JPS6156093A - ヒト白血球インタ−フエロンα−2の製造方法 - Google Patents

ヒト白血球インタ−フエロンα−2の製造方法

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JPS6156093A
JPS6156093A JP60152567A JP15256785A JPS6156093A JP S6156093 A JPS6156093 A JP S6156093A JP 60152567 A JP60152567 A JP 60152567A JP 15256785 A JP15256785 A JP 15256785A JP S6156093 A JPS6156093 A JP S6156093A
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plasmid
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tetracycline
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ユリ ドミトリエビチ ツシガンコフ
アンドレイ ユリエビチ チストセルドフ
エフゲニ ダビドビチ スベルドロフ
ララ セメノフナ イゾトバ
セルゲイ ビクトロビチ コストロフ
ビクトル エミリエビチ ステルキン
ウラジミール パフロビチ クズネツソフ
セルゲイ バシリエビチ ベルヤエフ
ガリナ セルゲエフナ モナステイルスカヤ
イリナ セルゲエフナ サロマテイナ
グリゴリ ミハイロビチ ドルガノフ
セルゲイ ガギコビチ アルセニアン
セルゲイ アナトリエビチ ツサレク
ユリ イバノビチ コズラフ
アレキサンドル ヤコフレビチ ストロンギン
フセボロド イバノビチ オガルコフ
ユリ アナトリエビチ オフチンニコフ
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FUSESO N ISUSUREDO INST GENETE
FUSESO N ISUSUREDO INST GENETEIKI I SEREKUTSUII PUROMIISHIRENNIIFU MIKUROORUGANIZUMOFU FUNIIGENETEIKA
INSUCHI BIOORUGANICHIESUKOI CH
INSUCHI BIOORUGANICHIESUKOI CHEM IMENI M M SHIEMIYAKINA AN SSR
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    • C07K14/56IFN-alpha
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 この発明は微生物工業に関し、そして特に、抗ウィルス
活性を有しそして相当広範囲のウィルス性疾患の予防及
び治療のための医療的用途ををするヒト白血球インター
フェロンα−2の製造に関する。
〔従来の技術〕
インターフェロンは、ウィルス6Dに反応して特定のヒ
ト細胞により合成される蛋白質である。
生産細胞のタイプ、並びにインターフェロンの(1・1
造的及び機能的特徴に依存して、これらGよ3種類の基
本的タイプ、すなわち白血球により産生されるαインタ
ーフェロン又は白血球インターフェロン、線維芽細胞に
より産生されるβインターフェロン又は線維芽細胞イン
ターフェロン、及びT−リンパ球により産生されるTイ
ンターフェロン又は免疫インターフェロンに分類するこ
とができる。
これらのインターフェロンの抗ウィルス活性のほかに、
インターフェロンはまた抗増殖活性を特徴とし、そして
さらに免疫反応に影響を与える。
このため、幾つかの悪性新生物の治療のための潜在的に
効果的な手段としてインターフェロンヲ基礎にした薬剤
に注目することが可能である。今まで、ヒトインターフ
ェロンの非常に精製された調製物が製造されており、こ
れらは確かに13〜15個の密接に関連する蛋白群であ
り、それぞれが染色体9中のそれ自CFの11・1造追
伝子によりコードされている。しかしながら、供与体血
液からの白血球インターフェロンのii’t xltは
、広範囲の臨床的用途のために十分な遣での製造をもた
らさない。なぜなら、血液β当りのインターフェロン含
量は一般に10’ I’it1以内であり、他方患者に
