JPS6324155A - 結合測定法に使用される開裂可能な標識 - Google Patents

結合測定法に使用される開裂可能な標識

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JPS6324155A
JPS6324155A JP62083700A JP8370087A JPS6324155A JP S6324155 A JPS6324155 A JP S6324155A JP 62083700 A JP62083700 A JP 62083700A JP 8370087 A JP8370087 A JP 8370087A JP S6324155 A JPS6324155 A JP S6324155A
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complex
antigen
conjugate
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JP62083700A
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ナオミ カメダ
ジェラルド エル.ロウリー
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SUKARUBO Inc UESUTO KOOSUTO
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SUKARUBO Inc UESUTO KOOSUTO
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Publication date
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) この発明は、免疫測定法あるいはその他の特異的結合法
、特に蛍光に基づく測定法に関する。とりわけ、可溶化
した特異的複合体1特に免疫複合体を用いて測定を行う
方法に関する。この方法により独立した形の標識部分の
測定1特に、溶液の形で独立した蛍光体の蛍光を定量化
することになるこれら標識の測定が可能になる。
(従来の技術) 定量分析において特異性を確実にするための基礎として
、免疫グロブリン/抗原相互作用の使用が20年以上も
以前からずっと行われている。そのような種々な分析法
を記述している文献は、数が多くて、すべてを包括する
リストを挙げることは不可能である。この発明が目脂し
ている特別な方法は、標識した免疫複合体またはその他
の特異的複合体の形成およびこの複合体の可溶化を含む
この特定の方法に関してさえ、プロトコルが非常に多く
の実験記録(それらは共通したいくつかの特徴をもって
いる)が存在する。
もちろん2その測定法に含まれる少なくとも一つの構成
成分は何らかの仕方で検出されるか、検出可能とならな
ければならない。多くの場合に。
これは、免疫反応のような特異的反応の関与物質の一つ
が、何らかの形で標識されなければならないということ
を意味する。種々の標識が使用されており1例えば、放
射性アイソトープ、蛍光体。
着色物質、酵素(検出可能な生成物または反応物との反
応を触媒するために用いられ得る)、そして視覚化が可
能な巨視的物質さえも用いられている。これら分析法の
うち最も感度の良いものは。
酵素、放射性物質、もしくは蛍光体を利用している。
これらすべての方法において、測定した標識の量が、試
料中に存在する分析物の量の関数でなければならない。
このことは、基本的には、2つの方法に整理することが
できる。標識した構成成分を試料中の分析物と直接的あ
るいは間接的に反応させるか、または、サンプル中の分
析物を、該分析物と特異的に反応する物質をめぐって標
識運搬成分と競合させるかのいずれかである。
はとんどの実験記録において、物理的分離が。
特異的反応によって反応した親和性パートナ−と。
そうではないものとの間で行われなければならない。た
いていの場合、形成された免疫またはその他の複合体は
沈澱するかあるいは固体担持体に吸着するかのどちらか
である。もし沈澱すれば、−般に複合体は遠心分離によ
って1采取される。もし。
固体担持体に吸着すれば、吸着物と反応しない溶液で洗
浄することにより、未反応の物質から複合体が分離され
る。はとんどの分析法において、定量化のために用いら
れる標識は、固相中に含まれそして測定される。しかし
、この発明が目指す分析法では、特異的に形成された複
合体を標識測定前に再溶解する。
