JPS6219081A - 耐熱性α−アミラ−ゼの製造方法 - Google Patents
耐熱性α−アミラ−ゼの製造方法Info
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- JPS6219081A JPS6219081A JP15513585A JP15513585A JPS6219081A JP S6219081 A JPS6219081 A JP S6219081A JP 15513585 A JP15513585 A JP 15513585A JP 15513585 A JP15513585 A JP 15513585A JP S6219081 A JPS6219081 A JP S6219081A
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- amylase
- culture
- starch
- carbon source
- glucose
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔発明の利用分野〕
本発明は、好熱嫌気性細菌を用いて新規なα−アミラー
ゼを製造する方法に係り、特に、好熱嫌気性細菌を培養
する際の培養基質の炭素源に関するものである。
ゼを製造する方法に係り、特に、好熱嫌気性細菌を培養
する際の培養基質の炭素源に関するものである。
耐熱性酵素は常温用酵素に比べ、加熱やp T(の変化
にも安定性が高く、酵素利用工業には極めて有用である
。従来のα−アミラーゼは好気性細菌を起源とするもの
に限られている(嶋村等:特公昭46−12946号公
報)。上記の好気性細菌の中でチルス・ズブチリス(B
acillus 5ubtilis) 及びバチルス
・リチェニホルミス(Bacilluslicheni
formls )を起源とするα−アミラーゼは、すで
に工業生産され、殿粉加工や繊維ののり抜きに使用され
ている。これら公知のα−アミラーゼは、いずれも酵素
本体のたん白質だけでは耐熱性を発揮できず、カルシウ
ムイオンの存在下ではじめて耐熱性を示す。通常数mM
〜20mM(版部:特開昭51−44652号公報、特
開昭51−44690号公報)、少なくとも1mM(斉
藤:特開昭48−35083号公報)のカルシウム濃度
を必要とする。
にも安定性が高く、酵素利用工業には極めて有用である
。従来のα−アミラーゼは好気性細菌を起源とするもの
に限られている(嶋村等:特公昭46−12946号公
報)。上記の好気性細菌の中でチルス・ズブチリス(B
acillus 5ubtilis) 及びバチルス
・リチェニホルミス(Bacilluslicheni
formls )を起源とするα−アミラーゼは、すで
に工業生産され、殿粉加工や繊維ののり抜きに使用され
ている。これら公知のα−アミラーゼは、いずれも酵素
本体のたん白質だけでは耐熱性を発揮できず、カルシウ
ムイオンの存在下ではじめて耐熱性を示す。通常数mM
〜20mM(版部:特開昭51−44652号公報、特
開昭51−44690号公報)、少なくとも1mM(斉
藤:特開昭48−35083号公報)のカルシウム濃度
を必要とする。
本発明者等は、耐熱性にすぐれ、かつカルシウム要求性
の低いα−アミラーゼを得ることを目的に酵素及び酵素
生産用微生物の探索を行った。その結果、クロスツリジ
ウム属に属する偏性嫌気性細菌(クロスツリジウム属細
菌RS −0001゜clostridium sp
RS −0001,微工研菌寄第7918号)が、酵素
の特性、特にカルシウム要求性ならびに作用pH域が従
来のα−アミラーゼと全く異なる新規な耐熱性α−アミ
ラーゼを生成することを見い出した。
の低いα−アミラーゼを得ることを目的に酵素及び酵素
生産用微生物の探索を行った。その結果、クロスツリジ
ウム属に属する偏性嫌気性細菌(クロスツリジウム属細
菌RS −0001゜clostridium sp
RS −0001,微工研菌寄第7918号)が、酵素
の特性、特にカルシウム要求性ならびに作用pH域が従
来のα−アミラーゼと全く異なる新規な耐熱性α−アミ
ラーゼを生成することを見い出した。
α−アミラー・ゼの製造は、(i)殿粉、デキストリン
等を炭素源として用いて細菌を培養し、培養液中にα−
アミラーゼを分泌させる。(ii )培養液中からα−
アミラーゼを回収・精製する。といった工程に従って行
われる。このため、α−アミラーゼを効率的に生産する
には、培養液中に効率よくα−アミラーゼを分泌せしめ
ることが必要である。
等を炭素源として用いて細菌を培養し、培養液中にα−
アミラーゼを分泌させる。(ii )培養液中からα−
アミラーゼを回収・精製する。といった工程に従って行
われる。このため、α−アミラーゼを効率的に生産する
には、培養液中に効率よくα−アミラーゼを分泌せしめ
ることが必要である。
本発明の目的は、好熱嫌気性細菌の産生ずる、耐熱性に
優れ、かつカルシウム要求性の低い新規なα−アミラー
ゼを培養液中に多量に分泌させることができる、好熱性
嫌気性細菌のための培養用炭素源を提供することにある
。
優れ、かつカルシウム要求性の低い新規なα−アミラー
ゼを培養液中に多量に分泌させることができる、好熱性
嫌気性細菌のための培養用炭素源を提供することにある
。
本発明者らは、耐熱性にすぐれ、かつカルシウム要求性
の低い新しいタイプのα−アミラーゼを得ることを目指
し、酵素生産用微生物の探索を行った。その結果、クロ
スッリジウム属に属する好熱性嫌気性細菌(クロスッリ
ジウム属細菌R8−0001、C1ostridiuI
Ilsp、 RS −0001、微工研菌寄第7918
号)が上記の要件を満たす新規な耐熱性α一アミラーゼ
を生成することを見い出した。そして、本菌を用いてα
−アミラーゼの効率的な生産方法につき鋭意研究した結
果、本発明に至った。
の低い新しいタイプのα−アミラーゼを得ることを目指
し、酵素生産用微生物の探索を行った。その結果、クロ
スッリジウム属に属する好熱性嫌気性細菌(クロスッリ
ジウム属細菌R8−0001、C1ostridiuI
Ilsp、 RS −0001、微工研菌寄第7918
号)が上記の要件を満たす新規な耐熱性α一アミラーゼ
を生成することを見い出した。そして、本菌を用いてα
−アミラーゼの効率的な生産方法につき鋭意研究した結
果、本発明に至った。
本発明の特徴は、クロスツリジウム属に属する細菌を培
養する際に用いる培養基中に、炭素源としてマルトース
を用いることにある。マルトースを炭素源として用いる
ことにより、殿粉やデキストリンを用いた場合に比べ、
培養液中に分泌されるα−アミラーゼ量は約2倍にも達
する。また、マルトースは、炭素源として単独で用いる
場合のみならず、殿粉もしくは可溶性殿粉とマルトース
とを混合して用いた場合にも、α−アミラーゼの分泌を
促進する。すなわち、殿粉もしくは、可溶性殿粉もしく
はデキストリンを単一で炭素源として用いた場合に比べ
、多量のα−アミラーゼを培養液中に分泌させる。
養する際に用いる培養基中に、炭素源としてマルトース
を用いることにある。マルトースを炭素源として用いる
ことにより、殿粉やデキストリンを用いた場合に比べ、
培養液中に分泌されるα−アミラーゼ量は約2倍にも達
する。また、マルトースは、炭素源として単独で用いる
場合のみならず、殿粉もしくは可溶性殿粉とマルトース
とを混合して用いた場合にも、α−アミラーゼの分泌を
促進する。すなわち、殿粉もしくは、可溶性殿粉もしく
はデキストリンを単一で炭素源として用いた場合に比べ
、多量のα−アミラーゼを培養液中に分泌させる。
なお、マルトースと同様に、グルコース2分子の縮合物
であるイソマルトースの場合には、上記のような、α−
アミラーゼ産生促進効果は認められない。
であるイソマルトースの場合には、上記のような、α−
アミラーゼ産生促進効果は認められない。
培養液中に分泌されたα−アミラーゼは、殿粉粒子等へ
の吸着法、硫酸アンモニウム塩による塩析法、分子ふる
い膜による濾過法、分子ふるいクロマト、イオン交換液
体クロマト法等、従来よりα−アミラーゼ精製法として
公知の手法により分離、精製したのち、製品化される。
の吸着法、硫酸アンモニウム塩による塩析法、分子ふる
い膜による濾過法、分子ふるいクロマト、イオン交換液
体クロマト法等、従来よりα−アミラーゼ精製法として
公知の手法により分離、精製したのち、製品化される。
本発明に用いるα−アミラーゼを産生ずるクロスツリジ
ウム属を属する細菌(Clostridium spR
S−0001)は工業技術院微生物工業技術研究所に寄
託している(受託番号;微工研菌寄第7918号(FE
RM P−7918))である。まず、本菌の菌学的性
質の詳細を説明する。
ウム属を属する細菌(Clostridium spR
S−0001)は工業技術院微生物工業技術研究所に寄
託している(受託番号;微工研菌寄第7918号(FE
RM P−7918))である。まず、本菌の菌学的性
質の詳細を説明する。
A、形態的性質
(1)栄養細胞の形態
下記の殿粉・ペプトン培地の寒天平板上、嫌気性雰囲気
中、60℃で2日間培養した場合、栄養細胞は0.4〜
0.8X2〜5μmの大きさの直状の桿菌である。3日
間以上の培養では、上記の形状の栄養細胞が単独に存在
する他、連鎖するものも生ずる。液体培養でも同様とな
る。
中、60℃で2日間培養した場合、栄養細胞は0.4〜
0.8X2〜5μmの大きさの直状の桿菌である。3日
間以上の培養では、上記の形状の栄養細胞が単独に存在
する他、連鎖するものも生ずる。液体培養でも同様とな
る。
殿粉・ペプトン培地の組成
可溶性殿粉 1.5%ペプトン
0・5% 酵母エキス 0.5%KH,PO40
,7% Na2HP0. 0.35%M g S
O−・7 H200−001%寒天
2.0%チオグリコール酸ナトリウム 0.1
%水道水 pH6,4 (2)胞子の有無 殿粉・ペプトン培地の寒天平板培養及び液体培養で胞子
の形成が認められる。
0・5% 酵母エキス 0.5%KH,PO40
,7% Na2HP0. 0.35%M g S
O−・7 H200−001%寒天
2.0%チオグリコール酸ナトリウム 0.1
%水道水 pH6,4 (2)胞子の有無 殿粉・ペプトン培地の寒天平板培養及び液体培養で胞子
の形成が認められる。
B、培養的特性
(1)コロニーの形態
殿粉・ペプトン培地の寒天平板培養でのコロニーは、中
心部がやや隆起した扁平な円形となり、周縁部は金縁で
ある。色素生成は見られす、表面に光択を有し乳白色不
透明である。また、粘着性を有する。
心部がやや隆起した扁平な円形となり、周縁部は金縁で
ある。色素生成は見られす、表面に光択を有し乳白色不
透明である。また、粘着性を有する。
(2)肉汁培地の寒天平板培養及び穿刺給養生育して殿
粉・ペプトン培地と同様のコロニーを生ずる。
粉・ペプトン培地と同様のコロニーを生ずる。
肉汁寒天培地組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩
0.2%チオグリコール酸ナトリウム 0.1%寒天
1.5%蒸留水 pH6,0 (3)肉汁培地の穿刺培養 水素と炭酸ガスを含むガスの発生を伴って生育し、この
ため寒天培地が2〜3個所で分断される。
1.0%食塩
0.2%チオグリコール酸ナトリウム 0.1%寒天
1.5%蒸留水 pH6,0 (3)肉汁培地の穿刺培養 水素と炭酸ガスを含むガスの発生を伴って生育し、この
ため寒天培地が2〜3個所で分断される。
(4)肉汁液体培養
嫌気的雰囲気下でのみ生育し、培養液が自濁する。
肉汁培地の組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩
0.2%チオグリコール酸ナトリウム 0.1%蒸留水 p H6、0 (5)肉汁・ゼラチン培養 生育は認められない。
1.0%食塩
0.2%チオグリコール酸ナトリウム 0.1%蒸留水 p H6、0 (5)肉汁・ゼラチン培養 生育は認められない。
肉汁・ゼラチン培地の組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩
0.2%ゼラチン 15 %チオグ
リコール酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (6)リドマスミルク培養 ガス発生を伴い、固く凝固し、酸の生成により赤変する
。
1.0%食塩
0.2%ゼラチン 15 %チオグ
リコール酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (6)リドマスミルク培養 ガス発生を伴い、固く凝固し、酸の生成により赤変する
。
C0生理的性質
(1)生育の温度範囲
40〜63℃で生育する。30℃では生育認められず、
60℃付近で良好。
60℃付近で良好。
(2)生育のPH範囲
pH5〜7゜5.6付近が良好。
(3)酸素に対する態度
偏性嫌気性
(4)〇−Fテスト(Hugh Laj、fson変法
)空気雰囲気中では生育みられず陰性。流動パラフィン
重層による嫌気性条件下では菌が生育し、酸を生成して
培養液が黄色となる。
)空気雰囲気中では生育みられず陰性。流動パラフィン
重層による嫌気性条件下では菌が生育し、酸を生成して
培養液が黄色となる。
培地組成
ペプトン 0.2%グルコース
1.0%食塩
0.5%に2HPO40,03% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%ブロムクレゾー
ルパープル 0.002%寒天
0.3%蒸留水 p H6、0 (5)硝酸塩の還元 陰性。
1.0%食塩
0.5%に2HPO40,03% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%ブロムクレゾー
ルパープル 0.002%寒天
0.3%蒸留水 p H6、0 (5)硝酸塩の還元 陰性。
(6)VPテスト
陰性。
(7)MRテスト
陽性、赤変化する。
(8)インドール生成
ペプトン水に生育しないため測定できない。
(9)硫化水素の生成
陰性(Kligrerの培地使用において)。
(10)殿粉の加水分解
陽性。可溶性殿粉だけでなく、馬鈴薯殿粉なと粒状殿粉
も分解する。
も分解する。
(11)クエン酸の利用
陰性(Simn+ons培地使用において)。
(12)アンモニウム塩の利用
ペプトン水に生育しないため測定できない。
(13)色素の菌体外生成
陰性。
(14)ウレアーゼ
陰性。
(15)オキシダーゼ活性
陰性。
(16)カタラーゼ活性
陰性。
(17)糖の資化性
糖の資化性及びダラーム管を用いたガス発生有無のme
結果を下表に示す。
結果を下表に示す。
第 1 表
(I8)無機塩培地への生育
生育認められず。
(19)有機酸の生成
各種培地から生成する有機酸組成を第2表に示す。
第 2 表
供試液体培地の組成
炭素源 1.0%ペプトン
1.0%食塩
0.2%チオグリコール酸ナトリウム 0.1 蒸留水 pH6,4 これらの結果よりホルトマン(Holdeman )の
嫌気性細菌分類マニュアルに基づき、クロスツリジウム
属に属する細菌と同定した。
1.0%食塩
0.2%チオグリコール酸ナトリウム 0.1 蒸留水 pH6,4 これらの結果よりホルトマン(Holdeman )の
嫌気性細菌分類マニュアルに基づき、クロスツリジウム
属に属する細菌と同定した。
尚、α−アミラーゼ活性の測定方法は次のように行った
。
。
ブルーバリュー法(Blue value法)(日本化
学会編:実験化学講座24巻、生物化学■、p279、
丸善書店、1969)による糊精化力を測定した。本法
は、殿粉の分子が加水分解されるのに伴い、殿粉−より
素複合体(complex) に基づく青色の発色量
が、分子量の低下に比例して減少する原理を応用したも
のである。まず、2 mg/m Qの殿粉溶液2mA及
び0.1M<えん酸緩衝液(pH4,0) 1mΩを試
験管に取り、60℃水浴中で5分間振盪した。次いで、
粗酸素液として培養炉液1mρを加え、30分間反応さ
せた。反応後、反応液0.4mQを採取し、直ちに0.
5M酢酸溶液2 m Qと混合して酵素反応を停止させ
た。次のその1mflを10m(lの1 /300ON
よう素溶液中に加え、680nmでの吸光度を分光光度
計を用いて測定した。
学会編:実験化学講座24巻、生物化学■、p279、
丸善書店、1969)による糊精化力を測定した。本法
は、殿粉の分子が加水分解されるのに伴い、殿粉−より
素複合体(complex) に基づく青色の発色量
が、分子量の低下に比例して減少する原理を応用したも
のである。まず、2 mg/m Qの殿粉溶液2mA及
び0.1M<えん酸緩衝液(pH4,0) 1mΩを試
験管に取り、60℃水浴中で5分間振盪した。次いで、
粗酸素液として培養炉液1mρを加え、30分間反応さ
せた。反応後、反応液0.4mQを採取し、直ちに0.
5M酢酸溶液2 m Qと混合して酵素反応を停止させ
た。次のその1mflを10m(lの1 /300ON
よう素溶液中に加え、680nmでの吸光度を分光光度
計を用いて測定した。
一方、酵素液を加えた直後の反応液(以下01反応液と
略称する)を採取して同様に発色させ、吸光度を測定し
た。なお、殿粉としては重合度約2000のアミロース
を用いた。
略称する)を採取して同様に発色させ、吸光度を測定し
た。なお、殿粉としては重合度約2000のアミロース
を用いた。
α−アミラーゼ活性は次式により算出した。
α−アミラーゼ活性(単位)=
Ot反応液の吸光度
〔発明の実施例〕
以下、本発明の実施例を示し、詳しく説明する。
実施例1
酵素エキス0.5%、ポリペプトン0.5%、リン酸第
1カリウム0.7%、リン酸第2ナトリウム0.2%、
硫酸マグネシウム・7水和塩o、oot%、チオグリコ
ール酸ナトリウム0.1%、炭素源としてマルトース2
%、及び水道水を含む液体培地(p H6,0) 2.
7 kgを、内容積5Qの培養槽に入れ、120℃で1
0分殺菌した。これに、同上培地にて嫌気的に培養した
クロスツリジウム属細菌の菌体懸濁液0.3 kgを添
加した。次いで、ガス出口に水封トラップを付し、培養
槽内気相部をアルゴンで十分置換後、嫌気条件下で培養
した。培養液のPHは6.0に自動調整し、温度も60
℃に自動調整した。培養中、一定時間毎に槽内の培養液
の一部を採取し、3500 p p mで遠心分離し、
0.2μmのフィルタで濾過して除菌したのち、液中の
α−アミラーゼ活性を測定した。その結果、第1図中の
曲線1で示すように、培養開始後16時間で最大61単
位/ m Qのα−アミラーゼを産生じた。
1カリウム0.7%、リン酸第2ナトリウム0.2%、
硫酸マグネシウム・7水和塩o、oot%、チオグリコ
ール酸ナトリウム0.1%、炭素源としてマルトース2
%、及び水道水を含む液体培地(p H6,0) 2.
7 kgを、内容積5Qの培養槽に入れ、120℃で1
0分殺菌した。これに、同上培地にて嫌気的に培養した
クロスツリジウム属細菌の菌体懸濁液0.3 kgを添
加した。次いで、ガス出口に水封トラップを付し、培養
槽内気相部をアルゴンで十分置換後、嫌気条件下で培養
した。培養液のPHは6.0に自動調整し、温度も60
℃に自動調整した。培養中、一定時間毎に槽内の培養液
の一部を採取し、3500 p p mで遠心分離し、
0.2μmのフィルタで濾過して除菌したのち、液中の
α−アミラーゼ活性を測定した。その結果、第1図中の
曲線1で示すように、培養開始後16時間で最大61単
位/ m Qのα−アミラーゼを産生じた。
比較例1
実施例1において、炭素源として馬鈴薯殿粉2%を用い
、実施例1と同じ要領で培養試験を実施した。α−アミ
ラーゼの産生量を測定した結果、曲線2に示すように、
培養開始後44時間後に28単位/ m Qであった。
、実施例1と同じ要領で培養試験を実施した。α−アミ
ラーゼの産生量を測定した結果、曲線2に示すように、
培養開始後44時間後に28単位/ m Qであった。
比較例2
実施例1において、炭素源として可溶性殿粉2%を用い
、実施例1と同じ要領で培養試験を実施した。α−アミ
ラーゼの産生量を測定した結果、曲線3に示すように培
養開始後40時間で30単位/mQであった。
、実施例1と同じ要領で培養試験を実施した。α−アミ
ラーゼの産生量を測定した結果、曲線3に示すように培
養開始後40時間で30単位/mQであった。
比較例3
実施例1において、炭素源としてデキストリン2%を用
い、実施例1の要領で培養試験を実施した。α−アミラ
ーゼの産生量を測定したところ、曲線4に示すように、
