PL186381B1 - Wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka, wektor oraz sposób otrzymywania transgenicznych ziemniaków - Google Patents

Wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka, wektor oraz sposób otrzymywania transgenicznych ziemniaków

Info

Publication number
PL186381B1
PL186381B1 PL96326975A PL32697596A PL186381B1 PL 186381 B1 PL186381 B1 PL 186381B1 PL 96326975 A PL96326975 A PL 96326975A PL 32697596 A PL32697596 A PL 32697596A PL 186381 B1 PL186381 B1 PL 186381B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
starch
enzyme
potato
vector
cross
Prior art date
Application number
PL96326975A
Other languages
English (en)
Other versions
PL326975A1 (en
Inventor
Bo Ek
Jamshid Khosnoodi
Clas-Tomas Larsson
Hakan Larsson
Lars Rask
Original Assignee
Amylogene Hb
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from SE9504272A external-priority patent/SE513208C2/sv
Application filed by Amylogene Hb filed Critical Amylogene Hb
Publication of PL326975A1 publication Critical patent/PL326975A1/xx
Publication of PL186381B1 publication Critical patent/PL186381B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1048Glycosyltransferases (2.4)
    • C12N9/1051Hexosyltransferases (2.4.1)
    • C12N9/1071,4-Alpha-glucan branching enzyme (2.4.1.18)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8242Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with non-agronomic quality (output) traits, e.g. for industrial processing; Value added, non-agronomic traits
    • C12N15/8243Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with non-agronomic quality (output) traits, e.g. for industrial processing; Value added, non-agronomic traits involving biosynthetic or metabolic pathways, i.e. metabolic engineering, e.g. nicotine, caffeine
    • C12N15/8245Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with non-agronomic quality (output) traits, e.g. for industrial processing; Value added, non-agronomic traits involving biosynthetic or metabolic pathways, i.e. metabolic engineering, e.g. nicotine, caffeine involving modified carbohydrate or sugar alcohol metabolism, e.g. starch biosynthesis

