JPS619292A - L−アミノ酸の製造方法 - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、アミノ酸のN−カルバミル体から微生物酵素
系を利用して相当するL−アミノ酸を製造する方法に関
する。
系を利用して相当するL−アミノ酸を製造する方法に関
する。
従来、微生物酵素系を利用したDL−Pi−カルバミル
アミノ酸よシのL−アミノ酸の製造方法については、D
L−N−カルバミルメチオニンよシのL−メチオニンの
製造法が知られている(特公昭55−2967B号)。
アミノ酸よシのL−アミノ酸の製造方法については、D
L−N−カルバミルメチオニンよシのL−メチオニンの
製造法が知られている(特公昭55−2967B号)。
本発明の目的は、微生物酵素系を利用して、N−カルバ
ミルアミノ酸から、L−メチオニン以外の有用な特定の
L−アミノ酸を製造する方法を提供することにある。
ミルアミノ酸から、L−メチオニン以外の有用な特定の
L−アミノ酸を製造する方法を提供することにある。
本発明を概説すれば、本発明はL−アミノル酸の製造方
法に関する発明であって、L−N−カルバミルアミノ酸
のカルバミル基を不斉的に加水分解する能力を有するシ
ュードモナス属微生物の培養液、菌体又は菌体処理物を
、下記一般式l: 畷 NH! で表される基を示す)で表されるN−カルバミルアミノ
酸のDL一体又はL一体に作用させ、生成した和尚する
L−アミノ酸を採取することを特徴とする。
法に関する発明であって、L−N−カルバミルアミノ酸
のカルバミル基を不斉的に加水分解する能力を有するシ
ュードモナス属微生物の培養液、菌体又は菌体処理物を
、下記一般式l: 畷 NH! で表される基を示す)で表されるN−カルバミルアミノ
酸のDL一体又はL一体に作用させ、生成した和尚する
L−アミノ酸を採取することを特徴とする。
本発明方法で使用するN−カルバミルアミノ酸は、フェ
ニルアラニン、トリプトファン、チロシン、セリン、グ
ルタミン酸、バリン、イソロイシン又はヒスチジンの各
DL−若しくはL−N−カルバミル体である。
ニルアラニン、トリプトファン、チロシン、セリン、グ
ルタミン酸、バリン、イソロイシン又はヒスチジンの各
DL−若しくはL−N−カルバミル体である。
本発明方法の原料は、公知の物質であるか、公知の方法
によって得ることができるものであシ、例えばD L
−N−カルバミルアミノ酸は、DL−アミノ酸にシアン
化カリウム等を反応させる公知の方法で、またアミノ酸
のDL−ヒダントイン誘導体を適当な条件で加水分解す
る方法で得ることができる。
によって得ることができるものであシ、例えばD L
−N−カルバミルアミノ酸は、DL−アミノ酸にシアン
化カリウム等を反応させる公知の方法で、またアミノ酸
のDL−ヒダントイン誘導体を適当な条件で加水分解す
る方法で得ることができる。
次に本発明方法で使用するシュードモナス属(Pseu
domonaa )微生物としては、その培養液をその
まま用いることもできるが、生菌体、凍結菌体、凍結乾
燥菌体又は菌体磨砕物若しくは ′菌体抽出物の
ような菌体処理物を使用してもよい。また、変異処理に
よシ性能の向上した変異株なども、よシ効果的に使用で
きることはいうまでもない。
domonaa )微生物としては、その培養液をその
まま用いることもできるが、生菌体、凍結菌体、凍結乾
燥菌体又は菌体磨砕物若しくは ′菌体抽出物の
ような菌体処理物を使用してもよい。また、変異処理に
よシ性能の向上した変異株なども、よシ効果的に使用で
きることはいうまでもない。
上記シュードモナス属微生物のうちで好適な例としては
、本発明者等が自然界から新たに分離した新菌種でおる
、シュードモナス属DK−910菌株(FIRM P−
7473)がある。
、本発明者等が自然界から新たに分離した新菌種でおる
、シュードモナス属DK−910菌株(FIRM P−
7473)がある。
以下、上記DK−910菌株の菌学的諸性質を示す。
1、 形 態
(1) 細胞の形及び大きさ二〇、2〜α3 X 1
.2〜五5μm。
.2〜五5μm。
桿菌
(2) 多形性の有無: 無
(3)運動性の有無: 有
(419毛の有無、着生状態: 有、極毛(5)胞子の
有無: 無 (6) グラム染色性: 陰性(7)抗 酸