静脈注射するためのインターフェロンの単位有効投与量
は、試験的な臨床1dliから10bAU以上であるか
らである。
技術の現状において、ヒト白血球インターフェロンの種
々のF!遣方法が知られており、これらの方法は、ベク
ター分子によりヒトインターフェロンの個々の遺伝子が
導入された微生物の種々の株を生産株として使用するこ
とに基KEを置いている。
特に、生産株としてニジエリシア・コリ (Escbe
r−ichia coli) 、バシルス・ズブチ・リ
ス(Baci I 1ussubtilis) 、メチ
ロフィルス・メチロトロブス(Methylophil
us meLylotrophus)等の細面株が使用
される(ヨーロッパ特許EP隘0062971八2.1
982年公表1Int、CI’、Cl2N 15100
を参照のこと)。
ヒト白血球インターフェロンの挿入された遺伝子を有す
るプラスミドを含有する微生物は、資化性炭素源及び窒
素源、無機塩並びに増殖因子を含有する栄養培地中で液
中好気的条件下で培養された場合にインターフェロンを
産生ずる。
ヒト白血球インターフェロンα−2の製造方法が知られ
ており(英国特許ぬ2,079.291A、 1982
年公開、C1,Cl2N 15100)、この方法にお
いては、E。
コリのトリプトファンオペロンの制御頭載の制御のもと
にインターフェロンα−2の遺伝子が存在する組換プラ
スミドpLelFAけp2,5の挿入により得られたE
、コリに一12株294が使用される。
前記の株が、炭素源及び窒素源、無機塩並びに増殖促進
因子を含有する栄養培地中で、抗生物質の存在下で液中
条件下で培養される。
前記の生産菌のインターフェロン収量は培養液i当り 
2.5 xlO” A Uテア4゜しかしながら、工業
的生産株としてのE、コリの使用は幾つかの欠点を有す
る。E、コリは従来病原性微生物であると考えられ、他
方この細菌の種々の株はヒトの腸菌叢中に永久的に存在
する。
このことは、E、コリにより製造される薬剤の精製並び
に蛋白質不純物及びエンドトキシンの完全分層1につい
て特に厳格な要求を課し、今度はこのことがインターフ
ェロンの製造を非常に高価なものとし、そして純最終生
成物の収量に悪い影響を与える。さらに、E、コリの今
まで知られている実験室株はすべてファージ溶解に対し
て感受性であり、E、コリに特異的な同定されたファー
ジの株は数百に及ぶ。
さらに、前記の方法においては培養物の生産性が比較的
低く、このため菌体からのインターフェロンの単離、及
びこれに続く、均一状態が得られるまでの精製は手数の
かかる方法である。
〔発明が解決しようとする問題点〕
この発明の第1の目的は、ヒト白血球インターフェロン
α−2の高い収量及びそのj:lLNのための単純化さ
れた方法を提供することである。
C問題点を解決するための手段〕 この発明の上記の目的は次の方法により達成される。す
なわち、ヒト白血球インターフェロンα−2の挿入され
た遺伝子を有するプラスミドを含有する生産株を、炭素
源及び窒素源、無機塩、並びに増殖促進物質を含有する
培地中で、抗生物質の存在下で液中培養し、次に目的生
成物をJtl離しそして精製することによりヒト白血球
インターフェロンα−2を製造する方法において、この
発明に従えば、生産菌としてプラスミドpvc3を担持
するシェードモナス(Pseudoa+onas)sp
、VG−84(ソ連邦抗生物質研究所(USSRAnt
ibiotics RsearchInstitute
)の微生物培養物収集所に登録番号NQ 1742とし
て寄託されている〕を 使用し、この生産株を抗生物質
、すなわちストレプトマイシンもしくはテトラサイクリ
ン、又はこの両者の混合物の存在下で培養する。
テトラサイクリンは30〜50tag/lの量で使用し
、そしてストレプトマイシンを50〜150a+g/ 
lの量で使用するのが好ましい。
この発明の方法は、シュードモナスsp、VG−84の
新規な高生産性味を使用するため、目的生成物の高収量
、及びその単離のための単純化された方法を達成するた
めに有用である。
〔操 作〕
この発明の方法に従えば、新規な菌株シェードモナスs
p、VG−84が使用され、この菌株においては、ヒト
白血球インターフェロンα−2の遺伝子が多コピープラ
スミドpVG3の部分として、バクテリオファージφX
174の遺伝子りの制JBwi域の制御のもとにクロー
ン化されている。