そのような一つの実施態様は、米国特許第4 、548
.908号に記述されており、そこでは、蛍光体を含む
沈澱した全免疫複合体がフルオロメーターにより読みと
るために基剤に溶解されている。この基剤はこの全複合
体を溶かしかつこの複合体から蛍光体を分離するのでは
ないので、この蛍光体がお互いに消失し合うのに十分に
接近し得、それによって2より希薄な蛍光体からも検出
できうる総放射能を減少させる(参照e、g、+ Sm
1th、 o、s、、  ら、ΔnnCl1n Bio
chem (1981) 18 : 253−274)
 、それゆえに、可溶化したタンパクにおいてさえも、
蛍光体がお互いに近接しているがゆえに、検出可能な放
出光量には限界が存在する。この問題は標識二者択一形
式に関しても生じている。例えば、酸素活性が、結合さ
れるタンパクによって弱められるかもしれないという問
題、また、 (重大さは劣るが)放射能が1放射性アイ
ソトープが結合する複合体によって吸着されるかもしれ
ないという問題である。
蛍光体または他の標識がそれぞれ再び可溶化され、そし
てそれに結合されるタンパクまたはその他の親和性パー
トナ−から分離され得るかどうかということが、その特
異的複合体がそれ自身再溶解されようがされまいが関係
な(、感度と正確さとの増大に貢献するであろう。
もしもこれが成し遂げられるなら、蛍光体分子あるいは
その他の標識は、独立した一部分として行動し、それゆ
え、それらは検知可能性を増大させ、すなわち消失能を
減少させ、さもなければその検知可能性を変化させる。
Carlsson等の米国特許第4,23L999号は
、免疫分析の構成成分に標識が結合する際のく測定のた
めに標識を分離しうる)開裂可能な結合の使用を開示し
ている。その標識は、固体担持体から直接的に分離され
、そして固体物質における標識測定の難しさを克服する
目的で遊離される。蛍光複合体が固体担持体に吸着され
ているところで、その放出光を読みとる蛍光標識測定法
にとって2例えば、固体上の蛍光体濃度が高ければ、光
のレベルが高すぎて、正確な測定ができなくなってしま
う (日中に星を見ようとするようなものである)。こ
の高い放出の問題を解決するために、多くの提案された
開裂可能な結合が開示されており、その中にはジスルフ
ィド結合も含まれている。これもCarlssonらの
米国特許第4.232.119号が、還元によって開裂
することのできるジスルフィド結合によって結合された
標識部分を調製するための好ましい方法を明確に略述し
ている。形成された免疫複合体は、標識の測定の前に、
再度、還元により直接的に開裂される。
Carlssonの明細書には1分析の感度が免疫複合
体表面での開裂しうる結合の入手可能性によって制限さ
れるという不利な点が指摘されている。この反応は、単
層として行わなければならず、さもなければ、大きな複
合体の内部にある結合体の結合が開裂しないことから正
確さが失われるだろう。
ここに示した発明は、標識の分離の前に前可溶化段階を
利用することによりこれらの問題を解決している。
(発明の要旨) この発明は、標識、特に蛍光体を利用した免疫測定法の
ような特異結合測定法(これら標識はこれら測定法の感
度を増大させる)の改良を提供すると同時に、その実行
を容易にするものである。
これらの分析法はすべて免疫複合体のような特異複合体
の形成2例えば沈澱または固体担持体への吸着による反
応混合物からの複合体の分離、および複合体の溶解を含
んでいる。標識は、免疫反応または他の特異反応および
溶解が起こった後に荷せられる条件下で容易に開裂可能
な結合によって。
所望の特異的に反応する成分に結合される。再溶解化後
、その結合は開裂する。このような仕方で。
免疫あるいは他の特異反応試薬によって運ばれた標識の
総量(これは分析物の総量に比例して反応した)が、結
合パートナ−から独立して、全免疫または他の特異反応
複合体から完全に回収されうる。
このように、ある観点では、この発明は1分析物が含有
されていると思われる試料中の1分析物の量を測定する
既知の方法における改良に関する。
一つの形式では、従来の方法は、当該試料を、当該分析
物と特異的に反応する少なくとも一つの物質を含有する
試薬とを反応させること、特異複合体を得ること、液層
からこの複合体を分離すること、そしてこの複合体を溶
解させ、それを可溶化された形で得ることを包含し、該
可溶化複合体が検出可能な標識を含有している。これら
の測定法を実施する従来の方法では、標識の量はこの複
合体から直接的に読みとられる。
この発明の改良は、複合体が成分に結合して得られる結
