JPS6152679B2 - - Google Patents
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
本発明は公知のアミノアシラーゼとは明確に異
なる新規な酵素N〓−カルボベンゾキシ−L−ア
ルギニンアミドヒドロラーゼおよびその製造法に
関する。 アミノアシラーゼはアミノ酸のα−アミノ基が
アシル化されたN〓−アシルアミノ酸の酸アミド
結合に作用しアミノ酸とアシル基に相当する脂肪
酸を生成する反応を触媒する酵素である。またヒ
プレートヒドロラーゼ、あるいはヒプリカーゼと
呼称される酵素はアミノアシラーゼの一種であ
り、ヒプリン酸、即ち安息香酸とグリシンが酸ア
ミド結合で脱水縮合した化合物に作用し、安息香
酸とグリシンを生成する反応を触媒する酵素であ
る。 一般的に、これら酵素をN〓−アシル−DL−
アミノ酸混合物に作用させると選択的にN〓−ア
シル−L−アミノ酸を加水分解することができ
る。この原理に基づき、アシラーゼは光学純度の
高いL−アミノ酸の製造工程に実用化されてい
る。微生物により生産されるアミノアシラーゼは
既にいくつか発見され、また実用化されている
が、これら既知のアシラーゼとは異なる新規なア
ミノアシラーゼを提供することは、アミノ酸、ペ
プチド、医薬品原料、試薬等の製造において重要
な課題の一つであり、また酵素化学或いは分析化
学等の見地からも重要視される課題である。 従来、L−アミノ酸のα−アミノ基がアシル化
されたN〓−アシルアミノ酸を加水分解する酵素
は哺乳動物の各組識、カビ、細菌、放線菌、各種
の植物種子などに存在することが知られており、
特に豚腎皮質由来のアミノアシラーゼ〔J.Biol.
Chem.,194,455(1952)〕は著名である。微生
物起源ではアスペルギルス(Aspergillus)また
はリゾプス(Rhizopus)属〔Bull.Agr.Chem.
Soc.Jpn.,21,291,296,300,304(1957)〕、コ
リネバクテリウム(Corynebacterium)属〔特公
昭49−13989〕、シユードモナス
(Pseudomonas)属〔特公昭56−43353号〕、ラク
トバシラス(Lactobacillus)属〔J.Biol.Chem.,
235,3193(1960)〕、ストレプトミセス
(Streptomyces)属〔特開昭53−59092〕等が知
られている。これら既知のアミノアシラーゼは
種々なアシルアミノ酸に分解作用を有するが、ア
ミノ酸のα−アミノ基がカルボベンゾキシ基で保
護された化合物、即ちN〓−カルボベンゾキシア
ミノ酸には全く作用しない。 そこで本発明者は、かかる現況に鑑み、α−カ
ルボベンゾキシアミノ酸に作用する酵素の検索を
目的として広く微生物の培養物を検討した結果、
乳酸菌に属する細菌の培養物にN〓−カルボベン
ゾキシアミノ酸に作用する活性を発見した。この
活性因子につき鋭意研究を重ねた結果、従来に報
告例を見ない新規な酵素を見出し、N〓−カルボ
ベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ
と命名した。本発明はこの発見に基づいて完成さ
れたものである。 本発明は、一般式: 〔式中、Rはカルボベンゾキシ基またはベンゾ
イル基を表わす〕で示される化合物に作用し、ア
ルギニンを生成するN〓−カルボベンゾキシ−L
−アルギニンアミドヒドロラーゼおよびその製法
に関する。 本発明の新規な酵素であるN〓−カルボベンゾ
キシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼはラク
トバシラス属に属する菌株から生産されることが
わかつた。菌株はN〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼ生産能を有する細
菌であればいかなる菌株でもよく、またこれ等の
菌株の変種もしくは変異株でもよい。そしてラク
トバシラス属に属する上記菌株の具体例としてラ
クトバシラス・フアーメンテイ(Lactobacillus
fermenti)が挙げられる。なお本菌株はアメリカ
ン・タイプ・カルチユアー・コレクシヨン
(American Type Culture Collection)に寄託さ
れているものであり、ラクトバシラス・フアーメ
ンテイ(Lactobacillus fermenti)ATCC9338で
ある。 本発明において、N〓−カルボベンゾキシ−L
−アルギニンアミドヒドロラーゼ生産菌を使用し
酵素を製造するにあたつて用いられる培地は、通
常の乳酸菌の培養に用いられる培地が挙げられ
る。 即ち、N〓−カルボベンゾキシ−L−アルギニ
ンアミドヒドロラーゼ生産菌が資化しうる炭素
源、窒素源および無機塩、更に必要ならば微量栄
養を含有するものであればよい。 炭素源としては、例えばグルコース、フラクト
ース、ラクトース、シユークロース、デキストリ
ン、澱粉加水分解物、麦芽エキス、廃糖密等の炭
水化物、クエン酸、コハク酸、フマール酸、酢酸
等の有機酸類およびマンニトール、グリセリン等
のアルコール類が用いられる。培地の窒素源とし
ては資化しうる窒素化合物またはそれを含有する
ものであればよく、例えばポリペプトン、肉エキ
ス、大豆等の蛋白質の加水分解物、各種アミノ酸
類、アンモニウム塩、硝酸塩等が用いられる。そ
の他、無機塩としては、例えばマンガン、リン
酸、カリウム、マグネシウム等の無機塩類が適宜
用いられ、または有機微量栄養素としてアミノ
酸、ビタミン、プリン塩基およびこれらを含有す
るペプトン、酵母エキス等が適宜用いることがで
きる。 菌の培養は静置培養で行なう。大量培養などの
工業的生産には撹拌深部培養が好適であるが、通
気撹拌培養、浸透培養等の好気的条件下に培養す
ることもできる。培養温度は30〜40℃、好ましく
は37℃付近であり、培地PHは8〜5、好ましくは
7.0付近である。培養時間は培養形態によつても
異なるが、通常9〜12時間である。 本発明のN〓−カルボベンゾキシ−L−アルギ
ニンアミドヒドロラーゼはN〓−カルボベンゾキ
シ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ生産菌の
培養液中および菌体内に存在するが、その大部分
は菌体内中に存在する。培養時間を長くすること
により自己消化を引起しN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼを培養液中