性: 無 Z 各培地での生育状態 (1) 肉汁寒天平板培養 コロニー〇色: 白クリーム色 コロニーの形状二 円形 コロニーの隆起: 中央凸状 コロニーの周縁: 金縁 (2) 肉汁寒天斜面培養 生育状態二 適度 光 沢: 有、半透明 形 状: 糸状 (3) 肉汁液体培養 混濁の程度二 適度、均一に濁る 沈 殿: 有 液面での生育:薄い膜形成 (4) 肉汁ゼラチン穿刺培養: 液化しない(5)
リドマス・ミルク: −液化しない、アルカリ変 五 生理学的性質 (1)硝酸塩の還元: 有 (2)脱窒反応二 陽 (3)MRテスト: 陰 (4) VPテスト: 陰 (5)インドールの生成: 陰 (6)硫化水素の生成: 陽 (7) デンプンの加水分解: 陰(8) クエ
ン酸の利用: コーナー(Koser )培地及びクリ
ステンセン (Ohrietensen)培地 共利用する (9) 無機窒素源の利用:硝酸塩及びアンモニウム
塩共利用する (IQ 色素の生成: 無(1〃 ウレ
アーゼ: 陰(2) オキシダーゼ:
陽 (至) カタラーゼ: 陽 α尋 酸素に対する態度: 好気性 (至)生育の範囲 温 度= 15〜36℃1)H:
5.1〜9.6 αQ OFテスト: 酸化的(oziaative
)l αη 糖類からの酸及びガスの生成の
有無糖 類 酸 、ガス ■ L−アラビノース − − ■ D−’キシロース + −■ D−グルコ
ース − − ■ D−マンノース ± − ■ D−フラクトース − − ■ D−ガラクトース − − の 麦芽糖 −− ■ ショ糖 −− ■乳糖 −− [相] トレハロース −− 〇 D−ソルビット −− o D−マンニット −− [相] イノフット − −[相] グリ
セリン −− (至) DMA分解性: 陽 α坤 カゼイン分解性: 陰 翰 耐塩性: Na062 %で生育、5%で不生育 e優 炭化水素の資化性 ■ p−ヒドロキシ安息香酸 − ■ グルコン酸 十 ■乳酸 十 ■酢酸 十 ■ グルコース 十 〇 ショ糖 十 の キシロース − 〇 ラクトース − ■ マンニット − 以上の菌学的諸性質を、パージエイ式分類[Barge
プs Manual of determina
tive bacte−riO10g7 (第8版)
(1974)参照〕に基づいて検索すると、上記DK−
910菌株は(1)グラム陰性、桿菌(2)運動性を有
し極上を有す(3)好気性(4)硝酸塩を還元(5)脱
窒能陽性(6)オキシダーゼ陽性などから、シュードモ
ナス属に属する細菌であることが判明した。
有無: 無 (6) グラム染色性: 陰性(7)抗 酸
性: 無 Z 各培地での生育状態 (1) 肉汁寒天平板培養 コロニー〇色: 白クリーム色 コロニーの形状二 円形 コロニーの隆起: 中央凸状 コロニーの周縁: 金縁 (2) 肉汁寒天斜面培養 生育状態二 適度 光 沢: 有、半透明 形 状: 糸状 (3) 肉汁液体培養 混濁の程度二 適度、均一に濁る 沈 殿: 有 液面での生育:薄い膜形成 (4) 肉汁ゼラチン穿刺培養: 液化しない(5)
リドマス・ミルク: −液化しない、アルカリ変 五 生理学的性質 (1)硝酸塩の還元: 有 (2)脱窒反応二 陽 (3)MRテスト: 陰 (4) VPテスト: 陰 (5)インドールの生成: 陰 (6)硫化水素の生成: 陽 (7) デンプンの加水分解: 陰(8) クエ
ン酸の利用: コーナー(Koser )培地及びクリ
ステンセン (Ohrietensen)培地 共利用する (9) 無機窒素源の利用:硝酸塩及びアンモニウム
塩共利用する (IQ 色素の生成: 無(1〃 ウレ
アーゼ: 陰(2) オキシダーゼ:
陽 (至) カタラーゼ: 陽 α尋 酸素に対する態度: 好気性 (至)生育の範囲 温 度= 15〜36℃1)H:
5.1〜9.6 αQ OFテスト: 酸化的(oziaative
)l αη 糖類からの酸及びガスの生成の
有無糖 類 酸 、ガス ■ L−アラビノース − − ■ D−’キシロース + −■ D−グルコ
ース − − ■ D−マンノース ± − ■ D−フラクトース − − ■ D−ガラクトース − − の 麦芽糖 −− ■ ショ糖 −− ■乳糖 −− [相] トレハロース −− 〇 D−ソルビット −− o D−マンニット −− [相] イノフット − −[相] グリ
セリン −− (至) DMA分解性: 陽 α坤 カゼイン分解性: 陰 翰 耐塩性: Na062 %で生育、5%で不生育 e優 炭化水素の資化性 ■ p−ヒドロキシ安息香酸 − ■ グルコン酸 十 ■乳酸 十 ■酢酸 十 ■ グルコース 十 〇 ショ糖 十 の キシロース − 〇 ラクトース − ■ マンニット − 以上の菌学的諸性質を、パージエイ式分類[Barge
