JPS6336778A - 耐熱性グルコアミラ−ゼ及びその製造法 - Google Patents
耐熱性グルコアミラ−ゼ及びその製造法Info
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- JPS6336778A JPS6336778A JP17672286A JP17672286A JPS6336778A JP S6336778 A JPS6336778 A JP S6336778A JP 17672286 A JP17672286 A JP 17672286A JP 17672286 A JP17672286 A JP 17672286A JP S6336778 A JPS6336778 A JP S6336778A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、新規なグルコアミラーゼとその製造法に係わ
り、特にぶどう糖製造におけるでん粉の糖化反応に好適
な耐熱性/耐酸性グルコアミラーゼとその製造法に関す
る。
り、特にぶどう糖製造におけるでん粉の糖化反応に好適
な耐熱性/耐酸性グルコアミラーゼとその製造法に関す
る。
耐熱性酵素は、常温用酵素に比べ、加熱やpHの変化に
も安定性が高く、酵素利用工業には極めて有用である。
も安定性が高く、酵素利用工業には極めて有用である。
現在、工業的に用いられているグルコアミラーゼはリゾ
プス(Rh 1zopus)属およびアスペルギルス(
Aspergil 1us)属から産生されており、い
ずれも常温性酵素であり、50℃を越えると急速な酵素
活性の失活が起る(酵素利用ハンドブックp62.他人
書館、昭和57年)。耐熱性に優れたグルコアミラーゼ
については、V、Basaveswara等(Bioc
hem、J、、193.379.1981年)やカドコ
シン等(特開昭60−54680号)の例があるが、い
ずれも熱安定性を発揮するためにはp1)6程度の中性
条件が必要である。ところで、でん粉を原料とするぶど
う糖の製造は、10〜40%濃度のでん粉スラリーをα
−アミラーゼにより液化する液化工程及びこの液化でん
粉溶液をグルコアミラーゼにより糖化する糖化工程の2
工程により行われている。液化工程においては、原料で
ん粉中に含まれる不純物の有機酸のためにpHは5以下
、しばしば4以下を呈する。このため、先に本発明者ら
はpH4においてもすぐれた耐熱性を有する新規なα−
アミラーゼを開発しく特願昭59−236917号)、
でん粉スラリーを酸性状態のままで液化することを可能
にした。しかしながら、液化工程にひきつづいて行われ
る糖化反応に使用するグルコアミラーゼには、pH4〜
5の酸性条件下で作用可能な耐熱性酵素はまだ未開発で
ある。先に述べたカドコシン等の耐熱性グルコアミラー
ゼの作用好適pHは6付近であり、このため、液化でん
粉溶液にアルカリを加えて中和しなければならない。そ
の結果、ぶどう糖や異性化糖等の最終製品を得る場合に
は、反応後に中和剤を除去することが必要となり、イオ
ン交換樹脂を用いる脱塩工程への負荷を著しく増大させ
ている。
プス(Rh 1zopus)属およびアスペルギルス(
Aspergil 1us)属から産生されており、い
ずれも常温性酵素であり、50℃を越えると急速な酵素
活性の失活が起る(酵素利用ハンドブックp62.他人
書館、昭和57年)。耐熱性に優れたグルコアミラーゼ
については、V、Basaveswara等(Bioc
hem、J、、193.379.1981年)やカドコ
シン等(特開昭60−54680号)の例があるが、い
ずれも熱安定性を発揮するためにはp1)6程度の中性
条件が必要である。ところで、でん粉を原料とするぶど
う糖の製造は、10〜40%濃度のでん粉スラリーをα
−アミラーゼにより液化する液化工程及びこの液化でん
粉溶液をグルコアミラーゼにより糖化する糖化工程の2
工程により行われている。液化工程においては、原料で
ん粉中に含まれる不純物の有機酸のためにpHは5以下
、しばしば4以下を呈する。このため、先に本発明者ら
はpH4においてもすぐれた耐熱性を有する新規なα−
アミラーゼを開発しく特願昭59−236917号)、
でん粉スラリーを酸性状態のままで液化することを可能
にした。しかしながら、液化工程にひきつづいて行われ
る糖化反応に使用するグルコアミラーゼには、pH4〜
5の酸性条件下で作用可能な耐熱性酵素はまだ未開発で
ある。先に述べたカドコシン等の耐熱性グルコアミラー
ゼの作用好適pHは6付近であり、このため、液化でん
粉溶液にアルカリを加えて中和しなければならない。そ
の結果、ぶどう糖や異性化糖等の最終製品を得る場合に
は、反応後に中和剤を除去することが必要となり、イオ
ン交換樹脂を用いる脱塩工程への負荷を著しく増大させ
ている。
本発明の目的は、上記従来技術の問題点を解決し、でん
粉を原料としてぶとう等を製造するにあたりpH5以下
、60〜75℃の条件下で使用可能なグルコアミラーゼ
、すなわち偏性嫌気性菌を起源とし、耐熱性に優れるの
みならず、耐酸性をも有する新規なグルコアミラーゼと
その製造法を提供することにある。
粉を原料としてぶとう等を製造するにあたりpH5以下
、60〜75℃の条件下で使用可能なグルコアミラーゼ
、すなわち偏性嫌気性菌を起源とし、耐熱性に優れるの
みならず、耐酸性をも有する新規なグルコアミラーゼと
その製造法を提供することにある。
本発明者らは、耐熱性にすぐれ、かつ耐酸性を有する新
規なグルコアミラーゼを得ることを目的に、酵素及び酵
素産生用微生物の探索を行った。
規なグルコアミラーゼを得ることを目的に、酵素及び酵
素産生用微生物の探索を行った。
その結果、60℃で培養した高温メタン醗酵液より分離
したクロスツリジウム属に属する偏性嫌気性細菌である
クロスツリジウム・エスピーG−0005(clost
ridium sp G−0005)(微工研菌寄第8
737号)が、酵素の特性が従来のグルコアミラーゼと
全く異なる新規な耐熱性グルコアミラーゼを産生ずるこ
とを見い出し、本発明に至った。本発明のグルコアミラ
ーゼを産生ずるクロスツリジウム属細菌は、工業技術院
微生物工業技術研究所に寄託している(受託番号:微工
研菌寄第8737号(14RM P−8737))。ま
ず、本田の菌学的性質の詳細を説明する。
したクロスツリジウム属に属する偏性嫌気性細菌である
クロスツリジウム・エスピーG−0005(clost
ridium sp G−0005)(微工研菌寄第8
737号)が、酵素の特性が従来のグルコアミラーゼと
全く異なる新規な耐熱性グルコアミラーゼを産生ずるこ
とを見い出し、本発明に至った。本発明のグルコアミラ
ーゼを産生ずるクロスツリジウム属細菌は、工業技術院
微生物工業技術研究所に寄託している(受託番号:微工
研菌寄第8737号(14RM P−8737))。ま
ず、本田の菌学的性質の詳細を説明する。
なお、以下の記載において%は特に指示しない限り重量
%である。
%である。
A、形態的性質
(1)栄養細胞の形態
下記のデキストリン・ペプトン培地の寒天平板上、嫌気
性雰囲気中、60℃で2日間培養した場合、栄養細胞は
0.3〜0.5 X 2〜4μmの大きさの直状の桿菌
である。上記の栄養細胞は単独あるいは連鎖して存在す
る。液体培養においても同様となる。また、細胞の多形
性はみられない。
性雰囲気中、60℃で2日間培養した場合、栄養細胞は
0.3〜0.5 X 2〜4μmの大きさの直状の桿菌
である。上記の栄養細胞は単独あるいは連鎖して存在す
る。液体培養においても同様となる。また、細胞の多形
性はみられない。
デキストリン−ペプトン培地の組成
デキストリン 1.5%ペプトン
0.5%酵母エキス
0.5%Kll□PO40,7% Na1l!P0. 0.2%Mg
5O,・7H,00,001% 寒天 2.0% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%水道水 pH6,0 (2)運動性の有無 運動性は認められない (3)胞子の有無 でん粉−ペプトン培地の寒天平板培養において胞子の形
成が認められる。胞子は栄養細胞内端部に形成され、直
径0.5μm程度の球状をなしている。
0.5%酵母エキス
0.5%Kll□PO40,7% Na1l!P0. 0.2%Mg
5O,・7H,00,001% 寒天 2.0% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%水道水 pH6,0 (2)運動性の有無 運動性は認められない (3)胞子の有無 でん粉−ペプトン培地の寒天平板培養において胞子の形
成が認められる。胞子は栄養細胞内端部に形成され、直
径0.5μm程度の球状をなしている。
(4)ダラム染色性
陰性
B、各培地における生産状態
(1)コロニーの形態
でん粉−ペプトン培地の寒天平板培養でのコロニーは、
中心部がやや隆起した扁平な円形となり、周縁部は不規
則である。色素は産生せず、乳白色半透明である。
中心部がやや隆起した扁平な円形となり、周縁部は不規
則である。色素は産生せず、乳白色半透明である。
(2)肉汁寒天平板培養
生育は認められない
肉汁寒天培地組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%寒天
2.0% 蒸留水 pH6,0 (3)肉汁寒天斜面培養 生育は認められない (4)肉汁寒天穿刺培養 穿刺線にそってわずかに増殖していることが観察される
。色素の産生は認められない。
1.0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%寒天
2.0% 蒸留水 pH6,0 (3)肉汁寒天斜面培養 生育は認められない (4)肉汁寒天穿刺培養 穿刺線にそってわずかに増殖していることが観察される
。色素の産生は認められない。
(5)肉汁液体培養
生育は認められない
肉汁培地の組成
肉エキス 1.0%ペプトン
l・0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.01%蒸留水 pH6,0 (6)肉汁・ゼラチン培養 生育は認められない。ゼラチンの液化も認められない。
l・0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.01%蒸留水 pH6,0 (6)肉汁・ゼラチン培養 生育は認められない。ゼラチンの液化も認められない。
肉汁ゼラチン培地の組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩 0.2% ゼラチン 15.0%チオグリコール
酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (7)リドマスミルク培養 酸を生成して赤変し、固(凝固する。ガスの発生が認め
られる。
1.0%食塩 0.2% ゼラチン 15.0%チオグリコール
酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (7)リドマスミルク培養 酸を生成して赤変し、固(凝固する。ガスの発生が認め
られる。
C0生理的性質
(1)生育の温度範囲
49〜64℃で生育する。46℃、69℃では生育は認
められない。57〜61℃付近で良好に生育する。
められない。57〜61℃付近で良好に生育する。
(2)生育のpH範囲
pH4.8〜7.5で生育する。pH6,0付近で良好
に生育する。
に生育する。
(3)酸素に対する態度
偏性嫌気性
(4)O−Fテスト (Hugh La1fson法)
陰性。空気雰囲気中及び流動パラフィン重層による嫌気
性条件下共にガス生成を伴って生育し、酸の生成により
黄色となる。空気雰囲気中での培養においては、気相境
界部より約1cs下より、底部にかけて生育した。
陰性。空気雰囲気中及び流動パラフィン重層による嫌気
性条件下共にガス生成を伴って生育し、酸の生成により
黄色となる。空気雰囲気中での培養においては、気相境
界部より約1cs下より、底部にかけて生育した。
培地組成
ペプトン 0.2%ぶとう糖
1.0%食塩 0.5% に2HP0. 0.03%ブロ
ムクレゾールパープル 0.002%寒天
0.3% 蒸留水 pH6,0 (5)硝酸塩の還元 陰性 (6)VPテスト 陰性 (7)MRテスト 陽性。赤変化する。