に遊離させることもできる。 本発明のN〓−カルボベンゾキシ−L−アルギ
ニンアミドヒドロラーゼを培養物から抽出、精製
するには通常の酵素蛋白質抽出、精製法を適用す
ることができる。 例えば、遠心分離法などの適当な操作により培
養物から菌体を集めた後、その菌体をガラスビー
ズなどの適当な摩耗剤とともに機械的に破砕する
方法、超音波照射によつて破砕する方法、フレン
チプレスを用いて破砕する方法、リゾチーム等の
溶菌酵素を用いる方法、またはオスモテイツクシ
ヨツクを起用する方法等により菌体を破砕する
か、または水あるいは生理食塩水もとくは緩衝液
中に菌体を懸濁し、トルエン等の存在下で放置も
しくは浸透して抽出した後、該溶液を遠心分離法
などの適当な操作により不溶物を除去し、これを
そのまま粗酵素液として得る。また通常の蛋白質
濃縮方法、例えば粗酵素液を凍結乾燥する方法、
あるいはエタノール、アセトン、イソプロパノー
ル等の有機溶媒を用いる分別沈澱による方法、も
しくは硫酸アンモニウム等の塩類を用いる塩析を
行なつた後限外濾過膜あるいは中空糸膜もしくは
コロジオン膜等を用いる透析操作を行なう方法、
等を適宜選択して実施することにより粗酵素粉末
を得ることができる。 上記の粗酵素液もしくは粗酵素粉末より精製酵
素を分取するには、イオン交換、ゲル濾過、吸
着、電気泳動、アフイニテイクロマトグラフイー
等を適宜組合せて行なう。 例えば、ジエチルアミノエチル−セフアデツク
スなどのイオン交換体を用いるイオン交換クロマ
トグラフイー法、アミノヘキシル−セフアロース
もしくはヒドロキシアパタイト等の吸着体を用い
る吸着クロマトグラフイー法、セフアデツクスあ
るいはセフアロースもしくはセフアクリルなどの
親水性担体を用いるゲル濾過法、ポリアクリルア
ミドゲルあるいはキヤリア−アンフオライトなど
を用いる電気泳動法、適当なリガンド化合物を化
学結合させた親水性担体を用いるアフイニテイー
クロマトグラフイー法、分子篩膜あるいは中空糸
膜等を用いる分子量分画法、等を適宜選択し、こ
れらの方法を組み合わせて行なうことにより、精
製された本酵素を得ることができる。 本発明新規酵素の典型的な製法およびその採取
方法は、例えばラクトバシラス属のN〓−カルボ
ベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ
生産能を有する菌体、例えばラクトバシラス・フ
アーメンテイを培養し、培養菌株を集めて中性PH
の緩衝液中で破壊し、破壊抽出液を塩析し、沈澱
物を中性PHの緩衝液の溶解後、同緩衝液で透析す
ることによつて、該酵素抽出液を得る。この抽出
液は必要により以下の方法で精製してもよい。例
えば、上記抽出液をアニオン交換能を有するデキ
ストリンまたはセルロース誘導体等で充填したカ
ラムを用い、液体クロマトグラフイーにかけ、そ
の活性画分を採取する。さらに吸着クロマトグラ
フイーで処理し、その濃縮液を採取してもよい。
必要ならば上記濃縮液をアニオン交換液体クロマ
トグラフイーにかけ、その活性画分を適当な方
法、例えば適当な有機溶媒を用いて分別沈澱さ
せ、濃縮してもよい。さらに精製を要するとき
は、これをゲル濾過クロマトグラフイーで分別
し、活性画分を採取してもよい。 上記の製法は最も好ましい方法であるが、本発
明方法はこれに限定されるものではなく、適当な
変更、例えば工程の一部を他の方法で代替する
か、工程の一部を省略してもよい。工程の代替、
付加および削除は、菌株の培養条件、種類、副生
成物、要請される純度等に応じて適宜選定すれば
よい。 上記の方法で得られたN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼは下記に記
載される特徴を有し、微生物、哺乳動物の組識ま
たは植物種子から得られる公知のアミノアシラー
ゼとは明確に異なつた性質を有する。すなわち公
知のアミノアシラーゼはアミノ酸のα−アミノ基
がアシル化されたN〓−アシルアミノ酸に作用
し、そのアシル基に相当する脂肪酸とアミノ酸を
精製する反応を触媒するが、アミノ酸のα−アミ
ノ基がカルボベンゾキシ基で保護されたN〓−カ
ルボベンゾキシアミノ酸類には全く作用しない。
これに反して、本発明のN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼはN〓−ア
セチルアミノ酸にも作用するが、それと同時にN
〓−カルボベンゾキシアミノ酸に極めて高い分解
作用を示す。以上の知見より本発明のN〓−カル
ボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラー
ゼは公知のいずれのアミノアシラーゼとも明確に
区別される特徴を有し、新規な酵素と認められ
る。 以下に本発明のN〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼの理化学的性質を
記載する。 (1) 作用 本発明の酵素N〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼはN〓−カルボ
ベンゾキシ−L−アルギニン、N〓−ベンゾイ
ル−L−アルギニンあるいはN〓−アセチル−
L−アルギニンに作用し、アルギニンを生成す
る反応を触媒する。 (2) 基質特異性 本発明の酵素はL−アルギニンのα−アミノ
基がカルボベンゾキシ基、核置換基を有するカ
ルボベンゾキシ基、ベンゾイル基、またはアセ
チル基もしくはN〓−ベンゾイルグリシン残基
で保護された化合物に分解作用を示す。 D−アルギニンのα−アミノ基がカルボベン
ゾキシ基、ベンゾイル基、またはアセチル基で
保護された化合物に全く分解作用を示さず、本
酵素は基質化合物中のアルギニン残基の光学対
掌性を認識し、その分解作用がL体化合物に特
異的であることを示す。 L−アルギニンのα−アミノ基がカルボベン
ゾキシ基または核置換基を有するカルボベンゾ
キシ基で保護された化合物であり、そのアルギ
ニン残基のグアニジノ基〔−NH−C−NH2
(=NH)〕がニトロ基、トシル基等で保護され
た化合物、例えばN〓−カルボベンゾキシ−N
〓−ニトロ−L−アルギニン、N〓−カルボベ
ンゾキシ−N〓−トシル−L−アルギニンある
いはN〓−メトキシカルボベンゾキシ−N〓−
ニトロ−L−アルギニン等に全く分解作用を示
さず、本酵素の作用を受ける化合物としてその
グアニジノ基が遊離状態にあることが必要であ
