JPS62108821A - アルフア−1−プロテイナ−ゼ阻害剤の製造方法 - Google Patents
アルフア−1−プロテイナ−ゼ阻害剤の製造方法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/81—Protease inhibitors
- C07K14/8107—Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
- C07K14/811—Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
- C07K14/8121—Serpins
- C07K14/8125—Alpha-1-antitrypsin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
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- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤(al
pha−1−proteinase 1nhibit
or)(PI)を血漿または血漿分画から分離する新規
な方法に関し、なかでもそれを提供することを目的とす
る0本発明の他の目的は、以下の説明から明らかとなる
であろう、以下の説明において、部および百分率は、特
記しないかぎり、重量による。
pha−1−proteinase 1nhibit
or)(PI)を血漿または血漿分画から分離する新規
な方法に関し、なかでもそれを提供することを目的とす
る0本発明の他の目的は、以下の説明から明らかとなる
であろう、以下の説明において、部および百分率は、特
記しないかぎり、重量による。
アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤は分子量が54.
℃0の糖蛋白質である。この蛋白質は単一のポリペブト
ド鎖から成り、これにいくつかのオリゴ多糖栄位が共有
結合している。ヒトPIは内因性セリンブロテイナーゼ
類による組織の破壊においである役割を演する。血漿中
のトリプシン阻害f指力の90%に及ぶPIの遺伝的欠
損は、肺気腫の早期の発現に関連することが示された。
℃0の糖蛋白質である。この蛋白質は単一のポリペブト
ド鎖から成り、これにいくつかのオリゴ多糖栄位が共有
結合している。ヒトPIは内因性セリンブロテイナーゼ
類による組織の破壊においである役割を演する。血漿中
のトリプシン阻害f指力の90%に及ぶPIの遺伝的欠
損は、肺気腫の早期の発現に関連することが示された。
気腫に関連するエラスチンの退化は、弾力線維分解酵素
および天然に存在する組織および血漿のプロテイナーゼ
阻害剤類の局所的アンバランスから生ずる。PIはヒト
のパンクレアチンおよび白血球のエラスターゼを急速に
阻害する[バイオケミ?2、No、1.33−39ペー
ジ;1bid、、Vo1、88、N082.346−3
50.1979]。
および天然に存在する組織および血漿のプロテイナーゼ
阻害剤類の局所的アンバランスから生ずる。PIはヒト
のパンクレアチンおよび白血球のエラスターゼを急速に
阻害する[バイオケミ?2、No、1.33−39ペー
ジ;1bid、、Vo1、88、N082.346−3
50.1979]。
ある数の方法が血漿からPIを単離するために使用され
てきている。これらの方法の大部分は実験的規模の弔敲
に向けられたいるが、他の方法は商業的水準の生産に関
連する。
てきている。これらの方法の大部分は実験的規模の弔敲
に向けられたいるが、他の方法は商業的水準の生産に関
連する。
パンネル(pannel)ら、バイオケミストl)−(
Biochemistry)、Vo1、13.5439
−5445ページ、 (1974)は、アルブミンに劣
った血漿をプールし、そして固体の6d1mアンモニウ
ム(0、60−0、80(7)飽和)で分別する方法を
用いた。生ずる沈殿をrIT溶化し、透析し、そしてD
EAE−セルロースのカラムに適用した。0.05〜0
.15モルのNaclの直線の勾配中に溶離されるPI
の分画をブールレ、濃縮し、透析し4次いで再びDEA
E−セルロースのカラムに適用した。0.05〜0.2
0モルのNaC1の直線の勾配中に溶離されるPIの分
画を集め、プールし、そして濃縮してPIを得た。
Biochemistry)、Vo1、13.5439
−5445ページ、 (1974)は、アルブミンに劣
った血漿をプールし、そして固体の6d1mアンモニウ
ム(0、60−0、80(7)飽和)で分別する方法を
用いた。生ずる沈殿をrIT溶化し、透析し、そしてD
EAE−セルロースのカラムに適用した。0.05〜0
.15モルのNaclの直線の勾配中に溶離されるPI
の分画をブールレ、濃縮し、透析し4次いで再びDEA
E−セルロースのカラムに適用した。0.05〜0.2
0モルのNaC1の直線の勾配中に溶離されるPIの分
画を集め、プールし、そして濃縮してPIを得た。
サクラトバラ(Saklatvala)ら、バイオケミ
カル・ジャーナル(Biochem。
カル・ジャーナル(Biochem。
エユ)、Vo1、I57.339−351ページ(19
76)の方法において、ヒト血漿を硫酸アンモニウム(
80%の飽和)で分別して沈殿を形成し、これを溶解し
、透析し、そしてDEAE−セルロースのクロマトグラ
フィーにかけた。0゜5モルのNaCIの抽出液をコン
カナバリンA−セフ70−ス(S e p h a r
o s e)カラムに適用した。アルファ−D−メチ
ルグルコピラノシドの溶離液をemt、、、そして再び
DEAE−セルロースカラムに適用した。0.0−0.
2モルのNaC1溶離液はPIを含有した。
76)の方法において、ヒト血漿を硫酸アンモニウム(
80%の飽和)で分別して沈殿を形成し、これを溶解し
、透析し、そしてDEAE−セルロースのクロマトグラ
フィーにかけた。0゜5モルのNaCIの抽出液をコン
カナバリンA−セフ70−ス(S e p h a r
o s e)カラムに適用した。アルファ−D−メチ
ルグルコピラノシドの溶離液をemt、、、そして再び
DEAE−セルロースカラムに適用した。0.0−0.
2モルのNaC1溶離液はPIを含有した。
ムシアニ(Musiani)ら、バイオケミスhlJ−
(Biochem、)、Vo1、15.798−804
ページ(1976)は50%の飽和硫酸アンモニウムの
沈殿法を使用して、PIに富んだ分画を分離し、これを
可溶化し、次いでDEADイオン交換体、コンカナバリ
ンA−セファロース、セフ7デツクス(Sephade
x)G−1℃、および免疫吸着性カラムを使用する連続
的クロマトグラフィ一工程にかけて精製されたPIを得
た。
(Biochem、)、Vo1、15.798−804
ページ(1976)は50%の飽和硫酸アンモニウムの
沈殿法を使用して、PIに富んだ分画を分離し、これを
可溶化し、次いでDEADイオン交換体、コンカナバリ
ンA−セファロース、セフ7デツクス(Sephade
x)G−1℃、および免疫吸着性カラムを使用する連続
的クロマトグラフィ一工程にかけて精製されたPIを得
た。
ヒト血漿からの大規模の精製はクレス(K r eSS
)ら、プレパレイティプ・バイオケミスト1stry)
、Vo1、3、No、6.541−552 (1973
)に開示された。ヒト血漿の80%の硫酸アンモニウム
処理からの沈殿を透析し、モしてDEAE−セルロース
のクロマトグラフィーにかけた。得られたelli(物
を再び透析し、そしてセラデンクスG−Zooカラムで
ゲル挫過した。PI含有分画をDE−52セルロースの
クロマトグラフィーに2回かけてPIを得た。
)ら、プレパレイティプ・バイオケミスト1stry)
、Vo1、3、No、6.541−552 (1973
)に開示された。ヒト血漿の80%の硫酸アンモニウム
処理からの沈殿を透析し、モしてDEAE−セルロース
のクロマトグラフィーにかけた。得られたelli(物
を再び透析し、そしてセラデンクスG−Zooカラムで
ゲル挫過した。PI含有分画をDE−52セルロースの
クロマトグラフィーに2回かけてPIを得た。
グレイザー(G r a s e r)ら、1bid、
、Vo1、5、N014.333−348ページ(19
75)はPIをコーンフラクションIT−1から30%
の全体の収率で屯離した。溶解した■−1をDEAE−
セルロース、QAE−セファデックス、コンカナバリン
A−セファ0−ス、およびG1−150セフアデツクス
のクロマトグラフィーにかけた。
、Vo1、5、N014.333−348ページ(19
75)はPIをコーンフラクションIT−1から30%
の全体の収率で屯離した。溶解した■−1をDEAE−
セルロース、QAE−セファデックス、コンカナバリン
A−セファ0−ス、およびG1−150セフアデツクス
のクロマトグラフィーにかけた。
ポリエチレングリコール(PEG)に基づく統合された
血染分画系は、ハオ(Hao)ら、721977年9月
7−9日開催、米国バージニア州レストン、により開示
された0発表された方法において、コーン低温沈殿(c
ohn cyoprecipitate)を40g/
lの量のPEGと混合した。すべての作業は5°Cにお
いて実施された。
血染分画系は、ハオ(Hao)ら、721977年9月
7−9日開催、米国バージニア州レストン、により開示
された0発表された方法において、コーン低温沈殿(c
ohn cyoprecipitate)を40g/
lの量のPEGと混合した。すべての作業は5°Cにお
いて実施された。
60分間攪拌した後、第1分画を遠心により除去した。
追加の60 g/ lのPEGを上澄みに添加した(最
終濃度はぼ10%)。次いで、プロトロンビン複合体(
PT(c)を10%のPEG上澄みからバッチ式にDE
AE−セルロース上に吸着させることによって抽出し、
そして追加の1℃g/lのPEGを添加して10〜20
%のPEG沈殿を得た。このようにしてずjIられた4
つの分画は0〜4%のPEG沈殿、4〜10%のPEG
沈殿、10〜20%のPEG沈殿および20%のPEG
上澄みであり、そして分画A、B、CおよびDと表示さ
れた。これらのPEGc度は低温−L澄み(cryos
upernate)のもとの体積に基づくことを指摘す
べきである。
終濃度はぼ10%)。次いで、プロトロンビン複合体(
PT(c)を10%のPEG上澄みからバッチ式にDE
AE−セルロース上に吸着させることによって抽出し、
そして追加の1℃g/lのPEGを添加して10〜20
%のPEG沈殿を得た。このようにしてずjIられた4
つの分画は0〜4%のPEG沈殿、4〜10%のPEG
沈殿、10〜20%のPEG沈殿および20%のPEG
上澄みであり、そして分画A、B、CおよびDと表示さ
れた。これらのPEGc度は低温−L澄み(cryos
upernate)のもとの体積に基づくことを指摘す
べきである。
4つのPEG分画中の蛋白質類の分7τ工は次の通りで
あった:フィブリ/ダンは分画A中の主要蛋白質であり
、そしてアルブミンは主要な汚染物質であった。分画A
、BおよびC中の汚染アルブミンの大部分は、アルブミ
ン自体がこれらの条件下で沈殿しないので、共沈および
/または上澄みの連行から由来した。分画Bはプラスミ
ノゲン、補体の03成分、IgGおよびIgMに富んで
いた。さらに、ベーター脂蛋白質の゛j9実−1−全部
はこの分画中に存在した。分画Cは感知しうる量のアル
ファ2マクログロブリン、IgAを含有し、そシテプロ
トロンピンといわゆるプロトロンビン複合体を構成する
他の凝固因子とに富んでいた。しかしながら、著者が発
見したところによると、PTCのよりすぐれた収率は1
0〜20%のPEG沈殿からよりはむしろ10%のP
E G l澄みからイ11ることができた。分画りはア
ルムビンが主要比率を占めたが、またアルファ−1−酸
糖蛋白質のすへてならびにP1、抗トロンビンm (A
T■)、セルロプラスミン(cp)、ハプトグロビン、
トランスフェリン(Tf)およびCIエラスターゼ阻害
剤(cI阻害剤)の大部分を含有した。いく種類かの追
加の蛋白質類、例えば、プレアルブミン(FA)、
レチノール結合性蛋白質(RBP)、トランスコルチン
およびアンギオテンシノゲンも分画りから単離された。
あった:フィブリ/ダンは分画A中の主要蛋白質であり
、そしてアルブミンは主要な汚染物質であった。分画A
、BおよびC中の汚染アルブミンの大部分は、アルブミ
ン自体がこれらの条件下で沈殿しないので、共沈および
/または上澄みの連行から由来した。分画Bはプラスミ
ノゲン、補体の03成分、IgGおよびIgMに富んで
いた。さらに、ベーター脂蛋白質の゛j9実−1−全部
はこの分画中に存在した。分画Cは感知しうる量のアル
ファ2マクログロブリン、IgAを含有し、そシテプロ
トロンピンといわゆるプロトロンビン複合体を構成する
他の凝固因子とに富んでいた。しかしながら、著者が発
見したところによると、PTCのよりすぐれた収率は1
0〜20%のPEG沈殿からよりはむしろ10%のP
E G l澄みからイ11ることができた。分画りはア
ルムビンが主要比率を占めたが、またアルファ−1−酸
糖蛋白質のすへてならびにP1、抗トロンビンm (A
T■)、セルロプラスミン(cp)、ハプトグロビン、
トランスフェリン(Tf)およびCIエラスターゼ阻害
剤(cI阻害剤)の大部分を含有した。いく種類かの追
加の蛋白質類、例えば、プレアルブミン(FA)、
レチノール結合性蛋白質(RBP)、トランスコルチン
およびアンギオテンシノゲンも分画りから単離された。
一般に、より小さい蛋白質類の大部分は分画り中に存在
した。
した。
ファン(co a n)およびブロンクラエイ(Bt
ockway) 、米国特許第4,379,087弓お
よび同第4.439.358号は、血漿分画、例えば、
コーンフラクションIV−1からアルファ−1−プロテ
イナーゼ阻害剤を分離する方法を開示しており、この方
法において、血漿の水溶液を準備し、この溶液を約6.
5〜8.5のpHおよび約2〜50℃の温度に約0.2
〜4時間の間保持し、この溶液をある量のポリ縮合ポリ
グリコール、例えば、溶液の容積に基づいて、約8−1
O%〜約23%(w/v)の範囲の量のポリエチレング
リコールと約4.6〜約7.5の範囲のpHにおいて混
合し、ここでポリ縮合ポリグリコールの州をpHの0.
5の増加につき約2〜3%で増加する。好ましい実施1
店様において、特許された方法において、コーンフラク
ション■−1を含有する水溶液の1℃ m lにつき約
10〜15gのポリ縮合ポリグリコールをpH4,6〜
57において使用し、ポリ縮合ポリグリコールの部列血
漿分画の部の比は約2=1〜1:1である。アルファ−
1−プロテイナーゼiLI害剤は、生じた混合物をポリ
縮合ポリグリコール処理から遠心分離し、そして上澄み
溶液から回収し、得られたト澄み溶液をアニオン交換樹
脂とpH約5.5〜8.6において接触させ、そしてア
ルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤をアニオン交換樹脂
から選択的に溶離することによって、得られた混合物か
ら分離される。あるいは、アルファ−1−プロテイナー
ゼrll害剤は、混合物を遠心分離した後、ポリ踪:!
リグリコールをさらに添加してアル7.・・1−プロテ
イナーゼ阻害剤を混合物から沈殿させることによって分
離することができる。
ockway) 、米国特許第4,379,087弓お
よび同第4.439.358号は、血漿分画、例えば、
コーンフラクションIV−1からアルファ−1−プロテ
イナーゼ阻害剤を分離する方法を開示しており、この方
法において、血漿の水溶液を準備し、この溶液を約6.
5〜8.5のpHおよび約2〜50℃の温度に約0.2
〜4時間の間保持し、この溶液をある量のポリ縮合ポリ
グリコール、例えば、溶液の容積に基づいて、約8−1
O%〜約23%(w/v)の範囲の量のポリエチレング
リコールと約4.6〜約7.5の範囲のpHにおいて混
合し、ここでポリ縮合ポリグリコールの州をpHの0.
5の増加につき約2〜3%で増加する。好ましい実施1
店様において、特許された方法において、コーンフラク
ション■−1を含有する水溶液の1℃ m lにつき約
10〜15gのポリ縮合ポリグリコールをpH4,6〜
57において使用し、ポリ縮合ポリグリコールの部列血
漿分画の部の比は約2=1〜1:1である。アルファ−
1−プロテイナーゼiLI害剤は、生じた混合物をポリ
縮合ポリグリコール処理から遠心分離し、そして上澄み
溶液から回収し、得られたト澄み溶液をアニオン交換樹
脂とpH約5.5〜8.6において接触させ、そしてア
ルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤をアニオン交換樹脂
から選択的に溶離することによって、得られた混合物か
ら分離される。あるいは、アルファ−1−プロテイナー
ゼrll害剤は、混合物を遠心分離した後、ポリ踪:!
リグリコールをさらに添加してアル7.・・1−プロテ
イナーゼ阻害剤を混合物から沈殿させることによって分
離することができる。
本発明は、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤(文献
中で「アルファ−1抗l・リブシン」としてまた知られ
ている)を分離する新規な方法、ことに従来未知の源か
ら従来開示されているものよりも高い収−f’:でかつ
高い純度でアルファ−1−プロテイナーゼjf+害剤を
分離する新規な方法に関する。
中で「アルファ−1抗l・リブシン」としてまた知られ
ている)を分離する新規な方法、ことに従来未知の源か
ら従来開示されているものよりも高い収−f’:でかつ
高い純度でアルファ−1−プロテイナーゼjf+害剤を
分離する新規な方法に関する。
ここに記・成する発明は、工程:
(a)アルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を含有する
血漿蛋白質の水溶液を透析諸過(d i afiltr
ation)およびゲル濾過から選択される少なくとも
1つの−L段により処理して、前記溶液中の塩類の濃度
を低下させ、 (b)、hの工程(a)において得られた溶液を前記溶
液中のアルファ−1−プロイテナーゼ1ilt害剤に対
して選択的親和性を有するアニオン交換樹脂と接触させ
て、前記樹脂にアルファ−l−プロイテナーゼ阻害剤を
選択的に結合させかつ前記樹脂に結合しない血漿蛋白質
類を前記樹脂を通して第1溶離液中に溶離し、 (c)工程(b)から得られたアルファ−1−プロイテ
ナーゼBll害剤を選択的に結合して有するアニオン交
換樹脂を、アルファ−1−プロイテナーゼ■害剤を前記
樹脂から第2溶離液中に置換するために十分なイオン強
度を有する溶離剤と接触させ、そして (d)工程(c)から得られた前記第2溶離液からアル
ファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を回収する、 を含んでなることを特徴とするアルファ−1−プロイテ
ナーゼ阻害剤を含有する血漿蛋白質の水溶液からアルフ
ァ−1−プロイテナーゼ阻害剤を分離する方法である。
血漿蛋白質の水溶液を透析諸過(d i afiltr
ation)およびゲル濾過から選択される少なくとも
1つの−L段により処理して、前記溶液中の塩類の濃度
を低下させ、 (b)、hの工程(a)において得られた溶液を前記溶
液中のアルファ−1−プロイテナーゼ1ilt害剤に対
して選択的親和性を有するアニオン交換樹脂と接触させ
て、前記樹脂にアルファ−l−プロイテナーゼ阻害剤を
選択的に結合させかつ前記樹脂に結合しない血漿蛋白質
類を前記樹脂を通して第1溶離液中に溶離し、 (c)工程(b)から得られたアルファ−1−プロイテ
ナーゼBll害剤を選択的に結合して有するアニオン交
換樹脂を、アルファ−1−プロイテナーゼ■害剤を前記
樹脂から第2溶離液中に置換するために十分なイオン強
度を有する溶離剤と接触させ、そして (d)工程(c)から得られた前記第2溶離液からアル
ファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を回収する、 を含んでなることを特徴とするアルファ−1−プロイテ
ナーゼ阻害剤を含有する血漿蛋白質の水溶液からアルフ
ァ−1−プロイテナーゼ阻害剤を分離する方法である。
本発明による方法におけるアルファ−1−プロテイナー
ゼ阻害剤の新規な源は、コーンエフルエン ト (co
hn Eff 1uent) II+m 、コ
ーンエフルエン)Iおよび低温上澄み溶液(cryos
upernatant 5oluti。
ゼ阻害剤の新規な源は、コーンエフルエン ト (co
hn Eff 1uent) II+m 、コ
ーンエフルエン)Iおよび低温上澄み溶液(cryos
upernatant 5oluti。
n)から成る群より選択されるアルファ−1−プロイテ
ナーゼ阻害剤を含有する血漿蛋白質の水溶液である。
ナーゼ阻害剤を含有する血漿蛋白質の水溶液である。
本発明による方法の主要な利点は、先行技術において報
告された多くの方法にょリイ1?られたPIに収−4<
と比・咬したとき、血ζ17中のPIの合計?+1から
の収−イlで表わして、PIの回収率が高いということ
である。
告された多くの方法にょリイ1?られたPIに収−4<
と比・咬したとき、血ζ17中のPIの合計?+1から
の収−イlで表わして、PIの回収率が高いということ
である。
他の利点は本発明による方jノ、により得られるPIの