プs Manual of determina
tive bacte−riO10g7 (第8版)
(1974)参照〕に基づいて検索すると、上記DK−
910菌株は(1)グラム陰性、桿菌(2)運動性を有
し極上を有す(3)好気性(4)硝酸塩を還元(5)脱
窒能陽性(6)オキシダーゼ陽性などから、シュードモ
ナス属に属する細菌であることが判明した。
このDK−91’0菌株を大量に得る培養法としては、
通常の通気液体培養等の公知方法で十分で、培地には該
微生物が資化し゛うる炭素源、窒素源、無機塩及び微量
有機栄養源が含まれる。
通常の通気液体培養等の公知方法で十分で、培地には該
微生物が資化し゛うる炭素源、窒素源、無機塩及び微量
有機栄養源が含まれる。
更に、DL−又はL−カルバミルフェニルアラニンなど
を゛少量添加すれば酵素活性が増強される。培養は例え
ば、pH4〜N、温度15〜40℃の条件下で5〜12
0時間行えばよい。
を゛少量添加すれば酵素活性が増強される。培養は例え
ば、pH4〜N、温度15〜40℃の条件下で5〜12
0時間行えばよい。
本発明方法の反応条件について以下説明する一1f、N
−カルバミルアミノ酸の使用濃度は、0.1〜50重i
チ、pH4〜N、好ましくはpH6〜9の範囲で良好な
結果を得る。この範囲外では酵素活性の発現及び安定性
の点で実用上適さない。反応の進行に伴ってpHは変動
するため、適当な中和剤で所望のpHに維持することが
望ましい。反応温度は15〜50℃の範囲がよく、また
、反応系に少量の金属イオン、例えばMn074、Co
o/!4等をN〜10 mM程度添加すれば反応性に良
い結果を与える。
−カルバミルアミノ酸の使用濃度は、0.1〜50重i
チ、pH4〜N、好ましくはpH6〜9の範囲で良好な
結果を得る。この範囲外では酵素活性の発現及び安定性
の点で実用上適さない。反応の進行に伴ってpHは変動
するため、適当な中和剤で所望のpHに維持することが
望ましい。反応温度は15〜50℃の範囲がよく、また
、反応系に少量の金属イオン、例えばMn074、Co
o/!4等をN〜10 mM程度添加すれば反応性に良
い結果を与える。
反応液からL−アミノ酸を分離するKは、例えば菌体等
の不溶物を遠心分離等によシ除去後の上清を、H型強酸
性カチオン樹脂に通しL−アミノ酸を吸着後、アンモニ
ア水で溶出し、更に濃縮、冷却してL−アミノ酸を結晶
で得ることができる。
の不溶物を遠心分離等によシ除去後の上清を、H型強酸
性カチオン樹脂に通しL−アミノ酸を吸着後、アンモニ
ア水で溶出し、更に濃縮、冷却してL−アミノ酸を結晶
で得ることができる。
以下、本発明を実施例によシ更に具体的に説明するが、
本発明はこれらに限定されるものではない。なお、特に
断わらない限り、各例中の%は重量%である。
本発明はこれらに限定されるものではない。なお、特に
断わらない限り、各例中の%は重量%である。
実施例1
グルコースα5%、酵母エキスα29b、I)ン酸水素
二ナトリウムα1%、リン酸二水素カリウムn、osl
、硫酸マグネシウムCLO5%を含む培地(pH75)
5−を試験管に分注し、120℃で15分間滅菌した。
二ナトリウムα1%、リン酸二水素カリウムn、osl
、硫酸マグネシウムCLO5%を含む培地(pH75)
5−を試験管に分注し、120℃で15分間滅菌した。
これに別に殺菌し7’cDL−N−カルバミルフェニル
アラニンを、最終濃度がα05%になるように添加した
後、シュードモナス属DK−910菌を接種し、30℃
で24時間振とり培養した。この培養液より1 菌
体を遠心分離して集め、同量の生理食塩水で洗浄後、各
別に下記第1表に記載のL−N−カルバミルアミノ酸α
1M及び塩化マンガン(15mMを含むNM)リス塩酸
緩衝液(pH7,5)5−中に懸濁させ、35℃で10
時間反応させた。[tel生成物をバイオアッセイ〔フ
ェニルアラニン、トリプトファン、チロシン、グルタミ
ン酸、インロイシン及びバリンの定量には、ラクトバチ
ルス・アラビノザス(Lactobaaillusar
abinosus )ムTOO8014を、またヒスチ
ジン及びセリンの定量にはストレプトコッカス・ファエ
カリス(8treptococcus fajcali
s )ムTo。
アラニンを、最終濃度がα05%になるように添加した
後、シュードモナス属DK−910菌を接種し、30℃
で24時間振とり培養した。この培養液より1 菌