プラスミドpVG3は、広範囲の宿主の多コピーベクタ
ープラスミドpAYC34と、レプリコンpBR322
及びインターフェロンα−2の遺伝子を含存しそしてテ
トラサイクリン及びアンピシリンに対する細胞の耐性を
担当するプラスミドplFN−α2−P2との分子雑種
である。プラスミドplFN−α2−P2中のインター
フェロンα−2の遺伝子はバクテリオファージφX17
4の遺伝子りの制m%X域の制御のもとにある。9.4
kbのベクタープラスミドpAYC34は不和合性基I
nc P−4/Qに関連し、そしてストレプトマイシン
に対する細胞耐性を決定する。プラスミドpAYC34
及びprFN−α2−P2のDNAをPs Llで処理
し、次に連結混合物を用いてE、コリC600株のコン
ピテント細胞を形質転換した0次に形質転換体を、抗生
物質、)なわちアンピシリン(50μ/1ll)、スト
レプトマイシン(100μ/1ll)及びテトラサイク
リン(25μ/lal )を含有する完全栄養培地上で
選択した。サイズ及び制限地図に関してプラスミドRA
YC34及びplFN−α2−P2のバイブリドに相当
するρVG3と称するプラスミドDNAが形質転換体ク
ローン中に見出された。プラスミドpVG3はpAYC
34と同様にストレプトマイシンに対する細胞耐性を決
定し、そしてplFN−α2−P2と同様にテトラサイ
クリン及びアンピシリンに対する細胞耐性を決定する。
プラスミドpVG3のサイズは14.8kbと同じであ
り、そしてプラスミドplFN−α2− P 2 (5
,4kb)及び9^YC34(9,4kb)のヌクレオ
チドの合計を成す。
接合性(conjugative)広宿主域プラスミド
R751を、バイブリドプラスミドpVG3を含有する
E、コリC600株の1つに挿入した。プラスミドpV
G3がシュードモナス属の細菌又は幾つかの他のダラム
陰性細菌に移されたのは一連の接合性交差(conju
gative cross)を通してである。次に、ト
ランスコンシュガント(transconjuganL
)細菌を前記の抗生物質を含有する選択培地から取り出
し、そしてインターフェロンを合成する能力について試
験した。
次に、上記の方法により得られた培養物を、通気及び攪
拌のもとで、30℃にてL−ブロス中で6〜10時間、
2〜5×10雫細胞/mlの細胞濃度が得られるまで培
養する0次に、細菌を遠心分離により集め、超音波によ
り破砕し、そして細胞抽出物中のインターフェロン含量
をラジオイムノアッセイにより決定した。エシェリヒア
(Enoherichia) 、サルモネラ(Salm
onella) 、シェードモナス(Pseudoso
nas)、メチロモナス(Methylo−n+ona
s) 、エルウィニア(Erwinia) %及びリゾ
ビウム(Rhizobium) 属に関するダラム陰性
細菌の合計18株を試験した9gkも高い生産性により
特徴的なのはシェードモナスsp、VG−84株であっ
た。す\なわち、前記の条件下で、この株は培養液11
当り5×109〜i xio”auのインターフェロン
を生産することが見出された。
シュードモナスsp、VG−84株は、ソ連邦抗性物質
研究所(USSRAntibiotics Re5ea
rch In5tttute)の微生物収集所に登録番
号ff11742のもとに寄託された。プラスミドpV
G3を担持するシュードモナスsp、 VG−84株の
増殖及び形態学的特徴は次の通りである。
顕微鏡的形態:iiI!動性グ動性グラム陰性桿菌−5
μm。
種々の培地中での形態: 牛肉エキス寒天=25℃〜30℃で24時間、培養した
後、直径3〜4mmのラ フで不規則な縁を有し、ラ フな表面を有し薄縁色のコ ロニーを形成する。
牛肉エキス液体培地: 穿刺接種の後、培地(基質) の主として表面上で、中程 度の増殖を示す。通気しな ければ弱く増殖する。
グルコースを伴う最小栄養培地閂デ: 培養の2日目に直径2〜3 m1t+の円形のラフな灰色のコ ロニーを形成する。
生理学的及び生化学的特徴: p H7,0において25℃〜35 ℃、最適には30℃におい て増殖する。グルコース及 びアラビノースを資化する。
窒素#:良く資化する。ア デニンを要求する。テトラ サイ゛クリン及びストレプト マイシンに耐性である。
この発明の方法は、次のようにして行われる。
シュードモナスsp、VG−84株を寒天を加えた栄養
培地中で28℃〜30°Cにて8〜12時間培養し、次
