーゼの安定pHを
示すための各種緩衝液における残存トリプトファナーゼ
活性−pHの関係を示すグラフ、第3図は本発明の耐熱
性トリプトファナーゼの至適温度を示すグラフ、そして
第4図は本発明の耐熱性トリプトファナーゼの熱失活特
性を示すための50℃(4−1図)、55℃(4−2図
)、60℃(4−3図)、65°G(4−4図)及び7
0°G(4−5図)の各温度における残存トリプト77
ナーゼ活性一時間(分)の関係を示すグラフである。 %1図 第2図 第3図 一]屓 (’C) 手続補正書 昭和61年6月2日 特許庁長官 宇 賀 道 部 殿 1、事件の表示 昭和60年特許願第124546号 2o発明の名称 耐熱性トリプト77ナーゼ、その製法 およびその生産菌 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 氏名別府輝度 4、代理人 〒107 電話 585−2256 5、補正命令の日付 (自 発)6゜補正の対象 明細書の“発明の詳細な説明”の欄 (別 紙) (1)明細書Pttj12頁4行に、rMgso、・5
H。 OJとあるを、 ragsO,・7H,O」 と訂正する。 (2)明細書第26真3行に、[約45,0OOJとあ
るを、 「約46,0OOJ と訂正する。
至適pH及び活性化を示すための各種緩衝液におけるト
リプトファナーゼ活性−7)Hの関係を示すグラフ、第
2図は本発明の耐熱性トリプトファナーゼの安定pHを
示すための各種緩衝液における残存トリプトファナーゼ
活性−pHの関係を示すグラフ、第3図は本発明の耐熱
性トリプトファナーゼの至適温度を示すグラフ、そして
第4図は本発明の耐熱性トリプトファナーゼの熱失活特
性を示すための50℃(4−1図)、55℃(4−2図
)、60℃(4−3図)、65°G(4−4図)及び7
0°G(4−5図)の各温度における残存トリプト77
ナーゼ活性一時間(分)の関係を示すグラフである。 %1図 第2図 第3図 一]屓 (’C) 手続補正書 昭和61年6月2日 特許庁長官 宇 賀 道 部 殿 1、事件の表示 昭和60年特許願第124546号 2o発明の名称 耐熱性トリプト77ナーゼ、その製法 およびその生産菌 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 氏名別府輝度 4、代理人 〒107 電話 585−2256 5、補正命令の日付 (自 発)6゜補正の対象 明細書の“発明の詳細な説明”の欄 (別 紙) (1)明細書Pttj12頁4行に、rMgso、・5
H。 OJとあるを、 ragsO,・7H,O」 と訂正する。 (2)明細書第26真3行に、[約45,0OOJとあ
るを、 「約46,0OOJ と訂正する。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、約70℃(pH=8.0)に作用至適温度を有し且
つ約65℃(pH=8.0、保持時間40分)までは熱
失活しない耐熱特性を有することを特徴とする耐熱性ト
リプトファナーゼ(tryptopha−nase)。 2、下記性質 (イ)作用 ピリドキサールリン酸の関与のもとに、L−トリプトフ
ァンからピルビン酸、インドール及びアンモニアを生成
する、 (ロ)基質特異性 トリプトファン、S−メチル−L−システイン、L−シ
ステイン及び5−メチル−L−トリプトファンを分解す
る、 (ハ)至適pH及び安定pH範囲 至適pH=7.0〜7.5(65℃)、 安定pH=6〜10(25℃) を有する特許請求の範囲第1項記載の耐熱性トリプトフ
ァナーゼ。 3、トリプトファン含有合成培地において単独では生育
しないが、バチルス・エスピー・S株(Bacillu
s sp.strain S)との共生により生育する
耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌を培養し、培養物
から耐熱性トリプトファナーゼを採取することを特徴と
する耐熱性トリプトファナーゼの製法。 4、該耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌がバクテリ
ウム・T株(Bacterium strain T)
(微工研条寄第810号)である特許請求の範囲第3項
記載の製法。 5、該バチルス・エスピー・S株(Bacillus
sp.strain S)がバチルス・エスピー・S株
(微工研条寄第809号)である特許請求の範囲第3項
記載の製法。 6、トリプトファン含有合成培地において単独では生育
しないが、バチルス・エスピー・S株(Bacillu
s sp.strain S)との共生により生育して
、菌体内に耐熱性トリプトファナーゼを生産蓄積する耐
熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌。 7、バチルス・エスピー・S株(Bacillus s
p.strain S)との混合培養条件下において、
(i)インドールの生成(+) (ii)硝酸塩の還元(+) の生理学的性質を示す特許請求の範囲第6項記載の耐熱
性トリプトファナーゼ生産性桿菌。 8、該桿菌のDNA中のGC含量(Tm法)が約65m
ole%である特許請求の範囲第6項記載の耐熱性トリ
プトファナーゼ生産性桿菌。 9、バチルス・エスピー・S株(Bacillus s
p.strain S)との混合菌の状態にある特許請
求の範囲第6項記載の耐熱性トリプトファナーゼ生産性
桿菌。 10、耐熱性トリプトファナーゼ生産性桿菌がバクテリ
ウム・T株(Bacterium strain T)
(微工研条寄第810号)である特許請求の範囲第6項
もしくは第9項記載の耐熱性トリプトファナーゼ生産性
桿菌。 11、該バチルス・エスピー・S株(Bacillus
sp.strain S)がバチルス・エスピー・S
株(微工研条寄第809号)である特許請求の範囲第6
項もしくは第9項記載の耐熱性トリプトファナーゼ生産
性桿菌。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60124546A JPS61282076A (ja) | 1985-06-08 | 1985-06-08 | 耐熱性トリプトファナーゼおよびその製法 |