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Abstract

1. Wyizolowana sekwencja DNA kodujaca sieciujacy skrobie enzym II (SBE II) ziemniaka, zawierajaca sekwencje nukleotydowa przedstawiona na sekwencji SEQ ID Nr 1 i warianty tej sekwencji powstale w wyniku degeneracji kodu genetycznego. PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, zawierająca sekwencję nukleotydową przedstawioną na sekwencji SEQ ID Nr 1 i warianty tej sekwencji powstałe w wyniku degeneracji kodu genetycznego.
Korzystnie przedmiot wynalazku stanowi fragment tej sekwencji o wielkości od 50 do 3074 par zasad, posiadający sekwencję' nukleotydową przedstawioną na sekwencji SEQ ID Nr 1, oraz jego warianty powstałe w wyniku degeneracji kodu genetycznego, zdolny do powodowania zmian w proporcji amyloza/amylopektyna w skrobi ziemniaczanej, jak również do zmniejszania lub zmiany wzorów usieciowania amyk>pentyny.
Przedmiotem wynalazku jest również sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemmaka posiadająca sekwencję aminokwasów pszedstawioną. ka sekwencji SEQ IDNr 1.
Preedmiot wynalazku stanowi także wektor zawierający całą lub aktywną funkcjonalnie część wyizolow^ej s^eikwencji DNA. prze dstawionej na SEQ ID Nr 1 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemnienu.
Korzystnie zawarta w wektorze sekwencja DNA usytuowana jest w orientacji antysensywnej (odwróconej) względem promotora znajdującego się bezpośrednio w górę od tej sekwencj i DNA.
Krn^stnio ^^Ι^ο' dotyczy wektora, który zawiera całą lub aktywną funkcjonalnie część sekwencji DNA przedstawionej na sekwencji SEw RO Nr 2 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemniaku.
Przedmiotem wynalazku jest również sposób otrzymywania lrαnsgenicznych ziemniaków o podwyższonym lub obniżonym stopniu usieciowania amylopektyny skrobiowej, polegający na tym, żo do genomu komórki ziemniaka przenosi się i wprowadza wektor zawierający całą lub aktywną malmie część ąyeizolpsnanej sekwencji DNA pyzedrrawiynej na
SEQ ID Nr 1 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemniaku, a następnie regeneruje się z tych transformowanych komórek nienaruszone, całe rośliny.
Korzystnie przedmiot wynalazku stanowi sposób, w którym stosuje się ^ktrn zawierający całą Mb αpryWną frmkcjonalnie część sekwencji DNA przed^wionej na sekwencji. SEQ ID Ną 2 oraz elementy jegulacyjne ektyą^ie w nierąniaku.
Korzystnie stosuje się wektor z zawartą w nim sekwencją DNA usytuowaną w orientacji antysensownej (odytróco net) względem promotora z^jd^ąc ego się bezpośsednyo w górę od ten sekwencji DNA.
Korzystniej stosuje się wektor zawierający również konstrukcję entysensowną dla sieciującego skrobię enzymu I (SBE I).
186 381
Korzystnie stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla związanej z ziarenkami skrobi syntazy skrobiowej II ziemniaka.
Korzystnie stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla rozpuszczalnych syntaz skrobiowych II i III ziemniaka.
Korzystnie stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla enzymu dysproporcjonującego skrobię (enzymu D) ziemniaka.
Korzystnie stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla enzymu de-sieciującego skrobię ziemniaka.
Nowa sekwencja DNA kodująca SBE II, zawierająca 3074 nukleotydów oraz odpowiadająca jej sekwencja aminokwasowa zawierająca 878 aminokwasów, są przedstawione na sekwencji SEQ ID Nr 1. Jeden fragment o długości 1393 nukleotydów z powyższej sekwencji DNA, odpowiadający nukleotydom 1007 do 2399 z sekwencji DNA podanej na SEQ ID Nr 1, jak również odpowiadająca mu sekwencja aminokwasowa zawierająca 464 aminokwasów są przedstawione na sekwencji SEQ ID Nr 2.
Wynalazek jest opisany bardziej szczegółowo w części eksperymentalnej i zilustrowany załączonymi rysunkami, na których:
Figura 1 przedstawia elektroforezę w żelu poliakryloamidowym SDS białek wyekstrahowanych ze skrobi pochodzącej z normalnych ziemniaków (pasmo A) i z ziemniaków transgenicznych (pasmo B). Wycięte pasma białka są oznaczone strzałkami. Pasmo M zawiera białka - markery mas cząsteczkowych (podanych w kDa).
Figura 2 przedstawia cztery sekwencje peptydowe pochodzące z trawionych białek ze skrobi otrzymanej z bulw ziemniaczanych.
Przykłady wykonania
Izolowanie skrobi z bulw ziemniaczanych
Rośliny ziemniaka (Solanum tuberosum) hodowano na polu. Obrane ze skórki ziemniaki, zarówno z odmiany Early Puritan jak i z linii roślin transgenicznych, w zasadzie nie zawierających związanej z ziarnami syntazy skrobi I (Svalóf Weibull AB, publikacja zgłoszenia patentowego międzynarodowego, PCT/SE91/00892) homogenizowano w temperaturze 4°C w sokowirówce. Do „frakcji soku” zawierającej duże ilości skrobi, natychmiast dodano Tris HCl (pH = 7,5) do stężenia 50 mM, dwutionin sodu do stężenia 30 mM i kwas etylenodwuaminoczterooctowy (EDTA) do stężenia 10 mM. Zawiesinę pozostawiono na 30 minut w celu sedymentacji granulek skrobi, następnie przemyto 4 razy buforem do przemywania o składzie: 50 mM Tris HCl (pH = 7,5), 10 mM EDTA, użytym w ilościach odpowiadających 10 objętościom złoża. Skrobię, którą pozostawiano na półce w temperaturze 4°C na 30 minut do sedymentacji pomiędzy każdym przemywaniem ostatecznie przemyto 3 razy ilościami acetonu odpowiadającymi 3 objętościom złoża, wysuszono na powietrzu przez dobę i przechowywano w temperaturze -20°C.
Ekstrakcja białek ze skrobi pochodzącej z bulw
Przechowaną skrobię (20 g) ciągle mieszano z 200 ml buforu do ekstrakcji [2% wagowo-objętościowych 50 mM Tris HCl o pH 7,5, dodecylosiarczan sodowy (SDS), 5 mM EDTA] przez zasysanie pipetą w temperaturze 85°C do czasu żelatynizacji skrobi. Następnie próbki utrzymywano w temperaturze -70°C przez godzinę. Po rozmrożeniu w temperaturze 50°C, próbki wirowano przez 20 minut z prędkością 12000 g w temperaturze 10°C. Supematanty zebrano i powtórnie wirowano z prędkością 3000 g przez 15 minut. Końcowe supematanty przefiltrowano przez filtry o średnicy porów 0,45 μ i dodano 2,25 objętości oziębionego lodem acetonu. Po 30 minutach inkubacji w temperaturze 4°C zebrano osady białka przez wirowanie z prędkością 3000 g w czasie 30 minut w temperaturze 4°C i rozpuszczono w 50 mM Tris HCl (pH = 7,5). Próbki każdego preparatu analizowano metodą elektroforezy w żelu poliakryloamidowym SDS, postępując w sposób opisany przez Laemmli'ego (1970) (fig. 1). Białka znajdujące się w pozostałych porcjach preparatów zatężono przez strącenie 10 procentowym kwasem trójchlorooctowym i rozdzielono je w 8% żelu poliakryloamidowym SDS, w sposób opisany przez Laemmli'ego (1970). Białka w żelu barwiono jaskrawym błękitem kwasowym R-250 (0,2% w roztworze zawierającym 20% metanolu. 0,5°/o kwasu octowego i 79,5% wody)
Trawienie w żelu i sekwencjonowanie peptydów
186 381
Barwione pasma (na fig. 1 oznaczone strzałkami) odpowiadające pozornej masie cząsteczkowej około 100 kDa, wycięto i przemyto dwukrotnie 0,2 M roztworem NH4HCO3 w 50% acetonitrylu w warunkach ciągłego mieszania, w temperaturze 35°C w czasie 20 minut. Po każdym przemyciu usuwano ciecz a kawałki żelu suszono przez odparowanie pod wyciągiem. Całkowicie wysuszone kawałki żelu umieszczano oddzielnie na parafilmie i dodawano po 2 pl roztworu zawierającego 0,2 M NH4HCO3 i 0,02% Tween'u-20. Do kawałków żelu wprowadzano przez zasysanie po 0,25 pg modyfikowanej trypsyny (w 2 pl roztworu) dostarczonej przez firmę Promega, Madison WI (USA) i następnie dodawano 0,2 M roztwór NH4HCO3 w porcjach po 5 pl aż do osiągnięcia pierwotnych rozmiarów. Każdy kawałek żelu dzielono następnie na trzy części i przenoszono do probówek Eppendorfa. Dodano po 200 pl 0,2 M roztworu NH4HCO3 i trawiono białka zawarte w kawałkach żelu w temperaturze 37°C przez dobę (Rosenfeld i wsp. 1992). Po zakończeniu trawienia dodano kwas trójfluorooctowy do stężenia 1%. supernatanty usunięto i zachowano. Kawałki żelu dalej ekstrahowano dwa razy roztworem zawierającym 60% acetonitrylu i 0,1% kwasu trójfluorooctowego (po 200 pl) w warunkach ciągłego wstrząsania, w temperaturze 37°C przez 20 minut. Dwa supernatanty pochodzące z tych ekstrakcji połączono z pierwszym supernatantem. Kawałki żelu ostatecznie przemyto roztworem zawierającym 60% acetonitrylu, 0,1% kwasu trójfluorooctowego
0,02% Tween'u-20 (po 200 pl). Te supernatanty również połączono z poprzednimi i zmniejszono ich objętość do 50 pl przez odparowanie. Ekstrahowane peptydy rozdzielono w zestawie chromatograficznym SMART® (firmy Pharmacia, Upsala, Szwecja) wyposażonym w kolumnę pRPC C2/C18 SC2.1/10. Peptydy eluowano w gradiencie 0 do 60% acetonitrylu w wodnym 0,1% roztworze 0,1% kwasu tróffluorocotowego, w czasie 60 minut, z szybkością przepływu 100 pl/min. Peptydy sekwencjonowano albo w aparacie do sekwencjonowania firmy Applied Biosystems, model 470A, w fazie gazowej, wyposażonym w analizator aminokwasów on-line PTH (120A) albo w modelu 47 6A tej samej firmy, postępując według instrukcji producenta (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA).
Cztery spośród sekwencjonowanych peptydów miały sekwencje łatwe do interpretacji (fig. 2). Poszukiwania w bazie danych ujawniły, że te cztery peptydy wykazują podobieństwo do enzymów sieciujących skrobię i co ciekawe, peptydy te wykazują większe pokrewieństwo z sieciującym skrobię enzymem II z innych gatunków roślin niż z sieciującym skrobię enzymem I z ziemniaka.
Konstruowanie oligonukleotydów kodujących peptyd 1 i peptyd 2.
Syntetyzowano następujące degenerowane oligonukleotydy kodujące peptyd 1 i peptyd oraz odwrócone primery:
Oligonukleotyd 1: 5'-gtaaaacgacggccagt-TTYGGNGTNTGGGARATHTT-3' (reszty 2 do 8 z peptydu 1)
Oligonukleotyd 2: 5'-aattaaccctcactaaaggg-CKRTCRAAYTCYTGIARNCC-3' (reszty 2 do 8 z peptydu 2, nić odwrócona), gdzie H oznacza A, C albo T; I oznacza inozynę; K oznacza G albo T; N oznacza A, C, G albo T; R oznacza A albo G; Y oznacza C albo T; zasady w niższej sekwencji dodano jako sekwencje tag.
Oczyszczanie mRNA z bulw ziemniaczanych, synteza cDNA i amplifikacja w reakcji z udziałem polimerazy (PCR) fragmentu cDNA odpowiadającego sieciującemu skrobię enzymowi II ziemniaka.
Całkowity RNA izolowano z dojrzałych bulw ziemniaczanych (S. tuberosum, odmiana Amanda) w sposób opisany przez Logemann'a i wsp. (1987). Pierwszą nić cDNA syntetyzowano stosując 2 pg całkowitego RNA i 60 pmoli oligo-dT3o jako primer kierunku w dół. Primer ten łączono na gorąco (w temperaturze 60°C) z poli A mRNA w czasie 5 minut. Wydłużanie cDNA prowadzono w zestawie do syntezy cDNA „Riboclone® cDNA Synthesis System M-MLY (H-)” firmy Promega, postępując zgodnie z przepisem podanym w instrukcji producenta.
Amplifikację cDNA kodującego nowy, sieciujący skrobię enzym II według wynalazku, prowadzono w aparacie „GeneAmp® 9600 PGR thermocycler” do amplifikacji w reakcji PCR dostarczonym przez firmę Perkin-Elmer Cetus Instruments (CT, Stany Zjednoczone), stosując te dwa degenerowane primery skonstruowane na podstawie z peptydów 1 i 2 (jak
186 381 wyżej) stosując następujące warunki: 1 mM dNTP, po 1 μΜ każdego primera i ilość cDNA podana powyżej w całkowitej objętości mieszaniny reakcyjnej 20 μΐ. Mieszanina zawierała ponadto bufor 1 x AmpliTaą® i 0,8 jednostki AmpliTaą® (Perkin-Elmer Cetus). Warunki przebiegu poszczególnych cykli były następujące: temperatura 96°C przez minutę, temperatura 80°C w czasie dodawania enzymu inicjującego reakcję (około 15 minut), mimowolny spadek temperatury do 25°C, pięć cykli utrzymywania w temperaturze 94°Ć przez 20 sekund, w temperaturze 45°C przez minutę z następnym wzrostem temperatury do 72°C w ciągu minuty i utrzymywaniem w 72°C przez 2 minuty, następnie 30 cykli w temperaturze 94°C przez 5 sekund, w temperaturze 45°C przez 30 sekund i 72°C przez (2 minuty + 2 sekundy na cykl) i zakończenie reakcji w temperaturze 72°C w czasie 10 minut, po czym schłodzenie do temperatury 4°C.
Próbkę tej mieszaniny reakcyjnej (0,1 μΐ) reamplifikowano stosując następujące warunki w poszczególnych cyklach: temperatura 96°C przez minutę, 80°C w czasie dodawania enzymu (około 5 minut), 5 cykli w temperaturze 94°C przez 20 sekund, 45°C przez minutę i 72°C przez 2 minuty, 25 cykli w temperaturze 94°C przez 5 sekund, 45°C przez 30 sekund i 72°C przez (2 minuty + 2 sekundy na cykl) i zakończenie reakcji w temperaturze 72°C w czasie 10 minut, po czym schłodzenie do temperatury 4°C. Po zakończeniu amplifikacji PCR, mieszaninę reakcyjną naniesiono na 1,5% zel agarozowy Seakem® (FMC Bioproducts, Rockland, ME, Stany Zjednoczone). Po wykonaniu elektroforezy i barwienia bromkiem etidium, wycięto większe pasmo o względnej długości 1500 par zasad i eluowano ten fragment przez wytrząsanie z wodą (200 μΐ) przez godzinę. Ten fragment użyto jako matrycę w reakcjach sekwencjonowania po reamplifikacji, stosując primery odpowiadające sekwencjom taq (w oligonukleotydach 1 i 2), po czym prowadzono oczyszczanie metodą elektroforezy w żelu agarozowym w sposób opisany powyżej i ekstrakcję z żelu w zestawie do ekstrakcji Qiaex®, postępując według instrukcji producenta tego zestawu (DIAGEN GmbH, Hilden, Niemcy). Reakcje sekwencj ono wania prowadzono w zestawach do końcowego cyklicznego sekwencjonowania, „DyeDeoxy® Terminator Cycle Sequencing kits” dostarczanych przez firmę Perkin-Elmer Cetus Instruments), stosując sekwencje taq i primery wewnętrzne. Produkty reakcji sekwencj ono wania analizowano w aparacie do sekwencj ono wania DNA, typ 3 73 A firmy Applied Biosystems, postępując zgodnie z instrukcjami producenta. Edytowana sekwencja zawierała 1393 pary zasad.
