CZ20011183A3 - Způsob amplifikace a sekvenování nukleové kyseliny - Google Patents

Způsob amplifikace a sekvenování nukleové kyseliny Download PDF

Info

Publication number
CZ20011183A3
CZ20011183A3 CZ20011183A CZ20011183A CZ20011183A3 CZ 20011183 A3 CZ20011183 A3 CZ 20011183A3 CZ 20011183 A CZ20011183 A CZ 20011183A CZ 20011183 A CZ20011183 A CZ 20011183A CZ 20011183 A3 CZ20011183 A3 CZ 20011183A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
nucleic acid
sequence
colony
primers
templates
Prior art date
Application number
CZ20011183A
Other languages
English (en)
Inventor
Céline Adessi
Eric Kawashima
Pascal Mayer
Jean-Jacques Mermod
Gerardo Turcatti
Original Assignee
Applied Research Systems Ars Holding N. V.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Applied Research Systems Ars Holding N. V. filed Critical Applied Research Systems Ars Holding N. V.
Publication of CZ20011183A3 publication Critical patent/CZ20011183A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1034Isolating an individual clone by screening libraries
    • C12N15/1068Template (nucleic acid) mediated chemical library synthesis, e.g. chemical and enzymatical DNA-templated organic molecule synthesis, libraries prepared by non ribosomal polypeptide synthesis [NRPS], DNA/RNA-polymerase mediated polypeptide synthesis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6834Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C12Q1/6837Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686Polymerase chain reaction [PCR]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869Methods for sequencing
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869Methods for sequencing
    • C12Q1/6874Methods for sequencing involving nucleic acid arrays, e.g. sequencing by hybridisation

