JPS63141585A - N―アセチルマンノサミン脱水素酵素 - Google Patents
N―アセチルマンノサミン脱水素酵素Info
- Publication number
- JPS63141585A JPS63141585A JP28784386A JP28784386A JPS63141585A JP S63141585 A JPS63141585 A JP S63141585A JP 28784386 A JP28784386 A JP 28784386A JP 28784386 A JP28784386 A JP 28784386A JP S63141585 A JPS63141585 A JP S63141585A
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- JP
- Japan
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- acetylmannosamine
- enzyme
- flavobacterium
- dehydrogenase
- culture
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〈産業上の利用分野〉
サミノラクトンにすると共に、NAD ヲNADHに還
元スる新規なN−アセチルマンノサミン脱水素酵素(以
下N−AMDHという)及びその製造法に関する。
元スる新規なN−アセチルマンノサミン脱水素酵素(以
下N−AMDHという)及びその製造法に関する。
〈従来の技術〉
最近、臨床検査の分野において血清中の/アル酸の測定
が行なわれており、急性及び慢性炎症、ショック、外傷
、心筋梗塞、糖尿病、肝疾患、各種癌等の病態を診断す
るのに重要な役割を持っている。
が行なわれており、急性及び慢性炎症、ショック、外傷
、心筋梗塞、糖尿病、肝疾患、各種癌等の病態を診断す
るのに重要な役割を持っている。
このシアル酸を測定するにあたって大別して化学法と酵
素法がある。
素法がある。
化学法は特異性や操作性、更には危険薬品類の使用等、
望ましくない点が多いため徐々に精度の高い酵素法に移
って来ているのが実情である。
望ましくない点が多いため徐々に精度の高い酵素法に移
って来ているのが実情である。
酵素法には現在大きく別けてA、82つの方法が提案さ
れている。
れている。
シアル酸にフイラミン酸アルドラーゼを作用さ−2−エ
ピメラーゼとN−7セチルヘキソサミンオキシダーゼで
過酸化水素を生成させて測定するものであり、B法はピ
ルビン酸からピルビン酸オキシダーゼまたは乳酸脱水素
酵素(LDH)で、それぞれ過酸化水素またはNADH
を生成させて測定するものである。
ピメラーゼとN−7セチルヘキソサミンオキシダーゼで
過酸化水素を生成させて測定するものであり、B法はピ
ルビン酸からピルビン酸オキシダーゼまたは乳酸脱水素
酵素(LDH)で、それぞれ過酸化水素またはNADH
を生成させて測定するものである。
〈発明が解決しようとする問題点〉
しかし、A法はアシルグルコサミン−2−エピメラーゼ
が介在する分だけ系は複雑となり、B法は内因性のピル
ビン酸の影響を受けるという欠点がある。
が介在する分だけ系は複雑となり、B法は内因性のピル
ビン酸の影響を受けるという欠点がある。
本発明者等は操作が簡単でしかも精度の高いシアル酸の
測定法について検討したところ、土壌から分離したフラ
ボバクテリウム属に属する1細菌カ、N−AMに作用し
てN−7セチルマンノサミノラクトンにすると共に、N
ADをNADHに還元すなわち本発明はN−AMに作用
してN−アセチルマンノサミノラクトンにすると共に、
NADをNADHに還元する新規な酵素N−AMDHで
あり、また本発明はフラボバクテリウム属に属し、N−
AMDH生産能を有する菌株を培地に培養し、培養物よ
りN−AMDHを採取することを特徴とするN−AMD
Hの製造法である。
測定法について検討したところ、土壌から分離したフラ
ボバクテリウム属に属する1細菌カ、N−AMに作用し
てN−7セチルマンノサミノラクトンにすると共に、N
ADをNADHに還元すなわち本発明はN−AMに作用
してN−アセチルマンノサミノラクトンにすると共に、
NADをNADHに還元する新規な酵素N−AMDHで