W celu uzupełnienia oznaczenia sekwencji dla sieciującego skrobię enzymu II, amplifikowano końce 5' i 3' cDNA o pełnej długości, wychodząc z tego samego całkowitego RNA jak poprzednio, stosując metodologię RACE szybkiej amplifikacji końców cDNA z użyciem specyficznych primerów pochodzących z sekwencji o długości 1393 par zasad. W amplifikacji końca 3' użyto primer oligo-T29G wobec ogona poli A a amplifikację końca 5' prowadzono stosując zestaw 573' RACE dostarczany przez firmę Boehringer Mannheim (Numer katalogowy 1734792). Fragmenty uzyskane z tych amplifikacji sekwencj onowano w ten sam sposób jak poprzednio, stosując primery dla części wewnętrznej i końców. Sekwencje z tych dwóch końców nałożono na sekwencję o długości 1393 par zasad otrzymując złożoną sekwencję cDNA o pełnej długości. Z tej sekwencji wyznaczono primery do amplifikacji całego regionu kodującego w całości. Częściowe sekwencjonowanie amplifikowanej kodującej sekwencji cDNA potwierdziło obecność cDNA odpowiadającego tej złożonej sekwencji. Sekwencja cDNA o pełnej długości składa się z 3074 par zasad a sekwencja podlegająca translacji odpowiada 878 aminokwasom. Dojrzałe białko zawiera 830 aminokwasów.
Porównanie sekwencji consensus z bazami danych EMBL i GenBank wykazało 68 procentową identyczność z sieciującym skrobię enzymem I ziemniaka i około 80 procentową identyczność z sieciującym skrobię enzymem II z innych gatunków roślin. Twórcy niniejszego wynalazku nazwali więc enzym kodowany przez nową sekwencję dla enzymu sieciującego, sieciującym skrobię enzymem II ziemniaka.
Transformowanie roślin ziemniaka
Wyizolowany cDNA o pełnej długości dla sieciującego skrobię enzymu II ziemniaka i inne aktywne funkcyjnie fragmenty o wielkości od 50 do 3074 par zasad sklonowano w odwrotnej orientacji za promotorami aktywnymi w bulwach ziemniaczanych. Określenie „ak8
186 381 tywne funkcyjnie” oznacza fragmenty, które wpływają na proporcję amyloza/amylopektyna w skrobi ziemniaczanej. Sekwencja DNA i sekwencja aminokwasowa SBE II według wynalazku oraz jeden fragment tego DNA i odpowiadająca mu sekwencja aminokwasowa są przedstawione odpowiednio na sekwencjach SEQ ID Nr 1 i 2.
Promotory można wybrać spośród np. promotora patatyny, promotora genu dla związanej z ziarenkami skrobi syntazy skrobi I ziemniaka albo z promotorów wyizolowanych z genów dla sieciujących skrobię enzymów I i II ziemniaka.
Konstrukcje te klonuje się technikami znanymi, albo w binarnym wektorze plazmidowym Ti nadającym się do transformacji ziemniaka za pośrednictwem Agrobacterium tumefaciens albo w wektorze nadającym się do bezpośredniej transformacji techniką bombardowania bądź elektroporacji. Jest oczywiste, że zarówno konstrukcje sensowne (opisane poniżej) jak i antysensowne muszą zawierać wszystkie niezbędne elementy regulacyjne.
W transgenicznych roślinach ziemniaka zachodzi transkrypcja odwrotnej (inwersyjnej) konstrukcji kodującej sieciujący skrobię enzym II, zwłaszcza w bulwach, co prowadzi do antysensownego hamowania tego enzymu. W ten sposób, w skrobi wytwarzanej w bulwach następuje zmniejszenie sieciowania i zmiana wzorów sieciowania amylopektyny a także zmiana proporcji: amyloza/amylopektyna.
W celach uzyskania zmian w stopniu usieciowania amylopektyny i zmian w proporcji: amyloza/amylopektyna, tę antysensowną konstrukcję dla sieciującego skrobię enzymu II ziemniaka stosuje się również do transformowania roślin ziemniaka w kombinacji z antysensownymi konstrukcjami dla sieciującego skrobię enzymu I, dla związanej z ziarenkami skrobi syntazy skrobiowej II ziemniaka, dla rozpuszczalnych syntaz skrobiowych II i III ziemniaka, dla enzymu dysproporcjonującego skrobię (enzymu D) ziemniaka bądź dla enzymu desieciujacego skrobię ziemniaka. Uzyskuje się dzięki temu nowy, cenny surowiec dla przemysłu przetwarzającego skrobię.
Sekwencję cDNA o pełnej długości, kodującą ten enzym klonuje się w różnych konstrukcjach również w orientacji sensownej, za jednym lub większą ilością promotorów wymienionych powyżej i otrzymane konstrukcje przenosi się do odpowiednich wektorów transformujących w sposób opisany powyżej i stosuje się do transformowania roślin ziemniaka. Regenerowane, transformowane rośliny ziemniaka będą wytwarzały w bulwach nadmiar sieciującego skrobię enzymu II, prowadząc do zwiększenia stopnia usieciowania i zmian we wzorach usieciowania amylopektyny albo do hamowania transkrypcji endogennego sieciującego skrobię enzymu II w wyniku ko-supresji, dając w rezultacie obniżony stopień usieciowania amylopektyny.
Piśmiennictwo:
Muller-Rober B., KoBmann J.: Approaches to influence starch quantity and starch quality in transgenic plants (Badania nad wpływem na ilość i jakość skrobi w transgenicznych roślinach), Plant Cell Environm. 17, 601-613 (1994),
Martin C., Smith A. : Starch Biosynthesis (Biosynteza skrobi), Plant Cell, 7, 971-985 (1995),
Laemmli U. K. : Cleavage of structural proteins during assembly of the head of bacteriophage T4 (Rozszczepienie białek strukturalnych podczas instalowania główki bakteriofaga T4) Nature, 227, 680-685 (1979),
Logemann J., Schell J. i Willmitzer L.: Improved method for the isolation of RNA from plant tissues (Ulepszony sposób izolowania RNA z tkanek roślinnych), Anal. Biochem., 163, 16-20(1987),
Rosenfeld J., Capdeville J., Guillemot J. C., Ferrara P.: In-gel digestion of proteins for internal sequence analysis after one- or two-dimensional gel electrophoresis (Trawienie białek w żelu do analizy sekwencji wewnętrznej po jedno- lub dwu-kierunkowej elektroforezie żelowej), Anal. Biochem. 203, 173-179 (1992),
Visser R. G. F., Jacobsen E.: Towards modifying plants for altered starch content and composition (Modyfikowanie roślin w celu zmiany zawartości i składu skrobi), TibTech 11, 63-68(1993).
186 381
Sekwencja SEQ ID Nr. 1
Sekwencjonowana cząsteczka: cDNA
Nazwa: gen beII (dla enzymu sieciującego II) z Solanum tuberosum (ziemniaki)
Długość sekwencji: 3074 par zasad
AAACCTCCTC CACTCAGrCT TTGTTTCTcr CTCTCTCTAC GCTTCTCTTG «CCCCITCSA 60