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

Způsoby amplifikace a sekvenování nukleové kyseliny
Oblast techniky
Vynález popisuje amplifikaci nukleové kyseliny a její sekvenování. Specificky se vynález vztahuje k metodám amplifikace a sekvenování nukleové kyseliny a k přístrojům a sadám, které jsou použitelné při amplifikaci a sekvenování ve velkém měřítku s velkým množstvím zpracovávaného materiálu.
Dosavadní stav techniky
Analýza sekvence nukleové kyseliny je základem při mnoha aktivitách v biologii, biotechnologii a v medicíně. Schopnost stanovit sekvenci nukleové kyseliny se stává důležitějším se vzrůstajícími potřebami stanovit sekvence velkých genomů u lidí a jiných vyšších organizmů a také při detekci polymorfizmu jediného nukleotidu a testování a monitorování exprese genu. Genetické informace získané sekvenováním se mohou použít v mnoha oblastech, jako je například objev cílených léků a diagnóza onemocnění a posouzení nebezpečí a identifikace organizmu a jeho charakterizace.
Prvním krokem takového použití je stanovení aktuálního chemického prostředku nukleových kyselin, přesněji stanovení výskytu čtyř bází, které obsahuje nukleová kyselina. Jsou to adenin (A) , cytosin (C) , guanin (G) a thymin (T) nebo uráčil (U). Takové použiti však vyžaduje sekvenování nukleových kyselin ve velkém měřítku, což činí metody sekvenování vhodné pro zpracování velkého množství materiálu velmi žádané.
Metody sekvenování nukleové kyseliny se popisují v dosavadním stavu techniky. Dvě metody nejčastěji používané jsou metody chemického štěpení podle Maxama a Gilberta, které vznikají na základě specifické chemie baží a v současné době je velmi populární metoda sekvenování podle Sangera, která je založena na principu zakončení enzymatického řetězce a používá se jako rutinní metoda při sekvenaci nukleové kyseliny.
Při sekvenování podle Sangera se každá sekvenovaná nukleové kyselina replikuje v reakci, která obsahuje polymerázu DNA, deoxynukleotidové trifosfáty (dNTP) a dideoxynukleotidové trifosfáty (ddNTP). DNA polymeráza může začlenit dNTP a ddNTP do rostoucího řetězce DNA. V případě, že se ddNTP začlení, 3'konec rostoucího řetězce DNA nevykazuje hydroxylovou skupinu a neexistuje substrát pro prodloužení řetězce, tak se zakončí řetězec nukleové kyseliny. Protože jedna určitá reakce zahrnuje jeden typ ddNTP, vzniká směs nukleových kyselin s různou délkou, přičemž všechny nukleové kyseliny jsou zakončeny ddNTP. Obvykle se vytvoří oddělené reakce v případě každého ze čtyř typů ddNTP a vzniklá distribuce délek fragmentů nukleových kyselin se analyzuje elektroforézou na denaturačním gelu (kde se fragmenty nukleové kyseliny rozdělí podle své velikosti) nebo hmotnostní spektroskopií. Je obvyklé, aby se jeden nebo více deoxynukleotidtrifosfátů obsažený v reakční směsi značil, což umožňuje detekci fragmentů různých délek.
S hora popsané metody jsou nevýhodné, protože každá sekvenovaná nukleová kyselina se musí zpracovat jednotlivě během biochemické reakce. Gelová elektroforéza je nepohodlná, pracná a pomalá, dokonce, když se použije kapilární elektroforéza, není úplně vhodná pro sekvenování ve velkém měřítku, kdy se zpracovává velké množství materiálu. Navíc následné stanovení sekvence je obtížné. Hmotnostní spektroskopie je stále na úrovni prototypu a vyžaduje velmi drahé zařízení a každý vzorek se musí analyzovat jednotlivě.
Jeden způsob zvýšení množství zpracovávaného materiálu je paralelní způsob zpracování vzorků. Metody použití hybridizace
DNA sond nukleové kyseliny umožňují sdružování procesu během • · • 44 · · · »··· Λ ···· ····· ·· · · · · · · ......
· ········ ······ · · · · · · ··· biochemických a elektroforetických procesů, přičemž ale rostou náklady a délka trvajících manipulací.
Dále jsou dostupné metody založené na čipech DNA a DNA hybridizaci (popisuje se v publikaci Thomas and Burke Exp. Opin. Ther. Patents 8: 503-508 (1998)). Tyto metody nejsou výhodné, protože v případě každé aplikace se musí navrhnout a vyro čip DNA. Je to dlouho trvající operace a cena jednoho čipu klesne pouze tehdy, jestliže je nutné vyrobit velké množství čipů. Čipy nelze použít více jak jednou a pro jeden vzorek nukleové kyseliny je určen jeden čip. To je nevýhodné, protože, má-li se diagnostikovat pacient, měly by se jeho vzorky dát zpracovat v každém okamžiku. Nakonec rozsah sekvence, která se má analyzovat za použití takového čipu, je omezen na méně než 100 000 baží a je také omezen druhem použití, jako je například genotypování DNA a profily exprese genů.
Během nejznámějších metod analýzy sekvence nukleové kyseliny, amplifikace nukleových kyselin je nutný krok za účelem získání nukleové kyseliny v množství, které je dostatečné pro analýzu.
Několik metod amplifikace nukleových kyselin je dobře známých v oboru a jsou dokumentovány v dosavadním stavu techniky. Nukleové kyseliny se například amplifikují začleněním nukleové kyseliny do konstrukce expresívního vektoru. Takové vektory se pak mohou začlenit do vhodné biologické hostitelské buňky a vektor DNA zahrnující nukleovou kyselinu se pomnoží kultivací biologického hostitele za použití dobře zavedeného protokolu.
Nukleové kyseliny amplifikované za použití uvedených metod se mohou izolovat z hostitelských buněk za použití metod, které jsou dobře známy v oboru. Takové metody jsou však • · časově náročné, pracné a těžko nevýhodné, protože jsou automatizovatelné.
Metoda amplifikace DNA pomocí PCR se popisuje od roku 1985 (v popisuje se v publikaci Saiki et al., Science 230, 13501354) a je nyní metodou velmi známou a dobře zdokumentovanou. Cílový fragment nukleové kyseliny se může amplifikovat za použití dvou krátkých oligonukleotidových sekvencí (obvykle se nazývají primery), které jsou specifické pro známé sekvence, které lemují sekvenci DNA, jenž se amplifikuje. Primery hybridizují s opačnými řetězci dvouřetězcového fragmentu DNA po té, co se denaturovaly a jsou orientovány tak, že dochází k syntéze DNA v oblasti mezi dvěma primery pomocí DNA polymerázy, přičemž sekvence primerů se prodlužují začleněním nukleotidů do sekvence pomocí polymerázy. Extenzní reakce vytvářejí dvě dvouřetězcové cílové oblasti, kdy každá se opět denaturuje a je tak připravena pro další cyklus hybridizace a extenze. Třetí cyklus produkuje dvě dvouřetězcové molekuly, které obsahují cílovou oblast ve dvouřetězcové formě. Pomocí opakovaných cyklů teplotní denaturace, hybridizace primerů a extenze dochází k rychlé exponenciální akumulaci specifického cílového fragmentu DNA. Tato metoda probíhá v roztoku a amplifikovaný fragment cílové nukleové kyseliny se izoluje z roztoku metodami, které jsou dobře známy v oboru. Je to například gelová elektroforéza.
Popisují se metody, které používají jeden primer zachycený na povrchu podkladu ve spojení s volnými primery obsaženými v roztoku. Tyto metody umožňují současnou amplifikaci a zachycení produktu PCR na povrchu podkladu (popisuje se v publikaci Oroskar, A.A. et al., Clinical Chemistry 42: 1547 (1996)) .
Dokumenty WO 96/04404 a WO 98/36094 (Mosaic Technologies, lne. et al.) popisuji způsob detekce cílové nukleové kyseliny ve vzorku, který obsahuje cílovou nukleovou kyselinu. Metoda zahrnuje vyvolání amplifikace cílové nukleové kyseliny založené na PCR, pouze když cílová nukleová kyselina je přítomna v testovaném vzorku. V případě amplifikace cílové sekvence jsou oba primery připojeny na pevný povrch, což zaručuje, že amplifikované sekvence cílové nukleové kyseliny jsou také zachyceny na pevném podkladu. Amplifikační postup popsaný v tomto dokumentu se také někdy nazývá metoda „bridge amplification. V případě uvedené metody se specificky navrhnou dva primery, jako pro běžné PCR, přičemž primery lemují určitou cílovou sekvenci DNA, která se amplifikuje. Tak v případě, že určitá cílová nukleová kyselina je přítomna ve vzorku, pak se cílová nukleová kyselina může hybridizovat s primery postupu a amplifikovat se pomocí PCR. První krok při tomto amplifikace PCR je hybridizace cílové nukleové kyseliny s prvním specifickým primerem zachyceným na podpoře
První amplifikační produkt, který je komplementární s cílovou nukleovou kyselinou se Při vystavení cílová nukleová extenzí sekvence primeru 1.
denaturačním podmínkám se uvolní může se pak účastnit dalších hybridizačních pak tvoří podkladu kyselina a reakcí se sekvencemi primeru 1, které jsou zachyceny na podkladu. První amplifikační produkt, který je zachycen na podkladu se pak může hybridizovat s druhým specifickým primerem („primer 2) zachyceným na podkladu a druhý amplifikační produkt obsahující sekvenci nukleové kyseliny komplementární s prvním amplifikačním produktem se může tvořit extenzí sekvence primeru 2 a je také zachycený na podkladu. Tak cílová nukleová kyselina prvního a druhého amplifikovaného produktu je schopna se podílet na pluralitě hybridizačního procesu a procesu prodloužení, která je limitována pouze přítomností cílové nukleové kyseliny a počtem sekvencí primeru 1 a primeru 2 a výsledek je počet kopii cílové sekvence připojené na povrchu.
• ·
Protože při tomto procesu se tvoři amplifikační produkty pouze, když je přítomna cílová nukleové kyselina, podklad se monitoruje za účelem zjištění, zda je přítomen jeden nebo více amplifikačních produktů, což indikuje přítomnost nebo nepřítomnost specifické cílové sekvence.
Mozaiková metoda se může použít k dosažení množství multiplexování tak, že několik různých cílových sekvencí nukleové kyseliny se může amplifikovat současně sestavením různých sad pro první a druhý primer, které jsou specifické pro každou odlišnou sekvenci cílové nukleové kyseliny v různých oblastech pevného povrchu.
Nevýhodou mozaikového postupu je to, že jak sekvence prvního tak druhého primeru jsou specifické pro každou amplifikovanou cílovou nukleovou kyselinu. To je možné použití pouze při amplifikaci známé sekvence. Navíc množství materiálu je omezeno počtem různých sad specifických primerů a následně amplifikované molekuly cílové nukleové kyseliny, které se mohou sestavit do odlišných oblastí daného pevného podkladu a uspořádání nukleových kyselin do vzdálených oblastí je časové náročné. Mozaikový proces vyžaduje, aby se dva různé primery homologicky zachytily svými 5'konci k podkladu ve vzdálených oblastech, kde se tvoří amplifikovaný produkt. Toho se nedá dosáhnout současně dostupnou technologií výroby čipů DNA a je nutné použít některé způsoby dispenzace vzorků. Tak hustota, které lze dosáhnout tímto přístupem vykazuje některá omezení jako jiné klasické technologie uspořádání. Další omezení je rychlost monitorování jednotlivých vzdálených oblastí na podkladu za účelem zjištění přítomnosti nebo nepřítomnosti amplifikovaných cílových nukleových kyselin.
Uspořádání vzorků DNA se v klasickém případě provede na membránách (například nylonové nebo nitrocelulózové membrány). Použití vhodné robotiky (například Q-bot™, Genetix Ltd, Dorset • ···· · · ·· ·· • · · · · · · ···· · ···· ·
BH23 3TG UK) umožňuje získat hustotu až 10 vzorků/mm2. Při takových metodách se DNA kovalentně váže na membránu fyzikálněchemickým způsobem (například UV radiací) a je tak možné uspořádat velké molekuly DNA (například molekuly, které jsou tvořeny více jak 100 nukleotidy), stejně jako menší molekuly DNA, jako jsou oligonukleotidové primery.
Jsou známy také jiné postupy, které umožňují získat uspořádání s vyšší přístupy založené na s klíčkách, kde se hustotou oligonukleotidů. Například předem uspořádaných skleněných podložních uspořádání reaktivních použitím technologie „ink-jet (popisuje ploch získalo v publikaci se
Blanchard,
A.
P. and L. Hood,
Microbial and
Comparative
Genomics,
1:
225 (1996) nebo uspořádání reaktivních polyakrylových gelů (popisuje se v publikaci Yershov, G et al., Proceedengs of the National Academy of Science, USA, 93:
4913-4918 (1996)) umožňuje teoreticky uspořádat až 100 vzorků na jednom mm2.
Vyšší hustota vzorků je stále dosažitelná použitím čipů DNA (popisuje se v publikaci Fodor, S. P. A. et al., Science 251: 767 (1991)) . V současné době se v oboru molekulární biologie používají čipy s 625 oligonukleotidovými sondami na 1 mm2 (popisuje se v publikaci Lockhart, D. J. et al., Nátuře Biotechnology 14: 1675 (1996)). Udává se, že je možné dosáhnout hustoty sond až 250 000 vzorků na 1 cm2 (2 500/mm2) (popisuje se v publikaci Chee, M. et al., Science 274: 610 (1996) ) . Avšak na jediný čip je možné uspořádat až 132 000 různých nukleotidu, jehož plocha je přibližně 2,5 cm . Je důležité poznamenat, že tyto čipy se vyrábějí takovým způsobem, že 3 ΌΗ konec oligonukleotidů je zachycen na pevném povrchu. To znamená, že oligonukleotidy zachycené na čipech takovým způsobem se nemohou použít jako primery při amplifikaci PCR.
φ φ
Je důležité poznamenat, že v případě, kdy produkty PCR se mohou zachytit na zařízení, kde probíhá amplifikace, hustota výsledného uspořádání produktů PCR je omezena dostupným zařízením. Současně dostupné zařízení jsou pouze mikrotitrační destičky, které obsahují 96 prohlubní. Tyto destičky umožňují získat pouze přibližně 0,02 vzorků produktů PCR na 1 mm2 povrchu.
Například za použití komerčně dostupného systému Nucleolink™ (Nunc A/S, Roskilde, Dánsko) je možné dosáhnout současné amplifikace a uspořádání vzorků při hustotě 0,02 vzorků na 1 mm2 povrchu prohlubní, kde byly zachyceny oligonukleotidové primery. Technické problémy však způsobují, že není pravděpodobné, že tento přístup umožní podstatné zvýšení hustoty vzorků.
Z toho plyne, že- jestliže chceme zvýšit množství zpracovávaného materiálu, je nutné vytvořit několik metod amplifikace nukleové kyseliny, které umožňují současnou amplifikaci a uspořádání vzorků nukleové kyseliny při vyšší hustotě a dále umožňuje monitorování vzorků vyšší rychlostí, přičemž se upřednostňuje paralelní způsob.
Navíc je zřejmé, že existuje potřeba vytvořit novou metodu sekvenování, která umožní zpracovat a paralelně sekvenovat velké množství vzorků. To znamená, že je nutné vytvořit metody sekvenování, které umožňují podstatné multiplexování postupu. Podstatné multiplexování sekvenačního postupu povede na druhou stranu k vyššímu množství zpracovaných vzorků, než je možné dosáhnout metodami sekvenování, které jsou dobře známy v oboru. Takové nové metody budou dokonce více požadovány, jestliže umožní sekvenovat větší množství vzorků při rozumných nákladech a s menší vynaloženou prací než běžné způsoby sekvenování.
• ·
Podstata vynálezu
Vynález popisuje nové metody amplifikace nukleové kyseliny na pevné fázi, které umožní uspořádat a současně amplifikovat velké množství rozdílných sekvencí nukleových kyselin při velké hustotě. Vynález také popisuje metody, které umožní velkou rychlostí paralelně monitorovat velké množství odlišných amplifikovaných sekvencí nukleových kyselin. Vynález dále popisuje metody, kterými se mohou současně a v krátkém časovém úseku stanovit sekvence 'velkého počtu rozdílných nukleových kyselin. Metody jsou zvláště použitelné při sekvenování celého genomu nebo při situacích, kde se musí současně sekvenovat velké množství genů (například 500) z mnoha jednotlivců (například 500) nebo se musí současně vyhodnotit velké množství (například milión) polymorfizmů nebo se současně monitoruje exprese velkého množství genů (například 100 000).
Vynález popisuje způsob amplifikace alespoň jedné nukleové kyseliny, který zahrnuje následující kroky:
vytvoření alespoň jednoho templátu nukleové kyseliny
obsahující amplif ikovanou nukleovou kyselinu, kde
uvedená nukleové kyselina obsahuje na 5'konci
oligonukleotidovou sekvenci Y a na 3'konci
oligonukleotidovou sekvenci Z a navíc nukleové
kyselina nese n a svém 5' konci prostředek pro
zachycení nukleové kyseliny na pevném povrchu, (2) smíchání uvedeného templátu nukleové kyseliny s jedním nebo více primery X, které mohou hybridizovat s oligonukleotidovou sekvencí Z a nesou na svém 5'konci prostředek pro zachycení na pevném povrchu tak, že 5'konec templátu nukleové kyseliny a primerů se váže na pevný podklad, (3) provedení jedné nebo více amplifikačních reakcí nukleové kyseliny vázané na templátu tak, že se tvoří kolonie nukleové kyseliny.
• ·
V dalším provedení vynálezu se ve druhém kroku metody dva různé primery kolonií X smíchají s templátem nukleové kyseliny. Upřednostňuje se, aby sekvence primeru kolonií X byly takové, že oligonukleotidová sekvence Z může hybridizovat s jedním koloniovým primerem X a oligonukleotidová sekvence Y je stejná jako sekvence koloniových primerů X.
V jiném provedení vynálezu oligonukleotidová sekvence Z je komplementární s oligonukleotidovou sekvencí Y, přičemž se označuje jako Y'a koloniový primer X je stejná sekvence jako oligonukleotidová sekvence Y.
V dalším provedení vynálezu koloniový primer X může obsahovat degenerovanou průměrovou sekvenci a templát nukleové kyseliny, který obsahuje nukleovou kyselinu, jenž se amplifikuje a neobsahuje oligonukleotidovou sekvenci 5' a 3' konce.
V jiném provedení vynálezu metoda zahrnuje další který umožňuje alespoň jeden krok stanovení sekvence krok, j edné nebo více kolonií nukleotidové kyseliny vytvořené v kroku
3.
Vynález dále popisuj e způsob sekvenování alespoň j edné nukleové kyseliny obsahuj icl následující kroky:
(1) vytvoření alespoň jednoho templátu nukleové kyseliny obsahuj icí uvedená nukleová sekvenovanou nukleovou kyselinu, kde obsahuje na kyselina
5'konci oligonukleotidovou sekvenci a na
3'konci oligonukleotidovou sekvenci navíc nukleová kyselina nese na svém 5konci prostředek pro zachycení smíchání nukleové kyseliny na pevném povrchu, uvedeného templátu nukleové kyseliny s jedním nebo více koloniovými primery X, které mohou hybridizovat s oligonukleotidovou sekvencí Z a nesou na svém 5konci prostředek pro zachycení na pevném *
templářů nukleové kyseliny a povrchu tak, že 5'konec primerů se váže na (3) provedení jedné nukleové kyseliny pevný nebo na tvoří kolonie nukleové podklad, více amplifikačnich reakcí vázaném templátu tak, že se kyseliny, (4) provedení alespoň jednoho kroku alespoň jedné z vytvořených stanovení sekvence kolonií nukleové kyseliny.
V dalším provedení vynálezu 5' konce templátu nukleové kyseliny a koloniové primery nesou prostředek pro zachycení sekvencí nukleové kyseliny kovalentní vazbou na pevném povrchu.
zachycení skupina,
Upřednostňuje se, aby tento prostředek vhodný pro kovalentní vazbou byla chemicky upravitelná funkční karboxylová skupina jako je například fosfátová skupina, nebo aldehydová skupina, thiol, hydroxyl dimethoxyltrityl (DMT) nebo aminoskupina, přičemž se upřednostňuje aminoskupina.
Nukleové skupiny, které se mohou amplifikovat podle vynálezu zahrnují způsobů podle cDNA, rekombinantní DNA modifikované DNA,
RNA,
DNA, například genomovou DNA, nebo libovolnou formu syntetické nebo libovolnou formu syntetické mRNA nebo nebo modifikované
RNA.
Uvedené lišit v délce a mohou to být nukleové kyseliny se fragmenty nebo menší mohou části větších molekul nukleové kyselina, párů baží a více
Nukleové kyselina, nebo neznámé kyseliny. Upřednostňuje se, bude amplifikovat, měla alespoň 50 se upřednostňuje 150 až 4 000 párů amplifikovat může mít být v jednořetězcové nukleové která se která se bude sekvence a může aby baží.
známé nebo dvouřetězcové formě. Nukleová bude amplifikovat se může získat z libovolného zdroje.
Termín „templář nukleové kyseliny zahrnuje entitu, která obsahuje nukleovou kyselinu, jenž se amplifikuje nebo ♦ · · ···· ·· sekvenuje v jednořetězcové formě. Jak se uvádí dále v textu nukleová kyselina, která se amplifikuje a sekvenuje, se může také vyskytovat ve dvouřetězcové formě. Termín „templát nukleové kyseliny podle vynálezu může zahrnovat jednořetězcovou nebo dvouřetězcovou nukleovou kyselinu.
Templáty nukleové kyseliny se mohou použít při metodě podle vynálezu a mohou se vyskytovat v různých délkách. Upřednostňuje se, aby templáty obsahovaly alespoň 50 párů baží a více se upřednostňuje 150 až 4 000 párů baží. Nukleotidy, kyseliny mohou být se které tvoří templát nukleové vyskytující nebo nepřirozeně Templáty nukleové kyseliny podle nukleovou kyselinu, ale mohou 3'konci krátké oligonukleotidové sekvence obsažená na 5'konci Oligonukleotidová sekvence Y je vyskytovat ve variabilní délce.
přirozeně se vyskytující nukleotidy.
vynálezu obsahují ne pouze také dále obsahovat na 5'a sekvence. Oligonukleotidová se nazývá sekvencí Y.
známou sekvencí a může se Oligonukleotidová sekvence Y vhodná pro použití podle vynálezu obsahuje přednostně alespoň pět nukleotidů, přičemž se upřednostňuje 5 až 100 nukleotidů a více se upřednostňuje přibližně 20 nukleotidů. Přirozeně a nepřirozeně se vyskytující nukleotidy mohou být přítomny v nukleotidové sekvenci Y. Jak se uvádí shora v textu, upřednostňuje se, aby sekvence oligonukleotidu Y byla stejná jako sekvence koloniového primeru X. Oligonukletidová sekvence obsažená na 3'konci templátu nukleové kyseliny podle vynálezu se zde označuje jako Z. Oligonukleotidová sekvence Z je známou sekvencí a může mít variabilní délku. Oligonukleotidová sekvence Z vhodná pro použití v metodách podle vynálezu obsahuje přednostně alespoň pět nukleotidů, přičemž se upřednostňuje 5 a 100 nukleotidů a více se upřednostňuje přibližně 20 nukleotidů. Přirozeně nebo nepřirozeně se vyskytující nukleotidy se mohou vyskytovat v oligonukleotidové sekvenci Z. Oligonukleotidová sekvence Z se navrhla tak, že hybridizuje s jedním koloniovým primerem X a upřednostňuje se, ···· ·· · · < · * · • · · · ···· • · · · · • · · · · · · • · · aby se navrhla tak, že je komplementární s oligonukleotidovou sekvenci
Y, která se nazývá sekvenci Y' .
Oligonukleotidové sekvence a Z obsažené na
5'a 3'konci templátu nukleové kyseliny se nemusí nacházet na extrémních koncích templátu.
Ačkoli nukleotidové sekvence
Y a Z se přednostně nacházej i blízko 5' a 3' konců templátu respektive templátu nukleových kyselin (například s 0 až
100 nukleotidy
5' a 3'
Oligonukleotidové sekvence
Y a Z se mohou proto nacházet v libovolné poloze templátu nukleové kyseliny, která zahrnuj e sekvence Y a Z, a vyskytuj i se na obou stranách. To znamená, že lemují sekvenci nukleové kyseliny, která se amplifikuj e.
Termín „templát nukleové kyseliny také zahrnuje entitu, která obsahuje nukleovou kyselinu, která se amplifikuje nebo sekvenuje ve dvouřetězcové formě. V případě, že templát nukleové kyseliny se vyskytuje ve dvouřetězcové formě, oligonukleotidové sekvence Y a Z jsou obsaženy na 5' a
3'koncích j ednoho z řetězců. Druhý řetězec, což je způsobeno pravidly párování
DNA, je komplementární se řetězcem, který obsahuj e oligonukleotidové sekvence Y a Z a tak obsahuje oligonukleotidovou sekvenci
Z'na 5'konci a oligonukleotidovou sekvenci Y'na 3'konci.
Termín „koloniový primer znamená entitu, která obsahuje oligonukleotidovou sekvenci, která je schopná hybridizovat s komplementární sekvencí iniciovat specifickou polymerázouvou reakci. Sekvence obsahující koloniový primer se vybrala tak, že vykazuje maximální hybridizační aktivitu se svou komplementární sekvenci a velmi nízkou nespecifickou hybridizační aktivitu s kterou je možné použít libovolnou jinou sekvencí. Sekvence, jako koloniový primer může zahrnovat libovolnou sekvenci, ale přednostně zahrnuj e
AGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG nebo 5'-CACCAACCCAAACCAACCCAAACC.
Koloniový primer může obsahovat 5 až 100 baží, ale upřednostňuje se 15 až baží. Primer může zahrnovat • · · · ·· ·· « · « · přirozeně i nepřirozeně se vyskytující nukleotidy. Jeden nebo dva různé koloniové primery se mohou použít při vytvoření kolonií nukleových kyselin za použití metod podle vynálezu. Koloniové primery vhodné pro použití v přítomnosti vynálezu mohou také zahrnovat degenerované primerové sekvence.
Termín „degenerované primerové sekvence zahrnuje krátkou oligonukleotidovou sekvenci, která je schopna hybridizovat s libovolným fragmentem nukleové kyseliny nezávislé na sekvenci uvedeného fragmentu nukleové kyseliny. Takové degenerované primery nevyžadují přítomnost oligonukleotidové sekvence Y nebo Z v templátu nukleotidové sekvence, aby došlo k hybridizaci, ačkoli použití degenerovaných primerů při hybridizaci s templářem obsahujícím oligonukleotidové sekvence X nebo Y není vyloučeno. Při použití při amplifikaci podle vynálezu, degenerativní primery musí hybridizovat se sekvencemi nukleové kyseliny v templátu v místech, které jsou vedle nebo lemují sekvenci nukleové kyseliny, která se amplifikuj e.
Termín „pevný podklad znamená libovolný pevný podklad, na který se může kovalentně zachytit nukleová kyselina, jako jsou například latexové částice, dextranové částice, polystyren, polypropylenový povrch, polyakrylamidový gel, povrch tvořený zlatém, skleněný povrch a silikonové plátky. Upřednostňuje se, aby pevným povrchem byl skleněný povrch.
Termín „prostředky vhodné pro zachycení nukleových kyselin na pevný podklad zahrnuje chemické a nechemické zachycení zahrnující chemicky modifikovatelné funkční skupiny. Termín „zachycení znamená imobilizaci nukleové kyseliny na pevných površích buď kovalentním zachycením nebo prostřednictvím nevratné pasivní adsorpce nebo prostřednictvím afinity mezi molekulami, imobilizaci na povrchu potaženém avidinem. Zachycení musí být dostatečně silné, aby se molekuly nedaly • · · · · · ·· ·· · * ··♦ ···· ··· · ···· · · « ··· · · · · · · · • · · · · · · · ··· ·· · · ·· ··· odstranit vymytím vodou nebo vodným pufrem za podmínek denaturujících DNA.
Termín „chemicky upravitelné funkční skupiny zahrnuje skupinu, jako je třeba fosfátová skupina, karboxylové nebo aldehydová část, thiol nebo aminoskupina.
Termín „kolonie nukleové kyseliny znamená diskrétní oblast obsahující více kopií řetězce nukleové kyseliny. Ve stejné kolonii může být přítomno více kopií řetězce komplementárního s řetězcem nukleové kyseliny. Velké množství kopií řetězců nukleové kyseliny, které tvoří kolonie jsou v obecném případě imobilizovány na pevném povrchu a mohou být v jednořetězcové nebo ve dvouřetězcové formě. Kolonie nukleových kyselin podle vynálezu se mohou vytvořit v různých velikostech a hustotách v závislosti na použitých podmínkách. Upřednostňovaná velikost kolonií je od 0,2 μπι do β μπι, více se upřednostňuje od 0,3 pm do 4 pm. Hustota kolonií nukleové kyseliny vhodné pro použití při metodě podle vynálezu je v typickém případě 10 000/mm2 až 100 000/mm2. Věří se, že je možné dosáhnout vyšší hustoty a to 100 000/mm2 až 1 000 000/mm2 a 1 000 000/mm2 až 10 000 000/mm2.
Metody podle vynálezu se mohou použít k vytvoření kolonií nukleové kyseliny. Vynález tak poskytuje jednu nebo více kolonií nukleotidové kyseliny. Kolonie nukleové kyseliny podle vynálezu se mohou vytvořit z jediného imobilizovaného templátu nukleové kyseliny podle vynálezu. Metoda podle vynálezu umožňuje současnou produkci řady takových kolonií nukleových kyselin, kdy každá může obsahovat odlišné imobilizované řetězce nukleové kyseliny.
Vynález dále popisuje velké množství templátů nukleové kyseliny, které obsahují nukleové kyseliny, které se budou amplifikovat, kde uvedené nukleové kyseliny obsahují na svém •··· ·· ·· * · · · • · · · ····
5'konci oligonukleotidovou oligonukleotidovou sekvenci nesou na svém 5'konci pr
16 • ··· · · ··· · · • ·······»
• · · · ·
sekvenci Y a na 3' konci
Z a navíc nukleotidové kyseliny
středek pro zachycení nukleové
kyseliny na pevný povrch. Upřednostňuje se, když se velké množství templátů nukleových kyselin smíchá s velkým množstvím koloniových primerů X, které se mohou hybridizovat s oligonukleotidovou sekvencí Z a nesou na 5'konci prostředek pro zachycení koloniových primerů na pevném povrchu. Upřednostňuje se, aby se velké množství templátů nukleové kyseliny a koloniových primerů kovalentně vázalo na pevný povrch.
V dalším provedení podle vynálezu se velké množství dvou různých koloniových primerů X smíchalo s velkým množstvím templátů nukleové kyseliny. Upřednostňuje se, aby sekvence koloniových primerů X byla taková, že oligonukleotidová sekvence Z se může hybridizovat s jedním koloniovým primerem X a oligonukleotidová sekvence Y je stejná jako sekvence jednoho koloniového primeru X.
V jiném provedení podle vynálezu je oligonukleotidová sekvence Z komplementární s oligonukleotidovou sekvencí Y, (Y') a velké množství koloniových primerů X je stejnou sekvencí jako oligonukleotidová sekvence Y.
Další provedení vynálezu se popisuje velké množství koloniových primerů X obsahujících degenerované primerové sekvence a velké množství templátů nukleové kyseliny obsahujících nukleové kyseliny, které se amplifikují, a tyto templáty neobsahují oligonukleotidovou sekvenci Y nebo Z na 5 ' a 3'konci.
Templáty nukleové kyseliny podle vynálezu se mohou připravit za použití metod, které jsou standardní nebo běžné v oboru. V obecném případě se tyto metody zakládají na metodách genetického inženýrství.
• · · ·
• · • · • · · ·
Nukleové kyseliny, které se budou amplifikovat, se mohou zdokumentovány v oboru. Například získáním vzorku získat za použití metod, které jsou dobře známy a jsou dobře nukleové kyseliny, jako je celková
DNA, genomová DNA, cDNA, celková
RNA, mRNA atd., metodou, která je dobře známa a dobře zdokumentována v oboru a vytvořením nukleových kyselin například omezeným fragmentů z uvedených štěpením restrikčními enzymy nebo mechanickými způsoby.
V typickém případě se nukleová kyselina, která se má amplifikovat, získala jako dvouřetězcová forma. V případě, že se nukleová kyselina vyskytuje v jednořetězcové formě, se například mRNA nejdříve připraví jako dvouřetězcová forma způsobem, který je dobře znám v oboru, například za použiti oligo-dT primerů a reverzní transkriptázy a DNA polymerázy. Po té, co se získá amplifikovaná nukleová kyselina v dvouřetězcová formě s vhodnou délkou, spojí se svými konci oligonukleotidové sekvence Y a Z. To znamená, že se spojí s oběma konci sekvence nukleové kyseliny a vytvoří se tak templát. To je možné provést za použití metod, které jsou dobře známy v oboru, jako je například ligace nebo začlenění nukleové kyseliny, která se bude amplifikovat, do biologického vektoru do místa, které je lemováno vhodnou oligonukleotidovou sekvencí. V jiném případě, když je alespoň část sekvence nukleové kyseliny, která se ampíifikuje, je známa, může se pomocí PCR vytvořit templát nukleové kyseliny obsahující oligonukleotidové sekvence Y a Z na 5' a 3' konci. Při PCR se používají vhodné primery PCR, které zahrnují sekvence specifické pro amplifikovanou nukleovou kyselinu. Před zachycením templátu nukleové kyseliny na pevný povrch, se může připravit jednořetězcová forma za použití metod, které jsou dobře známy v oboru, například zahřáním na teplotu 94 °C a rychlým ochlazením na teplotu 0°C na ledu.
• « • · · ·
Oligonukleotidová sekvence obsažená na 5konci nukleové kyseliny může být libovolnou sekvencí libovolné délky a je zde označena jako sekvence Y. Vhodné délky a sekvence oligonukleotidů se vybraly za použití dobře známých metod. Například oligonukleotidové sekvence zachycené každým koncem nukleové kyseliny, která se bude amplifikovat, jsou v normálním případě relativně krátké nukleotidové sekvence obsahující 5 až 100 nukleotidů. Oligonukleotidová sekvence obsažená na 3'konci nukleové kyseliny může být libovolnou sekvencí libovolné délky a je zde označena jako sekvence Z.
Vhodné délky a sekvence použití metod dobře oligonukleotidu se známých v mohou vybrat za oboru.
Oligonukleotidové sekvence obsahovaly na každém konci nukleové kyseliny, která případě jde o relativně krátké nukleotidové sekvence obsahující 5 až 100 nukleotidů.
se mají amplifikovat, v normálním
Tyto sekvence mohou hybridizovat s jedním z koloniových primerů X. Upřednostňuje se, aby sekvence oligonukleotidové sekvence Y byla stejná jako jeden z koloniových primerů X. Více se upřednostňuje, aby oligonukleotidová sekvence Z byla komplementární s oligonukleotidovou sekvencí Y(Y) a koloniové primery X vykazují stejnou sekvenci jako oligonukleotidová sekvence Y.
Oligonukleotidové sekvence Y a Z podle vynálezu se mohou připravit za použití metod, které jsou standardní nebo běžné v oboru nebo se mohou získat z běžných zdrojů.
V případě produkce templátů nukleové kyseliny podle vynálezu se může zavést další požadovaná nukleová kyselina pomocí metody, která je dobře známa v oboru. Takové další sekvence zahrnují například místa, která rozeznávají restrikční enzymy nebo jisté značky nukleových kyselin, které umožňují amplifikaci produktů dané sekvence templátů nukleové kyseliny. Jiné požadované sekvence zahrnují sekvence zpětně balené DNA, která tvoří smyčku nebo jinou sekundární strukturu, když se vyskytuje v jednořetězcové formě, „řídící sekvence DNA, které řídí interakce protein/DNA, jako je například sekvence promotorové DNA, kterou rozeznává polymeráza nukleové kyseliny nebo sekvenci operátoru, kterou rozeznává protein vázající DNA.
Jestliže existuje velké množství sekvencí nukleové kyseliny, která se amplifikuje, a pak zachycení oligonukleotidů Y a Z může proběhnout ve stejné nebo odlišné reakci.
Když se připraví templát nukleové kyseliny, může se amplifikovat, před tím než se použije v metodách podle vynálezu. Taková amplifikace může proběhnout za použití metod, které jsou dobře známy v oboru, například začleněním templářové nukleové kyseliny do expresívního vektoru a amplifikaci ve vhodném biologickém hostiteli nebo amplifikaci pomocí PCR. Tento amplifikační krok není však podstatný, protože metoda podle vynálezu umožňuje, aby se v kolonii nukleové kyseliny produkovalo velké množství kopií templátu nukleové kyseliny vytvořené z jedné kopie templátu nukleové kyseliny.
Upřednostňuje se, aby 5'konec templátu nukleové kyseliny, jak se popisuje shora v textu, se upravil tak, aby nesl prostředek pro kovalentní zachycení templářů nukleové kyseliny na pevný povrch. Takové prostředky mohou chemicky fosfátová upravitelná funkční skupina, jako karboxylová nebo aldehydová skupina, být například je například thiol skupina, nebo aminoskupina.
Nejvíce se upřednostňuje, když se k úpravě
5'konce nukleové kyseliny použij e fosfát nebo aminoskupina.
Koloniové primery podle vynálezu se mohou použití metod, které jsou v oboru standardní připravit za nebo běžné.
V obecném případě koloniové primery podle vynálezu budou • · syntetické oligonukleotidy vytvořené způsoby, které jsou dobře známy v oboru nebo se mohou získat z běžných zdrojů.
Při amplifikaci libovolné sekvence nukleové kyseliny se mohou použít jeden nebo více odlišných koloniových primerů. Tím se tato metoda liší a je výhodnější ve srovnání s řadou jiných amplifikačních metod známých v oboru, které se například popisují v dokumentu WO 96/04404, kde se různé specifické primery musí navrhnout pro každou určitou sekvenci nukleové kyseliny, která se bude amplifikovat.
Upřednostňuje se, aby se 5'konce koloniových primerů podle vynálezu upravily tak, aby nesly prostředek pro jejich kovalentní zachycení na pevném povrchu. Upřednostňuje se, aby tento prostředek pro kovalentní zachycení byla chemicky upravitelná funkční skupina, jak se popisuje shora v textu. Je-li to nutné koloniové primery se mohou navrhnout tak, aby zahrnovaly další požadované sekvence taková, jako jsou místa rozeznávaná restrikční endonukleázou nebo jiné typy míst štěpení, jako je například štěpitelná místa na rybozómu. Jiné požadované sekvence zahrnují sekvence zpětně balené DNA (která tvoři smyčky nebo jiné sekundární struktury, když se vyskytuje v jednořetězcové formě), „řídící sekvence DNA, které řídí interakce protein/DNA, jako je například sekvence promotorové DNA, kterou rozeznává polymeráza nukleové kyseliny nebo sekvenci operátoru, kterou rozeznává protein vázající DNA.
Imobilizace koloniového primerů X na podklad pomocí 5'konce vede k odstranění 3'konce z podkladu tak, že koloniový primer je dostupný pro extenzi polymerázou, pak probíhá hybridizace komplementární oligonukleotidové sekvence obsažené na 3'konci templátu nukleové kyseliny.
Po té, co se syntetizují templáty nukleové kyseliny a koloniové primery podle vynálezu, smíchají se ve vhodném poměru tak, že když jsou zachyceny na pevném povrchu získá se • · • · • · • · · · * · • · · · • · · vhodná hustota zachycených templátů nukleové kyseliny a koloniových primerů. Upřednostňuje se, aby část koloniových primerů ve směsi byla vyšší než část templátů nukleové aby poměr množství koloniových kyseliny byl takový, že nukleové kyseliny se se vrstva koloniových které kyseliny. Upřednostňuje se, primerů k množství templátů když koloniové primery a imobilizují na primerů obsahující velké se nacházejí v přibližně nukleové templáty pevném povrchu tvoři množství koloniových primerů, celé v jednotné hustotě po nebo podpory, přičemž jeden definované ploše pevné templátů nukleové kyseliny se imobilizuje v intervalech ve vrstvě koloniových primerů.
nebo více j ednotlivě
Templáty nukleové kyseliny se mohou v jednořetězcové formě.· Mohou se také vyskytovat vyskytovat úplně nebo částečně ve dvouřetězcové formě, buď upravenými 5'konci tak, jak to umožňuje V tomto případě po ukončení procesu separovat řetězce způsoby zahřáním na teplotu 94 °C a s jedním nebo s oběma zachycení na povrchu.
zachyceni dobře známými v oboru, je možné například pak se řetězce odstraní
Je vhodné, aby v případě, že oba promytím.
řetězce dvouřetězcových molekul reagovaly s výsledek bude stejný se zachytil a provedl zachyceny na povrchu, kdy pouze jeden řetězec se jeden amplifikační krok. Jinými slovy zachytily oba řetězce dvouřetězcového povrchem a j sou jako v případě, v případě, že se templátů nukleové kyseliny a oba řetězce se zachytily vzájemně blízko sebe a je tuto situaci možné rozlišit od výsledku, kdy dojde k zachycení pouze jednoho řetězce a uskutečnění amplifikace. Tak je možné použít jednořetězcové i dvouřetězcové templáty nukleových kyselin za účelem získat templát nukleových kyselin zachycený na povrchu a vhodný pro vytvoření kolonii.
Vzdálenost mezi jednotlivými koloniovými primery a jednotlivými templáty nukleové kyseliny (a vzhledem k hustotě
koloniových primerů a templářů nukleových kyselin) je možné řídit změnou koncentrace koloniových primerů a templářů nukleové kyseliny, které se imobilizují na povrchu. Preferovaná hustota koloniových primerů je alespoň 1 fmol/mm2, upřednostňuje se alespoň 10 fmol/mm2, více se upřednostňuje 30 až 60 fmol/mm2. Hustota templářů nukleové kyseliny pro použití v metodě podle vynálezu je v typickém případě 10 000/mm2 až 100 000/mm2. Věří se, že je možné dosáhnout vyšší hustoty například 100 000/mm2 až 1 000 000/mm2 a 1 000 000/mm2 až 10 000 000/mm2 .
Naopak řízení hustoty zachycených templářů nukleové kyseliny a koloniových primerů umožňuje řídit konečný vznik kolonií nukleové kyseliny na povrchu podpory. To je způsobeno skutečnosti, že jedna kolonie nukleové kyseliny může vzniknout následkem zachycení jednoho templářů nukleové kyseliny, což zaručuje, že koloniové primery podle vynálezu jsou přítomny ve vhodné poloze na pevném povrchu (popisuje se dále v textu). Hustota molekul nukleové kyseliny v jedné kolonii se může také řídit řízením hustoty zachycených koloniových primerů.
Po té, co se koloniové primery a templáty nukleové kyseliny podle vynálezu imobilizují na pevném povrchu ve vhodné hustotě, mohou se pak vytvořit kolonie nukleové kyseliny tím, že se provede vhodný počet cyklů amplifikace na kovalentně vázaném templářů nukleové kyseliny tak, že každá kolonie obsahuje více kopií původního imobilizovaného templářů nukleové kyseliny a její komplementární sekvenci. Jeden cyklus amplifikace zahrnuje kroky hybridizace, extenze a denaturace a ' -i tyto kroky se v obecném případě uskutečňují za použití činidel nebo podmínek dobře známých v oboru vhodných pro PCR.
Typická amplifikační reakce zahrnuje vystavení pevného povrchu a zachyceného templářů nukleové kyseliny a koloniových primerů podmínkám, které vyvolávají hybridizaci primerů. Například působeni teploty okolo 65 °C. Za uvedených podmínek ···· ·· ·· ·· · • ··· · · · · •·· · ···· · · · ··· · · ··· · · • · · · · · · · ··· ·· ·· ·· · · * oligonukleotidová sekvence Z na 3'konci templátu nukleové kyseliny hybridizuje s imobilizovaným koloniovým primerem X a v přítomnosti podmínek a činidel, které podporují extenzi primeru, což je například teplota okolo 72 °C, přítomnost polymerázy nukleové kyseliny, například DNA polymerázy závislé na DNA nebo molekuly reverzní transkriptázy (to je DNA polymeráza závislá na RNA) nebo RNA polymerázy plus přítomnosti molekul nukleozidtrifosf átů nebo libovolných jiných nukleotidových prekurzorů, například upravených molekul nukleozidtrifosfátu, se prodlouží koloniový primer adicí nukleotidů komplementárních se sekvencí templátové nukleové kyseliny.
Příklady polymeráz nukleové kyseliny, které se mohou použít podle vynálezu, jsou DNA polymeráza (Klenow fragment, T4 DNA polymeráza), tepelně stabilní DNA polymeráza pocházející z různých termostabilních bakterií (jako jsou DNA polymerázy Taq, VENT, Pfu, Tfll), stejně jako jejich geneticky upravené deriváty (TaqGold, VENTexo, Pfu exo) . Může se také použít kombinace RNA polymerázy a reverzní transkriptázy, přičemž vzniká amplifikace kolonie DNA. Upřednostňuje se, aby polymeráza nukleové kyseliny užívaná pro extenzi koloniových primerů byla stabilní za podmínek vhodných pro reakci PCR, to znamená při opakovaných cyklech zahřívaní a chlazení při používané denaturační teplotě, jejíž hodnota je přibližně 94 °C. Upřednostňuje se, aby používaná
DNA polymeráza byla Taq
DNA polymeráza.
Upřednostňuj e se, aby používané molekuly nukleozidtrifosfátu byly deoxyribonukleotidt rif osf áty, jako jsou například dATP, dTTP, dCTP, dGTP, nebo ribonuklezidtrifosfáty, jako jsou například dATP, dUTP, dCTP, dGTP. Molekuly nukleozidtrifosfátu se mohou vyskytovat přirozeně nebo se mohou syntetizovat.
• · • · • · · • * · · ·
Po krocích hybridizace a extenze se podpora a zachycená nukleová kyselina vystaví působení denaturačních podmínek v přítomnosti dvou imobilizovaných nukleových kyselin. První kyselinou je počáteční imobilizovaný templář nukleovou nukleové kyseliny a druhou je nukleová kyselina, která je k němu komplementární.
Extenze j ednoho imobilizovaného koloniového primeru probíhá od
X. Původní imobilizovaný imobilizovaný vytvořený templář nukleové kyseliny a prodloužený koloniový primer jsou pak schopny iniciovat další kola amplifikace, přičemž se podklad vystaví dalším cyklům hybridizace, extenze a denaturace. Výsledkem takových dalších kol amplifikace povede ke vzniku kolonie nukleové kyseliny obsahující velké množství imobilizovaných kopií templářové nukleové kyseliny a její komplementární sekvence.
Počáteční znamená, že imobilizace templátové nukleové kyseliny templátová nukleová kyselina může pouze hybridizovat s koloniovými primery lokalizovanými ve vzdálenosti rovnající se celkové délce templářové nukleové kyseliny. Pak hranice kolonie vytvořené omezena na relativně malou oblast, ve nukleové kyseliny je které se imobilizuje počáteční templátová kola amplifikace,
Když probíhají další to znamená hybridizace, extenze a nukleová kyselina.
denaturace, vzniká jednou tolik kopií templátové molekuly a komplement. Pak vytvořená hranice kolonie kyseliny se bude schopna dále prodlužovat, ačkoli tato hranice je stále omezena na relativně lokální oblast, ve které se imobilizoval počáteční templář nukleové kyseliny.
Schéma metody vytvoření kolonie nukleové kyseliny podle vynálezu je zobrazeno na obrázku č. 1. Obrázek č. 1(a) zobrazue koloniový primer X podle vynálezu (ukazuje se, že má sekvenci ATT) a templát nukleové kyseliny podle vynálezu, který obsahuje na 5'konci oligonukleotidovou sekvenci Y, zde je zobrazena jako ATT a 3'konci oligonukleotidovou sekvenci Z, ··«· ·« ·« * · · · zde zobrazenou jako
AAt, koloniového primeru
X.
která hybridizuje jako sekvence
Při schematické reprezentaci se koloniový primer X oligonukleotidové sekvence Y
Z zobrazují tak, že obsahují pouze tři nukleotidy. V praxi je však vhodné, aby se použila delší sekvence. 5'konce obou koloniových primerů a pro zachycení templátu nukleové prostředek kyseliny nesou pevném povrchu.
To je na obrázku č. 1 prostředek zachycení nukleové kyseliny na plné kovalentnímu zobrazeno může vést nekovalentnímu zachycení.
Pro jednoduchost je na obrázku j ako ke čtverce.
Tento nebo zobrazen pouze j eden koloniový primer X a
V praxi velké množství jedna templátová nukleová kyselina.
koloniových primerů X bude s velkým množstvím templátů nukleové kyseliny. Velké primerů X může obsahovat dva odlišné koloniových primery X.
přítomno množství koloniové
Pro jednoduchost však schématická reprezentace obrázku č. 1 pouze jeden typ koloniového primeru sekvencí ATT. Velké množství templátů nukleové kyseliny zobrazuje na
X se může obsahovat různé sekvence nukleové kyseliny v centrální části mezi oligonukleotidy Y a
Z, oligonukleotidové sekvence Y a Z na znázorněn
č. 1 je pro jednoduchost nukleové kyseliny, kde 'a ale obsahuje stejné
3'koncích. Na obrázku pouze jeden druh část sekvence v centrální templátu části je zobrazena jako CGG.
V přítomnosti pevné nukleové kyseliny podpory 5' koloniového primeru konce obou se vážou na templátů
To je znázorněno na obrázku č. 1 (b) .
Podklad podklad.
zachycený templát nukleové kyseliny a koloniové primery se pak vystaví působení obrázku podmínek, které vyvolávají č. l(c) je zobrazen templát hybridizaci nukleové hybridizuje s koloniovým primerem.
Taková primeru. Na kyseliny, který hybridizace je umožněna skutečností, že oligonukleotidová sekvence Z na
3'konci templátu nukleové kyseliny může hybridizovat
s koloniovým primerem.
Při schématické reprezentaci oligonukleotidové sekvence Z se ukázalo, že je komplementární s koloniovým primerem, ačkoli v praxi skutečná komplementární sekvence není podstatná. Hybridizace se může objevit za podmínek, kterým jsou vystaveny templáty nukleové kyseliny a koloniové primery.
Na obrázku č. 1 (d) je zobrazeno stádium extenze primerů. Za vhodných teplotních podmínek a v přítomnosti DNA polymerázy a doplnění nukleotidových prekurzorů, jako je například dATP, dTTP, dCTP a dGTP, DNA polymeráza prodloužila koloniový primer na jeho 3'konci za použití templátu nukleové kyseliny. V případě, že prodloužení primerů je úplné, zobrazeno na obrázku č. l(e), je pak možné vidět, že se vytvořil druhý mobilizovaný řetězec nukleové kyseliny, který je komplementární s počátečním templátem nukleové kyseliny. Při oddělení dvou řetězců nukleové kyseliny, například zahřáním, budou přítomny dvě imobilizované nukleové kyseliny. První je počáteční imobilizovaný templát nukleové kyseliny a druhou je jeho komplementární nukleová kyselina, která se prodloužila z jednoho imobilizovaného koloniového primerů X, jak je možné vidět na obrázku č. l(f).
Původní imobilizovaný templát nukleové kyseliny a imobilizovaný prodloužený vytvořený koloniový primer je pak schopen hybridizovat s jinými přítomnými koloniovými primery (které jsou označeny jako koloniové primery 2 a 3 na obrázku č. l(g)) a po dalším kole prodloužení primerů (obrázek č. 1 (h) ) a po separaci řetězce (obrázek 1 (i)) vznikají čtyři jednoduché imobilizované řetězce. Dva z nich obsahují sekvence, které odpovídají templátu počáteční nukleové kyseliny, a dva obsahuji řetězce s nimi komplementární.
Další cykly amplifikace jsou zobrazeny na obrázku č. 1 a po provedení vzniká kolonie nukleové kyseliny obsahující velké • · množství zmobilizovaných kopií templátové nukleové kyseliny a její komplementární sekvence.
Je tak možné vidět, že metoda podle vynálezu umožňuje vytvoření kolonie nukleové kyseliny z jednoho templátu imobilizované nukleové kyseliny a že velikost těchto kolonií se může řídit změnou počtu cyklů amplifikace, které je templát nukleové kyseliny vystaven. Tak počet nukleových kyselin vytvořených na povrchu pevného podkladu závisí na počtu templátů nukleové kyseliny, která se na začátku imobilizuje na podkladu, přičemž vzniká dostatečný počet imobilizovaných koloniových primerů v lokalitě každého zmobilizovaného templátu nukleové kyseliny. Z tohoto důvodu se upřednostňuje, aby pevný povrch, na který se koloniové primery a templáty nukleové kyseliny zmobilizují, obsahoval vrstvu imobilizovaných koloniových primerů při vhodné hustotě s templáty nukleové kyseliny imobilizované v intervalech s vrstvou primerů.
Tak zvané autopaternování kolonií nukleové kyseliny je výhodné ve srovnání s řadou metod, které jsou známy v oboru. Je možné získat vyšší hustotu kolonií nukleových kyselin, což je způsobeno skutečností, že hustotu je možné řídit regulací hustoty, při které se templáty nukleové kyseliny původně zmobilizují. Taková metoda není pak omezena například tím, že vykazuje specifické uspořádání primerů na určité lokální ploše podkladu a pak iniciuje tvorbu kolonií nanesením určitého vzorku, který obsahuje templát nukleové kyseliny na stejné ploše primeru. Počet kolonií, které se mohou uspořádat za použití metod dobře známých v oboru, (popisuje se například v publikaci WO 96/04404, Mosaic Technologies, lne.) je pak omezen hustotou/mezerami, při kterých se plochy specifických primerů mohou uspořádat v počátečním kroku.
• · ♦ · * ·· · · · · ··* · * ··· « · • ·♦·· ·· » ··· ·· ·· · · ··«
Tím, že je možné řídit počáteční hustotu templátu nukleové kyseliny a proto také je možné řídit hustotu kolonií nukleové kyseliny vytvořené z templátu nukleové kyseliny, je možné také řídit velikost vytvořených kolonií nukleové kyseliny a navíc hustotu templátu nukleové kyseliny v jednotlivých koloniích, přičemž optimální situace je možné dosáhnout na pevném podkladu dostatečně velké velikosti, který obsahuje velký počet amplifikovaných sekvencí, což umožňuje následnou analýzu nebo monitorování kolonií nukleové kyseliny.
Když se vytvoří provést další krok, kolonie nukleových kyselin, může být nutné jako je například vizualizace kolonií nebo stanovení sekvence kolonií může být (popisuje se dále v textu) . například nutná, jestliže
Vizualizace je nezbytné testovat kolonie vytvořené v přítomnosti nebo v nepřítomnosti například celé nebo části určitého fragmentu nukleové kyseliny. V tomto případě kolonie, které obsahují určitý fragment nukleové kyseliny by se mohl detekovat navržením sondy nukleové kyseliny, která se specificky hybridizuje s fragmentem nukleové kyseliny.
Taková sonda nukleové kyseliny se přednostně značí detekovatelnou entitou, jako je fluorescenční skupina, entita obsahující biotin (která se může například detekovat inkubací streptavidinem značeným fluorescenční skupinou), radioaktivní značku (která se může začlenit do sondy nukleové kyseliny způsoby, které jsou dobře známy v oboru a mohou se detekovat na základě jejich radioaktivity například inkubací se scintilační kapalinou) nebo barvivém nebo jiným barvícím činidlem.
V jiném případě taková sonda nukleové kyseliny se nemusí značit a navrhne se tak, aby působila jako primer vhodný pro začlenění množství značených nukleotidů s polymerázou nukleové ··♦· ·· ·· ·· · * · · · ···· ··· · · · ·· · · · ··· » t ♦ · · · · • ···· ·· · ·♦· ·· ·· ·· ··· kyseliny. Může se tak provést detekce začleněné značky a tak se detekují kolonie nukleové kyseliny.
Kolonie nukleové kyseliny podle vynálezu se pak připravují hybridizací. Taková příprava zahrnuje ošetření kolonii tak, že celý nebo část templátu nukleové kyseliny tvořící kolonie je přítomen v jednořetězcové formě. Toho je možné dosáhnout například teplotní denaturací libovolné dvouřetězcové DNA v koloniích. V jiném případě se kolonie mohou ošetřit restrikčnimi endonukleázami, které jsou specifické pro dvouřetězcovou formu sekvence v templátové nukleové kyselině. Tak endonukleáza může být specifická vůči sekvenci obsažené v oligonukleotidové sekvenci Y nebo Z nebo vůči jiné sekvenci, která je přítomna v templátové nukleové kyselině. Po štěpení se kolonie zahřejí tak, že dvouřetězcové molekuly DNA se oddělí a kolonie se promyjí, aby se odstranily nemobilizované řetězce tak, že v koloniích zůstává zachycena jednořetězcová DNA.
Po přípravě kolonii vhodných pro hybridizací se pak přidá ke koloniím značená nebo neznačená sonda za podmínek vhodných pro hybridizací sondy s jejich specifickou sekvencí DNA. Takové podmínky může stanovit odborník za použití metod známých v oboru a budou záležet na příkladu sekvence sondy.
Sonda se pak může odstranit teplotní denaturací, jestliže je to nutné, a pak se může hybridizovat a detekovat sonda specifická pro druhou nukleovou kyselinu. Tyto kroky se mohou opakovat tolikrát, kolikrát je to nutné.
Značené sondy, které hybridizuj! s koloniemi nukleové kyseliny se pak mohou detekovat za použití zařízení, které zahrnuje vhodné detekční zařízení. Preferovaný detekční systém pro fluorescenční značky je kamera s nábojovou vazbou (CCD), která se v optimálním případě spojí se zvětšovacím zařízením, jako je například mikroskop. Za použití takové technologie je • · · · • · možné současně paralelně monitorovat velké množství kolonii. Například za použití mikroskopu s CCD kamerou a s objektivem se 10-ti násobným nebo s 20-ti násobným zvětšením, je možné pozorovat kolonie na povrchu mezi 1 mm2 a 4 mm2, které odpovídají monitorování 10 000 až 200 000 kolonii. Je jasné, že tento počet poroste s vylepšením optiky a s velikostí čipů.
Alternativní metodou monitorování vzniklých kolonií je skenování povrchu pokrytého koloniemi. Je možné například použít systémy, kde je možné současně uspořádat až 100 000 000 kolonii a zachytí se monitorovací obrázek celého povrchu kamerou CCD. Tímto způsobem je možné vidět až 100 000 000 kolonií během krátkého času.
Dále se může použit za účelem monitorování kolonií nukleové kyseliny podle vynálezu libovolné jiné zařízení umožňující detekci a přednostně kvantifikaci fluorescence na povrchu. Také je možné použít fluorescenční zobrazovače nebo konfokální mikroskopy.
V případě, že značky jsou radioaktivní, pak je možné použít systém detekující radioaktivitu.
Při metodách podle vynálezu se provede další krok umožňující alespoň jeden krok stanovení sekvence alespoň jedné z vytvořených kolonií nukleové kyseliny, což je možné provést za použití sekvenační techniky za použití libovolné vhodné pevné fáze. Například jednou metodou stanovení sekvence, která se může použít při stanovení sekvence podle vynálezu, zahrnuje hybridizaci vhodného primeru, který se zde nazývá „sekvenační primer, s templátem sekvenované nukleové kyseliny, extenzi primeru a detekci nukleotidů používaných při prodloužení primeru. Upřednostňuje se, aby nukleová kyselina užívaná pro prodloužení primeru se detekovala před přidáním dalšího nukleotidu, což umožňuje postupné sekvenování in šitu jednotlivých po sobě jdoucích baží nukleové kyseliny.
• ♦
Detekce začleněných nukleotidů se provádí tak, že se do primeru extenzní reakce začlení jeden nebo více značených nukleotidů. Mohou se použít libovolné vhodné detekovatelná značky, jako je například fluorofor, radioaktivní značení atd. . Upřednostňuje se použití fluorescenční značky. Stejné nebo odlišné značky se mohou použít v každém odlišném typu nukleotidu. V případě, že značka je fluorofor pro každý odlišný typ nukleotidu se použije stejné značky, pak každé začlenění nukleotidu může dojit ke kumulativnímu zvýšení signálu detekovatelného při určité vlnové délce. Jestliže se používají odlišné značky, pak tyto signály se mohou detekovat při různých vlnových délkách.
sekvenčního primeru
Aby se umožnila hybridizace vhodného se sekvenovaným templátem nukleové kyseliny, pak templát se v jednořetězcové formě. V případě, že kyseliny umožňující vytvořit kolonie vyskytuj e nukleové templáty nukleové kyseliny jsou přítomny ve dvouřetězcové formě, mohou se zpracovat kyseliny tak, aby za použití vznikly metod, templáty jednořetězcové které jsou dobře známy nukleové v oboru, například denaturací nebo štěpením atd..
Sekvenační primery, které hybridizují s templátem nukleové kyseliny a používají se při extenzi primeru, jsou přednostně krátké oligonukleotidy, které přibližně obsahují 15 až 25 nukleotidů. Sekvence primerů se navrhla tak, že hybridizují s částí templátu sekvenované nukleové kyseliny, přičemž se upřednostňuje, aby k tomu došlo za přísných hybridizačních podmínek. Sekvence primerů užívaných při sekvenování může mít stejné nebo podobné sekvence těm, které jsou obsaženy v koloniových primerech a které se používají při vzniku kolonií nukleové kyseliny podle vynálezu. Sekvenační primery se mohou vyskytovat v roztoku nebo v imobilizované formě.
• 9 • ♦· · 9 99 9 * · · · · ·· « • · · · » - · · · · ··· * »- ··· «ρ • · · · · 99 ··* ·· ·· · · ···
Po té, co se sekvenačni primer navázal na templát nukleové kyseliny, který se sekvenuje tak, že se vystaví vhodným podmínkám stanoveným metodami dobře známými v oboru, provede se prodloužení primerů, například za použití polymerázy nukleové kyseliny a dodaných nukleotidů, přičemž, alespoň některé se vyskytují ve značené formě a nastolí se podmínky, které jsou vhodné pro extenzi primerů. Mohou se použit příklady polymeráz nukleové kyseliny a nukleotidů, jak se popisuje shora v textu.
Aby se odstranily nezačleněné nukleotidy, které mohou interferovat s následnými kroky, je třeba po každém kroku prodloužení primerů zahrnout promytí. Po té, co se provedlo prodloužení primerů, monitoruje se kolonie nukleové kyseliny za účelem stanovení, zda značený nukleotid se začlenil do prodlouženého primerů. Krok extenze primerů se pak opakuje za účelem stanovení dalších a následných nukleotidů začleněných do prodlouženého primerů.
Libovolné zařízení, které umožňuje detekci a přednostně kvantifikaci vhodného značení, jako je například fluorescence nebo radioaktivita, je možné využít při stanovení
V případě, že značka je fluorescenční molekula, sekvence.
je možné použít kameru CCD, která je spojena se zvětšovacím přístroj em (jak se popisuje shora
Ve skutečnosti zařízení používané při stanovení sekvence podle vynálezu může být stejné jako ta zařízení, která se popisují shora v textu a jsou vhodná pro monitorování kolonií amplifikované nukleové kyseliny.
Detekční systém se přednostně používá v kombinaci s analytickým systémem za účelem stanovit počet nebo podstatu nukleotidů začleněných v každé kolonii po každém kroku extenze primerů. Tato analýza, která se může provést bezprostředně po každém kroku prodloužení primerů nebo později za použití • · •·· · »«·· · · · •·· * · · · · · · • ···· «· ··· ·· ·· ·· · · · zaznamenaných dat umožňuje, aby se stanovila sekvence templátů nukleové kyseliny v dané kolonii.
Jestliže stanovovaná sekvence není známa, pak nukleotidy aplikované v případě dané kolonie se aplikují obvykle v určeném pořadí, který se pak opakuje po celou analýzu. Je to například dATP, dTTP, dCTP, dGTP. Jestliže stanovovaná sekvence je známa a znovu se sekvenuje, například pro účely analýzy, zda existují malé rozdíly, kterými se sekvence liší od známé sekvence, pak sekvenační proces je rychlejší, když se v každém kroku sekvenace přidají nukleotidy ve vhodném pořadí, které se zvolí podle známé sekvence. Rozdíly od dané sekvence se pak detekují tak, že nedojde k začlenění jistých nukleotidů při určitém stádiu extenze primerů.
Tak je možné vidět, že celá nebo část sekvence amplifikovaného templátů nukleové kyseliny tvořící určité kolonie nukleové kyseliny se může stanovit za použití metod podle vynálezu.
V jiném provedení vynálezu se celá nebo částečná sekvence více jak jedné nukleové kyseliny stanoví určením celé nebo části sekvence amplifikovaného templátů nukleové kyseliny, která je přítomna ve více jak jedné kolonii nukleové kyseliny. Upřednostňuje se, aby se současně mohlo stanovit velké množství sekvencí.
Provedení stanovení sekvence nukleových kyselin za použití metody podle vynálezu je výhodné, protože je pravděpodobné, že je způsobeno skutečností, že velké množství každé sekvenované nukleové kyseliny se vyskytuje v každé kolonii nukleové kyseliny podle vynálezu. Jestliže je to nutné, je možné zvýšit spolehlivost tím, že se použije velké množství kolonií nukleové kyseliny obsahující stejný templát sekvenované nukleové kyseliny a pak stanovení sekvence pro každé množství kolonií a porovnání takto stanovených sekvencí.
Upřednostňuje se, aby zachyceni koloniového primerů a templátu nukleové kyseliny na pevný povrch bylo termostabilní při teplotě, které se podklad vystaví během amplifikační reakce nukleové kyseliny. Je to například teplota až přibližně 100 °C, například přibližně 94 °C. Upřednostňuje se, aby zachycení bylo kovalentní.
V jiném provedení vynálezu kovalentní navázání koloniových primerů a templátu nukleové kyseliny na pevný podklad se vyvolává síťovacím činidlem, jako je například l-etyl-3-(3dimetylaminopropyl)-karbodiimidhydrochlorid (EDC), sukcinanhydrid, fenyldiizothiokyanát nebo maleinanhydrid nebo heterobifunkční síťovací činidlo, jako je například mmaleimidobenzoyl-N-hydroxysukcinimidester (MBS), Nsukcinimidyl-[4-j odoacetyl]aminobenzoát (SIAB), sukcinimidyl-4[N-maleimidometyl]cyklohexan-l-karboxylát (SMCC), N-ymaleimidobutyryloxy-sukcinimidester (GMBS) , sukcinimidyl-4-[pmaleimidofenyljbutyrát (SMPB) a odpovídající sulfosloučeniny (ve vodě rozpustné). Preferovaná síťovací činidla vhodná pro použití podle vynálezu jsou s-SIAB, s-MBS a EDC.
V dalším provedení vynálezu pevný podklad má derivatizovaný povrch.
V jiném provedení vynálezu derivatizovaný bifunkčními povrch síťovacími se následně upravuje přednostně reaktivními pevného podkladu skupinami, aby vznikl funkční povrch, síťovacími skupinami.
Termín „derivatizovaný povrch znamená povrch, který se upravil chemickými reaktivními skupinami, jako je například aminoskupina, thíolová nebo akrylátová skupina.
Termín „funkční povrch znamená derivatizovaný povrch, který se upravil specifickými funkčními skupinami, jako jsou například maleinové nebo sukcinové funkční části.
• ♦ · · * • · · · ·«··
V metodě podle vynálezu, kterou je možné použit při jistých aplikacích, zachycení koloniových primerů a templářů nukleové kyseliny na pevný podklad splnilo řadu požadavků. Ideální zachycení by nemělo být ovlivněno vystavení vysoké teplotě a opakovanému procházení cykly zahřátí/ochlazení, což se používá při během amplifikace nukleové kyseliny. Podklad by měl umožnit získání hustoty zachycených koloniových primerů alespoň 1 fmol/mm2, upřednostňuje se hustota 10 fmol/mm2, více se upřednostňuje 30 až 60 fmol/mm2. Ideální podklad by měl vykazovat jednotný rovný povrch s nízkou hodnotou fluorescence pozadí a měl by být také teplotně stabilní (neměl by se deformovat). Pevné podklady, které umožňují pasivní adsorpci DNA na jistých typech plastických a syntetických nitrocelulózových membrán, nejsou vhodné. Pevný podklad by se měl použít pouze jedenkrát a neměl by být nákladný.
Z těchto důvodů pevný podklad může být libovolný pevný podklad, na který se může zachytit nukleová kyselina. Může to být například latexové částice, částice dextranu, polystyrénový a polypropylenový povrch, polyakrylamidový gel, povrchy tvořené zlatém, skleněné povrchy a plátky silikonu. Upřednostňuje se, aby pevný podklad byl skleněný povrch a zachycení nukleových kyselin na tento povrch je proveden kovalentní vazbou.
Kovalentní navázání koloniových primerů a templátů nukleové kyseliny na pevný podklad se může provést za použití metod, které jsou známy v oboru. Například epoxysilan-amino kovalentní navázání oligonukleotidů na pevné podklady, jako jsou porézní skleněné částice, které se používají při in šitu syntéze oligonukleotidů (prostřednictvím připojení 3'konce) a také se upravily pro zachycení oligonukleotidů 5'konce. Oligonukleotidy upravené na 5'konci pomocí karboxylové a • ···· ·» ,. ,, , *· ... · » · · · ·· • · · · · « · · · · · « * ··*....:
• · · ·. » , t „ ·*· ··« ·» .. .. ...
aldehydové skupiny se kovalentně zachytily na latexových částicích upravených hydrazinem (Kremsky et al. , 1987).
Jiné přístupy vhodné pro zachycení oligonukleotidů na pevných površích je použití síťovaciho činidla, jako je sukcinanhydrid, fenylizothiokyanát (Guo et al. , 1994) nebo maleinanhydrid (Yang et al., 1998). Jiným velmi používaným síťovacím činidlem je l-etyl-3-(3-dimetylamonipropyl)karbodiimidhydrochlorid (EDC). Chemie EDC se poprvé popisuje v publikaci Gilham et al., (1986). Uvádí se, že templáty DNA se zachytí na papír (celulózu) prostřednictvím terminální fosfátové skupiny na 5'konci. Za použití chemie EDC se použily jiné podklady. Jsou to například latexové částice v publikaci Wolf et al., 1987 a Lund (popisují se al., 1988), et polystyrénové mikroprohlubně (popisuje se
Rasmussen et al., 1991), sklo s určenou v publikaci velikostí pórů
Ghosh et al., 1987) a molekuly 1987). Kondenzace oligonukleotidů s upraveným 5'-koncem s činidlem zprostředkovaná karbodiimidem (popisuj e dextranu se v publikaci (Gangeras et al., se popisuje v publikaci Chu et al., (1983) a Egan et al., (1982) v případě fosfátové skupiny, kterou se upravil 5'konec.
Výsledkem zachycení oligonukleotidů prostřednictvím
5'konce za použití karbodiimidů se může dosáhnout
o, 0 r ale nespecifického zachycení prostřednictvím vnitřních nukleotidů oligonukleotidů.
V publikaci Rasmussen et (1991) se popisuje zvýšení až 85 % specifické zachycení prostřednictvím 5'konce derivatizací povrchu za použití sekundárních aminoskupin.
V publikacích se popisují výhody hetero-bifunkčních síťovacích činidel. Hetero nebo monobifunkční síťovací činidla se široce používají při přípravě konjugátových molekul peptidových nosičů (peptid-protein) za účelem zesílit imunogenitu u zvířat (Peeters et al., 1989). U většiny těchto • · · činidel se popisuje, že tvoří stabilní kovalentni vazby ve vodném roztoku. Tato síťovací činidla se použila při navázání DNA na pevný podklad pouze v jednom bodě molekuly.
V publikaci Chrisey et al., (1996) se popisuje studie účinnosti a stability zachycení DNA na pevné fázi za použití šesti různých heterobifunkčních síťovacích činidel. V tomto příkladu se zachycení projeví pouze na 5'konci oligomerů DNA upraveného thiolovou skupinou. Tento typ zachycení se také popisuje v publikaci 0'Donnell-Maloney et al., (1996). Popisuje se zachycení cílů DNA v sekvenční analýze MALDI-TOF a v dokumentu EP-A-665293 Hamamatsu Photonics F.K. company se popisuje stanovení sekvence baží nukleové kyseliny na pevném povrchu.
Provedlo se několik studií, které hodnotí termální stabilitu zachycení oligonukleotidů na pevném podkladu. Chrisey et al. , (1996) popisuje, že v případě sukcinimidyl-4 [p-maleimidofenyl]butyrátové síťovacího činidla (SMPB) se uvolnilo ze skleněného povrchu skoro 60 % molekul během ošetření teplem. V tomto případě se však nepopisuje termální stabilita jiných činidel.
Za účelem vytvořit kolonie nukleové kyseliny prostřednictvím amplifikační reakce na pevné fázi, jak se popisuje v této přihlášce, templáty
5'konci na primery a nukleových kyselin se specificky zachytí svými pevném povrchu, přičemž se upřednostňuje sklo. Skleněný povrch se může derivatizovat reaktivními aminoskupinami silanizaci za koloniové použití aminoalkoxysilanů.
Vhodná silanová činidla zahrnuj i aminopropyltrimetoxysilan, aminopropyltrietoxysilan a 4aminobutyltrietoxysilan. Skleněné povrchy se mohou také derivatizovat jinými reaktivními skupinami, jako je například • ···· ·· ·· ·· ··« · · · ··· • ··· · ···· · · akrylátová skupina nebo epoxyskupina za použití epoxysilanu, akrylátsilanu a akrylamidsilanu. Následuje derivatizační krok, přičemž molekuly nukleové kyseliny (koloniové primery nebo templáty nukleové kyseliny) vykazují na svém 5konci chemicky upravitelnou funkční skupinu. Je to například fosfátová, thiolová nebo aminoskupina, které- jsou kovalentně zachyceny na derivatizovaném povrchu, síťovacím činidlem, jak se popisuje shora v textu. V jiném případě krok derivatizace je následován zachycením bifunkčního síťovaciho činidla na povrchových aminoskupinách, přičemž vznikají upravené funkční povrchy. Molekuly nukleových kyselin (koloniový primer nebo templáty nukleové kyseliny), které vykazují na 5-konci fosfátovou, thiolovou skupinu nebo aminoskupinu pak reagují s funkčním povrchem za vzniku kovalentní vazby mezi nukleovou kyselinou a sklem.
Potencionální síťovací činidla a činidla vhodná pro zavedení se mohou použít při kovalentním zachycení DNA/oligonukleotidu na pevném povrchu a zahrnují l-etyl-3-(3dimetylaminopropyl)-karbodiimidhydrochlorid (EDC), sukcinanhydrid, fenyldiizothiokyanát nebo maleinanhydrid nebo heterobifunkční síťovací činidlo, jako je například mmaleimidobenzoyl-N-hydroxysukcinimidester (MBS), N-sukcinimidyl-[4-jodoacetyljaminobenzoát (SIAB) , sukcinimidyl-4-[Nmaleimidometyl]cyklohexan-l-karboxylát (SMCC) , N-y-maleimidobutyryloxy-sukcinimidester (GMBS), sukcinimidyl-4-[p-maleimidofenyl]butyrát (SMPB) a odpovídající sulfosloučeniny, které jsou rozpustné ve vodě. Preferovaná síťovací činidla podle vynálezu jsou s-SIAB, s-MBS a EDC. s-MBS je maleimidsukcinimidový heterobifunkční síťovací činidlo a s-SIAB je jodoacetylsukcinimidové heterobifunkční síťovací činidlo. Obě tyto činidla jsou schopny tvořit kovalentní vazbu se skupinami SH a primárními aminoskupinami. EDC je karbodiimidové činidlo, • · • · · které zprostředkovává kovalentni zachycení fosfátové skupiny a aminoskupiny.
Koloniové primery a templáty nukleových kyselin se v obecném případě modifikují na svém 5'konci fosfátovou skupinou nebo primární aminoskupinou (například síťovacím činidlem EDC) nebo thiolovou skupinou (v případě linkerů sSIAB nebo s-MBS).
Vynález dále poskytuje pevný podklad, na který se připojí velké množství koloniových primerů X, jak se popisuje shora v textu a alespoň jeden templát nukleové kyseliny, jak se popisuje shora v textu, kde uvedené templáty nukleové kyseliny obsahují na svých 5'koncích oligonukleotidovou sekvenci Y, jak se popisuje shora v textu, a na svých 3'koncích obsahují oligonukleotidovou sekvenci pevný podklad, kterým je množství templátů zachycení templátů nukleové nukleové pevném povrchu byla
Z. Upřednostňuje s výhodou se, aby se na sklo, zachytilo velké kyseliny.
Upřednostňuje se, aby koloniových primerů na kyseliny kovalentni. Uskutečněním jednoho nebo více cyklů amplifikace nukleové kyseliny na imobilizovaném templátů nukleové kyseliny za použití metod, jak se popisuje shora v textu, se mohou vytvořit kolonie nukleové kyseliny podle vynálezu. Vynález dále popisuje podklad obsahující jednu nebo více kolonií nukleové kyseliny podle vynálezu. Vynález dále popisuje použití pevných podkladů podle vynálezu v metodách amplifikace nukleové kyseliny nebo sekvenování. Takové metody amplifikace nebo sekvenace nukleové kyseliny zahrnuje metody podle vynálezu.
Vynález dále popisuje použití derivatizovaného nebo funkčního podkladu, připraveného způsobem, jak se popisuje shora v textu při metodách amplifikace a sekvenování. Takové metody amplifikace a sekvenování nukleových kyselin zahrnují metody podle vynálezu.