| DE86304311T DE3689181T2 (de) | 1985-06-08 | 1986-06-05 | Thermostabile Tryptophanase, Verfahren zu deren Herstellung und thermostabile Tryptophanase erzeugender Mikroorganismus. |
| EP86304311A EP0206595B1 (en) | 1985-06-08 | 1986-06-05 | Thermally stable tryptophanase process for producing the same, and thermally stable tryptophanase-producing microorganism |
| US06/871,315 US4761374A (en) | 1985-06-08 | 1986-06-06 | Thermally stable tryptophanase, process for producing the same, and thermally stable tryptophanase-producing microorganism |
| DK267086A DK267086A (da) | 1985-06-08 | 1986-06-06 | Termisk stabil tryptophanase, dennes fremstilling samt ved fremstillingen anvendelige bakteriestammer |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60124546A JPS61282076A (ja) | 1985-06-08 | 1985-06-08 | 耐熱性トリプトファナーゼおよびその製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61282076A true JPS61282076A (ja) | 1986-12-12 |
| JPH0364107B2 JPH0364107B2 (ja) | 1991-10-03 |
Family
ID=14888151
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60124546A Granted JPS61282076A (ja) | 1985-06-08 | 1985-06-08 | 耐熱性トリプトファナーゼおよびその製法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4761374A (ja) |
| EP (1) | EP0206595B1 (ja) |
| JP (1) | JPS61282076A (ja) |
| DE (1) | DE3689181T2 (ja) |
| DK (1) | DK267086A (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5173403A (en) * | 1989-02-24 | 1992-12-22 | Oklahoma Medical Research Foundation | Thermostable acid protease from sulfolobus acidocaldarius and gene |
| US5215907A (en) * | 1989-02-24 | 1993-06-01 | Oklahoma Medical Research Foundation | Thermostable acid protease from sulfolobus acidocaldarius |
| KR927003090A (ko) * | 1989-08-23 | 1992-12-17 | 하다사 메디칼 오르가니제이션 | 헤파린효소를 포함하는 상처 치유 약제 |
| US5629202A (en) * | 1994-07-19 | 1997-05-13 | Development Center For Biotechnology | Computer-controlled bioreactor system for enzymatic synthesis of L-tryptophan |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS4946917B1 (ja) * | 1970-12-22 | 1974-12-12 |
-
1985
- 1985-06-08 JP JP60124546A patent/JPS61282076A/ja active Granted
-
1986
- 1986-06-05 DE DE86304311T patent/DE3689181T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1986-06-05 EP EP86304311A patent/EP0206595B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-06-06 US US06/871,315 patent/US4761374A/en not_active Expired - Fee Related
- 1986-06-06 DK DK267086A patent/DK267086A/da not_active Application Discontinuation
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0364107B2 (ja) | 1991-10-03 |
| DK267086D0 (da) | 1986-06-06 |
| EP0206595A3 (en) | 1988-07-27 |
| EP0206595B1 (en) | 1993-10-20 |
| US4761374A (en) | 1988-08-02 |
| DE3689181T2 (de) | 1994-05-05 |
| EP0206595A2 (en) | 1986-12-30 |
| DE3689181D1 (de) | 1993-11-25 |
| DK267086A (da) | 1986-12-09 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |