JPS62501679A - リポコルチンをコードするｄｎａ分子および形質転換宿主 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 ヒトリポコルチン様ポリペプチドを製造するための本発明は、少なくとも１種の ヒトリポコルチンを製造するためのＤＮＡ配列．組換ＤＮＡ分子および方法に関 するものテアる。リポコルチンはホスホリフアーゼ抑制蛋白とも呼ばれる。本出 願人は米国特許出願第７１２．３７６号および第６９０，　１４６号明細書にお いて、リボコルチンを意味するためにホスホリフアーゼ抑制蛋白という用語を使 用した．さらに詳細には、本発明は、少なくとも１種のヒトリポコルチン様ポリ ペプチドをコードすることを特徴とするＤＮＡ配列および組換ＤＮＡ分子に関す るものである。したがって、これら配列により形質転換された宿主を本発明の方 法に使用して、本発明のヒトリポコルチン様ポリペプチドを製造することができ る。これらのポリペプチドは抗炎症活性を脊し、力・つ関節炎，アレルギー症， 皮膚病，眼病および膠原病の治療に有用である。

発明の背景 アラキドン酸は、炎症反応に関与するたとえばプロスクグランジン，ヒドロキシ 酸およびロイコトリンのような化合物を合成する際の先駆体となる不飽和脂肪酸 である。これは、ホスホリパーゼＡ２活性によって膜の燐脂質から放出される。

たとえば、グルココルチコイドのような抗炎症剤に反応して、或る種の細胞はイ ンビトロにおいてホスホリパーゼＡ２を抑制する能力を特徴とする蛋白を放出す る。したがって、アラキドン酸の生成を抑制することにより、リボコルチンはプ ロスタグランジンおよびその他の炎症性物質の合成を阻止し、かくして炎症を低 下させる（Ｆ、ヒラタ等、「グルココルチコイドにより誘発されたウサギ好中球 におけるホスホリパーゼＡ２抑制蛋白」、プロシーディング・ナショナル・アカ デミ−・サイエンス・ＵＳＡ、第７７巻、第５号、第２５３３〜２５３６頁（１ ９８０））。

今日まで、数種のホスホリパーゼＡ２抑制蛋白が研究されている。それらの１種 （すなわち、リポモジュリン）は分子量約４０，０００の蛋白として特性化され ており、これは恐らく細胞中のプロテアーゼにより分解されて分子量約３０．０ ００および１５．０００の２ｆ！の小さい活性物質となる（Ｆ、ヒラタ等、「リ ボモジュリンに対する放射線免疫分析による数種のホスホリパーゼ抑制蛋白の同 定」、バイオケミカル・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーション、第 １０９巻、第１゛号、第２２３−２３０頁（１９８２））、他の実験的証明は、 他の２種のホスホリパーゼＡ２抑制物質、すなわちマクロコルチン（分子量約１ ５，０００）およびレノコルチン（それぞれ分子量約１５．０００および３０， ０００の２種類）も、たとえばりポモジュリンのような大型抑制蛋白の分解生成 物でありうることを示唆している（Ｊ、Ｆ、クロイクス等、「レノコルチンの特 性化および部分精製：グルココルチコイドの抗ホスホリパーゼ様作用を生せしめ る腎細胞で生成される２種のポリペプチド」、ブリティッシュ・ジャーナル・フ ァーマコロジー、第７９巻、第３１３−３２１頁（１９８３）；Ｇ、Ｊ、ブラン クウェル等、「マクロコルチン：グルココルチコイドの抗ホスホリパーゼ作用を 生せしめるポリペプチド」、ネイチャー、第２８７巻、第１４７−１４９頁（１ ９８０）Ｊ。

リボモジュリンはウサギの好中球がら、マクロコルチンはラットのマクロファー ジから、またレノコルチンはラットの腎髄質の間質８Ｉ１１胞からそれぞれ単離 されているが、これら３（４１の蛋白は同様な生物学的活性を示し、同様な分子 量ををすると共に、リポモジュリンもしくはマクロコルチンに対するモノクロー ナル抗体との交差反応性を示す、さらに、これらは全てグルココルチコイドによ って誘発される。したがって、これらのホスホリパーゼ抑制蛋白、すなわちリポ コルチンは互いに近縁であって、ステロイド作用の一般的な物理学的メカニズム として細胞により生産されることが示唆されているＣＢ、ロスフート等、「グル ココルチコイド誘発の抗ホスホリパーゼ蛋白、「ノコルチンの特性化」、バイオ ケミカル・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーション、第１１７巻、第 ３号、第８７８−８８４頁（１９８３））。

さらに、最近のデータが示すところでは、分子量１５．０００のリボモジュリン のｆｆｆｉ　Ｉｉがイミューノジエンに反応してリンパ球により産生されかつグ リコジル化抑制因子として作用し、ＩｇＥ−結合因子のグリコジル化を阻止する と共にＩｇＥ反応の抑制をもたらす（Ｔ、ウェブ等、ｒＴｇＥ−結合因子の生物 学的活性の変化：■、リボモジュリンの断片、としてのグリコジル化抑制因子の 同定」、ジャーナル・イミューノロジー、第１３０巻、第２号、第８７８−８８ ４頁（１９８３））。

リボコルチンは、その抗炎症活性の結果、炎症経過を含む障害の治療に有用であ る。この種の障害は関節炎、・アレルギー症５皮膚病、眼病および膠原届を含む 。さらに、炎症を治療するこれら蛋白の使用は、現在の抗炎症性化合物に伴う欠 点をも回避する。

現在、抗炎症治療には２種類の化合物が使用されている。

すなわち、コルチコステロイドおよび非ステロイド系の抗炎症剤である。コルチ コステロイドは、−ｆｌｉにその使用に伴う著しい副作用のため一般に嫌われて いる。これらの副作用は高血圧、胃腸出血、筋肉弱化、白内障および痙彎を含む 、したがって、非ステロイド系の抗炎症性化合物が好ましい、しかしながら、こ れらの非ステロイドも、たとえば胃および胎盤の生理、並びに中枢神経系および 造血系に対する感作用のような副作用をもたらす、さらに、殆んどの非ステロイ ド系抗炎症剤は、これら物質を生成させるための２つの経過の一方のみ、すなわ ちシクロオキシゲナーゼ経路またはりポオキシゲナーゼ経過のいずれかに対する その作用により炎症性物質の生成を阻害する。

これに対し、リボコルチンは上記両経路を介して炎症性物質の生成を抑制する。

さらに、リボコルチンはステロイド作用の唯一の媒体であるため、しばしばコル チコステロイドの使用に伴うような副作用を生じないと思われる。また、これら の抑制蛋白は細胞により生産される天然媒体であるため、一般に多くの非ステロ イド系抗炎症剤に伴う副作用を示さないと思われる。

さらに、リボコルチンは、白血球の化学走性反応を阻止することにより別の経路 を介して炎症に作用する。ｐｐ６０５ｒＣおよびＭＴ抗原、すなわちｓｒｃペプ チドおよびＭＴペプチドに見られるチロシン燐酸化部位をコードする配列を持っ た成る種のペプチドは、化学吸引剤によって刺戟されるウサギ好中球の化学走性 を阻止することが示されている〔Ｆヒラク等、ｒＧｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌ ｕ−Ｔｙｒ　−Ｐｒｏ−Ｍｅｔ−ＧｌｕおよびＬｅｕ−１１ｅ−Ｇｌｕ−Ａｓｐ −Ａｓｎ−Ｇｌｕ−Ｔｙｒ−Ｔｈｒ−Ａｌａ−Ａｒｇ−Ｇｌｎ−Ｇｌ＞’による 白血球化学走性の阻止」、バイオケミカル・バイオフィジカル・リサーチ・コミ ュニケーション、第１８巻、第６３２−６９０頁（１９８４））、リボコルチン はそのアミノ酸配列内に同様な配列を有する（ＧｌｕＡｓｎＧｌｕＧｌｕ　Ｇｌ ｎＧｌｕＴｙｒ、残基数１５〜２１）　。

したがって、リボコルチンは炎症組織中への好中球および大食細胞の移動を抑制 しまたは阻止することによってこの配列を介し抗炎症作用を発揮する。

しかしながら、現在まで、ヒトリポコルチンは細胞から精製されていない。さら に、リボコルチンの精製方法の開発されたとしても２．多くの臨床および産業用 途にこれらを著量で製造しうるとは思われない、したがって、ヒトリポコルチン を臨床上有用な量で生産しうる方法が、抗炎症治療において極めてを利であろう 。

発明の要点 本発明は、少なくともＩ　ｆｆｆｉのヒトリポコルチン様ポリペプチドをコード するＤＮＡ配列、並びにこれらＤＮＡ配列により形質転換された宿主でこの種の ポリペプチドを産生さセる方法を提供することにより上記の問題を解決する。

本発明のＤＮＡ配列は、λＬＣおよびλＮＬｉｐ０２１−２のｃＤＮＡ挿入物、 これらｃＤＮＡ挿入物にハイブリッド化しかつ発現に際しヒトリポコルチン様ポ リペプチドをコードするＤＮＡ配列、および前記ＤＮＡ配列のいずれかにより発 現に際しコードされたポリペプチドを発現に際しコードするＤＮＡ配列よりなる 群から選択される。これらＤＮＡ配列を存する組換ＤＮＡ分子、これらにより形 質転換された宿主、およびこれらにより発現に際しコードされるヒトリポコルチ ン様ポリペプチドも本発明の１部である。

本発明のＤＮＡＮ列配列換ＤＮＡ分子、宿主および方法は関節炎、アレルギー症 、皮膚病、眼病および膠原病、並びに炎症経過を含むその他の病気を治療する際 に使用するためのヒトリポコルチン様ポリペプチドの製造を可能にする。

図面の簡単な説明 第１図はラン゛トのホスホリパーゼＡ２阻止蛋白の臭化シアノゲン切断から得ら れた断片のアミノ酸配列を示し、第２図はラットのホスホリパーゼＡ２阻止蛋白 のトリプシン切断から得られた断片のアミノ酸配列を示し、第３図は本発明のリ ポコルチンＤＮＡ配列につきスクリーニングするため使用した化学合成のオリゴ ヌクレオチドＤＮＡ試料における４種の保存物を示し、 第４図はヒトリポコルチンをコードするλＬＣのｃ　ＤＮＡ挿入物のヌクレオチ ド配置を示し、さらにリポコルチン蛋白の予想アミノ酸配列をも示し、アミノ酸 配列の下に示した数字（たとえば１，３０および３４６）は遺伝子のコード化配 列に基づく蛋白の第１．第１３および最後のアミノ酸を示し、第５図はｌ実施例 として本発明のＤＮＡ配列を発現させるために使用したプラスミドｐＫＫ２３３ ．ＬＩＰ、１の構成を概要として示し、 第６図は１実施例で本発明のＤＮＡ配列を発現させるために使用したプラスミド ｐＬｉｐｔｒｃ１５５Ａの構成を概要として示し、 第７−９図は本発明の１実施例にしたがってヒトリポコルチンを産生ずるための プラスミドｐＢｇ１２０、すなわち酵母発現ベクターの作成を示し、 第１０図は粗製酵母熔解物の５ＤＳ−ポリアクリルアミドゲル分析を示し、レー ンａは本発明によりイー・コリで作成した精製ヒトリポコルチンを含み、レーン ｂはプラスミドを持たない酵母からの抽出物を含み、レーンｄはｐＢｇ１２０を 有する酵母からの抽出物を含み、レーンＣおよびｅはヒトリボコルチンをコード するＤＮＡ配列を持たない他のプラスミドを含有する酵母からの抽出物を含み、 第１１−１３図は本発明の１実施例によるヒトリポコルチンの産生に関するプラ スミドｐｓＶＬ９１０９、すなわち哺乳動物発現ベクターの構成を示し、 第１４図はプラスミン切断したヒトリボコルチン様ポリペプチドの５ＤＳ−ポリ アクリルアミドゲル分析を示し、レーンａ−ｆはプラスミンを添加してからそれ ぞれ０，５，１０゜２０．４０および１２０分後に採取した試料を示し、第１５ 図はバイオゲルＰ−６０カラムクロマトグラフィーによって分画した後のヒトリ ボコルチン様ポリペプチドにおけるプラスミン断片のホスホリパーゼＡ２阻止活 性を示し、第１６図はヒトリボコルチン様ポリペプチドのトリプシン切断から得 られた断片のアミノ酸配列を示し、第１７図はリポ−３およびリポ−Ｌのトリプ シン切断から得られた断片のアミノ酸配列を示し、 第１８図はＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分離した後のヒトリ ボコルチン様ポリペプチドにおけるエラスターゼ断片のホスホリパーゼＡ２阻止 活性を示し、第１９図はｅ　１１　ｅ　４およびｅ−５のトリプシン切断によっ て得られた断片のアミノ酸配列を示し、第２０図は組換ＤＮＡ技術により生物学 上活性なりポコルチン様ポリペプチド断片を産生させるため本発明の方法により 使用した変異オリゴヌクレオチドを示し、６第２１図はメチオニンが位置する配 列に沿った部位を数字によって示したりボコルチンアミノ酸配列の路線図であり 、括弧内の数字はメチオニンを導入して本発明による断片を生成させうる部位を 示し、本発明の数種の断片およびその分子量を線図の下に示し、 第２２図はリポ−８から抽出された未処理および臭化シアノゲン処理したヒトリ ボコルチン様ポリペプチドの２６Ｋｄ断片を示す５ＤＳ−ポリアクリルアミドゲ ル分析を示し、第２３図はモノＳ高解像陽イオン交換クロマトグラフィーにより 分画した後の２８０ｎｍにおけるリポコルチン（ピークＴ）およびＮ−リボコル チン（ピーク■）の吸光経過をパネルＡで示し、パネルＢは本発明の溶出リポコ ルチンおよびＮ−リボコルチンのホスホリパーゼＡ２阻止活性を阻止％として示 し、 第２４図は本発明の方法により分離されたリボコルチンおよびＮ−リボコルチン 蛋白のトリプシン分解マツプを示し、第２５図は本発明のＮ−リボコルチンのト リプシン分解マツプを示すと共に、このマツプのピークとこれらピークに含まれ るペプチド断片のアミノ酸配列との関係を示し、第２６図は本発明のＮ−リポコ ルチンＤＮＡ配列にっきスクリーニングするために使用した化学合成のオリゴヌ クレオチドＤＮＡ試料の４ｆ！：の保存物を示し、第２７図はｐＮＬｉｐｌのｃ ＤＮＡ挿入物のヌクレオチド配列を示し、 第２８図は本発明のりボコルチンおよびＮ−リボコルチンＤＮＡ配列におけるヌ クレオチド配列を比較し、図におけるｒＸＪは遺伝子のコード化配列の末端およ び３゛非コ一ド化配列の開始を示している。

発明の詳細な説明 本発明を充分理解しうるよう、以下詳細に説明する。

説明において次の用語を使用する： ヌクレオチド：糖部分（ペントース）と鱗酸と窒素含有複素環式塩基とよりなる ＤＮＡもしくはＲＮＡのモノマー単位。

この塩基はグリコジル炭素（ペントースの１′炭素）を介して糖部分に結合され る。塩基と糖との組合せをヌクレオシドと呼ぶ、各ヌクレオチドはその塩基を特 徴とする。４種のＤＮＡ塩基はアデニン（ｒＡＪ）、グアニン（ｒＧＪ）、シト シン（ｒｃＪ）およびチミン（ｒＴＪ）である。４種のＲＮＡはＡ、Ｇ、Ｃおよ びウラシル（ｒＵＪ）である。

ＤＮＡ配列：隣接するペントースの３′炭素と５′炭素との間のホスホジエステ ル結合により互いに連結されたヌクレオチドの線状配列である。

コドン：ｍＲＮＡを介し、アミノ酸、　ＩＩ訳開始信号または翻訳停止信号をコ ードする３種のヌクレオチド（トリプレット）のＤＮＡ配列であって、たとえば ヌクレオチドトリプレットＴＴＡ、ＴＴＧ、ＣＴＴ、ＣＴＣ，ＣＴＡおよびＣＴ Ｇはアミノ酸、ロイシン（ｒＬｅｕＪ）をコードし、ＴＡＧ。

ＴＡＡおよびＴＧＡは翻訳停止信号でありがっＡＴＧは翻訳開始信号である。

８Ｎ＋＊　：　ｍ　ＲＮ　Ａをアミノ酸配列に翻訳する際のコドンの群であって 翻訳の際に適切な読枠を維持せねばならず、たとえばＤＮＡ配列ＧＣＴＧＧＴＴ ＧＴＡＡＧは３個の読枠もしくは相として表わすことができ、そのそれぞれは次 の異なるアミノ酸配列を与える： ＧＣＴ　旦旦ヱ　ニ９工　ＡＡＧ−−Ａｌａ−ｃｔｙ−Ｃｙｓ−Ｌｙｓ Ｇ　ＣＴＧ　ＧＴＴ　ＧＴＡ　ＡＧ−−Ｌｅｕ−Ｖａｔ　−Ｖａｔ ＧＣＴＧＧ　ＴＴＧ　ＴＡＡ　Ｇ−−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−＜（Ｑ止） キシ基との間でペプチド結合により互いに結合されたアミノ酸の線状列である。

物質のポリペプチドをコードする構造遺伝子、並びにオペレータ、プロモータお よびたとえばシャインーダルガルノ配列のような配列を含むリポソーム結合性お よび相互作用性配列介し特定ポリペプチドに特徴的なアミノ酸の配列をコードす るＤＮＡ配列である。

過程である。

チドを産生ずる過程であり、これは転写と翻訳との組合せである。

プラスミド：完全「レプリコン」からなる非染色体二重鎮ＤＮＡ配列であって、 このプラスミドは宿主細胞内で複製される。プラスミドが単細胞生物内に存在す ると、この生物の特徴はプラスミドのＤＮＡの結果として変化し或いは形質転換 される。たとえば、テトラサイクリン耐性（Ｔｅｔ’）に対する遺伝子を有する プラスミドは、テトラサイタリンに対し感受性であった細胞をこれに耐性の細胞 に形質転換させる。

プラスミドにより形質転換された細胞を「形質転換体」と呼ぶ。

ファージもしくはバタテリオファージ：：ＩＩｌ菌性つ−イルスであって、その 多くは蛋白エンベロブもしくはコート中にカプセル化されたＤＮＡ配列よりなっ ている（「カプシド」）・位が存在するためλコート蛋白中に導入されて、適当 な宿主に感染させるべく使用することができる。異質ＤＮＡの大型断片に対する その容量によりコスミト′はクローン化べしクルとして有用である。

クローン化ベヒクル：宿主ｆＩｌＩ胞内で複製することができ、たとえば複製コ ート蛋白の産生のようなりＮＡの本質的な生物学的機能の喪失或いはプロモータ もしくは結合部位の喪失を伴うことなくＤＮＡ配列を決定可能に切断しうる１個 または少数のエンドヌクレアーゼ認識部位を特徴とし、かつたとえばテトラサイ クリン耐性もしくはアンピシリン耐性などの形質転換細胞の同定に使用するのに 適した標識を有するプラスミド、ファージＤＮＡまたはその他のＤＮＡ配列であ り、クローン化ビークルはしばしばベクターと呼ばれる。

クローン１ヒ：無性増殖によって１種の生物もしくは配列から誘導される生物も しくはＤＮＡ配列の集団を得る過程である。

力を存する種々異なるゲノムからのＤＮＡ断片よりなる分子発現を制御コロする ヌクレオチドの配列である。これらはｌａ二−クおよびプロモータ領域、ｆｄコ ート蛋白の制御領域。

ＳＶ４０の初期および後期プロモータ、ポリオーマから誘導されたプロモーク、 アデノウィルスおよび猿ウィルス、３−ホスホグリセレートキナーゼもしくはそ の他の糖分解酵素のプロモータ、醇母酸ホスファターゼのプロモータ、たとえば Ｐｂｏ２．酵母α−結合ファククのプロモータ、並びに原核もしくは真核細胞お よびそのウィルスの遺伝子の発現を制御することが知られたその他の配列、或い はその組合せを包含する。＠乳動物細胞については、遺伝子をジヒドロホレート レダククーゼをコードする遺伝子に結合したＳＶ４０早期領域に対するような真 核プロモータに結合させて、シナハムスター卵細胞で選択増殖させることにより 、活性転写した真核遺伝子の多数のコピーを有する細胞ラインを生成させること しくは免疫学的活性を示すポリペプチドであり、このポリペプチドは環リポコル チンのアミノ酸の他にさらにアミノ酸を含み、或いは環リボコルチンのアミノ酸 全部を含まなくてもよい、さらに、これはＮ−末端メチオニンを含むことができ る。リボコルチンは、ホスホリパーゼ阻止蛋白とも呼ばれる。

本発明はヒトリボコルチン様ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列および組換Ｄ ＮＡ分子、並びにこれらポリペプチドの産生方法に関するものである。

本発明のＤＮＡ配列を分離しかつクローン化するには各種の選択およびＤＮＡク ローン化技術を潜在的に使用しろるであろうが、本発明の１実施例においてはラ ットのホスホリパーゼＡ２阻止蛋白に基づ（選択技術を採用した。したがって、 ラットの腹腔内ｉぢ出細胞の細胞外上澄液からラットのホスホリパーゼＡ２阻止 蛋白を精製し、この蛋白の各種断片のアミノ酸配列を決定した。これら蛋白配列 に基づき、最小のヌクレオチド縮重を有する精製ラット蛋白のこれら領域に対応 する数種の対応オリゴヌクレオチドＤＮＡ試料を合成した０次いで、これら試料 を使用して、ファージクローン化ベクター中に挿入されたヒト食細胞ｃＤＮＡ配 列を含有するイー・コリ菌体からなるヒトＣＤＮＡ保存物をスクリーニングした 。

スクリーニングするため、プラークハイブリッド化スクリーニング分析を用いて オリゴヌクレオチド試料をヒトｃ　ＤＮＡ保存物にハイブリッド化し、かつこれ ら多数の試料にハイブリッド化するクローンを選択した。ｉ！択したヒトＣＤＮ Ａ保存物を分離しかつプラスミド中へサブクローン化した後、そのヌクレオチド 配列を決定し、これらを精製ラットリボコルチンのペプチドから得られたアミノ 酸配列と比較した。この比較の結果、分離された全クローンのヌクレオチド配列 は精製されたラフトリボコルチンのアミノ酸配列に対し凹著な類似性を有するア ミノ酸配列をコードすることが判明した（第１図および第２図と第４図との比較 ）。分離したクローンの少なくとも１種はヒトリボコルチンをコードする全長配 列を有することを確認した。

本発明のｃＤＮＡ配列は発現制御配列に作用結合して、各種の哺乳動物またはそ の他の真核もしくは原核宿主細胞で使′　用して、これらによりコードされるヒ トリボコルチン様ポリペプチドを産生ずることができる。たとえば、３７Ｋｄヒ トリポコルチンを産生ずる高レベルの発現ベクターを作成した。

さらに、本発明ｃＤＮＡ配列は、リボコルチン様ポリペプチドをコードする他の 配列に対するヒトＣＤＮＡ保存物をスクリーニングするにも有用である。さらに 、本発明のｃ　ＤＮＡ配列は、ヒトゲノムＤＮＡ保存物をスクリーニングして、 リボコルチン様ポリペプチドをコードするヒトゲノムＤＮＡ配列を選択する試料 としてもを用である。これらのゲノム配列は、本発明の上記ｃＤＮＡ配列と同様 に、これらによりコードされる、リポコルチン様ポリペプチドを産生ずるにもを 用である。ゲノム配列は、哺乳動物細胞を形質転換させてヒトリポコルチン様ポ リペプチドを産生ずるのに特に有用である。

本発明の第２実施例によれば、ヒト胎盤からヒトリボコルチン様ポリペプチドを 分離し、このポリペプチドを本発明の３７Ｋｄ組換りポコルチンに対する構造類 似性、すなわちアミノ酸同族性を示す、さらに、この蛋白はホスホリパーゼＡ２ 阻止活性をも示す、この蛋白をＮ−リボコルチンと称する。

リボコルチンおよびＮ−リボコルチンは、トリプシン地図化により化学的に規定 されたそれぞれ別の蛋白である。Ｎ−リボコルチンの各断片のアミノ酸配列を決 定し、これら配列に基づき対応のオリゴヌクレオチドＤＮＡ試料を合成した。こ れら試料を使用して、ファージクローン化ベクター中に挿入された人胎盤ｃＤＮ Ａ配列を有するイー・コリ菌体からなるヒトＣＤＮＡ保存物をスクリーニングし た。これら試料にハイブリッド化する数種のクローンを分離した。これらクロー ンの１種のＣＤＮＡ挿入物をプラスミド中へ導入した後、このｃＤＮＡ挿入物の ヌクレオチド配列を決定した。これはＮ−リボコルチンの１部をコードする。

このｃＤＮＡ配列は、Ｎ−リボコルチン様ポリペプチドをコードする他の配列に 対するヒトＣＤＮＡ保存物をスクリーニングするための試料として有用である。

たとえば、このｃＤＮＡ挿入物を使用して、Ｎ−リボコルチンをコードする全長 配列につき本発明のヒト胎１ｃＤＮＡ保存物をスクリーニングすることができる 。或いは、本発明の部分Ｎ−リボコルチンｃＤＮＡ配列を得るために使用したオ リゴヌクレオチド試料は・Ｎ−リボコルチンをコードする全長配列につき胎盤保 存物を再スクリーニングするための試料としても有用である。さらに、得られた Ｎ−リボコルチンｃＤＮＡ配列・或いはここに開示した試料を使用して、当業界 の標準技術により再編成したＮ−リボコルチン遺伝子および全長遺伝子の他の部 分を単離することもできる。さらに、ｃＤＮＡ配列の試料を、全長コード配列を 合成するためのプライマとして使用することもできる。

さらに本発明のＮ−リボコルチンＣＤＮＡ配列は、ヒトゲノムＤＮＡ保存物をス クリーニングしてＮ−リボコルチン様ポリペプチドをコードするヒトゲノムＤＮ Ａを選択するための試料としても有用である。これらゲノム配列は、Ｎ−リボコ ルチンｃＤＮＡ配列と同様に、これら配列で形質転換された宿主においてＮ−リ ボコルチン様ポリペプチドを産生させるにも有用である。

本発明の他の具体例は、リボコルチン蛋白の活性部位をよりよく特定化すること ができかつ最適な治療価値を有する分子の設計を可能にするような生物学上活性 なヒトリボコルチン様ポリペプチド断片の製造にも関するものである。したがっ て、本発明のりポコルチン様ポリペプチドを各種のプロテアーゼで処理して、こ れら断片を生成させた。さらに、組換ＤＮＡ技術により、これらの生物学上活性 な断片を生成させた。

本発明の方法により産生されたヒトリポコルチン様ポリペプチドは、抗炎症剤と して或いは抗炎症方法および治療に有用である。たとえば、これらの組成物は、 炎症を減少させるのに医薬上Ｔｒ　９Ｊｒな量の本発明によるリポコルチン様ポ リペプチドと医薬上許容しうるキャリヤとから構成することができる。この種の 治療は、一般に医薬上許容しろる方法でこれら組成物により患者を処置する方法 からなっている。

方法および材料 広範な種類の宿主／クローン化ベヒクル組合せ物を、本発明により作成したヒト リボコルチン様ポリペプチドＤＮＡ配列をクローン化しまたは発現する際に使用 することができる。

たとえば、有用なりローン化もしくは発現ベヒクルは染色体。

非染色体および合成のＤＮＡ配列の断片、たとえば各種公知のＳＶ４０の誘導体 並びに公知の細菌性プラスミド、たとえばｃｏｌＥｌ、ｐｃＲｌ、ｐＢＲ３２２ ，ｐＭＢ９およびその誘導体を含むイー・コリからのプラスミド；広範な宿主範 囲のプラスミド、たとえばＲＰ４．ファージＤＮＡ　（たとえば、ファージλの 多数の誘導体、たとえばＮＭ９８９）；並びにその他のＤＮＡファージ、たとえ ばＭ１３およびフィラメント状一本積ＤＮＡファージ、並びにプラスミドとファ ージＤＮＡとの組合せから誘導された、たとえばファージＤＮＡ或いはその他の 発現制御配列またはたとえば２μプラスミドもしくはその誘導体のような酵母プ ラスミドを使用すべく改善したプラスミドなどのファージＤＮＡで構成すること ができる。

それぞれ特異性のクローン化もしくは発現ベヒクルにおいて、各種の部位を選択 して本発明のヒトリボコルチン様ポリペプチドＤＮＡ配列を挿入することができ る。一般に、これらの部位は、これらを切断しかつ当業者によく知られた制限エ ンドヌクレアーゼによって命名される。ＤＮＡ配列をこれらの部位に挿入して組 換ＤＮＡ分子を形成させる各種の方法も周知されている。これらは、たとえばｄ Ｇ−ｄＣもしくはｄＡ−ｄＴ末端処理、直接結合、エキソヌクレアーゼおよびポ リメラーゼ結合した修復反応に続く結合、或いはＤＮＡポリメラーゼおよび適当 な一本鎖雛型によるＤＮＡストランドの延長に続く結合を包含する。勿論、本発 明に有用なりローン化もしくは発現ベヒクルは、選択ＤＮＡ断片を挿入するため の制限エンドヌクレアーゼ部位を必要としないことを了解すべきである。寧ろ、 ベヒクルは他の手段によって断片に結合することができる。

さらに、各種の発現制御配列を選択して、本発明のＤＮＡ配列を発現させること ができる。これらの発現制御配列は、□領域、ｆｄコート蛋白の制御領域、３− ホスホグリセレートキナーゼまたはその他の糖分解酵素のプロモータ、酸ホスフ ァターゼのプロモータ（たとえば、Ｐｈ０５）、酵母α−結合因子のプロモータ 、哺乳動物細胞のプロモータ（たとえば、ＳＶ４０早期プロモータ）、アデノウ ィルスの後期プロモータおよびメタロチオニンプロモータ、並びに原核もしくは 真核ｍ胞またはそのウィルスの遺伝子およびその各種組合せの発現を制御するこ とが知られたその他の配列を包含する。＠乳動物細胞においては、さらに遺伝子 をジヒドロフォレートデダクターゼに対するものへ結合しがっ宿主支那ハムスタ ー卵細胞に対する選択を行なって、発現単位を増幅することもできる。

本発明のＤ　Ｎ　Ａ配列を発現させるには、これらＤＮＡ配列を発現ベクターに おける上記発現制御配列の１つもしくはそれ以上に作用結合させる。ｉ！択した ヒトリポコルチンＤＮＡ配列がクローン化ベヒクル中に挿入される前または後に 行ないうろこの種の作用結合は、発現制御配列がＤＮＡ配列の発現を”ＤＩ　７ Ｍしかつ促進することを可能にする。

ベクターもしくは発現ベヒクル、および特に選択ＤＮＡ断片および本発明に使用 する発現制御配列を挿入するためにここで選択した部位は、各種の因子、たとえ ば特定の制限酵素に感受性の部位の個数、発現すべき蛋白の大きさ、たとえばベ クター配列に対する開始および停止コドンの位置などの発現特性および当業者に 知られたその他の因子によって決定される。特定のりポコルチン配列に対するベ クター、発現制御配列および挿入部位の選択はこれら因子の調和によって決定さ れ、必ずしも全ての選択が所定の場合に同等に有効であるとは限らない。

さらに、クローン化もしくは発現ベヒクルの選択部位に挿入される本発明のりポ コルチン様ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列は、所望リポコルチンをコード する実際の遺伝子の１部でないヌクレオチドを含むことができ、或いはこの蛋白 に対する全遺伝子の断片のみを含むこともできることが了解されよう、どのＤＮ Ａ配列を使用しても形質転換宿主がリポコルチン様ポリペプチドを産生されるこ とだけが必要である。たとえば、本発明のりボコルチン関連ＤＮＡ配列を本発明 の発現ベクターにおける同じ読枠中で融合させて、少なくとも１種の真核もしく は原核キャリヤ蛋白をコードするＤＮＡ配列または少なくとも１種のＸ１１もし くは原核信号配列をコードするＤＮＡ配列、またはその組合せの少なくとも１部 とすることができる。この種の構成は所望のリポコルチン関連ＤＮＡ配列の発現 を促進し、精製を向上させ、或いは分泌を可能ニし、好ましくは宿主細胞からの リボコルチン様ポリペプチドの成熟を可能にする。或いは、リポコルチン関連Ｄ ＮＡ配列はＡＴＣ開始コドンを単独で或いは他のコドンと組合せて含むこともで き、成熟天然リポコルチン様ポリペプチドの第１アミノ酸をコードする配列に直 接融合させることができる。この種の溝底は、たとえば本発明の１部であるメチ オニルもしくはその他のペプチジル−リボコルチン様ポリペプチドの産生を可能 にする。このＮ−末端メチオニンもしくはペプチドを次いで細胞内またはｆ（ｉ ｔ胞外で各種の公知方法により切断することができ、或いはこのポリペプチドを 本発明の抗炎症組成物および方法にペプチドへ結合したメチオニンと共に使用す ることもできる。

本発明のりボコルチン様ポリペプチドをコードする配列を含んだクローン化ベヒ クルまたは発現ベクターを本発明により使用して適当な宿主を形質転換させ、Ｄ ＮＡ配列によりコードされるリボコルチン様ポリペプチドを宿主が発現するのを 可能にする。

有用なりローン化もしくは発現宿主は、たとえばイー・コリＷ３１１０１．イー ・コリＪＡ２２１．イー・コリＣ６００、イー・コリＥＤ８７６７、イー・コリ ＤＨＩ、イー・コ’ＪＬＥ３９２．　イー・ニアすＨＢＩＯＩ、　イー・コリＸ １７７６、イー・コリＸ２２８２．イー・コリＭＲ（ｌなどのイー・コリの菌株 、並びにシュードモナス、バチルスおよびストレプトミセス、酵母並びにその他 の真菌類の菌株、勤動物（ヒトを含む）宿主、培養中の植物ＤＩ胞、或いはその 他の宿主を包含する。

通ずる宿主の選択は、当業界で知られた多くの因子によって管理される。これら は、たとえば選択ベクターに対する適合性５ハイブリツドプラスミドによりコー ドされた蛋白の毒性、宿主細胞の酵素による蛋白分解に対する所望蛋白の感受性 、宿主細胞蛋白によって発現される精製の際に除去困難な蛋白の汚染もしくは結 合、所望蛋白の回収の容易さ１発現特性、生物安全性およびコストなどを包含す る。必ずしも全ての宿主ベクターの組合せが特定の組換ＤＮＡ分子のクローン化 もしくは発現に対し同等に有効でありうるとは躍らないことを理解した上で、こ れら因子を調和させねばならない。

ヒトリポコルチン様ポリペプチド（これらの宿主にて本発明にしたがい作成した もの）は、ポリペプチドを融合蛋白の形態（たとえば原核、真核または組合せＮ −末端断片に結合して分泌を指示し、安定性を向上し、精製を向上させ、或いは Ｎ−末端断片の可能な切断を同上させる）、リポシルチン）！リベブチドの先駆 体の形態（たとえば、リポコルチン様ポリペプチド信号配列またはその他の真核 もしくは原核信号配列の全部または１部で開始する）、成熟リポコルチン様ポリ ペプチドの形態、或いはｍｅｔ−リボコルチン様ポリペプチドの形態を含むこと ができる。

本発明によるポリペプチドの特に有用な１形態或いはその少なくとも１種の先駆 体は、容易に切断されるアミノ酸或いはアミノ末端に結合した１連のアミノ酸を 有する成熟リボコルチン様ポリペプチドである。この種の構造は、成熟リポコル チンに存在しえない開始信号を必要とする適当な宿主で蛋白を合成し、次いで余 分のアミノ酸をインビボもしくはインビトロで切断して成熟リボコルチン様ポリ ペプチドを産生ずることを可能にする。この種の方法は当業界に現存する（たと えば米国特許第４，３３２，８９２号、第４，３３８，３９７号および第４．４ ２５，４３７号参照）。さらに、これらポリペプチドを他の天然りポコルチンと ロイにグリコジル化し、または脱グリコジル化し、或いは天然リポコルチンとは 異なるグリコジル化パターンにすることもできる。この種のグリコジル化は宿主 細胞によって生じ、或いは特定のりボコルチンを得るよう選択した発現後の処理 によっても生ずる。

さらに、本発明のポリペプチドは、プロテアーゼでの処理により或いはりボコル チン様ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列の断片の発現により、リボコルチン 様ポリペプチドから誘導された生物学上活性なポリペプチド断片をも包含する。

さらに、本発明のポリペプチドは、本発明のＤＮＡ配列におけるコドンの幾つか また゛は全部につき異なるコドンを特徴とするＤＮＡ配列により発現に際しコー ドされるリボコルチン様ポリペプチドをも包合する。これらの置換コドンは、置 換されたコドンによりコードされるものと同一のアミノ酸をコードすることもで きるが、高収量でポリペプチドを生成する。

或いはアミノ酸置換またはより長いもしくはより短いりボコルチン様ポリペプチ ドをもたらすコドンの１つの置換または組合せによって、その性質を有益に変化 させることもできる（たとえば安定性を増大させ、溶解性を増大させ、または治 療活性を増大させる）。

本発明を一層よく理解しうるよう以下実施例を示す。これらの実施例は単に例示 の目的であって、本発明の範囲を決して限定するものと解釈すべきでない。

雄つ・イスク一種のラット（２００〜２５０ｋｇ）　ニ、０．９　％ＮａＣｌに おけるグルココルチコイド、デキサメクゾン燐酸（１，２５■／　ｋｇプラット 　０．１　ｍｌを皮下注射して、ボスボリパーゼＡｌ　［１ｔｈ蛋白の産生を誘 発させた０次いで、これらのラットヲ注射してから１時間後にユーサセートの心 臓内注射によって殺し、かつ腹腔を１０１の燐酸緩衝塩水（５０ｍＭＫ　Ｈ２Ｐ 　Ｏ＊　（ｐＨ７，３）　、Ｚ　Ｕ／　ｍｌ（７）へ／”　！Ｊ　ンを含有する １５０ｍＭのＮａＣｌ、および５０μＭのフェニルメチルフルホニルフルオライ ド）で洗浄した。最高速度３０分のインターナショナル遠心分離器での遠心分離 により細胞およびその他の粒状物質の洗浄液を清澄させた後、上澄液を合してリ ボコルチンにつき分析し、その際この上澄液と豚膵臓ホスホリパーゼＡ２の存在 下におけるオートクレーブ処理されたイー・コリ膜からの漂識オレイン酸の放出 抑制を測定した。

これを次のようにインビトロ分析にかけた：　ＩＩ！ＩＩ１ξ出上澄液からの試 料２００／Ｊｆを１．５　ｍｌのエフペンドルフ管において５０ｐｌの０．７　 Ｍ　）リス−ＨＣＩ　（ｐＨ８，ｏ　）　、６０ｍＭＣａＣ１□級街液と氷上に て混合した０次いで、５０μｌの希釈豚膵臓ホスホリパーゼＡ２　（カタログｍ Ｐ９１３９、シグマ・ケミカルス社）を添加しかつ混合し、そしてこの溶液を氷 上で１時間培養した。２．５■／ｍｌの生血清アルブミン（ＢＳＡ）を含有する 緩衝液（７０ｍＭ）リス−ＭＣＩ（ｐ）Ｉ８．０）、６ｍＭ　ＣａＣ１，）中へ のホスホリバごゼム２懸濁物の希釈は、ホスホリパーゼとＢＳＡとの最終濃度が それぞれ１００μｇ１５０μｊ！および１２５．ｕｇ１５Ｌｕ＋２となるように 行なった０次いで、基質としてのオートクレーブ処理したＩＩ”−オレイン酸標 識イー・コリ２５μｌを加え、かつ混合物を６℃で８分間培養した（温度および 培養時間は両者とも使用するイー・コリの各バッチに応じて決定せねばならない ）。

基質Ｉ＋’　−オレ・イン酸標識イー・コリは次のように作成した：イー・コリ の１晩培養物をトリプトン培地（１％バクトドリプトン、０．５％ＮａＣＩ）中 で増殖させ、これを新たなプロスで１：２０に希釈し、かつクレント計で国体増 殖を監視した。読みが４０になった際（すなわ°ち、細胞が良好に増殖している 際）、プリイン３５　（ポリエチレン−２３−エーテル、シグマ・ケミカルス社 、水中の１０％溶液）の１：１００希釈物およびＨｌ−オレイン酸（９，１０− Ｈ’　−（Ｎ）−オレイン酸、二ニー・イングランド・ヌクレア社）の１　：　 ２００希釈物を１０ｍＣ１／ｍｌにて添加した。５時間後、細胞増殖が停止した 際、懸濁物を１２０℃にて２０分間オートクレーブ処理し、かつフラスコを４℃ にて１晩保存し　−た０次いで、５３３４０−クにて４℃で１６．　ＯＯＯｒｐ ｍの速度で３０分間遠心分離することによりバクテリヤをペレット化させ、かつ 遊離したペレットを１本のチューブにまとめた。バクテリヤを４回或いは上澄液 におけるカウント数が低くなるまで懸濁緩衝液（０，７Ｍ　）リス−ＨＣ１（ｐ Ｈ８，０）　、１０ｍＭＣａ　Ｃ１２）　＋０．１％ＢＳＡで洗浄した。このバ クテリヤを、０．２％窒化ナトリウムを含有する懸濁緩衝液中で４℃にて貯蔵し た。典型的には、２０ｍＣ１のＨ３−オレイン酸で標識した培養物４００ｍ１を 作成した。これにより標識バクテリヤにおける約７　Ｘ　Ｉ　Ｏ”　ｃ　ｐｍ、 すなわち約１０％の投入カウント数が得られた０分析の各時点において、ｉｏｏ 、ｏｏ。

ｃｐｍを使用し、これを２５μｌの容積で加えた。使用する直前にその１部を先 ず２００ｍＭ）リス−ＨＣ１（ｐＨ８，０）、１２ｍＭ　ＥＤＴＡ　（氷上に３ ０分間放置）で洗浄し、次いで２５ｍＭ）リス−ＨＣｌ　（ｐｌ（８，０）で洗 浄した。

基質（オートクレーブ処理した標識イー・コリ）を阻止剤およびホスホリパーゼ Ａ２と共に短時間培養した後、反応を１００μｉの２Ｎ塩酸を各チューブに添加 し、次いで１００ｐ　１０）２　ＯＮ／１ｓｌ（７）＠ｌ１ｌｉｌＢ　ＳＡ　（ ９９％フルフミ７、シグマ・ケミカルス社）を添加して直ちに停止させた。チュ ーブを振とうしかつ氷上で３０分間培養した。この手順は、特定の膜からリパー ゼ切断した生成物を抽出するのに重要である。

次いで、イー・コリをエッペンドルフ遠心分離器において１０．０００ｇで５分 間ペレット化させ、水溶液に適合したシンチレーションカクテル４ｍｌにおいて 各上澄液２５０μｌを計数した。この分析において、試料＋イー・コリ基質を添 加ホスホリパーゼの存在下および不存在下で培養した内部比較を用いて反復試験 した。このインビトロ分析は、腹腔内１ξ出液がホスホリパーゼ阻止活性を有す ることを示した。

上記腹腔内滲出上澄液からりポコルチンを精製するため、先ず最初にこの上澄液 へプロテアーゼ阻止剤を添加した。これらは典型的にはアプロチニン（２０μｓ ／ａ＋１）と大豆トリプシン抑制剤（２０μｇ／＋ｗｌ）とＥＧＴＡ　（エチレ ングリコール−ビス−（アミノエチルエーテル）　−Ｎ、　Ｎ’−テトラ酢酸） （０，５ｍＭ）を含んだ、滲出液を３７℃にて０．ＩＵ／１の牛騙内アルカリホ スファターゼの存在下で１時間培養し、かつこれをアミコン装ｆ（ＰＭ１０膜） により最終蛋白濃度５■／＋ｗｌまで限外濾過により２倍濃縮した０次いで、上 澄液を２０ｍＭ）リス−ＨＣ１（ｐＨ８，１°）の４０容量に対し４℃にて１晩 透析し、かつＤＥ５２イオン交換カラムクロマトグラフィー（ワットマン社、カ ラム寸法：直径１ｃｍＸ１７ａａ）にかけた、使用前にＤＥ５２樹脂を２５ｍＭ ｌ−リス−ＨＣＩ（Ｐ１１８．１　）で平衡化させた。流過したフラクションを 集め、これらをアミコン限外滅過装Ｗｌ（ＰＭＩＯ膜）によりさらに２５倍濃縮 した。次いで、この′ｔＩ７１縮物を２５　ｍ　Ｍ　トリス−ＨＣｌにおけるゲ ルｉ！！過カラム（Ｐ　１５０樹脂）（カラム寸法：直ａ２．ｓ　ｘ　４０）に かけ、このカラムフラクションを蛋白につき監視し、その際２８０　ｎｍにおけ る吸光値と上記のホスホリパーゼ阻止活性分析とを用いた。３５〜４０．０００ 分子量におけるピーク活性を検出した。

これらの高活性フラクションを凍結乾燥し、０．２％ＳＤＳを含有する２５ｍＭ のトリス−ＨＣ１（ｐＨ６，８）で透析し、かつ調製用５ＤＳ−ポリアクリルア ミドゲル（主ゲル：１５％アクリルアミド、０．０８％メチレンビスアクリルア ミド；積層ゲルニア、６％アクリルアミド、０．２１％メチレンビスアクリルア ミド）を用いて分析した。このゲル分析は４つの主たる蛋白帯を与えた。ウェス タン・プロット技術の変法〔Ｈ，トウビン等、「ポリアクリルアミドゲルからニ トロセルロース紙への蛋白の電気泳動」、プロシーディング・ナショナル・アカ デミ−・サイエンス・ＵＳＡ、第７６巻、第４３５０−４３５４頁（１９７９） ）にしたがい西洋ワサビペルオキシダーゼ抗体の結合物を用いて免疫反応物質を 可視化させ、これら４種の主たるバンドの１個のみが蛇静脈リポコルチンに対し 作成した中和抗体と交差反応することを突き止めた。したがって、このゲルの領 域を切除し、電気溶出させかつ含有される蛋白を２０％トリクロル酢酸で沈澱さ せ、そして蛋白を１０，０００ｇでの２０分間の遠心分離によってペレット化さ せた。ペレットを５細Ｉの一２０℃アセトンで２回洗浄した後（各洗浄に続いて 遠心分離工程を行なった）、ペレットを減圧下で乾燥させた。

次いで、蛋白を臭化シアノゲンまたはトリプシンのいずれかで切断した。臭化シ アノゲン切断を用いる場合、約１００μｇの蛋白を含有するペレットを２００ｍ ｇ／ｍｌの臭化シアノゲンにより８ｆ１所中で０．５　ｍｌの７０％蟻酸の存在 下に２５℃にて１６時間切断した０次いで、反応混合物を水で１５倍希釈し、か つこれを凍結乾燥した。トリプシン切断を用いる場合は、先ずペレットをＯ，１ ＭのＮＨ，ＨＣＯ，と０．−１’ｍＭＣａＣＩ２に再（Ｕ濁し、この混合物をイ オド酢酸でカルボキシメチ火花し、次いでトリプシンと共に３７℃にて２４時間 培養した。この培養期間中、トリプシンを０時点にて全蛋白の最終濃度１．５％ になるまで、４時間後に２．５％かつ１９時間後に３．５％になるまで３回添加 した。

これらの切断断片を高圧液体クロマトグラフィーによって前記切断物から分離し 、その際臭化シアノゲン切断生成物についてはＣｓカラム（ブラウンリーＲＰ− ３）を使用し、またトリプシン切断生成物についてはＣＩ８カラム（スペクトラ フインンクス社）を用い、いずれの場合にも０．１％トリフルオロ酢酸における ０〜７５％のアセトントリルの濃度勾配を用いて結合断片を溶出させた０次いで 、ピークフラクションを、気相配列決定装面（アプライド・ビオシステムス社、 ４７０Ａ）を用いて配列分析にかけた。ＰＩＰＨ−アミノ酸を、５μｍシアノカ ラム（ハイパーシル）にて高圧液体クロマトグラフィーにより分離し、その際０ ．０２Ｍ酢酸ナトリウム（ＰＨ５，７）における１５〜５５％のア七ト二トリル 対メタノール（４：１）の濃度勾配を使用した。

第１図は、精製したラフトリポコルチンの臭化シアノゲン切断により精製された 断片のアミノ酸配列を示している。６個の主たるピークのうち３個のみが独特の 配列を与えた（ＣＮＢｒｌ、２および３）、これらの配列を第１図の下に示す、 残余のピークのうち２個（ＣＮＢ　ｒ　５および６）は断片の混合物を含有し、 したがって配列決定することができず、またピーク４は人工力ラムであって、こ れからは蛋白が検出されなかった。

第２図はトリプシン切断からの断片のアミノ酸配列を示している。トリプシン切 断は４０個以上のピークを与えたが、そのうち９個のフラクションのみのアミノ 酸配列を第２図に示す。ピークが２種以上のペプチドを含有する場合、適当なフ ラクションを第２のクロマトグラフ工程にかけた。Ｔ２２ａおよびＴ２２ｂは、 ピーク２２の２種の成分から得られた配列であり、これらを分離させ、その際ピ ーク２２を同じカラムであるが中性ｐＨにて再クロマトグラフにかけた。

Ｂ、リポコルチン蛋白配列のためのオリゴヌクレオチドＤＮＡ試料の合成 つかをコードする対応オリゴヌクレオチドＤＮＡ試料の４種の保存物を化学合成 した（第３図参蝋）、第３図に示した４種の保存物を合成するよう決断した理由 は、これらが最小の核酸縮重を有するラフトリポコルチンの領域に対応するから である。各アミノ酸配列につき、全ての可能なコドンに相補的な試料の混合物を 合成した。さらに、試料がアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列に相補的となる よう（すなわち試料が対応するよう）合成して、これらの試料によりｍＲＮＡ並 びにＤＮＡにおける対応の配列を識別しうるようにした。ラットリポコルチンの ４種の選択領域におけるアミノ酸配列は、並びにこれらをコードする全ての可能 なヌクレオチドコドン組合せを第３図に示す。コード化縮重は次のように示され る：Ｎ＝Ｃ，Ｔ、ＡもしくはＧ；　Ｒ＝ＡもしくはＧ　；　Ｙ＝ＣもしくはＴ； かつＨ＝Ａ、ＣもしくはＴ。

第２図のトリプシン切断断片Ｔ２２ａおよびＴ２４における配列から得られた２ 種の試料の保存物は、それぞれ４８および２５６倍の縮合を有する２０量体であ る。他の２種の試料保存物は、それぞれ６４および１２８倍の縮重を有する１７ 量体である。これら試料においてさらに縮重を低下させるため、各保存物をサブ 保存物に作成し、たとえば７２２ａの４８倍縮＠２０”ｉ体を１６の３種のサブ 保存物に作成しかつ他の試料を４種のサブ保存物に合成した。各保存物における 試料を、〔γ）−Ｐ３１−ＡＴＰおよびＴ４ポリヌクレオチドキナーゼによって ｐ３Ｌで末端標識した。

これらの合成試料が実際にヒト配列を２Δ別するかどうかを試験するため、Ｔ２ ４の４種のサブ保存物をヒト大食細胞ラインＵ９３７からのポリ　（Ａ）＋ｍＲ ＮＡを含有する゛遺伝子スクリーンフィルタにハイブリッド化させ、前記細胞ラ インＵ９３７はノーザンプロット技術により１０−’ＭのＰＭＡ〔４β−ホルボ ールＩ２βミリステート１３α−アセテート〕および１０−５のデキサメクゾン で誘発させたものである（Ｈ，レーランへ等、バイオケミストリー、第１０巻、 第４７４３−４７５１頁（１９７１））、Ｔ２４のサブ保存物２および３はｍＲ ＮＡにバイブリフト化し、これらは自動放射線分析に際し１８００塩基対帯とし て検出された。

Ｃ，ヒトｃＤＮＡｉ存物の作成およびスクリーニングヒト大食細胞ラインＵ９３ ７から分離したポリ　（Ａ）＋ｍＲＮＡよりヒトｃＤＮＡ保存物を作成した。こ のｃＤＮＡ配列をＪｇｔｌＯ中へ挿入し、かつイー・コリＣ６００Ｍ１細胞で増 殖させた。

■、ヒトＵ９３７細胞からのＲＮＡの抽出ヒト大食細胞Ｕ９３７細胞をデキサメ クゾン（Ｉ　Ｑ−５Ｍ）およびホルボールエステル（１０−’　Ｍ）と−緒に培 養して誘発させ、かつ１．２　Ｘ　１０９個の細胞を含有するペレットを４８ｍ １の熔解Ｊｆｉ液（０，２Ｍ　）リス−ＨＣｌ　（ｐＨ８，０）　、０．ＩＭ　 Ｌ　ｉ　Ｃ１、２５ｍＭ　ＥＤＴＡ、　１％Ｓ　Ｄ　Ｓ）　＋　５　ｍＭバナジ ル錯体（ベセスダ・リサーチ・ラボラドリース社）中へ回動により再１ε濁させ た。２４ｍ１のフェノールを添加しがつ５分間回動して細胞を溶解させた。熔解 混合物に２４ｍ１のクロロホルムを添加し、次いで１０分間振とうした。臨床用 遠心分離器で室温にて１０分間遠心分離することにより、有機相と水相とを分離 した。水相をフェノール対クロロホルム（１：　１）で２回再抽出し、次いでク ロロホルムだけで２回抽出した。次いで、０．３　Ｍ酢酸ナトリウム中にて−２ ０’Ｃで核酸を１晩エタノール沈澱させ、そして核酸をツルバー小ＲＣ２Ｂ型遠 心分離器（ＳＳ３４０−タ）により１４Ｋｒｐｍで４℃にて２０分間ペースト化 させた。これらペレットを５ｍ１の０．３　Ｍ酢酸ナトリウム緩１万液に再懸濁 し、かつ核酸を再び上記と同様にエタノール沈澱させた。最終ペレットを３００ μｌの８２０中に再懸濁し、かつこれを−２０℃で保存した。

このＲＮＡ１Ｉｌ製物を、オリゴ（ｄＴ）セルロースカラム（Ｐ’　Ｌバイオケ ミカルス社）に通してポリ　（Ａ）”　ＲＮＡにつき濃上記のように分離した２ ０μｇのポリ　（Ａ）”　ｍＲＮＡがらｃ［）ＮＡを合成した。ポリ　（Ａ）” 　ｍＲＮＡｆｃＨ２０中で５００μｇ／ｍｌまで希釈し、６５℃まで３分間加熱 し、ドライアイス−プロパツール浴中で急速冷却し、次いでこれを解凍させた。

次いで、ＲＮＡを０．１Ｍ）す：２．−ＨＣｌ　（ｐＨ８，３、、１２℃）とＯ ，ＯＩＭ　ＭｇＣｌ２と０．ＯＩＭ　Ｄ　Ｔ　Ｔと１ｍＭｄＣＴＰと１　ｍ　Ｍ 　ｄ　Ｇ　Ｔ　Ｐと１ｍＭ　ｄＴＴＰと０，５ｍＭｄＡＴＰと１００μＣｉ　α −Ｐ”−ＡＴ　Ｐ　（３０００Ｃｉ／ミリモル、アメルシャム社もしくは二ニー ・イングランド、ヌクレア社）と２０Ｍｇオリゴ（ｄＴ）　（ＰＬ−バイＩλ− ＋ｇ オケミカルス社）と０．０３Ｍ　β−メルカプトエタノールと５ｍＭバナジルリ ボヌクレオシド錯体（ベセスグ・リサーチ・ラボラドリース社）と１６９Ｕ　Ａ ＭＶ逆転写酵素（生化学・アメリカ社）とで構成された反応混合物に加えた０反 応混合物の最終容積を２００μｌにした。この混合物を室温で２分間かつ４４℃ で６時間培養した。反応を１／ｌＯ容積の０．５Ｍ　Ｎ　ａ　２　Ｅ　Ｄ　Ｔ　 Ａ　（ｐＨ８，０）の添加によって停止させた。

この反応混合物を０．１５Ｍ　ＮａＯＨに調整し、かつ混合物を３７℃にて１２ 時間培養し、次いで１／工０容積の１Ｍトリス−Ｍ　ＣＩ　（ｐＨ８，０）およ びＨＣＩで中和した。これをフェノール対クロロホルム飽和したＴＥＦｉｉ！衝 液（１０ｍＭトリス−ＨＣＩ　（ｐＨ７，０）および１ｍＭ　ｌ’Ｊａ２　ＥＤ ＴＡ）で抽出した。水相を０．０μＭ　（ｐＨ７，４）　、０．４　Ｍ　Ｎａ　 Ｃ１，０，０１Ｍ　Ｎａ２　ＥＤＴＡ、０．０５％ＳＤＳ中にセファデック７、 Ｇ１５０の７Ｘ２５ｃｍ床を含有する５ｍｌの無菌プラスチックピペットによっ てクロマトグラフにかけた。末端を含まない先端ピークを集め、ｃＤＮＡを２． ５容積の９５％エタノールで一２０℃にて沈澱させた。この反応は１μｇの一本 鎖ｃ　ＤＮＡ一本積ｃＤＮＡを２００μｊ！　（最終容量）の０．１Ｍヘベス（ ｐＨ６，９）　、０．ＯＩＭ　Ｍ　ｇ　ＣＩ　２．０１００２５Ｍ　Ｄ　Ｔ　Ｔ 　、　０．０７Ｍ　ＫＣＩ、１ｍＭ　ｄＸＴＰおよび７５Ｕクレノ一断片Ｄ　Ｎ 　Ａポリメラーゼｌ　（ヘーリンガーマンハイム社）に再モ濁させ、かつ反応混 合物を１４℃にて２１時間培養した。

Ｎ　ａ　２　Ｅ　Ｄ　Ｔ　Ａ　（ｐＨ８，０）を０．０１２５Ｍまで添加して反 応を停止させ、フェノール：クロロホルムで最初のｃＤＮＡ工程におけると同様 に抽出し、水相を０．ＯＩＭ　）リス−ＨＣＩ（ｐＨ７，４）　、０．１　Ｍ　 ＮａＣ１，０，ＯＩＭ　Ｎａ２　ＥＤＴＡ、　０．０５％ＳＤＳにてＧ１５０カ ラムでクロマトグラフにかけた。再び、末端を含まない放射性ピークを集め、Ｄ ＮＡをエタノール沈澱させた。

次いで、４２Ｕ逆転写酵素で得られたＤＮＡを５０μｌの０．１Ｍ）リス−ＨＣ １（ｐＨ８，３）　、０．ＯＩＭ　Ｍｇ　Ｃ１２，０，０１Ｍ　ＤＴＴ、０．１ Ｍ　ＫＣＩ、１ｍＭ　ｄＸＴＰ、０．０３Ｍβ−メルカプトエタノールにて３７ °Ｃで１時間培養して、二重鎖の合成を完結させた。反応を停止させ、かつ上記 と同様に処理した。

二重鎖合成の際に形成されたヘアピンループを次のように切断した：ペレットを ５０μｌの０．０３Ｍ酢酸ナトリウム（ｐＨ４，５）、０．３Ｍ　ＮａＣ１，０ ，００３Ｍ　ＺｎＣｌ２に再熔解させ、かつこれを１６０Ｕの８１ヌクレアーゼ （シグマ社）により室温で３０分間処理した。ＥＴ）ＴＡの添加によって反応を 停止させ、上記と同様に処理した。Ｓ１処理後の収量は９００ｎｇのｄ　５ＤＮ Ａであった。

Ｓ、ヌクレアーゼ切断の後に平滑末端を確保するため、ＤＮＡを０．ＯＩＭ　ト リス−ＨＣｌ　（ｐＨ７，４）　、０．０１Ｍ　ＭｇＣＩ２．１ｍＭ　ＤＴＴ、 ０．０５Ｍ　ＮａＣ１，８０ＭＭ　ｄＸＴＰおよび６０μｌの１２．５Ｕクレノ ーにて１４℃で９０分間処理し、５０　：　５０のフェノール対クロロホルムで 抽出し、かつＤＮＡを０．０１Ｍ　トリス−ＨＣｌ　（ｐＨ７，４）　、０．１ 　Ｍ　Ｎａ　Ｃ１，０，０１Ｍ　ＥＤＴＡ、０．０５％　ＳＤＳにてＧ５０スピ ンカラム（１１注射器）でクロマトグラフにかけた。

次いで、ｄ　ｓ　ＤＮＡをメチル化し、その際ＤＮＡを最終容積３０μｌの０． １Ｍ）リス−ＨＣ１（ｐＨ８，０）　、０．０１ＭＮａ２ＥＤＴＡ、２４Ｍｇ　 ＢＳＡ、０．００５Ｍ　ＤＴＴ、３０ＭＭＳ−アデノシルメチオニンおよび５Ｕ ＥｃｏＲｒメチラーゼにより３７℃で２０分間処理した０反応物を７０℃まで１ ０分間加熱し、冷却し、５０　：　５０のフェノール対クロロホルムで抽出し、 かつ上記と同様に０５０スピンカラムでクロマトグラフにかけた。

９００ｎｇのｃＤＮＡを次の条件により燐酸化ＥｃｏＲＩリンカ（二ニー・イン グランド・ビオラブ社）に結合させた：　０．０５Ｍ　）リス−ＨＣｌ　（ｐＨ ７，８）　、０．ＯＩＭ　ＭｇＣ１２，０，０２Ｍ　ＤＴＴ、１ｍＭ　ＡＴＰ、 ５０μｓ／ｍｌ　ＢＳＡ。

０．５μｇリンカ、３００Ｕ　ＴＡ　ＤＮＡリガーゼ、最終容積７．５．ｕＡ！ 、１４℃にて３２時間。

反応物を０．１Ｍ）リス−ＨＣｌ　（ｐＨ７，５＞　、０．０５ＭＮａＣ１，５ ｍＭ　ＭｇＣｌ２．１００Ｍｇ／ｍｌ　ＢＳＡ。

１２５Ｕ　ＥｃｏＲｒ　（二ニー・イングランド・ビオラブ社）に調整し、混合 物を３７℃にて２時間培養し、５ｏ：５０のフェノール対クロロホルムで抽出し 、かっこのＤＮＡを上記と同様に０５０スピンカラムでクロマトグラフにがけた 。

ｃＤＮＡを１００　ｐ　ｊ！の０．ＯＩＭ　Ｉ−リス−Ｍ　ＣＩ　（ｐＨ７，５ ）、０．１Ｍ　ＮａＣ＋、１ｍＭ　ＥＤＴＡに再熔解し、かつ同じ緩（ｈ液で激 しく洗浄した（結合阻止剤を除去するため）ＩＸ５０ＣＩ！１のビオゲルＡ５０ 　（ビオラド社）カラムにてクロマトグラフにかけた。フラクションの１部をＴ 　Ｂ　Ｅｔｉ市？皮（０，０８９Ｍトリス−ＨＣＩ　、０．０８９　ＭＦｉＲＭ および２．５　ｍ　Ｍ　Ｎ　ａ　２ＥＤＴＡ）における１％アガロースゲルで処 理し、乾燥させかつ一７０℃に１晩露出した。５００塩基対より大きいフラクシ ヨンを全て集め、ＤＮＡをエタノール沈澱させて、ＥＣ０Ｒ１切断されたλｇｔ ｌｏクローン化ベクター中へクローン化させた。寸法分画カラムにより１２６ｎ ｇのｃＤＮＡを得、その平均寸法は約１５００ｂｐであった。

ｃＤＮＡおよびＴ４ＤＮＡリガーゼ緩衝液と共に４２℃にて１５分間培養してｃ ａｓ部位を融合させ、次いでエッペンドルフ遠心分離器で５秒間遠心分離しかつ ＡＴＰを１ｍＭまで添加すると共に、２４００Ｕ　ＴＡ　ＤＮＡリガーゼ（二ニ ー・イングランド・ビオラプス社）を最終容積５０μｌまで加えた〔ヒュン・ヤ ングおよびデービス、「λ’ｇ　ｔ　１０およびλｇｔｌｌにおけるｃＤＮＡ保 存物の作成およびスクリーニングＪ、ＤＮＡクローニング：実際的方法（Ｄ、グ ローバー編集）、ｒＲＬプレス社（オックスフォード１９８４））。

結合物を１４℃にて１晩培養した。λｇｔｌｏｃＤＮＡ結合混合物をアメルシャ ムパッケージ混合物〔アメルシャム・パフケージング・プロトコール〕を用いて ファージ粒子中へ挿入し、かつ０．５　ｍｌのＳＭｂｔｆｆｉ液（１００ｍＭ　 ＮａＣ１，１０ｍＭ　Ｍｇ５Ｏ，，５０ｍＭ）リス−ＨＣ１（ｐＨ７，５）およ び０．０１％ゼラチン）で希釈した。

次いで、イー・コリＣ６００ｈｆｌ細胞にこれらのファージ粒子を感染させてｌ Ｘｌ０’の独立した組換体のｃ　ＤＮＡ保存物を作成した（Ｔ、マニアチス等、 モレキュラ・クローニング、第２３５頁（コールド・スプリング・ハーバ−（１ ９８２））。

保存物を移植しかつ増殖させるため、１ｍｌの細胞および２５０μｌのパッケー ジ混合物を室温で１５分間培養し、ＬＢ＋ＭｇＳＯ４）−／プアガロースで５０ ℃ニテ５０１１１１まで希釈し、かつＬＢ　Ｍｇ　Ｎｕｎｃプレートに移植した 。これは２Ｘ１０５プレートのプラーク密度を示した。これらのプレートを、プ ラークがほぼ接触するまで３７℃にて約８時間培養した。

これらプレートに５０ｍ１の冷ＳＭ緩衝液（０，０１Ｍ　トリス−ＨＣｌ　（ｐ Ｈ７，５＞　、０．ＯＩＭ　Ｍｇ　ＣＩ２．０．１　ｍＭ　Ｎａ２ＥＤＴＡ）を 満たし、かつジャイロ・ロータリー振とつ機ニて４℃でＩ＠溶出させた。溶出液 を２５０ｍ１瓶に集め、ツルバールＧＳＡ型ロータにて６にで１０分間遠心分離 した。上澄液を同容積の冷２０％ＰＥ０４０００−２Ｍ　Ｎａ−Ｃｌにて水中で ３時間処理し、かつこれらファージをＲＣ−３Ｂツルバ一ル型遠心分離器にてＨ ４０００ロータで４Ｋにて３０分間遠心分離することによりペレツト化させた。

ファージペレットを充分に排液し、６０ａ＋ＩＳＭ中に再懸濁させかつ５Ｓ３４ ０−タで１０．ＯＯＯｒｐｍにて遠心分離することにより残骸を除去した。上澄 液を、この上澄液１０ｍ１に７ｇのＣｓＣｌを添加して３．５Ｍ　ＣｓＣ１に調 整した。　７０．１ベンクヤン型ロータで５０．００Ｏｒｐｍにて１５℃で１８ 時間遠心分離することによりファージ帯を得た。これらのファージ帯を集めかつ ４℃にて保存物として蓄えた。得られたタイターは２．２　Ｘ　１０”ＰＦＵ／ ｍｌであった。

標識したオリゴヌクレオチド試料（すなわち保存物２および３）を用いてリボコ ルチン配列につき保存物をスクリーニングし、その際ウーのプラークハイブリッ ド化スクリーニング技術を用いた（Ｓ、Ｌ、Ｃ，ウー、［組換ファージスクリー ニングのための敏感かつ迅速な方法」、メソッズ・イン・エンチモロジー、第６ ８巻、第３８９−３９６頁（アカデミツク・プレス社（１９７９））。

Ｌプロスおよび０．２％マルトースにおけるＣ６００ｈｆｌ細胞の１晩培養物を ペレツト化し、かつ同容積の５Ｍ緩衝液に再懸濁した。０．９　＋＊ｌの細胞に ２Ｘ１０’フア一ジ粒子を室温にて１５分間予備吸着させた。′！！、濁物をＬ Ｂ＋１０ｍＭＭ　ｇ　Ｓ　Ｏ＋および０．７％アガロースにて５５℃で５０ｍ１ まで希釈し、これをＬＢ　Ｍｇ　Ｎｕｎｃプレートに移植した。

この種のプレート１０枚をスクリーニングした。これらプレートを、プラークが ほぼ接触するまで３７℃にて約８時間培養した。次いで、プレートを４℃にて１ 時間冷却してアガロースを硬化させた。遺伝子スクリーン中フィルタをイー・コ リＣ６００ｈｆｌの１晩培養細胞の１＝１０希釈物に室温で１０分間予備浸漬し て、イー・コリ菌体の表層により各フィルタを覆った。次いで、プラーク保存物 プレートからのλフアージ粒子をこれらのバクテリヤ被覆したフィルタへ次のよ うに移した： フィルタを組換プラークを有するプレート上へ５分間載置し、次いで持上げかつ これらフィルタをＬＢ＋１０ｍＭＭ　ｇ　Ｓ　Ｏ＋で直立させたプラーク含有の プレートと共に３７℃にて５時間培養した。

次いで、これらのフィルタを０．５Ｎ　ＮａＯＨのプールに５分間載せて溶菌し 、次いでＬＭ）リス−ＨＣｌ　（ｐＨ７，０）で中和し、１Ｍトリス−ＨＣｌ　 （ｐ）１７．０　）中に浸漬し、かつ菌体の残骸を除去した。

これらフィルタを０．２％ポリビニル−ピロリドン（Ｍ、Ｗ。

４０．０００）　、０．２％フィコール（Ｍ、　ｗ、　４０，０００）　、０． ２％牛血清アルブミン、０．０５Ｍ　トリス−ＨＣ１（ｐ）１７．５　）　、Ｉ 　Ｍ塩化ナトリウム、０．１％ピロ燐酸ナトリウム、１％ＳＤＳ、１０％硫酸デ キストリン（Ｍ、　Ｗ、　５００，０００　）および変性鮭の精子ＤＮＡ　（≧ １００μｇ／ｍｌ）においてオリゴヌクレオチド試料２および３に対し業者の指 示にしたがってハイブリッド化させたにュー・イングランド・ヌクレア社による プラークスクリーニングＩＩ費に対する指示）、自動放射線分析によってハイブ リッド化λ−ｃＤＮＡ配列を検出した。

この技術により、２０個の陽性プラークを釣上げかつ同じ試料を用いて低密度で 再スクリーニングした。

これらクローンのＤＮＡを分離し、ＥｃｏＲＩで切断し、かつこれらをラットの りボコルチン試料の４種の保存物とハイブリッド化し、その際サウザンブロフト 技術を用いた（Ｅ。

Ｍ、サウザン、「ゲル電気泳動により分離したＤＮＡ断片における特定配列の検 出」、ジャーナル・モレキュラ・バイオロジー、第９８巻、第５０３−５１８頁 （１９７５））、２種のクローン、すなわちλ９−１１１およびλ４−２１１は 、Ｔ２４試料だけでなくＴ２２　ａおよびＴ２９試料にもハイブリッド化した挿 入ｃＤＮＡを含有した。

これらファージのＤＮＡをＥＣ０ＲＩで制御し、かつｃＤＮＡ挿入物を分離した 。クローン９−１１１をＥＣ０ＲＩで制限することにより１４００塩基対の断片 を得る一方、クローン４−２１１の制限により３種のＥｃｏＲＩ断片、すわなち 長さ１３００．３００および７５塩基対を得た。これら断片の幾つかをプラスミ ドｐＵｃ１３中へサブクローン化して組換プラスミドｐＬ９／２０　（９−１１ １）　、ｐＬ４／１０大型（４−２１１１３００ｂｐ）およびｐＬ４／１０小型 （４−２１１，３００ｂｐ）を得た０次いで、これらプラスミドをマキサムおよ びギルバートの方法によって配列決定した（Ａ、Ｍ、マキサムおよびＷ、ギルバ ート、ｒＤＮへの新規な配列決定方法」、プロシーディング・ナショナル・アカ デミ−・サイエンス・ＵＳＡ、第７４巻、第５６０−５６４頁（１９７７））。

この配列決定分析は、これらクローンが精製ラットリボコルチンのアミノ酸配列 に一致するが、殆んどの５″配列が欠失していると思われるヌクレオチド配列を 含有することを示した。

ｐＬ９／２０の４８０塩基対旦エユＲ１一旦エユ■断片を試：叫として使用する ことにより、Ｕ９３７／λｇ　ｔ　１０（ｌ存物を再スクリーニングした。陽性 の７２種を分離しかつ低密度で再スクリーニングすることにより、部分的にプラ ークをｆｆｉ　ｍした。これら陽性物のそれぞれのＤＮＡをＨｈａｌで切断し、 かつサウザンプロット技術（Ｅ、Ｍ、サウザン、上記〕により分析し、その際試 料として３０オリゴヌクレオチド配列（リボ１６）を使用した。リボ１６は、第 ４図に示した配列の塩基対８１−１１１で始まる配列に相当する。これらクロー ンのうち１４種は陽性信号を示し、かつこれらをゲノム配列決定によりさらに分 析しＣＧ、チャーチおよびＷ、ギルバート、プロシーディング・ナショナル・ア カデミ−・サイエンス・ＵＳＡ、第８１巻、第１９９１頁（１９８４））、その 際ＤＮＡをＭｓｐ＋で切断すると共にリボ１６を試料とし７て使用した。７種の クローンλＬＩＩＯ，λＬ１０６゜λＬ　１１２．　λＬＣ，λＬＨ，λＬＮお よびノＬＤＤがリボ１Ｇ試料の配列に対し８１塩基対の配列５゛を含んでいた。

これらのクローンは、３６３アミノ酸をコードしうる中断してない開放読枠を有 するｃＤＮＡ配列を有する（第４図参照）、リボコルチンに対する開始ＡＴＧコ ドンは、第４図のヌクレオチド５２〜５４に位五するＡＴＧであると思われる。

しかしながら、第４図に示したクローンのＤＮＡ配列は、天然リボコルチンのＮ −末端におけるアミノ酸をコードする１間もしくはそれ以上のコードを欠失して いると思われる。これらの潜在的な欠失コドンは、必要に応じ慣用のハイブリッ ド化条件を用いてゲノムＤＮＡおよびｃＤＮＡの保存物からこれらのクローン、 より好ましくはこれらクローンの５′末端の部分を試料として用いることにより 分離することができる０次いで、全長クローンを慣用の結合技術およびリボコル チンコード化クローンを用いて作成することができる。

第４図のλＬＣはリボコルチン用の全長遺伝子を有することが確認された。λＬ ＣｃＤＮＡにおけるヌクレオチド５２−５４のＡＴＧ　（第４図）が最初の読枠 内のメチオニンコドンであり、したがって開始メチオンであることを確認するた め、プライマー延長によってリボコルチンｍ　ＲＮ　Ａの５″配列を決定した。

λＬＣの配列１０−３７に同族の２７オリゴヌクレオチド（リボ１８）をｐ　３ Ｌ　＜γ”）−ＡＴＰで標識し、かつヒト胎盤ポリ　（Ａ）”　ＲＮＡにハイブ リッド化させた。

プライマとしてのこのオリゴヌクレオチドとＡＭＶ逆転写酵素とを用いて、リボ コルチンｍＲＮＡの殆んどの５′末端における６０塩基対断片を転写した。この 断片をゲル精製し、かつマキサムおよびギルバートの配列決定技術（上記）によ って配列決定した。得られた配列は、λＬＣの配列１〜３７に同族の３７塩基対 を示すと共に、リボコルチンｍＲＮＡの５′末端を示すさらに２３個のヌクレオ チドを示した。

ｍＲＮＡが実際に２２に示したプライマー延長よりも長く、しかも５′末端と間 違えるような逆転写酵素の強力な停止信号となる可能性を排除するため、ｍＲＮ Ａの正確な寸法を決定した。λＬＣの配列９４〜１２８に対し同族のオリゴヌク レオチド（リボ１７）を、胎盤ポリ　（Ａ）“ＲＮＡにハイブリッド化させかつ ＲＮＡアーゼＨで切断した。ＲＮＡアーゼＨはＲＮＡをＤＮＡとのハイブリッド においてのみ切断し、したがって明確な切断部をｍＲＮＡ中ヘリポ１７がハイブ リッド化した部位に導入する。次いで、ＲＮＡを配列決定用ゲルで分離し、遺伝 子スクリーンでプロットし、がっｐ３１標識したリボ１８で処理した。これによ りリポコルチンｍＲＮＡの５′末端の正確な寸法を決定することができ、これは プライマー延長により得られた寸法に一致した。

本発明のｃＤＮＡ配列をさらに利用してヒトゲノムコスミドもしくはファージ保 存物をスクリーニングし、ヒトリボコルチン様ポリペプチドをコードするヒトゲ ノム配列を分離すスクリーニングしくＲ，ローン等、「クローン化したヒトＤＮ Ａの保存物からの結合δおよびβグロビン遺伝子の分離および特性化」、セル、 第１５巻、第１１５７−１１７４頁におけるクローン化遺伝子の制御発現に有用 なハイブリッドＴｒｐ　Ｌａｃプロモータ」、ジーン、第２５巻、第１６７より 作成した（第５図）（プラスミドｐＬ９／２０）。

これらのヒトＣＤＮＡおよびゲノム配列を使用して、当業界で周知された技術に より真核および原核宿主細胞を形質転換させ、臨床的かつ産業的に有用な量でヒ トリボコルチン様ポリペプチドを産生させることができる。

さらに、本発明のｃＤＮＡ配列は別のスライス物から得られる大型種類のｍＲＮ Ａに含有されることも了解すべきである。この種のｍＲＮＡは、成熟蛋白の他に リポコルチンに対する信号配列をコードする。

プラスミドｐＫＫ２３３．ＬＩＰ、１　（これはりポコルチンコード化領域の部 分配列を有する）は、第４図に示したｐｃＵ１３のＥｃｏＲＩ部位に挿入された λＬＣのｃＤＮＡ挿入物におけるヌクレオチド６７−１３７６のＤＮＡ配列を含 をする。

この結合およびその後のイー・コリ菌株ＨＢＩＯＩ　Ｉ′Ｌへの形質転換によっ て得られた形質転換体を、Ｌブロスとアンピシリンとを含有するマイクロ測定穴 部に入れて、１晩増殖させた。次いで、１晩培＃物をＬグロス寒天とアンピシリ ンとのプレートにおけるニトロセルロースフィルタの上に４反後で複製させ、３ ７℃にて約４時間培養した０次いで、これらニトロセルロースをＩＰＴＧ（１０ μｓ／ｍｌ）を含有するＬプロスプレートに移して０，３０．６０もしくは１２ ０分間培養し、次いでリゾチーム−洗剤で処理して、コロニーを溶菌させ、かつ Ｒ後にラットのりボコルチンに対して作成した交差反応血清を用いてウェスタン プロット分析を行なった。さらに、これら形質転換体をプラスミド制限地図によ って分析した。全てのウェスタン分析の陽性コロニーは、予想制限断片を有する プラスミドを含有した。陽性コロニーからのイー・コリの開裂物をさらにＳＤＳ ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分析した。これら調製物をラットのり ポコルチンに対する抗体を用いてウェスタンプロット分析することにより、分子 ｉ３１．ｏ００の切断蛋白を検出した。

さらに、全長ヒトリボコルチンを産生させるためのイー・コリにおける各種の発 現ベクターを作成した。全ては第４図に示した配列において最初のメチオニンか ら出発する完全な構成である。上記の手順により、ラットのりボコルチンに対し 作成した抗血清を用いて切断蛋白につき発現を確認した。

たとえば、第６図はプラスミドｐＬｉｐｔｒｃ１５５Ａ。

すなわちプラスミドｐＫＫ２３３−２から得られたｔｒｃ発現ベクターを示して いる（Ｅ、アマン等、上記〕。このｐＬｉｐｔｒｃ１５５Ａはハイブリッドプロ モータををし、これはｌａｃからの一１０領域とｔｒｐからの一３５領域とを有 する。さらに、これは５Ｓ　ＲＮＡ　ＴＩ　Ｔ２クーミネータとアンピシリン耐 性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子とを含有する。

ｐＬｊｐｔｒｃ１５５Ａは次のように作成したニブラスミドｐＫＫ２３３−２を ＮｃｏｌおよびＨｉｎｄＩ［［で制限して断片をアガロースゲル電気泳動によっ て分離した。次いで、これら２種の断片を完全切断し、かつ開始ＡＴＧコドンを 有をコードする配列の存在下で結合させた。

次いで、得られたｐＬｉｐｔｒｃ１５５Ａ発現ベクターを用いてイー・コリ菌株 ＪＡ２２１およびＷ３１１０１″を形質転換させ、かつ形質転換した菌株を１ｍ Ｍ　ＩＰＴＧと３５μｇ／ｍ＋アンピシリンとを含有するＬＢ培地中で４時間増 殖させて発現を誘発させた。形質転換宿主細胞の粗製溶解物をＳＤＳポリアクリ ルアミドゲル分析にかけると、見掛は分子量３７ＫｄＯ１個の新たな蛋白帯を示 した。ｐＬｊｐＬｒｃ１５５Ａで形質転換されてない菌株或いはこのプラスミド で形質転換しているが蛋白の産生につき抑制された菌株からの比較抽出物は、こ の３７Ｋｄ蛋白を示さなかった。たとえば、ＪＡ２２１宿主をｐＬｉｐｔｒｃ１ ５５Ａで形質転換させると、３７Ｋｄ蛋白が全蛋白のほぼ２％になることが判明 した。

ヒトリポコルチンを発現することをさらに証明するため、同じｆ６解物をさらに ラットのりポコルチンに対して発生した抗体を用いてウェスタンプロット分析に かけた。３７Ｋｄ蛋白のみがラットの蛋白に対する抗体に免疫反応性を示した。

さらに、ウェスタンプロット分析により、Ｕ９３７細胞からの天然ヒトリポコル チン（抗ラット蛋白抗体に対し免疫反応性により検出される）は、寸法において 発現した３７Ｋｄ蛋白とほぼ同じであり、ゲルの同じ位置に帯を有することを示 した。

最後に、発現した蛋白の少量をＳＤＳポリアクリルアミドゲルから電気溶出させ 、かつＮ−末端配列分析にかけた。得られたアミノ酸配列は、第４図のλＬＣｃ ＤＮＡの予想アミノ酸配列と一致した。

発現されたヒトリポコルチンは、上記実施例Ａで記載したインビトロの分析にお いて外来性のホスホリパーゼＡ２を阻止した。この阻止を、先ず粗製熔解物を用 いかつ後に発現蛋白の一石精製された調整物を用いて検出した。フランス圧力セ ルで作成した粗製熔解物の可溶性フラクションをホスホリパーゼ阻止活性につき 分析した際、下記第１表に示す結果が得られた。阻止活性は、プラスミドｐＬｉ ｐｔｒｃ１５５Ａを含有するイー・コリ溶菌物には検出されたが、このプラスミ ドを含存しないイー・コリからの溶菌物には活性が検出されなかった。ゲル分析 により決定した際、これら２種の抽出物における唯一の差は阻止性フラクション に３７Ｋｄ蛋白が存在することであった。この３７Ｋｄ蛋白は溶菌物における全 蛋白の１％未満であることを突き止めた。さらに、音波処理した溶菌物を分析し た際、同じ結果が得られた。

阻止活性は可溶性の溶菌物に直接検出されたが、イー・コリにおける３７Ｋｄ蛋 白の大部分は不溶性であり、したがって面体をフランスプレスで溶菌させた後に 低速度遠心分離により除去された。この不溶性蛋白をグアニジン塩酸塩で粒状物 質から抽出し、１Ｍ尿素に対し透析し、次いでホスホリパーゼ阻止活性につき分 析した。この分析の結果を下記第■表に示す、透析物は１ＩＩ１１当り約２００ Ｕの阻止活性を有した（ＩＵは１５ｎｇのＡ、を阻止する）。この活性が蛋白の 結果であり、たとえば脂質のような抽出物中の他の成分によるものでないことを 確認するため、第■表で使用した溶菌物２５μｌをトリプシンと共に培養した。

下記第■表に示すように、阻止活性は極めてトリプシン感受性であった。

第１表　粗製イー・コリ溶菌物におけるホスホリパーゼ阻止活性 しないイー・コリのＷ３１１０１　菌株の培養物をＩＰＴＧで誘発させ、かつフ ランス加圧セルで溶菌させた。１０．０００ｇにて２０分間遠心分離することに より粒状物質を除去した。

可溶性フラクションをホスホリパーゼ阻止活性につき分析した。示した数値は、 ５０μｌの抽出物を豚膵臓ホスホリパーゼＡ２の１００ｎＨによって分析した数 回の分析の平均値でＡ２＋イー・コリ、プラスミドなし　０ｐＬｉｐｔｒｃ１５ ５Ａで形質転換させたＪＡ２２１閉体から回収した不溶性調製物（上記の溶菌処 理を用いる）を、２５ｍＭ酢酸ナトリウム（ｐＨ６，０）における６Ｍグアニジ ン塩酸塩に露出させた。粒状物質を遠心分離（１００，０００ｇ、１時間）によ って除去した。ヒト３７Ｋｄ蛋白が極めて濃縮された抽出蛋白を、２５ｍＭ酢酸 ナトリウム（ｐＨ６，０）において１Ｍ尿素に対し透析し、次いでホスホリパー ゼＡ２阻止活第■表に示した部分精製調製物をトリプシンに対し室温で１５分間 露出し、次いで１１００ｎの豚膵臓ホスホリパーゼＡ２を用いて分析した。使用 した条件下において、トリプシン処理はホスホリパーゼＡ２活性を変化させなか った。各試料につき２５μｌの阻止剤を分析した。

Ａ２のみ　００ Ａ２＋阻止剤　０　５４ Ａ２＋阻止剤　１３ Ａ２＋阻止剤　３４ ｐＬｉｐｔｒｃ１５５Ａの他に、本発明の他の高レベルの発現ベクターを作成し た。たとえば、プラスミドｐＬｉｐＰＬＴ４Ａを次のように作成したニブラスミ ドｐＰＬＴ４ＨＴＮＦ〔ワルクー・ファイエルスからの寄贈物、このプラスミド は１９８４年１２月２７日付けでＤＳＭ　隘３１７５としてドイツチェ・ザンム ルング・ホン・ミクロオルガニスメン、ゲッチンゲン、西ドイツ国に寄託したプ ラスミドと同一であり、かつイー・コリ菌株Ｃ６００の範囲内で寄託され、ｐＢ Ｒ３２２−ｐ　Ｌ−Ｔ４−ｈＴＮＦと命名された〕を制限酵素Ｃ１ａ　Ｔおよび Ｈｉｎｄｌ［［で切断して線状断片を得た。プラスミドＩ）　Ｌ　９／２０を） （ｉｎｄｎ［で部分切断し、次いで上エユＲｒにより完全切断し、次いで１３ｓ ｏｂｐ断片をアガロースゲルから分離した。これら２種の断片を、開始ＡＴＣ， を含をコードする配列の存在下で結合させた。得られた発現ベクターにおいて、 ＰＬプロモータはＰＬ、Ｔ４およびリポコルチンｍＲＮＡの配列を含むハイブリ ッドｍＲＮＡの転写を指示する。このｍＲＮＡの翻訳はヒトリポコルチンコード 化配列の最初のＡＴＧから始まり、３７Ｋｄ蛋白を生ずる。第２のテトラサイク リン耐性のプラスミドｐＬｉｐＰＬＴ４を作成し、その際ｐＢＲ３２２のテトラ サイクリン耐性遺伝子をｐＬｉｐＰＬＴ４Ａの５ｃａ１部位に挿入した。

イー・コリ菌株ＭＣ１０６１およびＣ６００ｐＣｉ８５７をｐＬｉｐＰＬＴ４Ａ で形質転換させ、かつＳＤＳポリアクリルアミド電気泳動およびウェスタンプロ ット分析によって上記と同様に発現を決定した。イー・コリ抽出物は、ラットの りボコルチンに対する抗体と反応する３７Ｋｄ蛋白を示した。

Ｅ、酵母におけるヒトリボコルチン蛋白の発現さらに、酵母においてヒトリボコ ルチンを産生させるための発現ベクターを作成した。第７〜９図は９８ｇ１２０ の作成を示し、これは酵母菌体を形質転換させるために使用すると、抗ラットリ ボコルチン抗体を用いるウェスタンプじＩノド分析により検出されるようにヒト リボコルチンを発現する。

９８ｇ１２０は次のように作成したニ ブラスミドｐＬＸＶ−１はイー・コリプラスミドｐＢＲ３２２および酵母プラス ミド２μＤＮＡがらのＤＮＡ複製のオリジンを秀有する。したがって、これはイ ー・コリおよび酵母の両者で複製することができる（Ｊ、アーンスト、ｆＬ的通 信）、プラスミドｐＬＸＶ−１からＢａｍ０１部位を除去し、その際ＢａｍＨＩ で切断し、Ｓ１ヌクレアーゼにより３７゛Ｃにて３０分間処理し、かつＴ４ＤＮ Ａリガーゼによって再環化させた（第７図）。イー・コリＪへ２２１を結合混合 物で形質転換させ、かつプラスミドｐ　ＬＸＶ　−１−Ｂ　ａｍｌｌ　１−で分 離した。

活性遺伝子のＡＴＧ開始コドンをｐＬＸＶ−１で再編成するため、ｐＬＸＶ−１ −ＢａｍＨｒ−をＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄｌｌ）で切断した。活性プロモータ を有する大きい方の■リンカと２個の合成リンカ（リンカ９および１０）とを有 するヒトα１抗トリプシン遺伝子を含有するＤＮＡ断片と結合させた。ＢａｍＨ ＩおよびＨｉｎｄｌｌ＋制限部位をプラスミド中へ挿入するにはα１抗トリプシ ンＤ　Ｎ　Ａ　［、片のみを使用した。α１抗トリプシンをコードする２個の制 限部位間におけるＤＮＡ配列を次いで切除し、リボコルチンＤＮＡ配列で置換し た。プラスミドにこの制限部位を与えるために使用した特定配列は不適切であり 、任意のＤＮＡ配列をα１抗トリプシンＤＮＡの代りに使用することができるで あろう。リンカ９は２種の配列ＡＡＴＴＡＡＣＡＡＴＧＧＡＡおよびＡＡＴＴＡ ＡＣＣＡＴＣ；ＧＡＧの混合物であり、リンカｉｏはＧＡＴＣＣＴＣＣＡＴＧＧ ＴＴおよびＧ　Ａ　Ｔ　ＣＴ　Ｔ　ＣＣＡ　Ｔ　ＴＥｃ　ｏＲＩおよびＢ　ａ　 ｍ　ＨＩ制限部位の喪失をもたらした。

イー・コリＪＡ２２１をこの結合混合物で形質転換させ、かつアンピシリン耐性 およびカナマイシン耐性につき選別して、Ｋａｍ　遺伝子内に位置するＨ　ｉ　 ｎ　ｄ　ｍ部位の再生を確保した。得られたプラスミドをｐＡＰＮと呼ぶ。

第８図は酵母発現ベクター中へのヒトリボコルチンをコードするＤＮＡ配列の挿 入を示している。ヒトリボコルチン配列を２つの部分にクローン化した。第１に 、Ｎ末端領域を酵母アクチン発現制御配列の背後に挿入して作用結合させた。

プラスミドｐＴｒｐ３２１　（Ｒ，デボス等、「ヒトインクロイキン２ｃＤＮＡ の分子クローン化およびイー・コリにおけるその発現」、ヌクレイツク・アシッ ド・リサーチ、第■巻、Ｈ４ｎｄｌＴｈで切断し、大きい方の断片を作成したｐ 　Ｌ　９　／　２０１０９０−リンカ断片に結合させた（上記、第３４頁）。

上記のようにヒトリボコルチンの発現につきスクリーニングしてプラスミドｐＴ ｒｐＨｐを分離した・次いで、ｐＡＰＮをＮｃｏｌで切断しかつ酵母アクチン発 現制御配列を有する小さい方の断片を分離した。この断片を、Ｎｃｏｌで線状化 したｐＴｒｐ−１ｉｐに結合させた。このプラスミドをｐｔｒｐ−１ｉｐ−ａｐ ｎ−ｎｃｏと呼ぶ。

ｐ　ｔ　ｒｐ−１１ｐ−ａｐｎ−ｎｃｏを１（ｉｎｄｌ［ｌで切Ｉ折し、酵母ア クチン発現制御配列とヒトリボコルチンのＮ末端領域に対応するＤＮＡ配列とを 有する断片を分離した。この断片をｐＡＰＮの大きい方の）（ｉｎｄｌＩｌ断片 に結合させ、プラスミドｐＢｇｌ１４を作成した。

ヒトリボコルチンの残余のＣ−末端断片に対応するＤＮＡ配列をｐＬ９／２０の ８００ｂｐ　Ｂｇｌｌｌ−ＢａｍＨＩｔ１片から得た（上記）、（第９図）、ｐ Ｌ９／２０をＢｇｌｒｌおよびｎａｍＨｒで切断し、８００ｂｐ断片を電気熔出 させた。この断片を、Ｊｌｎで切断されているｐＢｇｌｌｌｌに結合させた。ア クチン発現制御配列に作用結合したヒトリボコルチンをコードするＤＮＡ配列を 含むプラスミドｐＢｇ１２０を分離した。

９８ｇ１２０で形質転換させた酵母の抽出物において、３７Ｋｄ蛋白を検出し、 これは形質転換されていない酵１１Ｊ：菌体或いはヒトリボコルチン遺伝子を含 有しないプラスミドで形質転換させた酵母菌体には見られない。この蛋白は、５ ＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動においてイー・コリで産生されたヒｌ− ３７Ｋｄ蛋白に正確に一致した（第１０図）。

酵母においてヒ）３７Ｋｄ蛋白は、可溶性蛋白として産生される。これは全菌体 蛋白の約４％に相当する。組換蛋白を含有する酵母培養物を２０，０００ｐ　ｓ 　ｉにてフランス加圧セルで溶菌させ、かつ粒状物質を遠心分離（１０，０００ ｇ、１０ｍ１ｎ）にて除去し、阻止活性の約８０％が可溶性フラクション中に回 収された。阻止活性の分布は５ＤＳ−ポリアクリルアミドゲル分析に基づくヒト 蛋白の分布に正確に相関する。酵母で産生された組換蛋白は、封鎖アミノ末端を 有する。

Ｆ、哺乳動物細胞におけるヒトリボコルチン蛋白の発現さらに、哺乳動物宿主に おいてヒトリボコルチンを産生させるため、発現ベクターを作成した。第１１− １３図はｐｓＶＬ９１０９の作成を示し、これはＣａ　Ｐ　Ｏ＋方法ＣＦ。

グラハム等、ジャーナル・・パイロロジャー、第５２巻、第４５５−４５６頁（ １９７３））によりｃａｓおよびＣＩＩ　Ｏ宿主細胞中に移植すると、抗ラット のリボコルチン抗体を用いるウェスタンプロット分析により検出されるようにヒ トリボコルチンを発現した。移植してない細胞では見られない３７Ｋｄ免疫反応 性蛋白を検出し、このことはベクターがヒ［７１１止蛋白を産生じたことを示し ている。ｐｓＶＬ９１０９を次のように作成した： 第１１図に示したように、プラスミドｐｓＶ２ｇｐｔ　（Ｒ。

ムリガン等、プロシーディング・ナショナル・アカデミ−・サイエンス・ＵＳＡ 、第７８Ｓ１第２０７２−２０７６頁これを予めＥｃｏＲＩで切断したｐへＴ１ ５３に挿入し、Ｓ１処理し、次いでＨｉｎｄｌＴ＋で切断した。得られたプラス ミドｐＡＴ、ＳＶ２はプロモータを含有した０次いで、このプラスミドをＨｉｎ ｄｌｌ［およびＢａｍＨ［で切断した。この部位へ小型ｔスプライス部位を含有 する配列をクローン化した。

この配列を他のプラスミドｐＴＰＡ１１９から分離し、その際Ｈｉ　ｎ　ｄ　ｍ およびＢａｍＨＩで切断した。３ＫｂＩＩＩ′Ｉ入物はヒト組織プラスミノーゲ ン活性化剤をコードするＤＮＡ配列を小型ｔスプライス部位と共に含有した。こ の配列は、１９８４年８月２１日付けでＡＴＣＣ患３９８０８としてアメリカン ・タイプ・カルチャー・コレクシジン、ロンクビミドｐＡＴ、ＳＶ２．ＴＰＡを 生成させた。このベクターはする。

次いで、ヒトリボコルチン用のコード化配列をｐＡＴ、ＳＶ２、ＴＰＡに挿入し た。ＥｃｏＲＩおよびＨｉ　ｎ　ｄ　ＩＩ末端を有する２９ｂｐのオリゴヌクレ オチドを合成した（第１２図参照）、このオリゴヌクレオチドは、ヒトリボコル チンの最初の６個のアミノ酸をコードする配列を含む。この配列をｐＵＣ９（Ｊ 、ビイエイラ等、ジーン、第１９＠、第２５９−２６８頁（１９８２））にクロ ーン化させ、コ（Ｄ　ｐ　Ｕ　Ｃ９は予め−ＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄｌ［ｌで 切断してｐＬＰＯ９００を生成させたものである。このプラスミドをＥｃｏｎｌ で切断し、かつ牛アルカリホスファターゼで処理した。次いで、ヒトリボコルチ ン用のコード化領域に相当するｐ　Ｌ　９　／　２０からの１．３Ｋｂ　Ｅｃｏ ＲＩ断片をｐＬＰＯ９００にクローン化した。得られたプラスミドｐＬＰＯ９０ ５は上流にＨｉ　ｎ　ｄ　ｍ部位を有するヒトリボコルチン用の全コード化領域 を有する（第１２図参照）。これは、遺伝子がｐＡＴ、ＳＶ２、ＴＰＡのＳＶ４ ０プロモータ背後にクローン化するのに通している。

第１３図は、ヒトリボコルチン用の遺伝子をｐＡＴ、ＳＶ２、ＴＰＡ中に挿入し て本発明の哺乳動物発現ベクターを生成させることを示している。ヒトリボコル チン配列を発現ベクター中に２つの部分でクローン化させた。先ず最初に、Ｎ− 末端領域をＳＶ４０プロモータの背後に挿入し、次いでＣ−末端領域を加えた。

このプラスミドｐＬＰＯ９０５を）（ｉｎｄｎ［およびＢｇｌＩＩで切断し、か つヒトリボコルチンのＮ−末端領域を有する５６０ｂｐ断片を分離した。ｐＡＴ 。

ＳＶ２．ＴＰＡをＨｉｎｄｌｌｌおよびＢ　ｇ　ｌ　１１で切断し、かつベクタ ーを含有する５Ｋｂｌｙｉ片を分離し、これはＴＰＡ配列をもたなかった。この ＨｉｎｄＩ［［−Ｂｇｌｌ＋ベクター中へ、ヒトリボコルチンのＮ−末端領域を 有する５６０ｂｔ）のＨｉｎｄｌ［Ｉ−Ｂｇｌｌｌ断片を挿入してプラスミドｐ 　ｒ、　ｐ　。

９０８を得た。

ヒトリボコルチンのＣ−末端領域は、ｐＬ９／２０の８００次いで５ｏｏｂｐ断 片を電気溶出させた。この断片を、予めＢｇｌＵで切断したプラスミドｐＬＰ０ ９０Ｂ中全結合し、牛アルカリホスファターゼで処理した。このプラスミドｐｓ ＶＬ９１０９を分離した。このプラスミドはＳＶ４０早期プロモータの下流に全 ヒトリボコルチンコード化配列を有し、それに続いてＳＶ４０の小型ｔスプライ ス信号を有した。

プラスミドｐｓＶＬ９１０９を使用して、上記と同様にｃａｓおよびＣＨＯ宿主 を形質転換させた。

かくして、本発明のＤＮＡ配列を用い、ヒトリボコルチンを生物学上活性な形態 で発現する高レベルの発現ベクターを作成した。

ここに記載した方法で作成された組換ＤＮＡ配列は、インビトロ・インｙ−ｔシ ョナル・インコーポレーション、アン・アーバー、ミシガンの培養物寄託機関に 寄託した培養物で例示される。この培養物は１９８５年１月９日付けで寄託し、 次のように同定されている。

λＬＣ：ＩＶＩ　Ｎａ１Ｏ０４２ ここに記載した方法で作成された微生物は、それぞれ１９８５年３月１２日およ び１９８５年８月１４日ｆ寸けで上記寄託機関に寄託された培養物で例示され、 次のように同定されている： イー・コリＷ３１１０１　（１）Ｌｉｐｔｒｃ１５５Ａ）：ＩＶＩ　麹１００４ ６ Ｓ、セレビシエ３３１−１７Ａ　（ｐＢｇ１２０）：ＩＶＩ　Ｎａ１００８８ Ｇ、生物学上活性なヒ１−リボコルチン様ポリペプチド断片の産生 ホスホリパーゼ阻止活性を示し、分子［３７，０００のヒトリボコルチンよりも 小さいポリペプチド断片の産生が極めて望ましい、それより小さいポリペプチド は、たとえば静脈内注射でなく経皮潅流によって標的細胞へ容易に供給される。

さらに、小さいポリペプチドは３７Ｋｄ蛋白よりも安定な構造を有する。たとえ ば、３７Ｋｄ蛋白のＮ−末端は疎水性アミノ酸の１群を有し、これは分子間凝集 物を形成させる一方、Ｃ−末端は適当でないジスルフィルド結合を形成しうる４ 個のシスティンを有する（第４図参照）。したがって、大きい蛋白のＮ−末端お よびＣ−末端の除去は、蛋白を高濃度で産生させる際構造上の異質性を防止する ことができる。さらに、生物学上活性な断片の分離はリボコルチン分子の活性部 位の特性化をより良好にすると共に、最適な治療価値を有する断片の設計を可能 にする。

本発明のこの局面にしたがって親分子からポリペプチド断片を生成させるために 各種の方法を使用しうるが、ここでは　゛ヒトリボコルチン様ポリペプチドを下 記の実施例にしたかって制限プロテアーゼ切断にかけるよう選択した。先ず最初 に、各プロテアーゼにつき切断条件をＨＡ化して、発生ずる断片を一般に１０個 以内の少数となし、したがって容易にｆｌｉ　ｇｌｌすることができる。最適条 件は一般に次の因子によって決定される：（１）使用するプロテアーゼの種類； （２）標的蛋白の物理状態、すなわち変性もしくは非変性条件；（３）切断に要 する時間；（４）温度；（５）使用するプロテアーゼの量；および（ｆ３１ｐＨ 。

３７Ｋｄリボコルチン様ポリペプチドを切断するため、２種の異なるプロテアー ゼを使用した。第１の種類はペプチド結合を非特異的に加水分解する。この種類 は、エラスターゼおよびプロテアーゼ、Ｋプロテアーゼによって代表される。

プロテアーゼプラスミンおよびスロンビンで代表される第２の種類は、特定のペ プチド結合を加水分解する。この第２の種類は、恐らくアミノ酸配列と切断部位 の周囲の構造の両者によって標的蛋白を識別する。さらに、トリプシン、すなわ ち第３の種類のプロテアーゼを使用して、活性ペプチド断片のＣ−末端の位置決 定を行なった（下記に説明）、トリプシンは特定のアミノ酸におけるペプチド結 合を加水分解する。

この種の他のプロテアーゼは、キモトリプシンおよび■８プロチ７−ゼを包含す る。生物学的活性を有する断片を得ることが望ましいため、非変性条件下で切断 を行なった。

プラスミン切断のための条件を最適化させるため、イー・コリ産生させたヒトリ ボコルチン様ポリペプチドの１部（１００μｇ）を１００ｍ１の０．２　Ｍ　） リス−１−Ｉ　ＣＩ　（ｐＨ８，０）、５ｍＭ　ＥＤＴＡと０．ｌｆｆ１ｇ牛血 清アルブミン／ｍｌの溶液で１０１ＪＪ（１μｓ／μｍ）のプラスミン（カルビ オヘム社）と共に室温で培養した。異なる時間間隔で１５μｌを抜取り、８％Ｓ ＤＳを含有する緩衝液５μｌを添加し、次いでこれらの部分を５分間煮沸するこ とにより反応を停止させた。各時点における切断混合物を５ＤＳ−ゲル電気泳動 によっ°Ｃ分析した。第１４図に示した結果は、培養１時間後に、殆んど全部の 蛋白が分子量３３．０００の断片まで切断されたことを示す。この３３に断片は 、より長時間の培養、或いは増加量のプラスミンの存在下のいずれにおいても切 断に対し耐性であった。

上記の切断条件を用いて、５００μｇのヒトリボコルチン様ポリペプチドを７５ μｇのプラスミンと共に１時間１８ｆｆｉした０反応をプロテアーゼ阻止アプロ チニン（シグマ社）２５０ＫＩｔＪによって停止させた。切断試料を、０．２　 Ｍ　＋・リス−ＨＣＩ　（ｐＨ７，５）　、５ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．１％牛血清 アルブミンにより４°Ｃで平衡化させたバイオゲルＰ−６０カラム（１，ＯＸ　 ５０部１ｍ）に装填した。１．１　ｍｌのフラクションを集めた。２８０μｍに て監視した断片の溶出経過は２つの蛋白ピークを示した（第１５図）。各ピーク からのフラクションの１部を高圧液体クロマトグラフィーおよびＳＤＳゲル電気 泳動によって分析した。これらの結果は、ピークＩが分子量３３．０００の断片 を有しくリボ−Ｌと呼ぶ）、かつピーク■が分子量４　、０００の断片（リボ− ８と呼ぶ）を有することを示した。

バイオゲルＰ−６０カラムクロマトグラフィーのフラクションをホスホリパーゼ Ａ２阻止活性につき上記と同様に分析した。活性の大部分はピークＩに関連した （第１５図）、少量の阻止活性がピークＨに検出されたが、この活性は断片濃度 に依存せず、想らく膜に対する断片の非特異的結合によって引起こされたものと 思われる。

さらに、逆相高圧液体クロマトグラフィーによって０１１％トリフルオロ酢酸に おける０〜７５％のア七ト二トリルの濃度勾配により２種の切断生成物を分離し 、そのＦＭ　ｃ　ｘカラムクロマトグラフィー（ビダソク社）を用いた。リボ− ８を３８％アセトニトリルで溶出させ、かつリボ−Ｌを４８％アセトニトリルで ン容出させた。

気相配列決定装置（アプライド・バイオシステムス４７０Ａ）を用いて、順次の エドマン減成によりリボ−Ｌ（３３Ｋ。

ピークＩ）のＮ−末端アミノ酸を決定した。Ｐ　Ｔ　１１−アミノ酸を５μｍの シアノカラム（ハイパーシル社）でｉ［Ｇ　ＬＥｆ＆、　体クロマトグラフィー により分析し、その際０．０２Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５，７）にて１５ 〜５５％のア七トニトリル対メタノール（４：　１）の濃度勾配を用いた。リボ −１７のＮ−末端アミノ酸配列がＮ２　Ｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｇｌ　ｙ −３ｅｒ−Ａｌａ−Ｖａ　ｌであることを確認した。リボ−しのＮ−末端グリシ ンは３７に蛋白のｃｒｙ−３ｏｔに対応する。

断片のＣ−末端アミノ酸配列を決定するため、３７にラットのりボコルチンのト リプシン分解ペプチド地図（第１６図）を、各断片につき作成したトリプシン分 解ペプチド地図と比較した。２０μｉの３７にリボコルチン様ポリペブチＦ（４ ０μｇ）を０．２　Ｍ　）リス−ＨＣＩ　（ｐＨ８，０）、５ｍＭ　ＥＤＴＡ、 ０．１■生血清アルブミン／ｍｌにて０．２　ｍｌの０．１　Ｍ　Ｎ１１．　Ｉ Ｉｃｏ　。

＋１ｍＭ　ＣａＣｌ２で希釈した。次いで、この混合物をトリプシンと共に３７ ℃で２４時間培養した。この培養期間中、トリプシンを３つの時点で加えた。す なわち、０時間に０．５μｇ、４時間後に、０．２５μｇかつ１９時間後に０． ２５μｇ。反応混合物へ９０％蟻酸１０μｌを添加して切断を停止させた。

同一の条件を用いてプラスミン断片を切断したが、ただし先ず最初に高圧液体ク ロマトグラフィーから積装した断片をスピードバック濃縮装置（サバント社）で 乾燥し、かつ残渣を０．１　Ｍ　ＮＨ，ＨＣＯ，および１ｍＭ　ＣａＣｌ２中に 熔解させた。

トリプシン分解断片を逆相高圧液体クロマトグラフィーによりＣ１１ｌカラム（ スペクトラフィシ７クス社）にて０．１％トリフルオロ酢酸中で０〜７５％のア セ１−ニトリルの濃度勾配により解離させた。次いで、各ピークフラクションの °／ミノ酸【！列を決定した。先ず最初に、６ＮＩＩＣ１中でペプチドを２４時 間加水分解しかつべ７ラマン６３００アミノ酸分析器にて組成を決定することに より、各ピークのアミノ酸組成を確認した。観察された組成を３７にポリペプチ ドからの全ての可能な断片の配列データに基づき予想組成と比較し、各ピークを 同定した。さらに、配列分析によってピークの幾つかにおけるアミノ酸配列を直 接に決定した。

断片リボ−しく第１７Ｂ図）の地図を３７　Ｋポリペプチド（第１６図）の地図 と比較することにより、生物学上活性なリポ−Ｌ断片が３７にポリペプチドと同 じＣ−末端アミノ酸配列を有すると結論した。したがって、このデータはＮ−末 端配列データと組合せればリボ−Ｌが３７にポリペプチドのアミノ酸残基隘３０ 〜阻３４６を含有することを示す。断片リボ−８（第１７Ａ図）のペプチド地図 を３７にポリペプチドの地図と比較することにより、リボ−３が３７に蛋白のア ミノ酸残基隘１〜阻２９を有すると結論された。

２６　■　ヒトリボコルチンからのエラスターゼ’Ｍ、ｉＬ！Ｌ！３−　（λ産 　、　離および　ｉヒ ５０μ２の３７にヒトリボコルチン様ポリペプチド（７５＃ｇ）、□０．２Ｍ） リス−ＨＣｌ　（ｐＨ８，０）　、５ｍＭ　ＥＤＴＡ。

０、ＩＴｒｇ牛血清アルブミン／ｍｌを２．５　ｐｇ　（１０ｒｎＭ酢酸アンモ ニウム中ｌμｇ／μＮ　、　ｐＨ６，０）のエラスターゼ（シグマ社）で室温に て処理した。切断生成物を異なる時間間隔で上記と同様に分析して、エラスター ゼ９Ｊ断に対する条件を最適化した。これらの結果は、２０分間の培養がＩＯＫ 〜３３にの範囲の分子量を有する断片を生成したことを示した。

１５０μｇの３７にポリペプチドを５μｇのエラスターゼと共に上記したような 最適条件下で培養し、切断したポリペプチドを５Ｉ）Ｓ−ポリアクリルアミドゲ ル電気泳動にかけた（Ｄ、　Ａ、ハガーおよびＲ，Ｒ，プルゲス、アナリチカル ・バイオケミストリー、第１０９巻、第７６−８６頁（１９８０）　）。

このゲルを０．２５Ｍ　Ｋ　ＣＩ、２ｍＭ　Ｄ’ｒ’Ｔ中に４℃で５〜１０分間 浸漬することにより、ポリペプチドのバンドを可視化させた。次いで、ポリペプ チドのバンドを切除し、ゲルスライス物からＫＣＩを除去し、その際各スライス 物を２ｍＭＤＴＴを含有する脱イオン化水中で室温にて１０分間浸漬した。これ らの断片を次いで室温にてゲルから２時間溶出させ、その際０．１％ＳＤＳ、０ ．２Ｍトリス−１１ＣＩ　（ｐｌ！７．５　）、５ｍＭ　ＥＤＴＡ、５ｍＭ　Ｄ ＴＴ、０．０１％牛血清−？ルプミンの溶液を使用した０次いで、断片を含有す る溶液を氷冷したアセトンの溶液と一７０℃にて混合し、かつ−７０℃にて３０ 分間培養した。１０，０００ｒｐｍ　（Ｓ　Ｓ　３４０−タ）にて４℃で１０分 間遠心分離することにより沈澱物を集め、氷冷した８０％アセトンおよび０．２ 　Ｍ　ｌ−リス−〇　〇　Ｉ　（ｐＨ７，５）と５ｍＭ　ＤＴＴとを含有する２ ０％緩衝液で１回洗浄した。遠心分離により沈澱物を集め、これを減圧下で５〜 ３０分間屹燥させた０次いで、乾燥した粉末を０．２　Ｍ　トリス−１１ＣＩ（ ｐＨ７，９）　、２ｍＭ　ＤＤＴ、５ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．１牛血清アルブミン における６Ｍグアニジン塩酸塩に２０分間で熔解させた。次いで、この溶液に「 再編成（ｒｅｎａｔｕｒａＬｉｏｎ）　Ｊ緩衝液（２０％グリセリンおよび８０ ％０．２　Ｍ　トリス−＋１ＣＩ（ｐＨ７，９）　、２ｍＭ　ＤＴＴ、５ｍＭ’ 　ＥＤＴＡ、０．１’％牛血ン青アルブミン）を加えた。次いで、ごのン容ン皮 を４°Ｃにて１晩静置させた。次いで、上記したようにホスホリパーゼへ。

阻止活性につき分析した。５ＤＳ−ゲル断片の活性を第１８図に示す。断片ｅ− １，ｅ−２，ｅ−３，ｅ−４およびＣ−５はそれぞれ分子量３３に、３０に、２ ７に、２０におｊ、び１８Ｋを有し、ホスホリパーゼＡ２阻止活性を示した。

次いで、調製用５ＤＳ−ゲル電気性ＤＪによって主たる活性断片（第１８図のｅ −１，ｅ−４およびＣ−５）をｌｉ　”Ａ　Ｌ／た。

ゲルを０．２５Ｍ　ＨＣ＋に浸漬してポリペプチド帯を可視化させ、かつ生物学 上活性なポリペプチド帯を切除した。標準技術（Ｍ、Ｗ、バンカピラー、Ｅ、ル ヤン、Ｆ　、オストラダーおよびり、Ｅ、フード、メソッズ・エンチモロジー、 第９１巻、第２２７−２３６頁（１９８３））を用いて断片を電気ン容出させた 。

ｅ−１，ｅ−４およびｅ−５のＮ−末端およびＣ−末端アミノ酸配列を決定した 。精製した断片は全て同一のＮ−末端アミノ酸配列を示した：Ｈ２Ｎ−Ｇｌｙ− Ｇｌｙ−Ｐｒｏ　−〇１ｙ−５ａｒ−Ａｌ　ａ−Ｖａ　１−３ｅｒ−Ｐｒｏ−Ｔ ｙｒ。

このＮ−末端グリシンは３７に蛋白のＧｌｙ−３０に対応する。

第１９図は、これらの精製断片のトリプシン分解ペプチド地図を示している。こ れらの地図を３７に蛋白の地図（第１６図）と比較し、１８にのｅ−５断片がト リプシン分解断片Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−ＧＬｕ−Ａｌ　ａ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ −Ａｒｇ　（３７に蛋白の残基Ｔｈ２０５−２１２）を欠如しかつ全ての断片が このペプチドを越えていることが判明した。

このことは、切断がこのペプチドの前で生じたことを示唆している。ペプチド地 図は断片Ａｓｎ−Ａｌ　ａ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−３ｅｒ−Ｌ、ｅｕ−Ａｌａ−Ｌｙ ｓ　（３７に蛋白の残基隘１７８−１８５）を含有する。したがって、この断片 のＣ−末端は３７に蛋白のＬｙｓ−１８５とＡｒｇ−２１２との間に位置する。

同様に、２０　Ｋのｅ−４断片のペプチド地図は、１８に断片に見られる全ての 断片とさらにペプチドＡｌａ−Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−Ｇｌｕ−八ｌａ−Ｇｌｙ−Ｇｌ ｕ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｌｙｓ　（３７に蛋白の残基Ｎ１２０５−２１４）とを含 有する。したがって、この断片のＣ−末端は３７に蛋白のＬｙｓ−２１４とＡｒ ｇ−２２８との間に存在する。３３にのｅ−１ｍ片のＣ−末端は、３１ＫＮ白の Ｌｙｓ−３３７とＡｓｎ−３４６との間に位置する。

カクシて、３１にリボコルチン様ポリペプチドにおける少なくとも３種の生物学 上活性なペプチド断片を分離した。これら３種の断片は全て、３７にポリペプチ ドのＧｌｙ３０で始まりかつ３７に分子に蓄って異なる点で終端する同一のＮ− 末端を有する。これら３種のものは、全て全寸法のリボコルチン様ポリペプチド のホスホリパーゼＡ２阻止活性を示ず。

イー・コリで産生させたヒトリボコルチン様ポリペプチドからポリペプチド断片 を生成させるため上記方法を使用したが、これらの分子は各種の他の方法によっ て生成させうろことが了解されよう、たとえば、この穏の分子は、ここで用いた ものとは異なるプロテアーゼにより或いはペプチド結合を切断しもしくは合成す る薬剤によって生成させることもできる。さらに、これらの分子は、これらの断 片をコードする切ＩＡＲＤ　Ｎ　Ａ配列の発現によっても生成させることができ る。しかしながら、この方法は各断片につき異なる精製手順を必要とし、かつし ばしば発現ベクター中で不安定なりＮＡＡ配列生ぜしめる。

組換ＤＮＡ技術によりリボコルチン様ポリペプチド断片を発生させる方法は、リ ボコルチンをコードするＤＮＡ配列中へ、ＤＮＡ配列をポリペプチドとして発現 する際にポリペプチドを切断しうる（たとえば、化学的もしくは蛋白分解的に） 部位を生ぜしめるコドンを導入することである。これらのコドンは、たとえば誘 発または挿入などの当業界で知られた各種の技術によってＤＮＡ中へ導入するこ とができる。たとえば、変化したリボコルチン様ポリペプチドを宿主細胞により 産生させ、未変化の全長ポリペプチドと同様に精製し、かつ切断して所望の断片 を生ぜしめる。この手法により本発明のりボッルチンＤＮＡ配列を変化させて、 インビトロにて切断した際ホスホリパーゼＡ２阻止活性を示すリボコルチン様ポ リペプチド断片を生成するような変化したポリペプチドを産生させた。

本発明の１具体例によれば、リボコルチンのＤＮＡ配列を改変させてメチオニン コドンをこの配列中に導入することにより、変化したりボコルチン様ポリペプチ ドをコードするＤＮＡ配列を作成した。宿主細胞にてこの配列を発現させる際、 特定アミノ酸がメチオニンまたは１ｉＴＩ人メチオニンによってポリペプチド配 列に沿った特定部位で置換され°ζいる変化したリボコルチン様ポリペプチドを 産生させた。ポリペプチドをメチオニン残基において特異的に切断する臭化シア ノゲンによってこれらの改変ポリペプチドを処理すれば、ホスホリパーゼＡ２阻 止活性を有するリボコルチン様ポリペブチ１′断片が得られる。

天然ヒトリボコルチン蛋白は、上記例Ｇ（２）に記載したような生物学上活性な エラスクーゼ断片内に含有されるメチオニン残基をアミノ酸５６および１２７部 位に２個のみに有することを認めた。リボコルチン様ポリペプチドを臭化シアノ ゲンで切断するとポリペプチドが不活性化されかつこれによって全ゆる断片が生 成されるので、これらメチオニンの一方または両方が蛋白の生物学的活性に必要 であると１１定した。したがって、臭化シアノゲン処理により活性リボコルチン 様ポリペプチド断片を生成させる予備段階は、リボコルチン蛋白の生物学的活性 を破壊することなく他のアミノ酸によってこれら２個のメチオニンを置換するこ とを必要とする。したがって、メチオニン５６および１２７をロイシン残基で置 換し、かつ臭化シアノゲンの処理に際し生物学的活性なポリペプチド断片を得た 。

リボコルチンをコードするＤＮＡ配列の誘発によってメチオニン５６および１２ ７を次のように置換した：リボコルチンをコードするＤＮＡ配列を含んだプラス ミドｐＬｉｐｔｒｃ１５５Ａ分子を生成させた。さらに、プラスミドｐＫＫ２３ ３−２を制限酵素ＮｃｏＩおよびＨｉｎｄｌｌｆで制限し、リボコルチンをコー ドするＤＮＡ配列の両側でプラスミドを切断した（これらプラスミドの作成に関 する例りおよび第６図参照）。

変性させかつ再融合させた際、これら２種の制限プラスミドの混合物は約１３０ ０塩基対の一本鎮領域にリボコルチンをコードするＤＮＡ配列をもった離間した ヘテロデュプレックスを与えた。変位オリゴヌクレオチドリボ６０および６Ｉを ５′末端で燐酸化し、かつ前記へテロデュプレックス混合物へ３２０倍の過剰で 加えた。リボ６０および６１はリボコルチンＤＮＡ配列の１部に近似するＤＮＡ 配列を有するが、特定のヌクレオチド変化を有して、オリゴヌクレオチド配列の 発現によりそれぞれロイシン残部を有するりボコルチンのｍｅｔ１２７およびｍ ｅｔ５５の置換をもたらす（第２０図）。

したがって、これらのオリゴヌクレオチドは、ヘテロデュプレックス分子の一本 鎮領域にハイブリッド化する。ヘテロデュプレックス分子におけるＤＮＡギャッ プにＤＮＡポリメラーゼ■のクレノー断片を充填し、このＤＮＡをＴ４ポリヌク レオチドキナーゼで結合させた〔モリナガ等、バイオテクノロジー、第２巻、第 ６３６−６３９頁（１９８４））。イー・コリ菌株ＪＡ２２１をこのＤＮＡで形 質転換させ、宿主細胞をＬＢ−アンピシリンプレートで培養して形質転換体を選 択した。

ｐ３２−標識したオリゴヌクレオチドリボ６ｏおよび６Ｉとのハイブリッド化に よる改変リボコルチンＤＮＡ配列を有するこれらコロニーにつき、形質転換体を 次のようにスクリーニングした：コロニーをニトロセルロースフィルタに移しか つフィルタのコロニーを新たなＬＢ−アンピシリンプレートに載置した。このプ レートを３７℃で４時間培養した。次いで、フィルタをアンピシリンとクロラム フェニコール（２５０μｇ／ｍｌ）を含有する新たなＬＢプレートへ移し、がっ このプレートを３７℃にて１晩培養した。コロニーを０．５Ｍ　ＮａＯＨ−１， ５Ｍ　ＮａＣｌで溶菌させ、かつ溶菌物を０．５　Ｍ　）リス−ＨＣ１（ｐＨ７ ，７）　−１，５Ｍ　Ｎａ　Ｃ＋で２回中和した。これらフィルタを減圧オーブ ン中で８０℃にて２時間焼成し、２００ｍ１の６ＸＳＳＰＥ　（０，９Ｍ　Ｎａ Ｃｌ、９０ｍＭ％’ｌ酸ナトリウム、６ｍＭナトリウムＥＤＴＡ、　ｐｌ＋７． ０　）　、０．５％ＳＤＳ、１００．ｕｇ／ｍｌ　ｔＲＮＡおよび５×デンハル ト溶液において５５℃で振とうしながら数時間予備ハイブリッド化した。次いで 、これらフィルタを１０ｐモルのｐ３′Ｌ標識したオリゴヌクレオチドを含有す る予備ハイブリッド化混合物２００ｍ１中で５５℃にて１晩ハイブリツド化させ た。フィルタを６ＸＳＳＰ巳で洗浄し、かつ自動放射線分析によってハイブリッ ド化を検出した（Ｔ、マニアシス等、上記〕。