あり、また本発明はフラボバクテリウム属に属し、N−
AMDH生産能を有する菌株を培地に培養し、培養物よ
りN−AMDHを採取することを特徴とするN−AMD
Hの製造法である。
く問題点を解決するための手段〉
以下本発明を具体的に説明する。
本発明における新規酵素N−AMDHの理化学的性質は
下記の通りである◇ (1)作用及び基質特異性 次の反応式に示されるごとく、N−AMとNADの共存
下でN−AMをN−7セチルマンノサミノラクトンに酸
化すると共に、NADをNADHに還元する。
下記の通りである◇ (1)作用及び基質特異性 次の反応式に示されるごとく、N−AMとNADの共存
下でN−AMをN−7セチルマンノサミノラクトンに酸
化すると共に、NADをNADHに還元する。
N−7セチルマンノサミノラクトンは水中では更に自動
的に加水分解されてN−アセチルマンノサミン酸ンこな
る。故に反応は事実上不可逆的である。他の中性糖やヘ
キソサミン、N−7セチルグルコサミン、N−7セチル
ガラクトサミンに対し”では全く、もしくはほとんど作
用しない。またNADPヤ2.6−シクロロフエノール
インドフエノール等を電子受容体として、はとんど利用
しない。
的に加水分解されてN−アセチルマンノサミン酸ンこな
る。故に反応は事実上不可逆的である。他の中性糖やヘ
キソサミン、N−7セチルグルコサミン、N−7セチル
ガラクトサミンに対し”では全く、もしくはほとんど作
用しない。またNADPヤ2.6−シクロロフエノール
インドフエノール等を電子受容体として、はとんど利用
しない。
(2)至適pH及び安定pH範囲
トリス−塩酸緩衝液を用いた場合、至適pHは8.0〜
9.0である。
9.0である。
またリン酸カリウム緩衝液、トリス−塩酸緩衝液及びグ
リシン−苛性ソーダ緩衝液を用いて酵素活性を測定した
結果は第1図に示すとおりであるO 安定pH範囲は第2図に示すごとく8.5〜9.5であ
る。
リシン−苛性ソーダ緩衝液を用いて酵素活性を測定した
結果は第1図に示すとおりであるO 安定pH範囲は第2図に示すごとく8.5〜9.5であ
る。
使用緩衝液はリン酸カリウム緩衝液、トリス−塩酸緩衝
液、グリシン−苛性ソーダ松衝液である◇ (3)作用適温の範囲 第3図に示すごと<35〜50°Cである。
液、グリシン−苛性ソーダ松衝液である◇ (3)作用適温の範囲 第3図に示すごと<35〜50°Cである。
(41pH、温度等による失活の条件
第4図に示すごと< 10分間の熱処理では45°Cま
で安定であり、それ以上の温度では急速に失活する。4
5°C110分間の熱処理ではpH8,5〜9.5で安
定であり、pH7以下では特に不安定である。
で安定であり、それ以上の温度では急速に失活する。4
5°C110分間の熱処理ではpH8,5〜9.5で安
定であり、pH7以下では特に不安定である。
(5)阻害剤の影響及び安定化
上表は各種金属イオン及び阻害剤を2 mMの濃度で含
有する反応液中での酵素活性を測定したものである。活
性化及び安定化のために特別に寄与する物質は知られて
いない。
有する反応液中での酵素活性を測定したものである。活
性化及び安定化のために特別に寄与する物質は知られて
いない。
(6)精製方法
本酵素のIcL離・精製は常法に従って行なうことがで
き、例えばDEAE−セルロースを用いたカラムクロマ
トグラフィー、硫安法R1DEAE −セファデックス
を用いたカラムクロマトグラフィー、5’AMP七ファ
ロースヲ用いたカラムクロマトグラフィー、セファデッ
クスによるゲル濾過等の精製手段を単独もしくは適宜組
合わせて使用する。
き、例えばDEAE−セルロースを用いたカラムクロマ
トグラフィー、硫安法R1DEAE −セファデックス
を用いたカラムクロマトグラフィー、5’AMP七ファ
ロースヲ用いたカラムクロマトグラフィー、セファデッ
クスによるゲル濾過等の精製手段を単独もしくは適宜組
合わせて使用する。
(7)分子量
0.05 M )リス−塩酸緩衝液<0.1 M Na
C1含有)を用いてセファデックスG −200のカラ
ムによるゲル濾過法により測定した値は約11万〜12
万である。
C1含有)を用いてセファデックスG −200のカラ
ムによるゲル濾過法により測定した値は約11万〜12
万である。