CTCAGCA^ TCACACTCAC TTACTTACAC TSCNCCCTCA TATCTCACCT TCTATTTTT 120
TCTTAATTCC CCCCCCC TCAATAAAAA CAJAAACCCC TAGCCGCGCA 180
CCCCC CTC (Π TCT CCC CTC TCT CC CTT CCT TT0 CCT CCT CTT CCC 230
Mit Vrl Tyr Tro lewi Ser Hy VaT Crg Phe Pro ThrE Val Pro
-45 -40 -35
TCC CC TAC CCC TCT CCT ICa TTT ACC ACC ?CT CCC <CC CCC! MC ACC 273
Sec Val Tyr Lys Ser Csn dy PPe Ser Sar Asn Gly dp dg Arę Asn
-30 -25 -20
CCT CCT NTT TCT CTC TTC TTC CCC CCC CCC TCT CTC TCC CC CCC CTC 323
C.r Csn Xrr Ser Val Phe Leu Lys Lys HLs Ser Leu Ser Cg Lys Ha
-15 -20 -3 ns CCT CC CCC TCT TCT TCC CCT TCC CCC TCC CCC CCT TCT CCC CTT 373
Lau dr Hu Lys Ser Sar Ty Csn Ser Hu Ser Crg Pro Ser Thr Val
10
CCC CCC TCC CCC CCC CC CTT CTC CCT CC CCC CM CCT CC MC TCC 422
C.r Cr Sar Cy Lys Val Lau Val Pro Cly Thr Cln Sar Csp Ser Ser
00 05 30
TCC TCC TCC CCC CC CCC TTT CTC TT CCT CG ACC TCT COC TCCC, JCT 420
Ser Ser Sar Thr Car Cln Phe Hu Kie TC GCu Thr Ser Pro Hu to.
40 42
TCC CCC CCC TCC CCT CT CTC CT CT TCC CCC CTC CCC CCC CCT CCC 5131
Ser Pro C·! Ser Thr Cp Vil Cup Ser Ser Thr Het Hu H.s Cr Ser
55 60
CCC CTT MC CCT CC CCC CCT CC CTT GCG CCC TCC. CCT CCT CTT CCC 565
Cln Ilr Lys T-.r Clu Cn Csp Cp Val Hu Pro Ser Ser Csp Leu Thr
00 75 <C3C CCT CTC CC CC CTC CCT TCT QCT TCC TCC CTC CCC CEC CM CCC 5141
C.y Ser Val Hu C.u Leu Λορ Phe dr Ser Ser Leu Ha Leu Cln Clu
35 90
HT CT CCC CTC CG CC TCT CC CCC TCC CT CCT TCT CCC CC CCC 562
C.y Hy Lys Leu Hu Clu Ser Lys Thr Leu Csn Thr Ser Hu Hu Thr
100 005 110
CTT CCT CCT CC TCT CT CU CTC .CCC CM MG CC CTC CCT CCC CCT 710
Ile Ile Csp Hu Ser Cp Crg He .Crg Hu Crg Hy Iie Pro Pro Pro
015 000 005
GGA. CTT CC CCC CM CT ę?T CC CCC CCC CTC TCC CCC. CC TCT 718
Hy Leu Hy Cln Lys Ile Tyr Hu He Cp Pro Leu Leu Hm to Tyr
030 035 040
CcT CCC CCC CTT CT TCC CC TCT TCC CM TCC CM CCC CTC MC d 806
Crg Cln H.s Leu Cp Tyr Crg Tyr Ser Cln Tyr Lys Ly3 Leu Cg Hu
145 150 155
186 381
OTG ATT GAC TAG CAT TCA GGG GGC TT? gca GGC TT? TTC CCC CCC TTG 854
G.a Ile Atp pys T?t GCu Gly GCy Lau GCl Ma PPe Sau Aa: Gly T?r
160 165 170
GGG GAG AIA CC TTT CAC CCC AGC GGC AAC GCG AGC AGC TTA CCC GGA 902
C.u Lya Mer. Gic P ha TTr Mg Ssr Ma T?h Gly Ile TM Tyr M-gr Glu
175 180 118 UO
TCC CTT CCC CCC TCC TTA TCC. <CT GGC CCC AAT CCC GCG TTT AGA AAT 955
Trp Ala Pro Gic Ala GCl SSr Ma Ml Łlu Ile GCy AGp PPe Aci Aan
195 200 205
TGG GAC GCG AAG TCC TCA ATT ATC GCT CCG GGT CGG ttt CT GTC Tli 999
Trp Asp Ala Ma Ala Aap Ile fMt Uh Jag Mn Gi^ PPh GCy Val Typ
210 215 220
GAG ATT mer ck; CCC. AAA AAG GCT GGG CCC TT? CCC GCC JA? CTT CTA 1004
Glu He Phe Laa ?:p ogn Msn Vaa Ago Gly Ser Pro Ma Ile Par Era
225 230 235
GGG TCC AiAg GC AAG ca? <ccc ATG <gc Ad CCG KCG GCC CTT AGA GGG 1099
CA A;r Arg Val Lya Ile Mg Met Gra TM Pro Ser Gly Val Lya Mo
240 244 2S0
TOC ATT CC Td ?GG cac GC TAC kc; Ta CJGC CTT CCC CG CCA AG? 1114
Ser Ile Pro Ma Tr? Ile Aan r/r Sse JL«j Gln lasu Pro AGp) Glu Ile
255 2 00 265 227
TTG TAT AGC Td AlA -ta; TAT CGGT CG CCCC CCGG CCGG CCG AACl -TG JGT 1119
Pro Tyr Aso GlG Ile fyr Ττ 7Ap Pro Pro GCu Gilu Gil Mg Tyr Ha
275 280 225
ICC CAG CCC CCC CGG CCC. AGC AGG CCC. AAC TG CCTl JACc -GTG TG (CG. 1123
Phe Gln Hrs ?PO Agt Pro Isy Lya Pro Lya Siu:: laeu Mg Ile Tyr Glu
290 229 330
??? TAT AAT GGG AAG jgct ACC CCC CCGG CCT GGG AT jag: TCA mc GGG 1126
Ser His Ile Gly Met Ser Ser Piro Glu Pro Lya Ile Ms Sar -Te Vaa
305 311 335
GAC TTT ACAc GGG CGG GGT CCT CCC CCC ATA AGA JAGG CTT GCC tta CAG 1134
Gsn Phe Arę VGs Gil Yal Ilu Par Aag Ile Lls Lls Lau Gly r?r Agn
320 325 330
GTC CTi CTA AAT GCG GCT AG? CCA GCG ccac TTC TTGC T?G GGC AG? TTT 1132
Ma Val G!g He -Me. Ma Ile Glu Glu Hs Ssr -?Z T?y AGa SsA CPh
335 400 345 350
GGT TAI CAC CCC AGA TGG r?c -TT GGT CCA AAC JAGC CCC -j?? Gil AAC 1130
Giy T/r Hia Val TTs Mn Phe JXa Ma Pro Ssr Ser Aa; PPL GCr· TT-r
355 360 335
?? . CAC cg CTT GAC TCT TTG AT? CAT AGA CCT CG? (AC TTA GGA AA? 1473
Pro As? Asp Lau Las Ser Leu He Asp Lya Mi His Glu Leu <Cy Ile
370 337 330
GTT GTT CCT CC? CAC -ATC CC? CCG jac CG? CCT . TCA JAG MG AAC TTC 1526
aal Val Leu Ket Asp He vaa Hiss Ser Hm Ma Se^ Aas Ago Tch Lau
385 39<3 339
GAT ' GGA , CCT ; ca : atc CG : ccc : aq . CGT ' ACC ' TCT aa . Ti? • CG . TC? 11574
Asp i Gly • Leu ; Gs i M Phe i Gst i Gly 1 Asp - Ser : Cys Tyr PPh Hm Sse
400 405 410
186 381
OSA GCT COC GOC TAT CAT TGC ATG GC GG TCC CGG CCC TCC AGA TAI 1622
O-y 415 Ala Arg G-l Tyr H.s •120 TrT Gar Tt> AA] Ser Aig 425 Leu Pbh Ags Ter 430
OGA GAC COO SAO GA CCC AGA GC CTT CCC TCC AAG GOC AGO ICO TTG 1170
O.y Asn Trp Glu ViO. Leu 435 Ata gyT Leu Lei 440 Ser Asn AG A_g Ter Tcr 44.4
CCS GAT GAG CTC AGA CCC GAA CG Att AGO TTT GGG GAG GGG AGC TCC 1171
Leu Ap Glu Phe 450 Lys Phe Asa Gly Phe 455 AAJ Pbh Asp GGl Vv1 TCh Tar 460
GCG ATG TAT GCT CAC CAC GCG ATCC GCC GAT GAG TCC AGC GAG AAG TGG 1176
Mt Mt Cyr 465 Thr flis H.s G1a Leu ulo Sar V;V Gly Phe Tlc Gly Asis Ter 475
OGO GGG TAC TTT OGG CTC GCG ACA TAG GGT GAG GAC GAT GOC TTG· CCC 1884
Glu Glu 480 Tyr Phe Gly Leu A1g 485 aHc Asp W. Ais AGa 49(9 Vai VV1 Tc Leu
ATS CTO GTC GAC GC CTT GTT CAT AAG ctt CCC CA GAC GCG GCC GCC 1182
Mt 495 Leu UaL Asn Asp Lau 500 Ile His G.y Leu She Pro 505 Asp Gla He· Thr 551
ATT GOT GAG GAT GCC GOC AAA ATG CCS GCG CCC CNI GGT ΟΧ GTT CGG 1191
Ile Gly Glu Asp Val Ser 515 Gly Het Pro mr 552 Pha Xaa Ile Pro Val Gn 552
GAT GGG GSG oce GAC TTT GAC TAT CGG CCC CCG AAG GOC TGG GOC GGG 1155
Asp Gly Gly Val 530 Gly Phe Asp Tyr Asg 533 Leu Kis Hec. AG Ile AG Ass 540
GAG TAO ATT GAG CTO CTC AGG GAI CG CGG GOG CGG TTG AGO CTC CGG 2206
Lya Crp Ila 545 GLu Leu Leu Ly3 Lys Air Aas 550 CGu Asp Tc? Argr Val CTy 555
GAT ATT GIT CAT ACA CTG GCG AAT AGA AAA TAG CCS GGGG GAG TOT GTT 2204
Asp Ha 560 Val His Thr Leu Ghr 565 Gan Arg Arg Crp Ser 557 Gilu Lys Cyi Val
TCG TAC GCT GAA GOT CGC GOA TCG GOC CC cgc <gg GG JGA AGC AGA 2212
Sec 575 Tyr Ala Glu Sir His 580 Aaj GGl AGa Ilu Val GGy Ago L^s TCr He 55S 559
GCG CTC TOG cto GCG AGC AAG GIT GGG TAG GRC ccc GCG GCT CTO GGT 2LS0
GLa Phe Tzg Leu Mt Asp Lya Asp Mat Tc Gsp Phe M^lt GG Leu Asp
595 660 S65
AGA CN CCG ACA TCG CTG AGA GAT Coe OOO GCG GCG TGG CAC AGO ACO 2119
G:g Pro Ser Thr Ser Leu Ile Gsg Gg Gly Ha G.a Leu His Lya Mt
685 665 620
GTT AAG CTC GIG GCT GIG GGG TTG OOA OOG GAG OGO CGC CIG AGC TCC 2246
Ile Grg Leu Val Cis Met Gly Leu Gy Aly Olu GlL Cyr Leu Asn Phe
625 530 635
ATG GGG AAT GAG TCC GAC CAC CCC OAO TOG GCT GAT CCC CCC GAA GCT 2294
Mt Aiy Gan Olu 2ha Gly His Pro Olu Grp Ila Gap Phe Pro Arg g..
640 645 650
GAG CGG CGC TCT CCI GAC GCC CCG GIG ATI CCC yoA AGC CGG CTC GOT 2342
G-u AG His Leu Sar Gsp Gly Ser Vii Ile Pro Oiy Gan OG Phe Ser
655 660 665 670
186 381
CTC ga TAA TTG Jaga cct AGA TTC GC CTG GOG GAO OCT <GA TAO T/r 685 TCT Iuu 2330
Tyr Asp Lys Ccc Aa? 675 ^ta Arg ?he Tsp Lee 680 GOy Asp ALa Glu
AGA CTC CTC ^OG TTT3 CCA GTT ITT GAC CGT <GC TCT CTG TAT CTC GTT 2433
Arg Tyr Arg GOy Iu»u GOn Glu ?he Asp Arg AAl, Met Gln Ty? Lou Glu
690 695 7C0
TTC ATT TAO <GA3 i^TT ATG TCT KOT GAT CAC CCG TTC GTA TCT CGT TG 244ć!
Asp Lys Tyr GOu Phe Mer. Thr Ser Gilu His Gln Phe Ile Sar Trg· Łyg
705 710 715
GAC GTA TGT GAT AGO ATT ATT GTA ttt GAO AAA AGA AAA CTC ONG TTT 2234
Asp Glu Gly Asp Arg Moc. Ile VaL Pho Glo uys Glo Ast Leu Val ? DP
720 725 73C
GOC oto ATT CCC CTC TOG ACA TTT AGO TAT CCC TAG OAT TGC CTA AGO 2282
VaJ. Phe Asn Pho SŁLs Trp Thr Lys Sar Tyo Ser Asa Tyr Arę I la Glo
735 744 775 7S5
COC CTG TAO CCT GOT TAT TAC TAG GTT GCG CTG GAC CCA TJO· TAT CCC. 2630
Cys Lou Lys Pry Gly Lys Tyr Lys Val A1a Leu uSA SeS As. Asp p rP
755 760 7 5
COC CTC GOT GOC TTC OOG AGA ATT GTT CAC TAT TCO CAO. TAO· TTC CCA 2573
Leu Phe Gly Gly Pho Gly Arg Ile Tsp His Asa ALa Glo Tyr- Phe Thr
770 755 73G
ccc GTA GTT TOG OAT GAT GTT CGT CCC CGO TOTO .ATT TTT OTG OAT SGc 270.
Phe Glu Gly Trp Tyr Asp Asp Arg Pro AtA geS Ha MeM Val Tyr ALa
785 790 795
CCC AGO AGA TCT GOT TTT GOC TAT GOA CTO ATS. GAC ATT TAT GAT TWA 2774
Pro Ser Arg Tir ALa 1<aL Val Cyr Ala Leu Val Asp Ly3 Glo Glo Glo
800 805 100
GAT GTA GAT OAA GOT TCT GTA GOA GAA GAA ATOO GTA GOC GAOT GATT TT 2822
Olu Glu Olu Olu lai Ala Val Val Glu Glo Val Val VaV Glo GlU Glo
815 820 32S 930
CGT ACTTA CCOOCTACCT CTTCTAAAOA CTTOAATGCC TCTITTATCT COCTGTCTTT 2880 « * ★
CCCTTCATCA CTTCACCĄTC (CTOGOOCGTT “TTTCATCGSGA CAAAAGCTTT (GOCOCTTCAT COCO CCACCTCCAG CttcTCTTCG ATATTACGCTG A<^CGTTOIG CTGCACCCTC CTATCTACAC GATT rCGACGA^TC TACGCCTATC COOTGTOOACCOT GC^CTGCAT GTTTTGTCTC GOTCTTGCOT TOTO CATATOGCCA COCO 3074
186 381
Sekwencja SEQ ID Nr. 2
Sekwencjonowana Nazwa: fragment lanum tuberosum cząsteczka: cDNA genu beli (dla enzymu (ziemniaki) sieciującego II) z SoDługość sekwencji: 1393 par zasad
T CTC CCA AAC AAC CCG (CA CCT CCT CCT GCC ATUT CAT CCC TTC MA 49
Leu Pro Asn Asn Val Aso Gly Ser Gls Ala He Pro His Gly Ser Arg
1 5 10 11
CTC AAC ATA CCC ATC CAC ACT CCA TCA CCC CCT AAC HT TCC ACT CCT 97
Val Lys Ile Arg Met Asp Thr Pro Ser ciy Val Lya Asp Ser Ile Pro
22 25 30
CCC TGG ATC AAC TAC TCT CMC CAG CCCC CAT CMC GAA ACT CCA TAC AAT 1AC
ALa •rp Ile Asn Tyr Ser Teu Gln Ilu Pro Cmp Glu Ile P:u TH Asn
35 42 45
CCC MA TAT TAT CAT CCA CCC CIA CAC CAC ACC TAT ATC CTC CAC CAC 110
CLy Ile Tyr Tyr Asp Pro Pro CLu Clu Clu Arg Tyr Ile Phe Hn Kis
52 55 60
CCA CCC CCA AAC AAA CCA AAC TCC CTC ACA ATA TAT CAI TCT CAT ACT 229
Pro Arg Pro Lys Lys Pro Lys Ser Leu Arg Ile Tyr CLu Ser ais Ile
65 70 75 82
CCA ATC ACT ACT CCC Cd CCT AAA ATT AAC CCA TAC CTC AAT TTT ACA 229
Hy Met Ser Ser Pro Clu Pro Lys Ile Asn Ser T/r Val Ara Phe Arg
85 90 90
CAC CCA CTT CTT CCT CCC ATA AAA AAC CTT CCC TAC AAC CCC CTC CCA 337
Asp Hu V;al Leu Pro Arg Ile Lya Lys Leu Cly T/r Asn ALa Val Gln
100 110 111
ATT ATC GCT ATT GAC CAT TCT TAT TAT CCT ACC TTT CCT TAT CAT 338
Ile Mer. ALa Ile Hn CLu Kis Ser Tyr Tyr M.a Ser Phe CLy Tyr iss
115 120 123
CTC ACA AAT TTT TTN CCA CCA ACC ACC CCC TTT CCA ACN CCC CAC CAC 4371
vaa Tu: Asn Phe Xaa ALa Pro Ser ^r Arg Phe Cly Tur Pro Asp Asp
132 135 14ϋ
CTT AAC TCT ttc ATT GAI AAA CCT GT CAC CTA CCA ATT CCT CTT CTC 498
Leu Lys Ser Leu Ile Asp Les Als ais Glu Leu Cly Ile Vsl Val Leu
195 150 1SS 152
ACC CCC ATT CTT CAC AAC CAC GCA TCC AAA Ad ACT TCA gm CCC CCT 522
Met Asp Ile Val Kia Ser His Ua Ser Asn JMsi ITh Ilu Ams Gly Ilu
165 170 175
AAC ATC CTC CAC Asn Met Phe Asp 182 CCC AAC CLy TTh GCA Asp AAC TCC Ser CCS 185 TTG TTT CCA TCT GGC GCC CCC 571
Tts Phh iii Ser Gly TA a JMg 190
CCC TAT 'CAT TGG ATC TTG CCI «CC CCCC CTTC ttc JM.C TTA (CC jA£ T(CJ 622
Gly Ty: a.s Trp Mm- Trp JMp Ser Hrr Ilu Phe Aa.i Te Gly Asn Tr?
195 200 255
GAC CTA CTT ACC TAT CTTC CTC TCCA JAT «X AAC. TCCi «G5 rac GC (CAC 670
CLu VaL Leu Arg Tyr Ilu Ilu ^e .Mn Mn Trp Trp Im ^Ap Glu
212 215 222
186 381
TTC AAA TCT gat gga ttt aga ttt gat ggt gtg aca tca atg atg tat 721
Pha Lys 225 Pha Aap Gly Phe Arg Pha Asp Gly Val Thr Ser Mat Met Tyr
230 235 240
ACT CAC CAC GGA TTA TCG GTG GGA TTC ACT GGG AAC TAC GAG GAA TAC 776
Tir His His Gly Leu Ser Val G.y Phe Thr Gly Asn Tyr Glu Glu Tyr
245 250 255
TTT GGA CTC GCA ACT GAT GTG GAT GCT GTT GTG TAT CTG ATG CTG GTC 382
Phe Gly Leu Ala Thr Asp Val Asp Ala VaL VAL T/r Leu Met Lau Val
260 265 220
AAC GAT CTT ATT CAT GGG CTT TTC CCA GAT GCA ATT ACC ATT GGT GAA 505
Asn Asp Leu Ile His Gly Leu Phe Pro Asp Ala Ile Th.r Ile Gly Glu
215 220 235
GAT GTT AGC GGA ATG CCG ACA TTT TNT ATT CCC GTT CAA GAT 3GG GGT 911
Asp Val Sar Gly Mat Pro Thr Pha Xaa Ile Pro Vel GL.n Asp Gly G!v
290 295 300
GIT GGC TTT GAC TAT CGG CTG CAT ATG GCA ATT GCT GAT AAA TGG ATT 966
Val Gly Phe Asp Tyr Arg Leu His Met Ala Ile Ala Asp Lys Trp Ila
305 310 335 332
GAG TTG CTC AAG AAA CGG GAT GAG GAT TGG AGA GTG GGT GAT ATT GTT 1109
G.'u Leu Leu Lya Lys Arg Asp Glu A.sp Trp Arg Val Gly Asp Ile Val
325 330 335
CAT ACA CTG ACA AAT AGA AGA TGG TCG GAA AAG TGT GTT TCA TAC GCT 11551
His Thr Leu Thr As.4 Arg Arg Trp Ser Glu Lya Cys V&1 Ser Tyr A.a
340 335 330
GAA AGT CAT GAT CAA GCT CTA GTC GCT GAT AAA ACT ATA GCA TTC TGG 1105
G.u Ser His Asp Gin Ala. Leu Val Gly Aap Lys Thr Ila ALa Phe Trp
355 330 365
CTG atg GAC AAG GAT ATG TAT GAT TTT ATG GCT CTG GAT AGA CCN TCA 1153
Leu Met Aep Lys Asp Mat Tyr Aso Pha Met Ala Leu Asp Arg Pro Ser
370 375 330
ACA TCA TTA ATA GAT CGT GGG ATA GCA TTG CAC AAG ATG ATT AGG CTT 1201
Tur Ser Leu Ile Asp Arg Gly Ile Ala Leu His Lys Met Ile Arg Leu
385 390 335 400
GTA ACT ATG GGA TTA GGA GGA GAA GGG TAC CTA AAT ITC ATG GGA AAT 1249
Val Thr Met Gly Leu Gly Gly Glu Gly Tyr Len Asn Phe M«e Gly Asn
405 440 115
GAA TTC GGC CAC CCT GAG TGG ATT GAT TTC CCT AGG GCT GAA CAA CAC 1297
Glu Phe Gly His Pro Glu Trp Ile Asp Phe Pro Arg Aia Glu Gin His
420 445 430
CTC TCT GAT GGC TCA . GTA ATT CCC GGA AAC CAA TTC AGT TAT GAT AAA 1345
Leu Ser Asp Gly Ser VAL Ile Pro Glv Asn Gin. Phe Sar Tyr Asp > Lys
435 440 44δ '
TGC AGA CGG AGA . TTT GAC CTG , GGA GAT GCA GAA TAT TTA AGA TAC : cgt 139Ó
Cys Arg Arg Arg Phe : Asp Leu . Gly Asp Aa GTu Tyr Leu Arg Ty- ' Arg
450 455 450
186 381
FIG. 2
Peptjd 1. EFGVWEEFLPN Peptyd 2. HGLQEFDRA Peptyd 3, ENDGIAAKADE Peptyd 4. YEIDPEI/LTN
186 381
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 50 egz. Cena 4,00 zł.