1.0%食塩 0.5% に2HP0. 0.03%ブロ
ムクレゾールパープル 0.002%寒天
0.3% 蒸留水 pH6,0 (5)硝酸塩の還元 陰性 (6)VPテスト 陰性 (7)MRテスト 陽性。赤変化する。
(8)インドール生成
ペプトン水に生育しないため測定できない。
(9)硫化水素の生成
陰性(Kligrerの培地使用において)(10)で
ん粉の加水分解 陽性 (1))クエン酸の利用 陽性(Simons培地使用において)(12)アンモ
ニウム塩の利用 ペプトン水に生育せず、測定できない。
ん粉の加水分解 陽性 (1))クエン酸の利用 陽性(Simons培地使用において)(12)アンモ
ニウム塩の利用 ペプトン水に生育せず、測定できない。
(13)色素の菌体外生成
陰性
(14)ウレアーゼ
陰性
(15)オキシダーゼ
陰性
(16)カタラーゼ
陰性
(17) ttJMの資化性
糖の資化性及びダーラム管を用いたガス発生有無の観察
結果を第1表に示す。表中、資化性及びガスの生成が認
められた場合には+、認められない場合には−の記号で
示した。
結果を第1表に示す。表中、資化性及びガスの生成が認
められた場合には+、認められない場合には−の記号で
示した。
(本頁以下余白)
第 1 表
糖質化性試験用液体培地組成
炭素源(糖)1.0%
ペプトン 1.0%NaC10,2
% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (18)無機塩培地への生育 生育は認められない。
% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (18)無機塩培地への生育 生育は認められない。
これらの結果よりバージ−の細菌分類マニュアル(Be
rgey’s Manual of Determin
ative Bacteri−ology 8th E
dition)に基づき、クロスツリジウムに属する細
菌と同定した。
rgey’s Manual of Determin
ative Bacteri−ology 8th E
dition)に基づき、クロスツリジウムに属する細
菌と同定した。
次に、本発明なる耐熱性グリコアミラーゼの酵素的特性
について記す。
について記す。
なお、グルコアミラーゼ活性の測定は次のように行った
。
。
グルコアミラーゼ活性測定の基質には可溶性でん粉(和
光純薬製、生化学用)を用いた。まず、5%可溶性でん
粉溶液0.5艷、pH4.5の0.1 M酢酸−酢酸ナ
トリウム緩衝液0.5d、純水1ml。
光純薬製、生化学用)を用いた。まず、5%可溶性でん
粉溶液0.5艷、pH4.5の0.1 M酢酸−酢酸ナ
トリウム緩衝液0.5d、純水1ml。
酵素溶液0.5−を混合し、60℃で30分間酵素反応
を行わせた。次いで、反応液中のぶどう糖■をグルコー
ス分析器(米国、イエロー・スプリングス・インスツル
メント・カンパニー(Yellow Springs
Instrument Company)社製、グルコ
ースオキシダーゼ法により測定する。)を用いて測定し
た。
を行わせた。次いで、反応液中のぶどう糖■をグルコー
ス分析器(米国、イエロー・スプリングス・インスツル
メント・カンパニー(Yellow Springs
Instrument Company)社製、グルコ
ースオキシダーゼ法により測定する。)を用いて測定し
た。
グルコアミラーゼ活性の1単位は、上記測定条件下で1
分間に1μmolのぶとう糖を生成する能力と定義した
。
分間に1μmolのぶとう糖を生成する能力と定義した
。
(1)調製方法
実施例において詳細に説明するので、ここでは筒車な説
明にとどめる。
明にとどめる。
本発明になるクロスツリジウム属細菌G−0005菌を
、デキストリン・ペプトン及び酵母エキスを含有する液
体培地に接種し、嫌気条件下、60℃にて1〜3日間培
養する。培養液を遠心分離等により菌体及びそれ以外の
不溶物質を除去したいわゆる培養濾液を得る。次いで、
培養濾液を、モレキュラーシーブ膜濾過、塩析イオン交
換クロマト、ゲル濾過クロマト等、公知の方法を適宜利
用して本発明のグルコアミラーゼを濃縮するとともに、
それ以外の不純物を除く。
、デキストリン・ペプトン及び酵母エキスを含有する液
体培地に接種し、嫌気条件下、60℃にて1〜3日間培
養する。培養液を遠心分離等により菌体及びそれ以外の
不溶物質を除去したいわゆる培養濾液を得る。次いで、
培養濾液を、モレキュラーシーブ膜濾過、塩析イオン交
換クロマト、ゲル濾過クロマト等、公知の方法を適宜利
用して本発明のグルコアミラーゼを濃縮するとともに、
それ以外の不純物を除く。
なお、液体培養における液体培地の炭素源としては、上
記デキストリンに限るものではなく、可溶性でん粉、馬
鈴薯でん粉、コーンスターチ、甘薯でん粉、廃糖みつ等
を用いてもよい。また、その他の栄養成分も上記に限定
するものではなく、コーンステイープリカー、各種アミ
ノ酸、ビタミン、各種塩等を単独もしくは混合して用い
てもよい。
記デキストリンに限るものではなく、可溶性でん粉、馬
鈴薯でん粉、コーンスターチ、甘薯でん粉、廃糖みつ等
を用いてもよい。また、その他の栄養成分も上記に限定
するものではなく、コーンステイープリカー、各種アミ
ノ酸、ビタミン、各種塩等を単独もしくは混合して用い
てもよい。
(2)作用及び基質特異性
本酵素は、馬鈴薯、とうもろこし、甘薯等のでん粉、お
よびこれらを加水分解して得た可溶性でん粉、デキスト
リン、マルトース等をぶとう糖に加水分解するグルコア
ミラーゼである。マルトース基質の場合、ぶどう糖生成
速度は可溶性でん粉基質の約2である。
よびこれらを加水分解して得た可溶性でん粉、デキスト
リン、マルトース等をぶとう糖に加水分解するグルコア
ミラーゼである。マルトース基質の場合、ぶどう糖生成
速度は可溶性でん粉基質の約2である。
(3)至適pH
本酵素の60℃における作用pH曲線を第1図に示す。
本酵素の60℃における最適pH域は4〜5にあり、か
つ、好適pHは(最適pHでの活性の80%を有するp
H域とする)3.8〜5.7にある。
つ、好適pHは(最適pHでの活性の80%を有するp