(8)ポリアクリルアミドゲル電気泳動7.5%ポリア
クリルアミドゲルを用いて常法によってアクリルアミド
ディスク電気泳動を行なった結果、第5図に示すごとく
、はぼ単一のバンドが認められた。4 mAで1時間2
0分後の泳動距離は28龍である。
クリルアミドゲルを用いて常法によってアクリルアミド
ディスク電気泳動を行なった結果、第5図に示すごとく
、はぼ単一のバンドが認められた。4 mAで1時間2
0分後の泳動距離は28龍である。
(9)等電点
アクリルアミドゲル焦点電気泳動により測定した値は4
.9である。
.9である。
(II活性の測定法
0.05 M l−リス−塩酸緩衝液(pH8,2’)
1.8mlに60 mM NAD溶液0.1mlを加
える。37°Cに10分間保った後、酵素液10μgを
加え、0.3MN−AM溶液0.1mlを加えて混合し
、反応を始める。直ちに37°Cに保った吸光度測定用
セル(lc+++光路)に移し、340 nmの波長で
1分ごとに5分または必要であればそれ以上の時間にわ
たって吸光度を測定する。1単位は1分間に1μモルの
NADf−Iを生成させる酵素量である。
1.8mlに60 mM NAD溶液0.1mlを加
える。37°Cに10分間保った後、酵素液10μgを
加え、0.3MN−AM溶液0.1mlを加えて混合し
、反応を始める。直ちに37°Cに保った吸光度測定用
セル(lc+++光路)に移し、340 nmの波長で
1分ごとに5分または必要であればそれ以上の時間にわ
たって吸光度を測定する。1単位は1分間に1μモルの
NADf−Iを生成させる酵素量である。
以上のように本酵素はその作用及び基質特異性において
従来全く知られていない新規な酵素である。
従来全く知られていない新規な酵素である。
次に本発明による新規な酵素N−AMDHの製造法につ
いて説明する。
いて説明する。
使用される微生物はフラボバクテリウム属に属し、N−
AMDH生産能を有する菌株であって、そノ具体例とし
てはフラボバクテリウムspA 141−8が挙げられ
、原菌の変種もしくは変異株も用いられる。フラボバク
テリウム81)、NL 141−8は本発明者等が土壌
中より分離した菌株であり、その菌学的性質は下記の通
りである。
AMDH生産能を有する菌株であって、そノ具体例とし
てはフラボバクテリウムspA 141−8が挙げられ
、原菌の変種もしくは変異株も用いられる。フラボバク
テリウム81)、NL 141−8は本発明者等が土壌
中より分離した菌株であり、その菌学的性質は下記の通
りである。
(a)形態
顕微鏡的観察(30°C加糖ブイヨン培地、16時間培
養) ■細胞の大きさ:0.45〜0.5 X O,5〜11
ミクロンの桿菌 ■細胞の多形性二球状に近いものから比較的長い桿状の
ものまである。末端で 相互につながった短い連鎖状態も 散見する。
養) ■細胞の大きさ:0.45〜0.5 X O,5〜11
ミクロンの桿菌 ■細胞の多形性二球状に近いものから比較的長い桿状の
ものまである。末端で 相互につながった短い連鎖状態も 散見する。
■運動性:認められなし・。
■ダラム染色性:陰性
■抗酸性:陰性
(b) 各培地における生育状態
■肉汁寒天平板培養=30°C12日間の培養で直径0
.5龍の円形平滑で半透明な コロニーを作る。生育は比較的よ くない。
.5龍の円形平滑で半透明な コロニーを作る。生育は比較的よ くない。
■加糖肉汁寒天平板培養:30°C,2日間で直径0.
8+++mの円形平滑で半透明なコロニー、5日間で2
.0〜2.5ff肩の乳白色の粘液状のコロニーを作 る。色素の生成は認められない。
8+++mの円形平滑で半透明なコロニー、5日間で2
.0〜2.5ff肩の乳白色の粘液状のコロニーを作 る。色素の生成は認められない。
■加糖肉汁寒天斜面培地=30°C,2日間で乳濁した
粘液状になり、3日間での 培養では下方に流下し底部にたま る。
粘液状になり、3日間での 培養では下方に流下し底部にたま る。
■加糖肉汁液体培地=30°C,2日間の培養で少し生
育する。
育する。
■肉汁ゼラチン穿刺培養:30’C,3日間でわずかに
生育するが液化はしない。
生育するが液化はしない。
■ リドマスミルク:変化なし、凝固もしな(亀。
(c) 生理的性質
■硝酸塩の還元:陽性
■脱窒反応:陰性
■MRテスト:陰性。ただし好気的培養では陽性。