合体として標識を供給することを包含し。
該結合体がこの分析法と両立しうる条件下で開裂しうる
少なくとも一つの結合を含み、かつ当該標識の量を測定
する前に、開裂可能な結合が、溶解化複合体から標識を
放出させる。
この発明は、この測定法を実行するために適したキット
にも関し、そしてこれらの試薬の調製方法にも関する。
これは、また9本発明方法に適したある標識された結合
体に関し、これら結合物は以下の式のものを包含する: F−(NHCSNIICHzCHzS−5CH□CH2
C0) lIXここで電は1〜15である。
FNIIC3NIICHzC1lzStlおよび(FN
IICSNIICHzCHzS−) z本発明の分析物
の測定方法は1分析物を含有すると考えられる試料を、
該分析物と特異的に反応する少なくとも一種の物質を含
有する試薬と反応させ、複合体を得、該複合体を液相か
ら分離し。
そして、該複合体を再溶解して可溶化複合体く検出可能
な標識を有する)を得る方法であって;該標識を該複合
体の要素に対する結合体として提供し、該結合体は、該
分析法と適合する条件下で開裂可能な少なくともひとつ
の結合を有し、そして。
該標識量を測定するに先立ち、開裂可能な結合が。
該可溶化複合体から標識を放出するのを許容する;測定
方法である。
本発明のキットは、上記方法を実施するためのキットで
あり、a)検出可能な標識に結合した抗原であり、該結
合物が開裂可能な結合を有する抗原;b)検出可能な標
識に結合した分析物と反応性を有し非Ig関連の特異的
反応関与体であり、該結合物が開裂可能な結合を有する
反応関与体tおよびC)検出しうる標識に結合した抗体
くまたはその免疫特異的部分)であり、該結合物が開裂
可能な結合を有する抗体;でなる群から選択される標識
化成分が、適切に包装された形態で、包装された量の適
切な他の試薬および分析を行うための指示書とともに包
含されている。
本発明の化合物は、 F−(NHC5NliCFI2C
H2S−5CII□CH2C0) 、Xで示される。こ
こで、Fは蛍光体であり、Xは抗体もしくはその免疫特
異的部分、ビオチン3アビジン、フェリチンおよびレク
チンから選択される特異的反応関与体、そしてmは1〜
15である。
本発明の化合物は、また、 FNIIC3NI(C)l
zclI□Sl+および(FNHC3NHCHzCHz
S−)z (ここでFは蛍光体である)で示される群か
ら選択される。
木遣−肌9j○罰肝撲 A、定義 本文中で使用されているとおり、“分析物と特異的に反
応する物質”とは、測定法の条件下で。
分析物を含有するいかなるものとも反応し得るが。
汚染物質とは反応しない試薬のことを言う。この試薬は
、最も一般的には、抗原/抗体反応の構成成分であり得
る:この試薬は、抗原または抗体のいずれかであり得る
。免疫特異的試薬は、完全なグロブリンかまたはその抗
原に特異的な抗体のいずれかであり得る。もしくは、 
 F(ab”)2断片のような“その免疫特異的部分”
または特定的に抗原を判別する抗体の他の部分であり得
る。免疫グロブリンまたはその断片を含有するいろいろ
な物質のいずれもが抗原となり得る。抗原は、タンパク
炭水化物、または抗原決定基を構成するために十分な大
きさをもつ分子であり得る。抗体は、一般にこのような
部位を含む物質が運搬分子への結合により十分に大きく
なり、免疫原性をもつようになる場合、約10Å以上の
部位に対して生じ得る。
このことは、しばしば実際に2例えば特異的ワクチンに
おけるより小さなペプチド単位または他の小さな分子に
対する抗体が発生ずる。
“分析物と特異的に反応する物質”は、さらに免疫反応
ではなくて、汚染物質の表面において特異性を保持して
いる反応の成分のことを言う。例えば、一定のレクチン
は一定のタンパク上の炭水化物の部分と特異的に反応し
3細胞表面」二に見られる一定の受容体は特異的にその
標的物質と反応する;ビオチンば、アビジンと特異的に
反応する。
従って、“分析物と特異的に反応する物質”は。
分析物質およびそれと特異的に反応する試薬の間の親和
力反応におけるそれぞれパートナ−を示す−J’fQ的
な術語として使用されており、抗体および抗体に特異的
な抗原決定基を含有する物質を包含するが、これらに限
定はされない。
さらに一般的には3 “特異的反応関与物”とは2分析
物と反応する上記の試薬もしくは分析物それ自体を言う
。それぞれは、測定法の基礎を成す非常に特異的な相互
作用における相互の対応物である。
“分析法に適した条件”とは1本発明の結°合体におけ
る“開裂可能な”結合の反応性に関係しているので1分