H域とする)3.8〜5.7にある。
なお、反応の際のpH緩衝液としては、塩化カリウム−
塩酸(pH2,0)、グリシン−塩酸(p H2,5〜
3.5)、β:β−ジメチルグルタル酸−トリス(ヒド
ロキシメチルアミノ)メタン−2−アミノ−2−メチル
−1:3−プロパンジオール(以下rGTAJと略称)
(pH3,5〜9)の0.05M緩衝液を用いた。
塩酸(pH2,0)、グリシン−塩酸(p H2,5〜
3.5)、β:β−ジメチルグルタル酸−トリス(ヒド
ロキシメチルアミノ)メタン−2−アミノ−2−メチル
−1:3−プロパンジオール(以下rGTAJと略称)
(pH3,5〜9)の0.05M緩衝液を用いた。
(4)pH安定性
本発明のグルコアミラーゼをpH2,3,4゜4.5,
5.6,7.9の各pH下(0,05M塩化カリウム−
塩酸、 0.05Mグリシン−塩酸及び0.05MG
T A’ 1)衝液を使用)で70℃、30分間インキ
ュベートした。そののち、反応液を希釈し、pH4.5
に調整したのち、可溶性でん粉を基質として残存活性を
測定した。その結果を第2図に示した。本発明のグルコ
アミラーゼはpH4.5〜5.0の範囲で完全に活性が
保持されていた。したがって、本グルコアミラーゼは酸
性領域ですぐれた安定性を有する酵素であることがわか
った。
5.6,7.9の各pH下(0,05M塩化カリウム−
塩酸、 0.05Mグリシン−塩酸及び0.05MG
T A’ 1)衝液を使用)で70℃、30分間インキ
ュベートした。そののち、反応液を希釈し、pH4.5
に調整したのち、可溶性でん粉を基質として残存活性を
測定した。その結果を第2図に示した。本発明のグルコ
アミラーゼはpH4.5〜5.0の範囲で完全に活性が
保持されていた。したがって、本グルコアミラーゼは酸
性領域ですぐれた安定性を有する酵素であることがわか
った。
(5)至適温度
本発明のグルコアミラーゼの活性をpH4.5の条件下
、40.50.60.65.70.75℃の温度にて測
定したところ、第3図に示す結果を得た。本結果より、
至適温度は70℃付近にある。好適温度(最適温度での
活性の80%を有する温度域とする)は53〜73°C
である。
、40.50.60.65.70.75℃の温度にて測
定したところ、第3図に示す結果を得た。本結果より、
至適温度は70℃付近にある。好適温度(最適温度での
活性の80%を有する温度域とする)は53〜73°C
である。
(6)グルコアミラーゼ活性に及ぼす金属塩の影響
本発明のグルコアミラーゼの活性に及ぼす金属塩の影響
を第2表に示す。グルコアミラーゼ活性の測定において
各種の金属塩を5mM8こなるように添加した。そして
、金属塩無添加に対する活性を%で表示した。なお、ア
ンモニウム塩及びEDTA添加の場合についても第2表
に付記した。マグネシウムイオン、カルシウムイオン、
カリウムイオンがグルコアミラーゼ活性作用を有するこ
とが認められる。ニッケルイオン、鉄イオンには阻害作
用が認められる。
を第2表に示す。グルコアミラーゼ活性の測定において
各種の金属塩を5mM8こなるように添加した。そして
、金属塩無添加に対する活性を%で表示した。なお、ア
ンモニウム塩及びEDTA添加の場合についても第2表
に付記した。マグネシウムイオン、カルシウムイオン、
カリウムイオンがグルコアミラーゼ活性作用を有するこ
とが認められる。ニッケルイオン、鉄イオンには阻害作
用が認められる。
(来夏以下余白)
第 2 表
活性測定条件
pH5,0(0,1Mクエン酸−第2クエン酸ナトリウ
ム緩衝液)活性測定温度:60”C(7)熱安定性 本発明のグルコアミラーゼを基質無添加下、pH4.5
にて、60〜80℃の加熱処理を行い、一定時間毎(2
0,40秒、 1. 2. 4.10.20.40分
、1゜2.4.6,8.16時間、1.2.4.7.1
0゜15、20日)に処理液の一部を採取し、液中のグ
ルコアミラーゼ活性を5Q’C,pH4.5にて測定し
た。
ム緩衝液)活性測定温度:60”C(7)熱安定性 本発明のグルコアミラーゼを基質無添加下、pH4.5
にて、60〜80℃の加熱処理を行い、一定時間毎(2
0,40秒、 1. 2. 4.10.20.40分
、1゜2.4.6,8.16時間、1.2.4.7.1
0゜15、20日)に処理液の一部を採取し、液中のグ
ルコアミラーゼ活性を5Q’C,pH4.5にて測定し
た。
これをもとに各温度における活性半減期を求め、その結
果を第4図に示した。70℃及び75℃における基質無
添加下での活性半減期はそれぞれ、6時間、1分間であ
る。本グルコアミラーゼはこれまで公知のグルコアミラ
ーゼに較べ高度の耐熱性を有している。一方、p H4
.0、4.3、4.5、5,0。
果を第4図に示した。70℃及び75℃における基質無
添加下での活性半減期はそれぞれ、6時間、1分間であ
る。本グルコアミラーゼはこれまで公知のグルコアミラ
ーゼに較べ高度の耐熱性を有している。一方、p H4
.0、4.3、4.5、5,0。
6.0の各pHにおける基質無添加下、70’Cでの活
性半減期を求め、第3表に示した。この結果から、本グ
ルコアミラーゼは、クロスツリジウム・サーモアミロリ
ディクム(Clostridium thermoam
yloly−ticum) 、サーモマイセス・ラヌギ
ノスス(Thermo−myces 1anugino
susL及びタラコミセス0デユポンテイ(Talar
omyces duponti)により産生されるグル
コアミラーゼよりも、特に、pH4〜5の酸性領域にお
いてすぐれた耐熱性をもっことを示す。
性半減期を求め、第3表に示した。この結果から、本グ
ルコアミラーゼは、クロスツリジウム・サーモアミロリ
ディクム(Clostridium thermoam
yloly−ticum) 、サーモマイセス・ラヌギ
ノスス(Thermo−myces 1anugino
susL及びタラコミセス0デユポンテイ(Talar
omyces duponti)により産生されるグル
コアミラーゼよりも、特に、pH4〜5の酸性領域にお
いてすぐれた耐熱性をもっことを示す。
(本頁以下余白)
(8)耐熱性に及ぼす金属塩の影響
本発明のグルコアミラーゼの耐熱性に及ぼす金属塩の影