■vpテスト:陰性
■インドールの生成:陰性
■硫化水素の生成:陰性
■デンプンの加水分解:陰性
■ クエン酸の利用:陰性
■無機窒素源の利用:アンモニアは利用するが硝酸は利
用しない。
用しない。
■色素の生成:陰性
■ウレアーゼ:陽性
■オキシダーゼ:陽性
0カタラーゼ:陽性
0生育の範囲:15°C〜41″C(至適温度30°C
)pH4,5〜8.5(至適pH6,5付近) ■酸素に対する態度:好気性であるが嫌気的にもわずか
に生育する。
)pH4,5〜8.5(至適pH6,5付近) ■酸素に対する態度:好気性であるが嫌気的にもわずか
に生育する。
■O−Fテスト:変化なし、又は極めて弱い発酵。
■糖類から酸及びガスの生成:*は好気的培養による。
秦酸の生成 ガスの生成
[0L−7ラビノース 十 −(2)D−
キンロース + −口 D−グルコース
士 −[I]D−マンノース 十
−圓 D−フラクトース + −圓
D−ガラクトース + −ロ麦芽糖 十
− l 庶 糖 十
−(9)乳 糖 十
−■ トレハロース + −[
1lD−ソルビット + −11i1
D−マンニット 十 −口 イノノット
十 −Bグリセリン 十
− 皿 デンプン −− (d) その他の性質 ■ペニシリン耐性=100単位/ areでも生育する
。
キンロース + −口 D−グルコース
士 −[I]D−マンノース 十
−圓 D−フラクトース + −圓
D−ガラクトース + −ロ麦芽糖 十
− l 庶 糖 十
−(9)乳 糖 十
−■ トレハロース + −[
1lD−ソルビット + −11i1
D−マンニット 十 −口 イノノット
十 −Bグリセリン 十
− 皿 デンプン −− (d) その他の性質 ■ペニシリン耐性=100単位/ areでも生育する
。
■食塩耐性:25%以上で生育しない。
■コロニー辺縁部の運動性:流動性は見られない。
■Tween 80分解:陰性
■エクスリンの分解:陰性
以上の新規なN−AMDH生産能を有する本菌の分類学
的諸性質を「パージエイズ・マニーアル・オブ・システ
マチック・バクテリオロジー」(1984年)第1巻の
分類と対比すると、本菌はダラム染色性が陰性、好気性
の無胞子桿菌で運動性を持たず、カタラーゼ陽性、オキ
シダーゼ陽性で多くの糖から好気的条件で酸を生成する
、ペニシリン耐性であるなどの性質からフラボバクテリ
ウム属に属すると思われる。
的諸性質を「パージエイズ・マニーアル・オブ・システ
マチック・バクテリオロジー」(1984年)第1巻の
分類と対比すると、本菌はダラム染色性が陰性、好気性
の無胞子桿菌で運動性を持たず、カタラーゼ陽性、オキ
シダーゼ陽性で多くの糖から好気的条件で酸を生成する
、ペニシリン耐性であるなどの性質からフラボバクテリ
ウム属に属すると思われる。
好気的条件での糖から酸を生成する性質から、フラボバ
クテリウム・スビリツチポラン(Flavobacte
rium spiritivorum )に近縁と思
われるが、エスクリンの分解、硝酸塩の還元、Twee
n 80の分解などの点で異なっており、従来知られて
いない新規な菌株と思われる。
クテリウム・スビリツチポラン(Flavobacte
rium spiritivorum )に近縁と思
われるが、エスクリンの分解、硝酸塩の還元、Twee
n 80の分解などの点で異なっており、従来知られて
いない新規な菌株と思われる。
以上の理由により本菌をフラボバクテリウムsp、 N
L 141−8と命名した。なお、フラボバクテリウム
sp、 Nu 141−8は通商産業省工業技術院微生
物工業技術研究所に微工研条寄第1222号(FERM
BP−1222)として寄託されている。
L 141−8と命名した。なお、フラボバクテリウム
sp、 Nu 141−8は通商産業省工業技術院微生
物工業技術研究所に微工研条寄第1222号(FERM
BP−1222)として寄託されている。
次に本発明で使用する培地としては、炭素源、窒素源、
無機物、その他の栄養素を適宜含有する培地ならば合成
培地または天然培地のいずれでも使用可能である。炭素
源としてはグルコース、ガラクトース、フラクトース、
午シロース、グリセリン等を用いることができる。窒素
源としてはアンモニウム塩の他にペプトン、カゼイン消
化物、グルタミン酸ソーダ、酵母エキス等の窒素性有機
