PL232920B1 - Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania - Google Patents

Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania

Info

Publication number
PL232920B1
PL232920B1 PL422569A PL42256917A PL232920B1 PL 232920 B1 PL232920 B1 PL 232920B1 PL 422569 A PL422569 A PL 422569A PL 42256917 A PL42256917 A PL 42256917A PL 232920 B1 PL232920 B1 PL 232920B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
resin
siloxane
fragments
fragment
mol
Prior art date
Application number
PL422569A
Other languages
English (en)
Other versions
PL422569A1 (pl
Inventor
Anna Brol
Mirosław Soroka
Aleksandra Witkowska
Łukasz Stala
Tadeusz Witkowski
Magdalena Klockar- Ciepacz
Magdalena Klockar-Ciepacz
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL422569A priority Critical patent/PL232920B1/pl
Publication of PL422569A1 publication Critical patent/PL422569A1/pl
Publication of PL232920B1 publication Critical patent/PL232920B1/pl

Links

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego o wzorze ogólnym 1, które są przeznaczone do stosowania jako preparaty do nadania powierzchniom materiałów takich jak szkło, piasek, krzemionk a, beton, metale, tlenki metali i elementom z nich wytworzonych, powinowactwa do wody, kationów i anionów.
Przedmiotem wynalazku jest również sposób wytwarzania żywic siloksanowo-poliamfolitowych pochodnych 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego.
Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego nie były dotychczas opisane w literaturze naukowo-technicznej. Wprawdzie znane są siloksany funkcjonalizowane aminokwasami, które są amfolitami polisiloksanowymi, jednak część kationowa i część anionowa, nie są w nich związane w łańcuch polimerowy, a stanowią odrębne grupy funkcyjne. Na przykład w opisie patentowym WO 2009031593 są wymienione siloksany, które mają w swojej strukturze fragmenty kwasu iminodioctowego. Substancje te otrzymuje się w reakcji 3-aminopropylosiloksanu z bromooctanem t-butylu. W publikacji Khairova, R. R. i wsp. Russian Chemical Bulletin 2016, 65 (5), 1285-1288, są opisane oligomery siloksanów z grupami aminoalkilofosfonowymi, które otrzym uje się w reakcji całkowicie trimetylosililowanej pochodnej 3-(trihydroksysililo)propyloaminy z acetonem lub cyklopentanonem i odpowiednim fosfonianem dialkilowym. Nieznane są natomiast polisiloksany, w których część kationowa i część anionowa stanowiły by razem strukturę polimeryczną.
Istotą rozwiązania według wynalazku są żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego o wzorze ogólnym 1, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, w którym n i p mogą być takie same lub różne i ozna-czają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w żywicy siloksanowopoliamfolitowej, natomiast C oznacza fragment struktury siloksanu z podstawnikiem 3-aminopropylowym w żywicy, z oznacza liczbę takich fragmentów w części polisiloksanowej żywicy, a wolne miejsca fragmentu A mogą wiązać się tylko z wolnymi miejscami na atomach azotu we fragmentach B i C.
Sposób wytwarzania żywic siloksanowo-poliamfolitowych pochodnych 3-aminopropylosiioksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego, przedstawionych wzorem ogólnym 1, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast C oznacza fragment struktury siloksanu z podstawnikiem 3-aminopropylowym w żywicy, z oznacza liczbę takich fragmentów w części polisiloksanowej żywicy, a wolne miejsca fragmentu A mogą wiązać się tylko z wolnymi miejscami na atomach azotu we fragmentach B i C, polega na tym, że dwie części molowe grup -NH- pochodzących z 3-(trialkoksysililo)propyIoaminy i polialkilenopoliaminy wybranej ze zb ioru zawierającego: 1,6-diaminoheksan, bis(heksametyleno)triaminę, dietylenotriaminę, N-(3-aminopropylo)-1,3-diaminopropan, N-(2-aminoetylo)-1,3-diaminopropan, N,N'-bis(3-aminopropylo)etylenodiaminę, trietylenotetraminę, tetraetylenopentaminę i pentaetylenoheksaminę, poddaje się reakcji z jedną częścią molową kwasu fosfinowego i co najmniej dwiema częściami molowymi formaldehydu w postaci formaliny lub paraformu, a reakcję prowadzi się w temperaturze 293-373 K, w wodzie, wobec takiej liczby części molowych HCl, która zapewnia kwaśne środowisko reakcji, a którą oblicza się ze wzoru: nHCl = nN - nP + w*nP, w którym nHCl oznacza liczbę moli HCl, nN oznacza sumę liczby moli atomów azotu w 3-trialkoksysililopropyloaminie i w polialkilenopoliaminie, nP oznacza liczbę moli kwasu fosfinowego, a w jest ułamkiem w zakresie od 0,2 do 1,2, aż do przereagowania substratów i utworzenia żywicy siloksanowo-poliamfolitowej pochodnej 3-aminopropy-losiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego, która wydziela się z mieszaniny w postaci żelu, a żywicę oczyszcza się w dowolny znany sposób, korzystnie żywicę oddziela się od roztworu, przemywa wodą, a następnie suszy w temperaturze poniżej 350 K.
PL 232 920 B1
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest w przykładach wykonania.
P r z y k ł a d 1
Żywica poliamfolitowa z dietylenotriaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:2:7:14. Do mieszaniny 3-(trietoksysililo)propyloaminy (2,21 g, 0,010 mol) w wodzie (2,5 cm3) dodaje się podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej dietylenotriaminę (1,17 g, 0,010 mol). Następnie wkrapla się 50% roztwór kwasu fosfinowego w wodzie (3,63 cm3, 0,035 mol), 12 M kwas solny (1,0 cm3, 0,012 mol), po czym dodaje się paraform (2,10 g, 0,070 mol) i ogrzewa się w temperaturze 373 K przez godzinę (po około 10 minutach mieszanina żeluje). Po 1 godzinie ogrzewania powstaje pomarańczowy żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<20), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,14d, J=671Hz), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR również nie widać żadnych sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,49q (-OCH2, J=7Hz), 1,03t (-OCCH3, J=7Hz)]. Osad suszy na powietrzu do osiągnięcia stałej masy. Otrzymuje się około 5,72 g pomarańczowej żywicy ABr560, której reprezentatywną strukturę meru o wzorze sumarycznym C3oH69NsOi7P7Si2 ilustruje wzór 2.
P r z y k ł a d 2
Żywica poliamfolitowa z bis(heksametyleno)triaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 10:4:29:58. Do mieszaniny 3-(trietoksysililo)propyloaminy (2,21 g, 0,010 mol) w wodzie (6,0 cm3) dodaje się podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej bis(heksametyleno)triaminę (2,69 g, 0,0125 mol). Następnie wkrapla się 50% roztwór kwasu fosfinowego w wodzie (3,77 cm3, 0,036 mol), 12 M kwas solny (2,0 cm3, 0,024 mol), po czym dodaje się paraform (2,18 g, 0,073 mol) i ogrzewa się w temperaturze 373 K przez godzinę (po około 5 minutach mieszanina żeluje). Po 1 godzinie ogrzewania powstaje pomarańczowy żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<1 5), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (5,21 d, J=669Hz), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR widać jedynie resztkowe sygnały pochodzące od oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a największymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,48q (-OCH2, J=7Hz), 1,02t (-OCCH3, J=7Hz)]. Osad suszy na powietrzu do osiągnięcia stałej masy. Otrzymuje się około 7,82 g pomarańczowej żywicy ABr562.