析法の実行を妨げないが、この標識をうま<遊離させる
条件のことを言う。従って。
結合は十分に安定しているので9分析法の特異反応で形
成される複合体の形成および溶解化の間に。
解離することはないが、他の点ではこの複合体を妨げな
い条件を賦課することにより開裂し得る。
従って、“開裂可能な結合”とは、複合化反応に関与し
ている物質が、標識に結合される結合のことを言う。こ
の結合は、以下に述べられている独立した結合種による
ものか、あるいは特異的な複合化反応に包含される成分
および標識化された物質の間の直接的結合であり得る。
“特異的に開裂可能なリンカ−”とは、二つの独立した
部分を結合するために使用され、そして特定のあらかじ
め決められた条件下で結合体を分離するための開裂部位
を与える物質のことを言う。
本発明において使用するためには、特異的に開裂可能な
リンカ−は、貯蔵および分析の条件下および、特に血清
の存在が関係する条件下で安定でなければならない。従
って、この結合は、中性pH。
生理学的イオン強度に対して、および免疫またはその他
の複合体が形成される条件下において、安定でなければ
ならない。しかしながら、この結合は開裂特異的条件が
与えられる場合、複合体の分離および溶解化が完了した
時点で、速やかに分裂しなければならない。このような
条件は6酸化試薬および還元試薬、 pH条件、特異酵
素開裂および特異的開裂反応を促進するその他の試薬を
包含している。
“蛍光体”とは、検出可能な範囲内で蛍光を示し得る物
質またはその一部分のことを言う。典型的には、この蛍
光は可視領域であり、これらは。
普通の定量方法である。一般に使用されている蛍光体の
例には、フルオレセイン(通常、フルオレセインイソチ
オシアネートCFITC)またはフルオレセインアミン
として(共給される)、ローダミン。
ダンシルおよびウンベリフェロンなどである。
B、二股追立法 本発明の開裂可能な結合は、標識を分析物それ自体もし
くはそれと直接または間接に特異的に反応する物質に結
合させるために用いられ得る。その第1の例では、標識
化分析物は2分析物と特異的に反応する物質について試
料の未標識化分析物と競合する。この物質に結合された
標識量は、このときその試料における分析物の濃度に反
比例する。あるいは、この分析物と特異的に反応する該
物質は、この開裂可能な結合により該標識と結合し得る
かもしくはこの標識はサンドウィッチ型定量法での分析
物と直接反応する物質と反応的な第2の反応物質に結合
し得る。明らかに、このサンドウィンチは所望に応じて
多くの層に展開され得る。しかし、一般に、そのような
実験記録(プロトコル)は、最初の物質に反応的な標識
化物質との反応に先行する1分析物含有試料とこの最初
の特異的に反応する物質との反応を包含している。
ともかく、この反応連鎖の生成物は、標識を含む沈澱ま
たは吸着複合体であり、該標識の濃度は分析される試料
中の分析物の量に依有する。この沈澱物または複合体は
1次いで可溶化される。
種々のこのようなプロトコルは当該分野ではよく理解さ
れている。例えば、この分析物が抗原である場合には、
普通のプロトコルでは、この試料中の抗原とこの抗原に
特異的な抗体について競合する標識化抗原が提供される
。この複合体は、抗原上の別の抗原決定基と反応するか
7 もしくは本来の複合化において用いられる抗体と反
応する第2の抗体の添加により、さらに不溶化され得る
得られた沈澱物は1次いで液相から分離され、そして再
溶解される。
分析物との競合における抗原に標識を付着すること以外
の別の代表的方法においては1分析物抗原に対する抗体
は標識を有し、かつ本来の免疫複合体を形成すべく用い
られる。この免疫複合体は。
次いで別の抗体の添加によりさらに不溶化され得る。別
のより一般的な実施態様においては、この標識は、主た
る複合免疫グロブリンではなく、第2の抗体により運ば
れる。
あるいは、もしこの分析物がそれ自体抗体であれば、こ
の免疫複合体はこの抗体に対し特異的な抗原か、もしく
はこれに対して生じる抗体を用いて形成され得る。もし
抗原が選択されれば、再び。
競合性抗体が標識され得るか、もしくはその抗原自体が
その標識を運び得る。さらに別の場合には。
本来の複合体の成員のうちの一つに対して生じる抗体が
その標識を運ぶ。
前記のすべてが1反応酸分の一つを固体担持体に吸着さ
せるか、もしくは共有結合的に付着させ。
そしてこの担持体に付着した特定の複合体を得ることに
より、改変され得る。例えば、抗原分析物に特異的な抗
体が吸着され1分析されるべき試料で処理され1次いで
この抗原に反応する別の抗体で処理され得る。この標識