にこれを液体栄養培地に再接種し、そして接種物十強力
な攪拌及び通気のもとて3〜6時間、28℃にて培養す
る。発酵は、発酵装置において、この目的のために適当
でありそして炭素源及び窒素源、無機塩、並びに増殖因
子を含有する任意の液体栄養培地中で、例えばグルコー
ス、酵母エキスもしくは自己消化物、トリプトン、ペプ
トン、又はカゼインもしくは酵母の加水分解物、又はこ
れらの混合物を含有する栄養培地中で行う。発酵は、抗
生物質、すなわちストレプトマイシンもしくはテトラサ
イクリン、又はこの両者の混合物の存在下で行う、テト
ラサイクリンを30〜5hg/jlの量で使用し、そし
てストレプトマイシンを50〜150mg/lの量で使
用するのが好ましい。発酵過程は6〜10時間、28℃
〜32℃において、そして6.7〜7.1の範囲のpH
値において、強力な攪拌のもとで行う0発酵中、細菌懸
澗液の光学濃度/l5soを測定する。発酵過程の終り
までに光学濃度の値は5〜7光学光学色なる。
上記の培養条件のもとで、ラジオイムノアッセイにより
、又はヒト線維芽細胞培養に対する抗ウィルス活性の決
定により証明されるインターフェロンの収量は、培養液
11当り5X10’〜1.5×10”AUの範囲である
発酵過程が完了しそして前記の光学濃度が達成された後
、細菌細胞を遠心分離に、より集め、適当な緩衝液に再
懸湧し、そして超音波処理により、又は細胞の破砕もし
くは細胞膜の破壊をもたらす他の任意の技法、例えばリ
ゾチームによる処理、ガラス又は金属球を用いる破砕技
法、フレンチプレスの使用等により破砕する。次に、細
胞片を遠心分離し、次にインターフェロンを細胞抽出液
である上清百分から、蛋白質の百分及び精製のための常
法を用いて単離す、る。種々の物理化学的方法により示
される均一なインターフェロンの収率は20〜60%で
あり、精製比は200〜500倍であり、そしてこうし
て精製された最終生成物の比活性は4 XIO” Al
lである。精製の過程は、チャレンジウィルスとして水
庖性口内炎ウィルスを用いるヒト線維芽細胞培養物に対
する抗ウィルス活性の決定及びRIA又はELISAに
より監視する。精製によって得られるインターフェロン
標品の純度は、免疫的方法、電へ泳動法、ゲル濾過法及
び沈降法により、並びに単離された最終生成物のアミノ
酸組成及びN−末端アミノ酸配列の決定により試験する
。こうして得られた、ヒト白血球インターフェロンα−
2の均一調製物は、このタイプのインターフェロンに特
異的な構造的及び機能的特徴のすべてを示す。
この発明の方法は、新規な高生産性株の使用により高レ
ベルの活性が達成される点において公知の方法に比べて
有利である。すなわち、少ない量の菌体から同し量のイ
ンターフェロンを得ることができ、このことが、菌体分
離及び破砕、並びに均一な生成物を製造するためのすべ
てのその後の操作のためのコストを低減するために寄与
する。
エドマン自動N−末端配列決定によれは、生産株シュー
ドモナスsp、VC−84の菌体から単離された均一な
インターフェロンはN−末端アミノ酸配列Cys−^5
p−Leu−Pro−Glu−Thr−11is−Se
r−・=を特徴とし、そしてN−末端メチオニン残基を
含有せず、従って、ヒト白血球から産生されるインター
フェロン−2と完全に同一である。
〔具体例〕
この発明の理解を助長するため、次に、ヒト白血球イン
ターフェロンα−2の製造方法の実際的な具体例を記載
する。
汎−上 シュードモナス5pJG−84株を28°Cにて12時
間、次の組成の固体寒天培地上で培養するニドリプトン
Log/j!、酵母エキス5g/I!、アデニン80+
ng/j! 、グルコース10g/(!、ストレプトマ
イシン150mg/l 、テトラサイクリン50繭g/
l、IEにする蒸留水、寒天15g/l。上記の寒天培
地上で培養した菌体を使用して接種物を調製する。
この目的のために細胞を、上記の培地(寒天不合)10
0mlを収容する750 m lのエルレンマイヤーフ
ラストに移し、そして激しい攪拌(240rpm)のも
と28℃にて6時間、振とう機上で培養する。接種培養
物の光学濃度を2光学単位にする。
培養工程を、温度、pH,m、拌速度及び通気制御系、
並びに溶存酸素の分圧を測定するための圧力センサーを
装着した発酵装置中で行う、この目的のため、接種培養
物を5%の比率で、上記の組成(寒天不合)を存する栄
養基質を収容する発酵装置に入れ、そして28±0.5