P r z y k ł a d 3
Żywica poliamfolitowa z dietylenotriaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:1:6:12. Do wody (2,0 cm3) podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej wkrapla się 50% kwas fosfinowy (3,15 cm3, 0,030 mol), 12 M kwas solny (3,15 cm3, 0,030 mol) i dodaje się paraform (1,80 g, 0,060 mol). Następnie do mieszaniny wkrapla się dietylenotriaminę (1,032 g, 0,010 mol) oraz 3-(trietoksysililo)propyloaminę (1,11 g, 0,005 mol) i ogrzewa się w temperaturze 343 K. przez 1,5 godziny (po około 0,5 godziny mieszanina żeluje). Dodaje się jeszcze jedną porcję paraformu (1,80 g, 0,060 mol) i ogrzewa 1,5 godziny. Tworzy się bezbarwny twardy żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym z roztworu znad osadu mierzy się widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<20), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,38d, J=654Hz), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR również nie widać żadnych sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,50q (-OCH2, J=7Hz), 1,04t (-OCCH3, J=7Hz)]. Żywicę TWi122 suszy się na powietrzu do osiągnięcia stałej masy.
P r z y k ł a d 4
Żywica poliamfolitowa z bis(heksametyieno)triaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:2:7:14. Do wody (4,2 cm3) podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej wkrapla się 50% kwas fosfinowy (2,3 cm3, 0,0175 mol), 12 M kwas solny (0,5 cm3, 0,0060 mol) i dodaje się paraform (1,1 g, 0,035 mol). Następnie do mieszaniny dodaje się bis(heksametyleno)triaminę (1,075 g, 0,0050 mol) oraz 3-(trietoksysililo)propyloaminę
PL 232 920 B1 (1,11 g, 0,0050 mol) i ogrzewa się w temperaturze 343 K przez 1,5 godziny (po około 0,5 godziny mieszanina żeluje). Po 1,5 godziny ogrzewania powstaje bezbarwny żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<5), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,20d, J=651 Hz), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR również nie widać żadnych sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,48q (-OCH2, J=7Hz), 1,01t (-OCCH3, J=7Hz)]. Żywicę TWi123 suszy się na powietrzu do osiągnięcia stałej masy.
P r z y k ł a d 5
Żywica poliamfolitowa z tetraetylenopentaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:1:8:16. Do wody (8,0 cm3) podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej wkrapla się 50% kwas fosfinowy (5,28 cm3 0,040 mol) i 12 M kwas solny (2,3 cm3, 0,023 mol), dodaje się paraform (2,5 g, 0,083 mol) i wkrapla się tetraetylenopentaminę (1,91 cm3, 0,010 mol) oraz 3-(trietoksysililo)propyloaminę (1,11 g, 0,0050 mol). Mieszaninę ogrzewa się w temperaturze 343 K przez 1,5 godziny (po około 0,5 godziny mieszanina żeluje). Po 1,5 godziny ogrzewania powstaje ciemnopomarańczowy zwarty żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<20), a na widmie widać tylko niewielkie poszerzone sygnały pochodzące od rozpuszczalnych w wodzie oligomerów, a głównym sygnałem jest sygnał pochodzący od kwasu fosfonowego (4,73d, J=663Hz), co dowodzi, że niemal wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR widać jeszcze poszerzone sygnały pochodzące od oligomerów rozpuszczalnych w wodzie przy 3.8 ppm-2.8 ppm, 1,9 ppm-1,7 ppm i 0,7 ppm-0,5 ppm. Największymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,51q (-OCH2, J=7Hz), 1,03t (-OCCH3, J=7Hz)]. Żywicę TWi125 suszy się na powietrzu do osiągnięcia stałej masy.
P r z y k ł a d 6
Żywica poliamfolitowa z tetraetylenopentaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 1:1:3:6. Do wody (2,4 cm3) podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej wkrapla się 50% kwas fosfinowy (1,56 cm3, 0,015 mol) i 12 M kwas solny (0,75 cm3, 0,0090 mol), dodaje się paraform (0,9 g, 0,030 mol), wkrapla się 1,6-diaminoheksan (0,58 g, 0,0050 mol), po czym 3-(trietoksysililo)propyloaminę (1,11 g, 0,0050 mol). Mieszaninę ogrzewa się w temperaturze 343 K przez 2 godziny (po około godzinie mieszanina żeluje). Po 2 godzinach ogrzewania otrzymuje się bezbarwny żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<10), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,61 d, J=660Hz), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR widać śladowe sygnały pochodzące od oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a największymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,49q (-OCH2, J=7Hz), 1,03t (-OCCH3, J=7Hz)]. Żywicę AWi134 suszy się na powietrzu do osiągnięcia stałej masy.