る。 L−アルギニンのα−アミノ基がベンゾイル
基で保護された化合物であり、そのアルギニン
残基のα−カルボキシル基がアミド化、エステ
ル化、またはアニリド化された化合物、例えば
N〓−ベンゾイル−L−アルギニンアミド、N
〓−ベンゾイル−L−アルギニンエチルエステ
ル、N〓−ベンゾイル−L−アルギニン−p−
ニトロアニリド、またはN〓−ベンゾイル−L
−アルギニン−β−ナフチルアミド等に全く分
解作用を示さず、本酵素の作用を受ける化合物
としてそのL−アルギニン残基のα−カルボキ
シル基が遊離状態にあることが必要である。 L−アルギニン以外の天然型アミノ酸のα
−、ε−、またはδ−アミノ基がカルボベンゾ
キシ基で保護された化合物には全く分解作用を
示さない。 本酵素の種々な基質に対する活性を第1表に
示す。なお、第1表中の相対活性はN〓−カル
ボベンゾキシ−L−アルギニンに対する分解活
性を100とした時の活性比で示したものであ
る。
なる新規な酵素N〓−カルボベンゾキシ−L−ア
ルギニンアミドヒドロラーゼおよびその製造法に
関する。 アミノアシラーゼはアミノ酸のα−アミノ基が
アシル化されたN〓−アシルアミノ酸の酸アミド
結合に作用しアミノ酸とアシル基に相当する脂肪
酸を生成する反応を触媒する酵素である。またヒ
プレートヒドロラーゼ、あるいはヒプリカーゼと
呼称される酵素はアミノアシラーゼの一種であ
り、ヒプリン酸、即ち安息香酸とグリシンが酸ア
ミド結合で脱水縮合した化合物に作用し、安息香
酸とグリシンを生成する反応を触媒する酵素であ
る。 一般的に、これら酵素をN〓−アシル−DL−
アミノ酸混合物に作用させると選択的にN〓−ア
シル−L−アミノ酸を加水分解することができ
る。この原理に基づき、アシラーゼは光学純度の
高いL−アミノ酸の製造工程に実用化されてい
る。微生物により生産されるアミノアシラーゼは
既にいくつか発見され、また実用化されている
が、これら既知のアシラーゼとは異なる新規なア
ミノアシラーゼを提供することは、アミノ酸、ペ
プチド、医薬品原料、試薬等の製造において重要
な課題の一つであり、また酵素化学或いは分析化
学等の見地からも重要視される課題である。 従来、L−アミノ酸のα−アミノ基がアシル化
されたN〓−アシルアミノ酸を加水分解する酵素
は哺乳動物の各組識、カビ、細菌、放線菌、各種
の植物種子などに存在することが知られており、
特に豚腎皮質由来のアミノアシラーゼ〔J.Biol.
Chem.,194,455(1952)〕は著名である。微生
物起源ではアスペルギルス(Aspergillus)また
はリゾプス(Rhizopus)属〔Bull.Agr.Chem.
Soc.Jpn.,21,291,296,300,304(1957)〕、コ
リネバクテリウム(Corynebacterium)属〔特公
昭49−13989〕、シユードモナス
(Pseudomonas)属〔特公昭56−43353号〕、ラク
トバシラス(Lactobacillus)属〔J.Biol.Chem.,
235,3193(1960)〕、ストレプトミセス
(Streptomyces)属〔特開昭53−59092〕等が知
られている。これら既知のアミノアシラーゼは
種々なアシルアミノ酸に分解作用を有するが、ア
ミノ酸のα−アミノ基がカルボベンゾキシ基で保
護された化合物、即ちN〓−カルボベンゾキシア
ミノ酸には全く作用しない。 そこで本発明者は、かかる現況に鑑み、α−カ
ルボベンゾキシアミノ酸に作用する酵素の検索を
目的として広く微生物の培養物を検討した結果、
乳酸菌に属する細菌の培養物にN〓−カルボベン
ゾキシアミノ酸に作用する活性を発見した。この
活性因子につき鋭意研究を重ねた結果、従来に報
告例を見ない新規な酵素を見出し、N〓−カルボ
ベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ
と命名した。本発明はこの発見に基づいて完成さ
れたものである。 本発明は、一般式: 〔式中、Rはカルボベンゾキシ基またはベンゾ
イル基を表わす〕で示される化合物に作用し、ア
ルギニンを生成するN〓−カルボベンゾキシ−L
−アルギニンアミドヒドロラーゼおよびその製法
に関する。 本発明の新規な酵素であるN〓−カルボベンゾ
キシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼはラク
トバシラス属に属する菌株から生産されることが
わかつた。菌株はN〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼ生産能を有する細
菌であればいかなる菌株でもよく、またこれ等の
菌株の変種もしくは変異株でもよい。そしてラク
トバシラス属に属する上記菌株の具体例としてラ
クトバシラス・フアーメンテイ(Lactobacillus
fermenti)が挙げられる。なお本菌株はアメリカ
ン・タイプ・カルチユアー・コレクシヨン
(American Type Culture Collection)に寄託さ
れているものであり、ラクトバシラス・フアーメ
ンテイ(Lactobacillus fermenti)ATCC9338で
ある。 本発明において、N〓−カルボベンゾキシ−L
−アルギニンアミドヒドロラーゼ生産菌を使用し
酵素を製造するにあたつて用いられる培地は、通
常の乳酸菌の培養に用いられる培地が挙げられ
る。 即ち、N〓−カルボベンゾキシ−L−アルギニ
ンアミドヒドロラーゼ生産菌が資化しうる炭素
源、窒素源および無機塩、更に必要ならば微量栄
養を含有するものであればよい。 炭素源としては、例えばグルコース、フラクト
ース、ラクトース、シユークロース、デキストリ
ン、澱粉加水分解物、麦芽エキス、廃糖密等の炭
水化物、クエン酸、コハク酸、フマール酸、酢酸
等の有機酸類およびマンニトール、グリセリン等
のアルコール類が用いられる。培地の窒素源とし
ては資化しうる窒素化合物またはそれを含有する
ものであればよく、例えばポリペプトン、肉エキ
ス、大豆等の蛋白質の加水分解物、各種アミノ酸
類、アンモニウム塩、硝酸塩等が用いられる。そ
の他、無機塩としては、例えばマンガン、リン
酸、カリウム、マグネシウム等の無機塩類が適宜
用いられ、または有機微量栄養素としてアミノ
酸、ビタミン、プリン塩基およびこれらを含有す
るペプトン、酵母エキス等が適宜用いることがで
きる。 菌の培養は静置培養で行なう。大量培養などの
工業的生産には撹拌深部培養が好適であるが、通