物が好適に使用できる。無機物としては、ナトリウム、
カリウム、マグネシウム、マンガン、カルシウム、鉄等
の塩類が使用できる。
無機物、その他の栄養素を適宜含有する培地ならば合成
培地または天然培地のいずれでも使用可能である。炭素
源としてはグルコース、ガラクトース、フラクトース、
午シロース、グリセリン等を用いることができる。窒素
源としてはアンモニウム塩の他にペプトン、カゼイン消
化物、グルタミン酸ソーダ、酵母エキス等の窒素性有機
物が好適に使用できる。無機物としては、ナトリウム、
カリウム、マグネシウム、マンガン、カルシウム、鉄等
の塩類が使用できる。
本発明においては、N−AMDH生産能を有する菌株な
N AMまたはN−7七チルグルコサミンを含有する培
地で培養または浸漬したときにN−AMDHが収量よく
得られる。該培養培地の好適な例としては、N−AM
0.5%、肉エキス0.1%、ポリペプトン0.5%、
酵母エキス0.2%、食塩0.14%、燐酸水素−カリ
ウム0.1%、pH6,8の培地例が挙げられる。そし
て該培地で30°C136時間通気撹拌培養した場合は
、N−AMを他の炭素源におきかえた場合の10〜10
0倍の生産力価を得ることができる。
N AMまたはN−7七チルグルコサミンを含有する培
地で培養または浸漬したときにN−AMDHが収量よく
得られる。該培養培地の好適な例としては、N−AM
0.5%、肉エキス0.1%、ポリペプトン0.5%、
酵母エキス0.2%、食塩0.14%、燐酸水素−カリ
ウム0.1%、pH6,8の培地例が挙げられる。そし
て該培地で30°C136時間通気撹拌培養した場合は
、N−AMを他の炭素源におきかえた場合の10〜10
0倍の生産力価を得ることができる。
培養温度は通常20〜40°Cの範囲で好適には30〜
33°Cの範囲で行なわれる。培養開始のpHは通常6
〜8の範囲で好適には7付近である。この様な条件下で
20〜40時間振盪又は深部撹拌培養を行なうか、また
はN−AM またはN−7セチルグルコサミンを含有し
ないが、生育に好適な他の培地に生育した菌体を高濃度
に分散させ1〜10時間好気的にそれらと共に浸漬すれ
ば、該培養物または菌体懸濁液中にN−AMDHが生成
蓄積する。
33°Cの範囲で行なわれる。培養開始のpHは通常6
〜8の範囲で好適には7付近である。この様な条件下で
20〜40時間振盪又は深部撹拌培養を行なうか、また
はN−AM またはN−7セチルグルコサミンを含有し
ないが、生育に好適な他の培地に生育した菌体を高濃度
に分散させ1〜10時間好気的にそれらと共に浸漬すれ
ば、該培養物または菌体懸濁液中にN−AMDHが生成
蓄積する。
N−AMDHは通常は菌体中に存在するので培養物を遠
心分離、あるいは濾過によって菌体だけを分離するのが
好ましい。これを適量の緩衝液中で破壊して酵素を可溶
化することによって溶液中に放出させる。
心分離、あるいは濾過によって菌体だけを分離するのが
好ましい。これを適量の緩衝液中で破壊して酵素を可溶
化することによって溶液中に放出させる。
菌体の破壊方法はダイノミル、フレンチプレス、超音波
等の物理的なものや、トリトンX −100、ラウリル
硫酸ソーダ、EDTA等の化学的方法、リゾチーム等の
酵素的な方法を単独または併用して用いることができる
。この様にして得られた菌体破壊液から核酸を常法によ
って除去し、濾過または遠心分離によって不溶物を除き
N AMDHを得る。
等の物理的なものや、トリトンX −100、ラウリル
硫酸ソーダ、EDTA等の化学的方法、リゾチーム等の
酵素的な方法を単独または併用して用いることができる
。この様にして得られた菌体破壊液から核酸を常法によ
って除去し、濾過または遠心分離によって不溶物を除き
N AMDHを得る。
更にN−AMDHは必要により酵素の単離精製の常法に
従って、例えば(1)DEAE−セルロース塔ニよるカ
ラムクロマトグラフィー、(2)硫安による分画法m
、(3) DEAE−セファデックス塔によるカラムク
ロマトグラフィー、(415’ −AMPセファロース
塔によるカラムクロマトグラフィー、(5)セファデッ
クスによるゲル濾過等の方法、またはその他の方法を必
要に応じ組合わせて用いることにより、精製されたN−
AMDHを得ることができる。