は分析物に対する競合物によって、または第2の抗体層
によって運ばれ得る。
ともかく、免疫複合体が形成され1例えば沈澱によるか
、または固体担持体への吸着という効力によって1反応
混合物から分離され2次いで再可溶化された後、この複
合体の成分のうちの一つに標識を有する開裂可能な結合
は、この結合を分断することになる条件下にさらされる
本発明の寄与部分は、以下の方法で形成される特定の複
合物の成分を標識化する機構を提供することにある。そ
の方法とは、複合化および洗浄過程中安定のままである
が、この複合体もしくはそのいずれの成分から離れた可
溶化標識を得るための必要により分解されるような方法
である。これは特異的に開裂可能な結合により標識に結
合された特定の反応関与体を利用することにより達成さ
れる。
開裂可能な結合は特定の複合化反応関与体と標識との間
に直接形成され得るが、またはリンカ−を用いて行われ
得る。
一般に、そのようなリンカ−は以下の事項を含む部分に
特徴がある: (11標識に対し“恒久的”結合を行う第1の反応部位
; (2)特異反応関与体に対する結合のための第1の部位
から物理的に独立した別の部位;そして(3)これら部
位間の開裂可能な結合。
他の改変も、もちろん可能であり、そして(1)または
(2)の性質を欠く場合、すなわちこの開裂可能な結合
が、このリンカ−を一方もしくは他方の標識または特異
反応関与体に結合させる。
独立部分を得るために標識を開裂する利点は標識の性質
に依有する。
蛍光体として、得られる遊離分子は、十分に希釈され自
己消失を克服する。
リンカ−および+、i′ト(二゛の言。++標識に結合
させるために、アミノ基、チオール基および活性エステ
ルを含む種々の官能基が適当である。特異的複合体関与
体に結合させるために変形もまた可能である。特に、こ
の物質は種々の成分のものであるからである。最も普通
の場合にそうであるように、もし複合化における関与体
がタンパクであれば、ジスルフィド、千オニーチルもし
くはアミド結合を生じ得る官能基が好適に用いられ得る
特異的に開裂可能な結合それ自体は、ジスルフィド結合
(例えば、ジチオエリスリトールによって開裂可能)、
ジヒドロキシ部分(過ヨウ素酸塩により開裂可能)、も
しくはプロテアーゼ用の特異開裂部位を提供する一連の
アミノ酸残基を含み得る。
ある種の市販のリンカ−も適切であり得る。例エバ、 
B50COES(パース ケミカル ヵンパニイ)は、
二つの異なるアミノ基を含有する物質とアミド結合を形
成し得るホモリンカ−であり、かつ基本開裂可能部位を
有する。DSTは同様にアミド結合を形成し得るホモリ
ンカ−であり、がっ過ヨウ素酸により開裂可能である。
EGSは同様の連鎖化官能基を含むが、ヒドロキシルア
ミンにより開裂され得る。DSTはアミド結合を形成し
得るホモリンカ−であるが、チオールにより開裂可能で
ある。
あるいは、特異的なジスルフィド試薬および中間体が下
記実施例において述べられるように調製される。
以下の実施例は、この発明を説明する意図をもつもので
あって限定することを意図するものではない。
(以下余白) (実施例) 以下に本発明を実施例につき説明する。
((F−NHCSNHCHzCHzS−) z)ピリジ
ン、水およびトリエチルアミン(9:1.5:0、L 
V/V/V) (7)溶媒混合h ヲ10 ml、 含
ム丸底7 ラスコに、シスタミンジヒドロクロリド90
■(0,4ミリモル)を添加して溶解した。フルオレセ
インイソチオシアネート (FITC,0,8ミリモル
、  325mg)を、上記溶液に、少しずつ30分間
にわたって添加した。この反応混合物を室温にて一晩、
攪拌した。
減圧下で溶媒を除去することにより、オレンジ色の固体
を得た。この物質をlQmRの水および25m1の0.
24酢酸アンモニウム中でスラリーとし7次いで12−
の水で洗浄した。2mlのI N NaOHに溶解し。
そして6N)ICI で沈澱させることによってさらに
精製した。この沈澱操作をさらに3回繰り返した。
乾燥後(PzOs、 60°c)、標題化合物の粗生成
物190■を得た。分析用試料は、クロロホルム:メタ
ノール:?a水酸化77モニウL (V/V/V、 1
0:10:3)を用いるシリカの分離用薄層クロマトグ
ラフィー(TLC)によって得た。プレートを乾燥し9
次いで酢酸エチル:メタノール:5N水酸化アンモニウ
ム(V/V/V、 6:3:1)で再展開した。
徽且光折潴遇 CHS    OS 実測値(灰分:5.29) 56.28 3.97 5
.53  −  12.66灰分を補正した値  59