気撹拌培養、浸透培養等の好気的条件下に培養す
ることもできる。培養温度は30〜40℃、好ましく
は37℃付近であり、培地PHは8〜5、好ましくは
7.0付近である。培養時間は培養形態によつても
異なるが、通常9〜12時間である。 本発明のN〓−カルボベンゾキシ−L−アルギ
ニンアミドヒドロラーゼはN〓−カルボベンゾキ
シ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ生産菌の
培養液中および菌体内に存在するが、その大部分
は菌体内中に存在する。培養時間を長くすること
により自己消化を引起しN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼを培養液中
に遊離させることもできる。 本発明のN〓−カルボベンゾキシ−L−アルギ
ニンアミドヒドロラーゼを培養物から抽出、精製
するには通常の酵素蛋白質抽出、精製法を適用す
ることができる。 例えば、遠心分離法などの適当な操作により培
養物から菌体を集めた後、その菌体をガラスビー
ズなどの適当な摩耗剤とともに機械的に破砕する
方法、超音波照射によつて破砕する方法、フレン
チプレスを用いて破砕する方法、リゾチーム等の
溶菌酵素を用いる方法、またはオスモテイツクシ
ヨツクを起用する方法等により菌体を破砕する
か、または水あるいは生理食塩水もとくは緩衝液
中に菌体を懸濁し、トルエン等の存在下で放置も
しくは浸透して抽出した後、該溶液を遠心分離法
などの適当な操作により不溶物を除去し、これを
そのまま粗酵素液として得る。また通常の蛋白質
濃縮方法、例えば粗酵素液を凍結乾燥する方法、
あるいはエタノール、アセトン、イソプロパノー
ル等の有機溶媒を用いる分別沈澱による方法、も
しくは硫酸アンモニウム等の塩類を用いる塩析を
行なつた後限外濾過膜あるいは中空糸膜もしくは
コロジオン膜等を用いる透析操作を行なう方法、
等を適宜選択して実施することにより粗酵素粉末
を得ることができる。 上記の粗酵素液もしくは粗酵素粉末より精製酵
素を分取するには、イオン交換、ゲル濾過、吸
着、電気泳動、アフイニテイクロマトグラフイー
等を適宜組合せて行なう。 例えば、ジエチルアミノエチル−セフアデツク
スなどのイオン交換体を用いるイオン交換クロマ
トグラフイー法、アミノヘキシル−セフアロース
もしくはヒドロキシアパタイト等の吸着体を用い
る吸着クロマトグラフイー法、セフアデツクスあ
るいはセフアロースもしくはセフアクリルなどの
親水性担体を用いるゲル濾過法、ポリアクリルア
ミドゲルあるいはキヤリア−アンフオライトなど
を用いる電気泳動法、適当なリガンド化合物を化
学結合させた親水性担体を用いるアフイニテイー
クロマトグラフイー法、分子篩膜あるいは中空糸
膜等を用いる分子量分画法、等を適宜選択し、こ
れらの方法を組み合わせて行なうことにより、精
製された本酵素を得ることができる。 本発明新規酵素の典型的な製法およびその採取
方法は、例えばラクトバシラス属のN〓−カルボ
ベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ
生産能を有する菌体、例えばラクトバシラス・フ
アーメンテイを培養し、培養菌株を集めて中性PH
の緩衝液中で破壊し、破壊抽出液を塩析し、沈澱
物を中性PHの緩衝液の溶解後、同緩衝液で透析す
ることによつて、該酵素抽出液を得る。この抽出
液は必要により以下の方法で精製してもよい。例
えば、上記抽出液をアニオン交換能を有するデキ
ストリンまたはセルロース誘導体等で充填したカ
ラムを用い、液体クロマトグラフイーにかけ、そ
の活性画分を採取する。さらに吸着クロマトグラ
フイーで処理し、その濃縮液を採取してもよい。
必要ならば上記濃縮液をアニオン交換液体クロマ
トグラフイーにかけ、その活性画分を適当な方
法、例えば適当な有機溶媒を用いて分別沈澱さ
せ、濃縮してもよい。さらに精製を要するとき
は、これをゲル濾過クロマトグラフイーで分別
し、活性画分を採取してもよい。 上記の製法は最も好ましい方法であるが、本発
明方法はこれに限定されるものではなく、適当な
変更、例えば工程の一部を他の方法で代替する
か、工程の一部を省略してもよい。工程の代替、
付加および削除は、菌株の培養条件、種類、副生
成物、要請される純度等に応じて適宜選定すれば
よい。 上記の方法で得られたN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼは下記に記
載される特徴を有し、微生物、哺乳動物の組識ま
たは植物種子から得られる公知のアミノアシラー
ゼとは明確に異なつた性質を有する。すなわち公
知のアミノアシラーゼはアミノ酸のα−アミノ基
がアシル化されたN〓−アシルアミノ酸に作用
し、そのアシル基に相当する脂肪酸とアミノ酸を
精製する反応を触媒するが、アミノ酸のα−アミ
ノ基がカルボベンゾキシ基で保護されたN〓−カ
ルボベンゾキシアミノ酸類には全く作用しない。
これに反して、本発明のN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼはN〓−ア
セチルアミノ酸にも作用するが、それと同時にN
〓−カルボベンゾキシアミノ酸に極めて高い分解
作用を示す。以上の知見より本発明のN〓−カル
ボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラー
ゼは公知のいずれのアミノアシラーゼとも明確に
区別される特徴を有し、新規な酵素と認められ
る。 以下に本発明のN〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼの理化学的性質を
記載する。 (1) 作用 本発明の酵素N〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼはN〓−カルボ
ベンゾキシ−L−アルギニン、N〓−ベンゾイ
ル−L−アルギニンあるいはN〓−アセチル−
L−アルギニンに作用し、アルギニンを生成す
る反応を触媒する。 (2) 基質特異性 本発明の酵素はL−アルギニンのα−アミノ
基がカルボベンゾキシ基、核置換基を有するカ
ルボベンゾキシ基、ベンゾイル基、またはアセ
チル基もしくはN〓−ベンゾイルグリシン残基
で保護された化合物に分解作用を示す。 D−アルギニンのα−アミノ基がカルボベン
ゾキシ基、ベンゾイル基、またはアセチル基で
保護された化合物に全く分解作用を示さず、本