響を第4表に示す。グルコアミラーゼの水溶液(0,0
5M酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液に溶解、pH4.5)
に各種の金属塩を5mM濃度になるように添加し、70
℃、1時間の加熱処理を行ったのち、pH4.5,60
℃でグルコアミラーゼ活性を測定した。そして、加熱処
理前に対する加熱処理後の活性、すなわち残存活性を%
で表示した。
響を第4表に示す。グルコアミラーゼの水溶液(0,0
5M酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液に溶解、pH4.5)
に各種の金属塩を5mM濃度になるように添加し、70
℃、1時間の加熱処理を行ったのち、pH4.5,60
℃でグルコアミラーゼ活性を測定した。そして、加熱処
理前に対する加熱処理後の活性、すなわち残存活性を%
で表示した。
第4表から、ニッケルイオン、マンガンイオン、マグネ
シウムイオンに保護効果のあることが認められる。コバ
ルトイオン、カルシウムイオンについては保護効果は認
められない。亜鉛イオンは耐熱性を著しく低下させる。
シウムイオンに保護効果のあることが認められる。コバ
ルトイオン、カルシウムイオンについては保護効果は認
められない。亜鉛イオンは耐熱性を著しく低下させる。
(本頁以下余白)
第 4 表
(9)分子量
本発明のグルコアミラーゼの分子量はゲル濾過クロマト
法(スエーデン、ファルマシア製セファデックスG−1
00を使用)による溶出パターンから3.8X10’と
測定される。
法(スエーデン、ファルマシア製セファデックスG−1
00を使用)による溶出パターンから3.8X10’と
測定される。
〔作 用〕 ′
以上述べたことから明らかなように、本発明の新しい耐
熱性グルコアミラーゼは、特にpH4〜5の酸性領域で
の耐熱性において、従来の嫌気性細菌の産生ずる耐熱性
酵素と著しく異なる。
熱性グルコアミラーゼは、特にpH4〜5の酸性領域で
の耐熱性において、従来の嫌気性細菌の産生ずる耐熱性
酵素と著しく異なる。
ところで、ぶどう糖や異性化糖を製造するには、まず、
原料のでん粉をα−アミラーゼで液化し、そのあとグル
コアミラーゼで糖化している。液化の際、原料のでん粉
を20〜40%の高濃度に仕込むため、液のpHは酸性
を呈する。このため、従来の耐熱性α−アミラーゼ及び
耐熱性グルコアミラーゼを用いる場合には、作用pH域
が中性域にあるため、アルカリで中和しなければならな
い。
原料のでん粉をα−アミラーゼで液化し、そのあとグル
コアミラーゼで糖化している。液化の際、原料のでん粉
を20〜40%の高濃度に仕込むため、液のpHは酸性
を呈する。このため、従来の耐熱性α−アミラーゼ及び
耐熱性グルコアミラーゼを用いる場合には、作用pH域
が中性域にあるため、アルカリで中和しなければならな
い。
これに対し、先に本発明者らが見い出した耐熱性・耐酸
性の新規なα−アミラーゼ(特願昭59−236917
号)及び、本発明の新規なグルコアミラーゼを用いるこ
とにより、液化での中和を行うことなく酸性の状態での
まま液化及び糖化を行うことが可能となり、ひいては反
応後の脱塩工程への負荷を大幅に軽減できる。
性の新規なα−アミラーゼ(特願昭59−236917
号)及び、本発明の新規なグルコアミラーゼを用いるこ
とにより、液化での中和を行うことなく酸性の状態での
まま液化及び糖化を行うことが可能となり、ひいては反
応後の脱塩工程への負荷を大幅に軽減できる。
以下、本発明の実施例を示し、さらに詳しく説明する。
実施例1
デキストリン1.5%、ポリペプトン0.5%、酵母エ
キス0.5%、リン酸第1カリウム0.7%、リン酸第
2ナトリウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物0
.001%、チオグリコール酸ナトリウム0.1%及び
水道水を含む液体培地(p H6,0) 32kgを内
容積51の培養槽10基に3.15 kgづつ分注し、
120℃で15分間殺菌した。それぞれの培養槽に上記
培地を用いて嫌気的に培養したクロスツリジウム属細菌
G−0005の菌体懸濁液0.35kgを添加した。
キス0.5%、リン酸第1カリウム0.7%、リン酸第
2ナトリウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物0
.001%、チオグリコール酸ナトリウム0.1%及び
水道水を含む液体培地(p H6,0) 32kgを内
容積51の培養槽10基に3.15 kgづつ分注し、
120℃で15分間殺菌した。それぞれの培養槽に上記
培地を用いて嫌気的に培養したクロスツリジウム属細菌
G−0005の菌体懸濁液0.35kgを添加した。
次いで、ガス出口に水封トラップを付し、培養槽内気相
部をアルゴンガス(酸素濃度i ppm以下)で十分置
換後、嫌気条件下で培養した。培養液のpHは6.0に
、培養液の温度は60℃にそれぞれ自動調整した。21
時間培養後、培養液を合せ、6000rpmで遠心分離
し、菌体を除去した。回収した上澄液についてガラス濾
紙(東洋科学産業型、 GA−100及びGC−50)
メンブレンフィルタ (東洋科学産業型、ポアサイズ1
μm及び0.45μm)を用いて加圧濾過し、菌体及び
その他の固形物を除去して培養濾液を得た。この培養濾
液よりIO−を採取し、純水にて24時間透析したのち
、グルコアミラーゼ活性を測定したところ、培養濾液1
gあたり0.05単位のグルコアミラーゼが存在してい
た。
部をアルゴンガス(酸素濃度i ppm以下)で十分置
換後、嫌気条件下で培養した。培養液のpHは6.0に
、培養液の温度は60℃にそれぞれ自動調整した。21
時間培養後、培養液を合せ、6000rpmで遠心分離
し、菌体を除去した。回収した上澄液についてガラス濾
紙(東洋科学産業型、 GA−100及びGC−50)
メンブレンフィルタ (東洋科学産業型、ポアサイズ1
μm及び0.45μm)を用いて加圧濾過し、菌体及び
その他の固形物を除去して培養濾液を得た。この培養濾
液よりIO−を採取し、純水にて24時間透析したのち