従って、例えば(1)DEAE−セルロース塔ニよるカ
ラムクロマトグラフィー、(2)硫安による分画法m
、(3) DEAE−セファデックス塔によるカラムク
ロマトグラフィー、(415’ −AMPセファロース
塔によるカラムクロマトグラフィー、(5)セファデッ
クスによるゲル濾過等の方法、またはその他の方法を必
要に応じ組合わせて用いることにより、精製されたN−
AMDHを得ることができる。
〈発明の効果〉
本発明の新規なN−AMDHを用いるとN−AMの定量
を精度よく行なうことができ、これに基づいてシアル酸
の量を知ることができる。その結果、種々の病態診断を
効率よく行なうことができる。
を精度よく行なうことができ、これに基づいてシアル酸
の量を知ることができる。その結果、種々の病態診断を
効率よく行なうことができる。
〈実施例〉
実施例1
フラボバクテリウムsp、 Na、 141−8 (
微工研条寄第1222号、FERM BP−1222)
をグルコース0.75%、酵母エキス0゜2%、ポリペ
プトン0.5%、肉エキス0.1%、食塩0.14%、
燐酸水素−カリウム0.1%を含有した種培地(pH8
,0) 50ばが入った300 rxl容三角フラスコ
に接種した。
微工研条寄第1222号、FERM BP−1222)
をグルコース0.75%、酵母エキス0゜2%、ポリペ
プトン0.5%、肉エキス0.1%、食塩0.14%、
燐酸水素−カリウム0.1%を含有した種培地(pH8
,0) 50ばが入った300 rxl容三角フラスコ
に接種した。
30°Cで24時間振盪培養した後、同じ培地21が入
ったジャーファーメンタ−(株式会社いわしや生物科学
製)に植菌し、30°C136時間通気(21/m1n
)撹拌(400rpm )培養した。この培養液を80
0Orpmで20分間遠心分離して菌体を集めた。
ったジャーファーメンタ−(株式会社いわしや生物科学
製)に植菌し、30°C136時間通気(21/m1n
)撹拌(400rpm )培養した。この培養液を80
0Orpmで20分間遠心分離して菌体を集めた。
これをN−AM 0.2%、肉エキス0.1%、ポリペ
プトン0.5%、酵母エキス0.2%、食塩0.14%
、燐酸水素−カリウム0.1%、 pH6,8ヲ含有し
た培地27Iの入った同じジャーファーメンタ−に移し
、同じ培養条件で培養を続けた。6時間後にN−AMD
Hの活性は最高に達した。
プトン0.5%、酵母エキス0.2%、食塩0.14%
、燐酸水素−カリウム0.1%、 pH6,8ヲ含有し
た培地27Iの入った同じジャーファーメンタ−に移し
、同じ培養条件で培養を続けた。6時間後にN−AMD
Hの活性は最高に達した。
実施例2
フラボバクテリウムsp、 N1L141−8をN−A
M 0.5%、ポリペプトン0.8%、肉エキス0.1
%、酵母エキス0.2%、燐酸水素−カリウム0.1%
を含有した種培地(pH6,8) 50 tslに実施
例1と同様に植菌し30°Cで24時間振盪、培養した
。
M 0.5%、ポリペプトン0.8%、肉エキス0.1
%、酵母エキス0.2%、燐酸水素−カリウム0.1%
を含有した種培地(pH6,8) 50 tslに実施
例1と同様に植菌し30°Cで24時間振盪、培養した
。
これを同じ培地2gが入ったミニジャーファー)7ター
に植え、30°C140時間通気(2l / m1n)
撹拌(400rpm )培養した。N−AMDHは菌体
に蓄積されていた。
に植え、30°C140時間通気(2l / m1n)
撹拌(400rpm )培養した。N−AMDHは菌体
に蓄積されていた。
実施例3
実施例1と同様にして得た1、7&gの生菌体に0.0
2 M )リス−塩酸緩衝液pH8,0(以下これを標
準緩衝液と呼ぶ)101を加え、更に0.5%トリドア
X−100、EDTA 2 mMになる様に各々加えた
。低温室で1晩撹拌を行ない均一な懸濁液を得た。これ
をダイノミル(スウェーデン、シンマルエンタープライ
ズ社 製)によって破砕(3000rpm ) した。
2 M )リス−塩酸緩衝液pH8,0(以下これを標
準緩衝液と呼ぶ)101を加え、更に0.5%トリドア
X−100、EDTA 2 mMになる様に各々加えた
。低温室で1晩撹拌を行ない均一な懸濁液を得た。これ
をダイノミル(スウェーデン、シンマルエンタープライ
ズ社 製)によって破砕(3000rpm ) した。