Vynález dále popisuje přistroj pro provedení metod podle vynálezu nebo přístroj pro produkci pevného podkladu, který obsahuje kolonie nukleové kyseliny podle vynálezu. Takový přístroj může například obsahovat velké množství templátu nukleové kyseliny a koloniových primerů podle vynálezu vázaných přednostně kovalentní vazbou na pevný podklad, jak se popisuje shora v textu, spolu s polymerázou nukleové kyseliny, s velkým množstvím nukleotidových prekurzorů, jak se popisuje shora v textu, přičemž část z nich se může značit a může obsahovat prostředek pro řízení teploty. V jiném případě může přístroj obsahovat například podklad obsahující jeden nebo více kolonií nukleové kyseliny podle vynálezu. Upřednostňuje se, aby přístroj také obsahoval detekční prostředky pro detekci a rozlišeni signálů z jednotlivých kolonií nukleových kyselin uspořádaných na pevném povrchu za použití metod podle vynálezu. Takové detekční prostředky mohou zahrnovat zařízení s vázaným nábojem, které je operativně spojeno se zvětšovacím zařízením, jako je mikroskop, jak se popisuje shora v textu.
Upřednostňuje se, aby libovolný přístroj podle vynálezu byl automatický.
Vynález popisuje řešení a potřeby vědců v oboru biotechnologií, které jsou směrovány do odvětví genomu, farmakologie, vývoje drog, charakterizace potravin a typováni genů. Taková metod se může aplikovat například při sekvenování a opětném sekvenování, diagnostikování a testování, monitorování genové exprese, při profilech genové diversity, zkoumání a hodnocení polymorfizmu celého genomu, při vytvoření genomových sklíček (celý genom pacienta se nanese na mikroskopické sklíčko) a sekvenování celého genomu.
Vynález se může použít při sekvenování a opětném sekvenování nukleové kyseliny, kde jsou například geny specificky amplifikovány do kolonií za účelem úplného ···· ·· · · ·· · • · · · ···· •·· · ···· · · · ··· ·· · · · · · • · · · · · · · • ·· ·· · · ·· ··· sekvenování DNA. Opětná sekvenace genu umožňuje identifikaci všech známých a nových genetických polymorfizmů zkoumaných genů. Amplifikace se používá při diagnóze onemocnění a genetické identifikaci živých organizmů.
Při použití vynálezu při diagnostikování a testování se mohou amplifikovat celé genomy nebo frakce do kolonií za účelem sekvenování DNA známých polymorfizmů jediného nukleotidu (SNP). Identifikace SNP nachází použití ve výzkumu v oboru medicíny za účelem identifikovat faktory genetických poruch spojených s onemocněním. Typování genů pomocí SNP také nachází uplatnění při diagnostikování v oboru farmacie, což se využívá při identifikaci a léčbě pacientů pomocí specifických léků.
Použití vynálezu při tvoření profilů genetické diversity se mohou identifikovat amplifikaci vzorku DNA do kolonií a následným sekvenováním DNA specifických značek v případě každé jednotlivé genetické entity populace například organizmů nebo buněk nebo tkáně. Tímto způsobem se může definovat genetická diverzita vzorku stanovením počtu značek pro jednotlivou entitu.
Použití podle vynálezu při monitorování exprese genu, se exprimované molekuly mRNA tkáně nebo zkoumaného organizmu přemění na molekuly cDNA, které se amplifikují do sady kolonií za účelem sekvenování DNA. Frekvence kolonií, které kódují danou mRNA je úměrná frekvenci molekul mRNA přítomných v počáteční tkáni. Aplikace monitorování genové exprese se zahrnuje do bio-medicínského výzkumu.
Mikroskopická sklíčka nesoucí celý genom (genomová sklíčka), kde celý genom živého organizmu je přítomen v počtu kolonií DNA, který je dostatečný, aby obsahoval všechny sekvence uvedeného genomu. Tyto sklíčka se mohou připravit za použití metod podle vynálezu a mohou představovat genetické • ···· ·· ·· ·· • · · · · · ··· karty libovolného živého organizmu. Genetické karty nacházejí uplatnění ve výzkumu oboru medicíny a genetické identifikaci živých organizmů, které se využívají v průmyslu.
Vynález se také může použít k provedení sekvenace celého genomu, kde celý genom živého organizmu se amplifikuje jako sada kolonií pro sekvenování rozsáhlé DNA. Sekvenování celého genomu umožňuje například 1) přesnou identifikaci genetických kmenů libovolného živého organizmu, 2) zkoumání nových genů kódovaných v genomu a 3) zkoumání nových genetických polymorfizmů.
nejsou omezeny
Aplikace vynálezu z jednotlivého kyselin se na analýzu vzorků nukleové kyseliny
Značky nukleových organizmu mohou začlenit nebo pacienta.
do templátů a mohou se tak amplifikovat, přičemž pro je možné použít odlišné značky že se stanoví sekvence nukleových kyselin každý organizmus nebo pacienta nukleových kyselin. Tak v případě, amplifikované nukleové kyseliny, může se také stanovit sekvence značky a původ identifikovaného vzorku.
Vynález dále popisuje použití metod podle vynálezu nebo kolonií nukleové kyseliny podle vynálezu nebo velkého množství templátů nukleových kyselin podle vynálezu nebo pevných podkladů podle vynálezu, které se používají při přípravě molekul nukleové kyseliny za účelem sekvenování, monitorování genové exprese, stanovení profilů genetické diversity, diagnostikování, testování, sekvenování celého genomu, zkoumání polymorfizmu celého genomu a hodnocení a přípravy sklíček s celým genomem (to znamená celý genom jednotlivce na jednom podkladu) nebo se mohou použít při libovolné jiné aplikace, která zahrnuje amplifikaci nebo sekvenování nukleových kyselin.
Vynález dále poskytuje sadu vhodnou pro použití při sekvenování, opětném sekvenování, monitorování exprese genu, • · · · · ·· ·· ·« • · · ··· «·· stanovení profilu genetické diversity, testování, sekvenování celého genomu, zkoumání a hodnocení celého genomu nebo libovolnou jinou aplikaci zahrnující amplifikaci nebo sekvenování nukleových kyselin. Tento kit obsahuje velké množství templátů nukleové kyseliny a koloniových primeru podle vynálezu vázaných na pevném podkladu.
Přehled obrázků na výkrese
Na obrázku č. 1 je zobrazeno schéma metody vhodné pro vytvoření kolonie nukleové kyseliny, jak se popisuje v jednom provedení vynálezu.
Na obrázku č. 2 je zobrazeno schéma přípravy templátů a následné zachycení na pevný povrch.
Na obrázku č. 2a je znázorněna příprava templátů A, B a B' obsahující sekvence koloniových primeru. Za použití PCR primeru TP1 a TP2 se z genomové DNA vytvořil templát o velikosti 3,2 Kb. Templáty A . (obsahující 854 bp) a B (obsahující 927 bp) se vytvořily za použití PCR primerů TPA1/TPA2 nebo TPB1/TPB2. Oligonukleotidy TPA1 a TPB1 se mají upravený 5' konec a to buď fosfátovou nebo thiolovou skupinou, které slouží k následnému zachycení (*) . Získané templáty obsahují sekvence odpovídající koloniovým primerům CPI a/nebo CP2. 11 exonů genu se zde nazývá jako El až Ell.
Na obrázku č. 2b je zobrazeno chemické zachycení koloniových primerů a templátů na skleněný povrch. Je zde zobrazena derivatizace pomocí ATS (aminopropyltrietoxysilan) .
Na obrázku č. 3 jsou zobrazeny kolonie DNA vytvořené z koloniového primerů. Obrázek zobrazuje počet kolonií pozorovaných v poli pod 20-ti násobným zvětšením, jako funkci koncentrace templátu vázaného na stěnu. Nejnižší koncentrace detekovatelného templátu je 10’13 M.
Na obrázku č. 4 je zobrazena diskriminace mezi koloniemi, které pochází z dvou různých templátu.
Na obrázku č. 4a se nachází zobrazení kolonií vytvořených z obou templátu a negativních kontrol.
Na obrázku č. 4b jsou zobrazeny kolonie pocházející z obou templátů ve stejné poloze ve stejné prohlubni, které se zviditelnily dvěma různými barvivý, a negativní kontroly.
Na obrázku č. 4c jsou zobrazeny souřadnice obou typů kolonií v pod-sekci pole viditelného v mikroskopu. Jsou zde také zobrazeny kolonie z různých templátů, které se neshodují.
Na obrázku č. 5 jsou zobrazeny schémata templátu nebo zachycení oligonukleotidů na sklo. Krok A je pak derivatizace povrchu, přičemž povrch skleněného sklíčka se ošetří kyselým roztokem, aby se zvýšil počet volných hydroxylových skupina na povrchu skla. Připravená sklíčka se ponoří do roztoku aminosilanu. Zkratka ATS představuje aminopropyltrietoxysilan. Krok B: BI nebo B2 pak znamená funkcionalizaci skleněného povrchu se síťovacími činidly a pak následuje zachycení oligonukleotidů. Aminoskupina reaguje se síťovacím činidlem prostřednictvím amidové vazby, což odpovídá kroku Bl. Zkratka s-MBS znamená sulfo-m-maleimidobenzoyl-Nhydroxysukcinimidester a zkratka s-SIAB znamená sulfo-Nsukcinimidyl[4-jodoacetyl]aminobenzoát. Krok B2 : oligonukleotidy (oligonukleotidy s modifikovaným 5'koncem, kde se vyskytuje thiolová skupina) se zachytí na povrchu prostřednictvím vytvoření kovalentní vazby mezi thiolem a dvojnou vazbou maleimidu. Fosfátem pufrovaný fyziologický roztok obsahuje PBS, 0,1 M NaH2PO4, pH6,5, 0,15 M NaCl) . Krok • · · · · · · · · · · ··· ··· «·· • ··· · ···· · · • ··· · β ··· ·
Β3 zahrnuje zachyceni oligonukleotidů za použití EDC a imidazolu. 5'konec fosfátem upravených oligonukleotidů reaguje s imidazolem v přítomnosti EDC za vzniku 5'fosforimidazolidových derivátů (není zobrazeno) . Deriváty tvoří fosforamidát vázaný s aminoskupinami derivatizovaného skleněného povrchu. Zkratka EDC znamená l-etyl-3-(3dimetylaminopropyl)-karbodiimidhydro-chlorid.
Na obrázku č. 6: je zobrazen graf, kde počet kolonií pozorovaný v poli mikroskopu při zvětšení 20 x je funkci koncentrace templátu vázaného na stěnu. Templát DNA se vázal v různých koncentracích buď prostřednictvím spojovacího prostředku (EDC) na povrch skla derivatizovaného aminoskupinou (A) nebo na skleněný povrch funkcionalizovaný s-MBS (B). Kolonie s dvouřetězcovou DNA se podrobily štěpení restrikčními enzymy a získaly se jednotlivé řetězce hybridizované s komplementárním oligonukleotidem značené fluorescentní molekulou cy5.
Na obrázku č. 7 je zobrazen příklad sekvenováni in šitu kolonií DNA vytvořených na skle.
Na obrázku č. 7a je zobrazen výsledek po inkubaci s Cy5™ -dCTP se vzorkem, který se neinkuboval s primerem pl81. Je možné vidět pět rozmazaných bodů, což ukazuje, že dochází k ne příliš dramatickému rušivému účinku (jako je srážení agregátů Cy5™ -dCTP, adsorpce nebo jednoduše nespecifické začlenění do DNA v koloniích nebo na povrchu).
Na obrázku č. 7b je zobrazen výsledek inkubace Cy5™ -dUTP se vzorkem, který se neinkuboval s primerem pl81. Neobjevil se žádný bod, což indikuje, že neproběhlo začlenění fluorescenční báze v detekovatelném množstvím, kdy nukleotid určený pro začleněni neodpovídá sekvenci templátu následující hybridizovaný primer.
• · · · ♦ · · ·· ·· ··* · · · · · · • · · · · ···· 9 9
Na obrázku č. 7c je zobrazen výsledek inkubace Cy5™ -dCTP se vzorkem, který se inkuboval s primerem pl81. Objevila se řada fluorescenčních bodů, což indikuje, že proběhlo začlenění fluorescenční báze v detekovatelném množství, přičemž nukleotid určený pro začlenění odpovídá sekvenci templátů následujícím po hybridizovaném primeru.
Obrázek č. 8 zobrazuje hybridizaci sond s oligonukleotidy zachycenými na Nucleolink před a po proběhnutí cyklů PCR. Obrázek ukazuje hybridizaci R58 s CP2 (5'-(fosfát)TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) (značeno plnými kruhy), CP8 (5' (aminohexametylen)-TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) (značeno plnými trojúhelníky), CP9 (5' (hydroxyl)TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) (značeno kosočtvercem), CP10 (5' (dimetoxytrityl)-TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) (značeno prázdnými kruhy) a CPU (5'(biotin)~ TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) (značeno prázdnými trojúhelníky).
Příklady provedeni vynálezu
Příklad 1: Příprava templátů DNA vhodných pro vytvoření kolonií DNA
Kolonie DNA se vytvořily z templátů DNA a koloniových primerů. Termín „sekvence koloniového primeru znamená sekvenci odpovídající sekvenci koloniového primeru a nazývá se „oligonukleotidovou sekvencí Y nebo „oligonukleotidovou sekvencí Z'.
Vlastnosti koloniových primerů se vybraly na základě výběru oligonukleotidových primerů, které vykazují slabé nespecifické začlenění nukleotidu v přítomnosti tepelně stabilní DNA polymerázy. Koloniové primery CPa (5' -.p CACCAACCCAAACCAACCCAAACC) a CPp (5'-p AGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) se vybraly na základě jejich malé schopnosti začlenit • ···♦ · · ·· ·· • · · · · · · · * • · · · · · · · ♦ · · • ··· * fc ··· · radioaktivně značeného nukleotidu [a32P-dCTP] v přítomnosti stabilní DNA polymerázy (AmpliTaq, Perkin Elmer, Foster City, CA) ve standardním pufru za podmínek teplotních cyklů (teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po dobu 1 minuty, teplota 72 °C po dobu 2 minut, 50 cyklů).
modelový
DNA o velikosti 3,2 Kb se vybral jako demonstruje možnost vytvoření kolonií za použití koloniových primerů
Fragment systém, který lidský gen kódující produktů (HUOXRAGE, a templátů DNA. Vybraný templát obsahuje receptor pro další glykozylaci konečných
GenBank číslo uložení D28769). RAGE specifické primery jsou uvedeny v tabulce
1. Templát o velikosti 3,2 kb pomocí PCR se amplifikoval
0,1 μς lidské genomové DNA s 1 μΜ primery TP1 a TP2 s j ednotkou
DNA polymerázy
City, CA) standardním °C po dobu °C po (AmpliTaq, Perkin Elmer, Foster pufru a za podmínek teplotních cyklů (teplota 30 vteřin, teplota 65 °C po minut, 40 cyklů).
dobu velikosti 3,2 Kb účelem vytvoření se použil jako templát dvou kratších templátů ve dobu 1 minuty, teplota
Tento fragment DNA o kolonie (templát A a B). kratších templátů obsahují obě
Primery sekvence, pro templát a sekvence účelem amplifikace DNA pro sekundární PCR, za vhodných pro vytvoření používané k vytvoření které koloniových primerů jsou specifické
CP2, za
CPI a obecném na pevném povrchu. V vzniku templátů DNA se upraví případě na jeho
PCR primer používaný ke
5'konci buď fosfátovou nebo thiolovou skupinou. Po amplifikaci
PCR se vytvořily fragmenty DNA, které obsahují sekvence koloniových primerů na jednom nebo na obou koncích, které sousedí s DNA fragmentem RAGE (popisuje se na obrázku č. 2a).
Templát A (dvouřetězcový templát, který obsahuje sekvenci koloniového primerů CPP na obou koncích) se vytvořil s 0,1 ng templátů o velikosti 3,2 Kb s 1 μΜ primery TPA1 a 1 μΜ TPA2 s 1 jednotkou DNA polymerázy (AmpliTaq, Perkin Elmer, Foster City, «
CA) ve standardním pufru a za podmínek teplotních cyklů (teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po dobu 60 vteřin, teplota 72 °C po dobu 60 vteřin, 30 cyklů) . Produkty se pak čistily na Qia-quick koloně od firmy Qiagen (Qiagen
GmbH, Hilden, Německo).
Templát B (dvouřetězcový templát, který obsahuje sekvence koloniových primerů odpovídající ΟΡβ) se vytvořil s 0,1 ng templátu o velikosti 3,2 kb s 1 μΜ primery TPB1 a 1 μΜ TPB2 s 1 jednotkou DNA polymerázy (AmpliTaq, Perkin Elmer, Foster City, CA) ve standardním pufru a za podmínek teplotních cyklů (teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po dobu 1 minuty, teplota 72 °C po dobu 1 minuty, 30 cyklů) . Produkty se pak čistily na koloně Qia-quick od firmy Qiagen (Qiagen GmbH, Hilden, Německo).
Templát B' (dvouřetězcový templát obsahující sekvence koloniových primerů odpovídající CPa a ΟΡβ na obou koncích) se vytvořil 0,1 ng templátu o velikosti 3,2 kb s 1 μΜ primery TPB3 a 1 μΜ TPB4 s 1 jednotkou DNA polymerázy (AmpliTaq, Perkin Elmer, Foster City, CA) ve standardním pufru a za podmínek teplotního cyklu (teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po dobu 1 minuty, teplota 72 °C po dobu 1 minuty, 30 cyklů). Produkty se pak čistily na kolonách Qia-quick od firmy Qiagen (Qiagen GmbH, Hilden, Německo).
Všechny použité specifické oligonukleotidy při přípravě templářů DNA a pro vytvoření kolonií se uvádějí v tabulce č. 1 spolu s libovolnou chemickou modifikací.
Obecné schéma vykazující chemické začlenění koloniových primerů a templářů na skleněném povrchu je zobrazeno na obrázku č. 2b, kde se provedla derivatizace pomocí ATS (aminopropyltrietoxysilan).
Tabulka č. 1: Seznam oligonukleotidů používaných při přípravě templátů a vytvoření kolonií
název sekvence DNA souřadnice (orientace) úprava oligonukleotidů použití
TP1 9810 (R) templát o velikosti 3,2 kb
TP2 6550 (F) templát o velikosti 3,2 kb
CPI žádné 5'P vytvoření kolonií
CP2 žádné 5'P vytvoření kolonií
CP3 žádné 5'SH vytvoření kolonií
CP4 žádné 5'SH vytvoření kolonií
CP5 žádné 5'P vytvoření kolonií
CP6 žádné 5'P vytvoření kolonií
CP7 žádné 5' (NH2) vytvoření kolonií
CP8 žádné 5' (NH2) vytvoření kolonií
CP9 žádné 5'(OH) kontrolní
···· ·· ·· e- · · · ··· · · ··♦
oligo
CP10 žádné 5'(DMT) kontrolní oligo
CPU žádné 5' (biotin) kontrolní oligo
TPA1 6550 (F) 5'P templát A
TPA2 7403 (R) 5'P templát A
TPB3 9049 (F) žádné templát B'
TPB1 9265 (F) žádné templát B
TPB2 8411 (R) 5'P templát B
TPB4 9265 (R) 5'SH templát B'
Souřadnice pocházejí z „HUMOXRAGE gene, přístupové číslo je
D28769, symbol (R) znamená „reverzní a symbol (F) znamená „dopředný.
Příklad la: Příprava náhodného templátů DNA lemovaného degenerativním primerem
Fragment DNA o velikosti 3,2 kb se vybral jako modelový systém pro demonstraci možnosti vytvořit kolonie za použití amplifikace PCR s náhodnými primery. Tato strategie se může aplikovat sekvenováním fragmentů DNA přibližné velikosti 100 kb a kombinací fragmentů s celými genomy. Fragment DNA o velikosti 3,2 kb se vytvořil pomocí PCR z lidské genomové DNA za použití primerů PCR TP1 5'-pGAGGCCAGAACAGTTCAAGG a TP2 5'pCCTGTGACAAGACGACTGAA, jak se popisuje v příkladu 1. Fragment o velikosti 3,2 kb se pak štěpil na menší fragmenty kombinací restrikčních enzymů (EcoRI a Hhal za vzniku čtyř fragmentů o velikosti 800 bp). Štěpené nebo neštěpené fragmenty DNA se pak smíchaly s degenerovaným primerem p252 (5'-P TTTTTTTTTTISISISISISIS, kde symbol I znamená inosin (který tvoří pár s A, T a C) a symbol S znamená G nebo C a kovalentně se váže na prohlubně „Nucleolink (Nunc, Německo). Ve zkumavkách pak proběhla náhodná PCR amplifikace na pevné fázi a vizualizace se provedla hybridizací se značenými sondami DNA, jak se popisuje v příkladu 2a.
Příklad 2: Kovalentní navázání templátů DNA a koloniových primerů na pevný podklad (plast) a tvorba kolonií s koloniovým primerem
Kovalentní navázání templátů a koloniového primeru na pevný podklad (plast)
Koloniový primer (CP2, ' _ TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAG
GAAAGGGAAAGGG s fosforylovaným
5'koncem (Microsynth GmBH,
Švýcarsko) se zachytil v prohlubních plastových mikrotitračních destiček „Nucleolink (Nunk,
Dánsko) • ···· ·· ·· ·· ··· ··· ··· • ··· « ···· · · • · · · · · · · ·· ·· · · · · · v přítomnosti různých dávek templátu A (připraveno způsobem popsaným v příkladu 1) . 8 prohlubní se provedlo ve dvou provedeních se sedmi ředěními templátu 1/10 s primerem CP2. Nejvyšší počáteční koncentrace je 1 nM.
Prohlubně mikrotitračních destiček, na které se kovalentně navázaly koloniový primer CP2 a templát se připravily následujícím způsobem. Do každé prohlubně mikrotitrační destičky „Nucleolink se přidalo 30 μΐ 1 μΜ roztoku koloniového primeru s různou koncentrací templátu ředěného z 1 nM v 10 mM 1-metylimidazol (pH7,0) (Sigma Chemicals). Do každé prohlubně se přidalo k roztoku koloniového primeru a templátu 10 μΐ 40 mM l-etyl-3-{3-dimetylaminopropyl}-karbodimidu (hodnota pH je 7,0) (Sigma Chemicals) v 10 mM 1-metyl-imidazolu. Prohlubně se pak zatavily a inkubovaly se při teplotě 50 °C přes noc. Inkubační prohlubně se pak dvakrát vypláchly 200 μΐ RS (0,4 Ά NaOH, 0,25 % Tween 20) , inkubovaly se 15 minut s 200 μΐ RS, dvakrát se promyly 200 μΐ RS a dvakrát s 200 μΐ TNT (TNT tvoří 100 mM TrisHCl pH 7,5, 150 mM NaCl, 0,1 % Tween 20). Zkumavky se nechaly vyschnout při teplotě 50 °C a uchovávaly se v zataveném plastovém sáčku při teplotě 4 °C.
Tvorba kolonií
V každé prohlubni se vyvolal růst kolonií přidáním 20 μΐ směsi PCR, čtyř dNTP (0,2 mM) , 0,1 % BSA (bovinní sérový albumin), 0,1 % Tween 20, 8% DMSO (dimetylsulfoxid, Fluka, Švýcarsko), 1 x koncentrovaného pufru PCR a 0,025 jednotek/μΙ DNA polymerázy AmpliTaq (Perkin Elmer, Foster City, CA). Destičky s prohlubněmi se pak umístily do teplotního cyklovače a růst kolonií se uskutečnil inkubací zatavených prohlubní po dobu 5 minut při teplotě 94 °C a proběhlo 50 cyklů při následujících podmínkách: teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po dobu 2 minut, teplota 72 °C po dobu 2 minut.
• · * · · · · · · ···· · ···· · ·
Po ukončeni uvedeného programu se prohlubně uchovávaly při teplotě 8 °C do dalšího použití. Dříve než se provede hybridizace se prohlubně naplnily 50 μΐ pufru TE (pufr TE obsahuje 10 mM Tris, 1 mM EDTA pH 7,4) a zahřály se na teplotu 94 °C po dobu 5 minut a ochladily se na ledu. Sonda se přidala po opětném zahřátí na teplotu 45 °C.
Zviditelnění kolonií
Sonda:
Sondu tvoří fragment DNA obsahující 1 405 párů baží, který zahrnuje na svém 3'konci sekvenci templátu (polohy nukleotidů 8 405 až 9 259) . Sonda DNA se syntetizovala pomocí PCR za použití primeru p47 (5 ' -GGCTAGGAGCTGAGGAGGAA) amplif ikuj ícího od báze 8 405 a TP2 biotinylovaného na 5' konci amplifikuj ícího od báze 9 876 kódujícího DNA-řetězce.
Hybridizace a detekce:
Sonda se naředila na koncentraci 1 nM v pufru „easyhyb (Boehringer Mannheim, Německo) a do každé prohlubně se přidalo 20 μΐ. Sonda a kolonie se denaturovaly při teplotě 94 °C po dobu 5 minut a pak se inkubovaly po dobu 6 hodin při teplotě 50 °C. Nadbytek sondy se odstranil promytím při teplotě 50 °C v 2x koncentrovaném SSC 0,1 % roztokem Tween. Sondy DNA se navázaly na zeleně fluorescenční fluorosféry potažené avidinem o průměru 0,04 μ (Molecular Probes) v pufru TNT po dobu jedné hodiny při teplotě místnosti. Nadbytek kuliček se odstranil promytím pufrem TNT. Kolonie se zviditelnily mikroskopicky a provedla se analýza zobrazení, jak se popisuje v příkladu 2a. Na obrázku č. 3 je zobrazen počet kolonií pozorovaných v poli mikroskopu při 20-ti násobném zvětšení, jako funkce koncentrace templátu vázaného na prohlubeň. Nejnižší 13 koncentrace detekovatelného templátu odpovídá koncentraci 10
M.
Přiklad 2a: Kovalentní navázáni templářů DNA a koloniových primerů na pevný podklad (plast) a tvorba kolonií s degenerovaným primerem.
Kovalentní navázání templátu a koloniového primeru na pevný podklad (plast)
Mikrotitrační prohlubně s p252 s fragmenty templářové DNA se připravily následujícím způsobem: do každé prohlubně „Nucleolink se přidalo 30 μΐ 1 μΜ roztoku koloniového primeru p252 s různou koncentrací templátu ředěného z koncentrace 0,5 nM v 10 mM 1-metylimidazolu (pH 7,0) (Sigma Chemicals). Do každé prohlubně se k roztoku koloniového primeru a templátu přidalo 10 μΐ 40 mM l-etyl-3-(dimetylaminopropyl)karbodiimidu (pH 7,0) (Sigma Chemicals) v 10 mM 1-metylimidazolu. Prohlubně se pak zatavily a inkubovaly se přes noc při teplotě 50 °C. Po inkubaci se prohlubně promyly dvakrát 200 μΐ RS (0,4 A NaOH, 0,25 % Tween 20), vše se pak inkubovalo po dobu 15 minut s 200 μΐ RS, pak následují dvě promytí 200 μΐ RS a dvě promytí 200 μΐ TNT (pufr TNT zahrnuje 100 mM TrisHCl pH7,5, 150 mM NaCl, 0,1 % Tween 20). Zkumavky se sušily při teplotě 50 °C a uchovávaly se v zataveném plastovém sáčku při teplotě 4 °C.
Tvorba kolonii
Tvorba kolonií proběhla podle upraveného protokolu, který umožňuje náhodnou iniciaci v každé prohlubni s 20 μΐ směsi PCR, která obsahuje čtyři dNTP (0,2 mM každého dNTP), 0,1 % BSA, 0,1 % Tween 20, 8% DMSO (dimetylsulfoxid, Fluka, Švýcarsko), lx koncentrovaný pufr a 0,025 jednotek/μΙ DNA polymerázy AmpliTaq (Perkin Elmer, Foster City, CA) . Destičky s prohlubněmi se pak umístily do teplotního cyklovače a proběhla amplifikace inkubací zatavených prohlubní po dobu 5 minut při teplotě 94 °C a proběhlo 50 cyklů za následujících podmínek: teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po
dobu 2 minut, teplota 72 °C po dobu 2 minut. Po dokončeni tohoto programu se prohlubně udržovaly při teplotě 8 °C do dalšího použití. Před hybridizací se prohlubně naplnily 50 μΐ pufru TE (pufr TE obsahuje 10 mM Tris, 1 mM EDTA pH 7,4) a obsah se zahřál na teplotu 94 °C po dobu 5 minut a ochladil se na ledu. Sonda se přidala po ohřátí na teplotu 45 °C.
Zviditelnění kolonií
Sondy:
Dva fragmenty DNA o velikosti 546 a 1 405 párů baží obsahující sekvence původního templátu se amplifikovaly pomoci PCR. Kódující DNA-řetězec se značil biotinem za použití PCR primerů značeným biotinem na jeho 5'konci. Souřadnice párů baží sondy jsou 6 550 až 7 113 a 6 734 až 9 805.
Hybridizace a detekce:
Sonda se ředila na koncentraci 1 nM v pufru „easyhyb (Boehringer.Mannheim, Německo) a do každé prohlubně se přidalo 20 μΐ. Sonda a kolonie se denaturovaly při teplotě 94 °C po dobu 5 minut a pak se inkubovaly po dobu 6 hodin při teplotě 50 °C. Nadbytek sondy se odstranil promytím při teplotě 50 °C v 2x koncentrovaném SSC s 0, 1 % roztokem Tween. Sondy DNA se navázaly na zeleně fluorescenční fluorosféry potažené avidinem o průměru 40 nanometrů (Molecular Probes, Portland, OR) v pufru TNT po dobu jedné hodiny při teplotě místnosti. Nadbytek částic se odstranil promytím pufrem TNT. Fluorescence se detekovala za použití inverzního mikroskopu (za použití objektivu 20x/0,4 LD Achroplan na Axiovert S100TV s are rtuťovou lampou HBO 100W/2, Caři Zeiss, Oberkochen, Německo) spojeného s kamerou 768 (Η)x512(V)pixel-CCD (Princeton Instruments lne. Trenton, NJ, USA). Expozice trvala 20 vteřin přes sadu filtrů XF22 (Ex. filtr: 485DF22, dichroický filtr: 505DRLPO2 Em: 530DF30) a XF47 (Ex. filtr: 640DF20, dichroický filtr: 670DRLPO2 Em: 682DF22) od firmy Omega Optical ····· ·· ·· ·· · ··« ··· · · · · ···· · ···· · · · • ·«······· · • ········ ······ · · ·· ·· ··· (Brattleboro Vt) v případě značení FITC a Cy5. Data se analyzovala za použiti software WinWiew (Princeton Instruments lne., Trenton NJ, USA). Počet kolonií v poli mikroskopu se spočítal ve dvou provedení prohlubní za použití softwaru pro analýzu zobrazení.
Příklad 3: Sekvenační diskriminace ve různých koloniích, která pochází z různých poměrů dvou různých kovalentně vázaných templátů a koloniového primerů
Kovalentní navázání templátů a koloniového primerů na pevný podklad (plast)
Koloniový primer (CP2, 5'-TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGG
GAAAGGG s fosforylovaným 5'koncem (Microsynth GmBH, Švýcarsko) se zachytil v prohlubních plastových mikrotitračních destiček „Nucleolink (Nunk, Dánsko) v přítomnosti různých dávek templátů A (připraveno způsobem popsaným v příkladu 1) . Série 8 prohlubní se provedla ve třech provedeních se sedmi ředěními obou templátů 1/10. Ředění templátů jsou upraveny opačným směrem tak, že nejvyšší koncentrace templátů se shoduje s nejnižší.
Prohlubně mikrotitračních destiček, na které se kovalentně navázaly koloniový primer CP2 a oba templáty se připravily následujícím způsobem. Do každé prohlubně mikrotitrační destičky „Nucleolink se přidalo 30 μΐ 1 μΜ roztoku koloniového primerů CP2 s různou koncentrací obou templátů ředěného z 1 nM v 10 mM 1-metylimidazolu (pH7,0). (Sigma Chemicals). Do každé prohlubně se přidalo k roztoku koloniového primerů a templátů 10 μΐ 40 mM l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)-karbodimidu (hodnota pH je 7,0) (Sigma Chemicals) v 10 mM 1-metylimidazolu. Prohlubně se pak zatavily a inkubovaly se při teplotě 50 °C přes noc. Inkubační prohlubně se pak dvakrát vypláchly 200 μΐ RS (0,4 N NaOH, 0,25 % Tween 20), inkubovaly • ·
se 15 minut s 50 μΐ RS, třikrát se promyly 50 μΐ RS a třikrát s 50 μΐ TNT (TNT tvoři 100 mM TrisHCl pH 7,5, 150 mM NaCl, 0,1 % Tween 20). Zkumavky se uchovávaly v TNT při teplotě 4 °C.
Tvorba kolonií
V každé prohlubni se vyvolal růst kolonií přidáním 20 μΐ směsi PCR, kterou tvoří čtyři dNTP (0,2 mM) , 0,1 % BSA (bovinní sérový albumin), 0,1 % Tween 20, 8% DMSO (dimetylsulfoxid, Fluka, Švýcarsko), 1 x koncentrovaný pufr
PCR a 0,025 jednotek/μΐ DNA polymerázy AmpliTaq (Perkin Elmer, Foster City, CA).
Destičky s prohlubněmi se pak umístily do teplotního cyklovače a růst kolonií se uskutečnil inkubaci zatavených prohlubni po dobu 5 minut při teplotě 94 °C a proběhlo 50 cyklů při následujících podmínkách: teplota 94 °C po dobu 30 vteřin, teplota 65 °C po dobu 2 minut, teplota 72 °C po dobu 2 minut. Po ukončení uvedeného programu se prohlubně uchovávaly při teplotě 8 °C do dalšího použití. Dříve než se provede hybridizace se prohlubně naplnily 50 μΐ pufru TE (pufr TE obsahuje 10 mM Tris, 1 mM EDTA pH 7,4) a zahřály se na teplotu 94 °C po dobu 5 minut a ochladily se na ledu. Sonda se přidala po opětném zahřátí na teplotu 50 °C.
Zviditelnění kolonií
Sondy:
Dva fragmenty DNA o velikosti 546 a 1 405 párů baží odpovídající sekvencím fragmentu DNA o velikosti 3,2 kb na svém 5'a 3'konci se amplifikovaly pomocí PCR. Kódující DNAřetězec se značil bíotínem za použití PCR primerů značeného biotinem (popisuje se v příkladu 2). Dvě sondy se denaturovaly zahřáním na teplotu 94 °C po dobu 5 minut, pak se rychle ochladily v 1 M NaCl, 10 mM Tris pH 7,4 a nechaly se navázat na fluorosféry potažené streptavidinem o průměru 0,04 μιη, které
se značily různými barvivý po dobu 2 hodin při teplotě 4 °C. Sondy vázané na částicích se ředily 20 krát v pufru „easyhyb předehřátém na teplotu 50 °C. Do každé prohlubně, která obsahuje denaturované kolonie se přidalo 20 μΐ sond.
Hybridizace a detekce:
Hybridizace se provedla při teplotě 50
Nadbytek sondy se odstranil promytím při °C po dobu 5 hodin.
°C v 2x teplotě koncentrovaném
SSC s 0,1 roztokem
SDS.
Kolonie se zviditelnily mikroskopem objektivem umožňuj ící zvětšení s expozicí analýza zobrazení způsobem popsaným č. 4a je uvedeno zobrazení kolonií dvacetinásobné vteřin provedla se
2a. Na obrázku v příkladu vytvořených z templátů a negativních kontrol. Na obrázku č.
4b jsou zobrazeny kolonie vytvořené z templátů ve stejné poloze ve stejné prohlubni zviditelněné dvěmi rozdílnými barvami a
Obrázek č. 4c zobrazuje souřadnice obou sekci mikroskopického pole. Obrázek č. kolonie z různých templátů nejsou shodné.
negativní kontroly, typů kolonií v pod4c demonstruje, že
Příklad 4: Kovalentní navázání templátů DNA a oligonukletidů na skleněné pevné podklady
Skleněná sklíčka derivatizovaná aminosilanem se použila jako pevný podklad pro kovalentní zachycení oligonukleotidových sond upravených thiolovou skupinou za použití heterobifunkčních síťovacích činidel. Vybraná činidla vykazují skupiny reaktivní s thiolovou skupinou (maleimid) a aminoskupinou (sukcinimidylester) . Zachycení oligonukleotidu a stabilita imobilizovaných molekul silně závisí na stabilitě síťovacího činidla za daných podmínek. Reakční schéma templátů DNA nebo zachycení oligonukleotidů na skle se popisuje na obrázku č. 5.
• ···· · · · • * *- ··· · · • · · · · · « • · ·· ·· · · ·
Hodnotila se stabilita při uchovávání připravených skleněných sklíček se síťovacími činidly s-MBS a s-SIAB a jejich teplotní stabilita. Důležitým faktorem, který ovlivňuje rozsah hybridizace imobilizovaných oligonukleotidových sond je hustota zachycených sond (popisuje se v publikaci Beattie et al., 1995 a Joss et al., 1997). Tento účinek se studoval při různých koncentracích oligonukleotidů během imobilizace a testování hustoty zachycených oligonukleotidů hybridizací.
Materiály a metody
Ošetření mikroskopických skleněných sklíček kyselinou
Mikroskopická skleněná sklíčka (Knittel, Měrek ABS) se namočily do (HelmanexIIR základního roztoku Helmanex během jedné hodiny
0,25 %,
IN NaOH). Sklíčka se promyla vodou, ponořily se přes noc do 1M HC1, promyly se opět vodou a ošetřily se po dobu jedné hodiny roztokem kyseliny sírové (H2SO4/H2O poměru objemů 1/1 a přidalo se malé množství čerstvého sulfátu amonného). Sklíčka se promyla vodou etanolem a nakonec čistým acetonem. Sklíčka se sušila uchovávala ve vakuu až do doby dalšího použití.
Silanizace povrchu
Předem ošetřená sklíčka se ponořila do 5 % roztoku ATS (aminopropyltriethoxysilan, Aldrich) v acetonu. Silanizace se provedla při teplotě místnosti po dobu dvou hodin. Po třech promytích v acetonu (jedno promytí trvá 5 minut) se sklíčka promyla etanolem, sušily se a uchovávaly se vakuu.
Zachycení síťovacího činidla
Síťovací činidla s-MBS a s-SIAB (sulfo-m-maleimidobenzoylN-hydroxysukcinimidester a zkratka s-SIAB znamená sulfo-Nsukcinimidyl[4-jodoacetyljaminobenzoát, Pierce, Rockford IL) se připravily jako 20 mM roztoky v PBS (fyziologický roztok pufrovaný fosforečnanem, 0,1 M NaH2PO4, pH7,2, 0,15 M NaCl) .
Sklíčka upravená sílaném, na která se naneslo 80 μΐ roztoku
siťovacího činidla se přikryly krycími mikroskopickými sklíčky a nechaly se reagovat po dobu 5 hodin při teplotě 20 °C. Sklíčka se promyla PBS, krátce se ponořila do vody a opláchla se etanolem. Sklíčka se pak sušila a uchovávala se ve vakuu ve tmě do doby dalšího použití.
Zachycení oligonukleotidu
Oligonukleotidy se syntetizovaly tak, že se jejich 5' konec upravil thiolovou skupinou (CP3 a CP4 Eurogentec, Brussels) nebo fosforečnanovou částí (CPI a CP2, Eurogentec, Brussels) za použití standardní chemie fosforamiditu.
Oligonukleotidové primery, které mají na svém 5'konci thiolovou skupinu (CP3 a CP4) se připravily jako 100 μΜ roztoky ve fyziologickém roztoku pufrovaném fosforečnanem (NaPi obsahuje 0,1 M NaH2PO4 pH6,6, 0,15 M NaCl) a na sklíčka se nanesly kapky o objemu 1 μΐ, přičemž sklíčka se funkcionalizovala siťovacím činidlem. Sklíčka se nechala kultivovat po dobu 5 hodin při teplotě místnosti. Sklíčka se uchovávala v saturované vlhké atmosféře, aby se předešlo odpaření. Sklíčka se promyla za stálého míchání pufrem NaPi. V případě studia teplotní stability se sklíčka dvakrát ponořila do pufru Tris (10 mM, pH8) po dobu 5 minut při teplotě 100 °C a přímo se ponořily do roztoku 5x koncentrovaný SSC (0,75 M NaCl, 0,075 M citrát sodný, pH 7) při teplotě 4 °C po dobu 5 minut. Sklíčka se až do dalšího použiti uchovávala v 5x koncentrovaném roztoku SSC při teplotě 4 °C.
Oligonukleotidové primery, které mají na svém 5'konci fosfátovou skupinu (CPI a C2), se aplikovaly (v kapkách o celkovém objemu 1 μΐ) po dobu 5 hodin při teplotě místnosti na aminoderivatizované skla, jako 1 μΜ roztoku v 10 mM 1metylimidazolu (pH 7,0) (Sigma Chemicals), který obsahuje 40 mM l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)karbodiimid (EDC, Pierce, • ·
Rockford, IL) . Sklíčka se promyla dvakrát při teplotě 100 °C v pufru Tris (tento pufr obsahuje 10 mM Tris pH 8) a přímo se ponořily do 5x koncentrovaného roztoku SSC při teplotě 4 °C po dobu 5 minut. Sklíčka se uchovávala v 5x koncentrovaným roztoku SSC při teplotě 4 °C až do doby dalšího použití.
Zachycení oligonukleotidu a templátové DNA
Oligonukleotidové primery, které mají na svém 5'konci thiolovou skupinu, (CP3 a CP4) a templát B's thiolovou skupinou na svém 5'konci se smíchaly ve fyziologickém roztoku pufrovaném fosforečnanem (roztok NAPi obsahuje 0,1 M Nal^PCU pH6,6, 0,15 M NaCl). Koncentrace templářů DNA kolísá od 0,001 do 1 μΜ a koncentrace primeru se pohybuje v rozmezí od 0,1 do 100 μΜ, přičemž optimální koncentrace templátu je 1 μΜ a v případě primeru to je hodnota 100 μΜ. Dále se postupuje podle způsobu zachycení primerů CP3 a CP4 na funkční povrch sklíčka popsaného shora v textu.
Oligonukleotidové primery, které mají na svém 5'konci fosfátovou skupinu, (CPI a CP2) a templát B s fosfátovou skupinou na svém 5' konci se smíchaly ve 10 mM roztoku 1metylimidazolu (pH 7,0) (Sigma Chemicals), který obsahuje 40 mM l-etyl-3-(3-dimetylaminopropyl)karbcdiimid (EDC, Pierce, RockFord, IL) . Koncentrace templátu DNA kolísá od 0,001 do 10 nM a koncentrace primeru se pohybuje v rozmezí od 0,1 do 1 μΜ, přičemž optimální koncentrace templátu je 10 nM a v případě primeru to je hodnota 1 μΜ. Dále se postupuje podle způsobu zachycení primerů CPI a CP2 na aminoderivatizovaný povrch sklíčka popsaného shora v textu.
Hybridizace s fluorescenčně značenými sondami
Oligonukleotidové sondy, které jsou fluorescenčně značené molekulami Cy5 nebo FITC na jejich 5'konci, se syntetizovaly Eurogentec (Brussels). Aby se zabránilo nespecifické • ·
hybridizaci, sklíčka se inkubovala s blokačním roztokem (tento roztok obsahuje 5 x koncentrovaný roztok SSC, Tween 0,1 %, BSA 0,1 %) po dobu jedné hodiny a promyly se za stálého míchání v 5x koncentrovaném roztoku SSC (promývání proběhlo dvakrát a trvalo 5 minut). Oligonukleotidové sondy se ředily na koncentraci 0,5 μΜ v 5 x koncentrovaném roztoku SSC, Tween 0,1 % a nanesly se na skleněný povrch po dobu 2 hodin při teplotě místnosti. Sklíčka se propláchla za stálého míchání při teplotě 37 °C 5x koncentrovaným roztokem SSC po dobu 5 minut a dvakrát 2 x koncentrovaným roztokem SSC, který obsahuje 0,1 % SDS, po dobu 5 minut.
Hybridizace s radioaktivně značenými sondami
Jako hybridizační sondy za účelem kvantifikovat výtěžek hybridizace se použily radioaktivně značené oligonukleotidy komplementární s kovalentně vázanými oligonukleotidy.
Za použití polynukleotidové kinázy bakteriofága T4 (New England Biolabs, Beverly, MA) se enzymaticky značily 5'konce oligonukleotidů pomocí [y-32P]dATP (Amersham, UK) . Nadbytek [y32P]dATP se odstranil kolonou „Chromá Spin TE-10 (Clontech, Palo Alto, CA). Radioaktivně značené oligonukleotidy (0,5 μΜ oligonukleotidů v 5x koncentrovaném roztoku SSC, Tween 0,1 %) se nanesly na derivatizovaná sklíčka po dobu 2 hodin při teplotě místnosti. Sklíčka se jednou promyla za stálého míchání v 5x koncentrovaném roztoku SSC po dobu 5 minut a dvakrát v 2x koncentrovaném roztoku SSC, SDS 0,1 % po dobu 5 minut při teplotě 37 °C. Po hybridizaci se stanovila specifická aktivita za použití scintilačniho počítače.
Pozorování mikroskopem
Sklíčka se přelila 5x koncentrovaným roztokem a překryla se mikroskopickým krycím sklíčkem. Fluorescence se detekovala za použití inverzního mikroskopu model Axiovert S100TV, který
má are rtuťovou lampu HBO 100W/2 (Carl Zeiss, Oberkochen, Německo) spojený s kamerou CCD vybavenou CCD Kodak s formátem 768(H) x 512 (V) pixelů, 6,91 x 4,6 mm, velikost pixelu je 9 x 9 μιπ2 (Princeton Instruments lne. Trenton, NJ, USA) . Doba expozice je 1 až 50 vteřin a použil se objektiv LD Achroplan 20x/0,400 (Crl Zeiss, Oberkochen, Německo) a sada filtrů XF22 (ex. 485DF22, dichroický filtr 505DRLPO2 Em: 530DF30) a XF47 (Ex: 640DF20, dichroický filtr 670DRLPO2 Em: 682DF22) od Omega Optical (Brattleboro VT) v případě FITC a Cy5 fluoroforů. Data se analyzovaly za použití software Winwiew (Princeton Instruments lne., Trenton NJ, USA).
Výsledky
Hodnocení stability zachycení při uchovávání a teplotní stability.
Hodnotila se stabilita při uchovávání sklíček připravených s s-MBS a s-SIAB. Protože tato činidla jsou citlivá vůči hydrolýze, výsledky zachycení oligonukleotidů budou záviset na jejich stabilitě. Aminoderivatizovaná sklíčka se funkcionalizovaly čerstvě připravenými síťovacími činidly, jako je s-MBS a s-SIAB. Funkcionalizovaná sklíčka se uchovávala po zachycení pomocí síťovacího činidla po dobu 10 dni v desikátoru ve vakuu ve tmě a při teplotě místnosti. Po této době se testovaly skladovaná sklíčka (t= 10 dní) a sklíčka, která bezprostředně reagovaly se síťovacími činidly (t= 0) . Výsledky získané po reakci oligonukleotidem upraveným thiolovou skupinou a hybridizaci s komplementární fluorescenční sondou se porovnaly pro oba časy t= 0 a t= 10 dní.
Po imobilizaci sklíčka funkcionalizovaná s-SIAB jsou po deseti dnech skladování zcela stabilní, jak je zřejmé ze stejných výsledků hybridizace pro t= 0 a t= 10 dní. Naopak spojení s-MBS se skleněným povrchem je méně stabilní a vede k
% ztrátě výtěžku zachyceni oligonukleotidů a hybridizace při deseti dnech skladování. Preferují se sklíčka funkcionalizovaná pomocí s-SIAB a mohou se připravovat s předstihem a mohou se uchovávat suchá ve vakuu, ve tmě a po dobu alespoň deseti dní, aniž dojde k žádnému snížení výtěžku zachycení sondy.
Za účelem hodnocení teplotní stability oligonukleotidů zachycených na skleněném povrchu se sklíčka vystavila ošetření při teplotě 100 °C po dobu 5 minut v 10 mM Tris-HCl, pH 8. Zbývající oligonukleotid, který zůstává po promytí stále imobilizovaný, se testoval hybridizací s fluorescenčně značeným komplementárním oligonukleotidem. Přibližně 14 % zachycených molekul se uvolnilo ze sklíček upravených pomocí s-SIAB a 17 % zachycených molekul se uvolnilo ze sklíček upravených pomocí s-MBS po prvních 5 minutách promývání, ale
další uvolnění se detekovalo
případy (tabulka č. 1A) . Tyto
srovnání s výsledky získanými
1996, kde se uvolnilo více
připoj ených na fúzované silik
síťovacího činidla
při druhém promytí pro oba výsledky jsou povzbudivé ve v publikaci Chrisey et al·., jak 62 % oligonukleotidů ?nová sklíčka prostřednictvím SMPB (sukcinimidyl-4-[pmaleimidofenyljbutyrát) . Tyto výsledky se naměřily po deseti minutách ošetření v PBS při teplotě 80 °C.
Tabulka č. 1A: Studie teplotní stability
výsledky hybridizace (jednotky normalizované na 100 %)
čerstvě zachyceno po 5 min promytí při teplotě 100 °C po 2 x 5 minutách promytí při teplotě 100 °C
s-MBS 80±6 . 69±4 7 3±4
s-SIAB 100±9 84±8 87±3
• ·
Oligonukleotidy se zachytily na sklíčka funkcionalizovaná buď s-MBS nebo s-SIAB. Zachycené oligonukleotidy se testovaly hybridizaci s fluorescenčně značeným komplementárním oligonukleotidem. Fluorescenční signál je normalizovaný na hodnotu 110 v případě nejsilnějšího získaného signálu. Uvádějí se průměrné hodnoty tří provedení analýzy.
Hybridizace jako funkce zachycení sondy
Studovaly jsme rozsah hybridizace kovalentně vázaných oligonukleotidových sond jako funkci povrchového pokrytí zachycených oligonukleotidů za použití síťovacích činidel sMBS a s-SIAB a reakcí zprostředkovaných EDC. Koncentrace oligonukleotidů aplikovaných za účelem imobilizace byla 1 μΜ EDC a v případě síťovacího činidla kolísá v rozmezí 1 až 800 μΜ. Hustota na povrchu se testovala hybridizaci se sondami značenými 32P. Optimální koncentrace zachycení primerů za použití heterobifunkčních síťovacích činidel je 500 μΜ, které souhlasí s povrchovou hustotou hybridizovaných molekul 60 fmol/mm2 v případě s-MBS a v případě s-SIAB 270 fmol/mm2.
Podobné hustoty se dosáhlo v případě s-MBS za použití zachycení oligonukleotidů s fosfátovou skupinou na svém
5'konci na aminosilanizovaném skle zprostředkovaného
EDC/imidazolem. Pouze 1 μΜ roztoky oligonukleotidů jsou nezbytné pro dosažení stejného výsledku zachycení.
Tabulka č. 1B: Hybridizace jako funkce zachycení sondy
Hybridizované oligo (fmol/mm )
koncentrace oligonukleotidů používaného při zachycení (μΜ) s-MBS s-SIAB EDC
1 NT NT 50
100 10 100 NT
500 60 270 NT
« *f«* V* ·· ·· 0 • « * · · · * · · ·»·· · * · · · * · · · ··»····.
··*··· ·* ·· · · ···
Oligonukleotidy se zachytily na sklíčka funkcionalizované buď s-MBS nebo s-SIAB nebo prostřednictvím aktivačního činidla EDC. Zachycené oligonukleotidy se testovaly hybridizací s radioaktivně značeným komplementárním oligonukleotidem. Specifická aktivita a proto také hustota hybridizovaných molekul se stanovila scintilačni kapalinou. Zkratka NT znamená netestovalo se.
Povrchová hustota 60 fmol/cm2 odpovídá průměrnému molekulovému prostoru mezi vázanými oligonukleotidy, což je 8 nm. Podle našich výsledků hustota pokrytí 30 fmol/mm2 (prostor mezi molekulami 20 nm) je dostatečná pro získání kolonií DNA. Tento výtěžek je možné získat imobilizací primerů v koncentraci 100 μΜ za použití heterobifunkčního síťovaciho činidla s-SIAB nebo 1 μΜ sond za použití přístupu sprostředkovaného EDC. Hustota hybridizace je v rozmezí hodnoty nejvyšší hustoty získané na sklíčkách )jak se popisuje v publikaci Guo et al., 1994, Joss et al., 1997, Beattie et al., 1995).
Tvorba kolonií DNA na skle: tvorba kolonií závisí na délce, koncentraci templátu a koncentraci primerů.
Teoreticky tvorba kolonií DNA vyžaduje vhodnou hustotu primerů zachycených na povrchu odpovídající vhodné délce templátové DNA. Za účelem optimální tvorby kolonií DNA je důležité definovat rozmezí hustot vázaných primerů a templátů, stejně jako stechiometrický poměr mezi templátem a primerem.
Materiál a metody
Příprava sklíček
Sklíčka se derivatizovala a funkcionalizovala, jak se popisuje shora v textu (materiály a metody). Primery kolonií
DNA jsou CPI a CP2. Templáty kolonií se připravily způsobem popsaným v přikladu 1 v případě templátu B', ale za použití
4 4 • 44
4 4
4 4 4 4 templátů se • ··· • 44 • 4
4* primerů TPB3 a TPB2. Upravené kolonie primerů aplikovaly na skleněný povrch v různých koncentracích koloniového primerů a koloniového templátu.
Tvorba kolonií
Sklíčka uchovávaná v 5 x koncentrovaném roztoku SSC se promyla vodou filtrovanou přes mikrofiltr, aby se odstranily sole. Růst kolonií se vyvolal na skleněném povrchu směsí PCR, která obsahuje čtyři druhy dNTP (0,2 mM) , 0,1 % BSA, 0,1 % Tween 20, Ix pufr PCR a 0,05 U/μΙ DNA polymerázy AmpliTaq (Perkin Elmer, Poster City, CA). Směs PCR se umístila do zatavené komory (MJ Research, Watertown, MA). Sklíčka se umístila do teplotního cyklovače (The DNA Engine, MJ Research Watertown, MA) a provedly se následující teplotní cykly: krok 1 při teplotě 94 °C po dobu 1 minuty, krok 2 při teplotě 65 °C po dobu 3 minut, krok 3 při teplotě 74 °C po dobu 6 minut a tento program se opakuje 50 krát. Po ukončení tohoto programu se sklíčka držela při teplotě 6 °C až do dalšího použití.
Štěpení kolonií s dvouřetězcovou DNA
Skleněný povrch obsahující DNA se štěpil restrikční nukleázou tak, že se kolonie přelila restrikčním enzymem v lx koncentrovaném štěpícím pufru. Reakce proběhla dvakrát po dobu
1,5 hodiny při teplotě 37 °C. Kolonie s dvouřetězcovou DNA se denaturovaly ponořením sklíček dvakrát do pufru Tris (obsahuje 10 mM, pH 8) při teplotě 100 °C po dobu 5 minut. Pak následuje promytí 5x koncentrovaným roztokem SSC při teplotě 4 °C. Sklíčka se uchovávala v 5x koncentrovaném roztoku až do dalšího použití.
Hybridizace kolonií s jednořetězcovou DNA
Aby se zabránilo nespecifické hybridizaci, sklíčka se inkubovala s blokačním roztokem (5x koncentrovaný roztok SSC, 0,1 % Tween, 0,1 % BSA) po dobu 1 hodiny a sklíčka se promyla « · t ·*W· 99 ·♦ ·· • · · * · * ♦ · · · « * * * · ♦ 9 9 « » · · » · » 6 ♦ • *······* • · · · « · · 9 · · * · · ·
5x koncentrovaným roztokem SSC (promytí se provedlo dvakrát po dobu 5 minut). Oligonukleotid s fluorescenčně značeným 5'koncem pomocí molekuly Cy5 (Eurogentec, Brussels) se ředil na koncentraci 0,5 μΜ v 5x koncentrovaném roztoku SSC, Tween 0,1 % a nanesl se na skleněný povrch na dobu alespoň 2 hodin. Sklíčka se promyla za stálého míchání 5x koncentrovaným roztokem SSC po dobu 5 minut a dvakrát 5 x koncentrovaným roztokem s 0,1 % SDS po dobu 5 minut při teplotě 37 °C.
Sklíčka se zviditelnila dříve popsaným způsobem.
Pozorovalo se, že rozsah hybridizace je funkce hustoty zachycení oligonukleotidu. Podobná studie s vázanými templáty DNA ukázal, že tvorba kolonii je také funkcí koncentrace templátů zachyceného na sklíčkách. V závislosti na chemických postupech užívaných při zachycení oligonukleotidu a templátů je optimální koncentrace templátů 1 μΜ v případě bifunkčního síťovacího činidla s-MBS (obrázek č. 6B) a 1 nM v případě EDC karbodiimidu (obrázek č. 6A) . Je zajímavé, že vyšší koncentrace templátů nezvyšuje počet kolonií v případě chemie EDC a dosáhlo se hodnoty odpovídající maximálnímu počtu kolonií.
Studovaly jsme tvorbu kolonií (počet) jako funkci koncentrace primerů, koncentrace templátové DNA aplikované na povrch a délku templátů DNA.
Také se hodnotil počet kopií templátů v každé kolonii. Kvantifikace se založila na fluorescenční detekci fluoroforů značených molekulami Cy5, Cy3 nebo fluoresceinem doplněnými činidlem proti bělení (Prolong, Molecular Probes, Portland, OR) . Kalibrace se provedla pomocí hybridizačních experimentů pomocí primerů zachycených na povrchu a odpovídající skutečná hustota se stanovila pomocí radioaktivity.
• · ··· ·· ·* ·· · • · * * · · · • e » · « · «« • · « - · · B ·· * · · · · ** ·· ·· ·· ···
Přiklad 5: In-situ sekvenování DNA kolonií
Sklíčka (o průměru 5 mm, Verrerie de Carouga, Švýcarsko) se nejdříve umístily do 0,2 % roztoku Helmanex (ve vodě), do lázně IN NaOH po dobu jedné hodiny při teplotě místnosti, pak se propláchla destilovanou vodou, čistým hexanem a opět dvakrát destilovanou vodou a aplikovalo se 1 M HC1 přes noc při teplotě místnosti. Pak se sklíčka promyla dvakrát destilovanou vodou a ošetřila se H2SO4 (50 %) plus K2S20g po dobu jedné hodiny při teplotě místnosti. Sklíčka se opět promyla destilovanou vodou a pak dvakrát etanolem. Sklíčka se derivatizovala ATS (jak se popisuje v příkladu 4).
Koloniové primery CPI (5'-p TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGG AAAGGGAAAGGG) a CP2 (5'-p TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) fosforylované na 5'konci (Microsynth GmbH, Švýcarsko) a templátová DNA B (připravený, jak se popisuje v příkladu 1) se kovalentně svým 5'koncem zachytily na sklíčku o průměru 5 mm (Verrerie de Carouge, Švýcarsko) tak, aby konečná koncentrace byla 1 μΜ až 10 nM. Postupuje se následovně. 2 nm každého primerů se přidaly k 0,2 nm templátu v 1 ml roztoku A (41 μΐ metylimidazolu (Sigma, kat. č. M-8878) v 50 ml H2O, pH se upravilo na hodnotu 7 pomocí HC1) a pak se vše smíchalo v poměru 1:1 s roztokem D (roztok D je 0,2 mM EDC v 10 ml roztoku A) . Na obě strany sklíček se naneslo 3,5 μΐ směsi a sklíčka se inkubovala přes noc při teplotě místnosti. Sklíčka se pak krátce opláchla 5x koncentrovaným roztokem SSC a umístila se do pufru 10 mM Tris pH 8,0 při teplotě 100 °C po dobu dvakrát pět minut.
Nespecifická místa na skle se blokovala bovinním sérovým albuminem (BSA, Boehringer Mannheim GmbH, Německo, kat. číslo 238040) o koncentraci 1 mg/ml v 5x koncentrovaném roztoku SSC po dobu 1 hodiny při teplotě místnosti a pak se promyly destilovanou vodou.
Sklíčka se pak jednotlivě umístily do reakční zkumavky Microamp™ (Perkin Elmer), která obsahuje 170 μΐ směsi PCR a pak se vytvořily kolonie DNA za použití Taq polymerázy (AmpliTaq, PE-Applied Biosystems lne., Foster City, CA), přičemž proběhlo 50 cyklů (teplota 94 °C po dobu 60 vteřin, teplota 60 °C po dobu 3 minut, teplota 72 °C po dobu 6 minut) v teplotním cyklovači MTC 200 (MJ Research, Watertown, MA) . DNA na každém sklíčku se štěpila dvakrát za použití 1,3 jednotek restrikční endonukleázy PvuII (Stratagene) v pufru NEB 2 (New England Biolabs) po dobu 45 minut při teplotě 37 °C. Po štěpení se zkumavky umístily do 10 mM pufru Tris pH 8,0 při teplotě 100 °C po dobu 2x 5 minut, pak se reakce blokovala filtrovaným (Millex GV4, Millipore) roztokem BSA o koncentraci 1 mg/ml v 2x koncentrovaném pufru SSC po dobu 30 minut při teplotě místnosti a promyly se nejdříve 2x koncentrovaným roztokem SSC s 0,1 % SDS a pak 5x koncentrovaným roztokem SSC. Každé sklíčko se inkubovalo přes noc při teplotě místnosti s 5x koncentrovaným roztokem SSC/0,1 % Tween 20, který obsahuje 1 μΜ sekvenačni primer pl81 (CGACAGCCGGAAGGAAGAGGGAGC) . Kontroly, které neobsahují primer se uchovávaly v 5x koncentrovaném roztoku SSC s 0,1 % Tween 20. Sklíčka se promyla dvakrát 5x koncentrovaným roztokem SSC s 0,1 % SDS při teplotě 37 °C po dobu 5 minut a dále pak 5x koncentrovaným roztokem SSC. Primer pl81 může hybridizovat s templátem B'a sekvence následující po pl81 je CAGCT.... Za účelem zaostření se zelené fluorescenční částice adsorbovaly na dno prohlubně a každá prohlubeň se inkubovala s 20 μΐ ředění 1/2 000 žlutých/zelených fluorescenčních FluoSpheres® potažených streptavidinem (Molecular Probes, Eugene, OR) v 5x koncentrovaném roztoku SSC po dobu 20 vteřin při teplotě místnosti.
Po hybridizaci s primerem se přidaly, na každé sklíčko 2 μΐ roztoku, který obsahuje 0,1 % BSA, 6 mM dithiotreitolu (Sigma
Chemicals), 5 μΜ Cy5(tm)-dCTP nebo 5 μΜ Cy5(tm)-dUTP (Amersham, UK) a lx koncentrovaný reakční pufr sekvenázy. Přidání Cy5(tm)nukleotidu se inicializuje přidáním 1,3 jednotky DNA polymerázy T7 Sequenase<tml (Amersham, UK) po dobu dvou minut v 5x koncentrovaném roztoku SSC s 0,1 % SDS po dobu 15 minut a sklíčka se promyla 5x koncentrovaným pufrem SSC.
Vzorky se pozorovaly za použití inverzního mikroskopu (Axiovert S100TV, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Německo) vybavený CCD kamerou Mikromax 512x768 a za použití software Winview (Princeton Instruments, Trenton, NJ). Při zaostření se použil objektiv s 20-ti násobným zvětšením a sada filtrů XF 22 (Omega Optical, Brattleboro, VT) a při pozorováni vzorků se začleněným Cy5TM se použil objektiv s 20-ti násobným zvětšením a sada filtrů XF 47 (Omega Optical, Brattleboro, VT) při 50 vteřinové expozici za použití třídění 2x2 pixelů. Žluté/zelené FluoSpheres® (přibližně se jich v poli objektivu nachází 100) nevykazuji detekovatelný signál za použiti sady filtru XF47 a při 50 vteřinové expozici (data nejsou uvedeny). Fotografie se vytvořily pomocí programu Winview (Princeton Instruments).
Na obrázku č. 7A je zobrazen výsledek po inkubaci s Cy5™dCTP se vzorkem, který se před tím neinkuboval s primerem pl81. Je možné vidět pět rozmazaných bodů, což ukazuje, že dochází k ne příliš dramatickému rušivému srážení agregátů Cy5™-dCTP, adsorpce účinku (jako je nebo jednoduše nespecifické začlenění do DNA v koloniích nebo na povrchu).
Na obrázku č. 7b je zobrazen výsledek inkubace Cy5™-dUTP se vzorkem, který se neinkuboval s primerem pl81. Neobjevil se žádný bod, což indikuje, že neproběhlo začlenění fluorescenční báze v detekovatelném množstvím, kdy nukleotid určený pro začlenění neodpovídá sekvenci templátů následující hybridizovaný primer.
Na obrázku č. 7c je zobrazen výsledek inkubace Cy5™-dCTP se vzorkem, který se inkuboval s primerem pl81. Objevila se řada fluorescenčních bodů, což indikuje, že proběhlo začlenění fluorescenční báze v detekovatelném množství, přičemž nukleotid určený pro začlenění odpovídá sekvenci templátů následujícím po hybridizovaném primeru.
Ukázalo se, že je možné začlenit fluorescenční nukleotidy do DNA obsažené v koloniích způsobem, který je specifický pro sekvenci, a je možné monitorovat toto začlenění zde popsaným přístrojem nebo metodou. To je však pouze příklad. Je vhodné, když je potřeba, aby se fluorescenční báze opakovaly několikrát. Když se to provede způsobem specifickým pro sekvenci, je pak možné dedukovat část sekvence DNA obsažené v koloniích.
Příklad 6: Analýza značení 5' konce mRNA
Nejpřesnější způsob monitorování exprese genu v buňkách nebo tkáních je omezení počtu kroků mezi shromážděním vzorku a vyhodnocení mRNA. Běžně dostupné jsou také nové metody pro rychlou izolaci mRNA. Nejúčinnější metody zahrnují rychlou izolaci vzorku a bezprostřední porušení buněk do roztoku hydrochloridu guanidinu, který zcela rozloží proteiny a deaktivuje RNázy. Pak následuje čištění mRNA ze supernatantu porušených buněk pomocí oligo-dT afinitní chromatografie. Nakonec mRNA s čepičkou na svém 5'konci se může specificky cílit a transformovat do cDNA za použití jednoduché strategie (syntéza cDNA SMART, Clontech, Palo Alto).
Tato metoda dovoluje syntézu kopií cDNA pouze translačně aktivní mRNA s čepičkou na 5'konci. Kombinaci shora popsané rychlé metody izolace mRNA a přípravy cDNA tvorby kolonií DNA metodou vnesení templátů vznikl postup pro identifikaci velkého množství materiálu značek na 5'konci sekvence mRNA. Výhodou našeho vynálezu je možnost sekvenovat velké množství • · • ·
cDNA přímým zavedením produktu reakcí syntézy cDNA, amplifikací cDNA do tisíce kopií a současně následuje in sítu sekvenování cDNA.
Materiály a metody
Syntetické oligonukleotidy a plazmidy
Oligonukleotidy se syntetizovaly s 5'-fosfáty pomocí Eurogentec nebo Microsynth. Za použití standardních metod se vytvořily plazmidy obsahující částečné kódující a 3'nepřekládané sekvence myšího genu draslíkového kanálu mSlo, který následuje po promotoru T3 RNA polymerázy.
Syntéza mRNA
Plazmidy mSlo se linearizovaly v jediném místě, které rozeznává restrikční nukleáza Sáli nebo Sací a které následuje v plazmidu po sekvenci póly A+. Po ošetření štěpeného plazmidu proteinázou K, DNA linearizovaného plazmidu se extrahovala jednou směsí fenol/CHsCl/izoamylalkohol a srážela se s etanolem. Sraženina DNA se znovu rozpustila ve vodě v koncentraci 10 mikrogramů v mikrolitru. Syntetická mRNA s čepičkou 5'-metylguanozin se syntetizovala in vitro pomocí bitu pro syntézu mRNA „mMessage mMachine podle instrukcí výrobce (Ambion, Austin TX) . Syntetická mRNA se uchovávala při teplotě 80 °C.
Enzymy
Restrikční enzymy se získaly od firmy New England Biolabs (Beverly, MA).
Syntéza cDNA
Syntetická mRNA se smíchala s mRNA póly A+ myších jater v různých poměrech (1:1, 1:10, 1:100) a podle směsi mRNA myších jater a syntetické mRNA se uskutečnila za použiti sady pro syntézu cDNA „SMART PCR (Clontech, Palo Alto, CA) s nějakými malými úpravami. Při reakci syntézy cDNA se ···· ·· ·· • · · · • · · · · * ·· ·· ·· ··· přibližně 1 μα směsi mRNA smíchal s primerem CP5, který má 5'konec sekvence CPp, (5'p-AGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGGTTTTTTTTTTT TTTTTNN). Tento primer se používá při syntéze prvního řetězce cDNA. V případě syntézy druhého řetězce se použije metoda „SMART. Základem syntézy „SMART je vlastnost reverzní transkriptázy myšího viru Moloney přidat na 3'konec prvního řetězce cDNA tři až pět deoxycytozinových zbytků v případě, že mRNA obsahuje 5' -metylguanozinovou čepičku manuál pro použivatele sady SMART, Clontech, Palo Alto, CA) . Primer CP6, který obsahuje sekvenci CPp plus AAAGGGGG na 3'konci (5'pAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGGGG) , se používá při syntéze druhého řetězce cDNA. Pufr a SUPERSCRIPT™ II RNáza II reverzní transkriptáza z viru myší leukémie Moloney (Lufe Technologies, Ltd.) se používá, jak se popisuje v instrukcích a reakce se provedla při teplotě 42 °C po dobu 1 hodiny. cDNA · se pak testovala pomocí PCR za použití primerů p251, který obsahuje fragment sekvence ΟΡβ (5'-GAGAAGGAAAGGGAAAGG) a Taq DNA polymerázou (Platinum Taq, Life Technologies, Ltd.).
Příprava kolonií DNA
5'p-cDNA se smíchala s různými koncentracemi koloniového primerů na chemicky vázaly na stěny zkumavek vhodných pro reakce
PCR „Nucleolink (NUNC) podle návodu výrobce. Kolonie
DNA se pak připravily za použití
Taq polymerázy (AmpliTaq
Gold, cyklech minuty,
PE-Applied Biosystems lne., (teplota 94 °C po dobu 30 teplota 72 °C po dobu 1,5 minuty)
Foster vteřin,
City, °C
CA)
PO v cyklovači v 30 dobu 1 teplot
MTC 200 (MJ Research, Watertown,
MA) .
Sondy DNA a hybridizace
Sondy DNA značené biotinem a radioaktivně 32P specifické pro sekvenci DNA genu mSlo se syntetizovaly pomocí primerů, který je značen na svém 5'konci biotinem a normálním přímým • · «
primerem metodou
PCR za použiti templátu (mSlo DNA plazmid).
Sonda začlenila cc[32P]-dCTP (Amersham,
Amersham UK) v poměru
300:1 (a[32P]-dCTP k dCTP) v reakci
PCR s konečnou koncentrací čtyř deoxynukleozidtrifosfátů μΜ.
Z výsledných biotinylovaných a radioaktivně značených sond DNA se odstranily sole na koloně Chromaspin-1 000 (Clontech, Palo
Alto, CA) .
Sondy
DNA se hybridizovaly se vzorky v pufru „easyhyb (Boehringer-Mannheim,
Německo) za použití následujícího schématu teploty (cyklovači teplot
MTC200):
teplota 94 °C po dobu 5 minut, pak následuje 68 kroků, kdy každých 30 vteřin se sníží teplota o 0,5°C (to znamená, že teplota se sníží během 34 minut o 65 °C) . Při hybridizaci se použily zatavené prohlubně. Vzorky se pak třikrát promyly 200 μΐ TNT při teplotě místnosti. Prohlubně se pak inkubovaly po dobu 30 minut s 50 μΐ TNT, které obsahuje 0,1 mg/ml BSA (New England Biolabs, Beverly, MA) . Prohlubně se pak inkubovaly po dobu 5 minut s 15 μΐ roztoku červených fluorescenčních mikrosfér o velikosti 40 nanometrů potažených streptavidinem (molecular Probes, Portland, OR) . Roztok mikrosfér se připravil tak, že se 2 μΐ zásobního roztoku mikrosfér , které sonikovaly po dobu 5 minut ve vodní lázni s ultrazvukem o výkonu 50 W (Elgasonic, Bienne, Švýcarsko) ředil v 1 ml roztoku TNT, který obsahoval 0,1 mg/ml BSA a filtroval se přes filtr Millex GV4 s velikosti pórů 0,22 pm (Millipore, Bedford, MA) .
Vizualizace kolonii DNA
Obarvené vzorky se pozorovaly za použití inverzního mikroskopu Axiovert 10 za použití objektivu s 20-ti násobným zvětšením (Carl Zeiss AG, Operkochen, Německo) vybavený kamerou Micromax 512x768 CCD (Princeton instruments, Trenton, NJ) za použití sady filtrů PB546/FT580/LP590 a deseti vteřinové expozice. Dokumenty se převedly do formátu TIFF a
zpracovaly se ve vhodném software (PhotoPaint, Corel Corp. Ltd., Dublin, Ireland). Zpracování spočívá v inverzi a v lineárním zesílení kontrastu za účelem vytvořit obrázek, který je vhodný pro černobílý tisk na laserové tiskárně.
Výsledky
Syntéza syntetické mRNA a cDNA
Syntéza cDNA se kontrolovala pomocí PCR za použití primerů p251 (vytvořeného na každém konci prvního řetězce cDNA), přičemž správná délka produktů se testovala elektroforézou na agarózovém gelu. Syntetická mRNA mSlo se ředila do mRNA jater a dokázala se pruhy specifickými pro mSlo se snižující se intenzitou zesílením nespecifického smíru cDNA jater.
Detekce a kvantifikace kolonií DNA
Kolonie DNA se testovaly za použití fluorescenci zobrazujícího mikroskopu CCD nebo scintilačního počítáni. Počet fluorescenčně detekovatelných kolonií se zvýšil jako funkce množství zavedeného templátu, jak je zobrazeno na obrázku č.
o o
6. Toto zvýšení se odráží jako množství detekovatelného P.
Pomocí radioaktivně značených sond je možné detekovat kopie mRNA v přibližném poměru
1:100. Pomocí fluorescenčního mikroskopu zobrazovací technologií CCD se může detekovat mRNA v ředění 1:10 000.
Příklad 7: Kovalentní navázáni primerů na pevný podklad
Oligonukleotidové primery se zachytily do mikrotitračních prohlubní Nucleolink (Nunc, Dánsko) plastových za účelem stanovit optimální čas párování. Oligonukleotidy (5'-(aminohexametylen) -TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG) ,
CP9
CP10 (5'(dimethoxytrityl) -TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG a
CPU ······ a· • ·· · ··· ····· (5'(biotin)-TTTTTTTTTTAGAAGGAGAAGGAAAGGGAAAGGG), Microsynth
GmbH, Švýcarsko) se zachytily do mikrotitračních prohlubní Nucleolink následujícím způsobem (pro každý nukleotid se použilo 8 prohlubní): do každé prohlubně se dalo 20 μΐ roztoku, který obsahuje 0,1 μΜ oligonukleotid, 10 mM 1-metylimidazol (pH7,0) (Sigma Chemicals) a 10 mM l-etyl-3-(3dimetylaminopropyl)-karbodiimid (pH7,0) (Sigma Chemicals) v 10 mM 1-metylimidazolu. Prohlubně se pak zatavily a inkubovaly se při teplotě 50 °C po dobu různou dobu. Tárovací reakce se ukončila ve specifický čas promytím dvakrát 200 μΐ RS (0,4 NaOH, 0,25 % Tween 20) a dvakrát 200 μΐ TNT (100 mM TrisHCl pH 7,5, 150 mM NaCl, 0,1 % Tween 20) . Zkumavky se sušily při teplotě 50 °C po dobu 30 vteřin a uchovávaly se v plastovém sáčku při teplotě 4 °C.
Stabilita vázaných oligonukleotidů z podmínek tvorby kolonií pomocí PCR
Stabilita se testovala za podmínek růstu kolonií přidáním směsi PCR (20 μΐ čtyř dNTP (0,2 mM) , 0,1 % BSA, 0,1 % Tween 20, 8 % DMSO (dimetylsulfoxid, Fluka Švýcarsko), IX pufr PCR).Prohlubně se pak umístily do cyklovače teplot a proběhlo 33 cyklů za následujících podmínek: teplota 94 °C po dobu 45 vteřin, teplota 60 °C po dobu 4 minut, teplota 72 °C po dobu 4 minut. Po ukončení uvedeného programu se prohlubně promyly 5x koncentrovaným roztokem SSC, 0,1 % Tween 20 a nechaly se při teplotě 8 °C až do dalšího použití. Dříve než se naplnily hybridizační prohlubně 50 μΐ 5x koncentrovaného SSC, 0,1 %
Tween 20 se zahřál na uchovával se při teplotě teplotu místnosti. 94 °C po dobu 5 minut a
Sondy:
Oligonukleotidové sondy R57 (5' (fosfát)-
GTTTGGGTTGGTTTGGGTTGGTG, kontrolní sonda) a R58 (5'(fosfát)-
• · · · · · • · · · * · · · • · · · · · ·· ·· ·· ··«
CCCTTTCCCTTTCCTTCTCCTTCT, které jsou komplementární s CP2, CP8, CP9, CP10 a CP11 se enzymaticky značily na jejich 5'konci pomocí [y-32P]dATP (Amersham, UK) za použití polynukleotidové kinázy bakteriofága T4 (New England Biolabs, Beverly, MA). Přebytek 32P dATP se odstranil pomocí kolony Chromá Spin TE-10 (Clontech, Palo Alto, CA) . Radioaktivně značené oligonukleotidy (0,5 μΜ v 5x koncentrovaném roztoku SSC, 0,1 % Tween 20) se pak hybridizovaly s oligonukleotidem deprivatizovaných v prohlubních Nucleolink při teplotě 37 °C po dobu dvou hodin. Prohlubně se promyly čtyřikrát 5x koncentrovaným roztokem SSC, 0,1 % Tween 20 po dobu 15 minut při teplotě 37 °C. Počítáním v scintilačním roztoku se pak testovala navázaná sonda.
Výsledky
Existuje znatelný rozdíl mezi rychlostí a specifikou párování oligonukleotidů závisejícího na podstatě funkční skupiny na 5'konci oligonukleotidu. Oligonukleotidy nesoucí na svém 5'konci aminoskupinu, která se páruje přibližně dvakrát rychleji jak se oligonukleotidy funkcionalizuj i fosfátovou skupinou na svém 5'konci (uvedeno v tabulce č. 2 a na obrázku č. 8). Vedle kontrolních oligonukleotidů funkcionalizovaných 5'hydroxylem, 5'-DMT nebo 5'-biotinem se všechny spojují rychlostí podobnou rychlosti 5'fosfátu, což je otázka specifické podstaty chemického zachycení za použití 5'fosfátové skupiny.
Tabulka č. 2:
5'-fosfát 5'-amine 5'-hydroxyl 5'-DMT 5'-biotin
Ka (min *) 0,0068 0,0135 0,0063 0,0070 0,0068
zachycený oligonukleotid (fmol/prchlubeň) 608 1344 542 602 650
stabilita PCR (% zbývej íci) 5 6 69 66 66 62
Seznam sekvencí (2) Informace o SEQ ID NO: 1:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 24 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukíeotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 1:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGG
CHARAKTERISTIKA
SEKVENCE:
(A)
DÉLKA: 24 párů baží
TYP: nukleová kyselina
DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D)
TOPOLOGIE: lineární
DRUH
MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A)
POPIS: /popis: „oligonukíeotidový primer (xi)
Popis sekvence:
SEQ ID NO: 2:
CACCAACCCA AACCAACCCA AACC (2) Informace o SEQ ID NO: 3:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 20 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukíeotidový primer
SEQ ID NO: 3:
:
SEKVENCE:
(xi) Popis sekvence:
GAGGCCAGAA CA.GTTCAAGG (2) Informace o SEQ ID NO:
(i) CHARAKTERISTIKA (A) DÉLKA: 20 párů bázi (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 4:
CCTGTGACAA GACGACTGAA (2) Informace o SEQ ID NO: 5:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 34 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 5:
CACCAACCCA AACCAACCCA AACC (2) Informace o SEQ ID NO: 6:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 34 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 6:
TTTTTTTTTT AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGG (2) Informace o SEQ ID NO: 7:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 34 párů bázi (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 7:
TTTTTTTTTT CACCAACCCA aaccaaccca aacc (2) Informace o SEQ ID NO: 8:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 34 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 8:
TTTTTTTTTT AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGG (2) Informace o SEQ ID NO: 9:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 42 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
li) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina
(A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer
(xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 9:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGTTTTTT TTTTTTTTTT NN (2) Informace o SEQ ID NO: 10:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 26 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 10:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGGG (2) Informace o SEQ ID NO: 11:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 52 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 11:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGGCGGCC GCTCGCCTGG TTCTGGAAGA CA (2) Informace o SEQ ID NO: 12:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
• · • · · ·
(A) DÉLKA: 44 párů bázi .
(B) TYP: nukleová kyseiina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina
(A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer'
(xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 12:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGCCTGTG ACAAGACGAC TGAA (2) Informace o SEQ ID NO: 13:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 62 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 13:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGGCGGCC GCTGAGGCCA GTGGAAGTCA
GA (2) Informace o SEQ ID NO: 14:
CHARAKTERISTIKA
SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 60 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina
(A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový
(xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 14:
primer
CACCAACCCA AACCAACCCA AACCGAGCTC AGGCTGAGGC AGGAGAATTG
(2) Informace o SEQ ID NO: 15:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 44 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 15:
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGGAGCTG AGGAGGAAGA GAGG
CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 52 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina
(A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový
(xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 16:
primer
AGAAGGAGAA GGAAAGGGAA AGGGGCGGCC GCTCGCCTGG TTCTGGAAGA CA (2) Informace o SEQ ID NO: 17:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 22 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: /popis = „oligonukleotidový primer (ix) ZNAKY:
• ·
(A) Název/klíč: modifikovaná báze
(B) Pozice: 11
(D) Jiné informace:
/mod.báze = i
(ix) ZNAKY:
(A) Název/klíč: modifikovaná báze
(B) Pozice: 13 (D) Jiné informace:
/mod.báze = i
(ix) ZNAKY:
(A) Název/klíč: modifikovaná báze
(B) Pozice: 15
(D) Jiné informace:
/mod.báze = i
(ix) ZNAKY:
(A) Název/klíč: modifikovaná báze
(B) Pozice: 17 (D) Jiné informace:
/mod.báze = i
ix) ZNAKY:
(A) Název/klíč: modifikovaná báze
(B) Pozice: 19
(D) Jiné informace:
/mod.báze = i
ix) ZNAKY:
(A) Název/klíč: modifikovaná báze
(B) Pozice: 21 (D) Jiné informace:
/mod.báze = i (xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 17:
NSNSNSNSNS NS
(2) Informace o SEQ ID NO: 18:
CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 24 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina
(A) POPIS: /popis: „oligonukleotidový
(xi) Popis sekvence: SEQ ID NO: 18:
CGACAGCCGG AAGGAAGAGG GAGC
2) Informace o SEQ ID NO: 19:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 18 párů baží
(B) TYP: nukleová kyselina
(C) DRUH ŘETĚZCE: jednořetězcová
(D) TOPOLOGIE: lineární
(ii) DRUH MOLEKULY: jiná nukleová kyselina
(A) primer
POPIS: /popis: „oligonukleotidový primer
Popis sekvence: SEQ ID NO: 19:

Claims (3)

  1. NÁROKY
    1. Způsob amplifikace alespoň z n a č u j vytvoření obsahující se t j edné nukleové kyseliny ž e zahrnuje:
    alespoň jednoho templátu nukleové nukleovou kyselinu(y), která se amplifikuje, obsahuje na 5'konci 3'konci i m, kyseliny přičemž uvedená nukleová kyselina(y) oligonukleotidovou sekvenci na oligonukleotidovou kyselinu(y) nesoucí sekvenci na 5'konci navíc nukleovou prostředky pro zachycení nukleové kyseliny(kyselin) na pevný podklad, smíchání uvedeného templátu(ů) nukleové kyseliny s jedním nebo více koloniových primerů s oligonukleotidovou sekvencí
    X, které mohou hybridizovat
    Z a nesou na svém 5' konci prostředky pro zachycení koloniových primerů na pevný podklad, přičemž v přítomnosti pevného podkladu se 5'konce templátu nukleové kyseliny a koloniových primerů vážou na pevný podklad, provedení amplifikačních reakcí jedné nebo více nukleových kyselin za použití navázaného templátu(ů) tak, že se vytvoří kolonie nukleové kyseliny.
    2.
    Způsob podle nároku
    1, vyznač t i ž komplementární oligonukleotidová sekvence s oligonukleotidovou sekvencí Y a jící Z je koloniový primer X je stejná sekvence jako oligonukleotidová sekvence Y.
    3. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že dva různé koloniové primery X se smíchaly s uvedeným templátem(y) v kroku (2) a kde sekvence koloniových primerů X jsou takové, že oligonukleotidová sekvence Z může hybridizovat s jedním z koloniových primerů X a • · · • · · · • * * • » « » · » • < · Φ « · * · · · V ř * · · • ► · · t i · * · · · · « ····»· · « ·» je stejná jako jeden jedné nukleové ž e zahrnuje:
    templátů nukleové kyseliny, kyseliny oligonukleotidová sekvence Y z koloniových primerů X.
    4. Způsob amplifikace alespoň vyznačující se tím,
    1) vytvoření alespoň jednoho zahrnující nukleovou kyselinu(y), která se bude amplifikovat, přičemž uvedená nukleová kyselina(y) nesou na svém 5'konci prostředky pro zachycení nukleové kyseliny(kyselin) na pevném povrchu,
  2. 2) smíchání uvedených templátů nukleové kyseliny s jedním nebo více degenerativních koloniových primerů X, které mohou hybridizovat s oligonukleotidovou sekvencí v uvedeném templátů(ech) na místě lemujícím sekvenci nukleové kyseliny, která se amplifikuje a nese na 5'konci prostředky pro zachycení koloniových primerů na pevný podklad, přičemž v přítomnosti pevného podkladu se 5'konce templátů nukleové kyseliny a koloniových primerů vážou na pevný podklad,
  3. 3) provedení amplifikačních reakcí jedné nebo více nukleových kyselin za použití vázaného templátů(ů) tak, že se vytvoří kolonie nukleových kyselin.
    5. Způsob podle libovolného z nároků 1 až 4, v y z n a č u jící se tím, ž e zahrnuje další krok, který provádí alespoň v jednom kroku stanovení sekvence j edné nebo více vytvořených kolonií nukleové kyseliny. 6. Způsob podle nároku 5, vyznačuj ící
    se tím, že krok stanovení sekvence zahrnuje začlenění a detekci značených oligonukleotidů.
    7. Způsob podle nároku 5 nebo 6, vyznačující se tím, že celé nebo částečné sekvence templátů amplifikované nukleové kyseliny přítomných ve více než jedné kolonii nukleové kyseliny se stanoví současně.
    « · *
    7, další krok
    V···4« • · • · · 9· • « ·, • ·· • · · ♦ ·
    Způsob podle libovolného z nároků vyznačuj ící se tím, ž e zahrnuje vizualizace vytvořených kolonií.
    9.
    Způsob podle nároku vyzná ící se tím, ž e uvedený krok vizualizace zahrnuje použití značené nebo neznačené sondy nukleové kyseliny.
    10.
    Způsob podle libovolného nároku 1 až
    9, vyzná zachycení č u j ící templátu(ů) pro zahrnuj e prostředky se tím, že prostředky koloniových primerů na pevný podklad sekvencí pro kovalentní zachycení nukleových kyselin na uvedený podklad.
    Způsob podle nároku 10, vyznač se tím, že uvedené prostředky pro kovalentní zachycení sekvencí nukleové kyseliny na upravitelná funkční skupina.
    pevný podklad je chemicky
    12 .
    Způsob podle nároku
    11, vyznač jící tím, ž e uvedená je fosfátová skupina, upravitelná funkční karboxylová nebo aldehydová chemicky skupina část, thiolová, hydroxylová, dimetoxytritylová (DMT) skupina nebo aminoskupina.
    13. Způsob podle nároku 12, vyznačuj ící se tím, že uvedená chemicky upravitelná funkční skupina je aminoskupina.
    14. Způsob podle libovolného z nároků 1 až 13, vyznačující se tím, že uvedený pevný povrch se vybral ze skupiny zahrnující latexové, dextranové částice, polystyrénový, polypropylenový povrch, polyakrylamidový gel, zlaté, skleněné povrchy a křemíkové plátky.
    • · β * * · « · ♦ · · * * · 0 * ...
    * · · Λ · φ β fr· Γ· · · * « · « φ
    • WW WWW ·· ΦΦ φφ ·Φφ 15. Způsob podle nároku 14, vyzná č u j ící s e tím, ž e uvedený pevný podklad je sklo. 16. Způsob podle libovolného z nároků 1 až 15, v y z n a č u ’ jící se tím, že hustota vytvořených
    kolonii nukleové kyseliny je 10 000 na milimetr čtvereční až
    100 000 na milimetr čtvereční.
    17. Způsob podle libovolného z nároků 1 až 16, vyznačuj ící se tím, ž e hustota koloniových primerů X zachycených na uvedeném podkladu je alespoň 1 fmol/mm2. 18. Způsoby podle libovolného z nároků 1 až 17, vyznačuj ící se tím, ž e hustotě i templátů
    nukleové kyseliny je 10 000 na milimetr čtvereční až 100 000 na milimetr čtvereční.
    19. Velké množství templátů různých nukleových kyselin obsahující nukleové kyseliny, které se amplifikují, přičemž každá z uvedených nukleových obsahuje na svých 5'koncích známou oligonukleotidovou sekvenci Y a na 3' konci známou oligonukleotidovou sekvenci Z a navíc nukleová kyselina(y) nesou na 5'konci prostředek pro zachycení nukleové kyseliny(kyselin) na pevný podklad.
    20. Velké množství templátů nukleové kyseliny podle nároku 19, kde oligonukleotidová sekvence Z je komplementární s oligonukleotidovou sekvencí Y.
    21. Velké množství templátů nukleové kyseliny podle nároku 19, když se smíchá s velkým množstvím koloniových primerů X, které mohou hybridizovat s oligonukleotidovou sekvencí Z a nesou na svých 5'koncích prostředky na zachycení koloniových primerů na pevný podklad.
    ···· ·· ·· ·· • · · · · · · •·· · ···· · · • · · ·· ··· · ··· ·· ·· ·· ·
    22. Velké množství templátů nukleové kde kyseliny oligonukleotidová s oligonukleotidovou sekvencí Y sekvence
    Z je a koloniový podle nároku 21, komplementární je stejná primer sekvence jako oligonukleotidová sekvence Y.
    23. Velké množství templátů nukleové kyseliny podle nároku 19 se smíchá se dvěma různými koloniovými primery X a kde sekvence koloniových primerů X jsou takové, že oligonukleotidová sekvence Y je stejná jako koloniové primery X.
    24. Velké množství templátů nukleové kyseliny podle nároku 21, kde koloniové primery X obsahují degenerovanou příměrovou sekvenci a templáty nukleové kyseliny neobsahují oligonukleotidové sekvence Y nebo Z.
    25. Pevný podklad, vyznačující se tím, že se na něj zachytilo velké množství koloniových primerů X podle libovolného z nároků 1 až 24 a množství templátů nukleové kyseliny podle libovolného z nároků 19 až 24.
    26. Pevný podklad podle nároku 25, vyznačuj ící se tím, žejeto pevný podklad podle nároků 14 a 15.
    27. Pevný podklad podle libovolného z nároků 25 nebo 26, vyznačující se tím, že zachycení templátů nukleové kyseliny a koloniových primerů na pevný podklad je kovalentní.
    28. Pevný podklad, vyznačující se tím, že zahrnuje jednu nebo více kolonií nukleových kyselin vytvořených metodou podle libovolného z nároků 1 až 18.
    29. Použití pevného podkladu podle libovolného z nároků 25 až
    28 při způsobech amplifikace nebo sekvenování nukleové kyseliny.
    30. Použiti podle nároku 29, kde uvedený způsob je způsob podle libovolného z nároků 1 až 18.
    31. Použití způsobu podle libovolného z nároků 1 až 18 při amplifikaci nebo sekvenování nukleové kyseliny. 32. Použití způsobu podle libovolného z nároků 1 až 18 nebo kolonií nukleové kyseliny vytvořených uvedenými způsoby nebo
    velké množství templátů nukleové kyseliny podle nároků 19 až 24 nebo pevných podkladů podle nároků 25 až 28 při získávání molekul nukleových kyselin pro sekvenování a opětné sekvenování, monitorování exprese genu, profilování genetické diverzity, při diagnóze, testování, sekvenování celého genomu, zkoumání a hodnocení polymorfizmu celého genomu a při přípravě sklíček s celými genomy nebo při jiných aplikacích, které zahrnují amplifikaci nukleových kyselin nebo jejich sekvenování.
    33. Sada vyzná vhodná pro použití při amplifikaci nebo sekvenování, zahrnuje velké č u j ící se t i m, že množství templátů nukleových kyselin podle libovolného z nároků až 24 a koloniové primery podle libovolného z nároků
    1 až
    32 vázaných na pevný podklad.
    34.
    Sada podle nároku
    33, č u j ící se tím, že je vhodná pro použití y z n a při sekvenování, opětném sekvenování, monitorování exprese genu, profilování genetické diverzity, diagnóze, testování, sekvenování celého celého genomu nebo nukleových genomu, zkoumání a hodnocení polymorfizmu libovolné jiné aplikaci zahrnující amplifikaci kyselin nebo jejich sekvenování.
CZ20011183A 1998-09-30 1999-09-30 Způsob amplifikace a sekvenování nukleové kyseliny CZ20011183A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP98307985 1998-09-30

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ20011183A3 true CZ20011183A3 (cs) 2001-09-12

Family

ID=8235083

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20011183A CZ20011183A3 (cs) 1998-09-30 1999-09-30 Způsob amplifikace a sekvenování nukleové kyseliny

Country Status (25)

Country Link
US (4) US7115400B1 (cs)
EP (2) EP1117827B8 (cs)
JP (1) JP2002525125A (cs)
KR (1) KR20010085860A (cs)
CN (1) CN1325458A (cs)
AR (1) AR021833A1 (cs)
AT (1) ATE311474T1 (cs)
AU (1) AU771073B2 (cs)
BG (1) BG105363A (cs)
BR (1) BR9914159A (cs)
CA (1) CA2344575A1 (cs)
CZ (1) CZ20011183A3 (cs)
DE (1) DE69928683T2 (cs)
EA (1) EA004271B1 (cs)
EE (1) EE200100195A (cs)
HK (1) HK1042525A1 (cs)
HU (1) HUP0105052A3 (cs)
IL (1) IL142178A0 (cs)
NO (1) NO20011303L (cs)
NZ (1) NZ510599A (cs)
PL (1) PL347125A1 (cs)
SK (1) SK4292001A3 (cs)
TR (1) TR200100911T2 (cs)
WO (1) WO2000018957A1 (cs)
ZA (1) ZA200102420B (cs)