純度が高いことであり、この方法によれば、先行技術の
方法においてPIと一緒に不必習な汚染物質として頻繁
に回収される他の血82蛋白質類の分離が増大される。
純度が高いことであり、この方法によれば、先行技術の
方法においてPIと一緒に不必習な汚染物質として頻繁
に回収される他の血82蛋白質類の分離が増大される。
前述のように、本発明による方法の出発物質はアルファ
−1−プロイテナーセBIi害剤を含有する血漿蛋白質
の水溶液である。好ましくは、PIを含有する水溶液は
コーンエフルエント丁工+■、コーンエフルエントエお
よび低温1i16み溶液から成る群より選択される。コ
ーンエフルエンl−II +mおよびコーンエフルエン
)Iは、コーンエタノール分画技術またはその変法に従
い血漿を分画するおとによって得ることができる。例え
ば、E、J コーン(co h n)ら、ジャーナル
・オブ拳アメリカン・ケミカルφソサイアティ (J。
−1−プロイテナーセBIi害剤を含有する血漿蛋白質
の水溶液である。好ましくは、PIを含有する水溶液は
コーンエフルエント丁工+■、コーンエフルエントエお
よび低温1i16み溶液から成る群より選択される。コ
ーンエフルエンl−II +mおよびコーンエフルエン
)Iは、コーンエタノール分画技術またはその変法に従
い血漿を分画するおとによって得ることができる。例え
ば、E、J コーン(co h n)ら、ジャーナル
・オブ拳アメリカン・ケミカルφソサイアティ (J。
459 (1946);E、J 、コーン(cohn)
、米国特許第2,390,074号:オンクレイ(On
cley)ら、ジャーナルψオブ・アメリカン拳ケミカ
ル−ソサイアティ(J、Amer、 Chem、
Soc、)、71.541(1949);および「血漿
蛋白質類(ThePlasma Proteins)
」、第2版、Vo I 、m、548−550ページ、
アカデミツク舎プレス(Academic Pres
s)、ニューヨーク州ニューヨーク(1975)参照。
、米国特許第2,390,074号:オンクレイ(On
cley)ら、ジャーナルψオブ・アメリカン拳ケミカ
ル−ソサイアティ(J、Amer、 Chem、
Soc、)、71.541(1949);および「血漿
蛋白質類(ThePlasma Proteins)
」、第2版、Vo I 、m、548−550ページ、
アカデミツク舎プレス(Academic Pres
s)、ニューヨーク州ニューヨーク(1975)参照。
低温l:、澄み溶液は、新鮮な凍結血漿を5°C以下に
おいて融解し、残留する沈殿[「低温沈殿(cryop
recipitate)J と呼ぶ]を慣用の手段によ
り、通常遠心分離により除去し、そして上澄み溶液(「
低温上澄み溶液」)を本発明による方法における使用の
ため保持することによって得ることができる。例えば、
ミドう(Mitra)ら、米国特許第4.306.06
8号8照。
おいて融解し、残留する沈殿[「低温沈殿(cryop
recipitate)J と呼ぶ]を慣用の手段によ
り、通常遠心分離により除去し、そして上澄み溶液(「
低温上澄み溶液」)を本発明による方法における使用の
ため保持することによって得ることができる。例えば、
ミドう(Mitra)ら、米国特許第4.306.06
8号8照。
より好ましくは、出発物質として使用するPI含有水溶
液はコーンエフルエンl−II + IIIおよびコー
ンエフルエンl−Iから選択ごれる。最も好ましくは、
1[1発PI含有水溶液はコーンエフルエントII+丁
である。
液はコーンエフルエンl−II + IIIおよびコー
ンエフルエンl−Iから選択ごれる。最も好ましくは、
1[1発PI含有水溶液はコーンエフルエントII+丁
である。
前述のように、本発明による方υ、における第1−■工
程はP■含イj血漿蛋白質の出発水溶液を処理してこの
溶液のイオン強度を低下させること、すなわち、この水
溶液中の塩類を除去することであり、これによりPIは
アニオン交換樹脂に結合するであろう。好ましくは、出
発水溶液中の塩類の濃度は、約0.02モル以下、より
好ましくは約0.01モル以下に低下さ姓るへきであり
、そして水溶液を透析政過またはゲル6遇することによ
り、低下させることかできる。最も好ましくは水溶液を
透析iI!過してその中の塩類の濃瓜を低下させる。典
型的には、出発水溶液をアミコン(Amicon@)セ
ル中で慣用の枝11#iに従い透析濾過する。一般に、
第1工程は約2〜10’Cの温度および約6.0〜7.
0のpHにおいて実施する。典型的は条件は5°Cおよ
びpH6,5である。
程はP■含イj血漿蛋白質の出発水溶液を処理してこの
溶液のイオン強度を低下させること、すなわち、この水
溶液中の塩類を除去することであり、これによりPIは
アニオン交換樹脂に結合するであろう。好ましくは、出
発水溶液中の塩類の濃度は、約0.02モル以下、より
好ましくは約0.01モル以下に低下さ姓るへきであり
、そして水溶液を透析政過またはゲル6遇することによ
り、低下させることかできる。最も好ましくは水溶液を
透析iI!過してその中の塩類の濃瓜を低下させる。典
型的には、出発水溶液をアミコン(Amicon@)セ
ル中で慣用の枝11#iに従い透析濾過する。一般に、
第1工程は約2〜10’Cの温度および約6.0〜7.
0のpHにおいて実施する。典型的は条件は5°Cおよ
びpH6,5である。
出発水溶液がコーン分画技術により得られる血漿分画を
含有するとき、それはコーンエフルエント11+III
またはコーンエフルエントエであり、好ましくはその溶
液は初期の追加の工程において処理してそれをe縮しか
つコーン分画技術を使用することによりその溶液中に含
有されるアルコールを除去する。コーンエフルエントn
+mまたはコーンエフルエントエの水溶液をそのように
濃縮しかつその中のアルコールの実質的にすべてを除去
する1つの好ましい技術は、その水溶液を限外6過する
ことである。この限外癌過における温度およびpHの条
件は一般に前述の透析濾過について記載したものと同一
であり、ここで限外濾過膜はロミコン(Romicon
@)PM−10膜である。
含有するとき、それはコーンエフルエント11+III
またはコーンエフルエントエであり、好ましくはその溶
液は初期の追加の工程において処理してそれをe縮しか
つコーン分画技術を使用することによりその溶液中に含
有されるアルコールを除去する。コーンエフルエントn
+mまたはコーンエフルエントエの水溶液をそのように
濃縮しかつその中のアルコールの実質的にすべてを除去
する1つの好ましい技術は、その水溶液を限外6過する
ことである。この限外癌過における温度およびpHの条
件は一般に前述の透析濾過について記載したものと同一
であり、ここで限外濾過膜はロミコン(Romicon
@)PM−10膜である。
本発明による方法の第2工程は、塩濃度を低下させおよ
び心安に応じてアルコール濃度を低下させた溶液を、こ
の溶液中のPIに対して選択的親和性を有するアニオン
交換樹脂と接触させて1PIをこの樹脂に選択的に結合
させかつこの樹脂に結合しない血漿蛋白質をこの樹脂を
通して第1溶離液中に溶離させることである。アニオン
交換樹脂に結合しない血漿蛋白質類はPIを含有する組
成物中の成分として不必要であるが、第1溶離液は一般
に廃棄せず、むしろ、再処理してPIが意図されない用
途以外の他の治療または予防の用途を有する血漿蛋白質
を単離する。任意の7ニオン交換樹脂を使用できるが、
一般に第2工程において使用するために、アニオン交換
樹脂はポリガラクトース、ポリデキストランおよびセル
ロースの樹脂の群から選択される多糖類の吸着剤であり
、ここで多糖類の鎖は多糖類の鎖のグルコース単位へエ
ーテル結合により取り付けられたジエチルアミンエチル
基および第四エチル基から選択される正に4i7 ’r
[した基を有する。第2工程においてアニオン交換樹脂
として有用な適当な多糖類の吸着剤は、DEAE−セフ
ァロース(Sepharose ) 、 D E A
E −セフ yデックス(Sephadex)、DEA
E−セルロースおよびQAE−セファデックス[ファー
マシア・ファイン・ケミカルス(Pharmacia
Fine Chemicals)、米国ニュージャ
ーシイ州ビス力タウェイ]などのような商業的に入手可
能な樹脂を包含する。この工程は一般に約2〜10℃お
よびpH6,0〜7.0、典型的には約5℃およびpH
6,5において実施する。出発の水溶液および洗浄溶液
中の塩類の濃度は約0.02モルまで、好ましくは約0
.01モルまでであるべきである。
び心安に応じてアルコール濃度を低下させた溶液を、こ
の溶液中のPIに対して選択的親和性を有するアニオン
交換樹脂と接触させて1PIをこの樹脂に選択的に結合
させかつこの樹脂に結合しない血漿蛋白質をこの樹脂を
通して第1溶離液中に溶離させることである。アニオン
交換樹脂に結合しない血漿蛋白質類はPIを含有する組
成物中の成分として不必要であるが、第1溶離液は一般
に廃棄せず、むしろ、再処理してPIが意図されない用
途以外の他の治療または予防の用途を有する血漿蛋白質
を単離する。任意の7ニオン交換樹脂を使用できるが、
一般に第2工程において使用するために、アニオン交換
樹脂はポリガラクトース、ポリデキストランおよびセル
ロースの樹脂の群から選択される多糖類の吸着剤であり
、ここで多糖類の鎖は多糖類の鎖のグルコース単位へエ
ーテル結合により取り付けられたジエチルアミンエチル
基および第四エチル基から選択される正に4i7 ’r
[した基を有する。第2工程においてアニオン交換樹脂
として有用な適当な多糖類の吸着剤は、DEAE−セフ
ァロース(Sepharose ) 、 D E A
E −セフ yデックス(Sephadex)、DEA
E−セルロースおよびQAE−セファデックス[ファー
マシア・ファイン・ケミカルス(Pharmacia
Fine Chemicals)、米国ニュージャ
ーシイ州ビス力タウェイ]などのような商業的に入手可
能な樹脂を包含する。この工程は一般に約2〜10℃お
よびpH6,0〜7.0、典型的には約5℃およびpH
6,5において実施する。出発の水溶液および洗浄溶液
中の塩類の濃度は約0.02モルまで、好ましくは約0
.01モルまでであるべきである。
第1工程からの溶液はアニオン交換樹脂と任意の適当な
方法、例えば、塊状法およびカラムクロマトグラフィー
法により接触させることができるが、カラムクロマトグ
ラフィー法の使用は一派にいっそう便利である。
方法、例えば、塊状法およびカラムクロマトグラフィー
法により接触させることができるが、カラムクロマトグ
ラフィー法の使用は一派にいっそう便利である。
出発水溶液中のPIがアニオン交換樹脂との接触および
それへの結合により溶液から吸着されかつこの溶液中に