酵素は基質化合物中のアルギニン残基の光学対
掌性を認識し、その分解作用がL体化合物に特
異的であることを示す。 L−アルギニンのα−アミノ基がカルボベン
ゾキシ基または核置換基を有するカルボベンゾ
キシ基で保護された化合物であり、そのアルギ
ニン残基のグアニジノ基〔−NH−C−NH2
(=NH)〕がニトロ基、トシル基等で保護され
た化合物、例えばN〓−カルボベンゾキシ−N
〓−ニトロ−L−アルギニン、N〓−カルボベ
ンゾキシ−N〓−トシル−L−アルギニンある
いはN〓−メトキシカルボベンゾキシ−N〓−
ニトロ−L−アルギニン等に全く分解作用を示
さず、本酵素の作用を受ける化合物としてその
グアニジノ基が遊離状態にあることが必要であ
る。 L−アルギニンのα−アミノ基がベンゾイル
基で保護された化合物であり、そのアルギニン
残基のα−カルボキシル基がアミド化、エステ
ル化、またはアニリド化された化合物、例えば
N〓−ベンゾイル−L−アルギニンアミド、N
〓−ベンゾイル−L−アルギニンエチルエステ
ル、N〓−ベンゾイル−L−アルギニン−p−
ニトロアニリド、またはN〓−ベンゾイル−L
−アルギニン−β−ナフチルアミド等に全く分
解作用を示さず、本酵素の作用を受ける化合物
としてそのL−アルギニン残基のα−カルボキ
シル基が遊離状態にあることが必要である。 L−アルギニン以外の天然型アミノ酸のα
−、ε−、またはδ−アミノ基がカルボベンゾ
キシ基で保護された化合物には全く分解作用を
示さない。 本酵素の種々な基質に対する活性を第1表に
示す。なお、第1表中の相対活性はN〓−カル
ボベンゾキシ−L−アルギニンに対する分解活
性を100とした時の活性比で示したものであ
る。
【表】
【表】
(3) 力価の測定法
酵素活性の測定法は以下に示すごとくであ
る。 0.02M CoCl20.05mlと酵素0.05mlに0.05Mリ
ン酸緩衝液(PH6.5)を加え、全容を0.95mlと
する。これに0.01M N〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニン0.05mlを加え、34℃で10〜30
分間反応せしめた後、生成したアルギニンをニ
ンヒドリン比色法〔E.W.Yemm&E.C.Coking.
,Analyst.,80,209(1955)〕で定量した。 上記反応系でアルギニン1mMを1時間で生
成する酵素活性を1単位(unit)とした。また
比活性は上記の方法により測定した酵素活性の
酵素蛋白1mg当りの酵素単位で表示した。なお
蛋白の定量は紫外部の吸光度を特定することに
よつて行なつた。 (4) 作用至適PHおよび作用適温の範囲 第1図に示されるように作用至適PHの範囲は
6.0〜6.8にあり、作用最適PHは6.5である。 第2図に示されるように作用適温の範囲は25
〜40℃であり、作用適温温度は34℃である。 (5) 安定PHおよび安定温度範囲 安定PH範囲は5.5〜6.0にあり、第3図に示さ
れるようにPH6.0、4℃、20時間後の活性残存
率は100%である。 安定温度範囲は20℃までであり、第4図に示
されるようにPH6.5、25℃、1時間後の活性残
存率は59%である。 (6) 酵素活性に及ぼす各種金属イオンの影響 各種金属イオンを最終濃度が第2表に示す濃
度を与えるように酵素溶液に添加し、34℃、10
分間反応せしめた後、酵素活性を測定した結果
を第2表に示す。 なお第2表中の相対活性はCoCl21mM存在下
での酵素活性を100とし、その活性比で示した
ものである。
る。 0.02M CoCl20.05mlと酵素0.05mlに0.05Mリ
ン酸緩衝液(PH6.5)を加え、全容を0.95mlと
する。これに0.01M N〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニン0.05mlを加え、34℃で10〜30
分間反応せしめた後、生成したアルギニンをニ
ンヒドリン比色法〔E.W.Yemm&E.C.Coking.
,Analyst.,80,209(1955)〕で定量した。 上記反応系でアルギニン1mMを1時間で生
成する酵素活性を1単位(unit)とした。また
比活性は上記の方法により測定した酵素活性の
酵素蛋白1mg当りの酵素単位で表示した。なお
蛋白の定量は紫外部の吸光度を特定することに
よつて行なつた。 (4) 作用至適PHおよび作用適温の範囲 第1図に示されるように作用至適PHの範囲は
6.0〜6.8にあり、作用最適PHは6.5である。 第2図に示されるように作用適温の範囲は25
〜40℃であり、作用適温温度は34℃である。 (5) 安定PHおよび安定温度範囲 安定PH範囲は5.5〜6.0にあり、第3図に示さ
れるようにPH6.0、4℃、20時間後の活性残存
率は100%である。 安定温度範囲は20℃までであり、第4図に示
されるようにPH6.5、25℃、1時間後の活性残
存率は59%である。 (6) 酵素活性に及ぼす各種金属イオンの影響 各種金属イオンを最終濃度が第2表に示す濃
度を与えるように酵素溶液に添加し、34℃、10
分間反応せしめた後、酵素活性を測定した結果
を第2表に示す。 なお第2表中の相対活性はCoCl21mM存在下
での酵素活性を100とし、その活性比で示した
ものである。
【表】
(7) 酵素活性に及ぼす金属キレート化合物、SH
試薬、または蛋白修飾試薬の影響 各種の金属キレート化合物、SH試薬、有機
水銀化合物、または蛋白修飾試薬を最終濃度が
第3表に示す濃度になるように酵素溶液
(1mM CoCl2を含有)に添加し、34℃、10分間
反応せしめた後、残存酵素活性を測定した結果
を第3表に示す。 なお第3表中の相対活性は上記の薬剤を添加
しないで測定した時の酵素活性を100とし、そ
の活性比で示したものである。
試薬、または蛋白修飾試薬の影響 各種の金属キレート化合物、SH試薬、有機
水銀化合物、または蛋白修飾試薬を最終濃度が
第3表に示す濃度になるように酵素溶液
(1mM CoCl2を含有)に添加し、34℃、10分間
反応せしめた後、残存酵素活性を測定した結果
を第3表に示す。 なお第3表中の相対活性は上記の薬剤を添加
しないで測定した時の酵素活性を100とし、そ
の活性比で示したものである。
【表】
(8) 0.1M NaClを含有する0.01Mリン酸緩衝液
(PH6.8)で平衡化したセフアロース6B(フアル
マシア・フアインケミカルズ社製)を用いたゲ
ル濾過クロマトグラフイーにより分子量を測定