Families Citing this family (943)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1591541B1 (en) * 1997-04-01 2012-02-15 Illumina Cambridge Limited Method of nucleic acid sequencing
US20100130368A1 (en) * 1998-07-30 2010-05-27 Shankar Balasubramanian Method and system for sequencing polynucleotides
AR021833A1 (es) 1998-09-30 2002-08-07 Applied Research Systems Metodos de amplificacion y secuenciacion de acido nucleico
DE10027040A1 (de) * 2000-06-02 2001-12-06 Basf Lynx Bioscience Ag Verfahren zur Herstellung von DNA-Arrays
AR031640A1 (es) * 2000-12-08 2003-09-24 Applied Research Systems Amplificacion isotermica de acidos nucleicos en un soporte solido
DE60226856D1 (de) 2001-04-20 2008-07-10 Penn State Res Found Verfahren zur manipulation von nukleinsäuren
US7195908B2 (en) * 2002-10-31 2007-03-27 Corning Incorporated Supports treated with triamine for immobilizing biomolecules
EP1587940A4 (en) * 2002-12-20 2006-06-07 Caliper Life Sciences Inc SINGLE MOLECULAR AMPLIFICATION AND DNA PROOF
CA2513889A1 (en) 2003-01-29 2004-08-19 454 Corporation Double ended sequencing
US20110059865A1 (en) 2004-01-07 2011-03-10 Mark Edward Brennan Smith Modified Molecular Arrays
US7622296B2 (en) 2004-05-28 2009-11-24 Wafergen, Inc. Apparatus and method for multiplex analysis
EP1828412B2 (en) 2004-12-13 2019-01-09 Illumina Cambridge Limited Improved method of nucleotide detection
GB0427236D0 (en) 2004-12-13 2005-01-12 Solexa Ltd Improved method of nucleotide detection
EP2236628A3 (en) 2005-02-01 2010-10-13 AB Advanced Genetic Analysis Corporation Reagents, methods and libraries for bead-based sequencing
EP2272983A1 (en) 2005-02-01 2011-01-12 AB Advanced Genetic Analysis Corporation Reagents, methods and libraries for bead-based sequencing
AU2006259565B2 (en) 2005-06-15 2011-01-06 Complete Genomics, Inc. Single molecule arrays for genetic and chemical analysis
GB0514936D0 (en) * 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Preparation of templates for nucleic acid sequencing
GB0514910D0 (en) 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Method for sequencing a polynucleotide template
GB0514935D0 (en) 2005-07-20 2005-08-24 Solexa Ltd Methods for sequencing a polynucleotide template
US11111543B2 (en) 2005-07-29 2021-09-07 Natera, Inc. System and method for cleaning noisy genetic data and determining chromosome copy number
US9424392B2 (en) 2005-11-26 2016-08-23 Natera, Inc. System and method for cleaning noisy genetic data from target individuals using genetic data from genetically related individuals
US11111544B2 (en) 2005-07-29 2021-09-07 Natera, Inc. System and method for cleaning noisy genetic data and determining chromosome copy number
GB0522310D0 (en) 2005-11-01 2005-12-07 Solexa Ltd Methods of preparing libraries of template polynucleotides
GB0524069D0 (en) 2005-11-25 2006-01-04 Solexa Ltd Preparation of templates for solid phase amplification
EP1963530B1 (en) * 2005-12-22 2011-07-27 Pacific Biosciences of California, Inc. Active surface coupled polymerases
EP1987159B2 (en) 2006-02-08 2020-08-12 Illumina Cambridge Limited Method for sequencing a polynucleotide template
EP2021503A1 (en) * 2006-03-17 2009-02-11 Solexa Ltd. Isothermal methods for creating clonal single molecule arrays
US20070231823A1 (en) 2006-03-23 2007-10-04 Mckernan Kevin J Directed enrichment of genomic DNA for high-throughput sequencing
EP2032686B1 (en) 2006-06-23 2022-01-12 Illumina, Inc. System and method for creation of dna cluster arrays
CN101495657B (zh) * 2006-07-31 2016-08-10 毕万里 使用可逆修饰寡核苷酸扩增核酸
EP2049682A2 (en) * 2006-07-31 2009-04-22 Illumina Cambridge Limited Method of library preparation avoiding the formation of adaptor dimers
US20100137155A1 (en) * 2006-08-08 2010-06-03 Sharp Kabuchiki Kaisha Biosensor, method for fabricating the same, detecting method utilizing the same
JP5244103B2 (ja) 2006-08-09 2013-07-24 ホームステッド クリニカル コーポレイション 器官特異的蛋白質およびその使用方法
US7754429B2 (en) 2006-10-06 2010-07-13 Illumina Cambridge Limited Method for pair-wise sequencing a plurity of target polynucleotides
WO2008045158A1 (en) 2006-10-10 2008-04-17 Illumina, Inc. Compositions and methods for representational selection of nucleic acids fro complex mixtures using hybridization
WO2008069906A2 (en) * 2006-11-14 2008-06-12 The Regents Of The University Of California Digital expression of gene analysis
US8315817B2 (en) 2007-01-26 2012-11-20 Illumina, Inc. Independently removable nucleic acid sequencing system and method
US12497656B2 (en) 2007-01-26 2025-12-16 Illumina, Inc. Independently removable nucleic acid sequencing system and method
ATE521948T1 (de) * 2007-01-26 2011-09-15 Illumina Inc System und verfahren zur nukleinsäuresequenzierung
WO2008093098A2 (en) 2007-02-02 2008-08-07 Illumina Cambridge Limited Methods for indexing samples and sequencing multiple nucleotide templates
WO2008096146A1 (en) 2007-02-07 2008-08-14 Solexa Limited Preparation of templates for methylation analysis
US9598724B2 (en) 2007-06-01 2017-03-21 Ibis Biosciences, Inc. Methods and compositions for multiple displacement amplification of nucleic acids
JP2010529862A (ja) * 2007-06-16 2010-09-02 スカラブ ゲノミクス, エルエルシー 核酸パッケージングシステム
WO2008157640A2 (en) * 2007-06-18 2008-12-24 Illumina, Inc. Microfabrication methods for the optimal patterning of substrates
JP2009000070A (ja) * 2007-06-22 2009-01-08 Hitachi Ltd 大規模並列核酸分析方法
US8759077B2 (en) 2007-08-28 2014-06-24 Lightspeed Genomics, Inc. Apparatus for selective excitation of microparticles
US8222040B2 (en) * 2007-08-28 2012-07-17 Lightspeed Genomics, Inc. Nucleic acid sequencing by selective excitation of microparticles
US20090093378A1 (en) * 2007-08-29 2009-04-09 Helen Bignell Method for sequencing a polynucleotide template
WO2009029728A1 (en) 2007-08-29 2009-03-05 Applied Biosystems Inc. Alternative nucleic acid sequencing methods
US8716190B2 (en) 2007-09-14 2014-05-06 Affymetrix, Inc. Amplification and analysis of selected targets on solid supports
US9388457B2 (en) 2007-09-14 2016-07-12 Affymetrix, Inc. Locus specific amplification using array probes
US7767441B2 (en) * 2007-10-25 2010-08-03 Industrial Technology Research Institute Bioassay system including optical detection apparatuses, and method for detecting biomolecules
US7811810B2 (en) 2007-10-25 2010-10-12 Industrial Technology Research Institute Bioassay system including optical detection apparatuses, and method for detecting biomolecules
JP2009178159A (ja) 2007-11-05 2009-08-13 Hitachi Plant Technologies Ltd 核酸配列の検出方法及び核酸配列検出基板
US8202691B2 (en) * 2008-01-25 2012-06-19 Illumina, Inc. Uniform fragmentation of DNA using binding proteins
US12060554B2 (en) 2008-03-10 2024-08-13 Illumina, Inc. Method for selecting and amplifying polynucleotides
US8039817B2 (en) 2008-05-05 2011-10-18 Illumina, Inc. Compensator for multiple surface imaging
EP2294214A2 (en) * 2008-05-07 2011-03-16 Illumina, Inc. Compositions and methods for providing substances to and from an array
US8407012B2 (en) * 2008-07-03 2013-03-26 Cold Spring Harbor Laboratory Methods and systems of DNA sequencing
WO2010004695A1 (ja) 2008-07-09 2010-01-14 パナソニック株式会社 シークエンサー
WO2010021936A1 (en) * 2008-08-16 2010-02-25 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Digital pcr calibration for high throughput sequencing
US8583380B2 (en) 2008-09-05 2013-11-12 Aueon, Inc. Methods for stratifying and annotating cancer drug treatment options
US8383345B2 (en) 2008-09-12 2013-02-26 University Of Washington Sequence tag directed subassembly of short sequencing reads into long sequencing reads
WO2010038042A1 (en) 2008-10-02 2010-04-08 Illumina Cambridge Ltd. Nucleic acid sample enrichment for sequencing applications
US20100087325A1 (en) * 2008-10-07 2010-04-08 Illumina, Inc. Biological sample temperature control system and method
WO2010062775A2 (en) 2008-11-03 2010-06-03 The Regents Of The University Of California Methods for detecting modification resistant nucleic acids
US8628927B2 (en) 2008-11-07 2014-01-14 Sequenta, Inc. Monitoring health and disease status using clonotype profiles
US9528160B2 (en) 2008-11-07 2016-12-27 Adaptive Biotechnolgies Corp. Rare clonotypes and uses thereof
US9506119B2 (en) 2008-11-07 2016-11-29 Adaptive Biotechnologies Corp. Method of sequence determination using sequence tags
US9365901B2 (en) 2008-11-07 2016-06-14 Adaptive Biotechnologies Corp. Monitoring immunoglobulin heavy chain evolution in B-cell acute lymphoblastic leukemia
US9394567B2 (en) 2008-11-07 2016-07-19 Adaptive Biotechnologies Corporation Detection and quantification of sample contamination in immune repertoire analysis
US8748103B2 (en) 2008-11-07 2014-06-10 Sequenta, Inc. Monitoring health and disease status using clonotype profiles
EP2364368B1 (en) 2008-11-07 2014-01-15 Sequenta, Inc. Methods of monitoring conditions by sequence analysis
US8691510B2 (en) 2008-11-07 2014-04-08 Sequenta, Inc. Sequence analysis of complex amplicons
WO2010068702A2 (en) * 2008-12-10 2010-06-17 Illumina, Inc. Methods and compositions for hybridizing nucleic acids
EP2607496B1 (en) * 2008-12-23 2014-07-16 Illumina, Inc. Methods useful in nucleic acid sequencing protocols
DK3059337T3 (da) 2009-01-15 2019-07-22 Adaptive Biotechnologies Corp Adaptive immunity profiling og metoder til frembringelse af monoklonale antibodier
US20100216648A1 (en) 2009-02-20 2010-08-26 Febit Holding Gmbh Synthesis of sequence-verified nucleic acids
JP5600880B2 (ja) * 2009-03-03 2014-10-08 東洋紡株式会社 改良された増幅試薬
JP5239978B2 (ja) * 2009-03-23 2013-07-17 パナソニック株式会社 センサおよびシーケンサー
US20100285970A1 (en) * 2009-03-31 2010-11-11 Rose Floyd D Methods of sequencing nucleic acids
CN104404134B (zh) * 2009-04-03 2017-05-10 莱弗斯基因股份有限公司 多重核酸检测方法和系统
EP2425240A4 (en) 2009-04-30 2012-12-12 Good Start Genetics Inc METHOD AND COMPOSITION FOR EVALUATING GENETIC MARKERS
US12129514B2 (en) 2009-04-30 2024-10-29 Molecular Loop Biosolutions, Llc Methods and compositions for evaluating genetic markers
WO2010127186A1 (en) 2009-04-30 2010-11-04 Prognosys Biosciences, Inc. Nucleic acid constructs and methods of use
EP2248914A1 (en) 2009-05-05 2010-11-10 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. The use of class IIB restriction endonucleases in 2nd generation sequencing applications
US9309566B2 (en) 2010-12-17 2016-04-12 Life Technologies Corporation Methods, compositions, systems, apparatuses and kits for nucleic acid amplification
US9309557B2 (en) 2010-12-17 2016-04-12 Life Technologies Corporation Nucleic acid amplification
US9334531B2 (en) 2010-12-17 2016-05-10 Life Technologies Corporation Nucleic acid amplification
RU2014144463A (ru) 2009-06-25 2015-06-20 Фред Хатчинсон Кансэр Рисёч Сентер Способ измерения адаптивного иммунитета
US10036063B2 (en) 2009-07-24 2018-07-31 Illumina, Inc. Method for sequencing a polynucleotide template
WO2011014811A1 (en) 2009-07-31 2011-02-03 Ibis Biosciences, Inc. Capture primers and capture sequence linked solid supports for molecular diagnostic tests
US20110040081A1 (en) * 2009-08-14 2011-02-17 Epicentre Technologies Corporation METHODS, COMPOSITIONS, AND KITS FOR GENERATING rRNA-DEPLETED SAMPLES OR ISOLATING rRNA FROM SAMPLES
ES2595055T3 (es) 2009-08-25 2016-12-27 Illumina, Inc. Métodos para seleccionar y amplificar polinucleótidos
US8182994B2 (en) 2009-09-15 2012-05-22 Illumina Cambridge Limited Centroid markers for image analysis of high denisty clusters in complex polynucleotide sequencing
US10385391B2 (en) * 2009-09-22 2019-08-20 President And Fellows Of Harvard College Entangled mate sequencing
EP2957641B1 (en) 2009-10-15 2017-05-17 Ibis Biosciences, Inc. Multiple displacement amplification
US8524450B2 (en) 2009-10-30 2013-09-03 Illumina, Inc. Microvessels, microparticles, and methods of manufacturing and using the same
CN102648295B (zh) 2009-12-07 2017-08-08 伊鲁米那股份有限公司 用于多重基因分型的多样品索引
US10388403B2 (en) 2010-01-19 2019-08-20 Verinata Health, Inc. Analyzing copy number variation in the detection of cancer
AU2010343277B2 (en) 2010-01-19 2015-05-28 Verinata Health, Inc. Method for determining copy number variations
US9260745B2 (en) 2010-01-19 2016-02-16 Verinata Health, Inc. Detecting and classifying copy number variation
WO2011091046A1 (en) 2010-01-19 2011-07-28 Verinata Health, Inc. Identification of polymorphic sequences in mixtures of genomic dna by whole genome sequencing
AU2011207561B2 (en) 2010-01-19 2014-02-20 Verinata Health, Inc. Partition defined detection methods
US20120100548A1 (en) 2010-10-26 2012-04-26 Verinata Health, Inc. Method for determining copy number variations
US9323888B2 (en) 2010-01-19 2016-04-26 Verinata Health, Inc. Detecting and classifying copy number variation
US20120010085A1 (en) 2010-01-19 2012-01-12 Rava Richard P Methods for determining fraction of fetal nucleic acids in maternal samples
US9499814B2 (en) * 2010-01-22 2016-11-22 The Regents Of The University Of California Methods for identifying drug effects on a cell by determining changes in the cell's spliced message profile
US20110312503A1 (en) 2010-01-23 2011-12-22 Artemis Health, Inc. Methods of fetal abnormality detection
EP2539464B1 (en) 2010-02-23 2016-11-16 Illumina, Inc. Amplification methods to minimise sequence specific bias
DE202011003570U1 (de) 2010-03-06 2012-01-30 Illumina, Inc. Systeme und Vorrichtungen zum Detektieren optischer Signale aus einer Probe
US9465228B2 (en) 2010-03-19 2016-10-11 Optical Biosystems, Inc. Illumination apparatus optimized for synthetic aperture optics imaging using minimum selective excitation patterns
US8502867B2 (en) 2010-03-19 2013-08-06 Lightspeed Genomics, Inc. Synthetic aperture optics imaging method using minimum selective excitation patterns
US10787701B2 (en) 2010-04-05 2020-09-29 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially encoded biological assays
US20190300945A1 (en) 2010-04-05 2019-10-03 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially Encoded Biological Assays
AU2011237729B2 (en) 2010-04-05 2014-04-03 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially encoded biological assays
SG10201503540QA (en) * 2010-05-06 2015-06-29 Ibis Biosciences Inc Integrated sample preparation systems and stabilized enzyme mixtures
WO2011139372A1 (en) 2010-05-06 2011-11-10 Sequenta, Inc. Sequence analysis of complex amplicons
US20190010543A1 (en) 2010-05-18 2019-01-10 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US12152275B2 (en) 2010-05-18 2024-11-26 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US11332785B2 (en) 2010-05-18 2022-05-17 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US9677118B2 (en) 2014-04-21 2017-06-13 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US11939634B2 (en) 2010-05-18 2024-03-26 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US12221653B2 (en) 2010-05-18 2025-02-11 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US10316362B2 (en) 2010-05-18 2019-06-11 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US11322224B2 (en) 2010-05-18 2022-05-03 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US11326208B2 (en) 2010-05-18 2022-05-10 Natera, Inc. Methods for nested PCR amplification of cell-free DNA
US11332793B2 (en) 2010-05-18 2022-05-17 Natera, Inc. Methods for simultaneous amplification of target loci
US11339429B2 (en) 2010-05-18 2022-05-24 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
US11408031B2 (en) 2010-05-18 2022-08-09 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal paternity testing
US8825412B2 (en) 2010-05-18 2014-09-02 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal ploidy calling
CA2801039A1 (en) 2010-06-07 2011-12-15 Esoterix Genetic Laboratories, Llc Enumeration of nucleic acids
US9353412B2 (en) 2010-06-18 2016-05-31 Illumina, Inc. Conformational probes and methods for sequencing nucleic acids
CN103069006A (zh) 2010-07-23 2013-04-24 艾索特里克斯遗传实验室有限责任公司 区别表达的胚胎或母源基因组区的鉴定及其用途
US9029103B2 (en) 2010-08-27 2015-05-12 Illumina Cambridge Limited Methods for sequencing polynucleotides
EP2426214A1 (en) 2010-09-01 2012-03-07 Koninklijke Philips Electronics N.V. Method for amplifying nucleic acids
CA2811294C (en) 2010-09-16 2016-06-28 Ibis Biosciences, Inc. Stabilization of ozone-labile fluorescent dyes by thiourea
RU2565550C2 (ru) 2010-09-24 2015-10-20 Те Борд Оф Трастиз Оф Те Лилэнд Стэнфорд Джуниор Юниверсити Прямой захват, амплификация и секвенирование днк-мишени с использованием иммобилизированных праймеров
US8759038B2 (en) 2010-09-29 2014-06-24 Illumina Cambridge Limited Compositions and methods for sequencing nucleic acids
US10233501B2 (en) 2010-10-19 2019-03-19 Northwestern University Biomarkers predictive of predisposition to depression and response to treatment
US20150218639A1 (en) 2014-01-17 2015-08-06 Northwestern University Biomarkers predictive of predisposition to depression and response to treatment
EA022475B1 (ru) * 2010-10-19 2016-01-29 Ооо "Центр Инновационных Технологий-Нано" Способ секвенирования днк
US20150225792A1 (en) 2014-01-17 2015-08-13 Northwestern University Compositions and methods for identifying depressive disorders
US10093981B2 (en) 2010-10-19 2018-10-09 Northwestern University Compositions and methods for identifying depressive disorders
WO2012055929A1 (en) 2010-10-26 2012-05-03 Illumina, Inc. Sequencing methods
EP2632593B1 (en) 2010-10-27 2021-09-29 Illumina, Inc. Flow cells for biological or chemical analysis
US8575071B2 (en) 2010-11-03 2013-11-05 Illumina, Inc. Reducing adapter dimer formation
US9074251B2 (en) 2011-02-10 2015-07-07 Illumina, Inc. Linking sequence reads using paired code tags
EP2643484A4 (en) 2010-11-22 2014-04-16 Univ California METHOD OF IDENTIFYING AN RNA TRANSCRIPTION OF CELLULAR ORIGIN
CN110079588B (zh) 2010-12-17 2024-03-15 生命技术公司 用于核酸扩增的方法、组合物、系统、仪器和试剂盒
US20120152743A1 (en) * 2010-12-17 2012-06-21 General Electric Company Method for electroeluting genetic material from dried samples
JP5616773B2 (ja) 2010-12-21 2014-10-29 株式会社日立ハイテクノロジーズ 核酸分析用反応デバイス、及び核酸分析装置
EP2656263B1 (en) 2010-12-22 2019-11-06 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal paternity testing
US9163281B2 (en) 2010-12-23 2015-10-20 Good Start Genetics, Inc. Methods for maintaining the integrity and identification of a nucleic acid template in a multiplex sequencing reaction
SG191409A1 (en) 2010-12-27 2013-08-30 Ibis Biosciences Inc Nucleic acid sample preparation methods and compositions
US8951781B2 (en) 2011-01-10 2015-02-10 Illumina, Inc. Systems, methods, and apparatuses to image a sample for biological or chemical analysis
WO2012100194A1 (en) 2011-01-20 2012-07-26 Ibis Biosciences, Inc. Microfluidic transducer
WO2012106546A2 (en) 2011-02-02 2012-08-09 University Of Washington Through Its Center For Commercialization Massively parallel continguity mapping
US20130344540A1 (en) * 2011-02-03 2013-12-26 Mark T. Reed Methods for minimizing sequence specific bias
JP6153874B2 (ja) 2011-02-09 2017-06-28 ナテラ, インコーポレイテッド 非侵襲的出生前倍数性呼び出しのための方法
CN108220297A (zh) 2011-03-09 2018-06-29 细胞信号科技公司 用于生成单克隆抗体的方法和试剂
EP3456844B1 (en) 2011-04-12 2020-06-10 Verinata Health, Inc. Resolving genome fractions using polymorphism counts
GB201106254D0 (en) 2011-04-13 2011-05-25 Frisen Jonas Method and product
GB2484764B (en) 2011-04-14 2012-09-05 Verinata Health Inc Normalizing chromosomes for the determination and verification of common and rare chromosomal aneuploidies
US9411937B2 (en) 2011-04-15 2016-08-09 Verinata Health, Inc. Detecting and classifying copy number variation
AU2012242847B2 (en) 2011-04-15 2017-01-19 The Johns Hopkins University Safe sequencing system
US8778848B2 (en) 2011-06-09 2014-07-15 Illumina, Inc. Patterned flow-cells useful for nucleic acid analysis
KR102003660B1 (ko) 2011-07-13 2019-07-24 더 멀티플 마이얼로머 리서치 파운데이션, 인크. 데이터 수집 및 분배 방법
WO2013022778A1 (en) 2011-08-05 2013-02-14 Ibis Biosciences, Inc. Nucleic acid sequencing by electrochemical detection
US10385475B2 (en) 2011-09-12 2019-08-20 Adaptive Biotechnologies Corp. Random array sequencing of low-complexity libraries
EP3623481B1 (en) 2011-09-23 2021-08-25 Illumina, Inc. Compositions for nucleic acid sequencing
US10152569B2 (en) 2011-09-26 2018-12-11 Gen-Probe Incorporated Algorithms for sequence determinations
EP2768983A4 (en) 2011-10-17 2015-06-03 Good Start Genetics Inc METHODS OF IDENTIFYING MUTATIONS ASSOCIATED WITH DISEASES
SG10201510189WA (en) 2011-10-19 2016-01-28 Nugen Technologies Inc Compositions And Methods For Directional Nucleic Acid Amplification And Sequencing
US9279159B2 (en) 2011-10-21 2016-03-08 Adaptive Biotechnologies Corporation Quantification of adaptive immune cell genomes in a complex mixture of cells
WO2013063308A1 (en) 2011-10-25 2013-05-02 University Of Massachusetts An enzymatic method to enrich for capped rna, kits for performing same, and compositions derived therefrom
CA3003082C (en) 2011-10-28 2020-12-15 Illumina, Inc. Microarray fabrication system and method
US9708649B2 (en) 2011-10-31 2017-07-18 Hitachi High-Technologies Corporation Method and substrate for nucleic acid amplification, and method and apparatus for nucleic acid analysis
EP3388535B1 (en) 2011-12-09 2021-03-24 Adaptive Biotechnologies Corporation Diagnosis of lymphoid malignancies and minimal residual disease detection
US9499865B2 (en) 2011-12-13 2016-11-22 Adaptive Biotechnologies Corp. Detection and measurement of tissue-infiltrating lymphocytes
US20130189679A1 (en) 2011-12-20 2013-07-25 The Regents Of The University Of Michigan Pseudogenes and uses thereof
WO2013096838A2 (en) 2011-12-22 2013-06-27 Ibis Biosciences, Inc. Systems and methods for isolating nucleic acids
ES2645418T3 (es) 2011-12-22 2017-12-05 Ibis Biosciences, Inc. Amplificación de una secuencia de un ácido ribonucleico
EP3211100A1 (en) 2011-12-22 2017-08-30 Ibis Biosciences, Inc. Amplification primers and methods
US9334491B2 (en) 2011-12-22 2016-05-10 Ibis Biosciences, Inc. Systems and methods for isolating nucleic acids from cellular samples
WO2013096819A2 (en) 2011-12-22 2013-06-27 Ibis Biosciences, Inc. Macromolecule positioning by electrical potential
WO2013102091A1 (en) 2011-12-28 2013-07-04 Ibis Biosciences, Inc. Nucleic acid ligation systems and methods
US9823246B2 (en) 2011-12-28 2017-11-21 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Fluorescence enhancing plasmonic nanoscopic gold films and assays based thereon
WO2013102081A2 (en) 2011-12-29 2013-07-04 Ibis Biosciences, Inc. Macromolecule delivery to nanowells
WO2013101741A1 (en) 2011-12-30 2013-07-04 Abbott Molecular, Inc. Channels with cross-sectional thermal gradients
EP2802673B1 (en) 2012-01-09 2019-07-03 Oslo Universitetssykehus HF Methods and biomarkers for analysis of colorectal cancer
CN108611398A (zh) 2012-01-13 2018-10-02 Data生物有限公司 通过新一代测序进行基因分型
SG11201404243WA (en) 2012-01-26 2014-08-28 Nugen Technologies Inc Compositions and methods for targeted nucleic acid sequence enrichment and high efficiency library generation
WO2013117595A2 (en) 2012-02-07 2013-08-15 Illumina Cambridge Limited Targeted enrichment and amplification of nucleic acids on a support
HUE053360T2 (hu) 2012-02-17 2021-06-28 Hutchinson Fred Cancer Res Kompozíciók és eljárások mutációk pontos azonosítására
US9506117B2 (en) 2012-02-21 2016-11-29 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and biomarkers for detection and prognosis of cervical cancer
DK2823060T3 (en) 2012-03-05 2018-05-28 Adaptive Biotechnologies Corp Determination of associated immune receptor chains from frequency-matched subunits
NO2694769T3 (cs) 2012-03-06 2018-03-03
AU2013229151A1 (en) 2012-03-06 2014-09-25 Aarhus University Gene signatures associated with efficacy of postmastectomy radiotherapy in breast cancer
US9803239B2 (en) 2012-03-29 2017-10-31 Complete Genomics, Inc. Flow cells for high density array chips
US20130261984A1 (en) 2012-03-30 2013-10-03 Illumina, Inc. Methods and systems for determining fetal chromosomal abnormalities
WO2013152114A1 (en) 2012-04-03 2013-10-10 The Regents Of The University Of Michigan Biomarker associated with irritable bowel syndrome and crohn's disease
CA3138752C (en) 2012-04-03 2024-02-06 Illumina, Inc. Integrated optoelectronic read head and fluidic cartridge useful for nucleic acid sequencing
US8209130B1 (en) 2012-04-04 2012-06-26 Good Start Genetics, Inc. Sequence assembly
US8812422B2 (en) 2012-04-09 2014-08-19 Good Start Genetics, Inc. Variant database
US20130274148A1 (en) 2012-04-11 2013-10-17 Illumina, Inc. Portable genetic detection and analysis system and method
US10227635B2 (en) 2012-04-16 2019-03-12 Molecular Loop Biosolutions, Llc Capture reactions
EP3438286B1 (en) 2012-05-02 2020-10-28 Ibis Biosciences, Inc. Dna sequencing
US20150133310A1 (en) 2012-05-02 2015-05-14 Ibis Biosciences, Inc. Nucleic acid sequencing systems and methods
ES2683707T3 (es) 2012-05-02 2018-09-27 Ibis Biosciences, Inc. Secuenciación de ADN
ES2833524T3 (es) 2012-05-02 2021-06-15 Ibis Biosciences Inc Secuenciación de ADN
EP3091089B1 (en) 2012-05-08 2019-01-23 Adaptive Biotechnologies Corporation Method for measuring and calibrating amplification bias in multiplexed pcr reactions
US9012022B2 (en) 2012-06-08 2015-04-21 Illumina, Inc. Polymer coatings
US8895249B2 (en) 2012-06-15 2014-11-25 Illumina, Inc. Kinetic exclusion amplification of nucleic acid libraries
JP6181751B2 (ja) 2012-06-18 2017-08-16 ニューゲン テクノロジーズ, インコーポレイテッド 望まれない核酸配列のネガティブ選択のための組成物および方法
WO2014005076A2 (en) 2012-06-29 2014-01-03 The Regents Of The University Of Michigan Methods and biomarkers for detection of kidney disorders
WO2014008448A1 (en) 2012-07-03 2014-01-09 Sloan Kettering Institute For Cancer Research Quantitative assessment of human t-cell repertoire recovery after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation
US20150011396A1 (en) 2012-07-09 2015-01-08 Benjamin G. Schroeder Methods for creating directional bisulfite-converted nucleic acid libraries for next generation sequencing
EP2875173B1 (en) 2012-07-17 2017-06-28 Counsyl, Inc. System and methods for detecting genetic variation
US9092401B2 (en) 2012-10-31 2015-07-28 Counsyl, Inc. System and methods for detecting genetic variation
US9977861B2 (en) 2012-07-18 2018-05-22 Illumina Cambridge Limited Methods and systems for determining haplotypes and phasing of haplotypes
JP6367196B2 (ja) 2012-08-14 2018-08-01 テンエックス・ジェノミクス・インコーポレイテッド マイクロカプセル組成物および方法
US9951386B2 (en) 2014-06-26 2018-04-24 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10752949B2 (en) 2012-08-14 2020-08-25 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10323279B2 (en) 2012-08-14 2019-06-18 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10221442B2 (en) 2012-08-14 2019-03-05 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10273541B2 (en) 2012-08-14 2019-04-30 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US11591637B2 (en) 2012-08-14 2023-02-28 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10584381B2 (en) 2012-08-14 2020-03-10 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9701998B2 (en) 2012-12-14 2017-07-11 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9422602B2 (en) 2012-08-15 2016-08-23 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods and compositions for determining nucleic acid degradation
NL2017959B1 (en) 2016-12-08 2018-06-19 Illumina Inc Cartridge assembly
US20140100126A1 (en) 2012-08-17 2014-04-10 Natera, Inc. Method for Non-Invasive Prenatal Testing Using Parental Mosaicism Data
CA3040684C (en) 2012-08-20 2023-02-07 Hod Finkelstein Method and system for fluorescence lifetime based sequencing
LT2897978T (lt) 2012-09-19 2017-06-12 Abbvie Biotherapeutics Inc. Antikūnų su sumažintu imunogeniškumu identifikavimo būdas
US20160002731A1 (en) 2012-10-01 2016-01-07 Adaptive Biotechnologies Corporation Immunocompetence assessment by adaptive immune receptor diversity and clonality characterization
ES2701750T3 (es) 2012-10-16 2019-02-25 Abbott Molecular Inc Procedimientos para secuenciar un ácido nucleico
US9593365B2 (en) 2012-10-17 2017-03-14 Spatial Transcriptions Ab Methods and product for optimising localised or spatial detection of gene expression in a tissue sample
US10150996B2 (en) 2012-10-19 2018-12-11 Adaptive Biotechnologies Corp. Quantification of adaptive immune cell genomes in a complex mixture of cells
US9365896B2 (en) 2012-10-19 2016-06-14 Agilent Technologies, Inc. Addition of an adaptor by invasive cleavage
US9410173B2 (en) 2012-10-24 2016-08-09 Clontech Laboratories, Inc. Template switch-based methods for producing a product nucleic acid
ES2701742T3 (es) 2012-10-29 2019-02-25 Univ Johns Hopkins Prueba de Papanicolaou para cánceres de ovario y de endometrio
CA2892043C (en) 2012-11-21 2022-01-11 Courtagen Life Sciences Inc. A method of removing amplicons of a non-target nucleic acid having one or more methylated cytosines from a sample
EP3567116A1 (en) 2012-12-14 2019-11-13 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10533221B2 (en) 2012-12-14 2020-01-14 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9683230B2 (en) 2013-01-09 2017-06-20 Illumina Cambridge Limited Sample preparation on a solid support
WO2014113204A1 (en) 2013-01-17 2014-07-24 Personalis, Inc. Methods and systems for genetic analysis
KR102190198B1 (ko) 2013-02-08 2020-12-14 10엑스 제노믹스, 인크. 폴리뉴클레오티드 바코드 생성
US9512422B2 (en) 2013-02-26 2016-12-06 Illumina, Inc. Gel patterned surfaces
WO2014135223A1 (en) 2013-03-08 2014-09-12 Illumina Cambridge Ltd Rhodamine compounds and their use as fluorescent labels
EP2964612B1 (en) 2013-03-08 2017-02-01 Illumina Cambridge Limited Polymethine compounds and their use as fluorescent labels
EP3553175B1 (en) 2013-03-13 2021-07-14 Illumina, Inc. Method of preparing a nucleic acid sequencing library
US20160023208A1 (en) 2013-03-13 2016-01-28 Illumina, Inc. Multilayer fluidic devices and methods for their fabrication
WO2014160233A1 (en) 2013-03-13 2014-10-02 Abbott Molecular Inc. Systems and methods for isolating nucleic acids
ES2732012T3 (es) 2013-03-14 2019-11-20 Abbott Molecular Inc Minimización de errores utilizando uracil-ADN-N-glicosilasa
US8778609B1 (en) 2013-03-14 2014-07-15 Good Start Genetics, Inc. Methods for analyzing nucleic acids
JP2016512437A (ja) 2013-03-14 2016-04-28 アボツト・モレキユラー・インコーポレイテツド 多重メチル化特異的増幅システムおよび方法
EP2971154A4 (en) 2013-03-14 2017-03-01 Ibis Biosciences, Inc. Nucleic acid control panels
US10428379B2 (en) 2013-03-15 2019-10-01 Ibis Biosciences, Inc. Nucleotide analogs for sequencing
US9255265B2 (en) 2013-03-15 2016-02-09 Illumina, Inc. Methods for producing stranded cDNA libraries
WO2014144092A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Nugen Technologies, Inc. Sequential sequencing
CN105358709B (zh) 2013-03-15 2018-12-07 雅培分子公司 用于检测基因组拷贝数变化的系统和方法
US20160153029A1 (en) 2013-03-15 2016-06-02 Ibis Biosciences, Inc. Dna sequences to assess contamination in dna sequencing
EP2971071B1 (en) 2013-03-15 2018-02-28 Illumina, Inc. Enzyme-linked nucleotides
SG11201508193TA (en) 2013-04-17 2015-11-27 Agency Science Tech & Res Method for generating extended sequence reads
EP2986762B1 (en) 2013-04-19 2019-11-06 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital analyte analysis
EP3005200A2 (en) 2013-06-03 2016-04-13 Good Start Genetics, Inc. Methods and systems for storing sequence read data
DK3013983T3 (da) 2013-06-25 2023-03-06 Prognosys Biosciences Inc Spatialt kodede biologiske assays ved brug af en mikrofluidisk anordning
MX363806B (es) 2013-07-01 2019-04-03 Illumina Inc Funcionalización de superficies sin catalizador e injerto de polímeros..
US9708657B2 (en) 2013-07-01 2017-07-18 Adaptive Biotechnologies Corp. Method for generating clonotype profiles using sequence tags
EP3241913B1 (en) 2013-07-03 2019-02-20 Illumina, Inc. System for sequencing by orthogonal synthesis
US10392670B2 (en) 2013-07-25 2019-08-27 Dch Molecular Diagnostics, Inc. Methods and compositions for detecting bacterial contamination
TWI707038B (zh) 2013-08-05 2020-10-11 美商扭轉生物科技有限公司 重新合成之基因庫
FI3030645T3 (fi) 2013-08-08 2023-02-10 Fluidijärjestelmä reagenssien toimittamiseen virtauskennoon
US20150051088A1 (en) 2013-08-19 2015-02-19 Abbott Molecular Inc. Next-generation sequencing libraries
JP2016539343A (ja) 2013-08-30 2016-12-15 イルミナ インコーポレイテッド 親水性または斑状親水性表面上の液滴の操作
EP3039161B1 (en) 2013-08-30 2021-10-06 Personalis, Inc. Methods and systems for genomic analysis
US10395758B2 (en) 2013-08-30 2019-08-27 10X Genomics, Inc. Sequencing methods
US9352315B2 (en) 2013-09-27 2016-05-31 Taiwan Semiconductor Manufacturing Company, Ltd. Method to produce chemical pattern in micro-fluidic structure
GB2535066A (en) 2013-10-03 2016-08-10 Personalis Inc Methods for analyzing genotypes
CA2923812C (en) 2013-10-17 2023-10-17 Clontech Laboratories, Inc. Methods for adding adapters to nucleic acids and compositions for practicing the same
EP3572527B1 (en) 2013-10-17 2021-05-26 Illumina, Inc. Methods and compositions for preparing nucleic acid libraries
WO2015057565A1 (en) 2013-10-18 2015-04-23 Good Start Genetics, Inc. Methods for assessing a genomic region of a subject
US10851414B2 (en) 2013-10-18 2020-12-01 Good Start Genetics, Inc. Methods for determining carrier status
AU2014334531B2 (en) 2013-10-18 2019-05-16 The Regents Of The University Of Michigan Systems and methods for determining a treatment course of action
US10415083B2 (en) 2013-10-28 2019-09-17 The Translational Genomics Research Institute Long insert-based whole genome sequencing
CA2929596C (en) 2013-11-13 2022-07-05 Nugen Technologies, Inc. Compositions and methods for identification of a duplicate sequencing read
EP3080268A1 (en) 2013-12-09 2016-10-19 Illumina, Inc. Methods and compositions for targeted nucleic acid sequencing
CN110411998B (zh) 2013-12-10 2022-06-07 伊鲁米那股份有限公司 用于生物或化学分析的生物传感器及其制造方法
WO2015089438A1 (en) 2013-12-13 2015-06-18 Northwestern University Biomarkers for post-traumatic stress states
EP3083700B1 (en) 2013-12-17 2023-10-11 The Brigham and Women's Hospital, Inc. Detection of an antibody against a pathogen
US9719136B2 (en) 2013-12-17 2017-08-01 Takara Bio Usa, Inc. Methods for adding adapters to nucleic acids and compositions for practicing the same
WO2015095291A1 (en) 2013-12-19 2015-06-25 Illumina, Inc. Substrates comprising nano-patterning surfaces and methods of preparing thereof
US10246746B2 (en) 2013-12-20 2019-04-02 Illumina, Inc. Preserving genomic connectivity information in fragmented genomic DNA samples
US10537889B2 (en) 2013-12-31 2020-01-21 Illumina, Inc. Addressable flow cell using patterned electrodes
WO2015108663A1 (en) 2014-01-16 2015-07-23 Illumina, Inc. Amplicon preparation and sequencing on solid supports
WO2015107430A2 (en) 2014-01-16 2015-07-23 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and biomarkers for detection and prognosis of cervical cancer
US9677132B2 (en) 2014-01-16 2017-06-13 Illumina, Inc. Polynucleotide modification on solid support
JP7011392B2 (ja) 2014-02-18 2022-01-26 イラミーナ インコーポレーテッド Dnaプロファイリングのための方法および組成物
US9745614B2 (en) 2014-02-28 2017-08-29 Nugen Technologies, Inc. Reduced representation bisulfite sequencing with diversity adaptors
WO2015134787A2 (en) 2014-03-05 2015-09-11 Adaptive Biotechnologies Corporation Methods using randomer-containing synthetic molecules
US11390921B2 (en) 2014-04-01 2022-07-19 Adaptive Biotechnologies Corporation Determining WT-1 specific T cells and WT-1 specific T cell receptors (TCRs)
US10066265B2 (en) 2014-04-01 2018-09-04 Adaptive Biotechnologies Corp. Determining antigen-specific t-cells
CA2943624A1 (en) 2014-04-10 2015-10-15 10X Genomics, Inc. Fluidic devices, systems, and methods for encapsulating and partitioning reagents, and applications of same
CN113774132A (zh) 2014-04-21 2021-12-10 纳特拉公司 检测染色体片段中的突变和倍性
WO2015175530A1 (en) 2014-05-12 2015-11-19 Gore Athurva Methods for detecting aneuploidy
ES2876432T3 (es) 2014-05-16 2021-11-12 Illumina Inc Técnicas de síntesis de ácidos nucleicos
CA2949984C (en) 2014-05-27 2021-10-19 Illumina, Inc. Systems and methods for biochemical analysis including a base instrument and a removable cartridge
US20180173846A1 (en) 2014-06-05 2018-06-21 Natera, Inc. Systems and Methods for Detection of Aneuploidy
GB201410022D0 (en) 2014-06-05 2014-07-16 Orion Diagnostica Oy Method
LT3669985T (lt) 2014-06-05 2022-06-10 Illumina, Inc. Sistemos, įskaitant sukamąjį vožtuvą, skirtos bent vieno mėginio paruošimui arba mėginio analizei
US10760109B2 (en) 2014-06-06 2020-09-01 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for characterizing and diagnosing periodontal disease
US20150353989A1 (en) 2014-06-09 2015-12-10 Illumina Cambridge Limited Sample preparation for nucleic acid amplification
GB201410420D0 (en) 2014-06-11 2014-07-23 Illumina Cambridge Ltd Methods for estimating cluster numbers
WO2015189636A1 (en) 2014-06-13 2015-12-17 Illumina Cambridge Limited Methods and compositions for preparing sequencing libraries
GB201410646D0 (en) 2014-06-14 2014-07-30 Illumina Cambridge Ltd Methods of increasing sequencing accuracy
EP3919621A1 (en) 2014-06-23 2021-12-08 The General Hospital Corporation Genomewide unbiased identification of dsbs evaluated by sequencing (guide-seq)
WO2015200541A1 (en) 2014-06-24 2015-12-30 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital pcr barcoding
WO2015200869A1 (en) 2014-06-26 2015-12-30 10X Genomics, Inc. Analysis of nucleic acid sequences
JP2017526046A (ja) 2014-06-26 2017-09-07 10エックス ゲノミクス,インコーポレイテッド 核酸配列アセンブルのプロセス及びシステム
EP4574974A3 (en) 2014-06-26 2025-10-08 10x Genomics, Inc. Methods of analyzing nucleic acids from individual cells or cell populations
US12312640B2 (en) 2014-06-26 2025-05-27 10X Genomics, Inc. Analysis of nucleic acid sequences
US10017759B2 (en) 2014-06-26 2018-07-10 Illumina, Inc. Library preparation of tagged nucleic acid
WO2015200833A2 (en) 2014-06-27 2015-12-30 Abbott Laboratories COMPOSITIONS AND METHODS FOR DETECTING HUMAN PEGIVIRUS 2 (HPgV-2)
WO2016003814A1 (en) 2014-06-30 2016-01-07 Illumina, Inc. Methods and compositions using one-sided transposition
RU2697502C2 (ru) 2014-07-24 2019-08-14 Эбботт Молекьюлар Инк. Композиции и способы обнаружения и анализа микобактерии туберкулеза (mycobacterium tuberculosis)
EP4219710A3 (en) 2014-08-01 2023-08-16 Dovetail Genomics, LLC Tagging nucleic acids for sequence assembly
CN107075581B (zh) 2014-08-06 2022-03-18 纽亘技术公司 由靶向测序进行数字测量
CA2956723C (en) 2014-08-12 2023-04-11 Nextgen Jane, Inc. System and method for monitoring health based on collected bodily fluid
US10174383B2 (en) 2014-08-13 2019-01-08 Vanadis Diagnostics Method of estimating the amount of a methylated locus in a sample
WO2016025818A1 (en) 2014-08-15 2016-02-18 Good Start Genetics, Inc. Systems and methods for genetic analysis
EP3183577B1 (en) 2014-08-21 2020-08-19 Illumina Cambridge Limited Reversible surface functionalization
US11408024B2 (en) 2014-09-10 2022-08-09 Molecular Loop Biosciences, Inc. Methods for selectively suppressing non-target sequences
WO2016040602A1 (en) 2014-09-11 2016-03-17 Epicentre Technologies Corporation Reduced representation bisulfite sequencing using uracil n-glycosylase (ung) and endonuclease iv
WO2016044391A1 (en) 2014-09-17 2016-03-24 Ibis Biosciences, Inc. Sequencing by synthesis using pulse read optics
JP6802154B2 (ja) 2014-09-18 2020-12-16 イラミーナ インコーポレーテッド 核酸シーケンシングデータを解析するための方法およびシステム
JP2017536087A (ja) 2014-09-24 2017-12-07 グッド スタート ジェネティクス, インコーポレイテッド 遺伝子アッセイのロバストネスを増大させるためのプロセス制御
US10040048B1 (en) 2014-09-25 2018-08-07 Synthego Corporation Automated modular system and method for production of biopolymers
KR20170066540A (ko) 2014-10-09 2017-06-14 일루미나, 인코포레이티드 액체 중 적어도 하나를 효과적으로 격리시키기 위해 비혼화성 액체를 분리하기 위한 방법 및 디바이스
JP6808617B2 (ja) 2014-10-17 2021-01-06 イルミナ ケンブリッジ リミテッド 連続性を維持した転位
WO2016069939A1 (en) 2014-10-29 2016-05-06 10X Genomics, Inc. Methods and compositions for targeted nucleic acid sequencing
CA2966201A1 (en) 2014-10-29 2016-05-06 Adaptive Biotechnologies Corp. Highly-multiplexed simultaneous detection of nucleic acids encoding paired adaptive immune receptor heterodimers from many samples
US10125399B2 (en) 2014-10-30 2018-11-13 Personalis, Inc. Methods for using mosaicism in nucleic acids sampled distal to their origin
CN114805710B (zh) 2014-10-31 2023-11-17 伊鲁米纳剑桥有限公司 聚合物以及dna共聚物涂层
GB201419731D0 (en) 2014-11-05 2014-12-17 Illumina Cambridge Ltd Sequencing from multiple primers to increase data rate and density
US9975122B2 (en) 2014-11-05 2018-05-22 10X Genomics, Inc. Instrument systems for integrated sample processing
WO2016073778A2 (en) 2014-11-05 2016-05-12 Nirmidas Biotech, Inc. Metal composites for enhanced imaging
CN107109495B (zh) 2014-11-11 2021-12-24 伊鲁米那股份有限公司 使用crispr-cas系统的多核苷酸扩增
WO2016077426A1 (en) 2014-11-11 2016-05-19 Abbott Molecular Inc. Hybridization probes and methods
US10246701B2 (en) 2014-11-14 2019-04-02 Adaptive Biotechnologies Corp. Multiplexed digital quantitation of rearranged lymphoid receptors in a complex mixture
US11789906B2 (en) 2014-11-19 2023-10-17 Arc Bio, Llc Systems and methods for genomic manipulations and analysis
US10233490B2 (en) 2014-11-21 2019-03-19 Metabiotech Corporation Methods for assembling and reading nucleic acid sequences from mixed populations
EP3224384A4 (en) 2014-11-25 2018-04-18 Adaptive Biotechnologies Corp. Characterization of adaptive immune response to vaccination or infection using immune repertoire sequencing
US20180127804A1 (en) 2014-12-05 2018-05-10 Amyris, Inc. High-throughput sequencing of polynucleotides
US10066259B2 (en) 2015-01-06 2018-09-04 Good Start Genetics, Inc. Screening for structural variants
CN107427808B (zh) 2015-01-12 2020-10-23 10X基因组学有限公司 用于制备核酸测序文库的方法和系统以及用其制备的文库
WO2016115273A1 (en) 2015-01-13 2016-07-21 10X Genomics, Inc. Systems and methods for visualizing structural variation and phasing information
WO2016126987A1 (en) 2015-02-04 2016-08-11 Twist Bioscience Corporation Compositions and methods for synthetic gene assembly
WO2016126882A1 (en) 2015-02-04 2016-08-11 Twist Bioscience Corporation Methods and devices for de novo oligonucleic acid assembly
CN107208156B (zh) 2015-02-09 2021-10-08 10X基因组学有限公司 用于使用变异识别数据来确定结构变异和定相的系统和方法
CN107250383B (zh) 2015-02-17 2022-09-06 深圳华大智造科技股份有限公司 使用受控的链置换的dna序列测定
US10208339B2 (en) 2015-02-19 2019-02-19 Takara Bio Usa, Inc. Systems and methods for whole genome amplification
WO2016134342A1 (en) 2015-02-20 2016-08-25 Wafergen, Inc. Method for rapid accurate dispensing, visualization and analysis of single cells
EP3262407B1 (en) 2015-02-24 2023-08-30 10X Genomics, Inc. Partition processing methods and systems
US11047008B2 (en) 2015-02-24 2021-06-29 Adaptive Biotechnologies Corporation Methods for diagnosing infectious disease and determining HLA status using immune repertoire sequencing
CN107532202A (zh) 2015-02-24 2018-01-02 10X 基因组学有限公司 用于靶向核酸序列覆盖的方法
US9976174B2 (en) 2015-03-24 2018-05-22 Illumina Cambridge Limited Methods, carrier assemblies, and systems for imaging samples for biological or chemical analysis
US20180100192A1 (en) 2015-03-31 2018-04-12 lllumina Cambridge Limited Surface concatemerization of templates
WO2016161273A1 (en) 2015-04-01 2016-10-06 Adaptive Biotechnologies Corp. Method of identifying human compatible t cell receptors specific for an antigenic target
CN120425026A (zh) 2015-04-10 2025-08-05 十程基因技术瑞典公司 生物样本的空间区别、多重核酸分析
AU2016250281A1 (en) 2015-04-15 2017-10-26 The General Hospital Corporation LNA-based mutant enrichment next-generation sequencing assays
US9981239B2 (en) 2015-04-21 2018-05-29 Twist Bioscience Corporation Devices and methods for oligonucleic acid library synthesis
WO2016170179A1 (en) 2015-04-24 2016-10-27 Qiagen Gmbh Method for immobilizing a nucleic acid molecule on solid support
ES2961374T3 (es) 2015-04-24 2024-03-11 Atila Biosystems Incorporated Amplificación con cebadores de composición de nucleótidos limitada
US11085073B2 (en) 2015-04-24 2021-08-10 Qiagen Gmbh Method for immobilizing a nucleic acid molecule on a solid support
US10844428B2 (en) 2015-04-28 2020-11-24 Illumina, Inc. Error suppression in sequenced DNA fragments using redundant reads with unique molecular indices (UMIS)
DK3294906T3 (en) 2015-05-11 2024-08-05 Natera Inc Methods for determining ploidy
JP2018518157A (ja) 2015-05-11 2018-07-12 イラミーナ インコーポレーテッド 治療薬剤の発見および分析のためのプラットフォーム
US10395759B2 (en) * 2015-05-18 2019-08-27 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods and systems for copy number variant detection
US20170016041A1 (en) * 2015-05-18 2017-01-19 10X Genomics, Inc. Stabilized reducing agents and methods using same
GB201508858D0 (en) 2015-05-22 2015-07-01 Illumina Cambridge Ltd Polymethine compounds with long stokes shifts and their use as fluorescent labels
KR102134953B1 (ko) 2015-05-29 2020-07-16 일루미나, 인코포레이티드 지정된 반응을 수행하기 위한 샘플 캐리어 및 검정 시스템
US11274333B2 (en) 2015-05-29 2022-03-15 Molecular Cloning Laboratories (MCLAB) LLC Compositions and methods for preparing sequencing libraries
JP6609641B2 (ja) 2015-05-29 2019-11-20 イルミナ ケンブリッジ リミテッド クラスターにおける表面プライマーの高度な利用
CN107924121B (zh) 2015-07-07 2021-06-08 亿明达股份有限公司 经由纳米压印的选择性表面图案化
EP3322483A4 (en) 2015-07-14 2019-01-02 Abbott Molecular Inc. Compositions and methods for identifying drug resistant tuberculosis
CA2992449A1 (en) 2015-07-14 2017-01-19 Abbott Molecular Inc. Purification of nucleic acids using copper-titanium oxides
WO2017015018A1 (en) 2015-07-17 2017-01-26 Illumina, Inc. Polymer sheets for sequencing applications
WO2017015543A1 (en) 2015-07-23 2017-01-26 Asuragen, Inc. Methods, compositions, kits, and uses for analysis of nucleic acids comprising repeating a/t-rich segments
AU2016298541B2 (en) 2015-07-30 2019-10-31 Illumina, Inc. Orthogonal deblocking of nucleotides
AU2016301354B2 (en) 2015-08-06 2022-06-30 Arc Bio, Llc Systems and methods for genomic analysis
WO2017027653A1 (en) 2015-08-11 2017-02-16 The Johns Hopkins University Assaying ovarian cyst fluid
CN108474805A (zh) 2015-08-24 2018-08-31 亿明达股份有限公司 用于生物和化学测定的线路内蓄压器和流量控制系统
CN107921432A (zh) 2015-09-02 2018-04-17 伊卢米纳剑桥有限公司 改善流控系统中的液滴操作的系统和方法
WO2017042040A1 (en) 2015-09-09 2017-03-16 Qiagen Gmbh Polymerase enzyme
CN108350453A (zh) 2015-09-11 2018-07-31 通用医疗公司 核酸酶dsb的完全查询和测序(find-seq)
KR20180050411A (ko) 2015-09-18 2018-05-14 트위스트 바이오사이언스 코포레이션 올리고핵산 변이체 라이브러리 및 그의 합성
CN108698012A (zh) 2015-09-22 2018-10-23 特韦斯特生物科学公司 用于核酸合成的柔性基底
GB201516987D0 (en) 2015-09-25 2015-11-11 Illumina Cambridge Ltd Polymethine compounds and their use as fluorescent labels
JP2018529353A (ja) 2015-09-30 2018-10-11 ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション 配列決定法による切断事象の包括的生体外報告(CIRCLE−seq)
US10253352B2 (en) 2015-11-17 2019-04-09 Omniome, Inc. Methods for determining sequence profiles
US11371094B2 (en) 2015-11-19 2022-06-28 10X Genomics, Inc. Systems and methods for nucleic acid processing using degenerate nucleotides
WO2017095958A1 (en) 2015-12-01 2017-06-08 Twist Bioscience Corporation Functionalized surfaces and preparation thereof
SG10202108763UA (en) 2015-12-04 2021-09-29 10X Genomics Inc Methods and compositions for nucleic acid analysis
US11208649B2 (en) 2015-12-07 2021-12-28 Zymergen Inc. HTP genomic engineering platform
US9988624B2 (en) 2015-12-07 2018-06-05 Zymergen Inc. Microbial strain improvement by a HTP genomic engineering platform
CA3007635A1 (en) 2015-12-07 2017-06-15 Zymergen Inc. Promoters from corynebacterium glutamicum
CA3007840C (en) 2015-12-07 2020-09-15 Zymergen Inc. Microbial strain improvement by a htp genomic engineering platform
EP3400298B1 (en) 2016-01-08 2024-03-06 Bio-Rad Laboratories, Inc. Multiple beads per droplet resolution
WO2017123533A1 (en) 2016-01-11 2017-07-20 Illumina, Inc. Detection apparatus having a microfluorometer, a fluidic system, and a flow cell latch clamp module
EP3848457B1 (en) 2016-02-08 2025-08-13 Rgene, Inc. Multiple ligase compositions, systems, and methods
SG11201806757XA (en) 2016-02-11 2018-09-27 10X Genomics Inc Systems, methods, and media for de novo assembly of whole genome sequence data
CN109477127A (zh) 2016-03-14 2019-03-15 R基因股份有限公司 超热稳定的赖氨酸-突变型ssDNA/RNA连接酶
EP3433373B1 (en) 2016-03-22 2022-01-12 Myriad Women's Health, Inc. Combinatorial dna screening
PL3377226T3 (pl) 2016-03-28 2021-07-26 Illumina, Inc. Wielopłaszczyznowe mikromacierze
EP3442706B1 (en) 2016-04-13 2025-07-23 NextGen Jane, Inc. Sample collection and preservation methods
DK3443119T3 (da) 2016-04-15 2022-05-23 Natera Inc Fremgangsmåde til bestemmelse af lunge cancer
EP3455372B1 (en) 2016-05-11 2019-10-30 Illumina, Inc. Polynucleotide enrichment and amplification using argonaute systems
WO2017197343A2 (en) 2016-05-12 2017-11-16 10X Genomics, Inc. Microfluidic on-chip filters
WO2017197338A1 (en) 2016-05-13 2017-11-16 10X Genomics, Inc. Microfluidic systems and methods of use
US11118233B2 (en) 2016-05-18 2021-09-14 The University Of Chicago BTK mutation and ibrutinib resistance
SG11201809376WA (en) 2016-05-18 2018-12-28 Illumina Inc Self assembled patterning using patterned hydrophobic surfaces
US11299783B2 (en) 2016-05-27 2022-04-12 Personalis, Inc. Methods and systems for genetic analysis
AU2017278350B2 (en) 2016-06-06 2023-10-19 Redvault Biosciences, Lp Target reporter constructs and uses thereof
US11708574B2 (en) 2016-06-10 2023-07-25 Myriad Women's Health, Inc. Nucleic acid sequencing adapters and uses thereof
US10066263B2 (en) 2016-06-17 2018-09-04 California Institute Of Technology Nucleic acid reactions and related methods and compositions
JP2019519242A (ja) 2016-06-30 2019-07-11 ザイマージェン インコーポレイテッド 細菌ヘモグロビンライブラリーを生成するための方法およびその使用
WO2018005793A1 (en) 2016-06-30 2018-01-04 Zymergen Inc. Methods for generating a glucose permease library and uses thereof
WO2018013509A1 (en) 2016-07-11 2018-01-18 Arizona Board Of Regents On Behalf Of The University Of Arizona Compositions and methods for diagnosing and treating arrhythmias
EP3875603A1 (en) 2016-07-12 2021-09-08 Life Technologies Corporation Compositions and methods for detecting nucleic acid regions
CN106086203A (zh) * 2016-07-12 2016-11-09 深圳绿倍生态科技有限公司 一种小球藻核酸模板的制备方法及其应用
US11460405B2 (en) 2016-07-21 2022-10-04 Takara Bio Usa, Inc. Multi-Z imaging and dispensing with multi-well devices
KR102475710B1 (ko) 2016-07-22 2022-12-08 오레곤 헬스 앤드 사이언스 유니버시티 단일 세포 전체 게놈 라이브러리 및 이의 제조를 위한 조합 인덱싱 방법
KR102212257B1 (ko) 2016-08-22 2021-02-04 트위스트 바이오사이언스 코포레이션 드 노보 합성된 핵산 라이브러리
AU2017315252B2 (en) 2016-08-22 2023-03-16 Biolumic Limited System, device and methods of seed treatment
WO2018042251A1 (en) 2016-08-29 2018-03-08 Oslo Universitetssykehus Hf Chip-seq assays
WO2018057526A2 (en) 2016-09-21 2018-03-29 Twist Bioscience Corporation Nucleic acid based data storage
US10428325B1 (en) 2016-09-21 2019-10-01 Adaptive Biotechnologies Corporation Identification of antigen-specific B cell receptors
WO2018064116A1 (en) 2016-09-28 2018-04-05 Illumina, Inc. Methods and systems for data compression
US10385214B2 (en) 2016-09-30 2019-08-20 Illumina Cambridge Limited Fluorescent dyes and their uses as biomarkers
CN109688817B (zh) * 2016-10-03 2022-02-22 Illumina公司 胺和肼的荧光检测及其分析方法
WO2018067517A1 (en) 2016-10-04 2018-04-12 Natera, Inc. Methods for characterizing copy number variation using proximity-litigation sequencing
EP4439045A3 (en) 2016-10-14 2024-11-27 Illumina, Inc. Cartridge assembly
GB201618485D0 (en) 2016-11-02 2016-12-14 Ucl Business Plc Method of detecting tumour recurrence
WO2018093780A1 (en) 2016-11-16 2018-05-24 Illumina, Inc. Validation methods and systems for sequence variant calls
US10011870B2 (en) 2016-12-07 2018-07-03 Natera, Inc. Compositions and methods for identifying nucleic acid molecules
EP3554514A4 (en) 2016-12-16 2020-08-05 Twist Bioscience Corporation BANKS OF VARIANTS OF IMMUNOLOGICAL SYNAPSE AND THEIR SYNTHESIS
WO2018118971A1 (en) 2016-12-19 2018-06-28 Bio-Rad Laboratories, Inc. Droplet tagging contiguity preserved tagmented dna
US10815525B2 (en) 2016-12-22 2020-10-27 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10550429B2 (en) 2016-12-22 2020-02-04 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10011872B1 (en) 2016-12-22 2018-07-03 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
CN109476674B (zh) 2016-12-22 2021-12-10 伊鲁米纳剑桥有限公司 香豆素化合物及其作为荧光标记物的用途
CA3048486A1 (en) 2017-01-04 2018-07-12 Complete Genomics, Inc. Stepwise sequencing by non-labeled reversible terminators or natural nucleotides
GB201704754D0 (en) 2017-01-05 2017-05-10 Illumina Inc Kinetic exclusion amplification of nucleic acid libraries
US10844429B2 (en) 2017-01-18 2020-11-24 Illumina, Inc. Methods and systems for generation and error-correction of unique molecular index sets with heterogeneous molecular lengths
EP4310183B1 (en) 2017-01-30 2025-07-09 10X Genomics, Inc. Methods and systems for droplet-based single cell barcoding
DK3354746T3 (da) 2017-01-30 2019-09-02 Gmi Gregor Mendel Inst Fuer Molekulare Pflanzenbiologie Gmbh Nye spike-in-nukleotider til normalisering af sekvensdata
US12264411B2 (en) 2017-01-30 2025-04-01 10X Genomics, Inc. Methods and systems for analysis
US10968447B2 (en) 2017-01-31 2021-04-06 Myriad Women's Health, Inc. Methods and compositions for enrichment of target polynucleotides
WO2018144217A1 (en) 2017-01-31 2018-08-09 Counsyl, Inc. Methods and compositions for enrichment of target polynucleotides
US10995333B2 (en) 2017-02-06 2021-05-04 10X Genomics, Inc. Systems and methods for nucleic acid preparation
WO2018148727A1 (en) 2017-02-13 2018-08-16 Qiagen Waltham Inc. Polymerase enzyme from 9°n
WO2018148723A1 (en) 2017-02-13 2018-08-16 Qiagen Waltham Inc. Polymerase enzyme from pyrococcus abyssi
WO2018148726A1 (en) 2017-02-13 2018-08-16 Qiagen Waltham Inc. Polymerase enzyme from phage t4
WO2018148724A1 (en) 2017-02-13 2018-08-16 Qiagen Waltham Inc. Polymerase enzyme from pyrococcus furiosus
EP3580351A1 (en) 2017-02-13 2019-12-18 Qiagen Sciences, LLC Polymerase enzyme from 9°n
US11492666B2 (en) 2017-02-15 2022-11-08 Pacific Biosciences Of California, Inc. Distinguishing sequences by detecting polymerase dissociation
CN110892485B (zh) 2017-02-22 2024-03-22 特韦斯特生物科学公司 基于核酸的数据存储
AU2018234629A1 (en) 2017-03-15 2019-10-17 Twist Bioscience Corporation Variant libraries of the immunological synapse and synthesis thereof
EP3601593B1 (en) 2017-03-24 2021-12-22 Bio-Rad Laboratories, Inc. Universal hairpin primers
US11584958B2 (en) 2017-03-31 2023-02-21 Grail, Llc Library preparation and use thereof for sequencing based error correction and/or variant identification
US10737267B2 (en) 2017-04-04 2020-08-11 Omniome, Inc. Fluidic apparatus and methods useful for chemical and biological reactions
US12492430B2 (en) 2017-04-11 2025-12-09 Tecan Genomics, Inc. Library quantitation and qualification
ES2893528T3 (es) 2017-04-23 2022-02-09 Illumina Cambridge Ltd Composiciones y métodos para mejorar la identificación de muestras en colecciones de ácidos nucleicos indexadas
US10975430B2 (en) 2017-04-23 2021-04-13 Illumina Cambridge Limited Compositions and methods for improving sample identification in indexed nucleic acid libraries
ES2937929T3 (es) 2017-04-23 2023-04-03 Illumina Inc Composiciones y métodos para mejorar la identificación de muestras en bibliotecas de ácido nucleico indexadas