P r z y k ł a d 7
Żywica poliamfolitowa z bis(heksametyleno)triaminy, 3-trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:3:8:16. Do wody (2,4 cm3) podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej wkrapla się 50% kwas fosfinowy (1,82 cm3, 0,018 mol) i 12 M kwas solny (1,08 cm3, 0,013 mol). Następnie do mieszaniny dodaje się bis(heksametyleno)triaminę (0,72 g, 0,003 mol), dodaje się paraform (l,05 g, 0,035 mol), po czym wkrapla się 3-(trietoksysililo)propyloaminę (1,11 g, 0,0050 mol) i ogrzewa się w temperaturze 343 K mieszając przez 3 godziny (po około 1,5 godziny mieszanina żeluje). Po 3 godzinach ogrzewania otrzymuje się bezbarwny żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<7), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,89d, J 665Hz) i niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu hydroksymetylofosfinowego [29,88dt (-OCH2PH, JHP=555HZ, JHCP nieozn.)], co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR nie widać żadnych
PL 232 920 B1 sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,54q (-OCH2, J=7Hz), 1,04t (-OCCH3, J=7Hz)]. Żywicę AWi136 suszy się na powietrzu do osiągnięcia stałej masy.
P r z y k ł a d 8
Żywica poliamfolitowa z N,N’-bis(3-aminopropylo)etylenodiaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 1:1:4:8. Do wody (2,7 cm3) podczas mieszania i chłodzenia na łaźni lodowo-wodnej wkrapla się 50% kwas fosfinowy (2,08 cm3, 0,020 mol) i 12 M kwas solny (1,41 cm3, 0,017 mol), dodaje się paraform (1,20 g, 0,040 mol), wkrapla się N,N'bis(3-aminopropyIo)etylenodiaminę (0,87 g, 0,005 mol) i 3-(trietoksysililo)propyloaminę (1,11 g, 0,0050 mol). Mieszaninę ogrzewa się w temperaturze 343 K przez 2 godziny (po około 0,5 godziny żeluje). Po 2 godzinach ogrzewania otrzymuje się pomarańczowy żel, z którego pobiera się próbkę (0,10 g), dodaje się wodę (0,60 cm3), po czym pobiera się roztwór znad osadu i mierzy widma 1H oraz 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<10), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,75d, J=663 Hz), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR również nie widać żadnych sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,52q (-OCH2, J=7,1Hz), 1,05t (-OCCH3, J=7,1Hz)]. Żywicę TWi138 suszy się na powietrzu do osiągnięcia stałej masy.
P r z y k ł a d 9
Żywica poliamfolitowa z bis(heksametyleno)triaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:3:8:16. Do roztworu bisheksametylenotriaminy (4,3 g, 0,020 mol) i 3-(trietoksysililo)propyloaminy (2,21 g, 0,010 mol) w wodzie (6 cm3) wkrapla się ostrożnie w temperaturze około 300-310 K 12 M kwas solny (3,33 cm3, 0,040 mol), po czym 50% kwas fosfinowy (6,23 cm3, 0,060 mol), a następnie 37% formalinę (9,67 cm3, 0,130 mol), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 345 K przez 30 minut (po 10 minutach mieszanina żeluje). Następnie pobiera się 0,10 g mieszaniny reakcyjnej i dodaje wodę (0,60 cm3), a następnie mierzy widmo 31P NMR. Widmo 31P NMR tego poliamfolitu w wodzie ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<5), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (4,14d, J=671Hz) i śladowych sygnałów pochodzących od ugrupowania >NCH2PH (10,29dt, JHP=549Hz, JHCP nieozn.), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR również nie widać żadnych sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,48q (-OCH2, J=7Hz), 1,00t (-OCCH3, J=7Hz)]. Osad suszy na powietrzu do osiągnięcia stałej masy. Otrzymuje się około 15,5 g biało-żółtej żywicy LSt104.