した。標準蛋白質としてはチログロブリン、カ
タラーゼ、アルドラーゼを用いた。その結果本
酵素の分子量は200000であることが解つた。 (9) 等電点 ポリアクリルアミドゲル等電点分離法により
等電点を測定した。その結果、本酵素の等電点
は5.0であることが解つた。 (10) デイスク電気泳動 ポリアクリルアミドを担体とし7.0%ゲル濃
度、PH8.0のトリス−バルビタール緩衝液を用
いデイスク電気泳動を行なつた。カラム1本あ
たり3mA電流を通じ4℃で1時間泳動を行な
つた後、クマシブリリアントブルーR−250で
染色した。その結果、マーカー(ブロムフエノ
ールブルー)に対する本酵素の比泳動距離
RmBPB=0.43であつた。 本発明の新規な酵素N〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロセーゼは以上の
性質を有する酵素である。 以下、実施例をあげて本発明を具体的に説明す
るが、本発明はこれにより制限されるものではな
い。 実施例 1 水1につきDL−アラニン0.2g、Z−L−ア
ルギニン0.3g、L−アスパラギン酸0.2g、L−
システイン0.1g、L−グルタミン酸0.5g、グリ
シン0.1g、L−ヒスチヂン塩酸塩0.1g、DL−
イソロイシン0.2g、DL−ロイシン0.2g、L−
リジン塩酸塩0.2g、DL−メチオニン0.2g、DL
−フエニルアラニン0.2g、L−プロリン0.1g、
DL−セリン0.1g、DL−スレオニン0.2g、DL−
トリプトフアン0.1g、L−チロシン0.1g、DL
−バリン0.2g、アデニン硫酸塩10mg、ウラシル
10mg、グアニン塩酸塩10mg、グルコース20g、チ
アミン塩酸塩1mg、リポフラビン1mg、ピリドキ
シン1mg、ピリドキサール1mg、パントテン酸カ
ルシウム1mg、ニコチン酸1mg、p−アミノ安息
香酸0.2mg、ビオチン0.01mg、葉酸0.01mg、酢酸ナ
トリウム20g、KH2PO40.5g、K2HPO40.5g、塩
化アンモニウム3g、MgSO4・7H2O0.2g、
FeSO4・7H2O0.01g、MnSO4・4H2O0.01g、
NaCl0.01gを含有する培養基をPH6.8に調整後、
100ml容三角フラスコ10本にそれぞれ100mlずつ分
注し、120℃で10分間殺菌した。この殺菌培地に
ラクトバシラス・フエルメンテイATCC9338株の
穿刺培地より、それぞれ3白金耳を接種し、37
℃、24時間静置培養を行なつた。 この前培養液200mlを前培養に用いた培地と全
く同条件の培地20の入つた30容ステンレス製
ジヤーフアーメンターに移し、37℃で毎分45回転
の撹拌で培養を行なつた。 10時間で本培養を終了し、培養液を遠心分離
し、菌体を集めた。同様に5度の培養を行ない計
100の培養液から湿重量で175gの菌体を得た。 このようにして得られた菌体を0.01Mリン酸緩
衝液(PH6.8)約130mlに懸濁し、約1.5Kgの0.1mm
径ガラスビーズを添加した後、ビブローゲン・セ
ルミル(エドムント・ビユーラー社製)を用いて
15分間振盪破壊した後、さらに同じ緩衝液でガラ
スビーズを洗浄した後この洗液を合し、遠心分離
によつて不溶物を除去し、細胞抽出液2140mlを得
た。この酵素液のN〓−カルボベンゾキシアルギ
ニンの分解活性は19単位/mlであつた。 実施例 2 実施例1で得られた粗酵素液2140mlに固形硫安
520gを氷冷下撹拌しながら少量ずつ添加し、40
%飽和とする。このものは氷室に1時間放置後、
生じた沈澱を遠心分離にて除去し、その上澄液に
更に固形硫安283gを氷冷下撹拌しながら少量ず
つ添加し60%飽和の塩析を行なつた。このものは
氷室に1夜放置後、生じた沈澱を遠心分離にて回
収した。得られた硫安沈澱物は0.01Mリン酸緩衝
液(PH6.8)に溶解し、同緩衝液に対して1夜透
析を行ない、312mlの酵素液を得た。この酵素液
の活性は163単位/mlであつた。また、蛋白濃度
は16.3mg/mlであつた。 実施例 3 実施例2で得た酵素液312mlを予め3mM NaN3
を含む0.01Mリン酸緩衝液(PH6.0)で平衡化し
たDEAE−セフアデツクスA−50(フアルマシ
ア・フアインケミカルズ社製)にバツチ法で吸着
させた後、0.1M NaClを含む同緩衝液で十分に洗
浄した。その後、0.3M NaClを含む同緩衝液で酵
素活性画分を溶出し、6.5の酵素液を得た。 この酵素液をメンブラン濃縮器(米国アミコン
社、PM−10)で限外濾過を行ない、407mlの酵素
溶液を得た。この溶液の活性は123単位/mlであ
つた。 実施例 4 実施例3で得られた酵素液407mlを予め3mM
NaN3を含む0.05Mリン酸緩衝液(PH6.8)で平衡
化したDEAE−セフアロースCL−6B(フアルマ
シア・フアインケミカルズ社製)の5.5cm×42.5
cmのカラムに注ぎ、カラムを同緩衝液で十分に洗
浄した後、0〜0.8M NaClの直線グラジエント溶
出を行ない、N〓−カルボベンゾキシアルギニン
分解活性画分140mlを得、これをポリエチレング
リコールで濃縮して88.5mlの酵素液を得た。この
酵素液の活性は813単位/mlであつた。 実施例 5 実施例4で得た酵素液88.5mlを予め3mMNaN3
を含む0.05Mリン酸緩衝液(PH6.8)で平衡化し
た。DEAE−セフアデツクスA−50(フアルマシ
ア・フアインケミカルズ社製)の5cm×63.5cmの
カラムに注ぎ、カラムを同緩衝液で十分洗浄した
後、同緩衝液を用い0〜0.8M NaClの直線グラジ
エント溶出を行ない、N〓−ベンジルオキシアル
ギニン分解活性画分153mlを得、これをポリエチ
レングリコールで濃縮して38mlの酵素液を得た。
この酵素液の活性は1409単位/mlであつた。 実施例 6 実施例5で得た酵素液38mlを予め3mM NaN3
を含む0.05Mリン酸緩衝液(PH6.8)で平衡化し
たセフアデツクスG−150(フアルマシア・フア
インケミカルズ社製)の2.6cm×95cmのカラムに
注ぎ、同緩衝液で溶出を行なつた。N〓−ベンジ
ルオキシアルギニン分解活性画分75mlを得た。本
酵素液の活性は752単位/mlで、蛋白量は3.4mg/
mlであつた。 上記精製工程における全活性、比活性、収率を
第4表に示す。
(PH6.8)で平衡化したセフアロース6B(フアル
マシア・フアインケミカルズ社製)を用いたゲ
ル濾過クロマトグラフイーにより分子量を測定