AU2018259202B2 (en) 2017-04-23 2022-03-24 Illumina Cambridge Limited Compositions and methods for improving sample identification in indexed nucleic acid libraries
US10161003B2 (en) 2017-04-25 2018-12-25 Omniome, Inc. Methods and apparatus that increase sequencing-by-binding efficiency
US11028435B2 (en) 2017-05-01 2021-06-08 Illumina, Inc. Optimal index sequences for multiplex massively parallel sequencing
CN110832087B (zh) 2017-05-08 2025-03-18 伊鲁米那股份有限公司 用于多核苷酸样品的索引的通用短衔接子
CN110870018B (zh) 2017-05-19 2024-11-22 10X基因组学有限公司 用于分析数据集的系统和方法
WO2018213803A1 (en) 2017-05-19 2018-11-22 Neon Therapeutics, Inc. Immunogenic neoantigen identification
KR20200010285A (ko) 2017-05-19 2020-01-30 지머젠 인코포레이티드 증가된 nadph를 유도하는 생합성 경로의 게놈 공학
CN109526228B (zh) 2017-05-26 2022-11-25 10X基因组学有限公司 转座酶可接近性染色质的单细胞分析
US10844372B2 (en) 2017-05-26 2020-11-24 10X Genomics, Inc. Single cell analysis of transposase accessible chromatin
EP3635111A1 (en) 2017-06-06 2020-04-15 Zymergen, Inc. High throughput transposon mutagenesis
KR20200026874A (ko) 2017-06-06 2020-03-11 지머젠 인코포레이티드 대장균 개량을 위한 htp 게놈 공학 플랫폼
KR20200026878A (ko) 2017-06-06 2020-03-11 지머젠 인코포레이티드 균류 균주를 개량하기 위한 htp 게놈 공학 플랫폼
JP7350659B2 (ja) 2017-06-06 2023-09-26 ザイマージェン インコーポレイテッド Saccharopolyspora spinosaの改良のためのハイスループット(HTP)ゲノム操作プラットフォーム
KR102628035B1 (ko) 2017-06-07 2024-01-22 오레곤 헬스 앤드 사이언스 유니버시티 메틸화 서열결정을 위한 단일 세포 전체 게놈 라이브러리
EP3634992B1 (en) 2017-06-08 2024-03-27 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Methods and compositions for identifying epitopes
WO2018231864A1 (en) 2017-06-12 2018-12-20 Twist Bioscience Corporation Methods for seamless nucleic acid assembly
JP7169999B2 (ja) 2017-06-12 2022-11-11 ツイスト バイオサイエンス コーポレーション シームレス核酸アセンブリのための方法
US11186862B2 (en) 2017-06-20 2021-11-30 Bio-Rad Laboratories, Inc. MDA using bead oligonucleotide
WO2019002265A1 (en) 2017-06-26 2019-01-03 Universität Für Bodenkultur Wien NOVEL BIOMARKERS FOR THE DETECTION OF SENESCENT CELLS
JP2020525002A (ja) 2017-06-29 2020-08-27 バイオルミック リミテッド 作物の収量および/あるいは品質を改善する方法
GB201711219D0 (en) 2017-07-12 2017-08-23 Illumina Cambridge Ltd Short pendant arm linkers for nucleotides in sequencing applications
US11578180B2 (en) 2017-07-18 2023-02-14 Pacific Biosciences Of California, Inc. Method of chemically modifying plastic surfaces
EP3662482A1 (en) 2017-07-31 2020-06-10 Illumina Inc. Sequencing system with multiplexed biological sample aggregation
FI3662083T3 (fi) 2017-08-01 2024-11-20 Illumina Inc Geneettisen materiaalin ja kirjastovalmisteen spatiaalinen indeksointi hydrogeelihelmiä ja virtauskennoja käyttämällä
KR102480894B1 (ko) 2017-08-01 2022-12-23 일루미나, 인코포레이티드 뉴클레오티드 서열분석용 하이드로겔 비드
CN118086478A (zh) * 2017-08-01 2024-05-28 深圳华大智造科技有限公司 核酸测序方法
CN120400338A (zh) 2017-08-07 2025-08-01 约翰斯霍普金斯大学 用于评估和治疗癌症的方法和材料
JP7537746B2 (ja) 2017-08-11 2024-08-21 アティラ バイオシステムズ インコーポレイテッド ヌクレオチド組成が限定されたプライマーを用いたデジタル増幅
SG11202000964UA (en) 2017-08-15 2020-02-27 Omniome Inc Scanning apparatus and methods useful for detection of chemical and biological analytes
WO2019038594A2 (en) 2017-08-21 2019-02-28 Biolumic Limited TRANSGENIC PLANTS WITH HIGH GROWTH AND HIGH RUSTICITY
US20190076814A1 (en) 2017-09-11 2019-03-14 Synthego Corporation Biopolymer synthesis system and method
AU2018328847A1 (en) 2017-09-11 2020-04-23 Twist Bioscience Corporation GPCR binding proteins and synthesis thereof
US11447818B2 (en) 2017-09-15 2022-09-20 Illumina, Inc. Universal short adapters with variable length non-random unique molecular identifiers
WO2019060640A1 (en) 2017-09-20 2019-03-28 Guardant Health, Inc. METHODS AND SYSTEMS FOR DIFFERENTIATING SOMATIC VARIANTS AND GERMINAL LINE VARIANTS
US10837047B2 (en) 2017-10-04 2020-11-17 10X Genomics, Inc. Compositions, methods, and systems for bead formation using improved polymers
US11598780B2 (en) 2017-10-06 2023-03-07 The University Of Chicago Engineering lymphocytes with specific alpha and beta chains on their t-cell receptor
KR20220031940A (ko) 2017-10-16 2022-03-14 일루미나, 인코포레이티드 컨볼루션 신경망(cnn)을 사용하는 비정상 스플라이싱 검출
NZ759818A (en) 2017-10-16 2022-04-29 Illumina Inc Semi-supervised learning for training an ensemble of deep convolutional neural networks
GB201716931D0 (en) 2017-10-16 2017-11-29 Illumina Cambridge Ltd New fluorescent compounds and their use as biomarkers
CA3079411C (en) 2017-10-19 2023-12-05 Omniome, Inc. Simultaneous background reduction and complex stabilization in binding assay workflows
WO2019079769A1 (en) 2017-10-20 2019-04-25 Twist Bioscience Corporation HEATED NANOWELLS FOR THE SYNTHESIS OF POLYNUCLEOTIDES
US11099202B2 (en) 2017-10-20 2021-08-24 Tecan Genomics, Inc. Reagent delivery system
WO2019084043A1 (en) 2017-10-26 2019-05-02 10X Genomics, Inc. METHODS AND SYSTEMS FOR NUCLEIC ACID PREPARATION AND CHROMATIN ANALYSIS
CN111479631B (zh) 2017-10-27 2022-02-22 10X基因组学有限公司 用于样品制备和分析的方法和系统
US10907205B2 (en) 2017-11-02 2021-02-02 Bio-Rad Laboratories, Inc. Transposase-based genomic analysis
MX389484B (es) 2017-11-13 2025-03-20 The Multiple Myeloma Res Foundation Inc Base de datos, de datos moleculares, omicos, de inmunoterapia, metabolicos, epigeneticos y clinicos, integrados
CN111051523B (zh) 2017-11-15 2024-03-19 10X基因组学有限公司 功能化凝胶珠
US10829815B2 (en) 2017-11-17 2020-11-10 10X Genomics, Inc. Methods and systems for associating physical and genetic properties of biological particles
US10815484B2 (en) 2017-11-22 2020-10-27 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for treating cancer
US11254980B1 (en) 2017-11-29 2022-02-22 Adaptive Biotechnologies Corporation Methods of profiling targeted polynucleotides while mitigating sequencing depth requirements
WO2019108851A1 (en) 2017-11-30 2019-06-06 10X Genomics, Inc. Systems and methods for nucleic acid preparation and analysis
CN111699388B (zh) 2017-12-12 2024-08-02 10X基因组学有限公司 用于单细胞处理的系统和方法
WO2019118926A1 (en) 2017-12-14 2019-06-20 Tai Diagnostics, Inc. Assessing graft suitability for transplantation
CN111712579B (zh) 2017-12-22 2024-10-15 10X基因组学有限公司 用于处理来自一个或多个细胞的核酸分子的系统和方法
US11701656B2 (en) 2018-01-02 2023-07-18 The Regents Of The University Of Michigan Multi-droplet capture
EP4715681A2 (en) 2018-01-04 2026-03-25 Atlas Data Storage, Inc. Dna-based digital information storage
CA3279137A1 (en) 2018-01-08 2025-10-30 Illumina, Inc. Systems and devices for high-throughput sequencing with semiconductor-based detection
WO2019136376A1 (en) 2018-01-08 2019-07-11 Illumina, Inc. High-throughput sequencing with semiconductor-based detection
EP3619653B1 (en) 2018-01-15 2021-05-19 Illumina Inc. Deep learning-based variant classifier
CN111801937B8 (zh) 2018-01-30 2022-10-14 瑞巴斯生物系统 用于使用结构化照射检测颗粒的方法和系统
CN119614672A (zh) 2018-01-31 2025-03-14 生物辐射实验室股份有限公司 用于解卷积分区条码的方法和组合物
CA3090102A1 (en) 2018-01-31 2019-08-08 Dovetail Genomics, Llc Sample prep for dna linkage recovery
SG11202007686VA (en) 2018-02-12 2020-09-29 10X Genomics Inc Methods characterizing multiple analytes from individual cells or cell populations
EP4253562A3 (en) 2018-02-13 2023-10-25 Illumina, Inc. Dna sequencing using hydrogel beads
US11639928B2 (en) 2018-02-22 2023-05-02 10X Genomics, Inc. Methods and systems for characterizing analytes from individual cells or cell populations
JP2021519607A (ja) 2018-02-27 2021-08-12 コーネル・ユニバーシティーCornell University ゲノムワイド統合による循環腫瘍dnaの超音波感受性検出
WO2019169028A1 (en) 2018-02-28 2019-09-06 10X Genomics, Inc. Transcriptome sequencing through random ligation
CA3091228A1 (en) 2018-03-20 2019-09-26 Zymergen Inc. A htp platform for the genetic engineering of chinese hamster ovary cells
KR20230128411A (ko) 2018-03-22 2023-09-04 일루미나, 인코포레이티드 Rna 및 dna로부터의 핵산 라이브러리의 제조
JP7348603B2 (ja) 2018-04-02 2023-09-21 エニュメラ・モレキュラー・インコーポレイテッド 核酸分子を計数するための方法、システム、および組成物
CN110832086A (zh) 2018-04-02 2020-02-21 伊鲁米那股份有限公司 用于制造用于基于序列的遗传检验的对照的组合物和方法
WO2019195166A1 (en) 2018-04-06 2019-10-10 10X Genomics, Inc. Systems and methods for quality control in single cell processing
EP3553182A1 (en) 2018-04-11 2019-10-16 Université de Bourgogne Detection method of somatic genetic anomalies, combination of capture probes and kit of detection
US20190318806A1 (en) 2018-04-12 2019-10-17 Illumina, Inc. Variant Classifier Based on Deep Neural Networks
NL2020861B1 (en) 2018-04-12 2019-10-22 Illumina Inc Variant classifier based on deep neural networks
US11746151B2 (en) 2018-04-13 2023-09-05 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for treating cancer
DK3781714T3 (da) 2018-04-14 2026-03-30 Natera Inc Fremgangsmåder til cancerpåvisning og -overvågning ved personlig påvisning af cirkulerende tumor-dna
US11512002B2 (en) 2018-04-18 2022-11-29 University Of Virginia Patent Foundation Silica materials and methods of making thereof
CA3097583A1 (en) 2018-04-19 2019-10-24 Omniome, Inc. Improving accuracy of base calls in nucleic acid sequencing methods
AU2019257320B2 (en) 2018-04-20 2022-04-07 Illumina, Inc. Methods of encapsulating single cells, the encapsulated cells and uses thereof
WO2019209426A1 (en) 2018-04-26 2019-10-31 Omniome, Inc. Methods and compositions for stabilizing nucleic acid-nucleotide-polymerase complexes
US12235273B2 (en) 2018-05-04 2025-02-25 Abbott Laboratories HBV diagnostic, prognostic, and therapeutic methods and products
WO2019217758A1 (en) 2018-05-10 2019-11-14 10X Genomics, Inc. Methods and systems for molecular library generation
US12084474B2 (en) 2018-05-15 2024-09-10 Illumina, Inc. Compositions and methods for chemical cleavage and deprotection of surface-bound oligonucleotides
KR102640255B1 (ko) 2018-05-17 2024-02-27 일루미나, 인코포레이티드 감소된 증폭 편향을 갖는 고속-대량 단일 세포 서열분석
IL278771B2 (en) 2018-05-18 2025-09-01 Twist Bioscience Corp Polynucleotides, reagents and methods for nucleic acid hybridization
US10801064B2 (en) 2018-05-31 2020-10-13 Personalis, Inc. Compositions, methods and systems for processing or analyzing multi-species nucleic acid samples
US11814750B2 (en) 2018-05-31 2023-11-14 Personalis, Inc. Compositions, methods and systems for processing or analyzing multi-species nucleic acid samples
AU2019276719B2 (en) 2018-05-31 2025-11-13 Pacific Biosciences Of California, Inc. Increased signal to noise in nucleic acid sequencing
JP2021526791A (ja) 2018-06-04 2021-10-11 ガーダント ヘルス, インコーポレイテッド セルフリー核酸の細胞起源を決定するための方法およびシステム
KR102507415B1 (ko) 2018-06-04 2023-03-07 일루미나, 인코포레이티드 고속 대량 단일 세포 전사체 라이브러리 그리고 이의 제조 및 사용 방법
US11932899B2 (en) 2018-06-07 2024-03-19 10X Genomics, Inc. Methods and systems for characterizing nucleic acid molecules
US11703427B2 (en) 2018-06-25 2023-07-18 10X Genomics, Inc. Methods and systems for cell and bead processing
NL2021377B1 (en) 2018-07-03 2020-01-08 Illumina Inc Interposer with first and second adhesive layers
US12234509B2 (en) 2018-07-03 2025-02-25 Natera, Inc. Methods for detection of donor-derived cell-free DNA
CN110684829A (zh) * 2018-07-05 2020-01-14 深圳华大智造科技有限公司 一种高通量的单细胞转录组测序方法和试剂盒
US12073922B2 (en) 2018-07-11 2024-08-27 Illumina, Inc. Deep learning-based framework for identifying sequence patterns that cause sequence-specific errors (SSEs)
AU2019310041B2 (en) 2018-07-23 2025-11-20 Guardant Health, Inc. Methods and systems for adjusting tumor mutational burden by tumor fraction and coverage
WO2020023362A1 (en) 2018-07-24 2020-01-30 Omniome, Inc. Serial formation of ternary complex species
US12188014B1 (en) 2018-07-25 2025-01-07 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for nucleic acid processing using blocking agents
US20200032335A1 (en) 2018-07-27 2020-01-30 10X Genomics, Inc. Systems and methods for metabolome analysis
SG11202101164TA (en) 2018-08-03 2021-03-30 10X Genomics Inc Methods and systems to minimize barcode exchange
CA3109238A1 (en) 2018-08-15 2020-02-20 Illumina, Inc. Compositions and methods for improving library enrichment
CN113166807B (zh) 2018-08-20 2024-06-04 生物辐射实验室股份有限公司 通过分区中条码珠共定位生成核苷酸序列
WO2020041148A1 (en) 2018-08-20 2020-02-27 10X Genomics, Inc. Methods and systems for detection of protein-dna interactions using proximity ligation
US12065688B2 (en) 2018-08-20 2024-08-20 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for cellular processing
US11519033B2 (en) 2018-08-28 2022-12-06 10X Genomics, Inc. Method for transposase-mediated spatial tagging and analyzing genomic DNA in a biological sample
EP4603594A3 (en) 2018-08-28 2025-11-12 10X Genomics, Inc. Increasing spatial array resolution
CA3109646A1 (en) 2018-08-30 2020-03-05 Guardant Health, Inc. Methods and systems for detecting contamination between samples
SG11202101400UA (en) 2018-08-31 2021-03-30 Guardant Health Inc Microsatellite instability detection in cell-free dna
JP7637615B2 (ja) 2018-09-04 2025-02-28 ガーダント ヘルス, インコーポレイテッド 無細胞核酸試料におけるアレル不均衡を検出するための方法およびシステム
CA3110668C (en) 2018-09-20 2022-01-11 Tamirna Gmbh Micro-rna signatures for the prediction of liver dysfunction
JP6888123B2 (ja) 2018-10-15 2021-06-16 イルミナ インコーポレイテッド 深層畳み込みニューラルネットワークを事前訓練するための深層学習ベースの技術
AU2019364418B2 (en) 2018-10-25 2025-11-13 Illumina, Inc. Methods and compositions for identifying ligands on arrays using indexes and barcodes
CA3113271A1 (en) 2018-10-26 2020-04-30 Illumina, Inc. Modulating polymer beads for dna processing
EP3874060B1 (en) 2018-10-31 2024-10-16 Guardant Health, Inc. Method and system for calibrating epigenetic partitioning assays
US12139764B2 (en) 2018-11-14 2024-11-12 Arizona Board Of Regents On Behalf Of The University Of Arizona Systems and methods for characterizing and treating breast cancer
US10876148B2 (en) 2018-11-14 2020-12-29 Element Biosciences, Inc. De novo surface preparation and uses thereof
US10704094B1 (en) 2018-11-14 2020-07-07 Element Biosciences, Inc. Multipart reagents having increased avidity for polymerase binding
US10768173B1 (en) 2019-09-06 2020-09-08 Element Biosciences, Inc. Multivalent binding composition for nucleic acid analysis
WO2020101795A1 (en) 2018-11-15 2020-05-22 Omniome, Inc. Electronic detection of nucleic acid structure
MX2021003771A (es) 2018-11-30 2021-05-27 Illumina Inc Analisis de analitos multiples usando un ensayo unico.
CN211311438U (zh) 2018-12-04 2020-08-21 欧姆尼欧美公司 流动池
AU2019391274B2 (en) 2018-12-05 2025-10-30 Illumina Cambridge Limited Methods and compositions for cluster generation by bridge amplification
CN113366120B (zh) * 2018-12-07 2024-05-14 深圳华大生命科学研究院 纳米孔测序方法
US11459607B1 (en) 2018-12-10 2022-10-04 10X Genomics, Inc. Systems and methods for processing-nucleic acid molecules from a single cell using sequential co-partitioning and composite barcodes
US20220290217A1 (en) 2018-12-10 2022-09-15 10X Genomics, Inc. Resolving spatial arrays using deconvolution
WO2020120179A1 (en) 2018-12-14 2020-06-18 Illumina Cambridge Limited Decreasing phasing with unlabeled nucleotides during sequencing
JP7562424B2 (ja) 2018-12-17 2024-10-07 イルミナ ケンブリッジ リミテッド シーケンシング用プライマーオリゴヌクレオチド
WO2020126593A1 (en) 2018-12-17 2020-06-25 Illumina Cambridge Limited Compositions for use in polyunucleotide sequencing
JP7587425B2 (ja) 2018-12-18 2024-11-20 イルミナ ケンブリッジ リミテッド 単一表面プライマーを使用したペアエンドシーケンシングのための方法および組成物
BR112020026667A2 (pt) 2018-12-19 2021-07-27 Illumina, Inc. métodos para melhorar a prioridade de clonalidade do agrupamento de polinucleotídeo
JP2022514010A (ja) 2018-12-20 2022-02-09 ガーダント ヘルス, インコーポレイテッド 核酸分子の回収率を改善するための方法、組成物、およびシステム
WO2020132350A2 (en) 2018-12-20 2020-06-25 Omniome, Inc. Temperature control for analysis of nucleic acids and other analytes
US11293061B2 (en) 2018-12-26 2022-04-05 Illumina Cambridge Limited Sequencing methods using nucleotides with 3′ AOM blocking group
WO2020139871A1 (en) 2018-12-26 2020-07-02 Twist Bioscience Corporation Highly accurate de novo polynucleotide synthesis
US20220081714A1 (en) 2019-01-04 2022-03-17 Northwestern University Storing temporal data into dna
US11926867B2 (en) 2019-01-06 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Generating capture probes for spatial analysis
US11649485B2 (en) 2019-01-06 2023-05-16 10X Genomics, Inc. Generating capture probes for spatial analysis
US12169198B2 (en) 2019-01-08 2024-12-17 10X Genomics, Inc. Systems and methods for sample analysis
US11845983B1 (en) 2019-01-09 2023-12-19 10X Genomics, Inc. Methods and systems for multiplexing of droplet based assays
EP3908678A1 (en) 2019-01-10 2021-11-17 Iovance Biotherapeutics, Inc. System and methods for monitoring adoptive cell therapy clonality and persistence
CA3126428A1 (en) 2019-01-31 2020-08-06 Guardant Health, Inc. Compositions and methods for isolating cell-free dna
US12275993B2 (en) 2019-02-12 2025-04-15 10X Genomics, Inc. Analysis of nucleic acid sequences
US11851683B1 (en) 2019-02-12 2023-12-26 10X Genomics, Inc. Methods and systems for selective analysis of cellular samples
US12305239B2 (en) 2019-02-12 2025-05-20 10X Genomics, Inc. Analysis of nucleic acid sequences
WO2020167862A1 (en) 2019-02-12 2020-08-20 10X Genomics, Inc. Systems and methods for transfer of reagents between droplets
WO2020167866A1 (en) 2019-02-12 2020-08-20 10X Genomics, Inc. Systems and methods for transposon loading
EP3924505B1 (en) 2019-02-12 2025-12-17 10X Genomics, Inc. Methods for processing nucleic acid molecules
US11467153B2 (en) 2019-02-12 2022-10-11 10X Genomics, Inc. Methods for processing nucleic acid molecules
WO2020167574A1 (en) 2019-02-14 2020-08-20 Omniome, Inc. Mitigating adverse impacts of detection systems on nucleic acids and other biological analytes
CN113613787B (zh) 2019-02-20 2023-06-13 加利福尼亚太平洋生物科学股份有限公司 用于检测化学和生物分析物的扫描装置和方法
US11655499B1 (en) 2019-02-25 2023-05-23 10X Genomics, Inc. Detection of sequence elements in nucleic acid molecules
WO2020176678A1 (en) 2019-02-26 2020-09-03 Twist Bioscience Corporation Variant nucleic acid libraries for glp1 receptor
AU2020227802A1 (en) 2019-02-26 2021-10-14 Twist Bioscience Corporation Variant nucleic acid libraries for antibody optimization
WO2020176659A1 (en) 2019-02-27 2020-09-03 Guardant Health, Inc. Methods and systems for determining the cellular origin of cell-free dna
KR102865446B1 (ko) 2019-03-01 2025-09-29 일루미나 케임브리지 리미티드 삼차 아민 치환된 쿠마린 화합물 및 형광 표지로서의 이의 용도
US12624350B2 (en) 2019-03-01 2026-05-12 Illumina, Inc. High-throughput single-nuclei and single-cell libraries and methods of making and of using
WO2020178231A1 (en) 2019-03-01 2020-09-10 Illumina, Inc. Multiplexed fluorescent detection of analytes
MY209343A (en) 2019-03-01 2025-07-03 Illumina Cambridge Ltd Exocyclic amine substituted coumarin compounds and uses as fluorescent labels
NL2023327B1 (en) 2019-03-01 2020-09-17 Illumina Inc Multiplexed fluorescent detection of analytes
US11920183B2 (en) 2019-03-11 2024-03-05 10X Genomics, Inc. Systems and methods for processing optically tagged beads
NL2023316B1 (en) 2019-03-21 2020-09-28 Illumina Inc Artificial intelligence-based sequencing
NL2023311B9 (en) 2019-03-21 2021-03-12 Illumina Inc Artificial intelligence-based generation of sequencing metadata
WO2020191389A1 (en) 2019-03-21 2020-09-24 Illumina, Inc. Training data generation for artificial intelligence-based sequencing
NL2023310B1 (en) 2019-03-21 2020-09-28 Illumina Inc Training data generation for artificial intelligence-based sequencing
US11783917B2 (en) 2019-03-21 2023-10-10 Illumina, Inc. Artificial intelligence-based base calling
US11210554B2 (en) 2019-03-21 2021-12-28 Illumina, Inc. Artificial intelligence-based generation of sequencing metadata
EP3947722A1 (en) 2019-03-27 2022-02-09 10X Genomics, Inc. Systems and methods for processing rna from cells
US11421271B2 (en) 2019-03-28 2022-08-23 Illumina Cambridge Limited Methods and compositions for nucleic acid sequencing using photoswitchable labels
EP3947718A4 (en) 2019-04-02 2022-12-21 Enumera Molecular, Inc. METHODS, SYSTEMS AND COMPOSITIONS FOR COUNTING NUCLEIC ACID MOLECULES
CN113905822B (zh) 2019-04-12 2023-09-22 西部数据技术公司 使用磁传感器阵列边合成边核酸测序
US11579217B2 (en) 2019-04-12 2023-02-14 Western Digital Technologies, Inc. Devices and methods for frequency- and phase-based detection of magnetically-labeled molecules using spin torque oscillator (STO) sensors
US11327073B2 (en) 2019-04-12 2022-05-10 Western Digital Technologies, Inc. Thermal sensor array for molecule detection and related detection schemes
US11112468B2 (en) 2019-04-12 2021-09-07 Western Digital Technologies, Inc. Magnetoresistive sensor array for molecule detection and related detection schemes
US11738336B2 (en) 2019-04-12 2023-08-29 Western Digital Technologies, Inc. Spin torque oscillator (STO) sensors used in nucleic acid sequencing arrays and detection schemes for nucleic acid sequencing
US11609208B2 (en) 2019-04-12 2023-03-21 Western Digital Technologies, Inc. Devices and methods for molecule detection based on thermal stabilities of magnetic nanoparticles
US12313627B2 (en) 2019-05-01 2025-05-27 Element Biosciences, Inc. Multivalent binding composition for nucleic acid analysis
US11593649B2 (en) 2019-05-16 2023-02-28 Illumina, Inc. Base calling using convolutions
US11423306B2 (en) 2019-05-16 2022-08-23 Illumina, Inc. Systems and devices for characterization and performance analysis of pixel-based sequencing
AU2020273459A1 (en) 2019-05-16 2021-01-07 Illumina, Inc. Base calling using convolutions
EP3976820A1 (en) 2019-05-30 2022-04-06 10X Genomics, Inc. Methods of detecting spatial heterogeneity of a biological sample
US11939636B2 (en) 2019-05-31 2024-03-26 Guardant Health, Inc. Methods and systems for improving patient monitoring after surgery
EP3980559A1 (en) 2019-06-06 2022-04-13 Natera, Inc. Methods for detecting immune cell dna and monitoring immune system
WO2020252186A1 (en) 2019-06-11 2020-12-17 Omniome, Inc. Calibrated focus sensing
CA3144644A1 (en) 2019-06-21 2020-12-24 Twist Bioscience Corporation Barcode-based nucleic acid sequence assembly
SG11202105836XA (en) 2019-07-12 2021-07-29 Illumina Cambridge Ltd Compositions and methods for preparing nucleic acid sequencing libraries using crispr/cas9 immobilized on a solid support
US11377655B2 (en) 2019-07-16 2022-07-05 Pacific Biosciences Of California, Inc. Synthetic nucleic acids having non-natural structures
US10656368B1 (en) 2019-07-24 2020-05-19 Omniome, Inc. Method and system for biological imaging using a wide field objective lens
US12496305B2 (en) 2019-07-30 2025-12-16 The Cleveland Clinic Foundation Detection for determining corticosteroid responsiveness
EP4010472B1 (en) 2019-08-05 2025-01-01 Mission Bio, Inc. Method and apparatus for single-cell analysis for determining a cell trajectory
WO2021041519A1 (en) 2019-08-26 2021-03-04 Pact Pharma, Inc. Methods of performing guide-seq on primary human t cells
US12235262B1 (en) 2019-09-09 2025-02-25 10X Genomics, Inc. Methods and systems for single cell protein analysis
TW202124406A (zh) 2019-09-10 2021-07-01 美商歐姆尼歐美公司 核苷酸之可逆修飾
US11208682B2 (en) 2019-09-13 2021-12-28 Western Digital Technologies, Inc. Enhanced optical detection for nucleic acid sequencing using thermally-dependent fluorophore tags
EP4031682A1 (en) 2019-09-20 2022-07-27 Illumina, Inc. Methods and compositions for identifying ligands on arrays using indexes and barcodes
US12091777B2 (en) 2019-09-23 2024-09-17 Twist Bioscience Corporation Variant nucleic acid libraries for CRTH2
US11287422B2 (en) 2019-09-23 2022-03-29 Element Biosciences, Inc. Multivalent binding composition for nucleic acid analysis
US11111507B2 (en) 2019-09-23 2021-09-07 Zymergen Inc. Method for counterselection in microorganisms
EP4034564A4 (en) 2019-09-23 2023-12-13 Twist Bioscience Corporation VARIANT NUCLEIC ACID LIBRARIES FOR SINGLE-DOMAIN ANTIBODIES
EP3798319A1 (en) 2019-09-30 2021-03-31 Diagenode S.A. An improved diagnostic and/or sequencing method and kit
EP4715839A2 (en) 2019-10-11 2026-03-25 Guardant Health, Inc. Use of cell free bacterial nucleic acids for detection of cancer
WO2021076152A1 (en) 2019-10-18 2021-04-22 Omniome, Inc. Methods and compositions for capping nucleic acids
LT3812472T (lt) 2019-10-21 2023-03-10 Albert-Ludwigs-Universität Freiburg Objektyviai nešališkas tyrimas in vitro sąlygomis, skirtas vienos arba daugiau tikslinių programuojamų nukleazių ląstelėje nespecifinės sąveikos aktyvumui profiliuoti (abnoba-seq)
WO2021092066A1 (en) 2019-11-05 2021-05-14 Personalis, Inc. Estimating tumor purity from single samples
WO2021092433A2 (en) 2019-11-08 2021-05-14 10X Genomics, Inc. Enhancing specificity of analyte binding
EP4055185A1 (en) 2019-11-08 2022-09-14 10X Genomics, Inc. Spatially-tagged analyte capture agents for analyte multiplexing
US11747329B2 (en) 2019-11-22 2023-09-05 Western Digital Technologies, Inc. Magnetic gradient concentrator/reluctance detector for molecule detection
CN114746560A (zh) 2019-11-26 2022-07-12 夸登特健康公司 改进甲基化多核苷酸结合的方法、组合物和系统
JP2023510454A (ja) 2019-11-27 2023-03-14 イルミナ ケンブリッジ リミテッド シクロオクタテトラエンを含有する色素及び組成物
BR112022011235A2 (pt) 2019-12-09 2022-12-13 Twist Bioscience Corp Bibliotecas de variantes de ácido nucleico para receptores de adenosina
MX2021011847A (es) 2019-12-19 2021-11-17 Illumina Inc Genotecas de celulas unicas de alto rendimiento y metodos para elaborarlas y usarlas.
US12448648B2 (en) 2019-12-23 2025-10-21 Mgi Tech Co., Ltd. Controlled strand-displacement for paired end sequencing
US11498078B2 (en) 2019-12-23 2022-11-15 Singular Genomics Systems, Inc. Flow cell receiver and methods of use
EP4081656A1 (en) 2019-12-23 2022-11-02 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for using fixed biological samples in partition-based assays
CN121022991A (zh) 2019-12-23 2025-11-28 10X基因组学有限公司 使用rna模板化连接进行空间分析的方法
US11747262B2 (en) 2019-12-23 2023-09-05 Singular Genomics Systems, Inc. Flow cell carrier and methods of use
EP4081777B1 (en) 2019-12-23 2026-02-18 10X Genomics, Inc. Reversible fixing reagents and methods of use thereof
CA3166578A1 (en) 2019-12-31 2021-07-08 Singular Genomics Systems, Inc. Polynucleotide barcodes for long read sequencing
US12365942B2 (en) 2020-01-13 2025-07-22 10X Genomics, Inc. Methods of decreasing background on a spatial array
US12405264B2 (en) 2020-01-17 2025-09-02 10X Genomics, Inc. Electrophoretic system and method for analyte capture
EP3851542A1 (en) 2020-01-20 2021-07-21 Tecan Genomics, Inc. Depletion of abundant uninformative sequences
US11702693B2 (en) 2020-01-21 2023-07-18 10X Genomics, Inc. Methods for printing cells and generating arrays of barcoded cells
US11732299B2 (en) 2020-01-21 2023-08-22 10X Genomics, Inc. Spatial assays with perturbed cells
US20210230681A1 (en) 2020-01-24 2021-07-29 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using proximity ligation
US11821035B1 (en) 2020-01-29 2023-11-21 10X Genomics, Inc. Compositions and methods of making gene expression libraries
WO2021152586A1 (en) 2020-01-30 2021-08-05 Yeda Research And Development Co. Ltd. Methods of analyzing microbiome, immunoglobulin profile and physiological state
US12076701B2 (en) 2020-01-31 2024-09-03 10X Genomics, Inc. Capturing oligonucleotides in spatial transcriptomics
US11898205B2 (en) 2020-02-03 2024-02-13 10X Genomics, Inc. Increasing capture efficiency of spatial assays
US12110541B2 (en) 2020-02-03 2024-10-08 10X Genomics, Inc. Methods for preparing high-resolution spatial arrays
CN113275053A (zh) 2020-02-03 2021-08-20 帝肯基因组学公司 试剂存储系统
WO2021158511A1 (en) 2020-02-04 2021-08-12 Omniome, Inc. Flow cells and methods for their manufacture and use
US11732300B2 (en) 2020-02-05 2023-08-22 10X Genomics, Inc. Increasing efficiency of spatial analysis in a biological sample
WO2021158925A1 (en) 2020-02-07 2021-08-12 10X Genomics, Inc. Quantitative and automated permeabilization performance evaluation for spatial transcriptomics
US11835462B2 (en) 2020-02-11 2023-12-05 10X Genomics, Inc. Methods and compositions for partitioning a biological sample
US12449419B1 (en) 2020-02-12 2025-10-21 10X Genomics, Inc. Methods for detecting binding of peptide-MHC monomers to T cells
US12421558B2 (en) 2020-02-13 2025-09-23 10X Genomics, Inc. Systems and methods for joint interactive visualization of gene expression and DNA chromatin accessibility
EP4103580A4 (en) 2020-02-13 2024-03-06 Zymergen Inc. METAGENOMIC LIBRARY AND NATURAL PRODUCT DISCOVERY PLATFORM
IL295297A (en) 2020-02-14 2022-10-01 Univ Johns Hopkins Methods and materials for assessing nucleic acids
US12281357B1 (en) 2020-02-14 2025-04-22 10X Genomics, Inc. In situ spatial barcoding
WO2021162028A1 (ja) * 2020-02-14 2021-08-19 東レ株式会社 バイオチップの製造方法
US12399123B1 (en) 2020-02-14 2025-08-26 10X Genomics, Inc. Spatial targeting of analytes
US12592298B2 (en) * 2020-02-20 2026-03-31 Illumina, Inc. Hardware execution and acceleration of artificial intelligence-based base caller
US12354008B2 (en) 2020-02-20 2025-07-08 Illumina, Inc. Knowledge distillation and gradient pruning-based compression of artificial intelligence-based base caller
US12591780B2 (en) 2020-02-20 2026-03-31 Illumina, Inc. Data compression for artificial intelligence-based base calling
KR20220143854A (ko) 2020-02-20 2022-10-25 일루미나, 인코포레이티드 인공 지능 기반 다-대-다 염기 호출
US11891654B2 (en) 2020-02-24 2024-02-06 10X Genomics, Inc. Methods of making gene expression libraries
US11926863B1 (en) 2020-02-27 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Solid state single cell method for analyzing fixed biological cells
US11768175B1 (en) 2020-03-04 2023-09-26 10X Genomics, Inc. Electrophoretic methods for spatial analysis
CN114026250B (zh) 2020-03-09 2025-05-16 因美纳有限公司 核酸测序的改善
PL3969618T3 (pl) 2020-03-09 2024-01-03 Illumina, Inc. Sposoby sekwencjonowania polinukleotydów
WO2021185320A1 (en) 2020-03-18 2021-09-23 Mgi Tech Co., Ltd. Restoring phase in massively parallel sequencing
CN115768884A (zh) 2020-03-20 2023-03-07 使命生物公司 用于全基因组扩增的单细胞工作流程
WO2021214766A1 (en) 2020-04-21 2021-10-28 Yeda Research And Development Co. Ltd. Methods of diagnosing viral infections and vaccines thereto
WO2021216708A1 (en) 2020-04-22 2021-10-28 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using targeted rna depletion
CA3177127A1 (en) 2020-04-30 2021-11-04 Guardant Health, Inc. Methods for sequence determination using partitioned nucleic acids
US11188778B1 (en) 2020-05-05 2021-11-30 Illumina, Inc. Equalization-based image processing and spatial crosstalk attenuator
CN115836135A (zh) 2020-05-05 2023-03-21 加利福尼亚太平洋生物科学股份有限公司 用于修饰聚合酶-核酸复合物的组合物和方法
US20230203592A1 (en) 2020-05-05 2023-06-29 Akershus Universitetssykehus Hf Compositions and methods for characterizing bowel cancer
EP4150065A2 (en) 2020-05-12 2023-03-22 Illumina Inc Generating nucleic acids with modified bases using recombinant terminal deoxynucleotidyl transferase
US11851700B1 (en) 2020-05-13 2023-12-26 10X Genomics, Inc. Methods, kits, and compositions for processing extracellular molecules
US12241126B2 (en) 2020-05-14 2025-03-04 Guardant Health, Inc. Homologous recombination repair deficiency detection
CN116134308B (zh) 2020-05-19 2025-05-27 10X基因组学有限公司 电泳盒和仪器
EP4414459B1 (en) 2020-05-22 2025-09-03 10X Genomics, Inc. Simultaneous spatio-temporal measurement of gene expression and cellular activity
WO2021237087A1 (en) 2020-05-22 2021-11-25 10X Genomics, Inc. Spatial analysis to detect sequence variants
WO2021242834A1 (en) 2020-05-26 2021-12-02 10X Genomics, Inc. Method for resetting an array
WO2021247543A2 (en) 2020-06-02 2021-12-09 10X Genomics, Inc. Nucleic acid library methods
US12265079B1 (en) 2020-06-02 2025-04-01 10X Genomics, Inc. Systems and methods for detecting analytes from captured single biological particles
EP4158054B1 (en) 2020-06-02 2025-04-16 10X Genomics, Inc. Spatial transcriptomics for antigen-receptors
US12031177B1 (en) 2020-06-04 2024-07-09 10X Genomics, Inc. Methods of enhancing spatial resolution of transcripts
US20230193356A1 (en) 2020-06-08 2023-06-22 The Broad Institute, Inc. Single cell combinatorial indexing from amplified nucleic acids
WO2021252499A1 (en) 2020-06-08 2021-12-16 10X Genomics, Inc. Methods of determining a surgical margin and methods of use thereof
WO2021252617A1 (en) 2020-06-09 2021-12-16 Illumina, Inc. Methods for increasing yield of sequencing libraries
US12435363B1 (en) 2020-06-10 2025-10-07 10X Genomics, Inc. Materials and methods for spatial transcriptomics
WO2021252747A1 (en) 2020-06-10 2021-12-16 1Ox Genomics, Inc. Fluid delivery methods
EP4446430A3 (en) 2020-06-10 2024-12-18 10X Genomics, Inc. Methods for determining a location of an analyte in a biological sample
WO2021259881A1 (en) 2020-06-22 2021-12-30 Illumina Cambridge Limited Nucleosides and nucleotides with 3' acetal blocking group
WO2021263111A1 (en) 2020-06-25 2021-12-30 10X Genomics, Inc. Spatial analysis of dna methylation
EP4172364A1 (en) 2020-06-30 2023-05-03 Illumina, Inc. Catalytically controlled sequencing by synthesis to produce scarless dna
US20230242967A1 (en) 2020-07-02 2023-08-03 Illumina, Inc. A method to calibrate nucleic acid library seeding efficiency in flowcells
US11761038B1 (en) 2020-07-06 2023-09-19 10X Genomics, Inc. Methods for identifying a location of an RNA in a biological sample
US11981960B1 (en) 2020-07-06 2024-05-14 10X Genomics, Inc. Spatial analysis utilizing degradable hydrogels
US12209280B1 (en) 2020-07-06 2025-01-28 10X Genomics, Inc. Methods of identifying abundance and location of an analyte in a biological sample using second strand synthesis
BR112023000073A2 (pt) 2020-07-08 2023-04-11 Illumina Inc Microesferas como transportadores de transpossomos
WO2023282916A1 (en) 2021-07-09 2023-01-12 Guardant Health, Inc. Methods of detecting genomic rearrangements using cell free nucleic acids
EP4179111B1 (en) 2020-07-10 2024-04-03 Guardant Health, Inc. Methods of detecting genomic rearrangements using cell free nucleic acids
EP4153606A4 (en) 2020-07-13 2024-10-02 Singular Genomics Systems, Inc. METHODS FOR SEQUENCING COMPLEMENTARY POLYNUCLEOTIDES
US12116637B2 (en) 2020-07-24 2024-10-15 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for detecting and treating high grade subtypes of uterine cancer
US11981964B2 (en) 2020-07-28 2024-05-14 Illumina Cambridge Limited Substituted coumarin dyes and uses as fluorescent labels
WO2022026761A1 (en) 2020-07-30 2022-02-03 Guardant Health, Inc. Methods for isolating cell-free dna
CA3190588A1 (en) 2020-08-06 2022-02-10 Illumina, Inc. Preparation of rna and dna sequencing libraries using bead-linked transposomes
CN116075596A (zh) 2020-08-07 2023-05-05 牛津纳米孔科技公开有限公司 鉴定核酸条形码的方法
US12553898B1 (en) 2020-08-10 2026-02-17 10X Genomics, Inc. Fluorescent hybridization of antibody-oligonucleotide for multiplexing and signal amplification
IL299783A (en) 2020-08-18 2023-03-01 Illumina Inc Sequence-Specific Targeted Transposition, Selection and Sorting of Nucleic Acids
US11981958B1 (en) 2020-08-20 2024-05-14 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using DNA capture
WO2022046947A1 (en) 2020-08-25 2022-03-03 Guardant Health, Inc. Methods and systems for predicting an origin of a variant
IL300983A (en) 2020-09-11 2023-04-01 Illumina Cambridge Ltd Methods for enriching a target sequence from a sequence library using hairpin adapters
WO2022061150A2 (en) 2020-09-18 2022-03-24 10X Geonomics, Inc. Sample handling apparatus and image registration methods
US11926822B1 (en) 2020-09-23 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Three-dimensional spatial analysis
WO2022073012A1 (en) 2020-09-30 2022-04-07 Guardant Health, Inc. Compositions and methods for analyzing dna using partitioning and a methylation-dependent nuclease
AU2021366658A1 (en) 2020-10-21 2023-06-22 Illumina Cambridge Limited Sequencing templates comprising multiple inserts and compositions and methods for improving sequencing throughput
WO2022087485A1 (en) 2020-10-22 2022-04-28 Singular Genomics Systems, Inc. Nucleic acid circularization and amplification on a surface
WO2022087309A1 (en) 2020-10-23 2022-04-28 Guardant Health, Inc. Compositions and methods for analyzing dna using partitioning and base conversion
US12084715B1 (en) 2020-11-05 2024-09-10 10X Genomics, Inc. Methods and systems for reducing artifactual antisense products
US12480158B1 (en) 2020-11-05 2025-11-25 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US11827935B1 (en) 2020-11-19 2023-11-28 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using rolling circle amplification and detection probes
US20220195516A1 (en) 2020-12-17 2022-06-23 Illumina Cambridge Limited Methods, systems and compositions for nucleic acid sequencing
EP4121555B1 (en) 2020-12-21 2026-02-25 10X Genomics, Inc. Methods for capturing probes and/or barcodes
KR20230123872A (ko) * 2020-12-21 2023-08-24 일루미나, 인코포레이티드 변형된 포획 프라이머를 사용하여 표적 폴리뉴클레오티드를 포획 및 증폭시키기 위한 조성물 및 방법
US20220195518A1 (en) 2020-12-22 2022-06-23 Illumina Cambridge Limited Methods and compositions for nucleic acid sequencing
WO2022140629A1 (en) 2020-12-23 2022-06-30 Guardant Health, Inc. Methods and systems for analyzing methylated polynucleotides
JP2024502618A (ja) 2021-01-08 2024-01-22 セラノーム, インコーポレイテッド 生体試料を分析するためのデバイスおよび方法
US12576400B2 (en) 2021-01-08 2026-03-17 Cellanome, Inc. Methods for incubating and analyzing a cell in a compartment of a fluidic device
US12398262B1 (en) 2021-01-22 2025-08-26 10X Genomics, Inc. Triblock copolymer-based cell stabilization and fixation system and methods of use thereof
KR20230154303A (ko) 2021-01-29 2023-11-07 일루미나, 인코포레이티드 폴리뉴클레오티드로 플로우 셀의 시딩 효율을 개선하기위한 방법, 조성물 및 키트
ES3015114T3 (en) 2021-02-04 2025-04-29 Illumina Inc Long indexed-linked read generation on transposome bound beads
US11486001B2 (en) 2021-02-08 2022-11-01 Singular Genomics Systems, Inc. Methods and compositions for sequencing complementary polynucleotides
WO2022174054A1 (en) 2021-02-13 2022-08-18 The General Hospital Corporation Methods and compositions for in situ macromolecule detection and uses thereof
EP4421491A3 (en) 2021-02-19 2024-11-27 10X Genomics, Inc. Method of using a modular assay support device
CN120158497A (zh) 2021-02-23 2025-06-17 10X基因组学有限公司 基于探针的核酸和蛋白质分析
JP2024513668A (ja) 2021-03-05 2024-03-27 ガーダント ヘルス, インコーポレイテッド 分子応答を分析するための方法および関連する態様
WO2022192889A1 (en) 2021-03-09 2022-09-15 Guardant Health, Inc. Detecting the presence of a tumor based on off-target polynucleotide sequencing data
WO2022197754A1 (en) 2021-03-16 2022-09-22 Illumina Software, Inc. Neural network parameter quantization for base calling
US12525320B2 (en) 2021-03-16 2026-01-13 Illumina, Inc. Neural network parameter quantization for base calling
AU2022238446A1 (en) 2021-03-18 2023-09-07 10X Genomics, Inc. Multiplex capture of gene and protein expression from a biological sample
CA3210451A1 (en) 2021-03-22 2022-09-29 Illumina Cambridge Limited Methods for improving nucleic acid cluster clonality
CA3214282A1 (en) 2021-03-29 2022-10-06 Illumina, Inc. Compositions and methods for assessing dna damage in a library and normalizing amplicon size bias
JP2024511766A (ja) 2021-03-29 2024-03-15 イルミナ インコーポレイテッド 改善されたライブラリ調製方法
MX2023010495A (es) 2021-03-30 2023-09-18 Illumina Inc Metodos mejorados de preparacion de genoteca y adn complementarios isotermicos.
KR20230164668A (ko) 2021-03-31 2023-12-04 일루미나, 인코포레이티드 오류 수정을 위한 고유 분자 식별자를 이용한 트랜스포존-기반 기술을 사용하는 방향성 태그먼트화 시퀀싱 라이브러리 제조 방법
EP4428246B1 (en) 2021-04-14 2025-12-24 10X Genomics, Inc. Methods of measuring mislocalization of an analyte
US12444482B2 (en) 2021-04-15 2025-10-14 Illumina, Inc. Multi-channel protein voxelization to predict variant pathogenicity using deep convolutional neural networks
US12217829B2 (en) 2021-04-15 2025-02-04 Illumina, Inc. Artificial intelligence-based analysis of protein three-dimensional (3D) structures
JP2024516191A (ja) 2021-05-05 2024-04-12 イルミナ ケンブリッジ リミテッド ビス-ホウ素縮合複素環を含有する蛍光色素及び配列決定における使用
EP4320271B1 (en) 2021-05-06 2025-03-19 10X Genomics, Inc. Methods for increasing resolution of spatial analysis
JP2024521658A (ja) 2021-05-14 2024-06-04 プルトン・バイオサイエンシズ・インコーポレイテッド クリセオバクテリウム属昆虫阻害性微生物組成物並びに作製及び使用方法
CN117916390A (zh) 2021-05-20 2024-04-19 伊鲁米纳公司 用于边合成边测序的组合物和方法
WO2022256503A1 (en) 2021-06-03 2022-12-08 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, kits, and systems for enhancing analyte capture for spatial analysis
US12570831B2 (en) 2021-06-15 2026-03-10 Illumina, Inc. Hydrogel-free surface functionalization for sequencing
US11535892B1 (en) 2021-06-17 2022-12-27 Element Biosciences, Inc. Compositions and methods for pairwise sequencing
US11859241B2 (en) 2021-06-17 2024-01-02 Element Biosciences, Inc. Compositions and methods for pairwise sequencing
CN117597453A (zh) 2021-06-23 2024-02-23 伊鲁米纳公司 用于测序试剂的组合物、方法、试剂盒、料筒和系统
EP4359557B1 (en) 2021-06-24 2026-05-20 Illumina Inc METHODS AND COMPOSITIONS FOR THE COMBINATORY INDEXING OF NUCLEIC ACIDS BASED ON BEADS
AU2022300970A1 (en) 2021-06-29 2024-01-18 Illumina, Inc. Self-learned base caller, trained using oligo sequences
WO2023278184A1 (en) 2021-06-29 2023-01-05 Illumina, Inc. Methods and systems to correct crosstalk in illumination emitted from reaction sites
US12530882B2 (en) 2021-07-01 2026-01-20 Illumina, Inc. Efficient artificial intelligence-based base calling of index sequences
US12423815B2 (en) 2021-07-13 2025-09-23 Illumina, Inc. Methods and systems for real time extraction of crosstalk in illumination emitted from reaction sites
WO2023003757A1 (en) 2021-07-19 2023-01-26 Illumina Software, Inc. Intensity extraction with interpolation and adaptation for base calling
US11455487B1 (en) 2021-10-26 2022-09-27 Illumina Software, Inc. Intensity extraction and crosstalk attenuation using interpolation and adaptation for base calling
EP4373965A1 (en) 2021-07-21 2024-05-29 DNAe Diagnostics Limited Method and system comprising a cartridge for sequencing target polynucleotides
GB2629259B (en) 2021-07-21 2025-05-28 Element Biosciences Inc Optical systems for nucleic acid sequencing and methods thereof
GB202110479D0 (en) 2021-07-21 2021-09-01 Dnae Diagnostics Ltd Compositions, kits and methods for sequencing target polynucleotides
GB202110485D0 (en) 2021-07-21 2021-09-01 Dnae Diagnostics Ltd Compositions, kits and methods for sequencing target polynucleotides
WO2023004357A1 (en) 2021-07-23 2023-01-26 Illumina, Inc. Methods for preparing substrate surface for dna sequencing
CA3223746A1 (en) 2021-07-28 2023-02-02 Rohan PAUL Quality score calibration of basecalling systems
US12553805B2 (en) 2021-08-02 2026-02-17 10X Genomics, Inc. Methods of preserving a biological sample
KR20240035413A (ko) 2021-08-03 2024-03-15 일루미나, 인코포레이티드 다중 염기 호출자 모델을 사용한 염기 호출
US11795500B2 (en) 2021-08-19 2023-10-24 Eclipse Bioinnovations, Inc. Methods for detecting RNA binding protein complexes
WO2023023638A1 (en) 2021-08-20 2023-02-23 Singular Genomics Systems, Inc. Chemical and thermal assisted nucleic acid amplification methods
CN118103750A (zh) 2021-08-31 2024-05-28 伊鲁米纳公司 具有增强的孔成像分辨率的流动池
EP4196605B1 (en) 2021-09-01 2024-12-04 10X Genomics, Inc. Methods for blocking a capture probe on a spatial array
WO2023035003A1 (en) 2021-09-03 2023-03-09 Elegen Corp. Multi-way bead-sorting devices, systems, and methods of use thereof using pressure sources
US12480157B2 (en) 2021-09-30 2025-11-25 Illumina, Inc. Polynucleotide sequencing
WO2023056328A2 (en) 2021-09-30 2023-04-06 Illumina, Inc. Solid supports and methods for depleting and/or enriching library fragments prepared from biosamples
EP4413580A4 (en) 2021-10-05 2025-08-13 Personalis Inc PERSONALIZED TESTS FOR PERSONALIZED CANCER MONITORING
CA3234961A1 (en) 2021-10-20 2023-04-27 Illumina, Inc. Methods for capturing library dna for sequencing
EP4422792A4 (en) 2021-10-26 2025-12-17 Singular Genomics Systems Inc TARGETED MULTIPLEX AMPLIFICATION OF POLYNUCLEOTIDS
WO2023086880A1 (en) 2021-11-10 2023-05-19 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and kits for determining the location of an analyte in a biological sample
EP4430206A1 (en) 2021-11-10 2024-09-18 Encodia, Inc. Methods for barcoding macromolecules in individual cells
WO2023086635A1 (en) 2021-11-15 2023-05-19 Vir Biotechnology, Inc. Virological and molecular surrogates of response to sars-cov-2 neutralizing antibody sotrovimab
WO2023102118A2 (en) 2021-12-01 2023-06-08 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and systems for improved in situ detection of analytes and spatial analysis
US20250163491A1 (en) 2021-12-16 2025-05-22 Illumina, Inc. Methods for metal directed cleavage of surface-bound polynucleotides
WO2023114397A1 (en) 2021-12-16 2023-06-22 Illumina, Inc. Hybrid clustering
CA3223615A1 (en) 2021-12-17 2023-06-22 Fei Shen Orthogonal hybridization
AU2022421156A1 (en) 2021-12-20 2024-01-18 Illumina, Inc. Periodate compositions and methods for chemical cleavage of surface-bound polynucleotides
EP4441711A1 (en) 2021-12-20 2024-10-09 10X Genomics, Inc. Self-test for pathology/histology slide imaging device
US20240401127A1 (en) 2021-12-20 2024-12-05 Illumina, Inc. Periodate compositions and methods for chemical cleavage of surface-bound polynucleotides
US20230212667A1 (en) 2021-12-29 2023-07-06 Illumina Cambridge Limited Methods of nucleic acid sequencing using surface-bound primers
US20250109442A1 (en) 2022-01-13 2025-04-03 Oslo Universitetssykehus Hf Prostate cancer markers and uses thereof
AU2023208743A1 (en) 2022-01-20 2024-01-04 Illumina, Inc. Methods of detecting methylcytosine and hydroxymethylcytosine by sequencing
WO2023152568A2 (en) 2022-02-10 2023-08-17 Oslo Universitetssykehus Hf Compositions and methods for characterizing lung cancer
WO2023175037A2 (en) 2022-03-15 2023-09-21 Illumina, Inc. Concurrent sequencing of forward and reverse complement strands on separate polynucleotides for methylation detection
WO2023175026A1 (en) 2022-03-15 2023-09-21 Illumina, Inc. Methods of determining sequence information
EP4499862A1 (en) 2022-03-28 2025-02-05 Illumina, Inc. Labeled avidin and methods for sequencing
AU2023246772A1 (en) 2022-03-29 2024-01-18 Illumina Inc. Chromenoquinoline dyes and uses in sequencing
US20230313294A1 (en) 2022-03-30 2023-10-05 Illumina Cambridge Limited Methods for chemical cleavage of surface-bound polynucleotides
CA3223090A1 (en) 2022-03-31 2023-10-05 Xiaoyu Ma Paired-end re-synthesis using blocked p5 primers
EP4499870A1 (en) 2022-03-31 2025-02-05 Illumina, Inc. Compositions and methods for improving sequencing signals
AU2023244351A1 (en) 2022-03-31 2024-01-18 Illumina, Inc. Nucleosides and nucleotides with 3' vinyl blocking group useful in sequencing by synthesis
EP4504930A1 (en) 2022-04-07 2025-02-12 Illumina, Inc. Altered cytidine deaminases and methods of use
WO2023209606A1 (en) 2022-04-29 2023-11-02 Illumina Cambridge Limited Methods and systems for encapsulating lyophilised microspheres
EP4523213A1 (en) 2022-05-09 2025-03-19 Guardant Health, Inc. Detecting degradation based on strand bias
AU2023281871A1 (en) 2022-05-31 2024-11-14 Illumina, Inc Compositions and methods for nucleic acid sequencing
WO2023240093A1 (en) 2022-06-06 2023-12-14 Element Biosciences, Inc. Methods for assembling and reading nucleic acid sequences from mixed populations
CA3259955A1 (en) 2022-06-28 2024-01-04 Illumina, Inc. FLUORESCENT DYES CONTAINING A FUSIONED BIS-TETRACYCLIC BORON HETEROCYCLE AND THEIR USES IN SEQUENCED
AU2023325064A1 (en) 2022-08-15 2025-03-06 Element Biosciences, Inc. Spatially resolved surface capture of nucleic acids
US20250361558A1 (en) 2022-08-19 2025-11-27 Illumina, Inc. Third dna base pair site-specific dna detection
WO2024057280A1 (en) 2022-09-16 2024-03-21 Illumina Cambridge Limited Nanoparticle with polynucleotide binding site and method of making thereof
JP2025528992A (ja) 2022-09-19 2025-09-04 イルミナ インコーポレイテッド 固定化プライマーを含む変形可能なポリマー
US20240102067A1 (en) 2022-09-26 2024-03-28 Illumina, Inc. Resynthesis Kits and Methods
US20240124929A1 (en) 2022-09-30 2024-04-18 Illumina, Inc. Mesophilic compositions for nucleic acid amplification
CN120153070A (zh) 2022-09-30 2025-06-13 因美纳有限公司 解旋酶-胞苷脱氨酶复合物及其使用方法
US20250388894A1 (en) 2022-09-30 2025-12-25 Illumina, Inc. Methods of using cpg binding proteins in mapping modified cytosine nucleotides
US20240124914A1 (en) 2022-09-30 2024-04-18 Illumina, Inc. Thermophilic compositions for nucleic acid amplification
US20240110234A1 (en) 2022-09-30 2024-04-04 Illumina, Inc. Amplification Compositions and Methods
US20240110221A1 (en) 2022-09-30 2024-04-04 Illumina, Inc. Methods of modulating clustering kinetics
CN119213083A (zh) 2022-09-30 2024-12-27 伊路米纳有限公司 用于减少测序期间的光损伤的组合物和方法
EP4594482A1 (en) 2022-09-30 2025-08-06 Illumina, Inc. Cytidine deaminases and methods of use in mapping modified cytosine nucleotides
GB202215624D0 (en) 2022-10-21 2022-12-07 Dnae Diagnostics Ltd Clonal amplification
WO2024102809A1 (en) 2022-11-09 2024-05-16 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and kits for determining the location of multiple analytes in a biological sample
KR20250110272A (ko) 2022-11-15 2025-07-18 가던트 헬쓰, 인크. 순환 종양 dna (ctdna)로부터 기준선 ctdna 수준 및 시간 경과에 따른 ctdna 수준의 종단적 변화 둘 다로부터의 신호를 이용하여 비소세포 폐암 (nsclc) 환자 약물 반응 또는 사망 또는 암 진행까지의 시간을 예측하는 방법
KR20250130601A (ko) 2022-11-29 2025-09-02 엘리먼트 바이오사이언스, 인크. 핵산 시퀀싱을 위한 플로우 셀 디바이스 및 광학 시스템
EP4627113A1 (en) 2022-11-30 2025-10-08 Illumina, Inc. Chemoenzymatic correction of false positive uracil transformations
CN119095978A (zh) 2022-12-07 2024-12-06 伊路米纳有限公司 使用具有模式化接种的双链dna大小排阻的单克隆聚簇
EP4630435A1 (en) 2022-12-09 2025-10-15 Illumina, Inc. Nucleosides and nucleotides with 3´ blocking groups and cleavable linkers
WO2024129672A1 (en) 2022-12-12 2024-06-20 The Broad Institute, Inc. Trafficked rnas for assessment of cell-cell connectivity and neuroanatomy
WO2024129969A1 (en) 2022-12-14 2024-06-20 Illumina, Inc. Systems and methods for capture and enrichment of clustered beads on flow cell substrates
KR20250138733A (ko) 2022-12-21 2025-09-22 가던트 헬쓰, 인크. 세포-유리 핵산 분자의 메틸화 상태에 기초한 상동 재조합 결핍의 검출
AU2023409219A1 (en) 2022-12-22 2024-10-03 Illumina, Inc. Palladium catalyst compositions and methods for sequencing by synthesis
CA3246536A1 (en) 2022-12-22 2024-06-27 Illumina, Inc. TRANSITION METAL CATALYST COMPOSITIONS AND SYNTHETIC SEQUENCE PROCESSES
CN119095984A (zh) 2022-12-27 2024-12-06 伊路米纳有限公司 使用3'烯丙基封端的核苷酸的测序方法
CA3246669A1 (en) 2023-01-06 2024-07-11 Illumina, Inc. URACIL REDUCTION BY POLYMERASE
EP4673167A1 (en) 2023-02-27 2026-01-07 Adaptive Biotechnologies Corp. Therapeutic t cell receptors targeting kras g12d
AU2024247164A1 (en) 2023-03-29 2024-12-12 Illumina, Inc. Naphthalimide dyes and uses in nucleic acid sequencing
EP4689181A1 (en) 2023-03-30 2026-02-11 Illumina, Inc. Compositions and methods for nucleic acid sequencing
EP4705522A1 (en) 2023-05-05 2026-03-11 Guardant Health, Inc. Cell-free dna blood-based test for cancer screening
EP4720334A1 (en) 2023-05-26 2026-04-08 Illumina, Inc. Methods for preserving methylation status during clustering
WO2024249061A1 (en) 2023-05-31 2024-12-05 Illumina, Inc. Detecting a methylated nucleotide using a quencher
EP4720339A1 (en) 2023-05-31 2026-04-08 Illumina, Inc. Methods for double-stranded sequencing by synthesis
EP4720331A1 (en) 2023-05-31 2026-04-08 Illumina, Inc. False positive reduction by translesion polymerase repair
WO2024254003A1 (en) 2023-06-05 2024-12-12 Illumina, Inc. Identification and mapping of methylation sites
WO2024256581A1 (en) 2023-06-14 2024-12-19 Illumina, Inc. Determination of modified cytosines
EP4728091A1 (en) 2023-06-14 2026-04-22 Illumina, Inc. Concurrent sequencing with spatially separated rings
WO2024259251A1 (en) 2023-06-15 2024-12-19 Guardant Health, Inc. Method for hrd detection in targeted cfdna samples using de novo mutational signatures
US20250075269A1 (en) 2023-08-31 2025-03-06 Illumina, Inc. Compositions and methods for nucleic acid sequencing
WO2025062002A1 (en) 2023-09-20 2025-03-27 Illumina, Inc. Concurrent sequencing using nick translation
WO2025062001A1 (en) 2023-09-20 2025-03-27 Illumina, Inc. Optimised nucleic acid sequencing
WO2025072783A1 (en) 2023-09-28 2025-04-03 Illumina, Inc. Altered cytidine deaminases and methods of use
WO2025072683A1 (en) 2023-09-29 2025-04-03 Illumina, Inc. Solid supports and methods for strand invasion-based amplification
US20250246266A1 (en) 2023-09-29 2025-07-31 Guardant Health, Inc. Genotyping cyp2d6
WO2025081064A2 (en) 2023-10-11 2025-04-17 Illumina, Inc. Thermophilic deaminase and methods for identifying modified cytosine
WO2025090596A1 (en) 2023-10-26 2025-05-01 Illumina, Inc. 4,5-substituted naphthalimide dyes and uses in nucleic acid sequencing
WO2025090646A1 (en) 2023-10-27 2025-05-01 Guardant Health, Inc. Monitoring molecular response by allelic imbalance
WO2025104619A1 (en) 2023-11-13 2025-05-22 Oslo Universitetssykehus Hf Breast cancer markers and uses thereof
US20250163505A1 (en) 2023-11-17 2025-05-22 Illumina, Inc. Conjugated polymers or polymer dots as fluorescent labels
WO2025117738A1 (en) 2023-11-28 2025-06-05 Illumina, Inc. Methods of improving unique molecular index ligation efficiency
WO2025136890A1 (en) 2023-12-18 2025-06-26 Illumina, Inc. Hydrogel nanoparticles as labeling scaffold in sequencing
WO2025137222A1 (en) 2023-12-19 2025-06-26 Illumina, Inc. Methylation detection assay
WO2025137479A1 (en) 2023-12-22 2025-06-26 Illumina, Inc. Reusable flow cells and methods of using them for nucleic acid sequencing
US20250215493A1 (en) 2023-12-28 2025-07-03 Illumina, Inc. Nucleotides with enzymatically cleavable 3'-o-glycoside blocking groups for sequencing
WO2025144626A1 (en) 2023-12-28 2025-07-03 Illumina, Inc. Sequencing with single-stranded binding proteins
WO2025144711A1 (en) 2023-12-29 2025-07-03 Illumina, Inc. Tricyclic polymethine dyes for nucleic acid sequencing
WO2025184226A1 (en) 2024-02-28 2025-09-04 Illumina, Inc. Nucleotides with terminal phosphate capping
WO2025188906A1 (en) 2024-03-08 2025-09-12 Illumina, Inc. Modified adenosine nucleotides
WO2025207535A1 (en) 2024-03-26 2025-10-02 Illumina, Inc. Photo-switchable surfaces
US20250320550A1 (en) 2024-04-12 2025-10-16 Robert Bosch Gmbh Sequencing by synthesis using electroactively labeled 3-oh-modified nucleotides
WO2025221895A1 (en) 2024-04-19 2025-10-23 Illumina, Inc. Water soluble polymer scaffolds for dye labeling
WO2025230914A1 (en) 2024-04-29 2025-11-06 Illumina, Inc. Nucleotides with enzyme-triggered self-immolative linkers for sequencing by synthesis
WO2025240905A1 (en) 2024-05-17 2025-11-20 The Broad Institute, Inc. Imaging-free high-resolution spatial macromolecule abundance reconstruction
WO2025264836A1 (en) 2024-06-18 2025-12-26 Illumina, Inc. Methods for increasing sequencing quality of gc-rich regions
WO2025264831A1 (en) 2024-06-18 2025-12-26 Illumina, Inc. Methods for increasing sequencing quality of gc-rich regions
WO2026006314A1 (en) 2024-06-28 2026-01-02 Illumina, Inc. Tagging target regions prior to nucleotide sequencing
WO2026006746A2 (en) 2024-06-28 2026-01-02 Illumina, Inc. Nucleic acid preparation and analysis techniques
WO2026006774A1 (en) 2024-06-28 2026-01-02 Illumina, Inc. Altered cytidine deaminases and methods of use
WO2026035914A1 (en) 2024-08-09 2026-02-12 Illumina, Inc. Nucleotides having 3'-hydroxy blocking groups
WO2026090042A1 (en) 2024-10-21 2026-04-30 The Broad Institute, Inc. Single-cell and spatial dna methylation measurements
WO2026097017A2 (en) 2024-11-01 2026-05-07 Illumina, Inc. Methods of improving sequencing accuracy