存在する他の血漿蛋白質類が樹脂を通して溶離されかつ
樹脂が慣用の技術により洗浄された後、第2工程(b)
から得られたアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を選
択的に結合して有するアニオン交換樹脂を、アルファ−
1−プロテイナーゼ阻害剤を前記樹脂から第2溶離液中
に置換するために十分なイオン強度を有する溶離剤と接
触させる。広義には、アルファ−1−プロテイナーゼ阻
害剤をアニオン交換樹脂から置換するために十分なイオ
ン強度を有する溶離剤は、約0.02モモル〜約0.3
モルの範囲の濃度および約5.5〜約8.6の範囲のp
Hを有する水溶性無機塩および水溶性有機塩から成る群
より選択される少なくとも1種の構成員を含有する水性
緩衝溶液である。より好ましくは、本発明による方法の
第3工程(c)において使用する溶離剤は無機塩の水溶
液である。より好ましくは、この工程において使用する
溶離剤を約0.02〜約0.1モルの範囲の濃度を有し
、そしてpH約6.0〜約7.0であろう、一般に1
この工程の間の温度は約2〜10℃、典型的には5℃で
ある。
それへの結合により溶液から吸着されかつこの溶液中に
存在する他の血漿蛋白質類が樹脂を通して溶離されかつ
樹脂が慣用の技術により洗浄された後、第2工程(b)
から得られたアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を選
択的に結合して有するアニオン交換樹脂を、アルファ−
1−プロテイナーゼ阻害剤を前記樹脂から第2溶離液中
に置換するために十分なイオン強度を有する溶離剤と接
触させる。広義には、アルファ−1−プロテイナーゼ阻
害剤をアニオン交換樹脂から置換するために十分なイオ
ン強度を有する溶離剤は、約0.02モモル〜約0.3
モルの範囲の濃度および約5.5〜約8.6の範囲のp
Hを有する水溶性無機塩および水溶性有機塩から成る群
より選択される少なくとも1種の構成員を含有する水性
緩衝溶液である。より好ましくは、本発明による方法の
第3工程(c)において使用する溶離剤は無機塩の水溶
液である。より好ましくは、この工程において使用する
溶離剤を約0.02〜約0.1モルの範囲の濃度を有し
、そしてpH約6.0〜約7.0であろう、一般に1
この工程の間の温度は約2〜10℃、典型的には5℃で
ある。
本発明による方法における最終工程は、前述の第3工程
において得られた第2溶離液からPIを比較的高い収率
で回収することである。これはいくつかの手段の1つに
よって達成することができる。好ましくは、第2溶離液
からPIを回収するために有用な技術はポリエチレング
リコール(PEG)およびポリプロピレングリコール(
PPG)から選択されるポリ縮合ポリアルキレングリコ
ールと接触させることによる。いずれを使用することも
できるが、入手容易性(例えば、ユニオン舎カーバイド
・コーポレーションから)の理由で、PEGは好ましい
。このPEGは約2℃〜20.℃0、好ましくは約2,
℃0〜10゜℃0、 より好ましくは約3.℃0〜8
,℃0、最も好ましくは約3.℃0〜約4 、℃0の分
子量を有することができる。
において得られた第2溶離液からPIを比較的高い収率
で回収することである。これはいくつかの手段の1つに
よって達成することができる。好ましくは、第2溶離液
からPIを回収するために有用な技術はポリエチレング
リコール(PEG)およびポリプロピレングリコール(
PPG)から選択されるポリ縮合ポリアルキレングリコ
ールと接触させることによる。いずれを使用することも
できるが、入手容易性(例えば、ユニオン舎カーバイド
・コーポレーションから)の理由で、PEGは好ましい
。このPEGは約2℃〜20.℃0、好ましくは約2,
℃0〜10゜℃0、 より好ましくは約3.℃0〜8
,℃0、最も好ましくは約3.℃0〜約4 、℃0の分
子量を有することができる。
こうして、アルファ−l−プロテイナーゼ阻害剤は、(
1)まず第2溶離液を、第2溶離液の容積に基づいて、
約10%〜約20%(w/v)のポリ縮合ポリアルキレ
ングリコールと約4.6〜5.7の範囲のpHおよび約
2℃〜約10℃の温度において約1分〜約1時間の間接
触させ、そして生ずる沈殿を分離しかつ生ずる上澄み溶
液を保持し、次いで(2)保持された上澄み溶液を、第
2溶離液の容IΔに基づいて、約8〜約15w/v%の
追加のポリ縮合ポリアルキレングリコールと約4.6〜
5.7の範囲のpHおよび約2℃〜約10’Oの温度に
おいて約1分〜約1時間の間接触させ、そしてアルファ
−1−プロイテナーゼ阻害剤を含有する得られた沈殿を
保持することによって、第2溶離液から回収することが
できる。
1)まず第2溶離液を、第2溶離液の容積に基づいて、
約10%〜約20%(w/v)のポリ縮合ポリアルキレ
ングリコールと約4.6〜5.7の範囲のpHおよび約
2℃〜約10℃の温度において約1分〜約1時間の間接
触させ、そして生ずる沈殿を分離しかつ生ずる上澄み溶
液を保持し、次いで(2)保持された上澄み溶液を、第
2溶離液の容IΔに基づいて、約8〜約15w/v%の
追加のポリ縮合ポリアルキレングリコールと約4.6〜
5.7の範囲のpHおよび約2℃〜約10’Oの温度に
おいて約1分〜約1時間の間接触させ、そしてアルファ
−1−プロイテナーゼ阻害剤を含有する得られた沈殿を
保持することによって、第2溶離液から回収することが
できる。
あるいは、上の第1ポリアルキレングリコールの添加か
ら保持された上澄み溶液を追加のポリアルキレングリコ
ールと接触させる代わりに、得られる保持された上澄み
溶液または緩衝溶液中で再構成された生ずるPI含有沈
殿の溶液を、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤に対
する親和性を有するアニオン交換樹脂と接触させ、次い
でアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を置換するため
に十分なイオン強度を有する溶離剤とアニオン交換樹脂
を接触させてアルファ−l−プロテイナーゼ阻害剤を含
有する生ずる第3溶離液を得ることによって、アルファ
−1−プロテイナーゼ阻害剤をアニオン交換樹脂から溶
離することができる。この別法に従い、本発明により第
2工程(b)においてアニオン交換樹脂にPIを吸若さ
せそしてそれをアニオン交換樹脂から溶離することに関
して前述したアニオン交換樹脂および条件を使用するこ
とができる。
ら保持された上澄み溶液を追加のポリアルキレングリコ
ールと接触させる代わりに、得られる保持された上澄み
溶液または緩衝溶液中で再構成された生ずるPI含有沈
殿の溶液を、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤に対
する親和性を有するアニオン交換樹脂と接触させ、次い
でアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を置換するため
に十分なイオン強度を有する溶離剤とアニオン交換樹脂
を接触させてアルファ−l−プロテイナーゼ阻害剤を含
有する生ずる第3溶離液を得ることによって、アルファ
−1−プロテイナーゼ阻害剤をアニオン交換樹脂から溶
離することができる。この別法に従い、本発明により第
2工程(b)においてアニオン交換樹脂にPIを吸若さ
せそしてそれをアニオン交換樹脂から溶離することに関
して前述したアニオン交換樹脂および条件を使用するこ
とができる。
もちろん、追加のポリアルキレングリコール沈殿からの
PI含有沈殿を適当な緩衝溶液中に溶解し、次いでこれ
を別のアニオン交換樹脂処理に付すことができる。
PI含有沈殿を適当な緩衝溶液中に溶解し、次いでこれ
を別のアニオン交換樹脂処理に付すことができる。
先行技術は、汗通の血漿蛋白質沈殿剤および親和クロマ
トグラフィー技術を単独であるいは特定の組み合わせで
使用して、コーンフラクション■−1および低温沈殿を
含む血漿分画を処理することによってPIを単離するこ
とを開示しているが、本発明による方法は従来未知の源
および同様によく既知の源からPIを高い収率でかつ高
い純度で得る手段を提供する。
トグラフィー技術を単独であるいは特定の組み合わせで
使用して、コーンフラクション■−1および低温沈殿を
含む血漿分画を処理することによってPIを単離するこ
とを開示しているが、本発明による方法は従来未知の源
および同様によく既知の源からPIを高い収率でかつ高
い純度で得る手段を提供する。
こうして、本発明の他の面は、工程:
(i)アルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を含有する
血漿分画の水溶液を、前記水溶液の容積に基づいて、約
10%〜約35%(w/V)のポリ縮合ポリアルキレン
グリコールと約4.6〜5.7の範囲のpHおよび約2
℃〜約10℃の温度において約1〜24時間の間接触さ
せて、水溶液からアルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤
を沈殿させないで不必果な蛋白質類を選択的に沈殿させ
、そして (11)工程(i)において得られた溶液からアルファ
−l−プロイテナーゼ阻害剤を分離する、 を含んでなるアアルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を
含有する血漿分画の水溶液からアルファ−1−プロイテ
ナーゼ阻害剤を分離する方法において、 (a)血漿蛋白質の水溶液を処理して、その中の血漿蛋
白質を濃縮し、出発水溶液中に存在する実質的にすべて
の水溶性血漿蛋白質沈殿剤を除去し、そして水溶液のイ
オン強度を低下させ、(b)工程(a)からの溶液をア
ルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤に対して選択的親和
性を有するアニオン交換樹脂と接触させて、前記樹脂に
アルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を選択的に結合さ
せかつ前記樹脂に結合しない血漿蛋白質類を前記樹脂を
通して第1溶離液中に溶離し、(c)工程(b)から得
られたアルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を選択的に
結合して有するアニオン交換樹脂を、アルファ−1−プ
ロイテナーセ阻害剤を前記樹脂から第2溶離液中に置換
するために1゛分なイオン強度を有する溶離剤と接触さ
せる、 を含んでなり、 前記第2溶離液は1−の工程(1)および(i i)に
従い処理された水溶液からなる、 ことを特徴とする方法である。
血漿分画の水溶液を、前記水溶液の容積に基づいて、約
10%〜約35%(w/V)のポリ縮合ポリアルキレン