.24  “4.18 5.82  −  13.33
((Py  S  S  CHzCHzCO) −F(
ab’)z )凍結乾燥したウサギF(ab’)z (
3,0mg、ジャクソン イムノ−リサーチ ラボラト
リーズ)を、0.5mlのO,IOMのトリス+5mF
Iのエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム塩(EDTA
)  (pH8,0)に溶解した。正確なタンパク濃度
は、 1.48g−’ 1 cm−’のエクスティンク
ション(extinction)および分子量92、0
00のF(ab’)2を用いて280nmで測定した。
N−スクシンイミジル−3−(2−ピリジルジチオ)−
プロピオネート (SPDP)  (3,1■、パース
)は。
100μlの乾燥ジメチルホルムアミドに溶解し。
アルゴン雰囲気下で貯蔵した。6μlの5PDP溶液を
0.5μβずつ15秒間に1回の割合で、高速で攪拌し
ている4℃のF(ab’)z溶液に添加した。最後の添
加後1時間、この混合物を攪拌し1次いで0.1Mリン
酸塩、5mM EDTA (pH6,0)の125m1
ずつに対して5回、4℃にて2日間にわたって透析した
この生成物は、1μlのシストアミンヒドロクロリド(
1,3X10−”M 、  シグマ)を、24μlの5
popで標識化したF(ab’)z、 76.171の
O,1Mリン酸塩−5mM EDTA緩衝液(pH6,
0)および200μffの0.05Mトリス緩衝’IF
I (pH8,0)に添加することによって。
そのタンパクへのPDTP類の導入について分析された
。該タンパクから遊離した2−チオピリジン類の数は、
稀釈して修正された元のタンパクの濃度を用い、 7,
600M−’m−’のエクティンクションを用いて34
3nmで測定した。この生成物は1モル当たり12の結
合PDTP類を有する。同じ方法により、第二の結合物
は、  F(ab’)zを標識化するために2μlの上
記5popの乾燥DI’lF溶液を用いることにより調
製され、1モル当たり6のPDTP類を有する生成物を
得た。
同様の方法により、フェリチン、 IgE 、ヤギの抗
IgEおよびトリョードチロニン(T3)を含む。
他の特異的反応関与体の結合物が調製される。
F’m(Fab’)z C(F−NllC5NHCHzCtlz−5−S−C1
tzCtlzCO)II−F(ab’)z)実施例1に
おいて調製された叶DTI+ 2.kを。
80μpのDMF、 50μlの脱イオン水および10
μlの0.5M炭酸ナトリウム(p)! 9.5)に、
 50″Cに暖めながら溶解することによって、スルフ
ヒドリルモノマー、 F−NllCSNHCHzCHz
SHに還元した。得られた溶液を、攪拌しながら、 1
860μlのO,ドリン酸塩、  5mM EDTAの
緩衝液(pH6,0)に徐々に添加した。この原料10
0μlをアルゴン雰囲気下で100μ200.5M )
リス(pH8,8)および10mt’lのジチオエリス
リトールと混合した。クロロホルム:メタノール、濃ア
7モニ7 (10:10:3. V/V/V) ニヨる
薄層クロマトグラフィーを用いてこの反応を監視した。
還元が50%完了して、15分後、この溶液を、実施例
2で調整した5、3X10−’Hの(PDTP) b 
 F (ab’ ) 2結合物の200μlに、アルゴ
ン雰囲気下、室温にて高速で攪拌しながら徐々に添加し
た。最後の添加後、この溶液を30分間攪拌し1次いで
10×1cmの6−25セフアデンクス力ラムに注入し
、 0.1FIリン酸塩、  5mM EDTA 緩衝
液(pH6,0)で溶離した。タンパク生成物は、その
カラムのボイドボリューム(void volume)
で溶離したものを収集した。同(美にして、第2の結合
物を、200μ2の4.8 X 10−’Hの(PDT
P) +z−F(ab’)zから調製した。
生成物のF(ab’)2当たりの結合されたフルオレセ
インの数は、 0.5M炭酸ナトリウム緩衝液(p)1
9.5)中で、 492nmおよび28Or+n+によ
るUV−VIS分光分析法で゛測定した。フルオレセイ
ンのタンパクに対するモル比は、結合フルオレセインの
76 、800M−’ cn −’の492nmにおけ
るモルエステインクジョン、同じ< 20,500M−
’cm−’の280nmにおけるモルエステインクジョ
ンおよび1.48 g−’ 1 cm−’の280nm
におけるF(ab’)zのエクスティンクションそして
92,000の分子量とから計算した。結合物は、それ
ぞれ1モルのF(ab’)z当たり 1.9および5.