、グルコアミラーゼ活性を測定したところ、培養濾液1
gあたり0.05単位のグルコアミラーゼが存在してい
た。
次に上記培養濾液29ksrを中空繊維型モレキュラー
シーブ膜(分画分子ff1lo、000.米国アミコン
製(Amicon Co、)HIPIO−20)で加圧
濾過し、2 kgに濃縮した。上記濃縮液について硫安
を用いた塩析を行い、飽和度(硫安飽和濃度に対す割合
、%で表わす)20%にて析出せず、飽和度55%にて
析出した固形物を14.OOOrpmで遠心分離し回収
した。次いで飽和度55%の硫安溶液で固形物を洗浄し
回収した。次いで、固形物を0.05M )リス−塩酸
緩衝液(pH7,5)に溶解し240gとした。次いで
上記緩衝液10βを用いて、24時間の透析を2回繰返
し実施した。そののち、透析した液中の固形物を、ガラ
ス濾紙(東洋濾紙製、 GC〜50)を用いた濾過で除
去した。清澄化した透析液は310gであった。
シーブ膜(分画分子ff1lo、000.米国アミコン
製(Amicon Co、)HIPIO−20)で加圧
濾過し、2 kgに濃縮した。上記濃縮液について硫安
を用いた塩析を行い、飽和度(硫安飽和濃度に対す割合
、%で表わす)20%にて析出せず、飽和度55%にて
析出した固形物を14.OOOrpmで遠心分離し回収
した。次いで飽和度55%の硫安溶液で固形物を洗浄し
回収した。次いで、固形物を0.05M )リス−塩酸
緩衝液(pH7,5)に溶解し240gとした。次いで
上記緩衝液10βを用いて、24時間の透析を2回繰返
し実施した。そののち、透析した液中の固形物を、ガラ
ス濾紙(東洋濾紙製、 GC〜50)を用いた濾過で除
去した。清澄化した透析液は310gであった。
次に、上記透析液をジエチルアミノエチル化架橋アガロ
ースゲル(ファルマシア製、 DEARセファロースC
L−68)を用いたイオン交換クロマト (カラムサイ
ズφ44 X 500mm)により精製した。0.05
Mトリス−塩酸緩衝液で平衡化したゲルカラムに上記透
析液をチャージし、洗滌した。次いで緩衝液中の塩化ナ
トリウム濃度を直線勾配で上昇しつつ展開した。グルコ
アミラーゼの溶出パターンを第5図に示す。塩化ナトリ
ウム濃度0.25Mの溶出位置にグルコアミラーゼ活性
を有するピークが認められた。グルコアミラーゼフラク
ションとして360gを回収し、次いでモレキュラーシ
ーブ膜(分画分子量10,000.米国アミコン製、
PM−10)を用い、純水10kgを加えて加圧濾過し
、脱塩、濃縮を行い粗精製グルコアミラーゼ液160g
を得た。本溶液中のグルコアミラーゼ活性は3.3単位
/gであった。
ースゲル(ファルマシア製、 DEARセファロースC
L−68)を用いたイオン交換クロマト (カラムサイ
ズφ44 X 500mm)により精製した。0.05
Mトリス−塩酸緩衝液で平衡化したゲルカラムに上記透
析液をチャージし、洗滌した。次いで緩衝液中の塩化ナ
トリウム濃度を直線勾配で上昇しつつ展開した。グルコ
アミラーゼの溶出パターンを第5図に示す。塩化ナトリ
ウム濃度0.25Mの溶出位置にグルコアミラーゼ活性
を有するピークが認められた。グルコアミラーゼフラク
ションとして360gを回収し、次いでモレキュラーシ
ーブ膜(分画分子量10,000.米国アミコン製、
PM−10)を用い、純水10kgを加えて加圧濾過し
、脱塩、濃縮を行い粗精製グルコアミラーゼ液160g
を得た。本溶液中のグルコアミラーゼ活性は3.3単位
/gであった。
次に上記粗精製グルコアミラーゼにつきゲル濾過により
精製した。まず、上記ゲルコミラーゼ液100gを40
Torrの減圧下で凍結乾燥し、これを0゜05Mクエ
ン酸・第2クエン酸緩衝液(pH4.5) 4dに溶
解し、固形物を400Orpmの遠心分離で除去した。
精製した。まず、上記ゲルコミラーゼ液100gを40
Torrの減圧下で凍結乾燥し、これを0゜05Mクエ
ン酸・第2クエン酸緩衝液(pH4.5) 4dに溶
解し、固形物を400Orpmの遠心分離で除去した。
次に、上記緩衝液で平衡化した架橋デキストランゲル(
ファルマシア製、セファデックスG−100)を充填し
たクロマトカラム(φ15 X 900mm)に上記グ
ルコアミラーゼ液1−をチャージし同じ緩衝液で展開し
た。その結果を第6図に示した。溶出液ff165mZ
の位置にグルコアミラーゼ活性のピークが認められた。
ファルマシア製、セファデックスG−100)を充填し
たクロマトカラム(φ15 X 900mm)に上記グ
ルコアミラーゼ液1−をチャージし同じ緩衝液で展開し
た。その結果を第6図に示した。溶出液ff165mZ
の位置にグルコアミラーゼ活性のピークが認められた。
上記ゲル濾過を残りの粗精製グルコアミラーゼについて
も実施し、精製グルコアミラーゼフラクション40gを
得た。本フラクションのグルコアミラーゼ活性は12単
位/gであった。
も実施し、精製グルコアミラーゼフラクション40gを
得た。本フラクションのグルコアミラーゼ活性は12単
位/gであった。
以上の精製操作により、培養濾液基準の比活性は171
倍に向上した。また、培養濾液基準の活性回収率は23
%である。培養濾液を基準とした各工程の標品の比活性
、収量、活性回収率を第5表に示した。
倍に向上した。また、培養濾液基準の活性回収率は23
%である。培養濾液を基準とした各工程の標品の比活性
、収量、活性回収率を第5表に示した。
(本頁以下余白)
実施例2
実施例1において、培養液から遠心分離により菌体を含
む固形物400gを回収した。次いで、生理食塩水60
0gを加えてスラリー化し、菌体スラリー1000 g
を得た。次いで菌体スラリーより40gを分取し、フレ
ンチプレス(大岳製作所製)用加圧セルにセントした。
む固形物400gを回収した。次いで、生理食塩水60
0gを加えてスラリー化し、菌体スラリー1000 g
を得た。次いで菌体スラリーより40gを分取し、フレ
ンチプレス(大岳製作所製)用加圧セルにセントした。
次いで油圧プレスにより、1600kg/cnlの圧力
をかけたのち、細口より5−7分の速度で大気中に噴出
させて菌体を破砕した。
をかけたのち、細口より5−7分の速度で大気中に噴出
させて菌体を破砕した。