Family Cites Families (46)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4957858A (en) 1986-04-16 1990-09-18 The Salk Instute For Biological Studies Replicative RNA reporter systems
EP0224126A3 (en) 1985-11-25 1989-02-01 The University of Calgary Covalently linked complementary oligodeoxynucleotides as universal nucleic acid sequencing primer linkers
IL86724A (en) 1987-06-19 1995-01-24 Siska Diagnostics Inc Methods and kits for amplification and testing of nucleic acid sequences
CA1340843C (en) 1987-07-31 1999-12-07 J. Lawrence Burg Selective amplification of target polynucleotide sequences
SE8801070D0 (sv) 1988-03-23 1988-03-23 Pharmacia Ab Method for immobilizing a dna sequence on a solid support
US6107023A (en) 1988-06-17 2000-08-22 Genelabs Technologies, Inc. DNA amplification and subtraction techniques
GB8818020D0 (en) 1988-07-28 1988-09-01 Ici Plc Method for amplification of nucleotide sequences
CA2004326A1 (en) 1988-12-23 1990-06-23 Nanibushan Dattagupta Assay of sequences using amplified genes
US5629158A (en) * 1989-03-22 1997-05-13 Cemu Bitecknik Ab Solid phase diagnosis of medical conditions
US5800992A (en) * 1989-06-07 1998-09-01 Fodor; Stephen P.A. Method of detecting nucleic acids
US5547839A (en) 1989-06-07 1996-08-20 Affymax Technologies N.V. Sequencing of surface immobilized polymers utilizing microflourescence detection
EP0450060A1 (en) 1989-10-26 1991-10-09 Sri International Dna sequencing
CA2036946C (en) 1990-04-06 2001-10-16 Kenneth V. Deugau Indexing linkers
US5326692B1 (en) 1992-05-13 1996-04-30 Molecular Probes Inc Fluorescent microparticles with controllable enhanced stokes shift
US5645994A (en) * 1990-07-05 1997-07-08 University Of Utah Research Foundation Method and compositions for identification of species in a sample using type II topoisomerase sequences
ES2130177T3 (es) 1991-08-10 1999-07-01 Medical Res Council Tratamiento de poblaciones de celulas.
WO1993004199A2 (en) 1991-08-20 1993-03-04 Scientific Generics Limited Methods of detecting or quantitating nucleic acids and of producing labelled immobilised nucleic acids
CA2077135A1 (en) * 1991-08-30 1993-03-01 Joh-E Ikeda A method of dna amplification
AU3728093A (en) 1992-02-19 1993-09-13 Public Health Research Institute Of The City Of New York, Inc., The Novel oligonucleotide arrays and their use for sorting, isolating, sequencing, and manipulating nucleic acids
WO1994002634A1 (en) * 1992-07-24 1994-02-03 University Of South Australia Amplification and detection process
RU2048522C1 (ru) 1992-10-14 1995-11-20 Институт белка РАН Способ размножения нуклеиновых кислот, способ их экспрессии и среда для их осуществления
US5436142A (en) * 1992-11-12 1995-07-25 Cold Spring Harbor Laboratory Methods for producing probes capable of distingushing variant genomic sequences
US5514539A (en) * 1993-06-29 1996-05-07 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Nucleotide and deduced amino acid sequences of the envelope 1 gene of 51 isolates of hepatitis C virus and the use of reagents derived from these sequences in diagnostic methods and vaccines
JPH07203998A (ja) 1994-01-26 1995-08-08 Hamamatsu Photonics Kk 核酸塩基配列決定方法
AU707391B2 (en) 1994-05-28 1999-07-08 Tepnel Medical Limited Producing copies of nucleic acids
US5641658A (en) * 1994-08-03 1997-06-24 Mosaic Technologies, Inc. Method for performing amplification of nucleic acid with two primers bound to a single solid support
US6060288A (en) 1994-08-03 2000-05-09 Mosaic Technologies Method for performing amplification of nucleic acid on supports
JPH11503611A (ja) 1995-04-11 1999-03-30 トラスティーズ・オブ・ボストン・ユニバーシティ 生体高分子の固相配列決定法
US5753439A (en) * 1995-05-19 1998-05-19 Trustees Of Boston University Nucleic acid detection methods
US6143495A (en) 1995-11-21 2000-11-07 Yale University Unimolecular segment amplification and sequencing
US5939291A (en) 1996-06-14 1999-08-17 Sarnoff Corporation Microfluidic method for nucleic acid amplification
US6218142B1 (en) * 1997-03-05 2001-04-17 Michael Wassenegger Nucleic acid molecules encoding polypeptides having the enzymatic activity of an RNA-directed RNA polymerase (RDRP)
EP1498494A3 (en) * 1997-04-01 2007-06-20 Solexa Ltd. Method of nucleic acid sequencing
EP1591541B1 (en) 1997-04-01 2012-02-15 Illumina Cambridge Limited Method of nucleic acid sequencing
WO1998045474A1 (en) 1997-04-04 1998-10-15 Innogenetics N.V. Isothermal polymerase chain reaction by cycling the concentration of divalent metal ions
US6235471B1 (en) 1997-04-04 2001-05-22 Caliper Technologies Corp. Closed-loop biochemical analyzers
ES2283936T3 (es) 1997-07-07 2007-11-01 Medical Research Council Procedimiento de clasificacion in vitro.
US6326489B1 (en) 1997-08-05 2001-12-04 Howard Hughes Medical Institute Surface-bound, bimolecular, double-stranded DNA arrays
US6124120A (en) 1997-10-08 2000-09-26 Yale University Multiple displacement amplification
US6511803B1 (en) 1997-10-10 2003-01-28 President And Fellows Of Harvard College Replica amplification of nucleic acid arrays
US6248558B1 (en) 1998-03-31 2001-06-19 Vanderbilt University Sequence and method for genetic engineering of proteins with cell membrane translocating activity
EP1098996A1 (en) 1998-07-20 2001-05-16 Yale University Method for detecting nucleic acids using target-mediated ligation of bipartite primers
AR021833A1 (es) 1998-09-30 2002-08-07 Applied Research Systems Metodos de amplificacion y secuenciacion de acido nucleico
CA2375769A1 (en) 1999-01-11 2000-07-20 President And Fellows Of Harvard College Isothermal amplification of dna
US6300070B1 (en) * 1999-06-04 2001-10-09 Mosaic Technologies, Inc. Solid phase methods for amplifying multiple nucleic acids
JP6049051B2 (ja) 2011-07-29 2016-12-21 日東電工株式会社 両面真空成膜方法