培養開始38時間で30単位/ m Qであった。
い、実施例1の要領で培養試験を実施した。α−アミラ
ーゼの産生量を測定したところ、曲線4に示すように、
培養開始38時間で30単位/ m Qであった。
比較例4
実施例1において、炭素源としてグルコースを用い、実
施例1の要領で培養試験を実施した。α−アミラーゼの
産生量を測定した結果、曲線5に示すように、培養開始
60時間後に6単位/ m Qであった。
施例1の要領で培養試験を実施した。α−アミラーゼの
産生量を測定した結果、曲線5に示すように、培養開始
60時間後に6単位/ m Qであった。
比較例5
実施例1において、炭素源としてイソマルトースを用い
、実施例1の要領で培養試験を実施した。
、実施例1の要領で培養試験を実施した。
α−アミラーゼ産生量を測定した結果、曲線6に示すよ
うに、培養開始60時間後に15単位/mQであった。
うに、培養開始60時間後に15単位/mQであった。
実施例1と比較例1〜5を比較することにより、マルト
ースを基質として用いることにより、短時間の培養で高
濃度のα−アミラーゼを生産せしめ得ることが解る。
ースを基質として用いることにより、短時間の培養で高
濃度のα−アミラーゼを生産せしめ得ることが解る。
実施例2
実施例1において、炭素源として、殿粉1.5%及びマ
ルトース0.5%を加えて培養試験を実施した。α−ア
ミラーゼ産生量は、第2図の曲線11に示すように培養
開始46時間後に52単位/mDまで達した。
ルトース0.5%を加えて培養試験を実施した。α−ア
ミラーゼ産生量は、第2図の曲線11に示すように培養
開始46時間後に52単位/mDまで達した。
実施例3
実施例1において、炭素源として、可溶性殿粉1.5%
及びマルトース0.5%を加えて培養試験を実施した、
α−アミラーゼ産生量は曲線12に示すように、培養開
始45時間後に56単位/ m Qまで達した。
及びマルトース0.5%を加えて培養試験を実施した、
α−アミラーゼ産生量は曲線12に示すように、培養開
始45時間後に56単位/ m Qまで達した。
実施例4
実施例]において、炭素源としてデキストリン1.5%
及びマルトース0.5%を加えて培養試験を実施した。
及びマルトース0.5%を加えて培養試験を実施した。
α−アミラーゼ産生量は曲線13に示すように、培養開
始41時間後に58単位/ m Qまで達した。
始41時間後に58単位/ m Qまで達した。
実施例2と比較例2とを比較し、実施例3と比較例3と
を比較し、実施例4と比較例4とを比較すると、マルト
ースを単独で炭素源として用いる場合のみならず、馬鈴
薯殿粉、可溶性殿粉、デキストリンのそれぞれと混合し
て用いることにより、これらそれぞれを単独で用いた場
合に比べ、α−アミラーゼ産生量が増加することがわか
る。
を比較し、実施例4と比較例4とを比較すると、マルト
ースを単独で炭素源として用いる場合のみならず、馬鈴
薯殿粉、可溶性殿粉、デキストリンのそれぞれと混合し
て用いることにより、これらそれぞれを単独で用いた場
合に比べ、α−アミラーゼ産生量が増加することがわか
る。
実施例5
馬鈴薯殿粉2%、ポリペプトン0.5%、酵母エキス0
.5%、リン酸第1カリウム0.7%、リン酸第2ナト
リウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物0.00
1%、チオグリコール酸ナトリウム0.1%及び水道水
を含む液体培地(p H6,0) 2.7 kgに90
℃、5分間の熱処理を施したのち、60℃まで冷却した
。次いで、これにβ−アミラーゼ1000単位を加え、
60℃wpH6,0で1時間反応させた。1時間後、反
応液中には0.54%のマルトースが含まれていた。次
いで、これを内容積5Qの培養槽に入れ、120℃で1
0分間、高圧蒸気殺菌を行った。以下、実施例1と同じ
要領により培養試験を行ったところ、培養開始後38時
間で56単位/mQのα−アミラーゼを産生じた。
.5%、リン酸第1カリウム0.7%、リン酸第2ナト
リウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物0.00
1%、チオグリコール酸ナトリウム0.1%及び水道水
を含む液体培地(p H6,0) 2.7 kgに90
℃、5分間の熱処理を施したのち、60℃まで冷却した
。次いで、これにβ−アミラーゼ1000単位を加え、
60℃wpH6,0で1時間反応させた。1時間後、反
応液中には0.54%のマルトースが含まれていた。次