Claims (21)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, zawierająca sekwencję nukleotydową przedstawioną na sekwencji SEQ ID Nr 1 i warianty tej sekwencji powstałe w wyniku degeneracji kodu genetycznego.
  2. 2. Sekwencja według zastrz. 1, znamienna tym, że stanowi fragment o wielkości od 50 do 3074 par zasad, posiadający sekwencję nukleotydową przedstawioną na sekwencji SEQ ID Nr 1, oraz jego warianty powstałe w wyniku degeneracji kodu genetycznego, zdolny do powodowania zmian w proporcji amyloza/amylopektyna w skrobi ziemniaczanej, jak również do zmniejszania lub zmiany wzorów usieciowania amylopektyny.
  3. 3. Sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka posiadająca sekwencję aminokwasów przedstawioną na sekwencji SEQ ID Nr 1.
  4. 4. Wektor zawierający całą lub aktywną funkcjonalnie część wyizolowanej sekwencji DNA przedstawionej na SEQ ID Nr 1 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemniaku.
  5. 5. Wektor według zastrz. 4, znamienny tym, że zawarta w nim sekwencja DNA usytuowana jest w orientacji antysensownej (odwróconej) względem promotora znajdującego się bezpośrednio w górę od tej sekwencji DNA.
  6. 6. Wektor według zastrz. 4, znamienny tym, że zawiera całą lub aktywną funkcjonalnie część sekwencji DNA przedstawionej na sekwencji SEQ ID Nr 2 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemniaku.
  7. 7. Wektor według zastrz. 6, znamienny tym, że zawarta w nim sekwencja DNA usytuowana jest w orientacji antysensownej (odwróconej) względem promotora znajdującego się bezpośrednio w górę od tej sekwencji DNA.
  8. 8. Sposób otrzymywania transgenicznych ziemniaków o podwyższonym lub obniżonym stopniu usieciowania amylopektyny skrobiowej, znamienny tym, że do genomu komórki ziemniaka przenosi się i wprowadza wektor zawierający całą lub aktywną funkcjonabiie część wyizolowanej sekwencji DNA przedstawionej na SEQ ID Nr 1 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemniaku, a następnie regeneruje się z tych transformowanych komórek nienaruszone, całe rośliny.
  9. 9. Sposób według zastrz. 8, znamienny tym, że stosuje się wektor z zawartą w nim sekwencją DNA usytuowaną w orientacji antysensownej (odwróconej) względem promotora znajdującego się bezpośrednio w górę od tej sekwencji DNA.
  10. 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla sieciującego skrobię enzymu I (SBE I).
  11. 11. Sposób według zastrz. 9 albo 10, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla związanej z ziarenkami skrobi syntazy skrobiowej II ziemniaka.
  12. 12. Sposób według zastrz. 9 albo 10, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla rozpuszczalnych syntaz skrobiowych II i III ziemniaka.
  13. 13. Sposób według zastrz. 9 albo 10, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla enzymu dysproporcjonującego skrobię (enzymu D) ziemniaka.
  14. 14. Sposób według zastrz. 9 albo 10, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla enzymu de-sieciującego skrobię ziemniaka.
    186 381
  15. 15. Sposób według zastrz. 8, znamienny tym, ze stosuje się wektor zawierający całą lub aktywną funkcjonalnie część sekwencji DNA przedstawionej na sekwencji SEQ ID Nr 2 oraz elementy regulacyjne aktywne w ziemniaku.
  16. 16. Sposób według zastrz. 15, znamienny tym, że stosuje się wektor z zawartą w nim sekwencją DNA usytuowaną w orientacji antysensownej (odwróconej) względem promotora znajdującego się bezpośrednio w górę od tej sekwencji DNA.
  17. 17. Sposób według zastrz. 16, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla sieciującego skrobię enzymu I (SBE I).
  18. 18. Sposób według zastrz. 16 albo 17, znamienny tym, ze stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla związanej z ziarenkami skrobi syntazy skrobiowej II ziemniaka.
  19. 19. Sposób według zastrz. 16 albo 17, znamienny tym, ze stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla rozpuszczalnych syntaz skrobiowych II i III ziemniaka.
  20. 20. Sposób według zastrz. 16 albo 17, znamienny tym, że stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla enzymu dysproporcjonującego skrobię (enzymu D) ziemniaka.
  21. 21. Sposób według zastrz. 16 albo 17, znamienny tym, ze stosuje się wektor zawierający również konstrukcję antysensowną dla enzymu de-sieciującego skrobię ziemniaka.
    Wynalazek dotyczy wyizolowanej sekwencji DNA kodującej sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka oraz fragmentu tej sekwencji a także sekwencji aminokwasowej sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka. Wynalazek dotyczy również wektora zawierającego sekwencje DNA oraz sposobu otrzymywania transgenicznych ziemniaków.
    Skrobia jest złożoną mieszaniną różnych form cząsteczki, różniących się stopniem polimeryzacji i usieciowaniem łańcuchów glukozowych. Skrobia składa się z amylozy i amylopektyny, przy czym amyloza zawiera w zasadzie liniowy α -1,4-glukan a amylopektyna składa się z reszt α -1,4-glukanu połączonych ze sobą wiązaniami α -1,6, tworząc rozgałęziony poliglukan. Skrobia nie jest więc surowcem jednorodnym.
    Synteza skrobi przebiega drogą co najmniej trzech reakcji enzymatycznych, w których biorą udział ADP-glukoeofosforylaza (EC 2.7.7.27), cyntaza skrobi (EC 2.4.1.21) i enzym sieciujący skrobię (EC 2.4.1.18). Uważa się, że enzym sieciujący skrobię (SBE, zwany również enzymem Q) posiada dwie różne aktywności enzymatyczne. Katalizuje on mianowicie hydrolizę wiązań α-1,4-glukozydowych oraz powstawanie wiązań α-1,6-glukozydowych podczas syntezy rozgałęzionego komponentu skrobi, to jest, amylopektyny.
    Skrobia roślinna jest cennym źródłem odnawialnego surowca stosowanego np. w przemyśle chemicznym (Visser and Jacobsen, 1993). Jakość skrobi musi jednakże odpowiadać Wdmaga4i0m przemysłu przetwórczego, dla którego jednorodność struktury jest ważnym kryterium oceny. Do zastosowań przemysłowych potrzebne są rośliny zawierające tylko skro bię tunylozową. bądź rośliny zawierające jedynie skrobię amylopektynową.
    Opisane są sposoby zmiany proporcji amyloza/amylopektyna w skrobi. Przykładowo, w publfkiuai międzynarodowego zgłoszenia patentowej, W095/04826 opusane są rekw^cje DNA todujące αι/.ymy de-sieciujące, wykazujące właściwości zmniejszania lub zwiększana stopnia usieciowania amdlopektyny w tra4sge4ίcz4dch roślinach, np. w ziemnak.acli.
    W publikacji międzynarodowego zgłoszenia patentowego, W092/14827 opisane są plazmidy zawierające takie sekwencje DNA, które po insercji do genomu roślinnego powodują zmiany w zawartości węglowodanów i składzie tych węglowodanów w regenerowanych roślinach. Zmiany te można uzyskać dzięki sekwencji dla enzymu sieciującego, znajdującej się w tych plazmidach. Przypuszcza się, ze enzym sieciujący zmieni proporcję: amylo/s./smylopektyns w skrobi znajdującej się w roślinach, zwłaszcza w roślinach stosowanych w przemyśle.
    186 381
    W publikacji międzynarodowego zgłoszenia patentowego, W092/14827 opisany został jedynie znany dotychczas enzym sieciujący skrobię w ziemniakach. W stanie techniki nie było wiadomo, czy w syntezie usieciowanej skrobi w ziemniakach biorą udział jeszcze inne enzymy sieciujące skrobię.
    Visser i wsp. (Mol. Gen. Genet. 1991, 225: 289-296) opisali hamowanie ekspresji genu dla związanej z ziarenkami skrobi syntazy skrobiowej w ziemniakach przez użycie konstrukcji antysensownych. Uzyskano prawie 100 procentowe hamowanie tego enzymu w bulwach ziemniaczanych i w tym przypadku otrzymano skrobię nie zawierającą amylozy.
    Znane uprzednio sposoby hamowania syntezy amylopektyny nie były tak pomyślne i dlatego ciągle są bardzo potrzebne alternatywne sposoby hamowania wytwarzania amylopektyny (Muller-Rober i KoBmann, 1994; Martin i Smith, 1995).
    Celem niniejszego wynalazku było umożliwienie dokonywania zmian w stopniu usieciowania amylopektyny i w proporcji: amylopektyna/amyloza w skrobi ziemniaczanej.
    Zgodnie z wynalazkiem, cel ten osiągnięto dzięki uzyskaniu nowej, wyizolowanej sekwencji DNA kodującej drugi enzym sieciujący skrobię, enzym SBE II, oraz fragmentów tej sekwencji. Sekwencja ta lub jej fragment, po wprowadzeniu do genomu roślinnego powoduje zmiany w stopniu usieciowania i w proporcji: amyloza/amylopektyna w skrobi wytwarzanej w regenerowanych roślinach.
PL96326975A 1995-11-29 1996-11-28 Wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka, wektor oraz sposób otrzymywania transgenicznych ziemniaków PL186381B1 (pl)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE9504272A SE513208C2 (sv) 1995-11-29 1995-11-29 Förfarande för produktion av transgena potatisar med ökad eller minskad grad av förgrening av amylopektinstärkelse
SE9601506A SE513209C2 (sv) 1995-11-29 1996-04-19 Förfarande för produktion av transgena potatisar med ökad eller minskad grad av förgrening av amylopektinstärkelse
PCT/SE1996/001558 WO1997020040A1 (en) 1995-11-29 1996-11-28 Starch branching enzyme ii of potato