8000 rpmで20分間遠心分離することによって
上澄7.3Eを得た。
上澄7.3Eを得た。
これに湿潤状態のDEAE−セルロース1.4に9ヲ投
入し、pH8,0に調整した後30分間撹拌を行ない該
酵素を吸着させた。ブフナー漏斗に移して濾過した後、
標準緩衝液41で洗浄し、更に0.3Mの食塩を含有し
た標準緩衝液51で洗浄してこの部分を集め、これをホ
ローファイバー限外濾過装置(旭化成工業株式会社製)
によって11まで濃縮した。
入し、pH8,0に調整した後30分間撹拌を行ない該
酵素を吸着させた。ブフナー漏斗に移して濾過した後、
標準緩衝液41で洗浄し、更に0.3Mの食塩を含有し
た標準緩衝液51で洗浄してこの部分を集め、これをホ
ローファイバー限外濾過装置(旭化成工業株式会社製)
によって11まで濃縮した。
これに125yの硫安を加え、溶かしてよく撹拌し、2
時間放置した後9000 rpmで20分間遠心分離し
て上澄850 mlを得た。更に硫安166 Jを加え
よく溶かして1晩低温室に放置した。
時間放置した後9000 rpmで20分間遠心分離し
て上澄850 mlを得た。更に硫安166 Jを加え
よく溶かして1晩低温室に放置した。
生じた沈殿を12000 rpmで20分間遠心分離し
て集め、標準緩衝液850 mlに溶かした。これに硫
安35 gを加えて溶かし、あらかじめ硫安4%を含有
した標準緩衝液に平衡化したフェニルセファロースCL
−4B(スウェーデン、ファルマシア社製)のカラム(
直径5cN×高さ34cm)に通して酵素を吸着させた
。これをエチレングリコールの濃度勾配(0→30%)
と硫安の逆濃度勾配(4→0%)をもった標準緩衝液1
07Iで溶出した。
て集め、標準緩衝液850 mlに溶かした。これに硫
安35 gを加えて溶かし、あらかじめ硫安4%を含有
した標準緩衝液に平衡化したフェニルセファロースCL
−4B(スウェーデン、ファルマシア社製)のカラム(
直径5cN×高さ34cm)に通して酵素を吸着させた
。これをエチレングリコールの濃度勾配(0→30%)
と硫安の逆濃度勾配(4→0%)をもった標準緩衝液1
07Iで溶出した。
これを限外濾過装置で濃縮し、0.1 M食塩を含有し
た標準緩衝液に対して透析した。これをあらかじめ0.
1 M食塩含有標準緩衝液で平衡化したDEAE−セフ
ァデックスA−50のカラム(直径5cffX高さ52
c+++)に通して吸着させ、0.1 Mから0.28
Mの食塩濃度勾配をもった標準緩衝液1゜lで溶出した
。
た標準緩衝液に対して透析した。これをあらかじめ0.
1 M食塩含有標準緩衝液で平衡化したDEAE−セフ
ァデックスA−50のカラム(直径5cffX高さ52
c+++)に通して吸着させ、0.1 Mから0.28
Mの食塩濃度勾配をもった標準緩衝液1゜lで溶出した
。
活性部を限外濾過装置で濃縮した後、0.01 Mリン
燐酸カリウム緩衝液pH6,5に対して透析した。これ
をあらかじめ0.01 Mリン酸カリウム緩衝液pH6
,0に平衡化した5’−AMP−セファロースCL−4
B(スウェーデン、ファルマ・/ア社製)のカラム(直
径4cm×高さ16cm)に通して吸着させ、0.01
M IJ 7酸緩衝液pH6,0,47!と0.5M
食塩を含有した0、01 M !Iン酸緩衝液pH8,
0,47!を用いた食塩濃度勾配とpH勾配をもった緩
衝液で溶出した。
燐酸カリウム緩衝液pH6,5に対して透析した。これ
をあらかじめ0.01 Mリン酸カリウム緩衝液pH6
,0に平衡化した5’−AMP−セファロースCL−4
B(スウェーデン、ファルマ・/ア社製)のカラム(直
径4cm×高さ16cm)に通して吸着させ、0.01
M IJ 7酸緩衝液pH6,0,47!と0.5M
食塩を含有した0、01 M !Iン酸緩衝液pH8,
0,47!を用いた食塩濃度勾配とpH勾配をもった緩
衝液で溶出した。
活性部をpH8,0に調整した後、限外濾過装置、更に
コロジオンバック濃縮装置でl mlまで濃縮し、0.
1 M食塩を含有した標準緩衝液に対して透析した。こ
れを0.1 M食塩を含有した標準緩衝液で平衡化した
セファデックスG−200のカラム(直径2.5cmX
高さ95c+++)によってゲル濾過を行なった。
コロジオンバック濃縮装置でl mlまで濃縮し、0.