P r z y k ł a d 10
Żywica poliamfolitowa z bis(heksametyleno)triaminy, 3-(trietoksysililo)propyloaminy, kwasu fosfinowego i formaldehydu w stosunku molowym 2:3:8:16. Do roztworu bisheksametylenotriaminy (2,15 g, 0,010 mol), 3-(trietoksysililo)propyloaminy (1,10 g, 0,05 mol) w wodzie (3 cm3) wkrapla się ostrożnie w temperaturze około 300-310 K 12 M kwas solny (1,66 cm3, 0,020 mol), po czym 50% kwas fosfinowy (3,11 cm3, 0,030 mol), a następnie 37% formalinę (4,82 cm3, 0,0065 mol), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 345 K przez 2 godziny (po 10 minutach mieszanina żeluje). Następnie pobiera się 0,10 g mieszaniny reakcyjnej, dodaje 0,60 cm3 wody i mierzy widmo 31P NMR, Widmo 31P NMR tego poliamfolitu ma bardzo niski stosunek sygnału do szumów (<5), a na widmie nie ma już żadnych sygnałów oprócz niewielkich sygnałów pochodzących od kwasu fosfonowego (5,0d, J nieozn.), co dowodzi, że wszystkie substraty wbudowały się w struktury poliamfolitu. Na widmie 1H NMR również nie widać żadnych sygnałów pochodzących od substratów i oligomerów rozpuszczalnych w wodzie, a jedynymi sygnałami na widmie są ostre sygnały pochodzące od etanolu [3,46q (-OCH2, J=7Hz), 1,02t (-OCCH3, J=7Hz)] i sygnału pochodzącego od metanolu (3,17 s), który jest stabilizatorem formaliny. Osad suszy na powietrzu do osiągnięcia stałej masy. Otrzymuje się około 6,71 g pomarańczowo-żółtej żywicy LSt1 05.

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego o wzorze ogólnym 1, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur am inopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast C oznacza fragment struktury siloksanu z podstawnikiem 3-aminopropylowym w żywicy, z oznacza liczbę takich fragmentów w części polisiloksanowej żywicy, a wolne miejsca fragmentu A mogą wiązać się tylko z wolnymi miejscami na atomach azotu we fragmentach B i C.
  2. 2. Sposób wytwarzania żywic siloksanowo-poliamfolitowych pochodnych 3-(trialkoksysililo)propyloaminy, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego o wzorze ogólnym 1, w którym A oznacza fragment struktury kwasu dimetylofosfinowego, x oznacza liczbę takich fragmentów w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast B oznacza fragment struktury polialkilenopoliaminy w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, w którym n i p mogą być takie same lub różne i oznaczają liczby całkowite od 2 do 12, natomiast q jest liczbą struktur aminopolialkenowych i wynosi od 2 do 6, y oznacza liczbę fragmentów poliaminopolialkenowych w żywicy siloksanowo-poliamfolitowej, natomiast C oznacza fragment struktury siloksanu z podstawnikiem 3-aminopropylowym w żywicy, z oznacza liczbę takich fragmentów w części polisiloksanowej żywicy, a wolne miejsca fragmentu A mogą wiązać się tylko z wolnymi miejscami na atomach azotu we fragmentach B i C, znamienny tym, że dwie części molowe grup -NH- pochodzących z 3-(trialkoksysililo)propyloaminy i polialkilenopoliaminy, poddaje się reakcji z jedną częścią molową kwasu fosfinowego i co najmniej dwiema częściami molowymi formaldehydu w postaci formaliny lub paraformu, a reakcję prowadzi się w temperaturze 293-373 K, w wodzie, wobec HCI aż do przereagowania substratów i utworzenia żywicy siloksanowo-poliamfolitowej.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że polialkilenopoliaminę wybiera się ze zbioru zawierającego, 1,6-diaminoheksan, bis(heksametyleno)triaminę, dietylenotriaminę, N-(3-aminopropylo)-1,3-diaminopropan, N-(2-aminoetylo)-1,3-diaminopropan, N,N'-bis(3-aminopropylo)etylenodiaminę, trietylenotetraminę, tetraetylenopentaminę i pentaetylenoheksaminę.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że liczbę części molowych HCl oblicza się ze wzoru: nHCl = nN - nP + w*nP, w którym nHCl oznacza liczbę moli HCI, nN oznacza sumę liczby moli atomów azotu w 3-triaIkoksysililopropyloaminie i w polialkilenopoliaminie, nP oznacza liczbę moli kwasu fosfinowego, a w jest ułamkiem w zakresie od 0,2 do 1,2.