グリコールと約4.6〜5.7の範囲のpHおよび約2
℃〜約10℃の温度において約1〜24時間の間接触さ
せて、水溶液からアルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤
を沈殿させないで不必果な蛋白質類を選択的に沈殿させ
、そして (11)工程(i)において得られた溶液からアルファ
−l−プロイテナーゼ阻害剤を分離する、 を含んでなるアアルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を
含有する血漿分画の水溶液からアルファ−1−プロイテ
ナーゼ阻害剤を分離する方法において、 (a)血漿蛋白質の水溶液を処理して、その中の血漿蛋
白質を濃縮し、出発水溶液中に存在する実質的にすべて
の水溶性血漿蛋白質沈殿剤を除去し、そして水溶液のイ
オン強度を低下させ、(b)工程(a)からの溶液をア
ルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤に対して選択的親和
性を有するアニオン交換樹脂と接触させて、前記樹脂に
アルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を選択的に結合さ
せかつ前記樹脂に結合しない血漿蛋白質類を前記樹脂を
通して第1溶離液中に溶離し、(c)工程(b)から得
られたアルファ−1−プロイテナーゼ阻害剤を選択的に
結合して有するアニオン交換樹脂を、アルファ−1−プ
ロイテナーセ阻害剤を前記樹脂から第2溶離液中に置換
するために1゛分なイオン強度を有する溶離剤と接触さ
せる、 を含んでなり、 前記第2溶離液は1−の工程(1)および(i i)に
従い処理された水溶液からなる、 ことを特徴とする方法である。
+i?j述の他の面において、PIを含有する血漿蛋白
質の好ましい出発水溶液はコーンエフルエントII+I
IIおよびコーンエフルエントIから成る群より選択さ
れる。また、工程(a)および(b)を実施するための
条件は同一工程について説明したものと同一である。
質の好ましい出発水溶液はコーンエフルエントII+I
IIおよびコーンエフルエントIから成る群より選択さ
れる。また、工程(a)および(b)を実施するための
条件は同一工程について説明したものと同一である。
沈殿として得られかつ緩衝溶液中で11工構成されたも
のととして、あるいはその溶液または濃厚物として、本
発明に従う方法によりイ1tられたPIは、治療、1珍
断または他の用途のためにプロテアーゼ阻害有効量のP
Iおよび製薬学的に許容されうる担体を含イ]する!J
薬学的製剤に配合することができる。それを静脈内投与
のために調製するために、組成物は生理学的に許容され
うる物質、例えば、塩化ナトラム、グリシンなどを含有
しかつ生理学的条件と適合する緩衝化pHを有する水中
に溶解される。一般に、静脈内に投与される組成物のだ
めのガイドラインは政府の条例により確☆、されている
。
のととして、あるいはその溶液または濃厚物として、本
発明に従う方法によりイ1tられたPIは、治療、1珍
断または他の用途のためにプロテアーゼ阻害有効量のP
Iおよび製薬学的に許容されうる担体を含イ]する!J
薬学的製剤に配合することができる。それを静脈内投与
のために調製するために、組成物は生理学的に許容され
うる物質、例えば、塩化ナトラム、グリシンなどを含有
しかつ生理学的条件と適合する緩衝化pHを有する水中
に溶解される。一般に、静脈内に投与される組成物のだ
めのガイドラインは政府の条例により確☆、されている
。
PIの濃厚物は伝染性微生物、例えば、肝炎およびエイ
ズ(AIDS)のウィルスに関して非伝染性であること
が望ましい。これに関して、この濃厚物を処理してこの
ような微生物を不活性化しかつそれに対する伝染性を減
少することができる。これは2例えば、次の手段の1ま
たは2以りにより達成することができる:M、菌成過、
紫外線照射、化学的ウィルス不活性化剤による処理、凍
結乾燥された状態における熱処理(例えば、60〜85
°(c)、または「低温殺菌」、すなわち、P■含イJ
溶液をPI間塩を非伝染性とするために十分な温度およ
び時間、例えば、約60°C以−1二および約10時間
までの期間における加熱。この低温殺菌の間PIを安定
化するために、クエン酸イオン源を加熱の間PIを安定
化するために十分な量で添加する。一般に、合計的20
mgの蛋白質がPI濃厚物中に存在する場合、この溶液
を約0゜25〜0.5モルのクエン酸イオン濃度にする
。
ズ(AIDS)のウィルスに関して非伝染性であること
が望ましい。これに関して、この濃厚物を処理してこの
ような微生物を不活性化しかつそれに対する伝染性を減
少することができる。これは2例えば、次の手段の1ま
たは2以りにより達成することができる:M、菌成過、
紫外線照射、化学的ウィルス不活性化剤による処理、凍
結乾燥された状態における熱処理(例えば、60〜85
°(c)、または「低温殺菌」、すなわち、P■含イJ
溶液をPI間塩を非伝染性とするために十分な温度およ
び時間、例えば、約60°C以−1二および約10時間
までの期間における加熱。この低温殺菌の間PIを安定
化するために、クエン酸イオン源を加熱の間PIを安定
化するために十分な量で添加する。一般に、合計的20
mgの蛋白質がPI濃厚物中に存在する場合、この溶液
を約0゜25〜0.5モルのクエン酸イオン濃度にする
。
この加熱工程の間の混合物のpHは好ましくは約6.0
〜7.0であるべきである。
〜7.0であるべきである。
加熱の間にPIを最高に安定化するために、炭水化物を
安定剤として単独であるいはクエン酸ナトリウムと組み
合わせて使用することが望ましい。この]−1的で、炭
水化物として、単糖類、三糖類および三糖類、例えば、
アラビノース、グルコース、ガラクトース、マルトース
、フルクトース、リホース、マンノース、う1、ソース
、スクロースなど、あるいは即1アルコール、例エバ、
ソルヒト−ルおよびマンニトールをPI溶液1mlにつ
き約0.5〜2.4gの量で使用することができる。
安定剤として単独であるいはクエン酸ナトリウムと組み
合わせて使用することが望ましい。この]−1的で、炭
水化物として、単糖類、三糖類および三糖類、例えば、
アラビノース、グルコース、ガラクトース、マルトース
、フルクトース、リホース、マンノース、う1、ソース
、スクロースなど、あるいは即1アルコール、例エバ、
ソルヒト−ルおよびマンニトールをPI溶液1mlにつ
き約0.5〜2.4gの量で使用することができる。
前述のように、本発明の低温殺菌された生成物は治療の
目的に使用でよる製薬学的調製物中に混入することがで
きる。じかじながら、「製薬学的調製物」という用語は
、ここではより広い意味に用いて、治療の目的ばかりで
ははなく、かつまたこの分野において知られている試薬
または診断の目的にあるいは組織培養のために使用され
る、本発明に従う蛋白質組成物を含有する調製物を包含
することを意図する。治療の用途を意図する製薬学的調
製物は、治療学的最、すなわち、予防的またはNr療的
M!康手段のために必要なプロテアーゼ阻害量のPIを
含有すべきである。製薬学的調製物を試薬または診断剤
として使用するとき、それは試薬または診断の量のPI
を含有すべきである。
目的に使用でよる製薬学的調製物中に混入することがで
きる。じかじながら、「製薬学的調製物」という用語は
、ここではより広い意味に用いて、治療の目的ばかりで
ははなく、かつまたこの分野において知られている試薬
または診断の目的にあるいは組織培養のために使用され
る、本発明に従う蛋白質組成物を含有する調製物を包含
することを意図する。治療の用途を意図する製薬学的調
製物は、治療学的最、すなわち、予防的またはNr療的
M!康手段のために必要なプロテアーゼ阻害量のPIを
含有すべきである。製薬学的調製物を試薬または診断剤
として使用するとき、それは試薬または診断の量のPI
を含有すべきである。
衷為彰
本発明を次の例示的実施例によりさらに説明する。
コーンエフルエントII+mおよびコーンエフルエント
Iは、前述のコーン分画技術に従う分画により得た。
Iは、前述のコーン分画技術に従う分画により得た。
アッセイ
PIは、エラスターゼについての発色性ノ、(質を使用
して、そのエラスターゼ阻害能力により推定する。エラ
スターゼによりN−ズクシニルーL−アラニルーL−ア
ラニル−L−7ラニルーp−ニトロアニリl” (SA
3 pNA)が加水分解されると、405nmにおける
吸収が増加する。この増加を通常37°Cにおいて連続
的に監視する。試料(PI)の存在下および不存在下に
おいて得られた時間経過の吸収の直線変化を比較する。
して、そのエラスターゼ阻害能力により推定する。エラ
スターゼによりN−ズクシニルーL−アラニルーL−ア
ラニル−L−7ラニルーp−ニトロアニリl” (SA
3 pNA)が加水分解されると、405nmにおける
吸収が増加する。この増加を通常37°Cにおいて連続
的に監視する。試料(PI)の存在下および不存在下に
おいて得られた時間経過の吸収の直線変化を比較する。
次いで、阻害剤の量をエラスターゼおよびPIの既知の
分子量、既知のl:1の化学r1)論およびエラスター
ゼの既知の使用着に基づいて計算する。
分子量、既知のl:1の化学r1)論およびエラスター
ゼの既知の使用着に基づいて計算する。
PIは、また、同様な方法でそのトリプシン阻害能力に
より推定することができる。
より推定することができる。
実施例1
この実施例は、本発明による方法における最初の3つの
工程、すなわち、(a)コーンエフルエン)II+mの
溶液の塩類の濃度の低下、 (b)工程(a)からのP
I含有溶液とアニオン交換樹脂との接触、および(c)
前記樹脂からのPIの選択的溶離、を例示する。
工程、すなわち、(a)コーンエフルエン)II+mの
溶液の塩類の濃度の低下、 (b)工程(a)からのP
I含有溶液とアニオン交換樹脂との接触、および(c)
前記樹脂からのPIの選択的溶離、を例示する。
コーンエフルエンl−II + mを、5 倍容1にの
0゜02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液に対してpH
6,5および5°Cの温度において透析癌過しだ。
0゜02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液に対してpH
6,5および5°Cの温度において透析癌過しだ。
ド表工に記載する変化量のコーンエフルエントII+m
の各々を、0.02モルのリン酸ナトリウ1、緩衝溶液
で乎衡化した一定量のDEAE−セフ71:+−ス(S
epharose@)CL6B77スト”70−(Fa
st F l o w)(ファーマシア会ファ