1 M食塩を含有した標準緩衝液に対して透析した。こ
れを0.1 M食塩を含有した標準緩衝液で平衡化した
セファデックスG−200のカラム(直径2.5cmX
高さ95c+++)によってゲル濾過を行なった。
活性部を集め濃縮して精製N−AMDH220単位を得
た。これは第5図に示す通りディスク電気泳動によって
、はとんど単一バンドを示す酵素標品であった。
た。これは第5図に示す通りディスク電気泳動によって
、はとんど単一バンドを示す酵素標品であった。
第1図は本酵素の至適pHを示すグラフであり、第2図
は安定pHを示すグラフである。第3図は本酵素の作用
適温の範囲を示すグラフであり、第4図は本酵素の熱安
定性を示すグラフである。第5図は電気泳動によるバン
ドを示す図である。なお、第1図及び第2図における使
用緩衝液はそれぞれリン酸カリウム緩衝液(〇−〇)、
トリス−塩酸緩衝液(△−△)及びグリシン−カセイソ
ーダ緩衝液<QJ−0)である。 特許出願人 財団法人 野田産業科学研究所H H 温度(°C) 過度(0C)
は安定pHを示すグラフである。第3図は本酵素の作用
適温の範囲を示すグラフであり、第4図は本酵素の熱安
定性を示すグラフである。第5図は電気泳動によるバン
ドを示す図である。なお、第1図及び第2図における使
用緩衝液はそれぞれリン酸カリウム緩衝液(〇−〇)、
トリス−塩酸緩衝液(△−△)及びグリシン−カセイソ
ーダ緩衝液<QJ−0)である。 特許出願人 財団法人 野田産業科学研究所H H 温度(°C) 過度(0C)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記(1)〜(3)の理化学的性質を有するN−ア
セチルマンノサミン脱水素酵素 (1)作用及び基質特異性 N−アセチルマンノサミンから水素を奪ってN−アセチ
ルマンノサミノラクトンにすると共に、補酵素NADを
NADHに還元する。 他のヘキソースまたはN−アセチルヘキソサミンに対し
ては、ほとんどもしくは全く作用しない。 (2)至適pH及び安定pH範囲 トリス−塩酸緩衝液を用いた場合、至適pHは8.0〜
9.0であり、安定pH範囲は8.5〜9.5である。 (3)分子量 0.05Mトリス−塩酸緩衝液(0.1M NaCl含
有)を用いてセファデックスG−200によるゲル濾過
法により測定した値は約11万〜12万である。 2、フラボバクテリウム属に属し、N−アセチルマンノ
サミン脱水素酵素生産能を有する菌株を培地に培養し、
培養物よりN−アセチルマンノサミン脱水素酵素を採取
することを特徴とするN−アセチルマンノサミン脱水素
酵素の製造法。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP28784386A JPH0640821B2 (ja) | 1986-12-04 | 1986-12-04 | N―アセチルマンノサミン脱水素酵素 |
| US07/121,916 US4960701A (en) | 1986-12-04 | 1987-11-17 | N-acetylmannosamine dehydrogenase, process for its production, method for quantitatively analyzing N-acetylmannosamine or sialic acid, and kit for the quantitative analysis |
| DE19873741198 DE3741198A1 (de) | 1986-12-04 | 1987-12-04 | N-acetylmannosamindehydrogenase, verfahren zu deren herstellung, verfahren zur quantitativen analyse von n-acetylmannosamin oder sialylsaeure und gebinde fuer die quantitative analyse |
| DE3744830A DE3744830C2 (ja) | 1986-12-04 | 1987-12-04 | |
| US07/486,052 US5037739A (en) | 1986-12-04 | 1990-02-27 | N-acetylmannosamine dehydrogenase, process for its production, method for quantitatively analyzing N-acetylmannosamine or sialic acid, and kit for the quantitative analysis |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP28784386A JPH0640821B2 (ja) | 1986-12-04 | 1986-12-04 | N―アセチルマンノサミン脱水素酵素 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS63141585A true JPS63141585A (ja) | 1988-06-14 |
| JPH0640821B2 JPH0640821B2 (ja) | 1994-06-01 |
Family
ID=17722493
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP28784386A Expired - Lifetime JPH0640821B2 (ja) | 1986-12-04 | 1986-12-04 | N―アセチルマンノサミン脱水素酵素 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0640821B2 (ja) |
-
1986
- 1986-12-04 JP JP28784386A patent/JPH0640821B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0640821B2 (ja) | 1994-06-01 |
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