この手順によって多数の陽性クローンを分離した。これらクローンの１種（リボ ８と呼ぶ）を増殖させ、かつそのプラスミドＤＮＡ（ｐＬｉｐｏ８と呼ぶ）を抽 出し、マキサムおよびギルバートの技術（上記）によって配列決定した。この配 列決定分析は、所望のヌクレオチド置換、すなわちロイシンをコードするコドン によるｍｅｔ５６および１２７をコードするＤＮＡコドンの置換が達成されたこ とを示した。

さらに、リボ８から発現蛋白を抽出し、かつこの門製物を７０％蟻酸における３ ■／ｍｌの臭化シアノゲンで処理してリボコルチン様ポリペプチド断片を生成さ せた。この粗製断片混合物を、上記のインビトロ分析によりホスホリパーゼＡ２ 阻止活性につき試験した。！！を性型のりボコルチンは臭化シアノゲンによる１ 時間の処理で失活されたが、断片混合物は４時間の処理後に活性を示した。次い で、５ＢＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって、この混合物から２６１ （ｄポリペプチド断片を分離しく第２１図および第２２図）、この断片を上記例 Ｇ（２）に記載したように再編した。この精製された断片をホスホリパーゼＡ２ 活性につきインビトロ分析で試験し、この大きい方のリボ８の断片が生物学的活 性を示すことを突き止めた。

得られたリボコルチン様ポリペプチド断片の生物学的活性に影響を及ぼすことな （ｍｅｔ５（ｉおよび１２７を置換しうる可能性を示した後、リボコルチン蛋白 の他のアミノ酸残基をリボコルチン蛋白のアミノ酸配列における各種の部位でメ チオンまたは挿入メチオンで置換することができた。このようにして、生物学的 活性を有する新たなりボコルチンの切断断片を分離した。

たとえば、上記した手法により、リボコルチンのアミノ酸配列における残基１０ ９のロイシンをメチオニンで置換した。

変異オリゴヌクレオチドリボ６８　（第２０図参照）をプラスミドｐＫＫ２３３ −２およびｐＬｉｐｏ８　（これはリボ６゜および６１のヌクレオチド変化以外 は第６図のｐＬｉｐＬｒｃ１５５Ａと同一である）の制限によって生じたヘテロ デュプレックスにハイブリッド化させた。かくして、形質転換１イクリボ１１を 得、これは所望のヌクレオチド変化を有してＬｃｕ１０９をメチオニンで置換す る。ｐＬｉｐｏｌｌＤＮＡをこの形質転換体から抽出し、その配列決定は所望の ヌクレオチド変化が達成されていることを示した。次いで、クローンＬｉｐｏｌ ｌを培養増殖させ、発現蛋白を抽出しかつ臭化シアノゲンで処理して断片を生成 させた。処理蛋白抽出物の５ＤＳ−ポリアクリルアミドゲル濾過によって１４． ６Ｋ　ｄポリペプチド断片を分離しく第２１図参照）　〔ビオラド・カタログ／ プライス・リストＫ、第３７頁（１９８５））、この断片を生物学的活性につき インビトロ分析で分析した。この分析は、リポ１１断片がホスホリパーゼＡ、阻 止活性を有することを示した。

同様に、オリゴヌクレオチドリボ７８　（第２０図参照）を使用して、Ｌｅｕ１ ９８をメチオンで置換する所望のヌクレオチド改変をもった形質転換体リボ１５ を生成させた。良化シアノゲンによる抽出した発現蛋白の切断に続き５ＤＳ−ポ リアクリルアミドゲル濾過を行って、２０．７にポリペプチド断片を精製しく第 ２１図参照）、次いでこれを生物学的活性につき分析した。この分析は、リポ１ ５断片がホスホリパーゼＡ２阻止活性を有することを示した。

代案として、メチオニンをリボコルチンアミノ酸配列中へ残基１６９の個所で挿 入し、その際合成オリゴヌクレオチドをリボコルチンＤＮＡ配列の制限部位に挿 入して、この部位にメチオニン用のコドンを生成させる。ｐ　Ｌ　ｉ　ｐ　ｏ　 ８をｒ３ｇ１■で制限しかつこの部位にオリゴヌクレオチドリボ７５および７６ （第２０図参照）をＴ４リガーゼによって結合させた。

これらの相補的オリゴヌクレオチドは、プラスミド中へ挿入するためのＢｇｌｌ Ｉ部位の凝集性末端に対し相補的な付着性末端をもって作成された。イー・コリ ＴＡ２２１菌体をこの結合混合物へ形質転換させ、かつ形質転換体をＬＢ−アン ピシリンプレートでの増殖によって選択した。これら形質転換体を、制限地図に よって挿入オリゴヌクレオチドの正確な方同性を有するコロニーにつきスクリー ニングした。この種の１つのコロニー（リボ９と呼ぶ）を培養増殖させ、その発 現蛋白を抽出した。粗製蛋白抽出物を臭化ジｒノゲンで処理し、かつ５ＤＳ−ポ リアクリルアミドゲル電気泳動にかけた。

１７．７Ｋ　ｄポリペプチド断片が生成され、他のアミノ酸がこの配列中に導入 され、その際切断された合成オリゴヌクレオチドを挿入させた（第２１図参照） 。

かくして、組換ＤＮＡ技術を用いて少なくとも３種の生物学上活性なりボコルチ ン様ポリペプチド断片を分離した：ずなわちリボ８の２６Ｋｄ断片と、リボ１１ の１４．ＧＫ　ｄ断片と、リボ１５の２０．７Ｋ　ｄ　ｌ！Ｉｉ片とである。し かしながら、上記の手法により他のリボコルチン様ポリペプチド断片を生成させ うろことも了解すべきである（たとえば、リボコルチン“１ミノ酸配列に沿った メチオニンによる他のアミノ酸の置換）。さらに、リボコルチン様断片は、リボ コルチンをコードするＤＮＡ配列を変化させてメチオニン以外のアミノ酸を導入 しもしくは挿入し、変化したポリペプチドを生成さ−Ｕて’Ａｌｈすることもで きる０次いで、このポリペプチドを適当な酵素または薬品で切断して、生物学上 活性な断片を１）Ｉるごとかできる（たとえば、システィンを挿入しがっ蛋白を ＮＴＣ，Ｉ３、ずなわち２−ニトロ−５−チオシアノ安息香酸で切断するごとさ らに、Ｎ−リボコルチン、すなわらホスホリパーゼＡ２阻止活性を示し、かつ本 発明により製造される３７Ｋｄリボコルチンと同族のアミノ酸を有するヒトリボ コルチン様ポリペプチドの１部をコードするヌクレオチド配列を得た。

１、ヒト胎盤からのリボコルチンおよびＮ−リボコルチンの精製 新鮮な胎盤を出産直後に氷上に載せ、６時間以内に次のように処理した＝胎盤の 表皮を除去し、立方体に切断しかつ組織を氷冷したＰ　ＢＳ　（５０ｒｎＭ　Ｎ ａ２　ｔｒｐ　ｏ％　、ｐＨ７，２，１５０ｍＭ　ＮａＣ＋）および５％蔗糖で ３００ｍ１づつ１０回変えて、組織が桃色となりかつ洗浄液によってもはやヘモ グロビンが放出されなくなるまで洗浄した。この洗浄した胎盤は約３５０ｇであ った。

３０ｇの胎盤組織を１５０１の抽出用緩衝液（２５ｍＭ　）リス−ＨＣ１（ｐＨ ７，７）　、５　ｍＭ　ＩＥＤＴＡ、、０．１　ａｔ／ｍｌアプロヂン、０．１ ■／ｍｌ大豆トリプシン阻止剤および４０ｇＭペプスタチンＡ）で洗浄し、次い でこの組織を１００ｍ１の同じ緩ｉｈ液に懸濁させた。調製物をポリトロンによ って氷上で５〜７分間破壊し、ホモゲナイズ物を５Ｓ３４０−夕にて１０．００ Ｏｒｐｍで４℃にて１５分間遠心分離した。上澄液をデカン１〜し、ポリトロン でさらに１００ｍ１の抽出用緩衝液中にてペレットを破壊し、懸濁物を再び１０ ．ＯＯＯｒｐｍで１５分間遠心分離した。両袖出物の上澄液を合しかつ処理した 。

最初に２５ｍＭ）リス−ＨＣ１（ｐＨ７，７）で平衡化させた８０ｍ１カラム（ ＤＥ５２、ワットマン・リミテッド社、カラム寸法：直径２．５　Ｘ　１６　ｃ ｍ）にてＤＥＡＥ−セルロースクロマトグラフィーにかけた。流過したＵｔＩＩ Ｍ物をアミコンＰＭ１０膜での限外濾過により１５ｍ１まで濃縮した。次いで、 濃縮した調製物を５Ｓ３４０−クにて１８，０００ｇで１５分間遠心分離した。

濃縮物の見掛イオン強度は、限外濾過からの流通物の電導度を測定して概算した 。この数値に基づき、濃縮物を水で希釈して２５ｍＭ１−リス−ＨＣｌ　（ｐＨ ７，７）と等しい見ｆＪ）イオン強度にした（１０１の水を加えた）。次いで、 この調製物を４０ｍ１カラムにて第２のＤＥＡＥ−セルロース工程にかけ、さら にＤＥＡＥ流通物を２００ｍＩ　Ｐ１５０カラム（カラム寸法：直径２．５　Ｉ ＩＪＸ　４０　ｃｍ）にてゲル濾過クロマトグラフィーにより分画し、これも２ ５ｍＭ）リス−ＭＣＩ（ｐＨ７，７）において行なった。この溶出物の５ｍｌフ ラクションを集め、その１部を上記例Ａに記載したインビトロ分析によりホスホ リパーゼ阻止活性につき分析した。この分析によれば、溶出物は阻止活性を有す る単一の幅広ピークを有し、これはゲル濾過により測定して４０にの見掛分子皇 を有した。

さらに、熔出物の１部を５ＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって特性 化した。このゲル分析は、熔出物における阻止活性が３５Ｋｄにおける主たる蛋 白帯に相当することを示した。ウェスタン・プロット分析は、３５Ｋｄハントが イー・コリで産生された１■換リボコルチンに対するウサギ抗血清に免疫反応性 であることを示した。

次いで、ゲル濾過カラムからの熔出物を０４カラム（ハイダック社）での逆相高 圧液体クロマトグラフィー（Ｉｔ　Ｐ　１．　Ｃ）にかけ、その際０．１％トリ フルオロ酢酸中で０〜７５％のア七ト二トリルの濃度勾配を用いて結合断片を溶 出させた。この溶出物は実際に２種の３５Ｋｄ成分を有することが判明した。す なわち、６５．８％アセトニトリルでカラムからｌ８出した天然ヒトリボコルチ ン成分と、６５．１％アセトニトリルで溶出したＮ−リボコルチン成分とである 。天然リボコルチン成分のみが、組換リボコルチンに対し発生した抗体に免疫反 応性であった。

ホスホリパーゼＡ２阻止活性を保持するように、これら２種の成分をさらに＄ｉ 製するため、ゲル濾過カラムからの部分精製した調製物をモノＳ高解像陽イオン クロマトグラフィー樹脂（ＨＲ５１５、ファルマシア社）にて迅速蛋白液体クロ マトグラフィー（Ｆ　Ｐ　Ｌ　Ｃ，ファルマシア社）にかけた。

５０ｍＭのＭＥＳ緩街液（２−モルモリノーエタンスルホン酸）中ＰＨ６，０に おいて、両成分はモノＳカラムに結合し、ＮａＣ１の濃縮勾配で溶出させた。第 ２３図は蛋白の溶出経過（２８０μｍで監視した吸光度）（パネルＡ）およびモ ノＳカラムからのホスホリパーゼＡ２阻止活性の経過（パネルＢ）を示している 。パネルＡにおいて、ピークＩはリボコルチンに相当し、かつビーク■はＮ−リ ボコルチンに相当する。

ビーク■における物質のみが、組換りボコルチンに対するウサギ抗血清に免疫反 応性であった。パネルＢは、明らかにリボコルチンとＮ−リボコルチンとの両者 がホスホリパーゼＡ２阻止活性を有することを示している。精製調製物における この相対量に基づき、ホスホリパーゼ阻止剤としての２種の蛋白の特異活性はほ ぼ同一であると推定された。

さらに、これら２種の蛋白をトリプシン分解地図化によって分析した。大部分の 胎盤を処理し、上記の手順により蛋白を精製した。７８液およびカラムの寸法お よび容積を適当に調節した。２種の３５Ｋｄ蛋白を逆相ＨＰ　Ｌ　Ｃで分離した 後、各Ｒｔｍ蛋白の１００μｇを次のようにトリプシン分解地図化分析にかけた ：適当なＨＰＬＣフラクションを減圧下にスピード・バック・濃縮装置（サバン ト社）で乾燥させ、得られたペレットを４００μρの０．１　Ｍｉｉ炭酸アンモ ニウム（ｐＨ８，０゜０．１　ｍＭ　Ｃａ　ＣＩ　２　）中に再懸濁さセ、そし て混合物をトリプシンで切断した。ＴＰＣＫ−トリプシン（ワーシントン社、全 部で５μｇ）を１００μｇの蛋白に加え、かつ切断を３７℃にて１６時間行なっ た。トリプシンは３つの等しい部分として加えた。すなわち、第１のものは０時 間で、第２のものは４時間後に、かつ第３のものは培養１２時間後にそれぞれ加 えた。この切断物を、２０％（Ｖ／Ｖ）までの蟻酸によって酸性化させた。

次いで、トリプシン切断からの切断断片を、例Ａにおいて前記したようにＣ１Ｂ カラムにて４０℃で逆相高圧液体クロマトグラフィーにより分離させた。カラム 熔出物は２１４ｎｍで監視した。リボコルチン（パネルＡ）およびＮ−リボコル チン（パネルＢ）のトリプシン分解地図を第２４図に示す。

胎盤から分離された天然ヒトリボコルチンのトリプシン分解地図は、ヒト大食細 胞ｃＤＮＡの発現により得られた３７Ｋｄリボコルチンからのトリプシン分解地 図と同一である。ｌ）Ｎへ配列分析は、胎盤リボコルチンと大食細胞由来のりボ コルチンとの間の２種のアミノ酸の相違を示した。Ｎ−リボコルチンの地図は、 蛋白が独特であることを示している。

Ｎ−リボコルチンのトリプシン分解地図から得られた１１個のピークに対応する 溶出フラクションをスピード・バック・濃縮装置で濃縮し、これらを気相配列決 定装置（アプライド・バイオシステムス４７０Ａ）を用いてアミノ末醋１蛋白配 列分析にかけた。エドマン減成の各サイクルから得られたＰ　Ｔ　Ｈアミノ酸を アプライド・バイオシステムス１２０ＡのＰ　Ｔ　Ｉ（分析装置により逆相高圧 液体クロマトグラフィーで分析した。これらの分析から得られた配列を第２５図 に示り（第２５図における配列の左側のｒＴＪ数値は、図面の頂部におけるカラ ム経過で示されるピーク数に対応する）。

Ｎ−リボコルチンのペプチド配列は大部分が独特であるが、幾つかは本発明にし たがって絹製されたヒトリボコルチンと同様な配列を示し、このことは２種の３ ５Ｋｄ成分（ずなわち、それぞれリボコルチンおよびＮ−リボコルチン）が同じ 種類の蛋白から誘導されうろことを示唆している。第２５図に示したように、現 在までＮ−リボコルチン分子の約１／３の主構造を決定した。多数の断片を有す る）Ｉ　Ｐ　Ｌ　Ｃビークから得られたこれら断片の配列は当業界で知られた技 術によって決定しうるので、実際に分子の約５０％の主構造を決定するのに必要 なデータを与えたことになる。

ヒト胎盤からのＮ−リボコルチンにおける各種領域のアミノ酸配列を決定した後 、これら蛋白配列の幾つかをコードする対応のオリゴヌクレオチドＤＮＡ試料に つき４種の保存物を化学合成した（第２５図参照）０組換リボコルチンにつき例 Ｂで前記したと同じ手段および手法を使用した。Ｎ−リボコルチンの４つの選択 領域に関するアミノ酸配列並びにこれらをコードする全ゆる可能なヌクレオチド コドン組合せを第２６図に示す。コード化縮ｍは次のように示される：Ｎ＝Ｃ。

Ｔ、ＡもしくはＧ　ｉ　Ｒ＝ＡもしくはＧｉＹ＝ＣもしくはＴ；Ｈ＝Ａ、Ｃもし くはＴＨｐ＝ｃもしくはＣ；Ｘ＝Ａ、ＧもしくはＴ、Ｈ＝ＡもしくはＴ。

第２６図に示したように、ＤＮＡ試料の４種の保存物はそれぞれトリプシン分解 断片Ｔ２０．Ｔ２５．Ｔ２４およびＴ９のアミノ酸配列に対応する。試料におけ る縮ｍをさらに減少させるため、各保存物をサブ保存物として作成した。断片Ｔ ２０のアミノ酸配列に対応するオリゴヌクレオチドＮＬｉｐ！”ＮＬｉｐ３は、 １２８倍の縮重を有する２４個体である。

オリゴヌクレオチドＮＬｉｐ４〜ＮＬｉｐ７は３２倍の縮ｍを有する１８個体で あり、かつ断片Ｔ２５のアミノ酸配列に対応する。オリゴヌクレオチドＮＬ　ｒ 　ｐ　ｓ〜ＮＬｉｐＨは７２倍の縮重を有す番２０量体であって断片Ｔ２４のア ミノ酸配列に対応し、またＮＬｉｐ１２〜ＮＬｉｐ１５は１２８倍の縮重を有す る１７個体であって断片Ｔ９のアミノ酸配列に由来する。

これら合成試料が実際にヒト配列を識別するかどうかを試験するため、３種のサ ブ保存物ＮＬｉｐ１．ＮＬｉｐ２およびＮＬｉｐ３を（ｒ）−Ｐ”−ＡＴ、Ｐ右 よびＴ４ポリヌクレオチドキナーゼを用いてｐ３１で末端標識した後、ヒト胎盤 からのポリ　（Ａ）”　ｍＲＮＡを含有する遺伝子スクリーンフィルタにハイブ リッド化させ、その際ノーザンプロット技術を用いた〔Ｈ，レーラッへ等、上記 〕。サブ保存物ＮＬｉｐ＋は、リボコルチンｍＲＮＡと同じ寸法と思われる１８ ００ヌクレオチドｍＲＮＡにハイブリッド化した。

Ｋ、ヒト胎Ｉｌｌ　ｃ　Ｄ　Ｎ　Ａ保存物の作成およびスクリーニングヒト胎盤 より分Ａ１シたポリ　（Δ）”　ｍＲＮＡからヒトｃＤＮＡ保存物を、ヒト大食 細胞ｃＤＮＡ保存物の作成につき例Ｃで前記したとほぼ同じ手順で作成した。し かしながら、この具体例においては女性胎児のヒト胎盤から全ＲＮＡをＪ。

Ｍ、シャーゲイン等によって実質的に記載されたグアムシンインチオシアネート 法によって抽出した〔バイオケミストリー、第１８巻、第５２９４−５２９９頁 （１９７９））。このＲＮｌｌｌＪｍ物を、オリゴ（ｄｔ）−セルロースカラム （ＰＬバイオケム社）に２回通してポリ　（Ａ）”　ＲＮＡにつき濃Ｌ？Ｊし、 これを使用して二重鎖ｃＤＮＡ配列を合成し、次いでこれをＡｇｔｌＯ中に挿入 すると共に、イー・コリＣ６００Ｍ１菌体で増殖させた。

ヒト胎１１７４　ｃ　Ｄ　Ｎ　Ａ保存物を下記するようなニトロセル［Ｉ−スフ イルタによって標識オリゴヌクレオチド試料（ＮＬｉｐｌ）でスクリーニングし た。Ｌブロスおよび０．２％マルトースにおけるＣ６００ｈｆｌ菌体の１晩培養 物をベレット化させかつ同量のＳＭ緩（ｈ液に再懸濁した。０．９　ｍｌの菌体 に２×１０６個のファージ粒子を室温で１５分間予備吸着させた。