体を遠心分離して集め、同量の生理食塩水で洗浄後、各
別に下記第1表に記載のL−N−カルバミルアミノ酸α
1M及び塩化マンガン(15mMを含むNM)リス塩酸
緩衝液(pH7,5)5−中に懸濁させ、35℃で10
時間反応させた。[tel生成物をバイオアッセイ〔フ
ェニルアラニン、トリプトファン、チロシン、グルタミ
ン酸、インロイシン及びバリンの定量には、ラクトバチ
ルス・アラビノザス(Lactobaaillusar
abinosus )ムTOO8014を、またヒスチ
ジン及びセリンの定量にはストレプトコッカス・ファエ
カリス(8treptococcus fajcali
s )ムTo。
8043 を用いた〕とHPLOによシ定量し九結果
を第1表に示す。両分桁値が一致したことから、いずれ
の場合も、目的生成物は相当するL−アミノ酸と確認し
た。
を第1表に示す。両分桁値が一致したことから、いずれ
の場合も、目的生成物は相当するL−アミノ酸と確認し
た。
第 1 表
実施例2
培地100wItを含む500+d容の三角フラスコを
用いる以外は実施例1と同様に培養して得た菌体を、下
記第2表に記載のDL−N−カルノくミルアミノ酸α2
M及び塩化マンガン1 mMを含む0.1 M )リス
塩酸緩衝液(pH7,0)100−中に懸濁させ、50
℃で20時間反応させた。
用いる以外は実施例1と同様に培養して得た菌体を、下
記第2表に記載のDL−N−カルノくミルアミノ酸α2
M及び塩化マンガン1 mMを含む0.1 M )リス
塩酸緩衝液(pH7,0)100−中に懸濁させ、50
℃で20時間反応させた。
遠心分離による除菌後の上清を、強酸性カチオン樹脂ア
ンバーライトエR−120(H型、ロームアンドハース
社製)に通し吸着させ、水洗後、0.5Nアンモニア水
で溶出させた。濃縮後、冷却して結晶を析出させた。こ
れを再結晶し、乾燥して、HPLO%TLO,バイオア
ッセイ、NMR及び旋光度分析を行ったところ、第2表
に示すように、各相補するL−アミノ酸の標品と一致す
ることを確認した。
ンバーライトエR−120(H型、ロームアンドハース
社製)に通し吸着させ、水洗後、0.5Nアンモニア水
で溶出させた。濃縮後、冷却して結晶を析出させた。こ
れを再結晶し、乾燥して、HPLO%TLO,バイオア
ッセイ、NMR及び旋光度分析を行ったところ、第2表
に示すように、各相補するL−アミノ酸の標品と一致す
ることを確認した。
第 2 表
N5N塩酸溶液
実施例3
実施例1におけるD1.+−N−カルバミルアミノ酸な
L−N−カルバミルアミノ酸に変えた以外は実施例1と
同様な操作を行って、和尚するL−アミノ酸の結晶を得
た。これらの分析結果は、標品のL−アミノ酸と一致し
喪。結果を下記第3表に示す。
L−N−カルバミルアミノ酸に変えた以外は実施例1と
同様な操作を行って、和尚するL−アミノ酸の結晶を得
た。これらの分析結果は、標品のL−アミノ酸と一致し
喪。結果を下記第3表に示す。
第 3 表
実施例4
実施例2と同様にして得た洗浄掬体を、塩化マンガン1
mMを含む(LIMトリス塩酸緩衝液(pH2O)2
0d中に懸濁させた。この懸濁液を、水冷下において、
20 kHzの超音波で3分間3回処理して、菌体破砕
液を調髪した。こ(DiK、DL−41−カルバミルフ
ェニルアラニンをα2MKなるように添加し、30℃で
20時間反応させた。反応後、不溶物を遠心除去して得
た上清中のアミノ酸を、HLP O及びバイオアッセイ
した結果、生成物は、L−フェニルアラニンと確認した
。
mMを含む(LIMトリス塩酸緩衝液(pH2O)2
0d中に懸濁させた。この懸濁液を、水冷下において、
20 kHzの超音波で3分間3回処理して、菌体破砕
液を調髪した。こ(DiK、DL−41−カルバミルフ
ェニルアラニンをα2MKなるように添加し、30℃で
20時間反応させた。反応後、不溶物を遠心除去して得
た上清中のアミノ酸を、HLP O及びバイオアッセイ
した結果、生成物は、L−フェニルアラニンと確認した
。
実施例5
実施例1と同様に30℃で24時間培養した培養液に、
DL−N−カルバミルフェニルアラニンを0,1Mにな
るように添加し、30℃で更に20時間振とうを続けた
。遠心分離による除菌後の上清中のアミノ酸を、HLP
C!及びバイオアッセイした結果、生成物はL−フェニ
ルアラニンと確認した。
DL−N−カルバミルフェニルアラニンを0,1Mにな
るように添加し、30℃で更に20時間振とうを続けた
。遠心分離による除菌後の上清中のアミノ酸を、HLP