した。標準蛋白質としてはチログロブリン、カ
タラーゼ、アルドラーゼを用いた。その結果本
酵素の分子量は200000であることが解つた。 (9) 等電点 ポリアクリルアミドゲル等電点分離法により
等電点を測定した。その結果、本酵素の等電点
は5.0であることが解つた。 (10) デイスク電気泳動 ポリアクリルアミドを担体とし7.0%ゲル濃
度、PH8.0のトリス−バルビタール緩衝液を用
いデイスク電気泳動を行なつた。カラム1本あ
たり3mA電流を通じ4℃で1時間泳動を行な
つた後、クマシブリリアントブルーR−250で
染色した。その結果、マーカー(ブロムフエノ
ールブルー)に対する本酵素の比泳動距離
RmBPB=0.43であつた。 本発明の新規な酵素N〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロセーゼは以上の
性質を有する酵素である。 以下、実施例をあげて本発明を具体的に説明す
るが、本発明はこれにより制限されるものではな
い。 実施例 1 水1につきDL−アラニン0.2g、Z−L−ア
ルギニン0.3g、L−アスパラギン酸0.2g、L−
システイン0.1g、L−グルタミン酸0.5g、グリ
シン0.1g、L−ヒスチヂン塩酸塩0.1g、DL−
イソロイシン0.2g、DL−ロイシン0.2g、L−
リジン塩酸塩0.2g、DL−メチオニン0.2g、DL
−フエニルアラニン0.2g、L−プロリン0.1g、
DL−セリン0.1g、DL−スレオニン0.2g、DL−
トリプトフアン0.1g、L−チロシン0.1g、DL
−バリン0.2g、アデニン硫酸塩10mg、ウラシル
10mg、グアニン塩酸塩10mg、グルコース20g、チ
アミン塩酸塩1mg、リポフラビン1mg、ピリドキ
シン1mg、ピリドキサール1mg、パントテン酸カ
ルシウム1mg、ニコチン酸1mg、p−アミノ安息
香酸0.2mg、ビオチン0.01mg、葉酸0.01mg、酢酸ナ
トリウム20g、KH2PO40.5g、K2HPO40.5g、塩
化アンモニウム3g、MgSO4・7H2O0.2g、
FeSO4・7H2O0.01g、MnSO4・4H2O0.01g、
NaCl0.01gを含有する培養基をPH6.8に調整後、
100ml容三角フラスコ10本にそれぞれ100mlずつ分
注し、120℃で10分間殺菌した。この殺菌培地に
ラクトバシラス・フエルメンテイATCC9338株の
穿刺培地より、それぞれ3白金耳を接種し、37
℃、24時間静置培養を行なつた。 この前培養液200mlを前培養に用いた培地と全
く同条件の培地20の入つた30容ステンレス製
ジヤーフアーメンターに移し、37℃で毎分45回転
の撹拌で培養を行なつた。 10時間で本培養を終了し、培養液を遠心分離
し、菌体を集めた。同様に5度の培養を行ない計
100の培養液から湿重量で175gの菌体を得た。 このようにして得られた菌体を0.01Mリン酸緩
衝液(PH6.8)約130mlに懸濁し、約1.5Kgの0.1mm
径ガラスビーズを添加した後、ビブローゲン・セ
ルミル(エドムント・ビユーラー社製)を用いて
15分間振盪破壊した後、さらに同じ緩衝液でガラ
スビーズを洗浄した後この洗液を合し、遠心分離
によつて不溶物を除去し、細胞抽出液2140mlを得
た。この酵素液のN〓−カルボベンゾキシアルギ
ニンの分解活性は19単位/mlであつた。 実施例 2 実施例1で得られた粗酵素液2140mlに固形硫安
520gを氷冷下撹拌しながら少量ずつ添加し、40
%飽和とする。このものは氷室に1時間放置後、
生じた沈澱を遠心分離にて除去し、その上澄液に
更に固形硫安283gを氷冷下撹拌しながら少量ず
つ添加し60%飽和の塩析を行なつた。このものは
氷室に1夜放置後、生じた沈澱を遠心分離にて回
収した。得られた硫安沈澱物は0.01Mリン酸緩衝
液(PH6.8)に溶解し、同緩衝液に対して1夜透
析を行ない、312mlの酵素液を得た。この酵素液
の活性は163単位/mlであつた。また、蛋白濃度
は16.3mg/mlであつた。 実施例 3 実施例2で得た酵素液312mlを予め3mM NaN3
を含む0.01Mリン酸緩衝液(PH6.0)で平衡化し
たDEAE−セフアデツクスA−50(フアルマシ
ア・フアインケミカルズ社製)にバツチ法で吸着
させた後、0.1M NaClを含む同緩衝液で十分に洗
浄した。その後、0.3M NaClを含む同緩衝液で酵
素活性画分を溶出し、6.5の酵素液を得た。 この酵素液をメンブラン濃縮器(米国アミコン
社、PM−10)で限外濾過を行ない、407mlの酵素
溶液を得た。この溶液の活性は123単位/mlであ
つた。 実施例 4 実施例3で得られた酵素液407mlを予め3mM
NaN3を含む0.05Mリン酸緩衝液(PH6.8)で平衡
化したDEAE−セフアロースCL−6B(フアルマ
シア・フアインケミカルズ社製)の5.5cm×42.5
cmのカラムに注ぎ、カラムを同緩衝液で十分に洗
浄した後、0〜0.8M NaClの直線グラジエント溶
出を行ない、N〓−カルボベンゾキシアルギニン
分解活性画分140mlを得、これをポリエチレング
リコールで濃縮して88.5mlの酵素液を得た。この
酵素液の活性は813単位/mlであつた。 実施例 5 実施例4で得た酵素液88.5mlを予め3mMNaN3
を含む0.05Mリン酸緩衝液(PH6.8)で平衡化し
た。DEAE−セフアデツクスA−50(フアルマシ
ア・フアインケミカルズ社製)の5cm×63.5cmの
カラムに注ぎ、カラムを同緩衝液で十分洗浄した
後、同緩衝液を用い0〜0.8M NaClの直線グラジ
エント溶出を行ない、N〓−ベンジルオキシアル
ギニン分解活性画分153mlを得、これをポリエチ
レングリコールで濃縮して38mlの酵素液を得た。
この酵素液の活性は1409単位/mlであつた。 実施例 6 実施例5で得た酵素液38mlを予め3mM NaN3
を含む0.05Mリン酸緩衝液(PH6.8)で平衡化し
たセフアデツクスG−150(フアルマシア・フア
インケミカルズ社製)の2.6cm×95cmのカラムに
注ぎ、同緩衝液で溶出を行なつた。N〓−ベンジ
ルオキシアルギニン分解活性画分75mlを得た。本
酵素液の活性は752単位/mlで、蛋白量は3.4mg/
mlであつた。 上記精製工程における全活性、比活性、収率を
第4表に示す。
第1図はN〓−カルボベンゾキシ−L−アルギ
ニンアミドヒドロラーゼの作用最適PHを示す図で
ある。第2図はN〓−カルボベンゾキシ−L−ア