インやケミカル・リミテッド)を含有するカラムにpH
6,5,5°Cにおいて適用した。この方ラムを1容積
の0.02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液でp)IF
5.5.5℃において洗浄した後、0.02モルのリン
酸ナトリウム緩衝溶離液を他の処理のために廃棄した。
の各々を、0.02モルのリン酸ナトリウ1、緩衝溶液
で乎衡化した一定量のDEAE−セフ71:+−ス(S
epharose@)CL6B77スト”70−(Fa
st F l o w)(ファーマシア会ファ
インやケミカル・リミテッド)を含有するカラムにpH
6,5,5°Cにおいて適用した。この方ラムを1容積
の0.02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液でp)IF
5.5.5℃において洗浄した後、0.02モルのリン
酸ナトリウム緩衝溶離液を他の処理のために廃棄した。
次いで、このカラムを0.05モルのリン酸ナトリウム
緩衝溶液でpH6,5,5℃において溶離して、DEA
E−セフ70−ス(Sepharose@)CLUB樹
脂へ結合した出発コーンエフルエントII + II中
に含有されるPIを置換した。
緩衝溶液でpH6,5,5℃において溶離して、DEA
E−セフ70−ス(Sepharose@)CLUB樹
脂へ結合した出発コーンエフルエントII + II中
に含有されるPIを置換した。
丁表工は前述の実験における7つの試験からのデータを
要約する。DEAE−セファロース(Sepharos
e@)CL6BへのPIの適用1′11を、28Qnm
における試料の吸収×容積(ml)/m1DEAEによ
り表わす。生成物の収率(%)は、前述の第2溶離液中
のPIのj11÷出発コーンzフルエンtTI+m中の
PIのjI′L×1℃により決定した。相対純度は、溶
離液中の蛋白質の合計量につき前述のアッセイ手順によ
り決定した第2の前述のPI含有溶離液中の阻害剤の量
である。
要約する。DEAE−セファロース(Sepharos
e@)CL6BへのPIの適用1′11を、28Qnm
における試料の吸収×容積(ml)/m1DEAEによ
り表わす。生成物の収率(%)は、前述の第2溶離液中
のPIのj11÷出発コーンzフルエンtTI+m中の
PIのjI′L×1℃により決定した。相対純度は、溶
離液中の蛋白質の合計量につき前述のアッセイ手順によ
り決定した第2の前述のPI含有溶離液中の阻害剤の量
である。
大工、実施例1の結果
DEAEカラ
ムへの透析症
過液の適用量 収率%(工
(A2 a o単 フルエンド
位/ m l D E から)(■
ず
1−B 293 42 0 。
1151−C230580,25
1−D 209 49 0.1
61−E 192 52 0.
221−F 185 37 0
.281−G 173 40
0.26実施例2 この実施例は、本発明による方法における最初の3つの
工程、すなわち、(a)コーンエフルエン)II+mの
溶液の塩類のイオン強度の低下、(b)工程(L)から
のPI含有溶液と7ニオン交換樹脂との接触、および(
c)前記樹脂からのPIの選択的溶離、を例示する。
61−E 192 52 0.
221−F 185 37 0
.281−G 173 40
0.26実施例2 この実施例は、本発明による方法における最初の3つの
工程、すなわち、(a)コーンエフルエン)II+mの
溶液の塩類のイオン強度の低下、(b)工程(L)から
のPI含有溶液と7ニオン交換樹脂との接触、および(
c)前記樹脂からのPIの選択的溶離、を例示する。
この実施例において、固定量のコーンエフルエントII
+m、230A280単位/ m l D E A E
を0.02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液で平ai化
した一定FMのDEAE−セファロース(Sephar
ose@)CL6B77スト”70−(Fast F
low)(1℃gの樹脂/’1℃m1の緩衝溶液)を含
有するカラムにpH6。
+m、230A280単位/ m l D E A E
を0.02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液で平ai化
した一定FMのDEAE−セファロース(Sephar
ose@)CL6B77スト”70−(Fast F
low)(1℃gの樹脂/’1℃m1の緩衝溶液)を含
有するカラムにpH6。
5.5℃において適用した。この方ラムを1容植の0.
02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液でpH6,5,5
℃において洗浄した後、0.02モルのリン酸ナトリウ
ム緩衝溶離液を他の処理のために廃棄した。
02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液でpH6,5,5
℃において洗浄した後、0.02モルのリン酸ナトリウ
ム緩衝溶離液を他の処理のために廃棄した。
次いで、このカラムを0.05モルのリン酸ナトリウム
緩衝溶液でpH6,5,5℃において溶離して、DEA
E−セフ70−ス(Sepharo s e)CL6B
樹脂へ結合した出発コーンエフルエン) II + m
中に含有されるPIを置換した。
緩衝溶液でpH6,5,5℃において溶離して、DEA
E−セフ70−ス(Sepharo s e)CL6B
樹脂へ結合した出発コーンエフルエン) II + m
中に含有されるPIを置換した。
下表Iは前述の実験のデータを要約する。収率(%)お
よび相対純度は実施例1におけるようにして決定した。
よび相対純度は実施例1におけるようにして決定した。
表■1.′−7施例2の結果
収率%(
エフルエ
ントから
)(II+
ヨ翌−処理法 ■から) 相対純度2−A 透
析フィルター (D F)対5容積 の0.02モルの リン酸ナトリウ ム、pH6,5520,28 2−B DF対対合容積 H2O7,10,05 2−CDF対対審容積 H2O、次いで2 容積の0.02モ ルのリン酸塩 9.8 0.162−D 限外
濾過により濃 縮2倍1次いでD F対3容積の0゜ 02モルのリン酸 塩 3.0 0.082−E 限外
6過により儂 縮2倍、DF対4 容積のリン酸塩 53 0.252−F 限外
6過により濃 縮2倍、DF対5 容積のリン酸塩 49 0.322−G 限外
濾過によりC 縮3倍、DF対4 容積のリン酸塩 44 0.212−H限外濾過
により濃 縮3倍、DF対5 容積のリン酸塩 65 0.30裏施桝l この実施例は、本発明による方法における第3工程にお
ける樹脂からPIを選択的に首換して得られた溶離液か
らPIを回収する、本発明による方法の第4工程を例示
する。
析フィルター (D F)対5容積 の0.02モルの リン酸ナトリウ ム、pH6,5520,28 2−B DF対対合容積 H2O7,10,05 2−CDF対対審容積 H2O、次いで2 容積の0.02モ ルのリン酸塩 9.8 0.162−D 限外
濾過により濃 縮2倍1次いでD F対3容積の0゜ 02モルのリン酸 塩 3.0 0.082−E 限外
6過により儂 縮2倍、DF対4 容積のリン酸塩 53 0.252−F 限外
6過により濃 縮2倍、DF対5 容積のリン酸塩 49 0.322−G 限外
濾過によりC 縮3倍、DF対4 容積のリン酸塩 44 0.212−H限外濾過
により濃 縮3倍、DF対5 容積のリン酸塩 65 0.30裏施桝l この実施例は、本発明による方法における第3工程にお
ける樹脂からPIを選択的に首換して得られた溶離液か
らPIを回収する、本発明による方法の第4工程を例示
する。
PIを結合して有するDEAE−セファロースCLSB
カラムを溶離することによって得られた工程(c)から
の溶離液のプールを、6つの等しい部分に分割した。各
部分に、溶液中に20%(w/v)のPEGを供給する
ために十分な量でPE03350 (ユニオン・カーμ
・fド・コーポレーション)を添加した。pHを下表1
に2滅するように調節し、温度を5℃に保持し、そして
この混合物を約1時間攪拌し、次いで遠心した。
カラムを溶離することによって得られた工程(c)から
の溶離液のプールを、6つの等しい部分に分割した。各
部分に、溶液中に20%(w/v)のPEGを供給する
ために十分な量でPE03350 (ユニオン・カーμ
・fド・コーポレーション)を添加した。pHを下表1
に2滅するように調節し、温度を5℃に保持し、そして
この混合物を約1時間攪拌し、次いで遠心した。
透明の上澄み溶液をPI活性についてアッセイした。こ
の実験の結果を表mに要約し、ここで収率(%)および
相対純度は実施例1に記載するようにして決定した。
の実験の結果を表mに要約し、ここで収率(%)および
相対純度は実施例1に記載するようにして決定した。
表m、実施例3の結果
アルファ
1−P
■の収率
火笠−pHの調節 % 相対純度3−A
pH5,80W/ HCI 75 0.483
−B pH5−96W/ HCI 87 0.463
−CpH6,13w/ HCI 84 0.363−D
pH5,57w/ 酢酸 65 0.493 E
pH5,97w/ 酢酸 81 0.463−F p
H6,13w/ 酢酸 83 0.32実施例4 この実施例は、実施例3におけるような未発明による方
法の第4工程を例示する。
pH5,80W/ HCI 75 0.483
−B pH5−96W/ HCI 87 0.463
−CpH6,13w/ HCI 84 0.363−D
pH5,57w/ 酢酸 65 0.493 E
pH5,97w/ 酢酸 81 0.463−F p
H6,13w/ 酢酸 83 0.32実施例4 この実施例は、実施例3におけるような未発明による方
法の第4工程を例示する。
実施例3におけるようにして得られたPIをを含有する
工程(c)からの溶離液のプールを6つの等しい部分に
分割し、そしてDEAE−溶離液のもとの容積に基づい
て11.5%(w/v)になるようにPEG 335
0を添加した。pHおよび温度をpH6,5および5℃
に調節し、この混合物を約1時間攪拌し、次いで遠心し
た。透明の」二澄み溶液をPI活性についてアッセイし
た。
工程(c)からの溶離液のプールを6つの等しい部分に
分割し、そしてDEAE−溶離液のもとの容積に基づい
て11.5%(w/v)になるようにPEG 335
0を添加した。pHおよび温度をpH6,5および5℃
に調節し、この混合物を約1時間攪拌し、次いで遠心し
た。透明の」二澄み溶液をPI活性についてアッセイし
た。
この実験の結果を表■に要約し、ここで収率(%)およ
び相対純度は実施例1に記載するようにして決定した。
び相対純度は実施例1に記載するようにして決定した。