懸濁物をＬＢ＋１０ｍＭ　ＭｇＳＯ４および０．７％アガロース中で５５℃にて ５０１まで希釈し、これをＬＢプレート＋１０ｍＭ　Ｍｇ５Ｏ，に移植した。３ ０枚のこれらプレートをスクリーニングした。プレートを３７℃にて約５時間培 養し、次いで４℃に１時間冷却してアガロースを硬化させた。

次いで、λフアージ粒子をプラーク保存プレートからＳ＆Ｓニトロセルロースフ ィルタに移し、その際フィルタを組換プラークを有するプレート上へ５分間Ｍ！ した。次いで、プレートからフィルタを持ち上げ、フィルタ上のファージを溶菌 させ、その際フィルタを０．５Ｎ　Ｎａ１ｌ（−１，５Ｍ　ＮａＣｌの溶液上に ５分間載置し、さらに中和しかつフィルタを１Ｍトリス−ＨＣｌ−１，５Ｍ　Ｎ ａＣｌ　（ｐＨ７、ｏ）に？ｉ　？Ａした。

次いで、フィルタを風乾しかつ８０℃にて２時間焼成した。

処理したフィルタを０．２％ポリビニルピロリドン（Ｍ、Ｗ。

４０．０００）　、０．２％フィコール（Ｍ、　Ｗ、　４００，０００　）　、 ０．２％牛血清アルブミン、０．０５Ｍ　ｌ−リス−ＨＣＩ　（ｐ！１７．５　 ）　、Ｉ　Ｍ塩化ナトリウム、０．１％ピロ燐酸ナトリウム、１％ＳＤＳ。

１０％硫酸デキストラン（Ｍ、　Ｗ、　５００，０００　）および変性鮭精子Ｄ ＮＡ　（≧１００１１ｇ　／＋ｎｌ）においてコロニー／プラークスクリーン（ 登録商標）メンプランに対する製造業者の［旨示にューイングランド・ヌクレア 社）にしたがいオリゴヌクレオチド試料（ＮＬｉｐｌ）に予備ハイブリッド化し 、かつハイブリッド化させた。自動放射線分析によってハイブリ７ド化するｃＤ ＮＡ配列を検出した。

この技術により６種の陽性プラークを釣上げ、かつ同じ試Ｉｌｌを用いて低密度 にて再スクリーニングした。これらクローンのＤＮＡを分離し、このＤＮＡをＥ ｃｏＲＩで切断し、そしてサウザン・プロット技術によりこれら配列をＮＬ　ｉ 　ｐ　１試料とハイブリッド化させた（Ｅ、　Ｍ、サウザン、上記〕。

全部で６種のクローンのｃＤＮＤＮＡ挿入物ｌ、ｉｐｌ試料にハイブリッド化し た。

ｃ　ＤＮＡ挿入物を分離した。これらり電コーンの１種（λ−ＮＬｉｐｏ２１− ２）（７）ＥｃｏＲＩによる切断は約５００塩対断片をもたらし、これをプラス ミドｐＵｃ９にザプク［１−ン化してプラスミドｐＮＩｉｐｌを生成さ・ｌた。

このう°ラスミドをマキサムおよびギルバートの方法によって配列決定した（Ａ 、　Ｍ、マキサムおよびＷ、ギルバート、」二ε己〕。第２７図に示したように 、このプラスミドは３９４塩基対のｃｌ）ＮＡ挿入物を有し、この挿入物はＮ− リボコルチンコード配列（３３アミノ酸に対応する）の９９塩基対を有し、さら にポリ　（Ａ）付加部位を含めＮ−リボコルチン３′非コード化領域の２９５塩 基対および約５０ｋＸＡ基対のポリ　（八）末端をも有する。Ｎ−リボコルチン のＤＮＡコード化配列はトリプシン分解断片Ｔ２０から誘導されたオリゴヌクレ オチド試料に対応する配列（すなわちＮＬ　ｉ　ｐ　１）だけでなく、トリプシ ン分解断片Ｔ３２に対応する配列をも含有しく第２５図参照）、このことはＮ− リボコルチン蛋白をコードする遺伝子の１部がクローン化されたことを確認する 。ごのｃｐＮＡ配列並びに例Ｊで記載したオリゴヌクレオチド試料を次いで試料 として使用することにより、全長Ｎ−リボコルチンをコードするＤＮＡ配列をス クリーニングしかつ分離した。

クローンλＮ１１ｐｏ２１−２は蛋白の小領域のみをコードするＮ−リボコルチ ンＤＮＡ配列を有するが、リボコルチンとＮ−リボコルチンとの間の構造類似性 がこのｆＩ域に保持される。下記第４表に示すように、２種の蛋白におけるカル ボキシル末端の最後の１７個のアミノ酸のうち１１個は同一である。５つの相違 点のうち殆んどはアミノ酸置換が保持されている。２種の蛋白におけるホスホリ パーゼＡ２阻止活性の類似性、並びに蛋白およびＤＮＡ配列の類似性に基づき、 Ｎ−リボコルチンとりボコルチンとは１群の関連蛋白であると結論した。

リボコルチンおよびＮ−リボコルチンのＣ−末端における配列類似性 リボ：ＧＩｎＬｙｓＭｅ　ｔＴｙ　ｒＧｌ　ｙ　Ｉ　Ｉ　ｅＳｅ　ｒｌ、ｅｕＣ ｙｓＧＩｎ人ＩａｌｌｅＬｅｕ− Ｎ−リボ：ＬｙｓＡｒｇＬｙｓＴｙｒＧＩｙＬｙｓＳｅｒＬｅｕＴｙｒＴｙｒＴ ｙｒｌＬｅＧＩｎ　−リボ：ＡｓｐＧＩｕＴｈｒＬｙｓＧｌｙΔ５ｐＴｙｒＧｌ ｕＬｙｓｌｌｅＬｅｕＶａｌＡＩａ− Ｎ−リボ：ＧｌｎΔ５ｐＴｈｒＬｙｓＧｌｙＡｓｐＴｙｒＧＩｎＬｙｓＡｌａＬ ｅｕＬｅｕＴｙｒ−リボ：ＬｅｕＣｙｓＧｌｙＧＩｙＡｓｎＮ−リボ：ＬｅｕＣ ｙｓＧｌｙＧＩｙへ５ｐＡｓｐ本発明のリボコルチンおよびＮ−リボコルチンに おけるヌクレオチド配列の比較はほぼ６０％の類似性を示している（第２８図参 照）。

ここに開示した方法により作成された微生物および組換ＤＮＡ配列は、インビト ロ・インターナショナル・インコーポレーション・アン・アーバー、ミシガン州 のカルチャーコレクションに寄託した培養物で例示される。この培養物は１９８ ６年１月８日付けで寄託され、次のように同定されている： イー・コリ　ＪＡ２２１　（ｐＮＬｉｐｌ）：ＩＶ１ｍｌＯ０９３ 蛋白の産生レベルは３つの主因子・によって支配される：すなわち細胞内の遺伝 子のコピー数、これら遺伝子コピーを転写する効率、およびこれらを翻訳する効 率である。転ｘｇおよび翻訳（これらは−緒になって発現を構成する）の効率は 、−１Ｉｈに所望のコード化配列の先端に位置するヌクレオチド配列に依存する 。これらのヌクレオチド配列または発現制御配列は、特にＲＮＡポリメラーゼが 互いに反応して転写を開始する位置（プロモータ配列）およびリポソームが結合 しかつｍＲＮＡ（転写の生成物）と相互作用して翻訳を開始する部位を規定する 。必ずしも全てのこれら発現制御配列が同等の効率を有するとは限らない。した がって、本発明の特定リボコルチンコード化配列をそのＶ４接ヌクレオチド配列 から分節１しかつこれらを他の公知の発現制御配列に融合させてより高レベルの 発現を促進すると共に、リボコルチン様ポリペプチドを産生させるのが有利であ る。これを達成した後、新たに作成されたＤＮＡ配列をより多いコピー数のプラ スミドまたはバタテリオファージ誘導体に挿入して、細胞内の遺伝子コピー数を 増加させ、これによりさらに発現リボコルチン様ポリペプチドの収量を増大させ ることができる。

上記のように、数種の発現制御配列を使用することができる。これらはイー・コ リのラクトースオペロン（１”ｊｔａｃ系」）のオペレータ、プロモータ並びに リポソーム結合および相互作用配列（たとえば、シャインーダルガルノ配列のよ うな配列を含む）、イー・コリのトリプトファンシンセクーゼ系Ｃｒｔｒｐ系」 ）の対応配列、ファージλの主オペレータおよびプロモータ領域（上記のような ０ＬＰＬおよびＯ＆Ｐ＆）、その他の糖分解酵素のプロモータ、酸ホスファター ゼのプロモータ（たとえば、Ｐｂｏ２）、酵母α−結合因子のプｌ′１モーク、 たとえばＳＶ４０早期および後期プロモータのような　゛咄乳動物細胞のプロモ ータ、アデノウィルス後期プロモータおよびメタロチオニンブロモータ、並びに 原核もしくは真核細胞およびウィルスの遺伝子の発現を制御する他の配列または その組合せを包含する。

したがって、本発明のりボコルチン様ポリペプヂドの産／−１を向上させるには 、これらポリペプチドのＤＮＡ配列をｎｉｉ記と同様に作成しかつ組換ＤＮＡ分 子中へその最初の発現制御配列の近傍に挿入し、或いは上記向上した発現制御配 列の制御下に挿入することができる。この種の方法は当業界で公知である。

翻訳の効率を向上させるのに有用な他の方法は、化学的もしくは酵素的に作成し たオリゴヌクレオチドを本発明のリボコルチン関連ＤＮＡ配列の開始コドンの前 に挿入すること、或いはＤＮＡ配列のＮ−末端におけるコドンを化学的もしくは 酵素的に作成したこれらオリゴヌクレオチドで置換することを含む。この手順に より、ＲＮＡの一層最適な一次およびより高次の構造を得ることができる。より 詳細には、開始ＡＵＧコドンがヘアピンの頂部或いは他の単−鎮領域のいずれか における容易にアクセスしうる位置（すなわち二次構造により遮蔽されていない ）で生ずるように配列を設計することができる。上記ジャインーダルガルノ断片 の位置および配列を同様に最適化することができる。メンセンジャｒｌＮＡの一 般構造（重ね構造）の重要性は既に記載されているＣＤ。

イセレンタントおよびＷ、ファイエルス、ｒｍＲＮＡの二次構造および翻訳開始 のｖＪ率」、ジーン、第９巻、第１−１２頁（１９８０））。

本発明のリボコルチン様ポリペプチドの細胞収皿における増加は、さらに細胞内 で使用しうる遺伝子の個数を増加させて達成することもできる。これは、リボコ ルチン遺伝子（その転写および翻訳制御要素を有するまたは持たない）をより多 いコピー数のプラスミド中へまたは温度制御されたコピー数のプラスミド（すな わち、プラスミドのコピー数が温度の変化の後に増加するような変異を有するプ ラスミ１′）中に１．１？人して達成することができる（Ｂ、ニーリン等、「ク ローン化遺伝子およびその生産物の増殖に対する温度依存性コピー数を有するプ ラスミド」、ジーン、第６巻、第９１−１０６頁（１９７９））。

代案として、遺伝子没入量における増加は、たとえば上記のように処理された組 換ＤＮＡ遺伝子を雛型バクテリオファージλ中へ挿入することにより、特に簡単 にはプラスミドを制限酵素で切断して線状分子を与え、これを次いで制限ファー ジスクローン化ベヒクル（たとえば、Ｎ、　Ｅ、マレ−等により「インビトロ組 換体における回収を単純化させるλファージ」、モレキュラー・ゼネラル・ジェ ネティンクス、第１５０巻、第５３−６１頁（１９７７）およびＮ、　Ｅ、マレ −等、「バタテリオファージＴ４からのＤＮＡリガーゼ苗伝子の分子クローン化 」、ジャーナル・モレキュラー・バイオロジー、第１３２巻、第４９３−５０５ 頁（１９７９）に記載された種類〕と混合し、組換ＤＮＡ分子をＤＮＡリガーゼ との培養により生成させて達成することができる。次いで、所望の組換ファージ を選択し、かつこれを使用してイー・コリの宿主菌株をリソゲナイズする。

したがって、本発明のりボコルチン様ポリペプチドを二２−ドする配列を開示し たベクターから除去すると共に、これを他の発現ベクター中へ前記のように挿入 し、これらベクターを前記したように各種の宿主中で使用して本発明のヒトリボ コルチン様ポリペプチドの産生を向上させうることを了解ずべきである。

以上、本発明を多くの具体例につき説明したが、本発明の基本的構成を変化させ て本発明の方法および組成物を使用する他の具体例を与えることもできる。した がって、本発明の範囲は、例として上記した特定具体例のみに限定されないこと が了解されよう。

ＦＩＧ、６ ＦＩＧ、８ ＦＩＧ、９ ＦＩＧ、／／ ＦＩＧ、／２ ＦＩＧ、／３ ｆｒｏｍ　ｐＬＰ（：）９Ｑ５ ＦＩＧ、／７ １：ＬＡｓＴＡｓＥ　Ｄ／Ｇ；ｌ’５ＴＦＩＧ、／９ 持泪ｏ６２５０１６７９　（３０） ＦＩＧ、２２ ＦＩＧ、２３ ／：ｌ？Ｉ（：　７１θＩ／　ＮＵＭ５１に一／Ｉ！７０１０２０　Ｊθ４０５ ０　Ｚ　７θａ：）　９０１（Ｘ）　／ｌＯ／／’Ｉ！７１１０　／Ｉｔ）　Ｉ ；０　／６０１７１）　^！Ｋ） ｆ”ｌ？ＡＣ；’１０Ｎ〜ＵＭ８εＲ ＦＩＧ、２４ 、１．事件の表示 ＰＣＴ／ＵＳ　８６１０００２７ ２、発明の名称 ３、補正をする者 事件との関係　特許出願人 国際調査報告 ←Ｉ＃Ｌ内ＩＩＩ＋６−＾＋＋ｅ１１ｃ畠１１・”ｏＰＣＴ／ＵＳ８６１０００ でΣ１ｉ

Claims (26)

【特許請求の範囲】
1. １．ヒトリポコルチン様ポリペプチドをコードし、かつ（ａ）λＬＣのｃＤＮＡ 挿入物 （ｂ）前記ＤＮＡ挿入物にハイブリッド化しかつ発現に際しヒトリポコルチン様 ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列、および （ｃ）前記ｃＤＮＡ挿入物またはＤＮＡ配列によって発現に際しコードされたヒ トリポコルチン様ポリペプチドを発現に際しコードするＤＮＡ配列 よりなる群から選択されるＤＮＡ配列を特徴とする組換ＤＮＡ分子。
2. ２．ＤＮＡ配列が配列 【配列があります】 よりなる群から選択される請求の範囲第１項記載の組換ＤＮＡ分子。
3. ３．ヒトリポコルチン様ポリペプチドをコードし、かつ（ａ）λＮＬｉｐｏ２１ −２のｃＤＮＡ挿入物（ｂ）前記ＤＮＡ挿入物にハイブリッド化しかつ発現に際 しヒトリポコルチン様ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列、および （ｃ）前記ｃＤＮＡ挿入物またはＤＮＡ配列によって発現に際しコードされたヒ トリポコルテン様ポリペプチドを発現に際しコードするＤＮＡ配列 よりなる群から選択されるＤＮＡ配列を特徴とする組換ＤＮＡ分子。
4. ４．ＤＮＡ配列が式： 【配列があります】 を有する請求の範囲第３項記載の組換ＤＮＡ分子。
5. ５．ＤＮＡ配列が分子中の発現制御配列に作用結合されている請求の範囲第１項 、第２項または第３項記載の組換ＤＮＡ分子。
6. ６．発現制御配列がｌａｃ系、β−ラクタマ−ゼ系、ｔｒｐ糸、ｔａｃ系、ｔｒ ｃ系、ファージλの主オペレータおよびプロモータ、ｆｄコート蛋白の制御領域 、３−ホスホグリセレートキナーゼもしくはその他の糖分解酵素のプロモーク、 酸ホスファクーゼのプロモーク、酵母α−結合因子のプロモータ、哺乳動物細胞 のプロモーク、ＳＶ４０の早期および後期プロモータ、アデノウイルスの後期プ ロモータおよびメクロチオニンプロモータ並びに原核もしくは真核細胞よびその ウイルスの遺伝子の発現を制御するその他の配列、およびその組合せよりなる群 から選択される請求の範囲第５項記載の組換ＤＮＡ分子。
7. ７．ｐＬｉｐＰＬＴ４Ａ、ｐＬｉｐＰＬＴ４ＴおよびｐＳＶＬ９１０９よりなる 群から選択される請求の範囲第５項記載の組換ＤＮＡ分子。
8. ８．ｐＢｇ１２０からなる請求の範囲第５項記載の組換ＤＮＡ分子。
9. ９．ｐＮｌｉｐｌからなる請求の範囲第４項記載の組換ＤＮＡ分子。
10. １０．請求の範囲第５項記載の少なくとも１種の組換ＤＮＡ分子により形質転換 された単細胞宿主。
11. １１．イー・コリ、シュードモナス、バチルス、ストレプトミセス、酵母、その 他の真菌類の菌株、ネズミもしくはその他の動物宿主、植物宿主およびヒト組織 細胞よりなる群から選択される請求の範囲第１０項記載の形質転換宿主。
12. １２．ヒトリポコルチン様ポリペプチド。
13. １３．（ａ）成熟リポコルチン、 （ｂ）ｍｅｔ−リポコルチン、および （ｃ）リポコルチンの生物学的もしくは免疫学的活性を示すポリペプチドもしく はペプチド よりなる群から選択される請求の範囲第１２項記載のポリペプチド。
14. １４．（ａ）成熟Ｎ−リポコルチン、 （ｂ）ｍｅｔ−Ｎ−リポコルチン、 （ｃ）Ｎ−リポコルチンの生物学的もしくは免疫学的活性を示すポリペプチドも しくはペプチド よりなる群から選択される請求の範囲第１２項記載のポリペプチド。
15. １５．請求の範囲第１０項記載の形質転換宿主により産生されるヒトリポコルテ ン様ポリペプチド。
16. １６．ポリペプチドが、 （ａ）リポ−Ｌ、 （ｂ）ｅ−ｌ、 （ｃ）ｅ−２、 （ｄ）ｅ−３、 （ｅ）ｅ−４、 （ｆ）ｅ−５、 （ｇ）リポ８の２６Ｋｄ断片、 （ｈ）リポ１１の１４．６Ｋｄ断片、および（ｉ）リポ１５の２０．７Ｋｄ断片 よりなる群から選択される請求の範囲第１２項記載のポリペプチド。
17. １７．ポリペプチドが成熟リポコルチンのアミノ酸配列Ａ３０〜Ａ３４６を有す る請求の範囲第１２項記載のポリペプチド。
18. １８．配列： 【配列があります】 よりなる群から選択されるヒトリポコルチン様ポリペプチド。
19. １９．ポリペプチドが式： 【配列があります】 のアミノ酸配列を含むことを特徴とする請求の範囲第１４項記載のポリペプチド 。
20. ２０．配列： 【配列があります】 よりなる群から選択されるＤＮＡ配列。
21. ２１．式： 【配列があります】 のＤＮＡ配列。
22. ２２．請求の範囲第５項記載の組換ＤＮＡ分子によって形質転換された宿主を培 養しかつヒトリポコルチン様ポリペプチドを回収することを特徴とするヒトリポ コルチン様ポリペプチドの製造方法。
23. ２３．関節炎、アレルギー症、皮膚病、眼病および膠原病、並びに炎症経過を含 むその他の障害を治療するのに有用な医薬上許容しうる組成物において、請求の 範囲第１２項，第１３項，第１５項，第１６項，第１７項または第１８項記載の ポリペプチドよりなる群から選択される少なくとも１種のポリペプチドを医薬上 有効量で含むことを特徴とする医薬上許容しうる組成物。
24. ２４．請求の範囲第１４項または第１９項記載の少なくとも１種のポリペプチド を医薬上有効量で含むことを特徴とする関節炎、アレルギー症、皮膚病、眼病お よび膠原病、並びに炎症経過を含むその他の障害を治療するのに有用な医薬上許 容しうる組成物。
25. ２５．医薬上有効量の請求の範囲第２３項記載の組成物を投与することを特徴と する関節炎、アレルギー症、皮膚病、眼病および膠原病、並びに炎症経過を含む その他の障害の治療方法。
26. ２６．医薬上有効量の請求の範囲第２４項記載の組成物を投与することを特徴と する関節炎、アレルギー症、皮膚病、眼病および膠原病、並びに炎症経過を含む その他の障害の治療方法。