いで、これを内容積5Qの培養槽に入れ、120℃で1
0分間、高圧蒸気殺菌を行った。以下、実施例1と同じ
要領により培養試験を行ったところ、培養開始後38時
間で56単位/mQのα−アミラーゼを産生じた。
培養終了後、4℃まで冷却したのち、7000rpmの
遠心分離により菌体を除去した。次いで、ポアサイズ0
.45μmのフィルタで培養液の清澄化を行い、培養済
液2.8 kgを得た。次に、4℃に冷却下、とうもろ
こし殿粉150gを添加し、10分間攪拌下で接触させ
たのち、遠心が過を行い、とうもろこし殿粉を回収した
。回収した殿粉に4℃に冷却した純水IQを加え、殿粉
の洗浄を行った。次いで、65℃に加熱した純水0.8
Qに上記のどうもろこし殿粉を入れてα−アミラーゼの
脱着を行った。ついで直ちに遠心濾過器を用いて、殿粉
粒子を除去し、α−アミラーゼ液0.75 Qを得た。
遠心分離により菌体を除去した。次いで、ポアサイズ0
.45μmのフィルタで培養液の清澄化を行い、培養済
液2.8 kgを得た。次に、4℃に冷却下、とうもろ
こし殿粉150gを添加し、10分間攪拌下で接触させ
たのち、遠心が過を行い、とうもろこし殿粉を回収した
。回収した殿粉に4℃に冷却した純水IQを加え、殿粉
の洗浄を行った。次いで、65℃に加熱した純水0.8
Qに上記のどうもろこし殿粉を入れてα−アミラーゼの
脱着を行った。ついで直ちに遠心濾過器を用いて、殿粉
粒子を除去し、α−アミラーゼ液0.75 Qを得た。
α−アミラーゼ液は分子ふるい膜(分画分子量2万)を
用いて濃縮したのち凍結乾燥し、α−アミラーゼ標品1
5 m gを得た。
用いて濃縮したのち凍結乾燥し、α−アミラーゼ標品1
5 m gを得た。
以上詳述したように、クロスッリジウム属の好熱性嫌気
性細菌を用いて耐熱性α−アミラーゼを生産する場合、
本発明を適用して、培養基中に、炭素源としてグルコー
ス残基が2個以上のグルコース多量体を混合して用いる
ことにより、耐熱性に優れ、かつカルシウム要求量の低
いα−アミラーゼを培養液中に多量に分泌せしめること
ができるという優れた実用的効果を奏する。
性細菌を用いて耐熱性α−アミラーゼを生産する場合、
本発明を適用して、培養基中に、炭素源としてグルコー
ス残基が2個以上のグルコース多量体を混合して用いる
ことにより、耐熱性に優れ、かつカルシウム要求量の低
いα−アミラーゼを培養液中に多量に分泌せしめること
ができるという優れた実用的効果を奏する。
第1図及び第2図は、それぞれ、本発明方法の実施例に
おける効果を説明するための図表である。 1.11,12,13・・・本発明の実施例におけるα
−アミラーゼ活性の時間に伴う変化を示すカーブ、2,
3,4.5.6・・・比較例1コむけろα−アミラーゼ
活性の時間に伴う変化を示すカーブ。 代理人 弁理I: 秋本1[:実 来1図 1さi!u〒間(h)
おける効果を説明するための図表である。 1.11,12,13・・・本発明の実施例におけるα
−アミラーゼ活性の時間に伴う変化を示すカーブ、2,
3,4.5.6・・・比較例1コむけろα−アミラーゼ
活性の時間に伴う変化を示すカーブ。 代理人 弁理I: 秋本1[:実 来1図 1さi!u〒間(h)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、クロスツリジウム属に属する好熱性嫌気性細菌を用
いて耐熱性α−アミラーゼを生産する場合、前記の好熱
嫌気性細菌を培養する培養基質中に、炭素源としてグル
コース残基が2個以上のグルコース多量体を混合して用
いることを特徴とする耐熱性α−アミラーゼの製造方法
。 2、前記のグルコース多量体は、2種以上のグルコース
多量体を混合して用いるものであることを特徴とする特
許請求の範囲第1項に記載の耐熱性α−アミラーゼの製
造方法。 3、前記のグルコース多量体はグルコース2量体のマル
トースであることを特徴とする特許請求の範囲第1項に
記載の耐熱性α−アミラーゼの製造方法。 4、前記のグルコース多量体はマルトースであり、かつ
、これを殿粉と混合して用いるものであることを特徴と
する特許請求の範囲第1項に記載の耐熱性α−アミラー
ゼの製造方法。 5、前記の炭素源は、殿粉を主たる炭素源とするととも
に、従たる炭素源としてマルトースを混合したものであ
ることを特徴とする特許請求の範囲第4項に記載の耐熱