Also Published As

Publication number Publication date
NZ510599A (en) 2003-06-30
CA2344575A1 (en) 2000-04-06
ATE311474T1 (de) 2005-12-15
US8652810B2 (en) 2014-02-18
DE69928683T2 (de) 2006-08-24
SK4292001A3 (en) 2001-12-03
US20160319274A1 (en) 2016-11-03
EP1117827B1 (en) 2005-11-30
HK1042525A1 (zh) 2002-08-16
AU6108899A (en) 2000-04-17
EP1117827B8 (en) 2010-06-02
EE200100195A (et) 2002-06-17
TR200100911T2 (tr) 2001-07-23
EA004271B1 (ru) 2004-02-26
AR021833A1 (es) 2002-08-07
HUP0105052A2 (hu) 2002-04-29
BR9914159A (pt) 2001-06-26
KR20010085860A (ko) 2001-09-07
IL142178A0 (en) 2002-03-10
US9297006B2 (en) 2016-03-29
PL347125A1 (en) 2002-03-25
EP1117827A1 (en) 2001-07-25
NO20011303L (no) 2001-05-22
WO2000018957A1 (en) 2000-04-06
JP2002525125A (ja) 2002-08-13
US10370652B2 (en) 2019-08-06
EP1634963A1 (en) 2006-03-15
HUP0105052A3 (en) 2003-12-29
AU771073B2 (en) 2004-03-11
EP1634963B1 (en) 2013-06-19
CN1325458A (zh) 2001-12-05
BG105363A (bg) 2001-12-31
US20080160580A1 (en) 2008-07-03
DE69928683D1 (de) 2006-01-05
EA200100402A1 (ru) 2001-10-22
ZA200102420B (en) 2001-09-26
US7115400B1 (en) 2006-10-03
NO20011303D0 (no) 2001-03-14
US20140228254A1 (en) 2014-08-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7115400B1 (en) Methods of nucleic acid amplification and sequencing
US8182994B2 (en) Centroid markers for image analysis of high denisty clusters in complex polynucleotide sequencing
JP5916166B2 (ja) 組織試料中の核酸の局在化された検出、又は空間的検出のための方法及び生成物
JP2018510662A (ja) 生物学的試料の空間識別されるマルチプレックスな核酸分析
CZ20031582A3 (cs) Izotermická amplifikace nukleových kyselin na pevném povrchu
CN102373265B (zh) 一种检测遗传性耳聋的试剂盒
JP2017512071A (ja) ゲノム適用および治療適用のための、核酸分子のクローン複製および増幅のためのシステムおよび方法
JP2003523183A (ja) 固相支持体上の複数のポリヌクレオチドを増幅し、検出する方法
CA2803693A1 (en) Methods for nucleic acid capture and sequencing
KR20180014054A (ko) 뉴클레오타이드의 직교 비블록화
CN109689883B (zh) 用于连接细胞组成物和基质的方法
HK1222881A1 (zh) 改进的ngs工作流程
US20060263790A1 (en) Methods for improving fidelity in a nucleic acid synthesis reaction
MXPA01003266A (en) Methods of nucleic acid amplification and sequencing