PL422569A 2017-08-16 2017-08-16 Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania PL232920B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL422569A PL232920B1 (pl) 2017-08-16 2017-08-16 Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL422569A PL232920B1 (pl) 2017-08-16 2017-08-16 Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL422569A1 PL422569A1 (pl) 2018-03-12
PL232920B1 true PL232920B1 (pl) 2019-08-30

Family

ID=61534629

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL422569A PL232920B1 (pl) 2017-08-16 2017-08-16 Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL232920B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL422569A1 (pl) 2018-03-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bunker et al. Structure of phosphorus oxynitride glasses
RU2011116292A (ru) Полимер и способ его получения
AU2005281698B2 (en) Polyphosphate derivative of a 1,3,5-triazine compound, method for producing the same and its use
EP2776508A1 (en) Flame retardant polyamide compositions
PL232920B1 (pl) Żywice siloksanowo-poliamfolitowe pochodne 3-aminopropylosiloksanu, polialkilenopoliamin i kwasu dimetylofosfinowego oraz sposób ich wytwarzania
Samthong et al. Synthesis and characterization of organic/inorganic epoxy nanocomposites from poly (aminopropyl/phenyl) silsesquioxanes
JP2015218170A (ja) 尿素含有シランの製造方法
Tundidor‐Camba et al. Polyamides obtained by direct polycondesation of 4‐[4‐[9‐[4‐(4‐aminophenoxy)‐3‐methyl‐phenyl] fluoren‐9‐YL]‐2‐methyl‐phenoxy] aniline with dicarboxylic acids based on a diphenyl‐silane moiety
Riedelsberger et al. Polymeric aminomethylphosphonic acids-1. Synthesis and properties in solution
Yang et al. Synthesis of ladder-like polyphenylsilsesquioxanes with fairly high regularity using 1, 2-ethylenediamine as endo-template
JP2011098939A (ja) 完全縮合オリゴシルセスキオキサン及びそれらの製造方法
Weißhuhn et al. Ternary organic–inorganic nanostructured hybrid materials by simultaneous twin polymerization
PL236437B1 (pl) Poliamfolity pochodne żywic 3-[[[2-[bis(fosfinometylo)amino]etylo](fosfinometylo)]amino]propylosiloksanowych oraz sposób ich wytwarzania
JP3625912B2 (ja) ケイ素含有共重合ポリマー及びその製造方法
PL223359B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i kwasu aminometylofosfonowego oraz sposób ich wytwarzania
Soran et al. Phosphorus-containing polycarbosilazanes: Synthesis via dehydrocoupling catalysis and flame-retardant properties
PL236438B1 (pl) Poliamfolity pochodne żywic 3-[bis(fosfinometylo)amino]propylosiloksanowych oraz sposób ich wytwarzania
PL215369B1 (pl) Sposób wytwarzania poliamfolitów dimetylofosfinowych w postaci żywic polimerowych
PL231258B1 (pl) Sposób wytwarzania per(fosfinometylowanych) polialkilenopoliamin
TWI654195B (zh) 含脲之氫硫基矽烷,其製備方法及其用途
PL210341B1 (pl) Sposób wytwarzania nowych poliamfolitów w postaci nierozpuszczalnych w wodzie żywic polimerowych
PL223385B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i kwasu iminobis(metylofosfonowego) oraz sposób ich wytwarzania
PL223383B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i fenyloalaniny oraz sposób ich wytwarzania
PL223386B1 (pl) Poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i N-fosfonometyloglicyny oraz sposób ich wytwarzania
PL221471B1 (pl) Chiralne poliamfolity pochodne kwasu dimetylofosfinowego, polialkilenopoliamin i waliny oraz sposób ich wytwarzania