残りの菌体スラリーについても上記操作を行って菌体破
砕スラリー1000 gを得た。
砕スラリー1000 gを得た。
次いで、菌体スラリーより16.00Orpmの遠心分
離により固形物を除去しさらにガラス濾紙(東洋濾紙層
、 GA−100,GC−50)及びメンブレンフィル
タ(東洋濾紙製、ポアサイズ1,0.45μm)を用い
て加圧濾過し、菌体破砕上澄液800dを得た。
離により固形物を除去しさらにガラス濾紙(東洋濾紙層
、 GA−100,GC−50)及びメンブレンフィル
タ(東洋濾紙製、ポアサイズ1,0.45μm)を用い
て加圧濾過し、菌体破砕上澄液800dを得た。
次いで、菌体破砕上澄液に70℃、5分間の熱処理を行
い、熱変性を起しやすいたん白質を変性させた。5℃以
下まで冷却したのち、8000rpmの遠心分離により
固形物を除去した。得られた熱処理上澄液は760dで
あった。
い、熱変性を起しやすいたん白質を変性させた。5℃以
下まで冷却したのち、8000rpmの遠心分離により
固形物を除去した。得られた熱処理上澄液は760dで
あった。
次に、実施例1記載の手法により、硫安沈澱、透析、イ
オン交換クロマト、ゲル濾過の各精製を実施した。菌体
破砕上澄液を基準とした各工程の標品の比活性、収量、
活性回収率を表6に示した。
オン交換クロマト、ゲル濾過の各精製を実施した。菌体
破砕上澄液を基準とした各工程の標品の比活性、収量、
活性回収率を表6に示した。
(不貞以下余白)
実施例3
コーンスターチ2.3%、ポリペプトン0.2%。
酵母エキス0.2%、硫酸アンモニウム0.2%、リン
酸1カリウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物0
゜002%、システィン0.1%及び水道水を含む液体
培地(pH6,4) 20kgを内容積50βの培養槽
に仕込み、槽内及び培養槽外壁に設けたジャケット部に
蒸気を吹込み、120℃、20分間の殺菌を実施した。
酸1カリウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物0
゜002%、システィン0.1%及び水道水を含む液体
培地(pH6,4) 20kgを内容積50βの培養槽
に仕込み、槽内及び培養槽外壁に設けたジャケット部に
蒸気を吹込み、120℃、20分間の殺菌を実施した。
次いで、培養槽内を60℃まで冷却したのち、無菌水を
加えて培地量を32kirとした。次に、実施例1に示
した培地及び手法により調製したクロスツリジウム属細
菌G−0005菌懸濁液3.5 kgを添加した。次い
で、ガス出口に水封トラップを付し、培養槽内気相部を
窒素ガスで置換したのち、嫌気条件下、60℃、PH6
,5で培養した。40時間培養したのち、直ちに連続型
遠心分離機により固形物を除去し培養上澄液33.5k
gを得た。本培養上澄液には0.09単位7gのグルコ
アミラーゼ活性が存在していた。次いで、上記培養上澄
液の21をロークリエバポレータ用フラスコにとり、6
0℃の水浴に浸漬下でロータリエバポレータを用いて減
圧蒸留を行った。なお、蒸留開始時の発泡を抑えるため
、n−オクチルアルコールl−を添加したのち減圧を開
始した。フラスコ内の培養上澄液の減少量に応じてフラ
スコ内に外部より新たな培養上澄液を供給して減圧蒸留
をm続した。なお、フラスコ内での発泡が著しくなった
場合には随時n−オクチルアルコールを添加した。減圧
蒸留によって、濃縮液2.3pを得た。
加えて培地量を32kirとした。次に、実施例1に示
した培地及び手法により調製したクロスツリジウム属細
菌G−0005菌懸濁液3.5 kgを添加した。次い
で、ガス出口に水封トラップを付し、培養槽内気相部を
窒素ガスで置換したのち、嫌気条件下、60℃、PH6
,5で培養した。40時間培養したのち、直ちに連続型
遠心分離機により固形物を除去し培養上澄液33.5k
gを得た。本培養上澄液には0.09単位7gのグルコ
アミラーゼ活性が存在していた。次いで、上記培養上澄
液の21をロークリエバポレータ用フラスコにとり、6
0℃の水浴に浸漬下でロータリエバポレータを用いて減
圧蒸留を行った。なお、蒸留開始時の発泡を抑えるため
、n−オクチルアルコールl−を添加したのち減圧を開
始した。フラスコ内の培養上澄液の減少量に応じてフラ
スコ内に外部より新たな培養上澄液を供給して減圧蒸留
をm続した。なお、フラスコ内での発泡が著しくなった
場合には随時n−オクチルアルコールを添加した。減圧
蒸留によって、濃縮液2.3pを得た。
次いで、上記濃縮液について70℃、5分間の熱処理を
加え、直ちに50℃以下まで冷却した。次いで、700
0rpmの遠心分離によって、熱処理で析出した固形物
を除去し、熱処理上澄液2.1)を得た。
加え、直ちに50℃以下まで冷却した。次いで、700
0rpmの遠心分離によって、熱処理で析出した固形物
を除去し、熱処理上澄液2.1)を得た。
次に熱処理上澄液について硫安を用いた塩析を行い、飽
和度20%−55%の両分を回収した。次いでこれを飽
和度55%の硫安溶液で洗浄したのち固形物を蒸留水に
溶解し、粗グルコアミラーゼ溶液520gを得た。
和度20%−55%の両分を回収した。次いでこれを飽
和度55%の硫安溶液で洗浄したのち固形物を蒸留水に
溶解し、粗グルコアミラーゼ溶液520gを得た。
次に、粗グルコアミラーゼ?容?夜にコーンスターチ2
00gを添加し、十分攪拌混合したのち、遠心分離によ
りコーンスターチを分離して上澄液を回収した。さらに
コーンスターチを蒸留水200gで洗浄して洗浄液を回
収し、上記上澄液とあわせて490gのでん粉吸着処理
液を得た。次いで、ガラス濾紙(東洋濾紙製、 GA−
100,GC−50)を用いて加圧濾過し、粗グルコア
ミラーゼ溶液480gを得た。本溶液のグルコアミラー
ゼ活性は5.3単位/gであり、培養上澄液基準で、比
活性は59倍に向上し、活性回収率は84%であった。
00gを添加し、十分攪拌混合したのち、遠心分離によ
りコーンスターチを分離して上澄液を回収した。さらに
コーンスターチを蒸留水200gで洗浄して洗浄液を回
収し、上記上澄液とあわせて490gのでん粉吸着処理