C!及びバイオアッセイした結果、生成物はL−フェニ
ルアラニンと確認した。
以上説明したように、本発明によれば、各種のN−カル
バミルアミノ酸のL一体を、シュードモナス属微生物に
より、効率良く、相当するL−アミノ酸に変換すること
かで−きる。
バミルアミノ酸のL一体を、シュードモナス属微生物に
より、効率良く、相当するL−アミノ酸に変換すること
かで−きる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、L−N−カルバミルアミノ酸のカルバミル基を不斉
的に加水分解する能力を有するシュードモナス属微生物
の培養液、菌体又は菌体処理物を、下記一般式 I : ▲数式、化学式、表等があります▼…〔 I 〕 (式中Rは、式▲数式、化学式、表等があります▼、▲
数式、化学式、表等があります▼、 ▲数式、化学式、表等があります▼、▲数式、化学式、
表等があります▼、▲数式、化学式、表等があります▼
、 ▲数式、化学式、表等があります▼、▲数式、化学式、
表等があります▼、又は▲数式、化学式、表等がありま
す▼ で表される基を示す)で表されるN−カルバミルアミノ
酸のDL−体又はL−体に作用させ、生成した相当する
L−アミノ酸を採取することを特徴とするL−アミノ酸
の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12926084A JPS619292A (ja) | 1984-06-25 | 1984-06-25 | L−アミノ酸の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12926084A JPS619292A (ja) | 1984-06-25 | 1984-06-25 | L−アミノ酸の製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS619292A true JPS619292A (ja) | 1986-01-16 |
Family
ID=15005166
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP12926084A Pending JPS619292A (ja) | 1984-06-25 | 1984-06-25 | L−アミノ酸の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS619292A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6324894A (ja) * | 1986-07-16 | 1988-02-02 | Ajinomoto Co Inc | アミノ酸の製造法及びアミノ酸生産菌 |
| US5863785A (en) * | 1992-10-05 | 1999-01-26 | Kanegafuchi Chemical Industry Co., Ltd. | Decarbamylase isolated from comamonas or blastobacter |
-
1984
- 1984-06-25 JP JP12926084A patent/JPS619292A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6324894A (ja) * | 1986-07-16 | 1988-02-02 | Ajinomoto Co Inc | アミノ酸の製造法及びアミノ酸生産菌 |
| US5863785A (en) * | 1992-10-05 | 1999-01-26 | Kanegafuchi Chemical Industry Co., Ltd. | Decarbamylase isolated from comamonas or blastobacter |
| US5902736A (en) * | 1992-10-05 | 1999-05-11 | Kanegafuchi Chemical Industry Co., Ltd. | Process for the production of D-α-amino acids by hydrolysis of the corresponding N-carbamyl derivative |
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