℃、6.7〜6.9のpH値にて、強い通気及び攪拌の
もとて6時間増殖せしめる。培養物の増殖が溶存酸素の
濃度に限定されないように、この目的のため酵素の分圧
が5〜10%飽和レベルに維持されるように通気及び攪
拌条件を選択する。pH値を安定化するためアンモニア
液を使用する。
菌体の増殖を培養液の光学濃度の測定により監視する。
光学濃度は1時間に1回の頻度で測定する。光学濃度A
ss。が5光学単位に達するとすぐ発酵を停止する。
発酵工程の終了後、ヒト白血球インターフェロンα−2
の濃度は培養液11当り1.5X101o^υに等しい
。こうして得られたインターフェロンの濃度を決定する
ため、抗−インターフェロンラビットポリクローナル抗
体及び+251アイソトープによりラベルされたネズミ
モノクローナル 坑体を使用するRIAの固相変法を使
用する。さらに、インターフェロンの抗ウィルス活性を
、ヒト2倍体綿維芽細胞の培養物上に生成した水底性口
内炎ウィルスの細胞変性作用に対する保護効果により決
定する。比較標品としてインターフェロン標準MRCB
69/19 (英国)を使用する。
発酵の後に遠心分離により集めた細胞をインターフェロ
ン源として使用する。この細胞を7.50pH値を有す
る0、 1 II Tris−緩衝液中に懸濁しく5〜
10m1の緩衝液当り1gの細胞)、そして超音波破砕
層中で破砕する。細胞片を3o、oo6x gでの遠心
分離により分離し、そして上清百分(細胞抽出物)から
均一なヒト白血球インターフェロンα−2を単離する。
これに続く精製の結果として電気泳動的に均一なヒト白
血球インターフェロンα−2を得る。精製比は210.
収率41%(活性について)であり、そして比活性は4
. OX 10” AUである。添付した図面はヒト白
血球インターフェロンα−2の電気泳動分析のデータを
示し、この図においてAは精製前のインターフェロン標
品について示し、Bは精製後のインターフェロン標品に
ついて示し、そして比較蛋白質の分子量をKDとして図
の右側に示す、電気泳動は12.5%のポリアクリルア
ミドゲル中ドデシル硫酸ナトリウムの存在下で行う、比
活性、分子if (18,4KD) 、アミノ酸組成、
及び他のたヒト白血球α−2と異らない。
■−1 例1に記載したのと同様の方法を行う、生産菌を、抗生
物質の存在下、すなわち50wg/lのストレプトマイ
シン及び30mg/lのテトラサイクリンの存在下で増
殖せしめる。6時間の発酵経過の後、細菌懸濁液の光学
濃度は4.2光学車位に等しく、他方11の培養液が7
.5 X to” AUのヒト白血球インターフェロン
α−2を含有する。
■−1 例1と同様の方法を行う、生産株を、50wg/j!の
量の抗生物質テトラサイクリンの存在下・で増殖せしめ
る。
5.5時間の発酵経過の後、細菌懸濁液の光学濃度は5
.5光学A1位に等しく、他方Hの培養液当りのインタ
ーフェロンの濃度は9.5 X 109 AUである。
〔発明の効果〕
この発明の方法は、目的生成物の高収量及びその単離の
ための単純化された方法を達成するために有用である。
【図面の簡単な説明】
第1図は精製前(A)及び精製後(B)のインターフェ
ロン調製物のゲル電気泳動図を示す。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、ヒト白血球インターフェロンα−2の製造方法であ
    って、ヒト白血球インターフェロンα−2の挿入された
    遺伝子を有するプラスミドpVG3を担持する生産株シ
    ュードモナス(Pseudomonas)sp.〔ソ連
    邦抗生物質研究所(USSR Antibiotics
     Res−earch Institute)の微生物
    培養物収集所に登録番号No.1742として寄託され
    ている〕を、炭素源及び窒素源、無機塩、並びに増殖促
    進物質を含有する栄養培地中で、通気しながら、抗生物
    質、例えばストレプトマイシンもしくはテトラサイクリ
    ン又はこの両者の混合物の存在下で液内培養し、次に目
    的生成物を単離および精製することを特徴とする方法。 2、テトラサイクリンを30〜50mg/lの量で使用
    し、そしてストレプトマイシンを50〜150mg/l
    の量で使用する特許請求の範囲第1項記載の方法。
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