液を得た。次いで、ガラス濾紙(東洋濾紙製、 GA−
100,GC−50)を用いて加圧濾過し、粗グルコア
ミラーゼ溶液480gを得た。本溶液のグルコアミラー
ゼ活性は5.3単位/gであり、培養上澄液基準で、比
活性は59倍に向上し、活性回収率は84%であった。
本発明の新規な耐熱性/耐酸性グルコアミラーゼは、特
にpH4〜5の酸性領域下にてすぐれた耐熱性を有する
ため、でん粉を原料としてぶどう糖を製造する際、でん
粉溶液を中和することなく酸性状態での糖化が可能とな
る。これに比べ、従来公知の耐熱性グルコアミラーゼを
用いる場合には、でん粉溶液を中性化するためにアルカ
リを添加しなければならない。したがって、本発明のグ
ルコアミラーゼを用いることにより、でん粉溶液の中和
工程が不要となり、かつ反応後の脱塩工程への負荷を大
幅に軽減できる。
にpH4〜5の酸性領域下にてすぐれた耐熱性を有する
ため、でん粉を原料としてぶどう糖を製造する際、でん
粉溶液を中和することなく酸性状態での糖化が可能とな
る。これに比べ、従来公知の耐熱性グルコアミラーゼを
用いる場合には、でん粉溶液を中性化するためにアルカ
リを添加しなければならない。したがって、本発明のグ
ルコアミラーゼを用いることにより、でん粉溶液の中和
工程が不要となり、かつ反応後の脱塩工程への負荷を大
幅に軽減できる。
第1図は本発明のグルコアミラーゼの活性に及ぼすpH
の影響を示す特性図、第2図は本グルコアミラーゼの熱
安定性に及ぼすpHの影響を示す特性図、第3図は本グ
ルコアミラーゼの活性に及ぼす温度の影響を示す特性図
、第4図は本グルコアミラーゼの耐熱性を示す特性図、
第5図は本グルコアミラーゼのジエチルアミノエチル架
橋アガロースゲルを用いたイオン交換液体クロマトグラ
フにおけるグルコアミラーゼ活性溶出パターン図、第6
図は本グルコアミラーゼの架橋デキストランゲルを用い
たゲル濾過におけるグルコアミラーゼ活性溶出パターン
図である。 特許出願人 株式会社日立製作所 代理人 弁理士 平 木 祐 輔 pH 第2図 H 第4図
の影響を示す特性図、第2図は本グルコアミラーゼの熱
安定性に及ぼすpHの影響を示す特性図、第3図は本グ
ルコアミラーゼの活性に及ぼす温度の影響を示す特性図
、第4図は本グルコアミラーゼの耐熱性を示す特性図、
第5図は本グルコアミラーゼのジエチルアミノエチル架
橋アガロースゲルを用いたイオン交換液体クロマトグラ
フにおけるグルコアミラーゼ活性溶出パターン図、第6
図は本グルコアミラーゼの架橋デキストランゲルを用い
たゲル濾過におけるグルコアミラーゼ活性溶出パターン
図である。 特許出願人 株式会社日立製作所 代理人 弁理士 平 木 祐 輔 pH 第2図 H 第4図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記の理化学的性質を示す耐熱性グルコアミラーゼ
。 (1)作用至適pH:4〜5 (2)作用至適温度:70℃ (3)安定pH:4.5〜5.0 (4)pH4.5かつ温度70℃における酵素活性半減
期が6時間以上 (5)pH4.0かつ温度70℃における酵素活性半減
期が5.5時間 (6)分子量:3.8×10^4 2、クロスツリジウム属に属する下記理化学的性質のグ
ルコアミラーゼ生産菌を培養し、菌体及び培地中に該グ
ルコアミラーゼを蓄積せしめ、菌体及び又は培地中から
該グルコアミラーゼを回収することを特徴とする耐熱性
グルコアミラーゼの製造法。 (1)作用至適pH:4〜5 (2)作用至適温度:70℃ (3)安定pH:4.5〜5.0 (4)pH4.5かつ温度70℃における酵素活性半減
期が6時間以上 (5)pH4.0かつ温度70℃における酵素活性半減
期が5.5時間 (6)分子量:3.8×10^4 3、クロスツリジウム属に属するグルコアミラーゼ生産
菌がクロスツリジウム・エスピーG−0005であるこ
とを特徴とする特許請求の範囲第2項記載の耐熱性グル
コアミラーゼの製造法。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP17672286A JPS6336778A (ja) | 1986-07-29 | 1986-07-29 | 耐熱性グルコアミラ−ゼ及びその製造法 |
| EP87111005A EP0255124A3 (en) | 1986-07-29 | 1987-07-29 | Thermostable glucoamylase, a method for production of glucose using same and a plant for production thereof |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP17672286A JPS6336778A (ja) | 1986-07-29 | 1986-07-29 | 耐熱性グルコアミラ−ゼ及びその製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6336778A true JPS6336778A (ja) | 1988-02-17 |
| JPH047672B2 JPH047672B2 (ja) | 1992-02-12 |
Family
ID=16018633
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP17672286A Granted JPS6336778A (ja) | 1986-07-29 | 1986-07-29 | 耐熱性グルコアミラ−ゼ及びその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6336778A (ja) |
-
1986
- 1986-07-29 JP JP17672286A patent/JPS6336778A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH047672B2 (ja) | 1992-02-12 |
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