性α−アミラーゼの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60155135A JPH0683668B2 (ja) | 1985-07-16 | 1985-07-16 | 耐熱性α−アミラ−ゼの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60155135A JPH0683668B2 (ja) | 1985-07-16 | 1985-07-16 | 耐熱性α−アミラ−ゼの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6219081A true JPS6219081A (ja) | 1987-01-27 |
| JPH0683668B2 JPH0683668B2 (ja) | 1994-10-26 |
Family
ID=15599316
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60155135A Expired - Lifetime JPH0683668B2 (ja) | 1985-07-16 | 1985-07-16 | 耐熱性α−アミラ−ゼの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0683668B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6165770A (en) * | 1996-09-26 | 2000-12-26 | Novo Nordisk A/S | Alkaline stable amylase from Thermoalcalibacter |
| US6489865B1 (en) | 1999-11-12 | 2002-12-03 | Murata Manufacturing Co., Ltd. | Strip-line filter, duplexer, filter device, communication device, and method of adjusting characteristic of strip-line filter |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6041482A (ja) * | 1983-07-13 | 1985-03-05 | シ−・ピ−・シ−・インタ−ナシヨナル・インコ−ポレイテツド | 新規な熱安定性の耐酸性α−アミラーゼおよびその製造法 |
| JPS61115484A (ja) * | 1984-11-09 | 1986-06-03 | Hitachi Ltd | 耐熱性α−アミラ−ゼを産生する好熱性嫌気性細菌 |
-
1985
- 1985-07-16 JP JP60155135A patent/JPH0683668B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6041482A (ja) * | 1983-07-13 | 1985-03-05 | シ−・ピ−・シ−・インタ−ナシヨナル・インコ−ポレイテツド | 新規な熱安定性の耐酸性α−アミラーゼおよびその製造法 |
| JPS61115484A (ja) * | 1984-11-09 | 1986-06-03 | Hitachi Ltd | 耐熱性α−アミラ−ゼを産生する好熱性嫌気性細菌 |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6165770A (en) * | 1996-09-26 | 2000-12-26 | Novo Nordisk A/S | Alkaline stable amylase from Thermoalcalibacter |
| US6489865B1 (en) | 1999-11-12 | 2002-12-03 | Murata Manufacturing Co., Ltd. | Strip-line filter, duplexer, filter device, communication device, and method of adjusting characteristic of strip-line filter |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0683668B2 (ja) | 1994-10-26 |
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