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL326975A1 PL326975A1 (en) 1998-11-09
PL186381B1 true PL186381B1 (pl) 2003-12-31

Family

ID=26662437

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL96326975A PL186381B1 (pl) 1995-11-29 1996-11-28 Wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka, wektor oraz sposób otrzymywania transgenicznych ziemniaków

Country Status (14)

Country Link
US (3) US6169226B1 (pl)
EP (1) EP0863983A2 (pl)
JP (1) JP2000500978A (pl)
KR (1) KR100540824B1 (pl)
CN (1) CN1112443C (pl)
AU (1) AU7716596A (pl)
CA (1) CA2238948C (pl)
CZ (1) CZ298540B6 (pl)
HU (1) HU222651B1 (pl)
NO (1) NO982443L (pl)
PL (1) PL186381B1 (pl)
SE (1) SE513209C2 (pl)
SK (1) SK284999B6 (pl)
WO (1) WO1997020040A1 (pl)

Families Citing this family (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PT826061E (pt) 1995-05-05 2007-10-16 Brunob Ii Bv ''melhoramentos na composição de amido vegetal ou relacionados com o mesmo''
DE59611362D1 (de) 1995-09-19 2006-08-17 Bayer Bioscience Gmbh Pflanzen, die eine modifizierte stärke synthetisieren, verfahren zu ihrer herstellung sowie modifizierte stärke
GB9623095D0 (en) * 1996-11-05 1997-01-08 Nat Starch Chem Invest Improvements in or relating to starch content of plants
NZ503137A (en) 1997-09-12 2000-10-27 Groupe Limagrain Pacific Pty L Sequence and promoters for starch branching enzyme I, starch branching enzyme II, soluble starch synthase I and starch debranching enzyme derived from Triticum tauschii to modulate gene expression
JP2002518015A (ja) 1998-06-15 2002-06-25 ナショナル スターチ アンド ケミカル インベストメント ホールディング コーポレイション 植物および植物製品の改良またはそれらに関する改良
DE19836098A1 (de) 1998-07-31 2000-02-03 Hoechst Schering Agrevo Gmbh Pflanzen, die eine modifizierte Stärke synthetisieren, Verfahren zur Herstellung der Pflanzen, ihre Verwendung sowie die modifizierte Stärke
AU779814B2 (en) * 1999-03-29 2005-02-10 Novozymes A/S Polypeptides having branching enzyme activity and nucleic acids encoding same
US7052697B1 (en) 1999-05-13 2006-05-30 Agriculture Victoria Services Pty Ltd Lawsonia derived gene and related OmpH polypeptides, peptides and proteins and their uses
DE19937643A1 (de) * 1999-08-12 2001-02-22 Aventis Cropscience Gmbh Transgene Zellen und Pflanzen mit veränderter Aktivität des GBSSI- und des BE-Proteins
GB9921830D0 (en) * 1999-09-15 1999-11-17 Nat Starch Chem Invest Plants having reduced activity in two or more starch-modifying enzymes
AUPR138100A0 (en) 2000-11-10 2000-12-07 Agriculture Victoria Services Pty Ltd Novel therapeutic compositions for treating infection by lawsonia spp
WO2002101059A2 (en) * 2001-06-12 2002-12-19 Bayer Cropscience Gmbh Transgenic plants synthesising high amylose starch
US8022272B2 (en) 2001-07-13 2011-09-20 Sungene Gmbh & Co. Kgaa Expression cassettes for transgenic expression of nucleic acids
DE60331652D1 (de) 2002-07-09 2010-04-22 Basf Plant Science Gmbh Verwendung von mutierten ahas genen als selektionsmarker bei der kartoffeltransformation
EP1431393A1 (de) * 2002-12-19 2004-06-23 Bayer CropScience GmbH Pflanzen, die eine Stärke mit erhöhter Endviskosität synthetisieren
CA2505776C (en) * 2002-12-19 2013-04-02 Bayer Cropscience Gmbh Plant cells and plants which synthesize a starch with an increased final viscosity
WO2005001098A1 (en) 2003-06-30 2005-01-06 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Wheat with altered branching enzyme activity and starch and starch containing products derived thereform
CN1938389A (zh) * 2004-03-31 2007-03-28 巴斯福植物科学有限公司 羟丙基化高直链淀粉含量马铃薯淀粉实现高抗油脂数的用途
JP2007530809A (ja) * 2004-04-01 2007-11-01 ビーエーエスエフ プラント サイエンス ゲーエムベーハー 織物用糸のためのサイジング剤としてのアミロースデンプン生成物
EP2421976B1 (en) 2009-04-22 2015-09-16 BASF Plant Science Company GmbH Whole seed specific promoter
CN104017829A (zh) * 2011-12-06 2014-09-03 中国科学院上海生命科学研究院 提高植物直链淀粉含量的方法
DE202012104218U1 (de) 2012-11-02 2014-02-06 Emsland-Stärke GmbH Pflanzliches Nahrungsmittelprodukt
DE102014107610A1 (de) 2014-05-28 2015-12-03 Emsland-Stärke GmbH Verwendung eines Nahrungsmittelprodukts aus stärkehaltigen Pflanzenteilen
CN110760532B (zh) * 2019-11-18 2022-08-12 南京农业大学 一种淀粉分支酶及其基因、含有该基因的工程菌及其应用
CN112391365B (zh) * 2020-11-30 2022-04-15 江南大学 一种催化活力提高的淀粉分支酶突变体及其应用
CN113151318B (zh) * 2021-03-17 2022-08-16 云南中烟工业有限责任公司 一种烟草淀粉分支酶基因NtGBE1及其应用

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE467358B (sv) 1990-12-21 1992-07-06 Amylogene Hb Genteknisk foeraendring av potatis foer bildning av staerkelse av amylopektintyp
SE9004095L (sv) * 1990-12-21 1992-06-01 Amylogene Hb Genetisk foeraendring av potatis foer bildning av staerkelse av amylostyp
DE4104782B4 (de) * 1991-02-13 2006-05-11 Bayer Cropscience Gmbh Neue Plasmide, enthaltend DNA-Sequenzen, die Veränderungen der Karbohydratkonzentration und Karbohydratzusammensetzung in Pflanzen hervorrufen, sowie Pflanzen und Pflanzenzellen enthaltend dieses Plasmide
WO1995004826A1 (en) * 1993-08-09 1995-02-16 Institut Für Genbiologische Forschung Berlin Gmbh Debranching enzymes and dna sequences coding them, suitable for changing the degree of branching of amylopectin starch in plants
WO1995007355A1 (en) 1993-09-09 1995-03-16 Institut Für Genbiologische Forschung Berlin Gmbh Combination of dna sequences which enable the formation of modified starch in plant cells and plants, processes for the production of these plants and the modified starch obtainable therefrom
PT826061E (pt) 1995-05-05 2007-10-16 Brunob Ii Bv ''melhoramentos na composição de amido vegetal ou relacionados com o mesmo''

Also Published As

Publication number Publication date
CZ298540B6 (cs) 2007-10-31
EP0863983A2 (en) 1998-09-16
SE9601506D0 (sv) 1996-04-19
SE9601506L (sv) 1997-05-30
US20030046730A1 (en) 2003-03-06
NO982443D0 (no) 1998-05-28
CN1207125A (zh) 1999-02-03
PL326975A1 (en) 1998-11-09
WO1997020040A1 (en) 1997-06-05
AU7716596A (en) 1997-06-19
CA2238948A1 (en) 1997-06-05
US6469231B1 (en) 2002-10-22
CZ165698A3 (cs) 1999-04-14
JP2000500978A (ja) 2000-02-02
HUP9901306A3 (en) 2001-11-28
HUP9901306A1 (hu) 1999-07-28
HU222651B1 (hu) 2003-09-29
US6169226B1 (en) 2001-01-02
KR100540824B1 (ko) 2006-05-26
NO982443L (no) 1998-07-24
SE513209C2 (sv) 2000-07-31
CA2238948C (en) 2008-11-18
SK284999B6 (sk) 2006-04-06
SK72698A3 (en) 1999-06-11
CN1112443C (zh) 2003-06-25
KR19990071752A (ko) 1999-09-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL186381B1 (pl) Wyizolowana sekwencja DNA kodująca sieciujący skrobię enzym II (SBE II) ziemniaka, sekwencja aminokwasowa sieciującego skrobię enzymu II (SBE II) ziemniaka, wektor oraz sposób otrzymywania transgenicznych ziemniaków
EP0826061B1 (en) Improvements in or relating to plant starch composition
US6559356B1 (en) Nucleic acid molecules which encode proteins having fructosyl transferase activity and methods for producing long-chain inulin
AU713978B2 (en) DNA molecules that code for enzymes involved in starch synthesis,vectors, bacteria, transgenic plant cells and plants containing these molecules
Cai et al. Aberrant splicing of intron 1 leads to the heterogeneous 5′ UTR and decreased expression of waxy gene in rice cultivars of intermediate amylose content
AU715944B2 (en) Plants which synthesize a modified starch, process for the production thereof and modified starch
AU694448B2 (en) Combination of dna sequences which enable the formation of modified starch in plant cells and plants, processes for theproduction of these plants and the modified starch obtainable therefrom
US20030093834A1 (en) Nucleic acid molecules encoding wheat enzymes involved in starch synthesis
US20030138927A1 (en) Nucleic acid molecules encoding enzymes having fructosyl polymerase activity
KR20010043457A (ko) 전분 합성에 관여하는 밀 유래 효소를 암호화하는 핵산 분자
AU5729799A (en) Nucleic acid module coding for alpha glucosidase, plants that synthesize modified starch, methods for the production and use of said plants, and modified starch
WO1995004826A1 (en) Debranching enzymes and dna sequences coding them, suitable for changing the degree of branching of amylopectin starch in plants
EP0746620A1 (en) NOVEL $i(EXO)-(1$m(7)4)-$g(b)-D GALACTANASE
CN1809636B (zh) 耐热化α-葡聚糖磷酸化酶(GP)的方法
Preiss Biosynthesis of starch: ADPglucose pyrophosphorylase, the regulatory enzyme of starch synthesis structure-function relationships
AU7535294A (en) Debranching enzymes and dna sequences coding them, suitable for changing the degree of branching of amylopectin starch in plants
JP3232619B2 (ja) システイン合成酵素をコードする遺伝子
AU696436B2 (en) Polypeptide having cold-resistant pyruvate phosphate dikinase activity, DNA coding for the same, and recombinant vector and transformed plant both containing said DNA
AU2004200536A1 (en) Nucleic acid molecules
JPH06245773A (ja) システイン合成酵素をコードする遺伝子
MXPA00010988A (en) Nucleic acid molecules which code for enzymes derived from wheat and which are involved in the synthesis of starch

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20101128