表■、−・−例4の 果
アルファ
1−P
■の収率
丈胎−P)Iの調節 % 相対純度4−A
pH7,90w/ HCI 56 0.464−B p
H5,oow/ HCI 60 0.424−CpH5
,20w/ HCI 73 ’0.424−D
pH5,℃w/ 酢酸 68 0.464−E pH
5,15w/ 酢酸 76 0.474−F pH
6,25w/ 酢酸 82 0.47実施例5 この実施例は、本発明による方法の第4工程におけるP
Iのそれ以上の精製を例示する。
pH7,90w/ HCI 56 0.464−B p
H5,oow/ HCI 60 0.424−CpH5
,20w/ HCI 73 ’0.424−D
pH5,℃w/ 酢酸 68 0.464−E pH
5,15w/ 酢酸 76 0.474−F pH
6,25w/ 酢酸 82 0.47実施例5 この実施例は、本発明による方法の第4工程におけるP
Iのそれ以上の精製を例示する。
PIを含有するカラム溶離液を実施例3に記載するよう
にして得て、6.0に調節したpHにおいて20%(w
/v) (7)PEG 3350を含有するPI含有
上澄み溶液を形成した。この上澄み溶液を5つの等しい
部分に分割し、そして各部分に下表Vに記載する増分で
PEGの追加の部分を添加した。PIはPEG含右含浸
上澄液から沈殿した。このPIを緩衝溶液中で再構成し
、モしてPI活性についてアッセイした。この実験の結
果を下表Vに記載し、ここで収率(%)は再構成した溶
液のPI活性を出発上澄み溶液のPI活性で割った値に
1℃を掛けることによって決定した。
にして得て、6.0に調節したpHにおいて20%(w
/v) (7)PEG 3350を含有するPI含有
上澄み溶液を形成した。この上澄み溶液を5つの等しい
部分に分割し、そして各部分に下表Vに記載する増分で
PEGの追加の部分を添加した。PIはPEG含右含浸
上澄液から沈殿した。このPIを緩衝溶液中で再構成し
、モしてPI活性についてアッセイした。この実験の結
果を下表Vに記載し、ここで収率(%)は再構成した溶
液のPI活性を出発上澄み溶液のPI活性で割った値に
1℃を掛けることによって決定した。
表V、実施例5の結果
追加のPEG アルファ−1−PI
実験 (%w/v) の収率%5−A
8 815−B 10
975−C1093 5−D 12 1℃5−E、
15 1℃夫施燃上 この実施例は、実施例5に記載するようなPIのそれ以
上の精製を例示するが、ただし、この実施例において、
実施例3に記載するようにして得られたカラムの溶離液
の2つの部分をアッセイしてカラムの溶離液中のPIの
相対純度を決定した。次いで、PIをカラムの溶離液か
ら−Lの実施例に記載するような2I程のPEG 3
35−の添加(20%+lO%、w / v )により
分ML、そして得られるPIの沈殿を緩衝溶液中で再構
成し、そしてPI活性をアッセイした。結果を下表■に
記載する。
8 815−B 10
975−C1093 5−D 12 1℃5−E、
15 1℃夫施燃上 この実施例は、実施例5に記載するようなPIのそれ以
上の精製を例示するが、ただし、この実施例において、
実施例3に記載するようにして得られたカラムの溶離液
の2つの部分をアッセイしてカラムの溶離液中のPIの
相対純度を決定した。次いで、PIをカラムの溶離液か
ら−Lの実施例に記載するような2I程のPEG 3
35−の添加(20%+lO%、w / v )により
分ML、そして得られるPIの沈殿を緩衝溶液中で再構
成し、そしてPI活性をアッセイした。結果を下表■に
記載する。
表■、実施例6の結果
カラムの溶離 再構成した沈殿の
実験 液の相対純度 相対純度6−A
O,250,53 6−B O,320,58 実施例7 この実施例は、実施例5および実施例6に記載するよう
にして得られたPIのDEAE?l換多糖類の樹脂のク
ロマトグラフィー、すなわち、DEAEアニオン交換樹
脂のクロマトグラフィーによるなおそれ以上の精製を例
示する。カラム上のDEAE−セファロースCL6Bフ
ァスト・フロー樹脂(二重反復試験で)を0.02モル
のリン酸ナトリウム緩衝溶液でpH6,5においてモ衡
化し そして実施例5および実施例6に従い得られたP
I含有沈殿をこのカラムに適用した。カラムを1容積の
緩衝溶液で洗浄した後、このアニオン交換樹脂に結合し
たPIを0.02モルのリン酸ナトリウL、W衝溶液p
H6,5でその樹脂から溶離した。この実施例の結果を
ド表7に記・敗する。
O,250,53 6−B O,320,58 実施例7 この実施例は、実施例5および実施例6に記載するよう
にして得られたPIのDEAE?l換多糖類の樹脂のク
ロマトグラフィー、すなわち、DEAEアニオン交換樹
脂のクロマトグラフィーによるなおそれ以上の精製を例
示する。カラム上のDEAE−セファロースCL6Bフ
ァスト・フロー樹脂(二重反復試験で)を0.02モル
のリン酸ナトリウム緩衝溶液でpH6,5においてモ衡
化し そして実施例5および実施例6に従い得られたP
I含有沈殿をこのカラムに適用した。カラムを1容積の
緩衝溶液で洗浄した後、このアニオン交換樹脂に結合し
たPIを0.02モルのリン酸ナトリウL、W衝溶液p
H6,5でその樹脂から溶離した。この実施例の結果を
ド表7に記・敗する。
表■、実施例7の結果
+Ij構成した沈殿の カラムの溶離実験
相対純度 −液の相対純度7−A O,
580,757−B O,5℃,72実施
例8 実質的に実施例1に記載するのと回−の−r順を反復し
たが、ただしコーンエフルエンhII−1−Dlb7)
代わりにコーンエフルエン)Iを使用した。
相対純度 −液の相対純度7−A O,
580,757−B O,5℃,72実施
例8 実質的に実施例1に記載するのと回−の−r順を反復し
たが、ただしコーンエフルエンhII−1−Dlb7)
代わりにコーンエフルエン)Iを使用した。
コーンエフルエントrを5容積の0.02モルのリン酸
ナトリウム緩衝溶液に対してpH6,5および5°Cの
温度において透析6過しだ。
ナトリウム緩衝溶液に対してpH6,5および5°Cの
温度において透析6過しだ。
この’xfl 析M 過したコーンエフルエントエを、
0.02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液でpH65,
5°Cにおいて平衡化したDEAE−セファロースCL
6Bファスト拳フローM 脂を含有するカラムに適用し
た。この方ラムを1容積の0.02モルのリン酸ナトリ
ウム緩衝溶液でpH6,5,5°Cにおいて洗浄した後
、緩衝溶離液を他の処理のために廃棄した。
0.02モルのリン酸ナトリウム緩衝溶液でpH65,
5°Cにおいて平衡化したDEAE−セファロースCL
6Bファスト拳フローM 脂を含有するカラムに適用し
た。この方ラムを1容積の0.02モルのリン酸ナトリ
ウム緩衝溶液でpH6,5,5°Cにおいて洗浄した後
、緩衝溶離液を他の処理のために廃棄した。
次いで、このカラムを0.075モルのリン酸ナトリウ
ム緩衝溶液でpH6,5,5°Cにおいて溶離して、D
EAE−セファロースCL6B樹脂へ結合した出発コー
ンエフルエン)I中に含有されたPIを置換した。
ム緩衝溶液でpH6,5,5°Cにおいて溶離して、D
EAE−セファロースCL6B樹脂へ結合した出発コー
ンエフルエン)I中に含有されたPIを置換した。
PIは出発コーンエフルエントエに関して30倍の純度
で得られた溶離液中に回収された。
で得られた溶離液中に回収された。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、工程: (a)アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を含有する
血漿蛋白質の水溶液を透析濾過およびゲル濾過から選択
される少なくとも1つの手段により処理して、前記溶液
中の塩類の濃度を約0.02モル以下に低下させ、 (b)工程(a)から得られた溶液を前記溶液中のアル
ファ−1−プロテイナーゼ阻害剤に対して選択的親和性
を有するアニオン交換樹脂と接触させて、前記樹脂にア
ルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を選択的に結合させ
かつ前記樹脂に結合しない血漿蛋白質類を前記樹脂を通
して第1溶離液中に溶離し、 (c)工程(b)から得られたアルファ−1−プロテイ
ナーゼ阻害剤を選択的に結合して有するアニオン交換樹
脂を、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を前記樹脂
から第2溶離液中に置換するために十分なイオン強度を
有する溶離剤と接触させ、そして (d)工程(c)から得られた前記第2溶離液からアル
ファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を回収する、 を含んでなることを特徴とするアルファ−1−プロテイ
ナーゼ阻害剤を含有する血漿蛋白質の水溶液からアルフ
ァ−1−プロテイナーゼ阻害剤を分離する方法。 2、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を含有する血
漿蛋白質の水溶液はコーンエフルエントII+III、コー
ンエフルエント I および低温上澄み溶液から成る群よ
り選択される特許請求の範囲第1項記載の方法。 3、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を含有する血
漿蛋白質の水溶液はコーンエフルエントII+IIIおよび
コーンエフルエント I から成る群より選択される特許
請求の範囲第1項記載の方法。 4、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を含有する血
漿蛋白質の水溶液はコーンエフルエントII+IIIから成
る群より選択される特許請求の範囲第1項記載の方法。 5、工程(a)の前に、前記水溶液を処理して、コーン
エフルエントII+IIIおよびコーンエフルエント I から
成る群の構成員の水溶液中に存在するアルコールの実質
的にすベてを除去する特許請求の範囲第3項記載の方法
。 6、工程(b)において、アニオン交換樹脂はポリガラ
クトース、ポリデキストランおよびセルロースの樹脂の
群から選択される多糖類の吸着剤であり、ここで多糖類
の鎖は多糖類の鎖のグルコース単位へエーテル結合によ
り取り付けられたジエチルアミノエチル基および第四エ
チル基から選択される正に帯電した基を有する特許請求
の範囲第1項記載の方法。 7、工程(c)において、アルファ−1−プロテイナー
ゼ阻害剤をアニオン交換樹脂から置換するために十分な
イオン強度を有する溶離剤は、約0.02モル〜約0.