7のフルオレセインを有することが見出され、それぞれ
p+ 、、 q−F(ab’)zおよび” 5.7−F
 (ab’ )2 と命名された(F’はF −(NH
C5NHCHzCH□S−5CHzCHzCO)バであ
る〕。
同様の方法により、フェリチン、 IgEおよびT3の
(PDTP) 、、結合体を、還元されたDFDTHと
反応させて、それぞれ以下のものを得た。
Fl、−フェリチン; F’lI−IgE  i F′、−ヤギ抗IgE ;および F′□T3゜ F’ +、 J(ab’)z溶液60ttlを、20μ
6の1.5M  トリス(pH8,8)および0.11
’ リン酸塩、  5mM EDTA(pH6,0)中
の10mM DTHの3μ2と混合した。クロロホルム
:メタノール;濃アンモニア(10:10:3 。
V/V/V )による薄層クロマトグラフィーを用いて
この反応を監視した。開裂反応が90%以上完了し。
室温で30分間経過後、パスツールビペノ)(1,4+
++k)中のセファデックスG−25カラムに注入して
0.11リン酸塩、  5mM EDTA緩衝液(pH
6,0)で溶離した。このカラムのボイドボリュームで
?容離したタンパクのフラクションを集めた。残ってい
る結合されたフルオレセインの量をuv−vrs分光分
析法(前記)によって測定した。フルオレセインの。
タンパクからの開裂は94%完了していた。同じ方法に
より、F’ s、 t−F(ab’) Zからの開裂の
程度は98%と測定された。
F’ l、−F(ab’)z結合体(10μj2)およ
び10μlのヤギ抗ウサギIg (ウェスターン ケミ
カル)を6本の分析試験管に入れた。リン酸ナトリウム
0.OIM−0,87%塩化ナトリウム−0,1%アジ
化ナトリウム。
pH7,2(10μ(l PBS)および110μfの
ヤギ抗ウサギtgを6本の対照試験管に入れた。室温で
15分間培養後、800μlのPBSを各試験管に添加
した。
各試験管を350Or、p、mで30分間遠心分離した
。上澄液をデカントして除き、3本の分析試験管および
3本の対照試験管とから得たベレットに、 2.46X
IO−5MのDTEを含有する0、034リン酸塩、 
0.87%塩化ナトリウム、 0.10%のアジ化ナト
リウム緩衝液(pH1,1,9)の1.0Mを加えて溶
解した。
残りの3木の分析試験管および3木の対照試験管のベレ
フi〜を、 DTEを含有しない同じ緩衝液に溶解した
。全試験管を室温で1時間培養し、インパルス・蛍光計
(SCLAVO)で測定した。同じ方法を用いてF”S
、 7F (ab”)2結合体を分析した。結果は。
相対蛍光強度(RFI)の平均値とてしてまとめて次に
示す。
特異的な反応関与体としてフェリチンを用いて実施例3
において合成した。結合された標識試薬を競合的試薬と
して用いる。次いで、既知量を採取した血清のい(つか
を、該試薬を含有する20ttt!の炭酸塩緩衝液0.
OIM(pl+8.6)とともに37“Cにて4時間培
養することによってフェリチンの分析がなされる。これ
に、ヤギ抗フェリチン血清およびウサギ抗ヤギIg血清
との混合物を含有する。リン酸塩で緩衝された塩水の2
0μlを添加する。次いで培養を行い免疫複合体を形成
させ、この混合物に。
ポリエチレングリコール(分子ff18,000)の冷
20%水溶液の100μpを添加し、得られた沈澱を遠
心分離により分離した。上澄液を除去した後、この沈澱
をリン酸塩水溶液の緩衝液(pH11,9)に溶解した
溶解された複合体は、 1.OO+nMのジオエリスリ
トールを含有する還元試薬25μρで処理される。得ら
れた溶液は、解離された2−(5−フルオレセイニルウ
レイド)エチルメチルカプタンを含有し。
蛍光を測定するためフローセルに入れる。
実施例3において鋼製したF’、T3を試薬として用い
る。マクロビーズに付着させたヤギ抗T3抗体により試
料を処理して免疫複合体を得ることによって、試料に含
有されているT3の量を分析する。
37℃にて1時間培養後、試料をリン酸塩緩衝の塩水で
洗浄する。次いで、ビーズの免疫複合体を塩基に溶解し
、溶解した複合体を上記と同様にジチオエリスリトール
で処理し、蛍光を測定する。
ミクロタイターウェルを、標識化されていないヤギ抗I
gE抗体で被覆し、試料で処理してIgE含有量を分析
する。洗浄後、このウェルを、特異的反応物質としてヤ
ギ抗IgEを用いて調製された実施例3の試薬で処理す
る。このウェルを再び洗浄し2次いで塩基で処理し、複
合体を溶解する。この複合体を、  2.5X10−5
Mのジチオエリスリトールを含有する溶液と反応させて
蛍光体を、2−(5−フルオレセイニルウレイド)エチ
ルメルカプタンとして放出させる。
去隻勇主 T3Δ皿冗。
実施例3において調製したF′ヨーT3を試薬として用
いる。試料のT3の量を分析する。試料、 F’、、−
T。
およびヤギ抗T、抗体溶液の混合物を、抗ヤギIg抗体
で被覆した反応容器内に導入する。培養後、この容器を
洗浄し、免疫複合体を塩基に溶解し、そして溶解した複
合体を、上記と同様にジチオエリスリトールで処理し、
蛍光を測定する。