ルギニンアミドヒドロラーゼの作用温度を示す図
である。第3図はN〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼの4℃におけるPH
安定性を示す図である。第4図はN〓−カルボベ
ンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼの
PH6.5における熱安定性を示す図である。
ニンアミドヒドロラーゼの作用最適PHを示す図で
ある。第2図はN〓−カルボベンゾキシ−L−ア
ルギニンアミドヒドロラーゼの作用温度を示す図
である。第3図はN〓−カルボベンゾキシ−L−
アルギニンアミドヒドロラーゼの4℃におけるPH
安定性を示す図である。第4図はN〓−カルボベ
ンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラーゼの
PH6.5における熱安定性を示す図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 一般式: 〔式中、Rはカルボベンゾキシ基、核置換基を
有するカルボベンゾキシ基、またはベンゾイル基
を表わす〕で示される、α−アミノ基が保護され
たL−アルギニンに作用し、アルギニンを生成す
る、以下の特性を有するN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ: 基質特異性: 上記α−アミノ基が保護されたL−アルギニンに
特異的に作用し、同じ保護基で保護されたD−ア
ルギニンには作用しない。 至適PH:6.0〜6.8 作用適温:25〜40℃ 分子量:約200000 等電点:5.0 活性化:Mn,Co,Cdイオンで活性化 阻害:Fe,Cu,Hgで阻害される 2 ラクトバシラス属から得られる第1項記載の
N〓−カルボベンゾキシ−L−アルギニンアミド
ヒドロラーゼ。 3 DISC電気泳動がRm=0.43である第1項記載
のN〓−カルボベンゾキシ−L−アルギニンアミ
ドヒドロラーゼ。 4 ラクトバシラス属に属し、一般式: 〔式中、Rはカルボベンゾキシ基、核置換基を
有するカルボベンゾキシ基、またはベンゾイル基
を表わす〕で示される、α−アミノ基が保護され
たL−アルギニンに作用し、アルギニンを生成す
る、以下の特性を有するN〓−カルボベンゾキシ
−L−アルギニンアミドヒドロラーゼ生産能を有
する菌株を培地に培養し、培養物より新規なN〓
−カルボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒド
ロラーゼを採取することを特徴とするN〓−カル
ボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラー
ゼの製法: 基質特異性: 上記α−アミノ基が保護されたL−アルギニン
に特異的に作用し、同じ保護基で保護されたD−
アルギニンには作用しない。 至適PH:6.0〜6.8 作用適温:25〜40℃ 分子量:約200000 等電点:5.0 活性化:Mn,Co,Cdイオンで活性化 阻害:Fe,Cu,Hgで阻害される 5 菌株がラクトバシラス・フアーメンテイであ
る第4項記載の製造法。 6 菌株を培養し、得られた菌体を中性PHの緩衝
液中で破壊し、破壊物の抽出液を塩析し、沈澱物
を中性PHの緩衝液に溶解後、同緩衝液で透析する
ことにより行う第4項記載の製法。 7 採取を、第6項記載の透析液をアニオン交換
液体クロマトグラフイーで処理し、その活性画分
を限外濾過し、その濃縮液を採取することにより
行う第4項記載の製法。 8 採取を、第7項記載の限外濾過濃縮液を吸着
クロマトグラフイーにかけ、その活性画分を所望
により濃縮することにより行う第4項記載の製
法。 9 採取を、第8項記載の活性画分またはその濃
縮液をアニオン交換液体クロマトグラフイーにか
け、その活性画分を所望により濃縮することによ
り行う第4項記載の製法。 10 採取を、第9項記載の活性画分またはその
濃縮液をさらに、ゲル濾過クロマトグラフイーに
かける第9項記載の製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7853583A JPS59203493A (ja) | 1983-05-04 | 1983-05-04 | Nα−カルボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラ−ゼおよびその製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7853583A JPS59203493A (ja) | 1983-05-04 | 1983-05-04 | Nα−カルボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラ−ゼおよびその製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS59203493A JPS59203493A (ja) | 1984-11-17 |
| JPS6152679B2 true JPS6152679B2 (ja) | 1986-11-14 |
Family
ID=13664600
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP7853583A Granted JPS59203493A (ja) | 1983-05-04 | 1983-05-04 | Nα−カルボベンゾキシ−L−アルギニンアミドヒドロラ−ゼおよびその製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS59203493A (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2622837B2 (ja) * | 1987-05-29 | 1997-06-25 | 東レ・モノフィラメント株式会社 | 釣 糸 |
-
1983
- 1983-05-04 JP JP7853583A patent/JPS59203493A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS59203493A (ja) | 1984-11-17 |
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