3モルの範囲の濃度を有しかつ約5.5〜約8.6の範
囲のpHを有する水溶性無機塩および水溶性有機塩から
成る群より選択される少なくとも1種の構成員を含有す
る水性緩衝溶液である特許請求の範囲第1項記載の方法
。 8、工程(d)において、第2溶離液をポリエチレング
リコールおよびポリプロピレングリコールから選択され
るポリ縮合ポリアルキレングリコールと接触させること
によって、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を第2
溶離液から回収する特許請求の範囲第1項記載の方法。 9、工程(d)において、(1)まず第2溶離液を、第
2溶離液の容積に基づいて、約10%〜約20%(w/
v)のポリ縮合ポリアルキレングリコールと約4.6〜
5.7の範囲のpHおよび約2℃〜約10℃の温度にお
いて約1分〜約1時間の間接触させ、そして生ずる沈殿
を分離しかつ生ずる上澄み溶液を保持し、次いで(2)
保持された上澄み溶液を、第2溶離液の容積に基づいて
、約8〜約15w/v%の追加のポリ縮合ポリアルキレ
ングリコールと約4.6〜5.7の範囲のpHおよび約
2℃〜約10℃の温度において約1分〜約1時間の間接
触させ、そしてアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を
含有する得られた沈殿を保持する特許請求の範囲第8項
記載の方法。 10、(3)アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を含
有する得られた沈殿を緩衝溶液中で再構成し、(4)次
に工程(3)からの溶液をアルファ−1−プロテイナー
ゼ阻害剤に対する親和性を有するアニオン交換樹脂と接
触させ、そして(5)次いでアルファ−1−プロテイナ
ーゼ阻害剤を置換するために十分なイオン強度を有する
溶離液とアニオン交換樹脂を接触させて、アルファ−1
−プロテイナーゼ阻害剤を含有する生ずる第3溶離液を
得ることによって、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害
剤をアニオン交換樹脂から溶離する追加の工程を含む特
許請求の範囲第9項記載の方法。 11、工程(d)において、(1)まず第2溶離液を約
10%〜約20%(w/v)のポリエチレングリコール
およびポリプロピレングリコールから選択されるポリ縮
合ポリアルキレングリコールと約4.6〜5.7の範囲
のpHおよび約2℃〜約10℃の温度において約1分〜
約1時間の間接触させて、第2溶離液からアルファ−1
−プロテイナーゼ阻害剤を沈殿させないで、不必要な蛋
白質類を沈殿させ、そして生ずる沈殿を分離しかつ生ず
る上澄み溶液を保持し、(2)次に保持された上澄み溶
液をアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤に対する親和
性を有するアニオン交換樹脂と接触させ、そして(3)
次いでアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を置換する
ために十分なイオン強度を有する溶離液とアニオン交換
樹脂を接触させて、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害
剤を含有する生ずる第3溶離液を得ることによって、ア
ルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を第2溶離液から回
収する特許請求の範囲第1項記載の方法。 12、工程(d)から得られたアルファ−1−プロテイ
ナーゼ阻害剤を処理して不活性化し、そして感染性微生
物の感染性を減少させて、アルファ−1−プロテイナー
ゼ阻害剤をこのような伝染性微生物に対して非伝染性と
し、これによりアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を
治療および要望の目的に有用とする工程をさらに含む特
許請求の範囲第1項記載の方法。 13、プロテアーゼ阻害有効量の特許請求の範囲第1項
記載の方法により製造されたアルファ−1−プロテイナ
ーゼ阻害剤および製薬学的に許容されうる担体を含んで
なることを特徴とする製薬学的組成物。 14、プロテアーゼ阻害有効量の特許請求の範囲第12
記載の方法により製造されたアルファ−1−プロテイナ
ーゼ阻害剤および製薬学的に許容されうる担体を含んで
なることを特徴とする製薬学的組成物。 15、工程: (i)コーンエフルエントII+IIIおよびコーンエフル
エント I から成る群より選択されるアルファ−1−プ
ロテイナーゼ阻害剤を含有する血漿分画の水溶液を、前
記水溶液の容積に基づいて、約10%〜約35%(w/
v)のポリエチレングリコールおよびポリプロピレング
リコールから選択されるポリ縮合ポリアルキレングリコ
ールと約4.6〜5.7の範囲のpHおよび約2℃〜約
10℃の温度において約1〜24時間の間接触させて、
前記溶液からアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を沈
殿させないで不必要な蛋白質類を選択的に沈殿させ、そ
して (ii)工程(i)において得られた溶液からアルファ
−1−プロテイナーゼ阻害剤を分離する、 を含んでなるコーンエフルエントII+IIIおよびコーン
エフルエント I から成る群より選択されるアルファ−
1−プロテイナーゼ阻害剤を含有する血漿分画の水溶液
からアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を分離する方
法において、 (a)前記血漿分画の水溶液を処理して、コーンエフル
エントII+IIIおよびコーンエフルエント I から成る群
の構成員の水溶液中に存在するアルコールの実質的にす
べてを除去し、 (b)工程(a)からの水溶液を透析濾過およびゲル濾
過から選択される少なくとも1つの手段により処理して
、前記溶液中の塩類の濃度を約0.02モル以下に低下
させ、 (c)工程(b)からの溶液を前記溶液中のアルファ−
1−プロテイナーゼ阻害剤に対して選択的親和性を有す
るアニオン交換樹脂と接触させて、前記樹脂にアルファ
−1−プロテイナーゼ阻害剤を選択的に結合させかつ前
記樹脂に結合しない血漿蛋白質類を前記樹脂を通して第
1溶離液中に溶離し、 (d)工程(c)から得られたアルファ−1−プロテイ
ナーゼ阻害剤を選択的に結合して有するアニオン交換樹
脂を、アルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を前記樹脂
から第2溶離液中に置換するために十分なイオン強度を
有する溶離剤と接触させる、 を含んでなり、 前記第2溶離液は上の工程(i)および(ii)に従い
処理されたアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤を含有
する水溶液からなる、 ことを特徴とする方法。 16、工程(c)において、アニオン交換樹脂はポリガ
ラクトース、ポリデキストランおよびセルロースの樹脂
の群から選択される多糖類の吸着剤であり、ここで多糖
類の鎖は多糖類の鎖のグルコース単位へエーテル結合に
より取り付けられたジエチルアミノエチル基および第四
エチル基から選択される正に帯電した基を有する特許請
求の範囲第15項記載の方法。 17、工程(d)において、アルファ−1−プロテイナ
ーゼ阻害剤をアニオン交換樹脂から置換するために十分
なイオン強度を有する溶離剤は、約0.02モル〜約0
.3モルの範囲の濃度を有しかつ約5.5〜約8.6の
範囲のpHを有する水溶性無機塩および水溶性有機塩の
1種を含有する水性緩衝溶液である特許請求の範囲第1
5項記載の方法。 18、工程(ii)から得られたアルファ−1−プロテ
イナーゼ阻害剤を処理して不活性化し、そして伝染性微
生物の伝染性を減少させて、アルファ−1−プロテイナ
ーゼ阻害剤をこのような伝染性微生物に対して非伝染性
とし、これによりアルファ−1−プロテイナーゼ阻害剤
を治療および要望の目的に有用とする工程をさらに含む
特許請求の範囲第15項記載の方法。 19、プロテアーゼ阻害有効量の特許請求の範囲第15
項記載の方法により製造されたアルファ−1−プロテイ
ナーゼ阻害剤および製薬学的に許容されうる担体を含ん
でなることを特徴とする製薬学的組成物。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US06/793,807 US4697003A (en) | 1985-11-01 | 1985-11-01 | Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor |
| US793807 | 1985-11-01 |
Publications (2)
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|---|---|
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| JPH0764750B2 JPH0764750B2 (ja) | 1995-07-12 |
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Country Status (8)
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|---|---|
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| EP (1) | EP0221426B1 (ja) |
| JP (1) | JPH0764750B2 (ja) |
| AT (1) | ATE79633T1 (ja) |
| AU (1) | AU591397B2 (ja) |
| CA (1) | CA1286848C (ja) |
| DE (1) | DE3686470T2 (ja) |
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|---|---|---|---|---|
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- 1986-10-18 AT AT86114461T patent/ATE79633T1/de not_active IP Right Cessation
- 1986-10-18 DE DE8686114461T patent/DE3686470T2/de not_active Expired - Lifetime
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