(発明の要約) 標識化され、可溶化された特異的結合複合体の検出に基
づく分析方法が1分析法および溶1夜状複合体に適した
条件下で開裂し得る結合によってこの標識を上記複合体
の成分に結合させることによって発展された。
以上

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、分析物を含有すると考えられる試料を、該分析物と
    特異的に反応する少なくとも一種の物質を含有する試薬
    と反応させ、複合体を得、該複合体を液相から分離し、
    そして、該複合体を再溶解して可溶化複合体(検出可能
    な標識を有する)を得る、分析物の量を測定する方法で
    あって、該標識を該複合体の要素に対する結合体として
    提供し、該結合体は、該分析法と適合する条件下で開裂
    可能な少なくともひとつの結合を有し、そして、該標識
    量を測定するに先立ち、開裂可能な結合が、該可溶化複
    合体から標識を放出するのを許容する、 測定方法。 2、前記分析物が抗原であり、免疫複合体の形成が、 a)試料を、標識に結合(その結合物は開裂可能な結合
    を有する)した抗原の既知量と混合し、そして、該混合
    物と、該抗原に対する抗体(またはその免疫特異的部分
    )とを反応させること;b)抗原を含有する試料を、標
    識に結合(該結合物は開裂可能な結合を有する)した抗
    −抗原抗体(またはその免疫特異的部分)と混合するこ
    と;および、 c)該試料を、抗−抗原抗体および標識に結合(その結
    合物は開裂可能な結合を有する)した標識化抗−抗原抗
    体(またはその免疫特異的部分)と混合すること; でなる群から選択される方法で行われるか、または; 分析物が抗体(またはその免疫特異的部分)であって、
    免疫複合体の形成が、 a)該試料を、標識に結合(その結合物は開裂可能な結
    合を有する)した該抗体(またはその免疫特異的部分)
    の既知量と混合し、そして、該混合物を、該抗体(また
    はその免疫特異的部分)に対する抗原と反応させること
    ; b)抗体(またはその免疫特異的部分)を含有する該試
    料を、該抗体(またはその免疫特異的部分)と免疫反応
    性を有し、標識に結合(その結合物は開裂可能な結合を
    有する)した抗原と混合すること; および c)該試料と、該抗体(またはその免疫特異的部分)と
    免疫反応性を有する抗原、および該抗原と反応性を有し
    、標識に結合(その結合物は開裂可能な結合を有する)
    した異なる抗体(またはその免疫特異的部分)を混合す
    ること; でなる群から選択される方法で行われる、 特許請求の範囲第1項に記載の方法。 3、特異的複合体の該液相からの分離が、沈澱、次いで
    遠心分離もしくは濾過すること;または、該複合体を固
    体担持体に結合させ次いで該担持体を液相との接触から
    除去することにより行われる特許請求の範囲第1項に記
    載の方法。 4、a)検出可能な標識に結合した抗原であり、該結合
    物が開裂可能な結合を有する抗原; b)検出可能な標識に結合した分析物と反応性を有し非
    Ig関連の特異的反応関与体であり、該結合物が開裂可
    能な結合を有する反応関与体;および c)検出しうる標識に結合した抗体(またはその免疫特
    異的部分)であり、該結合物が開裂可能な結合を有する
    抗体; でなる群から選択される標識化成分が、適切に包装され
    た形態で、包装された量の適切な他の試薬および分析を
    行うための指示書とともに包含される、特許請求の範囲
    第1項に記載の方法を実施するためのキット。 5、前記開裂可能な結合がジスルフィド結合であり、前
    記標識が蛍光体である特許請求の範囲第1項に記載の方
    法。 6、F−(NHCSNHCH_2CH_2S−SCH_
    2CH_2CO)_mXここで、Fは蛍光体であり、X
    は抗体もし くはその免疫特異的部分、ビオチン、アビ ジン、フェリチンおよびレクチンから選択 される特異的反応関与体、そしてmは1〜 15である で示される化合物。 7、Fがフルオレセイニルである特許請求の範囲第6項
    に記載の化合物。 8、XがウサギF(ab’)_2フェリチン、IgE、
    ヤギ抗−IgEおよびT_3から選択される特許請求の
    範囲第6項に記載の化合物。 9、FNHCSNHCH_2CH_2SHおよび(FN
    HCSNHCH_2CH_2S−)_2ここでFは蛍光
    体である で示される群から選択される化合物。 10、Fがフルオレセイニルである特許請求の範囲第9
    項に記載の化合物。
JP62083700A 1986-04-03 1987-04-03 結合測定法に使用される開裂可能な標識 Pending JPS6324155A (ja)

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